Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Кинетика окисления компонентов модельных водно-липидных систем

Диссертация: Кинетика окисления компонентов модельных водно-липидных систем
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Для достижения поставленной цели решались следующие задачи:. выбор компонентного состава модельной водно-липидной системы-. подбор оптимального диапазона рН комплексообразования меди (II) с ааминокислотами-. исследование дисперсных характеристик модельной системы-. исследование кинетики и механизма окисления модельной системы в присутствии координационных соединений меди (И) с а-аминокислотами… Читать ещё >

Содержание

  • Глава 1. Развитие представлений о процессах жидкофазного окисления липидов
    • 1. 1. Кинетика и механизм жидкофазного окисления углеводородов
    • 1. 2. Кинетика жидкофазного окисления в присутствии ингибиторов
    • 1. 3. Особенности механизма окисления ненасыщенных жирно-кислотных компонентов липидов
      • 1. 3. 1. Состав липидов биомембран
      • 1. 3. 2. Свободнорадикальное окисление липидов биомембран и его роль в развитии патологий
      • 1. 3. 3. Формирование представлений о биоантиоксидантах и торможении свободнорадикального окисления липидов
    • 1. 4. Формирование физико-химических представлений о дисперсных системах липидов
      • 1. 4. 1. Роль поверхностно-активных веществ в мицеллообразовании и представления о мицеллярном и межфазном катализе
      • 1. 4. 2. Влияние белков и аминокислот на процессы мицеллообразования
      • 1. 4. 3. Структура и дисперсность липидов биомембран

      1.5 Особенности кинетики окисления водно-липидных систем 29 1.5.1 Роль структурных факторов в процессах окисления липидов 30 1.5.2Координационные соединения меди и их роль в свободнорадикальном окислении липидных систем

Кинетика окисления компонентов модельных водно-липидных систем (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность темы

Известно, что процессы окисления органических веществ молекулярным кислородом протекают по цепному механизму с вырожденным разветвлением, открытым в 1934 г. Н. Семеновым и К. Хиншель-вудом.

Изучение закономерностей таких процессов обусловили прогресс во многих областях жизни и деятельности человека. На этой основе совершенствуются процессы хранения, оценки качества пищевых продуктов, полимеров, лекарственных препаратов, моторных топлив и масел. С развитием радиационной химии были обнаружены неферментативные свободнорадикаль-ные процессы окисления, которые присутствуют в нормальной клетке и меняют свою интенсивность под влиянием неблагоприятных факторов окружающей среды. В последнее время сформирована научная гипотеза, согласно которой, молекулярный механизм развития многих заболеваний, вызванных радиационным поражением, старением, неблагоприятными воздействиями окружающей среды и условиями труда, обусловлен изменением интенсивности свободнорадикального окисления липидов биомембран. Возник интерес к антиоксидантотерапии, как средству профилактики и лечения таких патологий.

Очевидно, что теоретической основой для разработки методов диагностики, профилактики и лечения таких патологий, а также способов торможения окислительной деструкции липидосодержащих продуктов, должны служить закономерности окисления компонентов в сложных водно-липидных системах. Актуальным является изучение особенностей кинетики и механизма окисления в таких системах путем сравнения с кинетикой более простых систем.

Часть работы выполнена в рамках Федеральной целевой программы «Научные и научно-педагогические кадры инновационной России» (госконтракт № П1595).

Целью настоящей работы является изучение особенностей кинетики окисления водно-липидных систем, моделирующих биомембраны, в соответствии с классической схемой свободнорадикального окисления углеводородов и их производных, торможения этих процессов антиоксидантами.

Для достижения поставленной цели решались следующие задачи:. выбор компонентного состава модельной водно-липидной системы-. подбор оптимального диапазона рН комплексообразования меди (II) с ааминокислотами-. исследование дисперсных характеристик модельной системы-. исследование кинетики и механизма окисления модельной системы в присутствии координационных соединений меди (И) с а-аминокислотами и выбор каталитической системы среди наиболее устойчивых и активных комплексовизучение особенностей кинетики и механизма действия синтетических и природных антиоксидантовуточнение на основе экспериментальных исследований классической схемы окисления молекулярным кислородом.

Научная новизна. Установлена кинетическая активность координационных соединений (КС) меди (II) с а-аминокислотами в процессах окисления компонентов водно-липидной системы молекулярным кислородом. Выявлен ряд активности аминокислот, обусловленный электронными эффектами в молекулах лигандов, различиями в структуре образующихся комплексов и дисперсных частиц.

Предложено уточнение классического механизма окисления применительно к многокомпонентным водно-липидным системам. Доказано участие КС меди (II) с а-аминокислотами в реакциях зарождения и продолжения цепей. Показано снижение энергии активации процессов образования и распада продуктов окисления липидов в присутствии КС меди (II).

Установлен различный характер влияния стандартного синтетического ингибитора (ионола) и природного антиоксиданта (а-токоферола) на процесс окисления модельной системы в зависимости от их концентрации, обусловленный участием ингибиторов не только в реакциях обрыва цепей, но и в реакциях зарождения и разветвления цепей.

На основании совокупности экспериментальных данных показаны низкие прогностические способности константы скорости обрыва цепей для сложных многокомпонентных каталитических водно-липидных систем, моделирующих состав биомембран.

Практическая значимость. Предложен состав модельной водно-липидной системы для тестирования антиоксидантов. Система содержит эфиры высших ненасыщенных жирных кислот и воду в соотношении 1 :3 по объему) с добавками (1−3)-10 моль/л эмульгатора цетилтриметилам-мония бромида и КС (1−3)-10 моль/л меди (II) с (2−6)-10″ моль/л а-аланином в качестве катализатора.

Предложен способ торможения процессов каталитической деструкции водно-липидных систем путем добавления двух-пятикратного избытка фени-лаланина или лейцина, или гистидина;

Обнаруженные закономерности связи каталитической активности КС меди (II) с a-аминокислотами со строением лигандов, а также предполагаемые причины снижения эффективности стандартных ингибиторов, могут быть использованы для объяснения процессов, протекающих при свободно-радикальном окислении липидов в реальных биологических системах.

Апробация работы. Основные результаты исследований были представлены на VI и VII открытой окружной конференции «Наука и инновации XXI века» (Сургут, 2006 и 2007 гг.), Международной конференции «Ломоно-сов-2007, 2008» (Москва, 2007 и 2008 гг.), VI Всероссийском научном семинаре «Химия и медицина» (Уфа, 2007 г.), Всероссийской конференции им. академика Н. М. Эмануэля «Окисление, окислительный стресс и антиокси-данты» (Москва, 2008 г.), Всероссийской научной конференции «Химическая кинетика окислительных процессов. Окисление и антиокислительная стабилизация». (Уфа, 2009 г.).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 13 работ, включая 3 статьи в журналах, рекомендованных ВАК.

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 127 страницах машинописного текста и содержит введение, четыре главы, выводы и список использованной литературы. В тексте содержится 36 рисунков и 11 таблиц. Список цитируемой литературы включает 184 наименования.

ОСНОВНЫЕ РЕЗУЛЬТАТЫ И ВЫВОДЫ.

1. Предложена водно-липидная система для моделирования процессов сво-боднорадикального каталитического окисления липидов биомембран и тестирования антиоксидантов. В состав системы входит смесь эфиров высших ненасыщенных жирных кислот (липидов) и воды в соотношении о.

1:3 (у/у), с добавками (1—3)-10 моль/л цетилтриметиламмония бромида в качестве эмульгатора и комплексов (1—3)-10−3 моль/л меди (II) с 2−5-кратным избытком а-аланина в качестве катализатора при оптимальном для комплексообразования рН (8−10).

2. По результатам исследования дисперсных свойств модельной системы обнаружено 2 типа частиц со средним диаметром (8,8±1)-10″ 9 м и эквивалентным радиусом (1,4±0,1)-10″ 6 м. Предложены две схемы структуры дисперсных частиц в виде мицелл и липосом. Сделаны предположения о локализации компонентов в процессе окисления.

3. В процессе окисления липидов модельной системы обнаружены различия кинетической активности координационных соединений меди (II) с а-аминокислотами в зависимости от структуры последних. Показана высокая каталитическая активность комплексов меди (II) с а-аланином и высокая ингибирующая активность комплексов меди (II) с фенилаланином. Установлено увеличение кинетической активности комплексов меди (II) с а-аминокислотами в ряду: фенилаланин<�лейцин<�гистидин<�серин<�треонин<�лизин<�валин<�аланинПоследовательность аминокислот в ряду объясняется электронными и структурными факторами.

4. По кинетическим кривым окисления, спектроскопическим исследованиям изменений концентраций продуктов окисления и меди (I и II) в липидной и водной фазах во времени предложен механизм каталитического окисления компонентов в модельной системе. Показано участие комплексов меди (I и II) в реакциях зарождения и продолжения цепей, возможное участие в окислении вторичных продуктов и каталитическом окислении 2,6-дитретбутил-4-метилфенола (ионола).

5. Методом ингибиторов доказан радикально-цепной механизм окисления липидных компонентов в модельной системе. Показано, что в концентрациях 1−10″ 4 моль/л и выше, ионол участвует как сильный ингибитор только в реакциях обрыва цепей. Определена скорость инициирования и рассчитана длина цепей, равная 95±5.

6. По кинетическим параметрам установлен сложный механизм действия важнейшего биоантиоксиданта а-токоферола и изменение механизма в зависимости от его концентрации. Показано, что во всем интервале исследуемых концентрации (1(Г4−10−7) моль/л, а-токоферол менее эффективно ингибирует окисление липидов, по сравнению с ионолом. Установлены 4 различных типа кинетических кривых окисления компонентов модельной системы в зависимости от концентраций а-токоферола, соответствующих торможению, отсутствию эффекта торможения, ¿-'-образному характеру кинетических кривых и ускорению окисления. Характер кинетических кривых объяснен участием а-токоферола в конкурирующих реакциях обрыва, продолжения цепей, его окисления до токоферилхинона, участия последнего в разветвлении цепей.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Изучение химических реакций, протекающих в живых организмах, представляет огромный интерес для различных областей химии, биологии, физики и медицины. Эти реакции имеют ряд существенных особенностей, отличающих их от подавляющего большинства других реакций: протекают в водно-эмульсионной среде с участием биологических катализаторов — белков и их комплексов с катионами ¿-/-элементов[30- 53].

Для понимания механизмов биологически важных реакций важнейшую роль играет изучение модельных систем, т. е. реакций, которые не являются биологическими в прямом смысле слова, однако моделируют некоторые особенности биологических процессов. Исследование модельных реакций позволяет установить определенные закономерности сложных биологических процессов на более простых реакциях, что в значительной мере облегчает изучение реальных биологических объектов.

Несмотря на изобилие литературы, посвященной свободнорадикально-му окислению липидов, только ряд работ представляет рациональную и воспроизводимую информацию. В большинстве случаев, теоретическое обоснование и практические результаты исследования пероксидного окисления в биомембранах базируются либо на результатах модельных экспериментов по окислению жирно-кислотных компонентов в гомогенной среде в условиях автоокисления или гомолитического инициирования [24- 32- 36]- либо определяются кинетическими моделями, где окисление протекает в плохо контролируемых и воспроизводимых условиях [65- 126- 127].

Представляется актуальным для развития представлений о механизме свободнорадикального окисления липидных систем и внедрения этих результатов в практику дальнейшее приближение существующих моделей к реальным системам. В настоящей работе исследована кинетика окисления водно-липидных систем, включающих не только дисперсную систему липидов, но и комплексы меди с а-аминокислотами, антиоксиданты.

Глава 2.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1 Получение и очистка реагентов.

Препараты аминокислот: DL-аланин (х.ч.), L-валин (х.ч.), L-лейцин (ч.), L-серин (ч.д.а.), DL-треонин (х.ч.) перекристаллизовывают из водно-этанольной смеси. DL-yft-фенил-а-аланин (х.ч.), L-гистидин (ч.д.а.), L-лизин (х.ч.), хлорид меди (И) (х.ч.), цетилтриметиламмоний бромид (х.ч.), олеиновую кислоту (ч.) используют без дополнительной очистки. Гидрохинон (х.ч.) очищают вакуумной возгонкой. Ионол (ч.) очищают двукратной кристаллизацией из абсолютного этанола [177]. А-токоферол фирмы «Sigma» используют без дополнительной очистки.

В качестве липидного компонента использована смесь жирных кислот оливкового масла, этерифицированных этанолом в кислой среде по стандартной методике [177]: смешивают 1 моль высшей ненасыщенной кислоты, 5 молей абсолютного этанола и 0,2 моля концентрированной серной кислоты и кипятят без доступа влаги воздуха 5 часов с обратным холодильником. По окончании реакции отгоняют главную массу избыточного спирта и выливают остаток в пятикратный объем ледяной воды. Органический слой отделяют, а водный трижды экстрагируют петролейным эфиром. Объединенные органические слои нейтрализуют концентрированным раствором соды, промывают водой до рН 7 и сушат безводным сульфатом натрия. Полученную смесь эфиров подвергают вакуумной перегонке, в приемник собирают фракцию с температурой кипения 160−164°С при 1 мм рт. ст.

Определение жирнокислотного состава окисляемого субстрата проводят с помощью газового хроматографа «Trece GC Ultra» с масс-селективным детектором DSG-II (компании Thermo Electron) на капиллярной колонке FFAP. Газ-носитель гелий. При выполнении ГХ-МС анализа подбирают условия, обеспечивающие эффективное разделение и идентификацию определяемых компонентов пробы:

Объем пробы 0.04 мкл;

Программируемый режим термостата от 40 (задержка 4 мин) до 200 °C со скоростью 4 град/мин;

Температура испарителя 200 °C;

Температура переходной камеры 200 °C;

Температура квадруполя 200 °C;

Скорость газа носителя 1 мл/мин;

Диапазон масс квадруполя — 40−500 а.е.м.;

Время анализа 55 мин.

2.2 Подбор оптимального рН комплексообразования.

Первоначально определяют рН растворов, при которых достигается наибольшая степень окрашивания комплекса [178]. Для этого измеряют спектры поглощения растворов, содержащих хлорид меди (II) и двукратный избыток аминокислоты (АК) при различных значениях рН от 4 до 12. Строят график зависимости оптической плотности максимумов полос при данных значениях рН от рН растворов Amax=f (pH). По графику определяют интервал значений рН, который соответствует практически постоянным значениям оптической плотности растворов. Этот интервал является оптимальным для комплексообразования. Для поддержания необходимого значения рН применяют гидроксид натрия и хлороводородную кислоту. рН измеряют иономе-ром И-130.2М, откалиброванным по двум буферным растворам: калий фта-левокислый (рН 4,01 при 25°С) и тетраборат натрия (рН 9,18 при 25°С).

Растворы готовят по точной навеске на бидистилляте.

Спектры поглощения записывают на спектрофотометре СФ-2000, /=1см.

2.3 Методики окисления.

Механизм действия координационных соединений и ингибиторов исследуют кинетическим и спектроскопическим методами.

Кинетический метод: в 1 мл липидного субстрата добавляют по 1 мл водных растворов цетилтриметиламмония бромида и координационного соединения (КС) хлорида меди с а-аминокислотами с конечными концентрациями в растворе: медь (1−3)-1(Г3, а-аминокислота (5−10)-10~3, эмульгатор (1о.

5)-10 моль/л, добавляют раствор ингибитора, пробу доводят водой до 4 мл, термостатируют при температуре 60±-2°С, насыщают молекулярным кислородом. Волюмометрически, при непрерывном перемешивании определяют объем поглощенного кислорода во времени. В аналогичных условиях определяют поглощение кислорода во времени в контрольной пробе (без добавок аминокислот или ингибитора).

Катализатор (хлорид меди) и эмульгатор (цетилтриметиламмоний бромид) подобраны экспериментально и соответствуют их максимальной эффективности [12, 137].

Принцип работы манометрической установки. На рис. 2.1 изображена схема манометрической установки, включающая ячейку вместимостью 5 мл со стеклянной рубашкой для термостатирования, ультратермостат ЦТ-15с точностью ±-0,2°С, магнитную мешалку, систему соединительных трубок и кранов, кислородную подушку, манометр. В качестве манометрической жидкости используют водный раствор хлорида натрия.

Необходимым условием корректности кинетического исследования является выбор режима окисления таким образом, чтобы скорость процесса не зависела от скорости перемешивания. Перемешивание осуществляют с помощью магнитной мешалки, снабженной измерителем числа оборотов. Рабочая скорость перемешивания составляет 1200 об/мин [137].

Поглощениие кислорода (ЖС2) в моль-л^-с" 1 рассчитывают с использованием уравнения Менделеева-Клапейрона: ж Р-АУ.

2 Я-Т-г-У (2−1).

— 1 ь? пробы л где, А У— объем поглощенного кислорода, м ;

Р — давление кислорода, Па;

Я — универсальная газовая постоянная, Дж-моль^-К" 1;

Т— температура, КУ пробы — объем пробы, лт — время окисления, с.

Рис. 2.1 Манометрическая установка:

1 — ячейка- 6 — бюретка;

2 — магнитная мешалка- 7 — склянка с запорной жидкостью;

3 — отвод- 8 — кислородная подушка;

4 — двухходовой кран- 9 — рубашка к термостату;

5 — трехходовой кран;

Спектроскопический метод: окисление молекулярным кислородом пробы, стоящей из липидного субстрата, ЦТМАБ, КС меди (II) с а-аланином и воды осуществляют в термостатированной ячейке при 25°, 37°, 60 °C и оптимальном перемешивании. Конечная концентрация в растворе: липидный субстрат — 0,7- эмульгатор — (1−5)-10″ 3- медь — (2−3)-10″ 2- а-аланин — (4−5)-10″ 2 моль/л соответственно.

Во времени отбирают по 100 мкл пробы. Органическую фазу отделяют, экстрагируя гексаном, сушат безводным сульфатом натрия и записывают спектры в области поглощения продуктов окисления в диапазоне 200−300 нм. Водную фазу разбавляют водой до 1,5 мл и записывают спектры в области поглощения соединений меди в диапазоне 400−900 нм.

Для изучения действия катализатора в органической фазе исходную пробу объемом 4 мл центрифугируют в течение 15 мин при 3000 об/мин, отбирают 0,35 мл органической фазы, добавляют 1 мл гексана, сушат и записывают спектры в области 400−900 нм.

Определение содержания меди в образцах в процессе окисления про/ водят методом атомно-абсорбционной спектроскопии. С этой целью исходную пробу объемом 4 мл центрифугируют в течение 15 мин при 3000 об/мин, органическую фазу разбавляют гексаном, водную фазу — водой.

Изменения концентрации катионов катализатора в водной фазе изучают методом градуировочной кривой на атомно-адсорбционном спектрометре ЗЫтайги «АА-6300» при длине волны X = 324,8 нм в пламени воздух-ацетилен.

Изменения концентрации катионов катализатора в органической фазе изучают методом добавок на атомно-адсорбционном спектрометре Апа1уШуепа «Соп1х АА 700» при А, = 324,8- газ — аргон.

2.4 Исследование дисперсных характеристик.

Определение критической концентрации мицеллообразования (ККМ) проводят по точке, соответствующей излому на кривых зависимостей свойств растворов от концентрации [100, 101, 104]. В настоящей работе использованы методы Ребиндера, рефрактометрический, метод измерения удельной электропроводности.

Согласно методу Ребиндера (метод наибольшего давления пузырька), исследуют поверхностное натяжение растворов ПАВ (о) и строят изотермы поверхностного натяжения от концентрации. Поверхностное натяжение определяют из соотношения: сг0-Р где (2.2) о, а — поверхностное натяжение воды, Н/м.

Параллельно, для исследования ККМ используют и рефрактометрический метод. По перегибу зависимости показателя преломления от концентрации исследованных растворов судят о величине ККМ. Показатель преломления растворов измеряют на рефрактометре ИРФ-22.

ККМ определяют также по графикам зависимости удельной электропроводности водных растворов от концентрации ПАВ. Измерение УЭП водных растворов ПАВ осуществляли с помощью кондуктометра Ш 8733 фирмы Наппа.

Определение размера капель эмульсии и характеристику распределения их по размерам проводят микроскопическим методом [93]. Пробу разбавляют 10%-ным раствором желатины, переносят на предметное стекло и исследуют с помощью микроскопа МИКМЕД-1 фирмы «ЛОМО». Радиус капель рассчитывают, пользуясь ценой деления шкалы окулярной сетки.

Средний радиус капли (мкм) определяют по формуле: Г = + ГДе я: — цена деления шкалы окулярной сетки при данном увеличении, мкмп — число делений шкалы, в которое укладывается капля.

Затем подсчитывают процентное содержание капель () по отношению к их общему количеству по формуле: а = ~Ш (2.4).

ЕМ где.

N — количество капель данного размера;

ЕЫ — суммарное число капель.

По полученным данным стоят зависимость г=/(0). Эквивалентный радиус капель, соответствует максимальному количеству капель определенного размера в данной дисперсной системе (гмакс).

Определение толщины поверхностного слоя ПАВ рассчитывают по формуле: о ЛоМ.

8 = —-, где Р.

8 — толщина поверхностного слоя ПАВ, м;

Г&bdquo- - предельная адсорбция, моль/м ;

Ммолярная масса ПАВ, г/мольо р — плотность ПАВ, при, г/м.

Предельную адсорбцию находят по изотермам адсорбции, построенным с учетом уравнения Гиббса:

С da.

Г ——, где.

RTdC.

Г — адсорбция, моль/м — л.

С — концентрация ПАВ, моль/м.

2.5 Статистическую обработку результатов проводят с применением пакета прикладных программ Statistics for Windows.

Экспериментальные данные получены в 3−6 повторностях. Статистически обработанные данные представлены в виде M±SD, где М — среднее арифметическое, SD — стандартное отклонение.

Глава 3.

ХАРАКТЕРИСТИКА МОДЕЛЬНОЙ ВОДНО-ЛИПИДНОЙ СИСТЕМЫ.

3.1 Выбор компонентного состава модельного субстрата.

Подбор компонентов осуществлялся на основе известных данных о составе биомембран.

Как известно, липиды в живой клетке и биологическом материале сосредоточены в биомембранах [30- 52- 54−58]. Состав липидов биомембран очень разнообразен и зависит от многих факторов. Тем не менее известно [52- 37], что олеиновая, линолевая, стеариновая, пальмитиновая кислоты входят в состав большинства известных типов липидов всех живых организмов.

Поэтому, в качестве липидного компонента использована смесь эфиров жирных кислот оливкового масла.

На рис. 3.1 представлена хроматограмма по полному ионному току образца синтезированного липидного субстрата. Сравнение экспериментальных спектров с библиотечными позволило идентифицировать состав пробы. Следует отметить, что экспериментальные спектры совпали на 90% с библиотечными данными, что свидетельствует о правильности идентификации. эг4 эо4 ггч во 4 о-=.

65-: В 5 й в°-= а.

5 404 зз 4 э—.

Т1те.

Рис. 3.1. Хроматограмма липидного субстрата (ГХ-МС).

В табл. 3.1 представлен компонентный состав модельного липидного субстрата.

Показать весь текст

Список литературы

  1. H.H. Цепные реакции. М.: Наука, 1986. 535 с.
  2. Н.М. Кинетика и механизм реакций жидкофазного окисления углеводородов //Известия АН СССР. Сер. хим. 1974. № 5. С. 1056−1072.
  3. Н. М. Кнорре Д.Г. Курс химической кинетики. М.: Высшая школа. 1984. 400 с.
  4. Н.М. Химическая и биологическая кинетика // Успехи химии. -1981. Т. 50. № 10. С. 1721−1809.
  5. Н.М., Денисов Е. Т., Майзус З. К. Цепные реакции окисления углеводородов в жидкой фазе. М.: Наука, 1965. 375 с.
  6. Е. Т. Саркисов О.М., Лихтенштейн Г. И. Химическая кинетика: Учебник для вузов. М.: Химия, 2000. 568 с.
  7. Van der Vlugt J.I., Meyer F. Homogeneous copper-catalyzed oxidations // Top Organomet Chem. 2007. Vol. 22. P- 191−240.
  8. Uchida K., Kawakishi S. Reaction of a histidyl residue analogue with hydrogen peroxide in the presence of copper (II) ion // J. Agrie. Food Chem. 1990. Vol. 38. P. 660−664.
  9. Ю.Филиппова Т. В., Либерова Т. В., Милаева Е. Р., Копраненков В. Н., Кузнецов М. В. Особенности действия фталоцианинов и тетраазапорфинов металлов в реакциях распада гидропероксидов // Кинетика и катализ. 1995. Т. 36. № 2. С. 232−238.
  10. П.Кокшарова Т. В., Химич И. С. Каталитическая активность координационных соединений 3¿-/-металлов с дифенилтиокарбазидом // Журн. общ. хим. 2002. Т. 72. № 8. С. 1261−1262.
  11. Decker E.A., McClements D.J. Transition metal and hydroperoxide Interactions. // Int. News Fats, Oils and Relat. Mater. 2001. Vol. 12. №. 3. P. 251−256.
  12. З.Журавлева JI.А. Разработка и оценка эффективности кинетических моделей тестирования биоантиоксидантов: дисс. на соиск. уч. степ, к.х.н. Тюмень, 2006. 175 с.
  13. H.Chufan Е.Е., Puiu S.C., Karlin K.D. Heme-copper/dioxygen adduct formation, properties, and reactivity. // Acc. Chem. Res. 2007. Vol. 40. P. 563−572.
  14. Benedet J.A., Shibamoto T. Role of transition metals, Си (II), Fe (II), Cr (II), Pb (II), and Cd (II) in lipid peroxidation // Food Chem. 2001. Vol. 107 № 1. P. 165−168.
  15. O.H. Гомогенный металлокомплексный катализ. Кинетические аспекты. М.: Академкнига, 2008. 918 с.
  16. Liakopoulou-Kyriakides M., Hadjispyrou S., Zarkadis A. Cu (Ill)-Polypeptide complexes exhibiting SOD-like activity // Amino Acids. 1999. Vol. 16. P. 415 423.
  17. JI.P., Хайруллина B.P., Герчиков А. Я., Саффиулин Р.Д, Баймура-това Г. Р. Кинетические закономерности жидкофазного окисления 1,4-диоксана в присутствии ингибиторов // Кинетика и катализ. 2008. Т. 49. № 3. С. 387−391.
  18. Huang D., Ou В., Prior R.L. The chemistry behind antioxidant capacity assays // J. Agric. Food Chem. 2005. Vol. 53. № 6. P. 1841−1856.
  19. E.T., Эмануэль H.M., Азатян B.B. Ингибирование цепных реакций. Черноголовка: ИХФ РАН, 1997. 370 с.
  20. Roginsky V.A., Lassi Е.А. Review of methods to determine chain-breaking activity in food // Food chem. 2005. Vol. 92 № 2. P. 235−254.
  21. Roginsky V.A. Chain-breaking antioxidant activity of natural polyphenols as determined during the chain oxidation of methyl linoleate in Triton X-100 micelles // ABB. 2003. Vol.414. P. 261−270.
  22. Е.Т. Константы скорости гемолитических жидкофазных реакций. М.: Наука, 1971.711 с.
  23. Denisov Е.Т., Denisova T.G. Handbook of antioxidants: bond dissociation energies, rate constants, activation energies and enthalpies of reactions. N.Y., Boca Ration: CRC Press, 2000. 289 p.
  24. Denisov E.T., Denisova T.G., Pokidova T. S. Handbook of Free Radical Initiators Wiley. New York, 2003. 289 p.
  25. JI.A., Ушкалова B.H. Исследование антиоксидантных свойств капотена кинетическим методом // Химико-фармацевтический журнал. Москва: изд-во ФОЛИУМ, 2006. Т. 40. № 11. С. 11−14.
  26. Е.Б., Зенков Н. К., Шергин С. М. Биохимия окислительного стресса. Оксиданты и антиоксиданты. Новосибирск, 1994. 203 с.
  27. В.Н., Ионидис Н. В., Кадочникова Г. Д., Деева З. М. Контроль перекисного окисления липидов. Новосибирск: Изд-во НГУ, 1993. 181 с.
  28. Н.М., Храпова Н. Г., Бурлакова Е. Б. Межмолекулярные взаимодействия природных липидов в процессе окисления // Химическая физика. 1995. Т. 14. № 11. С. 29—46.
  29. З.С., Коверзанова Е. В., Касаикина О. Т., Кашкай A.M. Влияние поверхностно-активных веществ на распад гидропероксида кумила. // Нефтехимия. 2001. Т. 41. № 3. С. 222−227.
  30. Silvestre М.Р.С., Chaiyasit W., Brannan R.G., McClements J.D., Decker E.A. Ability of surfactant headgroup size to alter lipid and antioxidant oxidation in oil-in-water emulsions // J. Agric. Food Chem. 2000. Vol. 48. № 6. P. 20 572 061.
  31. O.T., Карташева 3.C., Писаренко JI.M. Влияние поверхностно-активных веществ на жидкофазное окисление углеводородов и липидов // Журн. общ. хим. 2008. Т. 78. № 8. С. 1298−1309.
  32. В.Н., Иоанидис Н. В., Кадочникова Г. Д. и др. Свободно-радикальное окисление липидов в эксперименте и клинике: Сб. науч. тр. Ч. 1. Тюмень: Изд-во ТюмГУ, 1997. 132 с.
  33. Renthall R., Velasquez D. Self-association of helical peptides in a lipid environment // J. of Protein Chem. 2002. Vol. 21. № 4. P. 255−264.
  34. Fantini J. How sphingolipids bind and shape proteins: molecular basis of lipid-protein interactions in lipid shells, rafts and related biomembrane domains // CMLS. Vol. 60. №. 6. 2002. P. 1027−1032.
  35. H.M., Лясковская Ю. Н. Торможение процессов окисления жиров. М.: Пищепромиздат, 1961. 360 с.
  36. Frankel E.N. Secondary products of lipid oxidation // Chem. And Phys of lipids. 1987. Vol. 4. № 24. P. 73−85.
  37. Frankel E.N. Chemistry of free radical and singlet oxidation of lipids // Chem. and Phys. of Lipids. 1987. Vol. 44. № 24. P. 73−85.
  38. Aprea E., Biasioli F., Sani G., Cantini C., Mark T.D., Gasperi F. Proton transfer reaction-mass spectrometry headspace analysis for rapid detection of oxidative alteration of olive oil // J. Agric. Food Chem. 2006. Vol. 54. № 20. P. 76 357 640.
  39. Frankel E.N., Neff W.E., Plattner R.D. Chemical lonization-mass spectrometry of secondary oxidation products from methyl linoleate and linolenate // Lipids. 1986. Vol. 21 № 5. P. 333−337.
  40. Morita M., Tokita M. Courses of aldehyde formation during linoleate autoxidation and some information about precursors and mechanism // Chem. and Phys. of Lipids. 1993. Vol. 66 № 1−2. P. 13−22.
  41. Blank I., Lin J., Vera F.A., Welti D.H., Fay L.B. Identification of potent odorants formed by autoxidation of arachidonic acid: structure elucidation and synthesis of (E, Z, Z)-2,4,7-tridecatrienal // J. Agric. Food Chem. 2001. Vol. 49 № 6. P. 2959−2965.
  42. Chen J. F., Tai C.-Y., Chen Y. C., Chen В. H. Effects of conjugated linoliec acid on the degradation and oxidation stability of model lipids during heating and illumination // Food Chem. 2001. Vol. 72. P. 199−206.
  43. Biaglow J. E., Manevich Y., Uckun F., Held K.D. Quantitation of hydroxyl radicals produced by radiation and copper-linked oxidation of ascorbate by 2-deoxy-o-ribose method // Free Radical Biology and Medicine. 1997. Vol. 22. P.1129−1138.
  44. И.В., Клецкий M.E., Внуков B.B., Корниенко И. Е., Олехнович Л. П. Межмолекулярные комплексы активных форм кислорода с аминокислотами. Теоретическое изучение // Журн. общ. хим. 2002. Т. 72. № 8. С.1325−1329.
  45. Rufian-Henares J.A., Delgado-Andrade С., Morales F.J. Assessing the antioxidant and prooxidant activity of phenolic compounds by means of their copper reducing activity // Eur Food Res Technol. 2006. Vol. 223. P. 225−231.
  46. Cho Y. J. Ability of chelators to alter the physical location and prooxidant activity of iron in oil-in-water emulsions // J. Food Sci. 2003. Vol. 68. P. 19 521 957.
  47. P. Биомембраны: молекулярная структура и функции / пер. с англ. М.: Мир, 1997. 624 с.
  48. А.Г., Киселева И. С. Физиология и молекулярная биология мембран клеток. М.: Академия, 2008. 585 с.
  49. Loura L.M.S., Ramalho J.P.P. Fluorescent membrane probes' behavior in lipid bilayers: insights from molecular dynamics simulations // Biophysical Reviews. 2009. Vol. 1. № 3. P. 141−148.
  50. Сим Э. Биохимия мембран / пер. с англ. М.: Мир, 1985. 110 с.
  51. С.Ф. Физикохимия мембранных процессов. М.: Химия, 1988. 240 с.
  52. Banaszak Holl М.М. Cell plasma membranes and phase transitions / in book Phase transitions in cell biology. 2008. P. 171−181.
  53. B.H. Стабильность липидов пищевых продуктов. М.: Агро-промиздат, 1988. 153 с.
  54. Pencer J., Jackson A., Kucerka N., Nieh М-Р., Katsaras J. The influence of curvature on membrane domains // European Biophysics J. 2008. Vol. 37. № 5. P. 665−671.
  55. Kazachkov M., Chen Q., Wang L. Zou J. Substrate preferences of a lysophosphatidylcholine acyltransferase highlight its role in phospholipid remodeling // Lipids. 2008. Vol. 43. №. 10. P. 895−902.
  56. B.B., Журавлева JI.A., Ушкалова B.H. Моделирование процессов окисления липидов биомембран // Вестник ННГУ им. Н. И. Лобачевского. 2008. № 5. С. 31−38.
  57. КШс N., Ozden M., Kalkan A. Lipid peroxidation levels in patients with acute brucellosis // Clinical and Exp. Medicine. 2005. Vol. 5. № 3. P. 117−121.
  58. Ю.А. Свободные радикалы в биологических системах // Сорос. образоват. журн. 2000. С. 13−19.
  59. А.И. Микросомальное окисление. М.: Наука, 1975. 326 с.
  60. Bradberry S. Copper//Medicine. 2007. Vol. 35 № 11. P. 608−616.
  61. Г. А., Нейланд Я. А. Биологическая роль меди. Рига: Зинатне, 1990. 189 с.
  62. Burns C.S., Aronoff-Spencer E., Legname G., Prusiner S.B., Antholine W.E., Gerfen G.J., Peisach J., Millhauser G.L. Copper coordination in the full-length, recombinant prion protein / Biochemistry. 2003. Vol. 42. № 22. P. 6794−6803.
  63. Rees M.D., Kennett E.C., Whitelock J.M., Davies MJ. Oxidative damage to extracellular matrix and its role in human pathologies // Free Radical Biology and Medicine. 2008. Vol. 44. № 12. P. 1973−2001.
  64. Nagababu E., Mohanty J.G., Bhamidipaty S., Ostera G.R., Rifkind J.M. Role of the membrane in the formation of heme degradation products in red blood cells //Life Sciences. 2010. Vol. 86. № 3−4. P. 133−138.
  65. Gorelik S., Kanner J. Oxymyoglobin oxidation and membrane lipid peroxidation initiated by iron redox cycle: prevention of oxidation by enzymicand nonenzymic antioxidants // J. Agric. Food Chem. 2001. Vol. 12. P. 59 455 950.
  66. В.Ф., Шаповал Г. С., Миронюк И. Е. Исследование антирадикальной и антиокислительной активности биологически активных карбо-новых кислот. // Журн. общ. хим. 2002. Т. 72. № 5. С. 828−831.
  67. Fisher А.Е.О., Naughton D.P. Metal ion chelating peptides with superoxide dismutase activity // Biomedecine & Pharmacotherapy. 2005. Vol. 595 № 4. P. 158−162.
  68. Kitazawa M., Iwasaki K. Reduction of ultraviolet light-induced oxidative stress by amino acid-based iron chelators // BBA General Subjects. 1999. Vol. 1473. P. 400−408.
  69. Lucio M., Nunes C., Gaspar D., Ferreira H., Reis S. Antioxidant activity of vitamin E and Trolox: understanding of the factors that govern lipid peroxidation studies in vitro // Food Biophysics. 2009. Vol. 4. № 4. P. 312−320.
  70. Ge?l H., Hoppe P.P., Elmadfa I. Reduzierung der lipidperoxidation in gefroren gelagertem forellenfilet durch supplementierung des futters mit vitamin E // Zeitschrift fur Ernahrungswissenschaft. 1995. Vol. 34. № 3. P. 198−205.
  71. Tang J., Faustman C., Hoagland T.A., Mancini R.A., Seyfert M., Hunt M.C. Interactions between mitochondrial lipid oxidation and oxymyoglobin oxidation and the effects of vitamin E // J. Agric. Food Chem. 2005. Vol. 53. № 15. P. 6073−6079.
  72. Hidalgo F.J., Leoan M.M., Zamora R. Effect of tocopherols in the antioxidative activity of oxidized lipid-amine reaction products. // J. Agric. Food Chem. 2007. Vol. 55. № 11. P. 4436−4442.
  73. Boon C.S., Xu Z., Yue X., McClements D.J., Weiss J., Decker E.A. Factors affecting lycopene oxidation in oil-in-water emulsions // J. Agric. Food Chem. 2008. Vol. 56. № 4. P. 1408−1414.
  74. Pekkarinen S.S., Stockmann H., Schwarz K., Heinonen I.M., Hopia A.I. Antioxidant activity and partitioning of phenolic acids in bulk and emulsified methyl linoleate // J. Agric. Food Chem. 1999. Vol. 47. 3036−3043.
  75. Medina I., Lois S., Alcantara D., Lucas R., Morales J.C. Effect of lipophilization of hydroxytyrosol on its antioxidant activity in fish oils and fish oil-in-water emulsions // J. Agric. Food Chem. 2009. Vol. 57. № 20. P. 97 739 779.
  76. Frankel E. N., Huang S.-W. Evaluation of antioxidant activity of rosemary extracts, carnosol and carnosic acid in bulk vegetable oils and fish oils and their emulsion // J. Sci. Food Agric. 1996. Vol. 72. P. 201−208.
  77. Yu В., Lu Z.-X., Bie X.-M., Lu F.-X., Huang X.-Q. Scavenging and antifatigue activity of fermented defatted soybean peptides // Eur Food Res Technol. 2008. Vol. 226. P. 415−421.
  78. Demetriades K., McClements D. J. Influence of pH and heating on physicochemical properties of whey protein-stabilized emulsions containing a nonionic surfactant // J. Agric. Food Chem. 1998. Vol. 46. P. 3936−3942.
  79. Dickinson E., Hong S-T. Surface coverage of p-lactoglobulin at the oil-water interface: influence of protein heat treatment and various emulsifiers // J. Agric. Food Chem. 1994. Vol. 42. P. 1602−1606.
  80. Мицеллообразование, солюбилизация и микроэмульсии / под ред. К. Мит-тела. М.: Мир, 1980. 340 с.
  81. A.A., Зайченко Л. П., Файнгольд С. И. Поверхностно-активные вещества. Синтез, анализ, применение. Л.: Химия, 1988. 200 с.
  82. A.A., Боброва Л. Е., Зайченко Л. П. Поверхностные явления и поверхностно-активные вещества: Справочник / под ред. A.A. Абрамзона и Е. Д. Щукина. 2-е изд., испр. и доп. Л.: Химия, 1984. 392 с.
  83. М.В. Свойства прямых мицелл и микроэмульсий в трехкомпо-нентной системе вода-толуол-ТВИН-80: дисс. на соиск. уч. степ. канд. хим. наук. М., 2005. 126 с.
  84. Новый справочник химика и технолога. Электродные процессы. Химическая кинетика и диффузия. Коллоидная химия. СПб.: AHO НПО «Профессионал», 2005. 838 с.
  85. De S., Aswal V.K., Goyal P. S., Bhattacharya S. Role of spacer chain length in dimeric micellar organization, small angle neutron scattering and fluorescence studies // J. Phys. Chem. 1996. Vol. 100. P. 11 664−11 671.
  86. А.И., Гринин А. П., Куни Ф. М., Щекин A.K. Наноструктурные модели мицелл и домицеллярных агрегатов // Журн. общ. хим. 2002. Т. 72 № 4. С. 651−666.
  87. С.Н. Поверхностно-активные вещества в анализе. Основные достижения и тенденции развития. // Журн. аналит. хим. 2000. Т. 55 № 7. С.679−686.
  88. Я.О. Термодинамические закономерности мицеллообразова-ния в водных растворах поверхностно-активных веществ // Журн физ. хим. 2008. Т. 82. № 2. С. 276−282.
  89. Р.С., Григорян Дж.Д. Распределение водорастворимых мономеров в водно-толуольной системе и их влияние на физико-химические свойства системы // Журн. физ. хим. 2002. Т. 76. № 5. С. 846−850.
  90. Микроэмульсии: Структура и динамика: пер. с англ. / под ред. С. Фри-берга и П. Ботореля. М.: Мир, 1990. 320 с.
  91. Е., Фендлер Дж. Мицеллярный катализ в органических реакциях: кинетика и механизм / Методы и достижения в физико-органической химии. М.: Мир, 1973. С. 222−361.
  92. Baxova L., Cibulka R., Hampl F. Organocatalytic sulfoxidation in micellar systems containing amphiphilic flavinium salts using hydrogen peroxide as a terminal oxidant // J. of Molecular Catalysis A: Chemical. 2007. Vol. 277. № 1−2. P. 53−60.
  93. И.В., Мартинек К., Яцимирский А. К. Физико-химические основы мицеллярного катализа. //Успехи химии. 1973. Т.42. № 10. С. 17 291 756.
  94. К., Яцимирский А. К., Левашов А. В., Березин И. В. Кинетическая теория и механизмы мицеллярных эффектов в химических реакциях. / Мицеллообразование, солюбилизация и микроэмульсии. М.: Мир, 1980. С.224−246.
  95. А.К., Осипов А. П., Мартинек К., Березин И. В. Влияние поверхностно-активных веществ на кинетику реакции в водном растворе.
  96. Распределение реагентов между мицеллярной и водной фазами. // Колло-идн. журн. 1975. Т. 37. № 3. С.526−532.
  97. Л.П., Паничев С. А., Турнаева Е. А., Турнаев В. А., Юффа А. Я. Кинетические аспекты окисления алкилароматических углеводородов в эмульсиях// Кинетика и катализ. 1996. Т. 37. № 3. С. 402—407.
  98. Yasuhiro F. Effect of droplet size distribution on reaction heat in a liquidliquid heterogeneous reaction process // J. of Hazardous Materials. 2004. Vol. 115. № 1−3. P. 111−114.
  99. Fiamegos Y.C., Stalikas C.D. Phase-transfer catalysis in analytical chemistry //Analytica Chimica Acta. 2005. Vol. 550. № 1. P. 1−12.
  100. C.C. Механизм межфазного катализа. M.: Наука, 1984. 264 с.
  101. Межфазный катализ. Химия, катализаторы и применение. / под ред. Старкса Ч. М. М.: Химия, 1991. 158 с.
  102. М.М. Термодинамический анализ влияния низкомолекулярных поверхностно активных веществ на структурообразующие свойства белков: авт. дисс. на соиск. уч. степ. к. х. н. Москва, 2005. 24 с.
  103. Н.Г., Арутюнян Л. Р., Григорян В. В., Арутюнян Р. С. Влияние аминокислот на критическую концентрацию мицеллообразования поверхностно-активных веществ различной природы // Коллоид, журн. 2008. Т. 70. № 5. С. 715−717.
  104. Singh S.K., Kundu A., Kishore N. Interactions of some amino acids and glycine peptides with aqueous sodium dodecyl sulfate and cetyltrimethylammonium bromide at T=298.15 K: a volumetric approach // J. Chem. Therm. 2004. Vol. 36. P. 7−16.
  105. Lark B.S., Patyar P., Banipal T.S., Kishore N. Densities, partial molar volumes, and heat capacities of glycine, Z-alanine and ?-leucine ia aqueus magnesium chloride solurions at different temperatures // J. Chem. Eng. Data. 2004. Vol. 49. P. 553−565.
  106. Dickinson E., James J.D. Influence of competitive adsorption on flocculation and rheology of high-pressure-treated milk protein-stabilized emulsions // J. Agric. Food Chem. 1999. Vol. 47 № 1. P. 25−30.
  107. Badarayani R., Kumar A. Effect of tetra-n-alkylammonium bromides on the volumetric properties of glycine, alanine and glycylglycine at T=298.15 К // J. of Chem. Therm. 2004. Vol. 36. P. 49−58.
  108. Lark B.S., Patyar P., Banipal T.S. Temperature effect on the viscosity and heat capacity behaviour of some amino acids in water and aqueous magnesium chloride solutions. // J. of Chem. Therm. 2007. Vol. 39. № 3. P. 344−360.
  109. Lark B.S., Patyar P., Banipal T.S. Thermodynamic studies on the interactions of diglycine with magnesium chloride in aqueous medium at different temperatures // J. of Chem. Therm. 2006. Vol. 38. № 12. P. 15 921 605.
  110. A.B., Елисеева T.B., Селеменев В. Ф., Крисилов А. В., Орос Г. Ю. Влияние боковых заместителей а-аминокислот на их сорбцию ка-тионообменной мембраной // Журн. физ. химии. 2009. Т. 83. № 10. С. 1948−1952.
  111. Е.В. Изыскание антиоксидантов в ряду производных тиобарбитуровой кислоты: авт. дисс. на соиск. уч. степ, к.х.н. Благовещенск, 1995. 20 с.
  112. В.Г. Модельные системы перекисного окисления липидов и их применение для оценки антиоксидантного действия лекарственных препаратов: авт. дисс. на соиск. уч. степ, к.б.н. Волгоград, 2001. 23 с.
  113. Park E.Y., Murakami Н., Matsumura Y. Effects of the addition of amino acids and peptides on lipid oxidation in a powdery model system // J. Agric. Food Chem. 2005. Vol. 53. № 26. P. 8334−8341.
  114. Elias R.J., McClements D.J., Decker E.A. Antioxidant activity of cysteine, tryptophan, and methionine residues in continuous phase p-lactoglobulin in oil-in-water emulsions. // J. Agric. Food Chem. 2005. Vol. 53. № 26. P. 1 024 810 253.
  115. McClements D.J., Decker E.A. Lipid oxidation in oil-in-water emulsions: impact of molecular environment on chemical reactions in heterogeneous food system. // J. Food Sci. 2000. Vol. 65. P. 1270−1282.
  116. Alaiz M., Zamora R., Hidalgo F.J. Addition of oxidized lipid/amino acid reaction products delays peroxidation initiated in a soybean oil // J. Agric. Food Chem. 1995. Vol. 43. P. 2698−2701.
  117. Kellerby S.S., McClements D.J., Decker E.A. Role of proteins in oil-in-water emulsions on the stability of lipid hydroperoxides // J. Agric. Food Chem. 2006. Vol. 54. № 20. P. 7879−7884.
  118. Keceli Т., Gordon M. H. Ferric ions reduce the antioxidant activity of the phenolic fraction of virgin olive oil // J. Food Sci. 2002. Vol. 3. P. 943−947.
  119. Nuchi C.D., McClements D.J., Decker E.A. Impact of Tween 20 hydroperoxides and iron on the oxidation of methyl linoleate and salmon oil dispersions // J. Agric. Food Chem. 2001. Vol. 49. № 10. P. 4912916.
  120. Mozuraityte R., Rustad Т., Storm I. The role of iron in peroxidation of polyunsaturated fatty acids in liposomes // J. Agric. Food Chem. 2008. Vol. 56 № 2. P. 537−543.
  121. Yuji H., Weiss J., Villeneuve P., Lopez Giraldo L.J., Figueroa-Espinoza MC., Decker E.A. Ability of surface-active antioxidants to inhibit lipid oxidationin oil-in-water emulsion // J. Agric. Food Chem. 2007. Vol. 55. № 26. P. 11 052−11 056.
  122. JI.А., Крайник B.B., Ушкалова B.H. Кинетические подходы к проблеме тестирования антиоксидантов. С. 2 Водно-липидная модель // Современные проблемы науки и образования. М.: Академия естествознания. 2008. № 3. С. 154−162.
  123. Л.М., Кондратович В. Г., Касаикина O.T. Влияние катион-ных поверхностно-активных веществ на окисление лимонена // Изв. РАН, Сер. Хим. 2004. №Ю. С. 2110−2113.
  124. HU М., McClements D.J., Decker Е.А. Impact of whey protein emulsifiers on the oxidative stability of salmon oil-in-water emulsions // J. Agric. Food Chem. 2003. Vol. 51. P. 1435−1439.
  125. Alamed J., Chaiyasit W., McClements D.J., Decker E.A. Relationships between free radical scavenging and antioxidant activity in foods // J. Agric. Food Chem. 2009. Vol. 57. № 7. P. 2969−2976.
  126. Frankel E.N., Huang S.-W., Aeschbach R., Prior A. Antioxidant activity of rosemary extract and its constituens, carnosic acid, carnosol, and rosemarinic acid, in bulk oils and oil-in-water emulsion // J. Agric. Food Chem. 1996. Vol. 44. P. 131−135.
  127. Frankel E. N., Huang S.-W., Kanner J., German J. B. Interfacial phenomena in the evaluation of antioxidants: bulk oils emulsions // J. Agric. Food Chem. 1994. Vol. 42. P. 1054−1059.
  128. Chen J.H., Ho C.-T. Antioxidant activities of caffeic acid and its related hydroxycinnamic acid compounds // J. Agric. Food Chem. 1997. Vol. 45. P. 2374−2378.
  129. Mei L., Choi S. J., Alamed J., Henson L., Popplewell M., McClements D. J., Decker E. A. Citral stability in oil-in-water emulsions with solid or liquid octadecane// J. Agrie. Food Chem. 2010. Vol. 58. № 1. P. 533−536.
  130. Andjelkovic M., Van Camp J., De Meulenaer В., Depaemelaere G., Socaciu
  131. C., Verloo M., Verhe R. Iron-chelation properties of phenolic acids bearing catechol and galloyl groups //Food Chem. 2006. Vol. 98. P. 23−31.
  132. Chvatalova K., Slaninova I. Brezinova L., Slanina J. Influence of dietary phenolic acids on redox status of iron: ferrous iron autoxidation and ferric iron reduction. Food Chem. 2008. Vol. 106. P. 650−660.
  133. И.В. Антиоксидантная активность полифенолов при окислении стирола и метиллинолеата в растворе: авт. на соиск уч. степ канд хим наук. Иваново, 16 с.
  134. Kristinova V., Mozuraityte R., Storr0 I., Rustad T. Antioxidant activity of phenolic acids in lipid oxidation catalyzed by different prooxidants // J. Agrie. Food Chem. 2009. Vol. 57. P. 10 377−10 385.
  135. Schwarz K., Frankel E.N., German J.B. Partition behaviour of antioxidative phenolic compounds in heterophasic systems // Fett / Lipid. 1996. Vol. 3. P. 115−121.
  136. Huang W. S., Frankel E. N. Antioxidant activity of tea catechins in different lipid systems //J. Agrie. Food Chem. 1997. Vol. 45. P. 3033−3038.
  137. Rogers M.S., Hurtado-Guerrero R., Firbank S.J., Halcrow M.A., Dooley
  138. D.M., Phillips S.E., Knowles P. F, McPherson MJ. Cross-link formation of the cysteine 228-tyrosine 272 catalytic cofactor of galactose oxidase does not require dioxygen // Biochemistry. 2008. Vol. 47. № 39). P. 10 428−10 439.
  139. Boswell C.A., Sun X., Niu W., Weisman G.R., Wong E.H., Rheingold A.L., Anderson C.J. Comparative in vivo stability of copper-64-labeled crossbridged and conventional tetraazamacrocyclic complexes // J. Med. Chem. 2004. Vol. 47. № 6. P. 1465−1474.
  140. Colaneri M.J., Vitali J., Peisach J. Aspects of structure and bonding in copper-amino acid complexes revealed by single-crystal EPR/ENDOR spectroscopy and density functional calculations // J. Phys. Chem. A. 2009. Vol. 113. P. 5700−5709.
  141. Л.А., Дробилова O.M. Термодинамические параметры реакций комплексообразования иона меди(П) с (3-аланином в водном растворе // Журн. физ. хим. 2008. Т. 82. № 9. С. 1729−1733.
  142. Л.А., Дробилова О. М. Термохимия реакций комплексообразования ионов 3¿-/-переходных металлов с L-серином в водном растворе // Журн. физ. хим. 2009. Т. 83. № 11. С. 2030−2038.
  143. О.В., Болотин С. Н., Панюшкин В. Т. Комплексообразование меди (II) с L- DL-треонином по данным спектроскопии ЭПР // Журн. общ. Хим. 2004. Т. 74. № 8. С. 1388−1400.
  144. С.Н., Панюшкин В. Т. Исследование методом ЭПР комплексообразования меди (II) с аминокислотами при различных рН // Журн. общ. хим. 1998. Т. 68. № 6. С. 1034−1038.
  145. О.В. Некоторые особенности комплексообразования оксиа-минокислот с медью (II) по данным спектров ЭПР: авт. на соиск. уч. степ, к.х.н. Краснодар, 2003. 22 с.
  146. В.П., Зайцева Г. А., Гарфутдинова Л. В. Взаимодействие Си (II) с глицином и гистидином в воде // Журн. физ. хим. 1995. Т. 69. № 3. С. 506−510.
  147. Н.Н. Координационная химия ¿-/-и/- элементов с полидентант-ными лигандами: синтез, строение и свойства: авт. на соиск. уч. степ, к.х.н. Краснодар, 2007. 31 с.
  148. С.Н., Буков Н. Н., Волынкин В. А., Панюшкин В. Т. Координационная химия природных аминокислот. М.: Изд-во ЛКИ, 2008. 240 с.
  149. Altunl Y., Koseoglu F. Stability of copper (II), nickel (II) and zinc (II) binary and ternary complexes of histidine, histamine and glycine in aqueous solution//J. of Solution Chem. 2005. Vol. 34. № 2. P. 213−231.
  150. Н.П., Фролов В. Ю., Колоколов Ф. А., Болотин С. Н., Панюш-кин В.Т. Синтез и исследование комплексных соединений меди (И) с ас-парагиновой кислотой, серином и валином // Журн. общ. хим. 2005. Т. 75 №т4. С. 541−544.
  151. Ю.Н. Химия координационных соединений. М.: Высшая школа, 1985. 455 с.
  152. И.Б. Строение и свойства координационных соединений. Введение в теорию. JL: Химия, 1971. 312 с.
  153. К.Б., Крисс Е. Е., Гвяздовская B.JI. Константы устойчивости комплексов металлов с биолигандами: справочник. Киев: Наук. Думка, 1979. 228 с.
  154. Я. Применение комплексов в аналитической химии. М.: Мир, 1979. 376 с.
  155. А.Д., Васильченко И. С., Гарновский Д. А. Современные аспекты синтеза металлокомплексов. Основные лиганды и методы. Ростов-на-Дону: ЛаПО, 2000. 355 с.
  156. А.А., Корниенко И. В. Полярографический метод в изучении антиоксидантной активности аминокислот и белков // Журн. общ. хим. 2001. Т.71. № 8. С. 1387−1390.
  157. Pazos М., Andersen M.L., Skibsted L.H. Amino acid and protein scavenging of radicals generated by iron/hydroperoxide system: an electron spin resonance spin trapping study // J. Agric. Food Chem. 2006. Vol. 54. P. 10 215−10 221.
  158. Park E.Y., Morimae M., Matsumura Y., Nakamura Y., Sato K. Antioxidant activity of some protein hydrolysates and their fractions with different isoelectric points // J. Agric. Food Chem. 2008. Vol. 56. № 19. p. 9246−9251.
  159. Faraji H., McClements DJ., Decker E.A. Role of continuous phase protein on the oxidative stability of fish oil-in-water emulsions // J. Agric. Food Chem. 2004. Vol. 52. P. 4558—4564.
  160. Hidalgo F.J., Leoa M.M., Zamora R. Antioxidative activity of amino phospholipids and phospholipid/amino acid mixtures in edible oils as determined by the rancimat method // J. Agric. Food Chem. 2006. Vol. 54. № 15. P. 5461−5467.
  161. Общий практикум по органической химии / под ред. А. Н. Коста. М.: Мир, 1965. 678 с.
  162. М.И., Калинкин И. П. Практическое руководство по фотометрическим методам анализа. 5-е изд., перераб. Л.: Химия, 1986. 432 с.
  163. Рао Ч. Н. Электронные спектры в химии. М.: Мир, 1964. 264 с.
  164. О.В. Электронные спектры в органической химии. 2-е изд., перераб. Л.: Химия, 1985 248 с.
  165. Справочник химика / под ред. Б. П. Никольского. Л.: Химия, 1967. Т. 4. 920 с.
  166. В.В., Ушкалова В. Н. Исследование механизма каталитического окисления водно-липидного субстрата // Журн. физ. хим. 2010. Т. 84. № 5. С. 998−1000.
  167. В.В., Ушкалова В. Н., Катанаева В. Г. Спектроскопическое исследование процессов окисления в присутствии комплексов меди / Вестник ННГУ им. Н. И: Лобачевского. 2009. № 6. С. 101−105.
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?