Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Особенности индуцированного морфогенеза и регенерации у различных типов эксплантов in vitro культиваров видов рода Iris L

Диссертация: Особенности индуцированного морфогенеза и регенерации у различных типов эксплантов in vitro культиваров видов рода Iris L
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Основные положения и результаты исследований были представлены на Восьмой международной научно-практической конференции «Проблемы ботаники Южной Сибири и Монголии» (Барнаул, 2009) — III Всероссийской научно-практической конференции «Биотехнология как инструмент сохранения биоразнообразия растительного мира» (Волгоград, 2010) — V Международной научно-практической конференции «Аграрная наука… Читать ещё >

Содержание

  • ГЛАВА 1. МОРФОГЕНЕТИЧЕСКИЙ ПОТЕНЦИАЛ ОРГАНОВ И ТКАНЕЙ РАСТЕНИЙ В УСЛОВИЯХ IN VITRO
    • 1. 1. Морфогенез растений in vitro
      • 1. 1. 1. Особенности протекания морфогенеза in vitro
      • 1. 1. 2. Гистологический анализ в культуре органов и тканей
    • 1. 2. Факторы регуляции процессов морфогенеза
    • 1. 3. Основные методы регенерации растений in vitro
    • 1. 4. Ирис как объект биотехнологических исследований
  • ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 2. 1. Исходный растительный материал
    • 2. 2. Условия асептики и стерилизация растительного материала
    • 2. 3. Методы исследования
  • ГЛАВА 3. РЕАЛИЗАЦИЯ МОРФОГЕНЕТИЧЕСКОГО ПОТЕНЦИАЛА ОРГАНОВ И ТКАНЕЙ ИРИСА (IRIS L.) В УСЛОВИЯХ IN VITRO ПУТЁМ ПРЯМОГО ОРГАНОГЕНЕЗА
    • 3. 1. Регенерационная способность почек вегетативного побега ириса
    • 3. 2. Эмбриокультура ириса
    • 3. 3. Морфогенез и регенерация фрагментов цветка видов ириса
      • 3. 3. 1. 1, sibirica
      • 3. 3. 2. 1, ensata
      • 3. 3. 3. 1, hybrida
  • ГЛАВА 4. ГИСТОЛОГИЧЕСКИЙ АНАЛИЗ ЭТАПОВ МОРФОГЕНЕЗА В ЭКСПЛАНТАХ ОРГАНОВ ЦВЕТКА ИРИСА В УСЛОВИЯХ IN VITRO. 103 4.1. Этапы морфогенеза в эксплантах органов цветка видов ириса
    • 4. 1. 1. 1. sibirica
    • 4. 1. 2. 1, ensata
    • 4. 1. 3. /. hybrida
    • 4. 2. Сравнительный анализ гистогенеза и органогенеза в эксплантах генеративных органов культиваров I. hybrida, I. ensata, /. sibirica
    • 4. 3. Морфогенез и регенерационная способность эксплантов околоцветник-завязь сортов и гибридов I. sibirica. I. ensata и I. hybrida
  • ВЫВОДЫ

Особенности индуцированного морфогенеза и регенерации у различных типов эксплантов in vitro культиваров видов рода Iris L (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Растительные системы in vitro являются удобными моделями для исследования сложных механизмов, лежащих в основе пролиферации, клеточной дифференцировки, гистогенеза, органогенеза, соматического эмбриогенеза и регенерации целого организма из культивируемых клеток, обладающих тотипотентностью. В прикладном аспекте на основе знаний о биологии клетки in vitro разрабатываются, меристемные технологии, эмбриокультура, гаплоидные технологии, клеточная селекция, генная и клеточная инженерия (Круглова, 1997; Высоцкий, 1998; Митрофанова, 2007; Журавлёв, Омелько, 2008). Регенерация растениш и морфогенез in vitro являются основополагающими моментами: всей методологии культуры клеток и тканейв том числе и клонального микроразмножения (Бутенко, 1999).

Род Iris L. самый большой и* наиболее сложныйиз семейства Iridaceae Juss. (Родионенко, 1988; Родионенко, Тихонова, 1996), виды которого произрастают в Европе, Азии, Северной Америке, Северной Африке. Разнообразие и богатство окрасок цветков этих растений по праву сравнивается с красивейшим явлением природы. Проблеме сохранения и изучения видов1 рода Iris посвящены, работы многих российских и зарубежных авторов (Родионенко, 1961; Yabuya et al., 2004; Алексеева, 2005; Доронькин, 2006; Долганова, 2008; Миронова, 2008),.

В ГНУ НИИСС им. М. А. Лисавенко создан большой коллекционный, фонд этой культуры. Возникающие трудности при традиционном размножении, в процессе селекции и сохранения генотипов ирисов, заставляют ученых обращаться к современным методам биотехнологии растений. Известны работы по размножению in vitro видов (/. sibirica L., I. ensata Thunb., I. hybrida hort/рода IrisL. (Yabuya, 1981, Yabuya et al., 1991; Kawase et al., 1995; Ишмуратова, 1999; Болтенков, 2002; Полковникова, 2000; Вечернина и др., 2004; Ветчинкина, Мамаева, 2005, Ветчинкина и др., 2007, Мамаева, 2008).

Несмотря на имеющиеся экспериментальные работы в области изучения процессов морфогенеза и регенерации растений в условиях культуры тканей, для ириса до сих пор остаются недостаточно разработанными системы получения растений in vitro. Это обусловлено отсутствием четких, хорошо воспроизводимых методик, их трудоемкостью, недостатком знаний о морфогенетическом потенциале органов и тканей, а также способах управления морфогенезом для этой культуры.

Изучение поведения эксплантов генеративных органов ириса в культуре in vitro представляет теоретический и практический интерес. Большая часть работ проводится в области эмбриокультуры, а регенерационная способность соматических тканей генеративных органов остаётся сравнительно слабо изученной. В гистологическом плане культура органов и тканей цветочно-декоративных, плодовых и ягодных растений мало описана. Анатомического описания процессов регенерации в динамике развития в доступной нам литературе не обнаружено.

В связи с этим изучаемая проблема является актуальной и практически значимой.

Цель работы — выявить морфогенетические особенности развития различных типов эксплантов в культуре in vitro и сравнить их регенерационную способность для культиваров ириса (Z sibirica, I. ensata, I. hybrida).

Задачи:

— изучить регенерационную способность почек вегетативного побега ириса;

— показать возможный способ устранения микробного загрязнения эксплантов путём микробиологического контроля, определения чувствительности к антибиотикам выделенных микроорганизмов-контаминантов и введения антибиотиков в питательную среду;

— усовершенствовать метод эмбриокультуры для данных видов ирисаизучить особенности реализации морфогенетического потенциала эксплантов органов цветка через прямой органогенезпровести анатомо-морфологический анализ тканей эксплантов репродуктивных органов интактных растений;

— сравнить методами гистологического анализа особенности прохождения морфогенеза в динамике у различных типов эксплантов генеративных органов.

Предмет исследования. Пути реализации морфогенетического потенциала различных эксплантов изучаемой культуры, особенности получения растений в условиях in vitro.

Методы исследования. Морфологические, гистологические, микробиологические методы, методы культуры органов и тканей.

Основные положения, выносимые на защиту:

— формированию очага меристематической активности в эксплантах органов цветка ириса (трубка околоцветника, ось соцветий) предшествует изоляция инициальной клетки и образование полиады;

— трубка околоцветника — идеальный тип экспланта для клонального микроразмножения сортов и гибридов I. sibirica, I. ensata, I, hybridan.

— применение гистологического анализа позволяет контролировать процессы на тканевом уровне, для того чтобы направлять морфогенез в нужном для исследователя русле.

Научная новизна. Впервые проведен микробиологический контроль эксплантов почек вегетативного побега ириса, введённых в культуру in vitro, и определена чувствительность к антибиотикам выделенных микроорганизмов. Доказана необходимость введения малотоксичного антибиотика в состав питательных сред до тех пор, пока инфекция не перестанет проявлять себя, чередуя среды с антибиотиком и без него.

Доказан позитивный эффект от введения в питательную среду L-глутамина и аденин сульфата на адвентивное побегообразование у зародышей ириса. Показано, что органы, развивающиеся у зародышей ириса в культуре in vitro, по своему анатомическому строению сходны с нативным корневищем ириса, с несколько активизированными зонами эндогенного геммогенеза и ризогенеза.

Впервые показаны различные пути реализации морфогенетического потенциала (геммогенез, гемморизогенез, ризогенез) у соматических тканей органов. цветка ириса в процессе прямой регенерации in vitro. Установлена высокая регенерационная способность трубки околоцветника в культуре in vitro у всех изученных культиваров. Показано влияние расположения экспланта на питательной среде, концентрации фитогормонов на процесс прямой регенерации растений ириса.

Впервые проведён сравнительный анализ анатомического строенияразных типов эксплантов у I. sibirica, I. ensata, I. hybrida, а также гистологический анализ динамики процессов органогенеза в кулыуре in vitro органов цветка. Выявлено, что формированию очага меристематической активности в эксплантах органов цветка ириса (трубка околоцветника, ось соцветий) предшествует изоляция инициальной клетки и образование полиады. Побеги образующиеся de novo эндогенного происхождения. Для I. hybrida характерно формирование гидроцитной системы.

Анатомически доказано, что адаксиальная и абаксиальная стороны трубки околоцветника у I. sibirica, I. ensata, I. hybrida отличаются по своему строению. Адаксиальная сторона содержит адаксиальную меристему, благодаря активности которой, побеги регенерируют только на данной стороне экспланта. Побеги, сформированные у эксплантов трубки околоцветника изученных видов ириса, имеют типичное строение для вегетативных побегов однодольных растений, а флоральные элементы развиваются на месте примордиев первых листьев.

Методами гистологического анализа выявлены сходства и различия в динамике прохождения этапов морфогенеза у разных видов ириса (/. sibirica, I. ensata, I. hybrida) и разных типов экспланта (ось соцветия итрубка околоцветника).

Практическое значение полученных результатов. Впервые разработан способ прямой регенерации из разных типов эксплантов I. sibirica, I. ensata, L hybrida, позволяющий получать активно пролиферирующую культуру ириса.

Разработан метод введения в культуру in vitro почек вегетативного побега ириса, позволяющий получить стерильный материал, на основе микробиологического контроля, определения чувствительности выделенных микроорганизмов к антибиотикам и введения малотоксичного антибиотика, из списка предложенных, в питательную среду для культивирования эксплантов.

Усовершенствован метод эмбриокультуры ириса: определён срок изоляции зародыша, подобраны питательные среды, проведено анатомо-морфологическое изучение регенерантові.

Усовершенствованна методика приготовления гистологических препаратов. Полученные данные анатомо-морфологических исследованийпредоставляют возможность целенаправленно изменять определённые факторы: гормональный состав питательной среды, тип экспланта, время культивирования для' контроля морфогенеза в культуре in vitro.

Личный вклад соискателя. Результаты исследований, представленные в диссертации, получены соискателем в лаборатории биотехнологии и цитологии ГНУ НИИСЄ им. М. А. Лисавенко (НИИСС). Микробиологические исследования и приготовление гистологических препаратов проведено совместно с сотрудниками лабораторий бактериологии и гистологии Краевой клинической больницы г. Барнаула.

Апробация работы.

Основные положения и результаты исследований были представлены на Восьмой международной научно-практической конференции «Проблемы ботаники Южной Сибири и Монголии» (Барнаул, 2009) — III Всероссийской научно-практической конференции «Биотехнология как инструмент сохранения биоразнообразия растительного мира» (Волгоград, 2010) — V Международной научно-практической конференции «Аграрная наука сельскому хозяйству» (Барнаул, 2010) — Международной научно-практической конференции, посвященной 100-летию со дня рождения З. И. Лучник «Декоративное садоводство Сибири: проблемы и перспективы» (Барнаул, 2010) — Всероссийской научно-практической конференции «Ботанические сады. Проблемы интродукции» (Томск, 2010).

Публикации. По материалам диссертации опубликованы 8 научных статей, в том числе 3 статьи в рецензируемых изданиях, 5 — в сборниках материалов и тезисов конференций.

Структура и объем диссертации

Диссертация изложена на 187 страницахсостоит из введения, 4 глав, выводов, практических рекомендаций, 21 таблицы, 69 рисунков и приложения. Библиографический список включает 256 источников, в том числе 100 — на иностранных языках.

ВЫВОДЫ.

1. Использование вегетативных почек I. hybrida, I. ensata, I. sibirica в качестве эксплантов не эффективно ввиду их высокой контаминации сопутствующей микрофлорой и низкой регенерационной способности. Для I. hybrida в качестве инфекционной микрофлоры эксплантов чаще всего выделялась Ervinia spp., для I. ensata и /. sibirica в качестве внутренней проявляла себя грибная инфекция.

2. Для получения стерильной активно пролиферирующей культуры необходимо провести микробиологический контроль эксплантов вегетативных почек введённых в культуру, определить чувствительность к антибиотикам выделенных микроорганизмов и добавлять малотоксичный антибиотик в состав питательной среды до тех пор, пока инфекция не перестанет проявлять себя, чередуя среды с антибиотиком и без него.

3. Оптимальный срок введения в культуру in vitro для зародышей ириса (/. hybrida, I. ensata, I. sibirica) — 50−80 суток после опыления. Лучшей питательной" средой явился вариант с содержанием MS + бмкМ БАЛ +5мкМ НУК+ 100 мг/л L-глутамина +100 мг/л аденинсульфата.

4. Завязь у культиваров /. sibirica и I. ensata на питательных средах MS с 4−8 мкМ БАЛ и 3−5 мкМ НУК способна регенерировать только корни, у культиваров I. hybrida регенерация отсутствовала. У всех изученных видов ириса, при использовании в качестве эксплантов рылец, столбиков и пыльников никаких морфогенетических изменений на вышеописанных средах не отмечено.

5. Из всех типов эксплантов наибольшим регенерационным потенциалом обладали ось соцветия, трубка околоцветника, соединение околоцветник-завязь, не зависимо от видовой принадлежности растения.

6. На питательных средах MS с 4−8 мкМ БАЛ и 3−5 мкМ НУК фрагменты оси соцветия культиваров I. ensata, I. hybrida формировали только побеги. Тип морфогенетической реакции у I. sibirica, зависел от количества и соотношения экзогенных фитогормонов. На питательных средах MS с 4 мкМ БАЛ, 4 мкМ НУК (1:1) и 4 мкМ БАЛ, 5 мкМ НУК (1:1,25) ответной реакцией было корнеобразование, в вариантах, где содержание БАЛ превышало содержание НУК, регенерировали побеги.

7. Репродукция de novo элементов цветка устойчиво сохранялась у эксплантов трубки околоцветника всех изученных генотипов ириса не зависимо от концентрации фитогормонов в пределах опыта. Сформированные побеги имели строение типичное для вегетативных побегов однодольных растений.

8. Формированию очага меристематической активности во всех эксплантах органов цветка предшествует изоляция инициальной клетки, и в результате нескольких делений образование полиады. Побеги образующиеся у всех типов эксплантов имеют эндогенное происхождение.

9. Морфогенетические процессы в эксплантах осевой природы (в цветоносах) в культуре in vitro I. hybrida, I. ensata, I. sibirica проходят однотипно, что подтверждает близость на родовом уровне данных видов ириса. При этом у эксплантов I. hybrida первые полиады наблюдали на 4 сутки культивирования, а первые визуальные признаки геммогенеза — после 14 суток культивирования на1-данных питательных средах, это, на несколько дней раньше, чем у 7. ensata и 7. sibirica. Формирование гидроцитной системы было выявлено только в эксплантах 7. hybrida.

10. Адаксиальная и абаксиальная стороны трубки околоцветника у 7. sibirica, I. ensata, I. hybrida на VI-VII этапах органогенеза отличаются по анатомическому строению. Адаксиальная сторона содержит адаксильную меристему, вероятно, благодаря активности которой, побеги регенерируют только на данной стороне экспланта.

11. Синхронность и аналогичность прохождения этапов гистогенеза и органогенеза в эксплантах трубки околоцветника у 7. hybrida, 7. ensata, 7. sibirica была отмечена при сравнении их динамики.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ.

1. В питательные среды для введения в культуру in vitro вегетативных почек ириса, необходимо добавлять малотоксичный антибиотик из списка предложенных на основе определения к ним чувствительности микроорганизмов — контаминантов, выделенных у эксплантов.

2. Стерилизацию бутонов (на VI — VII этапах органогенеза) необходимо проводить в условиях ламинар-бокса в два этапа. На первом этапе бутоны, смоченные в 96% этиловом спирте, обжигают в пламени спиртовки, следующий этап обеззараживания проводят в 0,1% растворе сульфохлорантина в течение 30 минут. Это обеспечивает 95% стерильности фрагментов цветка при 100% их жизнеспособности.

3. Экспланты фрагментов трубки околоцветника в культуре in vitro необходимо располагать адаксиальной стороной на поверхности питательной среды MS, содержащей 4−8 мкМ БАП и 3−5 мкМ НУК, для активации регенерационных процессов.

4. Для приготовления постоянных гистологических препаратов органов цветка ириса, необходимо в качестве фиксатора использовать 10% формалин, а для проводки использовать ацетон.

5. Анатомо-морфологическое исследование эксплантов и изучение морфогенеза в динамике на тканевом уровне обязательно для выбора регенерационноспособных эксплантов и контроля прохождения этапов морфогенеза.

6. Разработанный способ прямой регенерации ириса рекомендуется использовать для получения активно пролиферирующей культуры ценных сортов и гибридов в условиях in vitro. t f.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Абу Камиль Ахмед. Создание высокоэффективной системы микроклонального размножения генетически стабильных растений гладиолуса. Автореф. дис. .канд. биол. наук. Москва, 2000. — 23 с.
  2. Т.А., Лобанова Л. П., Еналеева Н. Х. Морфогенетические преобразования неопыленных завязей и семяпочек табака в культуре in vitro II Репродуктивная биология, генетика и селекция, 2002. С. 76−82.
  3. Н.Б. Виды рода Iris во флоре России: Проблемы охраны в природе и интродукции. Дис. .канд. биол. наук. Санкт-Петербург, 2005. — 230 с.
  4. E.H. Культивирование можжевельника сибирского (Juniperus sibirica В.) в условиях in vitro и получение биологически активных веществ на его основе. Автореф. дис. .канд. технич. наук. Красноярск, 2006. — 20 с.
  5. Г. Д., Высоцкий В. А. Биотехнология в, цветоводстве. Клональное микроразмножение роз // Цветоводство, 1986. № 1 — С. 16−17.
  6. АС № 1 685 323 МПК5 А 01 Н4/00. Способ выращивания растений in vitro.
  7. A.B., Горпенченко Т. Ю., Журавлёв Ю. Н. Растения, как объект биотехнологии // Комаровские чтения, 2007. Вып LV. — С. 184−211.
  8. Р.К., Мухаметвафина A.A., Миронова Н. Н.Особенности регенерации гибридов азиатских лилий из фрагментов соцветий в культуре in vitro II Сельскохозяйственная биология. Сер. Биология растений, 2006. № 1. — С.80−85.
  9. Р.К., Мухаметвафина A.A. Опыт культивиривания некоторых видов Lilium L. in vitro II Раститительные ресурсы, 2004. № 1. — С. 82−89.
  10. Р.К., Ахметова А. Ш., Миронова Л. Н., Шаяхметов И.Ф Эмбриокультура тюльпанов. // Вестн. Башк. ун-та, 2007. Т. 12. — № 4. — С .33−35.
  11. Р.П., Веселова Т. Д., Девятов А. Г. Справочник по ботанической микротехнике. Основы и методы. М.: МГУ, 2004. — 312 с.
  12. Р.П., Чурикова O.A. Особенности морфогенеза некоторых видов Scilla L. II Вестн. Моск. ун-та. Сер. Биология, 2004. № 1. — С. 20−23.
  13. Т.Б., Всильева В. Е., Маметьева Т. Б. Проблемы морфогенеза in vitro и in vivo. Эмбриогенез у покрытосеменных растений // Бот. журнал, 1978. Т. 63. — № 1.-С. 87−110.
  14. Т.Б. Пыльник как модель изучения морфогенетических потенций и путей морфогенеза // Всесоюз. симп. «Развитие мужской генеративной сферы растений (морфофизиологические аспекты)»: Тез. докл. Симферополь, 1983. — С. 9−10.
  15. Т.Б. Хлебное зерно. Л.: Наука, 1987. — 103 с.
  16. Т.Б., Круглова H.H., Горбунова В. Ю. Культура изолированных пыльников злаков с позиции экспериментальной эмбриологии растений (методологические аспекты). Уфа: БНЦ УрО РАН, 1992. — 32 с.
  17. Т.Б. Эмбриоидогения новая категория способов размножения цветковых растений // Тр. Ботан. ин-та им. В. Л. Комарова. — СПб, 1993. — Вып. 8. -С. 15−25.
  18. Т.Б., Васильева В. Е. Размножение растений. СПб.: С-Петерб. унта, 2002. — 232 с.
  19. Т.Б., Брагина Е. А., Ересковский A.B. Островский А. Н. Живорождение у растений и животных: беспозвоночных и низших хордовых. -С.ПбГУ, 2006.- 134 с.
  20. Биологическая энциклопедия. Применение антибиотиков в растениеводстве.-2010. hhh-//academic/ru.
  21. Е.В., Лабецкая Н В., Журавлев Ю. Н. Введение в культуру ткани in vitro Iris oxipetala Bunge продуцента пигментов // Физиол. раст. — наука 3-го тысячелетия. Материалы Междунар. конф. — Москва, 1999. — С. 98−100.
  22. Е.В., Лабецкая Н В., Журавлев Ю. Н. Получение и культивирование каллусной ткани Iris setosa Pall, ex Link // Биотехнология, 2000. № 5. — С. 47−51.
  23. Е.В. Культура клеток — альтернативный способ сохранения и использования дальневосточных видов Iris L. // Докл. 2 Всероссийской конференции «Проблемы региональной экологии». Томск, 2000 — С. 150.
  24. Е.В., Рыбин В. Г., Куликов Д. В. Культура тканей Iris ensata Thunb. перспективный источник новых антиоксидантов флавоноидной природы // Тезисы докладов 6 Международной конф. «Биоаксиданты». — Москва, 2002. — С. 677−678.
  25. Е.В. Изучение особенностей культивирования in vitro тканей дальневосточных видов рода Iris L. (Iridaceae) для использования в биотехнологии. Автореф. дис. .канд. с.-х. наук. — Владивосток, 2002. 19 с.
  26. Е.В., Рыбин, В.Г., Зарембо Е. В. Особенности культивирования каллусной ткани Iris ensata Thunb. // Прикладная биохимия и микробиология, 2004. Том 40. — № 2. — С. 244−252.
  27. Е.В., Зарембо Е. В. Регенерация и каллусогенез в культуре in vitro тканей органов цветка видов рода Iris L. (Iridaceae) II Изв. РАН Сер. биол, 2005. — № 2.-С. 174−179.
  28. Е.В., Миронова JI.H., Зарембо Е. В. Влияние фитогормонов на регенерацию в1 каллусной культуре Iris ensata Thunb. // Изв. РАН Сер. биол, 2007. -№ 5. С. 539−544.
  29. Р.Г. Культура изолированных тканей и физиология морфогенеза растений. М.: Наука, 1964. — 272 с.
  30. Р.Г. Дифференциация и морфогенез в культуре тканей, клеток и протопластов/ Биология развития растений. М.: Наука, 1975. — С 48−65.
  31. Р.Г. Индукция морфогенеза в культуре . тканей растений. Гормональная регуляция онтогенеза растений. М., 1984. — С. 42−54.
  32. Р.Г. Состояние и перспективы изучения морфогенеза растений // Всесоюз. об-во физиологов раст, 1990. Вып. 8. — С. 5−8:
  33. Р.Г. Клеточные и молекулярные аспекты морфогенеза растений in vitro /УЧайляхяновские чтения. Пущино, 1994. — С. 7−26.
  34. Р.Г. Биология клеток растений in vitro и биотехнология на их основе. -М.: ФБК-ПРЕСС, 1999: 160 с.
  35. О.Г., Александрова М. С. Биологические основы клонального микроразмножения и регенерации интродуцированных видов рододендрона in vitro! Бюллетень главного ботанического сада. Академия наук СССР, 1999. Вып. 189.-С. 44−52.
  36. А.Е., Воронин Н. С., Еленевский А. Г., Серебрякова Т. И. Ботаника. Анатомия и морфология растений. М.: Просвещение, 1978. — 478 с.
  37. H.A., Таварткиладзе O.K., Клементьева Л. А., Долганова З. В. Особенности регенерации и размножения растений рода Iris (Iridaceae) in vitro II Раст. ресурсы, 2004. T.40., — Вып.4. — С. 56−64.
  38. H.A. Методы биотехнологии в селекции, размножении и сохранении генофонда растений. Барнаул: изд-во Алт. ун-та, 2004. — 205 с.
  39. Г. И. Культура изолированных зародышей нарцисса // Цветоводство, 1981. -№ 6. С. 11.
  40. В.И. Особенности пролиферации боковых побегов при микроклональном размножении садовых растений // Известия Тимирязевской сельскохозяйственной академии, 2007. № 1. — С.9−14.
  41. М.И. Использование биотехнологических и биофизических методов в селекции и сорторазведении плодовых и ягодных культур. Автореф. дис.. .канд. с.х. наук. — Москва, 2003. 19 с.
  42. H.H. Проблема регуляции морфогенеза и дифференциации в культуре клеток и тканей растений. Культура клеток растений. — М.: Наука, 1981. -С.113−123.
  43. З.В. Биология и интродукция цветочно-декоративных корневищных многолетников в Западной1 Сибири. Новосибирск, 2002. — 232 с.
  44. З.В. История интродукции и селекции ириса в Алтайском крае // Современные тенденции развития промышленного садоводства. Материалы Международной научно-практической конференции Барнаул, 2008. — 438 с.
  45. В.М. Систематика рода Iris L. {Iridaceae Juss.) Азиатской России // Роль ботанических садов < в сохранении ^ биоразнообразия растительного мира Азиатской России: настоящее и будущее. Новосибирск, 2006. — С. 101−103.
  46. Ю.Н., Омелько A.M. Морфогенез у растений in vitro. II Физиология растений, 2008. Т. 55. — № 5. — С. 643−664.
  47. A.A. Разработка технологии клонального микроразмножения пиона уклоняющегося: Paeonia anomala L.: Дис.. .канд. биол. наук. — Уфа, 2006. 181 с.
  48. F.H. Математика в экспериментальной ботанике. М.: Наука, 1990. -296 с.
  49. М.М. Особенности культивирования in vitro растений различных экологических групп на примере видов рода Iris L. // Растительные ресурсы, 1999. -№ 4.-С. 67−74.
  50. М.М., Рахимова А. Ф. Использование культуры in vitro для размножения гибридов Iris L. //Растительные ресурсы. 1999. — № 4. — С.74−78.
  51. М., Аш О., Лоскутова Н. Хоста: размножение in vitro. II Цветоводство, 2003. № 6. — С. 10.
  52. Ф.Л., Сарнацкая В. В., Полищук В. Е. Методы культуры в физиологии и биохимии растений. — Киев, 1980. 488 с.
  53. М. Бегония in vitro II Цветоводство, 2001. № 4. -С.12. Каменецкая, И. И. Органогенез в культуре изолированных тканей луков // Вестн. АН КазССР, 1982. — № 9. — С. 43−47.
  54. Н.В. Клональное микроразмножение растений. М. Наука, 1983.97с.
  55. Н.В. Культура тканей и органов фрезии // Физиология растений, 1981. -Т.28, вып.5. С. 1062−1064.
  56. О.В. Генетические аспекты морфогенеза растений//Успехи соврем. Биологии, 1993. Т. 113. — Вып. 3. — С. 269−285.
  57. Ю.Н. Культура тканей в цветоводстве // Цветоводство, 1981. № 5. -С.16.
  58. Т.Н., Аксенова Н. П., Сергеева Л. И., Чайлахян М. Х. Взаимное влияние света и гормонов на регуляцию морфогенетических процессов в культуре in vitro И Физиология растений, 1998. Т. 34. — № 4. — С. 795−802.
  59. С.А. О проблеме роста регенерантов при клональном микроразмножении // Повышение эффективности садоводства в современных условиях. Материалы Всероссийской научно-практической конференции -МичГАУ, 2003. Т.2. — С. 330−335.
  60. О.И. Формирование и комплексное изучение коллекции клематисов (род Clematis L.): биотехнологические и молекуляро-генетические аспекты. Автореф. дис.. .канд. биол. наук. — Москва, 2008. — 20 с.
  61. B.C., Колесников Я. С., Кузнецов В. В., Романов Г. А. Регуляторы роста растений: внутриклеточная гормональная регуляция и применение в аграрном производстве // Физиология растений, 2008. — Т.55. С. 629−640.
  62. Н. П. Хирургия растений (травматология). М.: «Новая деревня», 1928.-182 с.
  63. Н.П. Фeнoгeнeтичecкaя^ изменчивость. — М.: Изд-во Биологического института им. К. А. Тимирязева, 1933−1935. Т.1. — 500с.
  64. Н.П. Теория циклического старения и омоложения растений.- М.: Сельхозгиз, 1940. — 133 с.
  65. Н.П. Регенерация растений. Л.: Изд-во АН СССР, 1950. — 674 с.
  66. В.А. Биотехнологические приёмы оптимизации микроклонального размножения и адаптации генотипов сирени (Syringae vulgaris L.): Дис. .канд. биол. наук. Москва, 2005. — 240 с.
  67. H.H., Горбунова В. Ю. Каллусогенез как путь морфогенеза в культуре изолированных пыльников злаков //Успехи соврем. Биологии, 1997. Т. 117., Вып. 1.- С. 83−94.
  68. H.A. Основы биотехнологии, http: www.biotechnolog.ru 2008.
  69. О.Н. Физиология растений. М.: Наука, 1962. — С. 229.
  70. О.Н. Цитокинины, их структура и функции. М.: Наука, 1973. -105 с.
  71. О.Н. Гормональная регуляция физиологических процессов у растений на уровне синтеза РНК й белка. М.: Наука, 1982. — 159 с.
  72. О.Н. Физиология растений. М.: Наука, 1995. — С. 661.
  73. М.Ф. Морфофизиология растений. Морфофизиологический анализ этапов органогенеза различных жизненных форм покрытосеменных растений. -М.: Высш. школа, 1973. — 256 с.
  74. М.П. Клональное микроразмножение промышленных сортов гладиолуса. Автореф. дис.. .канд. с.-х. наук. М., 1998. — 19 с.
  75. Л.С. Размножение ирисов (Iridaceae) методом культуры апикальных меристем in vitro //Ботанический журнал, 1977. Т. 62. — С. 416−421. «
  76. Л.С. Строение и биология вегетативных почек ириса (.Iridaceae) //Ботанический журнал, 1977. Т. 62 — С. 563−568.
  77. Л.А., Верзина И. И. Наследование способности к каллусо- и корнеобразованию у изолированных семядолей редиса в условиях асептической культуры //Генетика, 1984. Т. XX. — № 10. — С. 1663−1670.
  78. Л.А., Бондаренко Л. В., Бузовкина И. С., Левашина Е. А., Тиходеева О. Н., Ходжайкова Л. Т., Шарова Н. В., Шишкова С. О. Влияние генотипа растения на регенерационные процессы //Генетика, 1994. Т. 30. -№ 8. — С. 1065−1074.
  79. H.A. Сравнительный анализ морфологических и биологических признаков сортов бородатых ирисов. Автореферат дис. .канд. биол. наук. -Москва- 2008. 20 с.
  80. С.Е. Хромосомный анализ культивируемых клеток. Методы культивирования клеток. Л.: Наука, 1988. — С. 78 — 98.
  81. O.B. Биотехнология в цветоводстве. Производство на безвирусную основу // Цветоводство, 1986. № 1. — С. 15−16.
  82. О.В., Иванова H.H. Получение безвирусных клонов луковичных цветочных культур // Бюлл. Никитского бот. сада, 1987. Вып. 62. -С. 37−41.
  83. Мозафари Али Акбар. Оптимизация' технологии ускоренного размножения ценных генотипов земляники in vitro. Автореф. дис.. .канд. с.-х. наук. Москва, 2004.-20с.
  84. Е.Ф., Соболева Л. Е., Митрофанова О. В. Микроразмножение редких декоративных растений // Цветоводство -1984. № 5. — С. 13−14.
  85. Е.В., ЛукаткинА.С. Влияние регуляторов роста на морфогенез Лангифлорум-Азиатик гибридов лилии в культуре in vitro П Агрохимия, 2005. — № 3. С.55−59.
  86. Е.В., Лукаткин A.C. Масс-клональное размножение гладиолуса in vitro II Биотехнология, 2005. № 1. — С. 19−26.
  87. Е.В. Морфофизиологические особенности клонального микроразмножения in vitro различных сортов лилий (Lilium L.) и гладиолусов {Gladiolus L.). Дис. .канд. биол. наук. Саранск, 2005. — 155 с.
  88. A.A. Регенерация in vitro Lilium regale Wils. II Актуальные проблемы биологии и экологии. Тезисы докладов 9 Молодежной научной конференции. Сыктывкар, 2002. — С. 102−103.
  89. А.Ю. Преимущества использования методов культуры ткани при размножении новых сортов лилии // Садоводство и цветоводство на современном этапе. Сборник научных трудов юбилейной конференции. Новосибирск, 2005. -С. 203−207.
  90. А.Ю. Сохранение и размножение в культуре in vitro генотипов редких видов лилий азиатской части России: Дис. .канд. биол. наук. -Новосибирск, 2008. 152 с.
  91. Нам И. Я. Оптимизация применения регуляторов роста и развития растений в биотехнологиях in vitro: Дис. .д-ра. биол. наук. Москва, 2004. — 314 с.
  92. Я.Б., Мишуткина Я. В., Гапоненко А. К., Скрябин К. Г. Метод регенерации in vitro побегов подсолнечника {Heliantus annuus L.) из асептических семян, как эксплантов для генетической трансформации // Биотехнология, 2007. -№ 6. -С. 27−33.
  93. Н.П. Жизнь корневища ириса // Цветоводство, 1962. № 2. -С.16−18.
  94. Патент США № 5 952 231 МПК6 С12 N 5/00/ 3. № 08/931 661 Mikcropropagation of rose plants.
  95. Патент США № 6 168 952 МПК7 С12 Т 5/00, А 01 В 79/00/ 3. № 09/128 666/ Method for producing flovering orchids in vitro.
  96. Патент США. № 6 323 394 МПК7 A01H 1/00, C12N 15/82/ 3. № 09/263 485 Tissue culture process for producing a lagre number of viable mint plants in vitro.
  97. Патент США № 6 492 174. МПК7 C12 N 5/00, C12 N 5/02. 3. № 09/685 338 Метод инициации эмбриогенных культур в растениях.
  98. Патент СССР, а.с. № 1 695 854 МПК5 А01Н 4/00. Способ размножения гладиолуса.
  99. Патент РФ № 2 102 870 МПК5 А01Н4/00, С Способ выращивания растений in vitro.
  100. Патент РФ № 2 152 150 МПК7 А01Н 4/00. Способ получения оздоровленного invitro посадочного материала Gerbera jamesonii bolus.
  101. Патент РФ № 2 286 053 МПК, А 01Н 4/00, А 01Н 5/00. Способ размножения гладиолуса in vitro.
  102. Патент РФ № 2 290 786 МПК, А 01Н 1/04, A 01G 7/00, С12 N 5/04. Способ микроклонального размножения листовой бегонии.
  103. И.А. Особенности микроклонального размножения шиповника и декоративных сортов рода Rosa L. Автореф. дис. '.канд. с.-х. наук. Москва, 2007. — 20 с.
  104. В.В. Фитогормоны. Л.: Изд-во Ленингр. ун-та, 1982. — 248 с.
  105. Л.А. Перспективы культивирования ириса в условиях лесостепи Алтайского края: Дис. канд. с.-х. наук. Барнаул, 2000. — 154 с.
  106. А.Р., Калашникова Е. А. Использование методов клеточной и генной инженерии для получения посадочного материала древесных пород. М.: МГУЛ, 1993.- 90 с.
  107. Г. И. Ирис. М.: Изд-во Минкомхоз. РСФСР, 1961. — 60 с.
  108. Г. И. Ирисы. Л.: Агропромиздат. Ленинград, отд-ние, 1988. -159 с.
  109. Г. И., Тихонова М. Е. Ирисы (наиболее пригодные для северных районов и для оформления водоемов повсюду). Информсервис, ЛТД, 1996. — 105с.
  110. Г. И. Систематические обзоры и новые таксоны // Ботанический журнал. 2009.- № 3.- С. 423−433.
  111. Г. А., Медведев С. С. Ауксины и цитокинины в развитии растений. Последние достижения в исследованиях фитогормонов // Физиология растений. -2006.- Т. 53.-С. 309−319.
  112. З.П. Верхушечная меристема. М.: МГУ, 1969. — 80 с.
  113. В.А., Слюсаренко А. Г. Масс-клональное размножение лилий // Бюллетень главного ботанического сада. Академия наук СССР, 1989. Вып. 153. -С. 61−69.
  114. В.А., Агаджанян И. В., Слюсаренко- А.Г. Масс-клональное размножение гладиолусов // Бюллетень главного ботанического сада. Академия наук СССР, 1990. Вып. 156. — С. 68−72.
  115. С.Е. Регенерация у растений: теоретические и методические аспекты // Повышение эффективности селекции и семеноводства сельскохозяйственных растений. Доклады и сообщения VIII генетико-селекционной школы. Новосибирск, 2001. — С. 95−98.
  116. А.Г. Проблемы масс-клонального размножения растений // Бюллетень главного ботанического сада. Академия наук СССР, 1989. Вып. 153. -С. 57−61.
  117. М.А., Пугачева Г. М. Клональное микроразмножение лилий: введение в культуру in vitro И Интродукция нетрадиционных и редких растений. Материалы VIII Междунар. науч.-метод. конф. Мичуринский госагроуниверситет, 2008. — Т.З. — С. 78−82.
  118. А. Сибирские ирисы. // В мире растений. 2002. — № 2. — С. 32−36.
  119. Л.И. Особенности микроклонального размножения сортов и гибридов ириса сибирского (/. sibirica L.) // Труды Томского государственного университета. Сер. биологическая, 2010. С 377−381.
  120. P. X. Физиология корнеобразования у черенков и стимуляторы роста. -М., 1961. 156 с.
  121. Н. Безбородые ирисы альтернативный вариант // Цветоводство, 2004.-№ 5.- С.48−50.
  122. М.Х. Гормональная регуляция роста и развития высших растений // Успехи соврем. Биологии, 1982. Т. 95. Вып. 1. — С 70−75.
  123. Т.А., Заяц Т. В. Морфогенез ириса Кемпфера в Абхазии. // Бюллютень Главного Ботанического сада, 1978. Вып. 110 — С. 65−69.
  124. Чуб В. А. Власова Т.А., Бутенко Р. Г. Каллусогенез и морфогенез в культуре генеративных органов весеннецветущих видов Crocus L. // Физиология растений. -1994.-Т. 41.- Вып. 6.-С. 815−820.
  125. Чуб В. А. Рост и развитие растений. 2003. — http: herba.msu.ru/russian.
  126. O.A., Румынии В. А., Барыкина Р. П., Слюсаренко А. Г. Некоторые особенности морфогенеза in vitro при масс-клональном размножении лилий // Бюллетень главного ботанического сада. Академия наук СССР, 1991. Вып. 159 — С.43−49.
  127. O.A. Морфогенетические процессы при масс-клональном размножении некоторых декоративных луковичных и клубнелуковичнных растений. Автореф. дис. .канд. биол. наук. Москва, 1993. — 25 с.
  128. O.A., Румынии В. А., Барыкина Р. П. Морфогенетические процессы в луковичных чешуях некоторых видов лилий в условиях масс-клонального размножения in vitro II Бюл. ГБС РАН, 1994 Вып. 169. — С. 105−111.
  129. O.A., Барыкина Р. П. Регенерационная способность некоторых луковичных и клубнелуковичных однодольных in vitro. Морфогенетический аспект // Вест. Моск. у-та. Сер. Биология, 1995. № 2. — С. 58−66.
  130. O.A. Морфогенетические аспекты микроклональиого размножения гиацинта // Физиол. раст. наука 3-го тысячелетия. Тез. докл Междунар. конф. -М., 1999.-С. 736.
  131. O.A., Молканова О. И. Изучение морфогенетических особенностей некоторых представителей семейства Liliaceae при размножении in vitro II Сборник научных трудов международной научно-практической конференции. -Москва, 2004. С. 246−249.
  132. O.A. Особенности микроклональиого размножения и морфогенез in vitro некоторых представителей семейства Liliaceae. II Труды Томского государственного университета. Сер. биологическая. — Томск: Изд-во Том. ун-та, 2010. Т. 274. — С. 429−432.
  133. B.C., Калашникова Е. А. Лабораторно-практические занятия по сельскохозяйственной биотехнологии. Методические указания. М.: МСХА, 1996 -80с.
  134. С.А. Оптимизация отдельных этапов микроклональиого размножения георгины культурной: стерилизация эксплантов // Вестн. Перм. унта, 2004. -№ 2. С. 61−63.
  135. К. Анатомия растений. М.: Мир, 1969. — 564 с.
  136. Agnieszka Wojtania, Joanna Pulawska, Eleonora Gabryszewska. Identification and elimination bacterial contaminantes from Pelargonium tissue cultures //Journal of Fruit and Ornamental Plant Research, 2005. Vol. 13. — P. l01−108.
  137. Ahmad Al-gabbiesh, Dhia S. Hassawi, Fatma U. Afifi. In vitro propagation of Endagered Iris Species //Journal of Biological Sciences, 2006. № 6 (6). — P. 10 351 040.
  138. Bach Anna, Warchol Marzena, Glogowska-Szwiec Magdalena. Индукция соматического эмбриогенеза и регенерация растений в культуре каллуса (польский) // Hyacinthus orientalis. Poznaniu. Ogrod, 2000. № 29. — P. 5−9.
  139. Boltenkov E.V., Rybin V. G, Zarembo E.V. Flavones from callus tissue of Iris ensata II Chem. Nat. Compd, 2005. -№ 41.-P. 539−541.
  140. Bottcter I., Goring H. Die Vitrifikation der Pflanzen bei In-vitro-kultur als Infiltrationsproblem //Biol. Rdsch, 1987. Bd 25. — P. 191−193.
  141. Bottcter I., Zoglauer K., Goring H. Induction and reversion of plants cultured in vitro II Phisiol. Plant, 1988. Vol. 72. — P. 560−564.
  142. Carelli B.P., Echeverrigaray S. Animproved system for the in vitro propagation of rose cultivars II Sei. hort. (Neth.), 20 021 Vol. 92. — № 1 — P. 69−74.
  143. Castillo В., Smith M. Direct comatic embryogenesis from- Begonia gracilis explants: Abstr. World Congr. In vitro Biol,. Calif., In vitro Cell, and Dev. Biol. Anim. -San Francisco, 1996. Vol. 32. — № 3. — Pt 2. — P: 94.
  144. Charlebois D., Richer C. Multiplication in vitro de syringe vulgaris Katherine Havermeyer et Charles Joli. Can. // J. Plant Sei, 2004. Vol. 84. — № 1. — P. 219−21%.
  145. De Oliveira Paiva Duarte, Pasqual Moacir, Paiva Renato. Влияние концентрации агара и уровня pH на размножение хризантемы in vitro I I Rev. ceres. Univ. fed. Vicosa. 1999. — Vol. 46. — № 264. — P. 141−148.
  146. Denkova Stojka, Kondakova V. Regeneration and in vitro propagation of Pelargonium peltatum II Biotechnology Approaches for Exploitation and Preservation of Plant Resources. International symposium. Yalta, 2002. — P. 29.
  147. Gamborg О. Z., Wilier R.A., Gima K. Nitrient requirement of suspension cultures of soybeant root cells // Exp. Cell Res, 1968. Vol. 50. — № 1. — p. 151−158.
  148. Gangaprasad A., Latha P.G., Seeni S. Micropropagation of terrestrial orchids, Anoectochilus sikkimensis and Anoectochilus regalis II Indian J. Exp. Biol, 2000. Vol. 38.-№ 2.-P. 149−154.
  149. Gordienko N.Y. Clonal micropropagation with preservation of decorative characters of Saintpaulia cultivars. // Бюлют. Гос. Никит. Ботан. сад, 2002. № 86. -P. 38−40.
  150. Hida A., Shimizu K., Nagata R., Yabuya Т., Adachi T. Plant regeneration from protoplasts of Iris hollandica //Hort. Euphytica, 1999. Vol. 105. — P. 99−102.
  151. Hussey G. Cloning higher plants from aseptically cultured tissues and cells // J. Exp. Bot, 1975. V. 26. — № 12. — P. 253−262.
  152. Hussey G. In vitro release of axillary shoots from apical dominance in monocotyledonous plantlets // Ann Bot London, 1978. Vol. 25. — P. 1323−1325.
  153. Hussey G. Propagation of some members of the Liliaceae, Iridaceae and Amaryllidaceae by tissue culture // Petaloid Monocotyledons. New York: Academic Press, 1980.-P. 33−42.
  154. Hussey, G. In vitro propagation of monocotyledonous bubles and conns // Plant tissue culture. Tokyo: Marzuzen, 1982. — P. 677−680.
  155. Jana B. Callus tisse // Indian Hortic, 1981. Vol. 25- № 4. — P. 11−13.
  156. Jehan H., Courtois D., Ehrey C., Lerch K., Petiard V. Plant regeneration of Iris pallida Lam. And Iris germanica L. via somatic embryogenesis from leaves, apices and young flowers// Plant Cell Reg. 1994. — Vol.13. — P. 671−675.
  157. Jeknic Z., Lee S.P., Ernst R.C., Chen Т.Н. Genetic transformation of Iris germanica mediated by Agrobacterium tumefaciens!7 J. Am. Soc. Hortic. Sci, 1999. Vol. 124. -P. 575−580.
  158. Jevremovic S., Radojevic L., Subotic A. In vitro morphogenesis of dwarf irises // Floriculture, Ornamentals, and Plant Biotechnology: Advances and Topical Issues. -2006a. Vol. II. — P. 551−557.
  159. Jevremovic S. Subottic A., Radoejevic L. In vitro plant regeneration in zygotic embryo culture of Iris reichenbachii И Acta Hort., 2006 b. Vol. 725 — P. 169−173.
  160. Jevremovic S. Subottic A., Trifunovic M., Nikolic M. Plant regeneration of southern Adriatic iris by somatic embryogenesis // Arch. Biol. Sci. Belgrade, 2009. — Vol.61 (3).-P. 413−418.
  161. Jiang Yuan, Liu Si-yan, Wang Jing, Eang Yi, Zhang Mei-ping. Изучение быстрых методов неполового размножения ширококолокольчика крупноцветкового (на кит. яз) // Jilin nongye daxue xuebao. J. Jilin agr. Univ., 2004. — Vol.26. — № 5. — P. 526 528.
  162. Kawase K, Mizutani H, Yoshioka M, Fukuda S. Shoot formation on floral organs of Japanese iris in vitro II Journal of the Japanese Society for Horticultural Science, 1995.-Vol.64.-P.143−8.
  163. Kevers C., Goldberg R., Gaspar T. Composition of the walls of stemand leaves of vitrifying carnation //Biol. Plant, 1988: Vol. 30. — P. 219−223.
  164. Kubova A., Kamenicka A. Magnolia soulangiana plantlets to ex vitro condition during adaptation period // Biotechnology Approaches for Exploitation and Preservation of Plant Resources. International symposium Yalta, 2002. — P. 34−35.
  165. Fey, Liu Bagging, Liu Yuba, Zhang belong, Bauhaus Wang. Культура ткани и технология быстрого размножения Gardenia jasminoides// J.Beihua. Univ. Natur. Sci, 2000. Vol. 1. — № 6. — P. 533−535.
  166. Marcia О. Murilo M., Appezzato-da-Gloria В. Histological Analysis of the Callogenesis and organogenesis from: Root Segments of Curcuma zedoaria Roscoe. // Brazilian Archives of Biologi and Technology, 2001. Vol. 44. — P. 235−241.
  167. Mitrofanova I.V., Yezhov V.N. Plant regeneration of Clematis L. through somatic embryogenesis in vitro II Bull. State Nikitsky Bot. Gardens, 2002. № 86. — P. 16−19.
  168. Murashige Т., Skoog F. A Revised Medium for Rapid Growth and Bioassaya with:
  169. Tobacco Tissue cultures // Physiol. Plants 1962. V. 15. — № 4. — P. 473.
  170. Nakano Masaru, Niimi Yoshijiv Kobayashi Daisuke, Watanabe Atsuhiro. Adventitions shot regeneration and' micropropagation of hybrid' tuberous begonia. (Begonia x tyberhybrida Voss). I I Sci. hort. (Neth.), 1999. № 3. — P.79.
  171. Noland H. Martin, Amy C. Bouck, and Michael L. Arnold. Detecting Adaptive Trait Introgression Between Iris fulva and /. brevicaulis in Highly Selective Field // Conditions. Genetics- 2006- Vol: 172(4). — P: 2 481 424 891
  172. Nanda R., Rout G.R. In vitro somatic embryogenesis and plant regeneration in Acacia arabica IIPlant Cell, Tissue and Organ Cult, 2003. Vol. 73, № 2. — P: 131−135.
  173. Ohki Shizuka,. Sawaki Satochi. The effects of inorganic salts and growth regulators on in vitro shoot proliferation and leaf chlorophyll content of Delphinium cardinal II Sci- Hort. (Neth.), 1999.-№ 81.-P. 149−158.
  174. Paek, J. Ecological and: morphological features of clonal micropropagation of hyacinth // Plant Tissue Cult, 1982. P. 713−714.
  175. M., Boxus P., «Vitrification»: Reviewof literature //Acta hort. 1987. -Vol. 212.-P. 155−166.
  176. Paek J/ Ecological und morphological features of a clonal micropropagation of hyacinth//Plant Tissue Cult, 1982. P- 713−714.
  177. Pavingerova D., Prenerova- E. Размножение in vitro: Rhododendron spp. из цветочных почек // Rostl vyroba, 2000: Vol. 46. — № 6. — P. 281−283.
  178. Pelkonen Veli-Pekka, Kauppi Anneli. The effect of light and auxins on the regeneration of lily (Lilium regale Wil.) cells by somatic embryogenesis and organogenesis // Int. J. Plant Sci, 1999. Vol.160. — № 3. — P. 483−490.
  179. Popkova L.L. Biotechnological aspects of cultivations of ornamental Crimean species of orchids // Biotechnology Approaches for Exploitation and Preservation of Plant Resources. Abstracta International symposium Yalta, 2002. — P. 38.
  180. Popowich E.A., Koslova O.N. Clematis and Gipsophila adventitious shoot regeneraton // Biotechnology Approaches for Exploitation and Preservation of Plant Resources. Abstracta International symposium. — Yalta, 2002. — P. 45.
  181. Qiu Yin-Qing, Lin Xiong. Культура ткани и быстрое размножение Anthurium worocqueanum // J. S. China Norm. Univ. Natur. Sci, 2001. № 4. — P. 101−102.
  182. Radojevic L., Sokic O., Tucic B. Somatic embryogenesis in tissue culture of iris (Irispumila L.) // Acta Hort, 1987. Vol. 212. — P. 719−723.
  183. Radojevic L., Subotic A. Plant regeneration of Iris setosa Pall. Through somatic embryogenesis and organogenesis // J Plant physiol. 1992. Vol. 139. — P. 690−696.
  184. Randolph L.F. Embryo culture of Iris seed. // Bull Am Iris Soc. -1945. Vol. 98. -P. 33−45.
  185. Reinert, I. Applied and fundamental aspects of plant cell tissue and organ culture. // Springer. 1977. — 803 p.
  186. Romanciuc Gabriela. Cercetarea proceselor de dezvoltare si multiplicare microclona in vitro la Actinidia chinensis Planch: Teza de doctor in biologie. -Chisinau, 2009. 152 p.
  187. Rout G.R., Debata B.K., Das P. Somatic embryogenesis in callus cultures of Rosa hybrida L. cv. Landora // Plant Cell, Tissue and Organ Cult. 1991. — Vol. 27. — P. 6569.
  188. Samyn G., Schepper S., Van Bockstaele E. Adventitious shoot regeneration and appearance of cports in several azalea cultivars. // Plant Cell. Tissue and Organ Cult. 2002. Vol. 70, № 2. — P. 223−227.
  189. Schmulling Т., Schafer S., Romanov G. Cytokinins as Regulators of Gene Expression//Physiol. Plant. 2007. Vol. 100. — P. 505−517.
  190. Shibli R., Aijlouni M. Somatic embryogenesis in the endemic black iris. // Plant Cell Tissue Organ Cult. 2000. Vol. 61. — P. 15−21.
  191. Shimizu K., Yabuya Т., Adachi T. Plant regeneration from protoplasts of Iris germanica L. // Euphytica. 1996. Vol. 89. — P. 223−227.
  192. Skoog F., Miller C.O. Chemical regulation of growth and organ formation in plant tissues cultured in vitro //Sympos. Soc. Exp. Biol. 1957. — Vol. 11. — № 2. P. 118.
  193. Sreekumar S., Mukunthaku-mar S., Seeni S. Morphogenetic responses of six Philodendron cultivars in vitro //Indian J. Exp. Biol. 2001. Vol. 39. — № 12. — P. 1280−1287.
  194. Tabuchi Т., Hiramatsu N. Morphological characterization in the perianth of wild Japanese iris in lowland Hokkaido in Japan. 2006. www.actahort.org/books.
  195. Tamura. S. Variations in clonal propagation. // J. Japan Soc. Hort. Sci. 1978. Vol. 464.-№ 7.-P. 501−508.
  196. Vieth J., Laublin G., Morisset C., Cappadocia M. Multiplication in vitro de quelques iris a partir: aspects histologiques de embryogenese somatique // Can. J. Bot. -1992. 70 (9). — P. 1809−1814.
  197. Witomska Maria. Влияние различных факторов на размножение ин витро Fritillaria imperialis L. — Warszawa, 2002. 110 p.
  198. Wojtania Agnieszka, Joanna Pulawska, Eleonora Gabryszewska. Identification and elimination bacterial contaminantes from Pelargonium tissue cultures. // Journal of Fruit and Ornamental Plant Research. 2005. Vol. 13. — P.101−108.
  199. Yabuya Т., Yavagata. Embryo growth and Cultural Condition in Iris ensata Thumb. // Japan J. Breed. 1981. Vol. 31 (4). — P. 377−382.
  200. Yabuya T. Pollen storage of Iris ensata Thunb. in organic solvents and dry air under freezing // J. Japan. Breed. 1983. Vol. 33(3). — P. 269−274.
  201. Yabuya T. Chromosome associations and crossability with Iris ensata Thunb. induced amphidiploids of I. laevigata fisch x I. ensata H Euphytica. 1991. — Vol. 55. — № 1. — P. 85−90.
  202. Yabuya T, Ikeda Y., Adachi T. In vitro propagation of japanese garden iris iris ensata Thunb. // Euphytica. 1991. Vol. 57. — P. 77−82.
  203. Yabuya T, Kikugawa H, Aiko I, Adachi T. Cytological Studies of Hybrids between Aneuploid and Eu-Diploid Japanese Garden Iris I. ensata Thunb. // Cytologia (Tokyo). 1992. Vol. 57. — P. 253−270.
  204. Yabuya T, Nakamura M, Yamasaki A. P-coumaroyl glycosides of cyanidin and peonidin in the flowers of Japanese garden iris, Iris ensata Thunb. // Euphytica. 1993. — Vol. 74.-P. 47−50.
  205. Yabuya T, Aiko Y, Adachi T. Factors affecting the velvety outer perianths of Japanese garden iris (Iris ensata Thunb.) I I Cytologia (Tokyo). 1993.' Vol. 58. — P. 4751.
  206. Yabuya T- Iwashina T, Kamenosono K. Isolation and identification of flavonoid and related compounds as co-pigments from the flowers of Iris ensata II Journal of Japanese Botany. 1996. Vol. 71. — P. 281−287.
  207. Yabuya T, Nakamura M, Iwashina T, Yamaguchi M, Takehara T. Anthocyanin-flavone copigmentation in bluish purple flowers of Japanese garden iris (Iris ensata Thunb.) // Euphytica. 1997. Vol. 98. — P. 163−170.
  208. Yabuya T, Kihara S, Yoshino H, Ohba A. Behavior of NOR-bearing telosomes in Japanese garden iris (Iris ensata Thunb.) // Cytologia (Tokyo). 1997. Vol. 62. — P. 4751.
  209. Yabuya T MG, Minamitani Y, Shimizu K. Variation in the nucleolar organizing regions in regenerated plants of Japanese garden iris (Iris ensata Thunb.) // Cytologia (Tokyo). 1997. Vol. 62. — P. 249−252.
  210. Yabuya T. Noda L. The characterization of autoallotetraploid hybrids between I. ensata Thunb. andL. laevigata fisch. //Euphytica. 1998. P. 325−328.
  211. Yabuya Т., Shimizu К., Miyabe Y., Nagaike H., Adachi T. Production of somatic hybrid plants between Iris ensata Thunb. and I. germanica. // Euphytica. 1999. — Vol. 107, № 2.-P. 105−113.
  212. Yabuya T, Yamaguchi M-A, Imayama T, Katoh K, Ino I. Anthocyanin 5−0-glucosyltransferase in flowers of Iris ensata // Plant Science (Shannon). 2002. Vol. 162.-P. 779−784.
  213. Yabuya Т., Imayama T. Characterization of anthocyanins in flowers of Japanese garden iris, Iris ensata Thunb. II Cytologia (Tokyo). 2003. Vol. 68. — P. 205−210.
  214. Yabuy Т., Inoue K., Kato Т., Kunitake H. Efficient Production of Polyploid Plants via Protoplast Culture of Iris fulva II Cytologia. 2004. Vol. 69. — №. 3. — P. 327−333.
  215. Yu Xieo-ying, Wu Tie-ming, Ni Pei, Yang Meng-ling, Peng Jin-hui, Ding Jing-nan. Культивирование незрелых зародышей лилии и регенерация растений in vitro (на кит. яз.) // J. Hunan Agr. Univ. 2000. Vol. 26. — № 4. — P. 286−288.
  216. Yuan Ling-wei, Yuan Zheng-fang, Zhang Su-feng. Исследования по культуре ткани и быстрому размножению бегонии (Begonia elatior) (на кит. яз.) // J. Xinyang Teach. Coll Natur. Sci. Ed. 2002. Vol. 15. — № 2. — P. 219−221.
  217. Zhang Yan-long, Xu Yan, Li Feng Luo Jia, Fan Ming. Установление регенерационной системы луковиц от Lilium brownie (на кит. яз.) // Xibei zhiwu xuebao. Occiklent Sin. 2004. Vol. 24. -№ 7. — P. 1315−1318.
  218. Zhao Xing-bing, Yuan Zheng-fang, Zhangsu-feng, Fan Si-feng, Qin Gou-qiang, Liu Wei. Исследования по быстрому размножению in vitro Lilium davidi var. unicolor (на кит. яз.) // J. Xinyang Teach. Coll Natur. Sci. Ed. 2001. Vol. 14. — № 3. — P. 319 321.
  219. Ziv M. Organs and plantlets regeneration of Gladiolus thorough tissue culture // Ann. Bot. 1970. Vol. 34. -№ 1. — P. 671−676.
  220. Ziv M. Transplanting Gladiolus plants propagated in vitro. II Sci. hort. 1979. Vol. ll.-№ 3. — P. 257−260.
  221. Ziv M., Lilien-Kipnis H. Bud regeneration from inflorescence exsplants for rapid propagation of geophytes in vitro II Plant Cell Reports. 2000. Vol. 19. — P. 845−850.
  222. Ziv M., Naor V. Flowering of geophytes in vitro. II Propagation of Ornamental Plants. 2006. Vol. 6. -№ 1. — P. 3−16.
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?