Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Роль факторов, определяющих результативность получения клонированных эмбрионов крупного рогатого скота in vitro

Диссертация: Роль факторов, определяющих результативность получения клонированных эмбрионов крупного рогатого скота in vitro
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Научная новизна. Впервые исследовано влияние бычьего пролактина на выделение и миграцию первого полярного тельца относительно метафазы II, на эффективность «слепой энуклеации», а также на развитие клонированных эмбрионов в зависимости от продолжительности созревания ооцитов крупного рогатого скота in vitro. Впервые показано отрицательное действие цитохалазина Б на устойчивость к микроманипуляциям… Читать ещё >

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. История клонирования
    • 1. 2. Этапы клонирования и факторы, влияющие на их эффективность
      • 1. 2. 1. Подготовка цитопластов
      • 1. 2. 2. Подготовка кариопласта
        • 1. 2. 2. 1. Типы соматических клеток, используемые для получения клонированных эмбрионов крупного рогатого скота
        • 1. 2. 2. 2. Способы синхронизации соматических клеток
    • 1. 3. Реконструирование ооцитов
    • 1. 4. Слияние кариопласта с цитопластом
    • 1. 5. Активация цитогибридов и постактивационное культивирование
    • 1. 6. Метилирование в клонированных формах

Роль факторов, определяющих результативность получения клонированных эмбрионов крупного рогатого скота in vitro (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность темы

Технология клонирования в большинстве развитых стран мира открывает существенные возможности животноводству (Revermann et al, 2000), биотехнологии (Baguisi et al., 1999), фармацевтической промышленности (Robl et al., 2007), производству трансгенных животных, сохранению исчезающих видов животных (Lanza et al, 2000; Loi et al., 2001), медицине человека (Niemann et al., 2005; Campbell et al., 2007; Robl et al., 2007; Duszewska et al., 2010).

В середине 1990;х годов индустрия клонирования базировалась на успешных исследованиях Wilmut (1997), под руководством которого впервые было получено первое клонированное животное — овца, продемонстрировав всему миру, что данная технология возможна, хотя и является весьма затратной и очень трудоемкой.

В след за ним в разных странах мира отмечались случаи рождения клонированных животных с использованием усовершенствованных и более эффективных методик, позволяющих получать больший процент развития реконструированных эмбрионов и рождения живого потомства.

Для технологии переноса ядра в энуклеированный ооцит, чтобы достигнуть ее самого полного потенциала, важно понять, может ли процедура клонирования полностью изменить клеточное старение и произвести клоны с нормальным генетическим и физиологическим возрастом, как при естественном воспроизводстве, или нет (Zhong et al., 2000). При этом немаловажным остается тот факт, что в процессе развития реконструированного эмбриона тысячи генов должны быть правильно экспрессированы (Humpherys etal, 2001).

Техника переноса ядер соматических клеток, с использованием в качестве цитопластов ооциты крупного рогатого скота, базировалась в свое время на методических приемах оплодотворения in vitro.

Разработанная в нашей стране к настоящему времени технология культивирования и оплодотворения in vitro ооцитов крупного рогатого скота позволяет получать 39,2% бластоцист с рождением живого потомства 27,3% (Сингина и др., 2011).

Что же касается использования ядерной пересадки в процессе клонирования, то следует отметить, что все ядра в организме содержат одинаковый набор генов (Wilmut et al, 1997; Kato et al, 1998, 1999; Wakayama et al, 1998, 1999; Zakhartchenko et al, 1999 a, b). В основном используют эмбриональные фибробласты, так как они имеют большую способность к репрограммированию и дальнейшему развитию (Cibelli et al, 1998).

В отличие от них взрослые соматические клетки успешно использовались Wilmut с соавторами (1997) для получения клонированного потомства. К тому же Kubota с соавторами (2000) показали возможность взрослых соматических клеток оставаться тотипотентными в течение долгого культивирования, что позволяло получать клонированные эмбрионы и живое потомство при многочисленном пассировании донорских клеток-кариопластов, хотя они и имеют меньшую потенцию к развитию по сравнению с эмбриональными клетками. Привлекательность взрослых соматических клеток для получения клонированного потомства связана с возможностью проведения фенотипического и генотипического анализа, а также получением большего количества потенциальных источников ядер (Arat etal., 2001).

Используя технологию клонирования в животноводстве можно получать уникальных, высокоценных и выдающихся животных в целях улучшения селекционного процесса, быстрого получения оптимизированных генотипов, а также для сохранения исчезающих пород домашних и диких животных. Не менее важно создание трансгенных животных с измененным обменом веществ в направлении повышения качества продукции (Эрнст, Зиновьева, 2008), животных-продуцентов биологически активных веществ (рекомбинантных белков человека), лекарственного назначения, а также животных, генетически устойчивых к ряду инфекционных заболеваний.

Метод межвидового клонирования, в частности пересадка ядер соматических клеток человека в энуклеированные яйцеклетки крупного рогатого скота, открывает возможности получения культуры стволовых плюрипотентных эмбриональных клеток и является наиболее перспективным направлением в репаративной медицине.

В мировой литературе имеются сведения о получении клонированных зародышей и потомства крупного рогатого скота (СПэеШ а!., 1998; Ка1-о et а!., 1998), однако механизмы, позволяющие воспроизвести подобные технологии, полностью не раскрываются. Это касается параметров слияния цитопласта и кариопласта, их активации, а также методов синхронизации клеточного цикла соматических клеток. Вследствие чего данная технология, в основном, носит эмпирический характер, имея низкую повторяемость результатов с уровнем получения клонированного потомства около 1- 4% ^Пти^я/., 1997; 1№акауата 1998; М1уо$Ы ег а!., 2001).

Причиной такого положения является с одной стороны то, что получение клонированных форм предусматривает целый ряд сложных манипуляций, а с другой стороны имеет место большое количество непонятных механизмов, которые влияют на развитие реконструированных зародышей. Многие эмбрионы, созданные путем реконструирования, нередко погибают незадолго до или после рождения. Тем не менее, выжившие животные часто имеют пороки, которые препятствуют их развитию или пагубно сказываются на их постнатальном развитии. На сегодняшний день ученые еще не знают в деталях причины, которые способствуют данным событиям. Кроме того, остается открытым вопрос о степени различий между природными процессами развития и искусственными, которые происходят после ядерной передачи в ооцитах крупного рогатого скота (Кеуегшапп а1, 2000).

Считается, что одной из главных причин неудачных попыток получения клонированных эмбрионов являются нарушения в экспрессии генов. Кроме того, значительная доля реконструированных бластоцист, наряду с меньшим количеством ВКМ (Коо et al., 2002) имеет ненормальное клеточное расположение (Chesne et al, 2002; Коо et al., 2002; Boiani et al., 2003), апоптоз (Levy et al, 2001), и как следствие дефекты эмбрионального развития (Chesne et al., 2002). Две формы клеточной смерти известны и могут быть выделены на основе морфологических и молекулярных критериев (Savill, 1994). Это некроз, который характеризуется ядерным распадом с разрывом внутренних и внешних мембран и апоптоз, который включает в себя разрушение цитоплазмы, конденсацию хроматина, фрагментацию ДНК с распадом ядра (Otti et al., 1999; Fahrudin et al., 2002; Neuber et al, 2002; Pomar et al, 2004).

Цель исследований. На основе изучения факторов, влияющих на результативность отдельных этапов клонирования, моделировать технологию получения эмбрионов крупного рогатого скота in vitro методом переноса ядер соматических клеток в энуклеированные ооциты.

В соответствии с вышеуказанной целью были поставлены следующие задачи:

— определить параметры синхронизации бычьих эмбриональных фибробластов в фазе G0/G1, с целью их последующего использования в качестве кариопластов;

— определить эффективность «слепой энуклеации» ооцитов, в зависимости от расположения первого направительного тельца относительно хромосом на стадии метафазы второго деления мейоза и времени созревания ооцит-кумулюсных комплексов;

— исследовать влияние времени культивирования in vitro и гормона пролактина на созревание ооцит-кумулюсных комплексов и положение первого полярного тельца относительно метафазной пластины в ооцитах коров;

— изучить влияние цитохалазина Б на реконструирование ооцитов методом переноса ядер соматических клеток крупного рогатого скота;

— установить оптимальные параметры электрослияния цитопласта и кариопласта с использованием мультипоратора фирмы Eppendorf (Германия);

— изучить влияние пролактина на развитие партеногенетических и клонированных эмбрионов крупного рогатого скота.

Научная новизна. Впервые исследовано влияние бычьего пролактина на выделение и миграцию первого полярного тельца относительно метафазы II, на эффективность «слепой энуклеации», а также на развитие клонированных эмбрионов в зависимости от продолжительности созревания ооцитов крупного рогатого скота in vitro. Впервые показано отрицательное действие цитохалазина Б на устойчивость к микроманипуляциям ооцитов, созревших в среде, содержащей пролактин и определены параметры электрослияния эмбриональных фибробластов и энуклеированных ооцитов с использованием мультипоратора фирмы Eppendorf.

Практическая значимость. Вследствие усовершенствования способа синхронизации клеточного цикла эмбриональных фибробластов на стадии G0/G1 и созревания ооцит-кумулюсных комплексов, а также методов «слепой энуклеации» и электрослияния цитопластов и кариопластов повышена эффективность технологии получения клонированных эмбрионов крупного рогатого скота.

Положения, выносимые на защиту:

— эффективность «слепой энуклеации» ооцитов зависит от расположения первого полярного тельца относительно метафазы II. Отклонение его более чем на 5 градусов снижает эффективность удаления хромосом;

— на выделение и расположение первого полярного тельца влияет время культивирования и присутствие в среде пролактина. Наибольшая доля ооцитов с ППТ наблюдается в период с 20 до 26 часов. Миграция первого полярного тельца начинается после 20 часов созревания. Пролактин не изменяет динамику выделения, но замедляет процесс миграции первого полярного тельца на 2 часа;

— слияние цитоплазм эмбрионального фибробласта и энуклеированного ооцита крупного рогатого скота с целью образования цитогибрида и его последующее эмбриональное развитие зависит от силы, продолжительности и кратности электроимпульса. Наиболее эффективным является режим: два последовательных импульса силой 30 Вт продолжительностью 15 мкс;

— цитохалазин Б не влияет на эффективность реконструирования ооцитов, созревающих в среде без пролактина и снижает долю комплексов цитопласт/кариопласт в случае использования яйцеклеток, созревающих в его присутствии;

— культивирование эмбриональных фибробластов в течение двух дней в среде содержащей 5% сыворотки является высокоэффективным способом синхронизации клеточного цикла в фазе 00/01;

— пролактин улучшает развитие клонированных и партеногенетических эмбрионов крупного рогатого скота. Наибольший процент развития клонированных бластоцист получается при «слепой энуклеации» ооцитов, созревающих в течение 18−22 часов. Положительный эффект пролактина в исследуемой системе культивирования на развитие искусственно активированных ооцитов выше, чем реконструированных.

Апробация результатов диссертации. Основные материалы диссертации доложены на научных конференциях Цента биотехнологии и молекулярной диагностики животных ГНУ ВИЖ в период с 2009 по 2011 гг., а также на научных конференциях: 8-я Международная научная конференция-школа ВИЖ «Современные достижения и проблемы генетики и биотехнологии сельскохозяйственных животных» (Дубровицы, 2009), региональная конференция молодых ученых Курганской ГСХА: «Молодежный научный потенциал в инновационном развитии уральского региона» (Курган, 2009), Международная научно-практическая конференция.

Уральской государственной академии ветеринарной медицины: «Инновационные подходы в ветеринарии, биологии и экологии» (Троицк, 2011), I Всероссийская конференция «Внутриклеточная сигнализация, транспорт, цитоскелет» (Санкт-Петербург, 2011).

Публикации. По результатам диссертационной работы опубликовано 5 статей, в том числе 3 в журналах, входящих в перечень ведущих рецензируемых научных журналов и изданий ВАК (Аграрный вестник Урала № 9 (88) — № 11 (90), Цитология (№ 9) и 2 статьи в сборниках научных трудов учебных и научно-исследовательских институтов страны.

Объем и структура диссертации. Диссертационная работа изложена на 130 страницах компьютерного набора и состоит из введения, обзора литературы, материалов и методов исследований, результатов собственных исследований, обсуждения полученных результатов, выводов, практических предложений и списка использованной литературы, который включает в себя 276 источников, в том числе 267 иностранных авторов. Работа содержит 7 таблиц, 18 рисунков.

выводы.

1. Для эффективного удаления хромосом ооцита первое полярное тельце, служащее ориентиром их расположения при «слепой энуклеации», не должно отклоняться от места локализации метафазы II более чем на 5 градусов.

2. Выделение первого полярного тельца зависит от продолжительности созревания ооцитов крупного рогатого скота. Наибольшая доля ооцитов с первым полярным тельцем наблюдалась в период с 20 до 26 часов созревания, с максимальным количеством — в 24 часа.

3. Добавление к среде созревания 50 нг/мл бычьего пролактина не влияет на созревание ооцитов, но замедляет процесс миграции первого полярного тельца относительно метафазы II. Отклонение ППТ от места локализации метафазы II более чем на 5 градусов происходит после 22 часов созревания ооцит-кумулюсных комплексов, что на 2 часа позднее, чем в его отсутствии.

4. Нецелесообразно проводить обработку ооцитов коров цитохалазином Б перед проведением процедуры «слепой энуклеации» и переносом соматической клетки, так как это не влияет на эффективность реконструирования ооцитов, культивируемых без пролактина и снижает долю комплексов цитопласт/кариопласт на 26,6% (Р<0,001) в случае использования ооцитов, созревающих в его присутствии.

5. Слияние цитоплазм эмбрионального фибробласта и энуклеированного ооцита крупного рогатого скота с целью образования цитогибрида и его последующее эмбриональное развитие зависит от силы, продолжительности и кратности электроимпульса. При использовании для этих целей мультипоратора фирмы Eppendorf оптимальными являются два последовательных импульса силой 30 Вт продолжительностью 15 мкс, которые позволяют получать 83,3% цитогибридов.

6. Развитие клонированных эмбрионов крупного рогатого скота зависит от продолжительности созревания ооцит-кумулюсных комплексов, которое составляет 22 часа.

Введение

пролактина в среду приводит к сокращению времени, необходимого для приобретения ооцитами способности к эмбриональному развитию до 18 часов, повышая при этом долю развития бластоцист на 10,7% (Р<0,001).

7. Добавление в среду созревания пролактина повышает долю развития искусственно активированных ооцитов крупного рогатого скота более чем в два раза.

8. Культивирование 100%) монослоя эмбриональных фибробластов в среде содержащей 5% фетальной бычьей сыворотки позволяет синхронизировать клеточный цикл на стадии 00/01 в 95−96% случаев.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

1. С целью повышения эффективности технологии получения клонированных эмбрионов крупного рогатого скота необходимо модифицировать систему культивирования ОКК за счет введения в среду 50 нг/мл бычьего пролактина.

2. Проводить процедуру «слепой энуклеации» в период с 18 до 22 часов с момента постановки ооцитов на созревание без предварительной обработки цитохалазином Б.

3. Для электрослияния цитопласта с кариопластом на мультипораторе фирмы Еррепс1ог1? использовать два последовательных импульса силой 30 Вт продолжительностью 15 сек. двумя импульсами.

4. Синхронизацию эмбриональных фибробластов в фазе 00/01 проводить путем двухдневного культивирования 100%) монослоя в среде содержащей 5% фетальной бычьей сыворотки.

Показать весь текст

Список литературы

  1. К.В. Развитие клонированных эмбрионов крупного рогатого скота и мышей in vitro, в зависимости от условий их реконструирования и культивирования: дис.. канд. биол. наук: 03.00.23. Мое. обл., 2006. с. 72−73
  2. А. И. Прикладная математическая статистика // М.: Физматлит, 2006. с. 816.
  3. A.B. Совершенствование метода получения клонированных эмбрионов крупного рогатого скота при использовании в качестве доноров ядер соматических клеток: дис.. канд. биол. наук: 03.01.06. Мое. обл., п. Родники, 2010. с. 66 72
  4. И.Ю. Биохимические и генетические аспекты регуляции пролактином оваральной функции коров на молекулярном и клеточном уровнях: дис.. д-ра. биол. наук: 03.01.04. / 03.02.07. Санкт-Петербург, 2010. с. 174−186
  5. A.A. Совершенствование основных этапов технологии реконструирования яйцеклеток млекопитающих при использовании кариопластов и цитопластов различного происхождения и состояния: дис.. канд. биол. наук: 03.00.23. Боровск, 2003. с. 65
  6. В. Методы введения веществ и органелл в клетку в технологиях клеточной инженерии //Цитология. 2007. Вып. 49(8). с. 1−11
  7. Т.Н., Тарадайник Т. Е., Зиновьева H.A. Оценка эффективности получения эмбрионов in vitro с использованием ооцитов коров и телок // Ж. Проблемы биологии продуктивных животных. 2011. Т. 4. с. 132−133
  8. И .Я., Хамицаева М. П., Лепнов A.C. и др. Методические рекомендации по количественному определению нуклеиновых кислот в клетках и тканях сельскохозяйственных животных // Дубровицы. 1985. с. 28.
  9. Л.К., Зиновьева H.A. Биологические проблемы животноводства в XXI веке // М.: РАСХН, 2008. с. 331−334.
  10. Alberio R., Brero S., Motlik J. et al. Remodeling of donor nuclei, DNA synthesis, and ploidy of bovine cumulus cell nuclear transfer embryos: effect of activation protocol //Mol. Reprod. Dev. 2001. Vol. 59. P. 371- 379.
  11. Aim H.H., Torner T., Kuzmina T. et al. Influence of prolactin and cAMP on maturation and developmental competence of bovine oocytes in vitro // Theriog. 1998. Vol. 49. P. 304.
  12. Aoyagi K., Ito H., Kanauchi T. et al. In Vitro Development and Production of Offspring from Bovine Nuclear Transfer Embryos Cultured in a Serum-free Medium // J. Reprod. Dev. 1999. Vol. 45. P. 129−134.
  13. Arat S., Rzucidlo S.J., Gibbons J. et al. Production of transgenic bovine embryos by transfer of transfected granulosa cells into enucleated oocytes // Mol. Reprod. Dev. 2001. Vol.60. P. 20−26.
  14. Armstrong D.T. Effects of maternal age on oocyte developmental competence//Theriog. 2001. Vol. 55. P. 1303−1322.
  15. Aston K.I., Li G.P., Hicks B.A. et al. The developmental competence of bovine nuclear transfer embryos derived from cow versus heifer cytoplasts // Anim. Reprod. Sei. 2006. Vol. 95.(3−4). P. 234−243.
  16. Bachelot A., Binart N. Reproductive role of prolactin // Reprod. 2007. Vol. 133. P. 361−369.
  17. Baguisi A., Behboodi E., Melican D.T. et al. Production of goats by somatic cell nuclear transfer // Nat. Biotech. 1999. Vol. 17. P. 456−61.
  18. Balasubramanian S. and Rho Gyu-Jin. Effect of cysteamine supplementation of in vitro matured bovine oocytes on chilling sensitivity and development of embryos // Anim. Reprod. Sei. 2007. Vol. 98(3−4). P. 282−92.
  19. Betts D., Bordignon V., Hill J. et al. Reprogramming of telomerase activity and rebuilding of telomere length in cloned cattle // Proc. Nat. Acad. 2001. Vol.98. P. 1077−1082.
  20. Bhojwani S. Investigations of cellular communication and cytoskeleton in bovine embryos after zona-free somatic cell nuclear transfer // Leipzig. 2005. P. 79- 38−42.
  21. Bilodeau-Goeseels S., Panich P. Effects of oocyte quality on development and transcriptional activity in early bovine embryos // Anim. Reprod. Sci. 2002. Vol. 71. P. 143−155.
  22. Boiani M., Eckardt S., Leu N. A. et al. Pluripotency deficit in clones overcome by clone-clone aggregation: epigenetic complementation. // J. Embo. 2003. Vol. 22. P. 5304−5312.
  23. Boland M.P. Use of the rabbit oviduct as a screaming tool for the viability of mammalian eggs // Theriog. 1984. Vol. 21. P. 126−137.
  24. Bole-Feysot C., Goffin V., Edery M. et al. Prolactin (PRL) and its receptor: actions, signal transduction pathways and phenotypes observed in PRL receptor knockout mice //Endocr. Rev. 1998. Vol. 19. P. 225−268.
  25. Booth P.J., Holm P.G., Vajta et al. Effect of two activation treatments and age of blastomere karyoplasts on in vitro development of bovine nuclear transfer embryos // Mol. Reprod. Dev. 20 001. Vol. 60. P. 337−383.
  26. Boquest A.C., Grupen C.G., Harrison S.J. et al. Production of cloned pigs from cultured fetal fibroblast cells // Biol. Reprod. 2002. Vol. 66. P. 12 831 287.
  27. Bordignon V., Smith L.C. Telophase enucleation: An improved method to prepare recipient cytoplasts for use in bovine nuclear transfer // Mol. Reprod. Dev. 1998. Vol.49. P. 29−36.
  28. Bourchis D., Bourhis L.D., Patin D. et al. Delayed and incomplete reprogramming of chromosome methylation patterns in bovine cloned embryo // Cur. Biol. 2001(a) Vol. 11. P. 1542−1546.
  29. Bowan R.A. Hasler J.F., Seidel G.E. In vitro development of bovine embryos in chemically defined media // Proc. 88th Annu. Res. Conf.: abstr. -Colorado State Univ. Fort Collins, 1975. P. 171.
  30. Brem G., Kiililiolzer B. The recent history of somatic cloning inmammals // Cloning and Stem Cells. 2002. Vol. 4. P. 57−63.
  31. Brendan G., Tatham T., Aneta Dowsing et al. Enucleation by Centrifugation of In Vitro-Matured Bovine Oocytes for Use in Nuclear Transfer // Biol. Reprod. 1995. Vol. 53. P. 1088 1094.
  32. Bressan F.F., Miranda M.S., Perecin F. et al. Improved production of genetically modified fetuses with homogeneous transgene expression after transgene integration site analysis and recloning in cattle // Cell. Reprog. 2011. Vol. 13(1). P. 29−36.
  33. Camargo L.S.A., Vianal J.H.M., Sal W.F. et al. Factors influencing in vitro embryo production // Anim. Reprod. 2006. Vol. 3(1). P. 19−28.
  34. Campbell K.H.S., Me Whir J., Ritchie W.A. et al. Sheep cloned by nuclear transfer from a cultured cell line // Nature. 1996. Vol. 380. P. 64−66.
  35. Campbell K.H., Fisher P., Chen W.C. et al. Somatic cell nuclear transfer: Past, present and future perspectives // Theriog. 2007 Vol. 68(1). P. 214 231.
  36. Campbell K.H.S., Loi P., Otaegui P. et al. Cell cycle co-ordination in embryo cloning by nuclear transfer // Rev. Reprod. 1996(b). Vol. 1. P. 40−46.
  37. Campbell K.H.S., Loi P., Otaegui P.J. et al. Cell cycle co-ordination in embryo cloning by nuclear transfer // 1996. Rev. Reprod. Vol. 1. P. 40−46.
  38. Campbell, K.H.S., Alberio R., Lee J.H. et al. Nuclear transfer in practice // Stem. Cells. 2001. Vol. 3. P. 201−208.
  39. Canel N., Bevacqua R., Fernandez-Martin R., et al. Activation with ionomycin followed by dehydroleucodine and cytochalasin B for the production of parthenogenetic and cloned bovine embryos // Cell. Rep. 2010. Vol. 12(4). P.491−499.
  40. Catania J., Fairweather D.S. DNA methylation and cellular aging // Mutat. Res. 1991. Vol. 256. P. 283.
  41. Channing C.P., Evans V.W. Stimalatory effect of ovine prolactin upon cultured porcine granulose cell secretion of inhibitory activity of oocyte maturation //Endocr. 1982. Vol. 3(5). P. 1746−1748.
  42. Chatot C.L., Lewis-Williams, Torres J. et al. One-minute exposure of 4-cell mouse embryos to glucose overcomes morula block in CZB medium // Mol. Reprod. Dev. 1994 Vol. 37. P. 407−412.
  43. Chesne P., Adenot P.G., Viglietta C. et al. Cloned rabbits produced by nuclear transfer from adult somatic cells // Nat. Biotech. 2002. Vol. 20. P. 366 369.
  44. Cho S.R., Ock S.A., Yoo J.G. et al. Effects of confluent, roscovitine treatment and serum starvation on the cell-cycle synchronization of bovine fetal fibroblasts //Reprod. Domest. Anim. 2005. Vol. 40. P. 171−176.
  45. Chons K.R., et al. Serum starvation on the cell-cycle synchronization foetal fibroblasts // Reprod. Domest. Anim. 2007. Vol. 4. P. 123−124.
  46. Choresca C.H., Koo O.J., Oh H.J. et al. Different culture conditions used for arresting the G0/G1 phase of the cell cycle in goldfish (Carassius auratus) caudal fin-derived fibroblasts // Cell Biol. 2009. Vol. 33. P. 65−70.
  47. Cibell J.B., Stice S.L., Golueke P.J. et al. Cloned transgenic calves produced from no quiescent fetal fibroblasts // Sci. 1998. Vol. 280. P. 12 561 258.
  48. Collas P., Sullivan E.J., Barnes F.I. Histone HI kinase activity in bovine oocytes following calcium stimulation // Mol. Reprod. Dev. 1993. Vol. 34. P. 224 231.
  49. Dean W., Santos F., Stojkovic M. et al. Conservation of methylation reprogramming in mammalian development: aberrant reprogramming in cloned embryos //PNAS. 2001. Vol. 98. P. 13 734−13 738.
  50. Dieleman S.J., Hendriksen P.J.M., Viuff D. et al. Effects of in vivo prematuration and in vivo final maturation on developmental capacity and quality of pre-implantation embryos // Theriog. 2002. Vol. 57. P. 5−20.
  51. Dode M.A., Adona P.R. Developmental capacity of bos indicus oocytes after inhibition of meiotic resuption by 6-dimethylaminopurine // Anim. Reprod. Sci. 2001. Vol.65. P. 171−180.
  52. Dodge, Jonathan E., Bernard H. et al. De novo methylation of MMLV provirus in embryonic stem cells: CpG versus non-CpG methylation // Science. Direct. 2002. P. 277−286.
  53. Dominko T., First N.L. Timing of meiotic progression in bovine oocytes and its effect on early embryo development // Mol. Reprod. 1997. Vol. 47. P. 456−467.
  54. Du F., Jiang S., Yang X. Beneficial effect of oocyte activation prior to and during nuclear transfer in cattle using in vitro matured oocytes 24 h of age // Reprod. Nat. 1995. Vol. 35(6). P. 703−712.
  55. Edwards S.R., Braley R. and Chaffm W.L. Enolase ispresent in the cell wall of Saccharomyces cerevisiae//Microb. Lett. 1999. Vol. 177. P. 211−216.
  56. Eggan K., Akiitsu H., Loring J. et al. Hybrid vigour, foetal overgrowth and viability of mice derived by nuclear cloning and tetraploid embryo complementation // Proc. Nat. Acad. Sci. 2001. Vol. 98. P. 6209−6214.
  57. Eglitis M. Formation of tetraploid mouse blastocysts following blastomere fusion with polyethylene glycol // Exp. Zool. 1980. Vol. 213. P. 309−313.
  58. Enright B.P., Sung Y., Chang C. et al. Methylation and Acetylation Characteristics of Cloned Bovine Embryos from Donor Cells Treated with 5-aza-2'-Deoxycytidinel//Biol. Reprod. 2005. Vol.72. P. 944−948.
  59. Eyestone W.H., Lebfried M.I., Northey D.I. et al. Culture of one and two-cell bovine embryos to the blastocyst stage in the ovine oviduct // Theriog. 1987. Vol. 28. P. 1−7.
  60. Fahrudin M., Otti T., Karja N.W.K. et al. Analysis of DNA fragmentation in bovine somatic nuclear transfer embryos using TUNEL // Reprod. 2002. Vol. 124. P. 813−819.
  61. Felmer R.D., Arias M.E. Developmental rates of bovine nuclear transfer embryos derived from different fetal non transfected and transfected cells // J. Biot. 2011 (a). Vol. 14(3).
  62. Felmer R.F., Arias M.E., Riveros J.L. et al. Evolution of different sequential culture systems on the development and quality of bovine embryos generated by somatic cells nuclear transfer // 37th IETS Annual Conference, Orlando, Florida. 2011.(6)
  63. First N.L., Dyshiakshuv-Rutledge M.I., Northey D.L. et al. Use in vitro matured oocytes 24 h age in bovine nuclear transfer // Theriog. 1992. Vol. 37. P. 211.
  64. Fissore R.A., Robl J.M. Intracellular Ca response of rabbit oocytes to electrical stimulation//Mol. Reprod. Dev. 1992. Vol. 32. P. 9−16.
  65. Forell F., Feltrin C., Lucila dos Santos C. et al. Use of bovine oocytes as recipient cytoplasm in the production of embryos through nuclear transfer of interspecies somatic cells (NTSCi) //Acta. Sci. Vet. 2008. Vol. 32(2). P. 141 147.
  66. Franz L.C., Squilres E.L., Rumpf R. et al. Effect of roscovitine in maintaining meiotic arrest in equine oocytes and subsequent maturation rates after inhibition //Theriog. 2002. Vol.58. P. 679−683.
  67. Frei R.E., Schultz G.A., Church R.B. Qualitative and quantitative changes in protein synthesis occur at the 8−16-cell stage of embryogenesis in the cow // J. Reprod. Fertil. 1989. Vol. 86. P. 637−641.
  68. Fuente D.L.R. and KING W.A. Developmental consequences of karyokinesis without cytokinesis during the first mitotic cell cycle of bovine parthenotes//Biol. Reprod. 1998. Vol.58. P. 952−962.
  69. Fulka J.J., Moor R.M., Fulka J. Sister-chromatid separation and the metaphase-anaphase transition in mouse oocytes //Dev. Biol. 1994. Vol.165. P. 410−417.
  70. Galli C., Lagutina I., Vassiliev I. et al. Cloning and Stem Cells // Anim. and Vet. 2002. Vol. 4(3). P. 189−196.
  71. Galli C., Lagutina I., Crotti G. et al. Pregnancy: a cloned horse born to its dam twin //Nat. 2003. Vol. 424. P. 635.
  72. Galli C., Duchi R., Moor R.M. et al. Mammalian leukocytes contain all the genetic information necessary for the development of a new individual cloning //Cloning. 1999. Vol. 1. P. 161−170.
  73. Gang Z., Qing-Yuan Suna and Da-Yuan Chen. Effects of sucrose treatment on the development of mouse nuclear transfer embryos with morula blastomeres as donors // Zygote. 2008. Vol. 16. P. 15 19.
  74. Gardner D.K., Lane M., Calderon I. et al. Environment of the preimplantation human embryo in vivo: metabolite analysis of oviduct and uterine fluids and metabolism of cumulus cells // Fertil. Steril. 1996. Vol. 65. P. 349−353.
  75. Gerger E.S. Ribeiro F., Forell L.R. In vitro development of cloned bovine embryos produced by handmade cloning using somatic cells from distinct levels of cell culture confluence // Genet. Mol. Res. 2010. Vol. 9(1). P. 295−302.
  76. Gibbons J., Arat S., Rzucidlo J. et al. Enhanced survivability of cloned calves derived from roscovitine-treated adult somatic cell // Biol. Reprod. 2002. Vol. 66. P. 895−900.
  77. Goffin V., Bouchard B., Ormandy C.J. et al. Prolactin: a hormone at the crossroads of neuroimmunoendocrinology // Ann. Acad. Sci. 1998. Vol. 840. P. 498−509.
  78. Goissis M.D., Caetano H.V., Marques M.G., et al. Effects of serum deprivation and cycloheximide on cell cycle of low and high passage porcine fetal fibroblasts // Reprod. Dornest. Anim. 2007. Vol. 42. P. 660−663.
  79. Gordon D., Kallen R.G., Heinemann S.H. Sodium channel features that confer different sensitivity to various scorpion a-toxins // J. Toxicon. 2007. Vol. 49. P. 59−68.
  80. Graham C.F. Virus assisted fusion of embryonic cells. In Diczfalusy, E. (ed.), In Vitro Methods in Reproductive Cell Biology // Acta. Endoc. 1971. Vol. 153. P. 154−167.
  81. Haines T.R., Rodenhisera D.I. and Ainsworth P.J. Allele-Specific non-CpG methylation of the Nfl gene during earlym development // Science Direct. Dec. 2001. Vol. 240(2). P. 585−598.
  82. Hashem M.A., Bhandari D.P., Kang S. K et al. Cell cycle analysis of in vitro cultured goral (Naemorhedus caudatus) adult skin fibroblasts // Cell Biol. 2006. Vol.30. P. 698−703.
  83. Heleil B., Tomer H., Aim H. et al. Influence of follicle size and bPRL, on developmental competence of bovine cumulus oocyte complexes in vitro. In: proceeding 14th meeting european embryo transfer asociation // Venice. 1998 Vol. 45(1). P. 168.
  84. Heleil B., Aim H., Kuzmina T. et al. Phyisological status of bovine cumulus-oocyte complexes basic for embryo production in vitro // Arch, tierz.2001. Vol. 44. P. 91−93.
  85. Hertzog P.J. Isolation of Embryonic Fibroblasts and Their Use in the In Vitro Characterization of Gene Function Series // Meth. in Mol. Biol. 2001. Vol. 158. P. 205 -215.
  86. Heyman Y., Chavatte-Palmer P., Bourhis Le D. et al. Frequency and occurrence of late-gestation losses from cattle cloned embryos // Biol. Reprod.2002. Vol.66. P. 6−13.
  87. Hicap J.M. RP to produce Southeast Asia’s first cloned buffalo // Check. Biotech. 2007. Article.
  88. Hill J.R., Winger A.Q., Burghardt R.C. et al. Bovine nuclear transfer embryo development using cells derived from a cloned fetus // Anim. Reprod. 2001. Vol.67. P. 17−26.
  89. Hill J.R., Burghardt R.C., Jones K. et al. Evidence for placental abnormality as the major cause of mortality in first-trimester somatic cell cloned bovine fetuses // Biol. Reprod. 2000. Vol. 63. P. 1787−1794.
  90. Holt S.E., Wright W.E., Shay J.W. Regulation of telomerase activity in immortal cell lines//Mol. Cell. Biol. 1996. Vol. 16(6). P. 2932−2939.
  91. Hou Y.P., Liu Y., Dai Y.P. et al. Improved parthenogenetic development of vitrified-warmed bovine oocytes activated with 9% ethanol plus 6-DMAP // Theriog. 2009. Vol. 72(5). P. 643−649.
  92. Hua S., Zhang Z., Zhang Chi et al. An improved enucleation method of bovine somatic cell nuclear transfer // J. Gen. and Genom. 2007. Vol. 34(6). P. 491−496.
  93. Humpherys D., et al. Epigenetic instability in ES cells and cloned mice// Sci. 2001. Vol. 293. P. 95−97.
  94. Hwang W.S. World’s first canine clone is revealed // J. Nat. 2005. Vol. 436. P. 641.
  95. Hyttel P., Xu K.P., Smith S. et al. Ultrastructure of in-vitro oocyte maturation in cattle // J. Reprod. Fertil. 1986. Vol.78. P. 615−625.
  96. Iguma T., Sharon F., Lisauskas C. et al. Development of bovine embryos reconstructed by nuclear transfer of transfected and non-transfected adult fibroblast cells // Genet. Mol. Res. 2005. Vol. 4(1). P. 55−66.
  97. Illmensee K. and Hoppe P.C. Nuclear transplantation in Mus musculus: developmentalpotential of nuclei from preimplantation embryos // J. Anim. Since. 1981. Vol.23. P. 9.
  98. Im G.S., Lai L., Liu Z. et al. In vitro development of preimplantation porcine nuclear transfer embryos cultured in different media and gas atmospheres //Theriog. 2004. Vol.61. P. 1125−1135.
  99. Iwasaki S., Kono T., Fukatsu H. et al. Production of bovine tetraploid embryos by electrofusion and their developmental capability in vitro // Gam. Res. 1989. Vol. 36. P. 261.
  100. Jang G., Kang S., Lee B. et al. Effect of glycosaminoglycans on the development of in vitro fertilized, Reconstructed bovine embryo // Thertog. 2002. Vol.57. P. 519.
  101. Jones K. Ca oscillations in the activation of the egg and development of the embryo in mammals // Dev. Biol. 1998. Vol. 42. P. 1−10.
  102. Kakuo S., Asaoka K., Ide T. Human is a unique species among primates in terms of telomere length //Biochem. 1999. Vol. 263(2). P. 308−314.
  103. Kang Y. K, Koo D. B, Park J.S. et al. Aberrant methylation of donor genome in cloned bovine embryos // Nat. Genet. 2001. Vol. 28(2). P. 173−177.
  104. Kato Y., Tani T., Sotomaru Y. et al. Eight calves cloned from somatic cells of a single adult // Sci. 1998. Vol. 282. P. 2095−2098.
  105. Kato Y., Tani T. and Tsunoda Y. Cloning of calves from various somatic cell types of male and female adult, newborn and fetal cows // J. Reprod. Fertil. 2000. Vol. 120. P. 231−237.
  106. Khatir H., Lonergan P., Mermillod P. Kinetics of nuclear maturation and protein profiles of oocytes from prepubertal and adult cattle during in vitro maturation//Theriog. 1998. Vol. 50. P. 917−929.
  107. Kim M.K., Jang G., Oh H.J. et al. Endangered wolves cloned from adult somatic cells // Clon. and Stem. Cell. 2007. Vol. 9(1). P. 1−8.
  108. Kim J.H., Funahashi H., Niwa K. et al. glucose requirement at different developmental stages of in vitro fertilized bovine embryos cultured in semidefined medium // Theriog. 1993. Vol. 39. P. 875−886.
  109. Kitiyanant, Saikliun J., Busabun Chaisalee et al,. Somatic Cell Cloning in Buffalo (Bubalus bubalis): Effects of Interspecies Cytoplasmic Recipients and Activation Proced // J. Cloning and Stem Cells. 2001. Vol. 3. P. 97−104.
  110. Knijn H.M., Wrenzycki C., Peter J.M. et al. Effects of oocyte maturation regimen on the relative abundance of gene transcripts in bovine blastocysts derived in vitro or in vivo // Reprod. 2002. Vol. 124. P. 365−375.
  111. Koo D.B., Kang Y.K., Choi Y.H. et al. Aberrant allocations of inner cell mass and trophectoderm cells in bovine nuclear transfer blastocysts // Biol. Reprod. 2002. Vol. 67(2). P. 487−492.
  112. Koo O.J., Hossein M.S., Hong S.G. et al. Cell cycle synchronization of canine ear fibroblasts for somatic cell nuclear transfer // Zygote. 2009. Vol. 17. P. 37−43.
  113. Korhonen K., Kananen K., Ketoja E. et al. Effects of serum-free In vitro maturation of bovine oocytes on subsequent embryo bevelopment and cell allocation in two developmental stages of day 7 blastocysts // Reprod. Dom. Anim. 2010. Vol. 45. P. 42 49.
  114. Kozik A., Bradbury E.M., Zalensky A.O. Identification and characterization of a bovine sperm protein that binds specifically to single-stranded telomeric deoxyribonucleic acid // Biol. Reprod. 2000. Vol. 62(2). P. 340−346.
  115. Kremenskoy M., Kremenskay Y., Suzuki M. et al. DNA methylation profiles of donor nuclei cells and tissues of cloned bovine fetuses // J. Reprod Dev. 2006. Vol. 52(2). P. 259−266.
  116. Krischek C., Meinecke B. Roscovitine, a specific inhibitor of cyclin-dependent protein kinases, reversibly inhibits chromatin condensation during in vitro maturation of porcine oocytes // Zygote. 2001. Vol. 9. P. 309−316.
  117. Kubelka M., Motlik J., Fulka J.J. et al. Time sequence of germinal vesicle breakdown in pig oocytes after cycloheximide and p-aminobenzamidine block //Gamete Res. 1988. Vol.19. P. 423−431.
  118. Kubish H.M., Larson M.A., Barnes F. et al. Transgene expression in IVM/IVF-derived bovine embryos after delay on maturation with 6 demethylaminopurine // Theriog. 1995. Vol. 43. P. 255.
  119. Kubota C. Six cloned calves produced from adult fibroblast cells after long-term cultures // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2000. Vol. 97. P. 990.
  120. Kubota C., Yang X., Dinnyes A. et al. In vitro and in vivo survival of frozen-thawed bovine oocytes after IVF, nuclear transfer and partenogenetic activation//Mol. Reprod. Dev. 1998. Vol. 51. P. 281−286
  121. Kues W.A., Joseph C.W., Paul Dieter et al. Cell Cycle Synchronization of Porcine Fetal Fibroblasts by Serum Deprivation Initiates a Nonconventional Form of Apoptosis // Cloning and Stem Cells. 2002. Vol. 4(3). P. 231−243.
  122. Kuzinina T., Tomer H., Aim H. et al. Eflect of bovine prolactin (bPRL) on oocyte maturation and early embryonic development in different culture systems // Theriog. 1998. Vol. 49. P. 314.
  123. Kuzmina T., Lebedeva I.Y., Torner H. et al. Effect of prolactin on intracellular stored calcium in the course of bovine oocyte maturation in vitro // Theriog. 1999. Vol. 51. P. 1363−1374.
  124. Kuzmina T., Tomer H., Aim H. and Lebedeva I. Eflect of bovine prolactin (bPRL) on oocyte maturation and early embryonic development in different culture systems // Theriog. 1998. Vol. 49. P. 314.
  125. Kuzmina T., Tomer H., Aim H. and Lebedeva I. How prolactin influences the maluration and further development of bovine oocytes // Tierzucht. Duminerstof. 1996. Vol. 39. P. 54.
  126. Lagutina I., Ponderato N., Lazzari G. et al. Kinetics of oocyte maturation and subsequent development of IVF, parthenogenic. and NT bovine embryos after meiotic inhibition with roscovitine // Cloning Stem Cells. 2002. Vol.4. P. 113−119.
  127. Lanza R.P., Cibelli J.B., Blackwell C. et al. Extension of cell life-span and telomere length in animals cloned from senescent somatic cells // Sci. 2000(a). Vol. 288. P. 665−669.
  128. Lavasseur M. and McDougall A. Sperm-induced calcium oscillations at fertilisation in ascidians are controlled by cyclin B1-dependent kinase activity // Dev. 2000. Vol. 127. P. 631−641.
  129. Lawrence Y. Withaker M. and Swann K. Sperm-egg fusion is the prelude to the initial Ca increase at fertilisation in the mouse // Dev. 1997. Vol. 124. P. 233−241.
  130. Learch R.E., Stachecki J., Armant D.R. Development of in vitro fertilized mouse embryos exposed to ethanol during the preimplantation period: accelerated embryogenesis at subtoxic levels // Terat. 1993. Vol. 47. P. 57−64.
  131. Lee J., Hata K., Miyano T.M. et al. Tyrosine phosphorylation of p34cdc2 in metaphase II arrested pig oocytes results in pronucleus formation without chromosome segregation//Mol. Reprod. Dev. 1999. Vol. 52. P. 107−116.
  132. Leroy-Martin B., Bouhdiba M., Saint Pol P. et al. Peripheral effects of prolactin in reproductive function. II. Female reproductive function // J. Gynecol. Obstet. Biol. Reprod. 1989. Vol. 18. P. 288−294.
  133. Levy R.R., Cordonier H., Czyba J.C. and et al. Apoptosis in preimplantation mammalian embryos and genetics // Int. J. Anat. Embryol. 2001. Vol. 106(2). P.101−108.
  134. Lewin B. Driving the cell cycle: M phase kinase, its partners and substrates//Cell. 1990. Vol.61. P. 743−752.
  135. Li Z., Xingshen Sun, Chen J. Cloned ferrets produced by somatic cell nuclear transfer // Dev. Biol. 2006. Vol. 293. P. 439−448.
  136. Li E., Beard C., Jaenisch R. Role for DNA methylation in genetic impinting//Nat. 1993. Vol. 366. P. 362−365.
  137. Li G.P., Kenneth L., White Bunch D. et al. Review of Enucleation Methods and Procedures Used in Animal Cloning // Cloning and Stem Cells. 2004. Vol. 6(1). P. 5−13.
  138. Li G.P., White K.L., Aston K.I. et al. Colcemid-treatment of heifer oocytes enhances nuclear transfer embryonic development, establishment of pregnancy and development to term // Mol. Reprod. Dev. 2009. Vol. 76(7). P. 620 628.
  139. Li G.P., Chen D.Y., Lian L., et al. Rabbit cloning: improved fusion rates using cytochalasin B in the fusion buffer // Mol. Reprod. Dev. 2002. Vol. 61(2). P.187−191.
  140. Li J., Greco V., Guasch G. et al. Mice cloned from skin cells // Proc. Of the Nat. Acad. 2007(a). Vol. 140(8). P. 2738−2743.
  141. Li X.C., Yong Zhang, Song Hua et al. The use of demecolcine for enucleation of bovine oocytes // J. Zool. 2007(b). Vol. 137(2). P. 209 214.
  142. Liu J.L., Wang M.K., Sun Q.Y. et al. Effect of telophase enucleation on bovine somatic nuclear transfer // Theriog. 2000. Vol. 54. P. 989−998.
  143. Liu L., Ju J.C., Yang X. Parthenogenetic development and protein patterns of newly matured bovine oocytes after chemical activation // Mol. Reprod. Dev. 1998(b). V. 49. P. 298−307.
  144. Liu J.L., Sung L., Barber M. Hypertonic medium treatment for localization of nuclear material in bovine metaphase-II oocytes // Biol. Reprod. 2002. Vol. 66. P. 1342−1349.
  145. Liu L., Ju J.C., Yang X. Differential inactivation of maturation-promoting factor and mitogen-activated protein kinase following partenogenetic activation of bovine oocytes //Biol. Reprod. 1998(a). Vol. 59. P. 537−545.
  146. Liu L., Yang X. Interplay of maturation-promoting factor and mitogenactivated protein kinase inactivation during metaphase to — interphas transition of activated bovine oocytes //Biol. Reprod. 1999. Vol.61. P. 1−7.
  147. Loi P., Ledda S., Fulka J.R. et al. Development of parthenogenetic and cloned ovine embryos: effect of activation protocols // Biol. Reprod. 1998. Vol. 58. P. 1177−1187.
  148. Loi P., Ptak G., Barbom B. Mammal by cross-species miclear transfer Biotechnol Clinton M. Genetic rescue of an endangered using post-mortem somatic cells //Nat. Biot. 2001. Vol. 19. P. 962−964.
  149. Lonergan P., Khatir H., Carolan C. et al. Bovine blastocyst production in vitro after inhibition of oocyte meiotic resumption for 24 h // J. Reprod. Fertil. 1997. Vol. 109. P. 355−365.
  150. Lonergan P., Dinnyes A., Fair T. et al. Bovine oocyte and embryo development following meiotic inhibition with butyrolactone X. Yang // Mol. Reprod. Dev. 2000. Vol. 57. P. 204−209.
  151. Lonergan P., Fair T., Corcoran D. et al. Effect of culture environment on gene expression and developmental characteristics in IVF-derived embryos // Theriog. 2006. Vol.65. P. 137−152.
  152. Ludwig T.E. Lane M., Bavister B.D. Diferential effect of hexoses on hamster emryo development in culture // Biol. Reprod. 2001. Vol. 64. P. 13 661 374.
  153. Machaty Z. and Prather R.S. Strategies for activating nuclear transfer embryos//Reprod. Fertil. Dev. 1998. Vol. 10. P. 599−613.
  154. Majerus V., Roover De R., Etienne D. et al. Embryo production by ovum pick up in unstimulated calves before and after puberty // Theriog. 1999. Vol.52. P. 1169−1179.
  155. Marchal R., Tomanek M., Terqui M. Effects of cell cycle dependent kinases inhibitor on nuclear and cytoplasmic maturation of porcine oocytes // Mol. Reprod. Dev. 2001. Vol. 60. P. 65−73.
  156. McGrath J. and D. Solter Nuclear transplantationin the mouse embryo by microsurgery and cell fusion // Sci. 1983. Vol. 220. P. 130.
  157. McKinnel R.G. Expression of the Kandiyohi gene in triploid frogs produced by nuclear transplantation//Genetics. 1963 Vol. 49. P. 895−903.
  158. Mello M.R.B., Caetano H.V.A., Marques M.G. et al. Production of a cloned calf from a fetal fibroblast cell line // J. Med. Biol. Res. 2003. Vol. 36(11). P. 1485−1489.
  159. Memili E., Dominko T., First N.L. Onset of transcription in bovine oocytes and preimplantation embryos // Mol. Reprod. and Dev. 1998. Vol. 51. P. 36−41.
  160. Meo S.C., Yamazaki W., Ferreira C.R. Parthenogenetic activation of bovine oocytes using single and combined strontium, ionomycin and 6-dimethylaminopurine treatments //Zygote. 2007. Vol. 15(4). P. 295−306.
  161. Mermillod P. Tomanek M., Marchal R. et al. High developmental competence of cattle oocytes maintained at the germinal vesicle stage for 24 hours in culture by specific inhibition of MPF kinase activity // Mol. Reprod. Dev. 2000. Vol. 55. P. 89−95.
  162. Mertens M.J., Lor Pez-Bejar M., Paramio M.T. Intracytoplasmic glutathione levels in heifer oocytes Cultured in different Maturation Media and its Effect on Embryo Development // Reprod. Dom. Anim. 2005. Vol. 40. P. 126— 130.
  163. Milazzotto M.P., Feitosa W.B., Coutinho A.R.S. et al. Effect of chemical or electrical activation of bovine oocytes on blastocyst development and quality // Reprod. 2007. Vol. 43(3). P. 319−322.
  164. Miyashita N., Shiga K., Yoiiai M. Remarkable differences in telomere lengths among cloned cattle derived from different cell types // Biol. Reprod. 2002. Vol.66. P. 1649−1655.
  165. Miyazaki S., Shirakawa H., Nakada K. et al. Essential role of the inositol 1,4,5-trisphosphate receptor/Ca2+ release channel in Ca2+ waves and Ca2+ oscillations at fertilization of mammalian eggs // Dev. Biol. 1993. Vol. 158(1). P. 62−78.
  166. Miyoshi K., Rzucidlo S.J., Gibbons J.R. et al. Development of porcine embryos reconstituted with somatic cells and enucleated metaphase I and II oocytes matured in a protein-free medium // Dev. Biol. 2001. Vol. 1. P. 12.
  167. Moens A., Chastant S., Chesne P. et al. Differential ability of male and female rabbit fetal germ cell nuclei to be reprogrammed by nuclear transfer // Differen. 1996. Vol. 60. P. 339−345.
  168. Monghan P., Carolan C., Lonergan P. et al. The effect of maturation time on the subsequent in vitro development of bovine oocytes // Theriog. 1993. Vol.39. P. 270.
  169. Montagner, Marcelo Marcos et al. Hepes on in vitro production of bovine embryos // Cienc. Rural. 2000. Vol. 30(3). P. 469−474.
  170. Moos J., Xu Z., Schultz R.M. et al. Regulation of nuclear envelop assembly/dissembly by MAP kinase //Dev. Biol. 1996. Vol. 175. P. 358−361.
  171. Moses R.M., Kline D. Release of mouse eggs from metaphase arrest by protein synthesis inhibition in the absence of a calcium signal or microtubule assembly//MoLReprod. Dev. 1995. Vol.41. P. 264−273.
  172. Motlik J., Sutovsky P., Kalous J. et al. Co-culture with pig membrana granulosa cells modulates the activity of cdc2 and MAP kinase in maturing cattle oocytes //Zygote. 1996. Vol.5. P. 1−12.
  173. Nakada K. and J. Mizuno Intracellular calcium responses in bovine oocytes induced by spermatozoa and by reagents // Theriog. 1998. Vol. 50. P. 269−282.
  174. Nakada K., Navara C.S., First N.L. et al. Microtubule organization in the cow during fertilization, polyspermy, parthenogenesis, and nuclear transfer: The role of the sperm aster // Dev. Biol. 1994. Vol. 162. P. 29−40.
  175. Neuber E., Luetjens C.M., Chan A.M. et al. Analysis of DNA fragmentation of in vitro cultured bovine blastocysts using TUNEL // Theriogen. 2002. Vol. 57. P. 2193−2202.
  176. Nickoloff J.A. Animal cell and electro fusion protocols // Mol. Biol. 1995. Vol. 48. P. 286−287.
  177. Niemann H., Wrenzycki C., Lucas-Halm A. Gene expression patterns in bovine in-vitro produced and nuclear transfer-derived embryos and their implications for early development // Cloning and Stem Cells 2002. Vol. 4. P. 29−38.
  178. Nour M.S. and Takahashi Y. Preparation of young preactivated oocytes with highenucleation efficiency for bovine nuclear transfer // Theriog. 1999. Vol. 51. P. 661−666.
  179. Oback B., Wiersema A.T., Gaynor P. et al. Cloned cattle derived from a novel zona-free embryo reconstruction system // Cloning and Stem Cells. 2003. Vol. 5. P. 3−12.
  180. Oda T., Yoshimura Y., Takehara Y. et al. Effect of prolactin on fertilization and cleavage of human oocytes // Horm. Res. 1991. Vol. 35(1). P.33−38.
  181. Ogura A., Inoue K., Ogonuki N. et al. Phenotypic effects ofsomatic cell cloning in the mouse // Cloning Stem Cells. 2002. Vol. 4. P. 397−405.
  182. Oropeza A., Wrenzycki C., Herrmann D. et al. Improvement of the developmental capacity of oocytes from prepubertal cattleby intraovarian insulinlike growth factor-I application // Biol. Reprod. 2004. Vol. 70. P. 1634 1643.
  183. Oyamada T., Fukui Y. Oxygen tension and medium supplements for in vitro maturation of bovine oocytes cultured individually in a chemically defined medium // J. Reprod. Dev. 2004. Vol. 50. P. 107−117.
  184. Park Y.S., Kim S.S., Kim J. M et al. The effects of duration of in vitro maturation of bovine oocytes on subsequent development, quality and transfer of embryos//Theriog. 2005. Vol.64. P. 123−134.
  185. Parnpai R.K., Tasripoo and M. Kamonpatana. Developmental potential of cloned bovine embryos derived from quiescent and non-quiescent adult ear fibroblasts after different activation treatments // Theriog. 2000(a). Vol. 53. P. 239.
  186. Parnpai R., Tasripoo K. and Kamonpatana M. Comparison of cloning efficiency in bovine and swamp buffalo embryo using fetal fibroblasts ear fibroblasts and granulosa cells//Theriog. 2002(a). Vol.57. P. 443.
  187. Pincus G. Observation on the development of cow ovs in vivo and in vitro // Proc. Of 1st National Egg Transfer Breeeding Conf.: San Antonio, 1951. P. 18.
  188. Pincus G., Enzmann E.V. The comparative behavior of mammalian eggs in vivo and in vitro. The activation of ovarian eggs // J. Exp. Med. 1935. Vol. 62. P. 655−675.
  189. Polejaeva I. A., Chen Shu-Hung, Vaught T. D. et al. Cloned pigs produced by nuclear transfer from adult somatic cells // Nat. 2000. Vol. 407. P. 8690.
  190. Pomar F.J.R., Steverink D.W., Hazeleger W. et al. Development NA fragmentation and cell death in porcine embryos after 24 h storage under different conditions // Theriogen. 2004. Vol. 61. P. 147−158.
  191. Ponderato N., Lagutina I., Crotti G. et al. Bovine oocytes treated prior to in vitro maturation with a combination of butyrolactone I and roscovitine at low doses maintain a normal developmental capacity // Mol. Reprod. Dev. 2001. Vol. 60. P. 579−585.
  192. Prather R.S. Progress in cloning embryos from domesticated livestock // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1996. Vol. 212. P.38−43.
  193. Presicce G.A., Yang X. Partenogenetic development of bovine oocytes matured in in-vitro for 24 h and activated by ethanol and cycloheximide // Mol. Reprod. Dev. 1994. Vol. 38. P. 380−385.
  194. Presicce G.A., Jiang S., Simkin M. et al. Age and hormonal dependence of acquisition of oocyte competence for embryogenesis in prepurbertal calves // Biol. Reprod. 1997. Vol. 56. P. 386−392.
  195. Prokofiev M.I., Stepanov O.I., Komissarov A.V. et al. Blind enucleation of oocytes is highly efficient in zona-free bovine cloning // Reprod. Fertil. Dev. 2007. Vol. 19. P. 156−157.
  196. Prowse K.R., Greider C.W. Developmental and tissue-specific regulation of mouse telomerase and telomere length // Proc. Natl. Acad. Sci. 1995. Vol. 92(11). P. 4818−4822.
  197. Reik W., Dean W. Full-term development of rat after transfer of nuclei from two-cell stage embryos // Biol. Reprod. 2001. Vol. 75. P. 524−30.
  198. Revermann C., Hennen L. Cloning animals // TAB report no. 065. Berlin 2000. P. 239.
  199. Robl J.M., Prather R., Barnes F. et al. Nuclear Transplantation in Bovine Embryos //J. Anim. Sei. 1987. Vol.64. P. 642−647.
  200. Rodriguez K.F., Farin C.E. Developmental capacity of bovine cumulus oocyte complexes after transcriptional inhibition of germinal vesicle breakdown // Theriog. 2004. Vol.61. P. 1499−1511.
  201. Rosenkrans C.F. and first N.L. Culture of bovine zygotes to the blasocyst stage: Effect of amino acids and vitamins // Theriog. 1991. Vol. 34. P. 226.
  202. Russell D.F., Baqir S., Bordignon J. et al. The impact of oocyte maturation media on early bovine embryonic development // Mol. Reprod. Dev. 2006. Vol. 73. P. 1255- 1270.
  203. Russell D.F., Ibanez E., Albertini D.F., et al. Activated bovine cytoplasts prepared by demecolcine-induced enuclea-tion support development of nuclear transfer embryos in vitro // Cloning and Stem Cells. 2005. Vol. 72(2). P. 161−170.
  204. Saeki K., Hoshi M., Leibfried-rutledge M.L. et al. In vitro fertilization and development of bovine oocytes matured in serum-free medium // Biol. Reprod. 1991. Vol. 44. P. 256−260.
  205. Salamone D.F., Damiani P., Fissore R.A. et al. Biochemical and developmental evidence that ooplasmic maturation of prepubertal bovine oocytes is compromised // Biol. Reprod. 2001. Vol. 64. P. 1761 1768.
  206. Savill J. Apoptosis in disease // Eur. J. Clin. Invest. 1994. 24:715−723.
  207. Semple E., Loskutoff N., Leibo S.P. et al. Effects of culture medium and maturation time on in-vitro development of bovine oocytes into blastocysts // Theriog. 1993. Vol. 39. P. 307.
  208. Sezen A. Transgenic Bovine Nuclear Transfer Embryos from Adult Somatic Cell Lines // Vet. Anim. Sei. 2003. Vol. 27. P. 1097−1103.
  209. Shi Wen-sheng et al. Effect of the Different Cultivation Condiontionsv. on Invitro Development of Bovine Embryos // J. Agricul. Sciences. 2008. Vol. 18. P. 149−155.
  210. Shiga K., Fujita T., Ootake K. et al. Development of somatic cell nuclear transferred bovine embryos in protein free synthetic oviduct fluid medium //J. Anim. Sci. 2001. Vol.72. P. 113−119.
  211. Sims M. and First N.L. Production of calves by transfer of nuclei from cultured inner cell mass cells // Proc. Natl. Acad. Sci. 1993. Vol. 90. P. 61 436 147.
  212. Singer-Sam J. and Riggs A.D. X chromosome inactivation and DNA methylation //Mol. Biol. 1993. P. 358−354.
  213. Sirard M.A., Florman H.M., Leibfried-Rutledge M.L. et al. Timing of nuclear progression and protein synthesis necessary for meiotic maturation of bovine oocytes//Biol. Reprod. 1989. Vol.40. P. 1257−1263.
  214. Smetanina I.G., Tatarinova L.V. and Krivokharchenko A.S. Influence of the culture medium composition on cattle oocyte maturation and embryogenesis in vitro // Mam. Embryol. 2000. Vol. 31(2). P. 113−116.
  215. Smith L.C. Membrane and intracellular effects of ultraviolet irradiation with Hoest 33 342 on bovine secondary ppcytes matured in vitro // J. Reprod. Fertil. 1993. Vol.99. P. 39−44.
  216. Soloy E., Kanka J., Viuff D. et al. Time course of pronuclear deoxyribonucleic acid synthesis in parthenogenetically activated bovine oocytes // Biol. Reprod. 1997. Vol.57. P. 27−35.
  217. Spemaim H. Embryonic development and induction // New Haven. CT. Yale Univ. Press. 1938.
  218. Spindle A. Polyethylene glycol-induced fusion of two-cell mouse embryo blastomeres// Exp. Cell. 1981. Vol. 131. P. 465−470.
  219. Steeves T.E., Gardner D.K. Metabolism of glucose, pyruvate, and glutamine during the maturation of oocytes derived from pre-pubertal and adult cows // Mol. Reprod. Dev. 1999. Vol. 54(1). P. 92−101.
  220. Stekelenburg-Hamers, Van A.E., Van Inzen W.G. et al. Nuclear transfer and electro fusion in bovine in vitro-matured/in vitro-fertilized embryos: effect of media and electrical fusion parameters // Mol. Reprod. Dev. 1993. Vol. 36(3). P.307−312.
  221. Sun F.Z., Bradshaw J.P., Galli C. et al. Changes in intracellular calcium concentration in bovine oocytes following penetration by spermatozoa // J. Reprod. Fertil. 1994. Vol. 101. P. 713−719.
  222. Sun X., Wang S., Zhang Y. et al. Cell-cycle synchronization of fibroblasts derived from transgenic cloned cattle ear skin: effects of serum starvation, roscovitine and contact inhibition //Zygote. 2008. Vol.16. P. 111 116.
  223. Sun X., Wang S., Zhang Y. et al. Cell-cycle synchronization of fibroblasts derived from transgenic cloned cattle ear skin: effects of serum starvation, roscovitine and contact inhibition // Zygote. 2008. Vol. 16. P. 111−116.
  224. Susko-Parrish J.L., Leibried-Rutledge M.L., Northey D.L. Inhibition of protein kinases after an induced calcium transient causes transition of bovine oocytes to embryonic cycles without meiotic completion // Dev. Biol. 1994. Vol. 166. P. 729−739.
  225. Szollosi M.S., Kubiak L.Z., Debery et al. Inhibition of protein kinases by 6-dimethylaminopyrine accelerates the transition to interphase in activated mouse oocytes///J. Cell. Sci. 1993. V. 104. P. 861−872.
  226. Tarkowski A.K. An air drying method for chromosome preparation from mouse eggs // Cytogenetics. 1966 Vol. 5. P. 394−400.
  227. Tecirlioglu R.T., French A.J., Lewis I.M. et al. Birth of a cloned calf derived from a vitrified hand-made cloned embryo // Reprod. Fertil. Dev. 2004. Vol. 15. P. 361−366.
  228. Telford N.A., Watson A.J., Schultz G.A. Transition from maternal to embryonic control in early mammalian development: A comparison of several species //Mol. Reprod. Dev. 1990. Vol. 26. P. 90−100.
  229. Torner H., Kubelka M., Heleil B. et ah. Dynamics of meiosis and protein kinase activities in bovine oocytes correlated to prolactin treatment and follicle size // Theriog. 2001. Vol. 55. P. 885−899.
  230. Torner H.M., Kubelka B., Heleil W. et al. Dynamics of meiosis and protein kinase activity in bovine oocytes correlared to prolactin treatment and follicle size // Theriog. 2001. Vol. 55. P. 885−899.
  231. Tsunoda E., Yasui T., Nakamura K. et al. Effect of cutting the zona pellucid on pronuclear transplantation in the mouse // Zool. 1986. Vol. 240. P. 119−125.
  232. Tsunoda Y., Shioda Y., Onodera M. Differential sensitivity of mouse pronuclei and zytote cytoplasm to Hoechst staining and ultraviolet irradiation // J. Reprod Fertil. 1988. Vol. 82(1). P. 173−178.
  233. Vajta G., Ian M., Lewis I.M. et al. Handmade somatic cell cloning in cattle: analysis of factors contributing to high efficiency in vitro // Biol. Reprod. 2003. Vol. 68(2). P. 571−578.
  234. Verlhach M.H., Kubiak J.Z., Clarke H.J. et al. Microtubule and chromatin behaviour follow MAP kinase activity but not MPF activity during meiosis in mouse oocytes//Dev. 1994. Vol. 120. P. 1017−1025.
  235. Wakayama T. Production of Cloned Mice and ES Cells from Adult Somatic Cells by Nuclear Transfer: How to Improve Cloning Efficiency? // J. Reprod. Dev. 2007. Vol. 53. P. 13−26.
  236. Wakayama T., Perry A.C., Zuccotti M. Full-term development of mice from enucleated oocytes injected with cumulus cell nuclei // Nat. 1998. Vol. 394. P. 369−374.
  237. Wakayama T., Yanagimachi R. Cloning of male mice from adult tail tip cells//Nat. Genet. 1999. Vol. 22. P. 127−128.
  238. Wakayama T., Yanagimachi R. Mouse cloning with nucleus donor cells of different age and type // Mol. Reprod. Dev. 2001. Vol. 58. P. 376−383.
  239. Wang M.K., Liu J.L., Li G.P. et al. Sucrose pretreatment for enucleation: an efficient and non-damage method for removing the spindle of the mouse Mil oocyte // Mol. Reprod. Dev. 2001. Vol. 58. P. 432−436.
  240. Wani N.A., Wernery U., Hassan F.A. Production of the first cloned camel by somatic cell nuclear transfer // Biol. Reprod. 2009 Vol. 82(2). P. 373 379.
  241. Ward F., Enright B., Rizos D. et al. Optimization of in vitro bovine embryo production: effect of duration of maturation, length of gamete co-incubation, sperm concentration and sire // Theriog. 2002. Vol. 57. P. 21 052 117.
  242. Warzych E., Wrenzycki C., Peippo J. et al. Maturation medium supplements affect transcript level of apoptosis and cell survival related genes in bovine blastocysts produced in vitro // Mol. Reprod. Dev. 2007. Vol. 74. P. 280−289.
  243. Weaver J.C. Electroporation Theory: Concepts and Mechanisms Methods in Molecular Biology // Methods in Molecular Biology. 1995. Vol. 55. P. 3−28.
  244. Wells D.N., Misica P.M., Day A.M. et al. Production of cloned lambs from an established embryonic cell line: a comparison between in vivo- and in vitromatured cytoplasts//Biol. Reprod. 1997. Vol. 57. P. 385−393.
  245. Wells D.N., Misica P.M., H.R. Tervit. Production of cloned calves following nuclear transfer with adult mural granulosa cells // Biol. Reprod. 1999. Vol. 60. P. 996−1005.
  246. Wells D.N., Laible G., Tucker F.C. et al. Coordination between donor cell type and cell cycle stage improves nuclear cloning efficiency in cattle // Theriog. 2003. Vol. 59. P. 45−59.
  247. Westhusin M. E., Shin T. Templeton W. J. et al. Rescuing valuable genomes by animal cloning: A case for natural disease resistance in cattle // J. Anim. Sci. 2007. Vol. 85(1). P. 138−142.
  248. Westhusin M., Hinrichs K., Choi Young-Ho et al. Cloning Companion Animals (Horses, Cats, and Dogs) // Cloning and Stem Cells. 2003(6). Vol. 5(4). P. 301−317.
  249. Westhusin M.E. et al. Cat cloning carbon-copy clone Is the real thing holden //Sci. 2001. Vol.22. P. 1443−1444.
  250. Westhusin M.E., Duane and Long Charles. Scientists Clone World’s First Deer // Sci. Daily. 2003(a) Article.
  251. Westhusin M.E., Levanduski M., Scarborough J.R. et al. Viable embryos and normal calves after nuclear transfer into Hoest stained enucleated demi-oocytes of cows // Reprod. Fertil. 1992. Vol. 96. P. 475−780.
  252. Whitaker M. and K. Swann. Lighting the fuse at fertilization // Dev. 1993. Vol. 117. P. 1−12.
  253. Willadsen S.M. Nuclear transplantation in sheep embryos // Nature. 1996. Vol. 320. P. 63−65.
  254. Wilmut I., Schnieke A.E., McWhir J. et al. Viable offspring derived from fetal and adult mammalian cells //Nat. 1997. Vol. 385. P. 810−813.
  255. Winterberg S., Dauzier L., Thibault C. Development in vitro of the ovum of the sheep and of the goat // Soc. Biol. Fil. 1953. Vol. 147. P. 19 711 974.
  256. Wongsrikeao P. Nagai T., Agung B. et al. Improvement of transgenic cloning Efficiencies by culturing recipient oocytes and donor cells with antioxidant vitamins in cattle // Mol. Reprod. Dev. 2007. Vol. 74. P. 694−702.
  257. Woods G., Kenneth L., White L. A mule cloned from fetal cells by nuclear transfer //Sci. 2003. Vol. 10. P. 1126.
  258. Xu X., Dou Z., Hua J. et al. Isolation and culture of bovine fetal fibroblasts // J. Anim Sci. 2004. Vol. 1. P. 191−196.
  259. Yamazaki W., Ferreira C.R., Meo S.C. Use of strontium in the activation of bovine oocytes reconstructed by somatic cell nuclear transfer // Zygote. 2005. Vol. 13. P. 295−302.
  260. Yamazaki Y., Low E.W., Marikawa Y. et al. Adult mice cloned from migrating primordial germ cells//Biol. Sci. 2005. Vol. 102(32). P. 11 361−11 366.
  261. Yang X., Jiang S., Kovacs A. et al. Nuclear totipotency of cultured rabbit morulae to support full-term development following nuclear transfer // Biol. Reprod. 1992. Vol. 47. P. 636−643.
  262. Yang D., Du C., Gao F. et al. In vitro culture of bovine fetal fibroblast cells using tissue expiant attachment and gene transfection through e lectroporation // Zool. Res. 2006. Vol. 27(1). P. 41−47.
  263. Yang X., Jiang S., Foote R.H. Bovine oocyte development following different oocyte maturation and sperm capacitating procedures // Mol. Reprod. Dev. 1993. Vol. 34(1). P. 94−100.
  264. Yin X.J., Tani T., Yonemura I. et al. Production of cloned pigs from adult somatic cells by chemically assisted removal of maternal chromosomes // Biol. Reprod. 2002. Vol. 67. P. 442−446.
  265. Yoshimura Y.Y., Hososoi A., Nakamura S.J. et al. Developmental potential of rabbit oocyte maturated in vitro: the possible contribution of prolactin // Biol. Reprod. 1989. Vol. 40. P. 26−33.
  266. Yoshimura Y.Y., Nakamura H., Yamada M. et al. Possible contribution of prolactin in the process of ovulation and oocyte maturation // Horm. Res. 1991. Vol 35(1). P. 22−32.
  267. Yu Y.S., Sun X.S., Jiang H.N. et al. Studies of the cell cycle of in vitro cultured skin fibroblasts in goats: work in progress // Theriog. 2003. Vol. 59. P. 1277−1289.
  268. Zakhartchenko V., Durcova-hills G., Schernthaner W. et al. Potential of fetal germ cells for nuclear transfer in cattle // Mol. Reprod. Dev. 1999(b). Vol. 52. P. 421−426.
  269. Zakhartchenko V., Alberio R., Stojkovic M. et al. Adult cloning in cattle: potential of nuclei from a permanent cell line and from primary cultures // Mol. Reprod. Dev. 1999(a). Vol. 54(3). P. 264−272.
  270. Zhong Y. X., Tian X.C. Cloning Adult Animals-What is the Genetic Age of the Clones? // Clon. 2000 Vol. 2(3). P. 123−128
  271. Zhou Q. et al. Generation of fertile cloned rats using controlled timing of oocyte activation // Sci. 2003. Vol. 10. P. 1126.
  272. Zhu Xiu-ping, Zhu Shu-wen, Zhang Jing et al. Effect of cytochalasin B on porcine oocyte enucleate // J. Agric. Sci. 2005. P. 89−93.
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?