Закономерности функционирования ферментных систем микроорганизмов как биокатализаторов в амперомерических биосенсорах
Диссертация
Актуальность проблемы. Ежегодно в окружающую среду выбрасываются сотни новых загрязняющих веществ с неизученным влиянием на человека. Ужесточение требований к их нормированию приводит к необходимости проведения сложных и дорогостоящих исследований по экологической безопасности. В экологии и токсикологии предпочтительно комплексное использование различных методов анализа: физико-химических… Читать ещё >
Содержание
- СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
- ГЛАВА 1. БИОЭЛЕКТРОХИМИЧЕСКОЕ ОКИСЛЕНИЕ УГЛЕВОДОВ И СПИРТОВ УКСУСНОКИСЛЫМИ БАКТЕРИЯМИ вШСОМОВАСТЕК ОХУОАЫБ
- 1. 1. Потенциал бактерий СЫсопоЬаМег как биокатализаторов при разработке медиаторных биосенсоров и биотопливных элементов: обоснование выбора объекта исследований
- 1. 1. 1. Физиолого-биохимические особенности уксуснокислых бактерий рода аисопоЬас1ег
- 1. 1. 1. 1. Особенности дыхательной цепи
- 1. 1. 1. 2. Метаболизм углеводов и спиртов
- 1. 1. 1. 3. Характеристика мембранных дегидрогеназ
- 1. 1. 2. Биоэлектрохимические системы на основе уксуснокислых бактерий ЫисопоЬаМег. обзор разработанных устройств и подходов к их созданию
- 1. 1. 2. 1. Биосенсоры на основе СЫсопоЬасгег
- 1. 1. 2. 2. Микробные топливные элементы на основе Glucon.oba.cter
- 1. 1. 1. Физиолого-биохимические особенности уксуснокислых бактерий рода аисопоЬас1ег
- 1. 1. Потенциал бактерий СЫсопоЬаМег как биокатализаторов при разработке медиаторных биосенсоров и биотопливных элементов: обоснование выбора объекта исследований
- 1. 2. Восстановление искусственных акцепторов электронов ферментными системами целых клеток аисопоЬаМег
- 1. 2. 1. Редокс-красители для определения их метаболической активности микроорганизмов: обоснование методики исследования
- 1. 2. 2. Конкуренция кислорода и искусственных акцепторов за электроны мембранных оксидоредуктаз СЫсопоЪаШг охуйат
- 1. 2. 3. Эффективность искусственных акцепторов электронов при окислении глюкозы бактериями СЫсопоЬасгег охуйат
- 1. 2. 4. Анализ субстратной специфичности бактерий Glucon.oba.cter охуйат при взаимодействии с искуссвенным акцептором электронов
- 1. 2. 5. Сравнительная характеристика целых клеток С1исопоЬас1ег охус1ат и их ферментных фракций как биокатализаторов окисления глюкозы и этанола в присутствии искусственных акцепторов электронов
- 1. 3. Анализ процессов биоэлектрохимического окисления субстратов уксуснокислыми бактериями аисопоЬаМег охуйат (медиаторный биоэлектрокатализ)
- 1. 3. 1. Оценка возможности использования редокс-соединений как медиаторов переноса электронов в биосенсорах на основе бактерий СШсопоЬаШг охус1ат методом вольтамперометрии
- 1. 3. 2. Субстратная специфичность бактерий аисопоЪасгег охус1ат в условиях биоэлектрохимического окисления при участии медиаторов электронного транспорта
- 1. 3. 3. Моделирование процессов электрокаталитического окисления глюкозы иммобилизованными бактериями Glu.conoba.cter охуйат
- 1. 3. 3. 1. Скоростьопределяющие стадии окисления субстратов иммобилизованными на поверхности электрода бактериями в условиях функционирования медиаторного биосенсора
- 1. 3. 3. 2. Биоэлектрокаталитическое окисление субстратов в системах с иммобилизованными бактериями — механизм «пинг-понг». Эффективность медиаторов
- 2. 1. Методы анализа капролактама в водных средах и биохимические основы деградации капролактама и его олигомеров (обзор): отправные точки для исследования
- 2. 1. 1. Физико-химические методы определения 8-капролактама в водных средах
- 2. 1. 2. Биодеградация капролактама и олигомеров аминокапроновой кислоты
- 2. 1. 2. 1. Биохимические и генетические аспекты катаболизма капролактама
- 2. 1. 2. 2. Ферменты деградации нейлоновых олигомеров
- 2. 3. 1. Дыхательная активность бактерий-деструкторов капролактама в присутствии олигомеров
- 2. 3. 2. Трансформация олигомеров бактериями-деструкторами капролактама: масс-спектрометрическое исследование
- 3. 3. 3. со-Трансаминазная активность бактерий в присутствии 6-аминогексаноата и димера 6-аминогексаноата
- 3. 1. Микробные биосенсоры в экотоксикологии: принципы функционирования и практическое применение (обзор)
- 3. 1. 1. Биосенсоры для оценки токсичности среды и определения токсикантов
- 3. 1. 2. БПК-биосенсоры
- 3. 2. Микробный сенсор для мониторинга содержания капролактама в стоках
- 3. 2. 1. Макет микробного сенсор кюветного типа для детекции капролактама
- 3. 2. 2. Макет биосенсора проточно-инжекционного типа
- 3. 3. Микробный биосенсор и методика для оценки токсичности продукции бытового назначения
- 3. 4. Медиаторные биосенсоры на основе уксуснокислых бактерий и выделенных из них мембранных фракций для определения суммарного содержания Сахаров, спиртов и БПК
- 3. 4. 1. Микробный медиаторный биосенсор
- 3. 4. 1. 1. Выбор рабочих параметров функционирования микробных сенсоров
- 3. 4. 1. 2. Долговременная и операционная стабильность микробных медиаторных биосенсоров
- 3. 4. 2. Медиаторный биосенсор на основе мембранных фракций бактерий
- 3. 4. 2. 1. Выбор рабочих параметров функционирования медиаторного биосенсора на основе мембраной фракции бактерий аисопоЬаМег охус1ат
- 3. 4. 2. 2. Долговременная и операционная стабильность медиаторных биосенсоров на основе мембранной фракции бактерий аисопоЬас1ег охуйат. ч 3.4.3. Характеристики макетов БПК-биосенсоров
- 3. 4. 1. Микробный медиаторный биосенсор
- 4. 1. Реактивы и материалы
- 4. 2. Биокатализаторы как основа биораспознающих элементов биосенсоров: штаммы микроорганизмов, питательные среды, условия культивирования, буферные растворы, ферментные фракции бактерий
- 4. 2. 1. Штаммы микроорганизмов
- 4. 2. 2. Среды и условия культивирования микроорганизмов
- 4. 2. 3. Буферные растворы
- 4. 2. 4. Выделение ферментных структур бактерий СЫсопоЬасгег охус1ап
- 4. 3. Взаимодействие искусственных акцепторов электронов с уксуснокислыми бактериями
- 4. 3. 1. Дегидрогеназная активность ферментных фракций бактерий
- 4. 3. 2. Скорости восстановления редокс-красителей целыми клетками бактерий
- 4. 4. Амперометрические методы регистрации окислительной активности иммобилизованного биоматериала
- 4. 4. 1. Биоэлектрохимические системы с медиаторным переносом электронов
- 4. 4. 2. Регистрация дыхательной активности иммобилизованных микроорганизмов-деструкторов капролактама с помощью амперометрического кислородного датчика
- 4. 5. Методы определения капролактама и степени его деградации
- 4. 5. 1. Тонкослойная хроматография растворов капролактама
- 4. 5. 2. Фотометрический метод определения капролактама
- 4. 5. 3. Газохроматографическое определение капролактама
- 4. 5. 4. Определение концентрации капролактама в образцах промышленных отходов
- 4. 5. 5. Оценка степени биодеградации капролактама в образцах промышленных отходов
- 4. 6. Масс-спектрометрический анализ биодеградации олигомеров 6-аминогексановой кислоты
- 4. 7. Трансаминазная активность
- 4. 8. Оценка токсичности образцов бытовой продукции
- 4. 8. 1. Пробоподготовка образцов продукции бытового назначения
- 4. 8. 2. Дыхательная активность микроорганизмов как тест-функция для оценки токсичности
- 4. 8. 3. Референтные методы для гигиенической оценки продукции бытового назначения по химическому фактору
- 4. 9. Определение БПК5 модельных и реальных образцов
- 4. 9. 1. Стандартный метод разбавления
- 4. 9. 2. Моделирование процесса спиртового брожения
Список литературы
- Wharfe, J., Hazardous chemicals in complex mixtures A role for direct toxicity Assessment. Ecotoxicology 2004,13, (5), 413−421.
- Pasco, N. F.- Weld, R. J.- Hay, J. M.- Gooneratne, R., Development and applications of whole cell biosensors for ecotoxicity testing. Analytical and bioanalytical chemistry 2011,400, (4), 931−45.
- Hodgson, E., A textbook of modern toxicology. 4 ed.- John Wiley & Sons: 2010- p 648.
- Hansen, L. H.- Sorensen, S. J., The use of whole-cell biosensors to detect and quantify compounds or conditions affecting biological systems. Microbial ecology 2001,42, (4), 483−494.
- Биохимические методы анализа. Том 12. В кн. Проблемы аналитической химии. Под ред. Дзантиева Б. Б.. М.: Наука. 2010. 329 с.
- Holt, Е. A.- Miller, S. W., Bioindicators: using organisms to measure environmental impacts Nature Education Knowledge 2011, 3, (10), 8.
- Gerhardt, A., Bioindicator species and ther use in biomonitoring. In Environmental Monitoring, Maslov, B. S., Ed. EOLSS: 2009- Vol. 1, p 587.
- EU REACH Regulation (ЕС) 1907/2006. In Official Journal of the European Union: 2006- Vol. 396, p 849.
- Turner, A. P., Biosensors. Current opinion in biotechnology 1994, 5, (1), 4953.
- McGrath, Т. F.- Elliott, С. Т.- Fodey, Т. L., Biosensors for the analysis of microbiological and chemical contaminants in food. Analytical and bioanalytical chemistry 2012,403, (1), 75−92.
- Bjerketorp, J.- Hakansson, S.- Belkin, S.- Jansson, J. K., Advances in preservation methods: keeping biosensor microorganisms alive and active. Current opinion in biotechnology 2006, 17, (1), 43−9.
- Eltzov, E.- Marks, R. S., Whole-cell aquatic biosensors. Analytical and bioanalytical chemistry 2011,400, (4), 895−913.
- Tecon, R.- van der Meer, J. R., Bacterial biosensors for measuring availability of environmental pollutants. Sensors 2008, 8, (7), 4062−4080.
- Su, L.- Jia, W.- Hou, C.- Lei, Y., Microbial biosensors: a review. Biosensors & bioelectronics 2011, 26, (5), 1788−99.
- Park, M.- Tsai, S. L.- Chen, W., Microbial biosensors: engineered microorganisms as the sensing machinery. Sensors 2013,13, (5), 5777−95.
- Thusu, R., Strong growth predicted for biosensors market. Sensors Weekly 2010.
- Дебабов, В. Г., Производство электричества микроорганизмами. Микробиология 2008, 77, (2), 149−157.
- Lovley, D. R., The microbe electric: conversion of organic matter to electricity. Current opinion in biotechnology 2008, 19, (6), 564−71.
- Rabaey, K.- Rodriguez, J.- Blackall, L. L.- Keller, J.- Gross, P.- Batstone, D.- Verstraete, W.- Nealson, К. H., Microbial ecology meets electrochemistry: electricity-driven and driving communities. The ISME journal 2007, 1, (1), 9−18.
- Patil, S. A.- Harnisch, F.- Kapadnis, B.- Schroder, U., Electroactive mixed culture biofilms in microbial bioelectrochemical systems: the role of temperature for biofilm formation and performance. Biosensors & bioelectronics 2010, 26, (2), 803−8.
- Erable, B.- Duteanu, N. M.- Ghangrekar, M. M.- Dumas, C.- Scott, K., Application of electro-active biofilms. Biofouling 2010, 26, (1), 57−71.
- Torres, C. I.- Marcus, A. K.- Lee, H. S.- Parameswaran, P.- Krajmalnik-Brown, R.- Rittmann, B. E., A kinetic perspective on extracellular electron transfer by anode-respiring bacteria. FEMS microbiology reviews 2010, 34, (1), 3−17.
- Bennetto, H. P., Electrisity generation by microorganisms. Biotecnology Education 1990, 1, (4), 163−168.
- Rabaey, K.- Verstraete, W., Microbial fuel cells: novel biotechnology for energy generation. TRENDS in Biotechnology 2005, 23, (6), 291−298.
- Yong, D.- Liu, C.- Yu, D.- Dong, S., A sensitive, rapid and inexpensive way to assay pesticide toxicity based on electrochemical biosensor. Talanta 2011, 84,(1), 7−12.
- Oota, S.- Hatae, Y.- Amada, K.- Koya, H.- Kawakami, M., Development of mediated BOD biosensor system of flow injection mode for shochu distillery wastewater. Biosensors & bioelectronics 2010, 26, (1), 262−6.
- Gorton, L., Carbon paste electrodes modified with enzymes, tissues, and cells. Electroanalysis 1995, 7, (1), 23−45.
- Schroder, U., Anodic electron transfer mechanisms in microbial fuel cells and their energy efficiency. Physical chemistry chemical physics: PCCP 2007, 9, (21), 2619−29.
- Asai, K., Acetic acid bacteria: classification and biochemical activities. Univ. Park Press: Baltimore, 1968.
- Matsutani, M.- Hirakawa, H.- Yakushi, Т.- Matsushita, K., Genome-wide phylogenetic analysis of Gluconobacter, Acetobacter, and Gluconacetobacter. FEMS Microbiol Lett 2011, 315, (2), 122−8.
- Sievers, M.- Swings, J., The genus Acetobacteraceae. In Bergeys Manual of Systematic Bacteriology 2nd Edition., New York 2005- pp 41−95.
- Yamada, Y.- P., Y., Genera and species in acetic acid bacteria. Int J Food Microbiol. 2008, 125, (1), 15−24.
- Луста, К. A.- A.H., P., Физиоло го-биохимические особенности Gluconobacter oxydans и перспективы исполь-зования в биотехнологиии биосенсорных системах Прикладная биохимия и микробиология 1998, 34, (4), 339−354.
- Butters, Т. D.- Dwek, R. A.- Piatt, F. М., Imino sugar inhibitors for treating the lysosomal glycosphingolipidoses Glycobiology 2005, 15, 1143−1152.
- Torija, M. J.- Mateo, E.- Guillamon, J. M.- Mas, A., Identification and quantification of acetic acid bacteria in wine and vinegar by TaqMan-MGB probes. Food microbiology 2010, 27, (2), 257−65.
- Silberbach, M.- Maier, В.- Zimmermann, M.- Buchs, J., Glucose oxidation by Gluconobacter oxydans: characterization in shaking-flasks, scale-up and optimization of the pH profile. Applied microbiology and biotechnology 2003, 62, (1), 92−8.
- Deppenmeier, U.- Ehrenreich, A., Physiology of acetic acid bacteria in light of the genome sequence of Gluconobacter oxydans. Journal of molecular microbiology and biotechnology 2009,16, (1−2), 69−80.
- Adachi, O.- Moonmangmee, D.- Toyama, H.- Yamada, M.- Shinagawa, E.- Matsushita, K., New developments in oxidative fermentation. Applied microbiology and biotechnology 2003, 60, (6), 643−53.
- Gupta, A.- Singh, V. K.- Qazi, G. N.- Kumar, A., Gluconobacter oxydans: its biotechnological applications. Journal of molecular microbiology and7 • 7 7 1 → Л Л Г СГoioiecnnoiogy? uui, j, tpj, я-чо-jd.
- Deppenmeier, U.- Hoffmeister, M.- Prust, C., Biochemistry and biotechnological applications of Gluconobacter strains. Applied microbiology and biotechnology 2002, 60, (3), 233−42.
- Raspor, P.- Goranovic, D., Biotechnological applications of acetic acid bacteria. Critical reviews in biotechnology 2008, 28, (2), 101−24.
- Gao, K. L.- Wei, D.Z., Asymmetric oxidation by Gluconobacter oxydans. Applied microbiology and biotechnology 2006, 70, 135−139.
- Chen, M.- Lin, J.- Ma, Y.- Wei, D., Characterization of a novel NADPH-dependent oxidoreductase from Gluconobacter oxydans. Mol Biotechnol 2010,46, (2), 176−81.
- Ge, X.- Zhao, Y.- Hou, W.- Zhang, W.- Chen, W.- Wang, J.- Zhao, N.- Lin, J.- Wang, W.- Chen, M.- Wang, Q.- Jiao, Y.- Yuan, Z.- Xiong, X., Complete genome sequence of the industrial strain Gluconobacter oxydans H24. Genome Announc 2013, 1, (1).
- Sugisawa, T.- Miyazaki, T.- Hoshino, T., Microbial production of L-ascorbic acid from D-sorbitol, L-sorbose, L-gulose, and L-sorbosone by Ketogulonicigenium vulgare DSM 4025. Biosci Biotechnol Biochem 2005, 69, (3), 659−62.
- Hancock, R. D., Recent patents on vitamin C: opportunities for crop improvement and single-step biological manufacture. Recent Pat Food Nutr Agric 2009, 1,(1), 39−49.
- Hu, Z. C.- Liu, Z. Q.- Xu, J. M.- Zheng, Y. G.- Shen, Y. C., Improvement of 1,3-dihydroxyacetone production from Gluconobacter oxydans by ion beam implantation. Prep Biochem Biotechnol 2012,42, (1), 15−28.
- Hekmat, D.- Bauer, R.- Fricke, J., Optimization of the microbial synthesis of dihydroxyacetone from glycerol with Gluconobacter oxydans. Bioprocess ana owsysiems engineering? uuj, zo,zj, iu^-io.
- Ano, Y.- Shinagawa, E.- Adachi, O.- Toyama, H.- Yakushi, T.- Matsushita, K., Selective, high conversion of D-glucose to 5-keto-D-gluoconate by Gluconobacter suboxydans. Biosci Biotechnol Biochem 2011, 75, (3), 586−9.
- Habe, H.- Fukuoka, T.- Kitamoto, D.- Sakaki, K., Biotechnological production of D-glyceric acid and its application. Applied microbiology and biotechnology 2009, 84, (3), 445−52.
- Wei, G.- Yang, X.- Gan, T.- Zhou, W.- Lin, J.- Wei, D., High cell density fermentation of Gluconobacter oxydans DSM 2003 for glycolic acidproduction. Journal of industrial microbiology & biotechnology 2009, 36, (8), 1029−34.
- Yakushi, T.- Matsushita, K., Alcohol dehydrogenase of acetic acid bacteria: structure, mode of action, and applications in biotechnology. Applied microbiology and biotechnology 2010, 86, (5), 1257−1265.
- Richhardt, J.- Luchterhand, B.- Bringer, S.- Biichs, J.- M., B., Evidence for a key role of cytochrome bo3 oxidase in respiratory energy metabolism of Gluconobacter oxydans. J Bacieriol. 2013, 195, (18), 4210−4220.
- Meyer, M.- Schweiger, P.- Deppenmeier, U., Effects of membrane-bound glucose dehydrogenase overproduction on the respiratory chain of Gluconobacter oxydans. Applied microbiology and biotechnology 2013, 97, (8), 3457−66.
- Lee, S. A.- Choi, Y.- Jung, S.- Kim, S., Effect of initial carbon sources on the electrochemical detection of glucose by Gluconobacter oxydans. Bioelectrochemistry 2002, 57, (2), 173−8.
- Macauley, S.- McNeil, B.- Harvey, L. M., The genus Gluconobacter and its applications in biotechnology. Criticais Reviews in Biotechnology 2001, 21, (1), 1−25.
- Rauch, B.- Pahlke, J.- Schweiger, P.- Deppenmeier, U., Characterization of enzymes involved in the central metabolism of Gluconobacter oxydans. Applied microbiology and biotechnology 2010, 88, (3), 711−8.
- Holscher, T.- Schleyer, U.- Merfort, M.- Bringer-Meyer, S.- Gorisch, H.- Sarim, H., Glucose oxidation and PQQ-dependent dehydrogenases in Gluconobacter oxydans. Journal of molecular microbiology and biotechnology 2009, 16, (1−2), 6−13.
- Matsushita, K.- Shinagawa, E.- Adachi, O.- Ameyama, M., Reactivity with ubiquinone of quinoprotein D-glucose dehydrogenase from Gluconobacter suboxydans. Journal of biochemistry 1989, 105, (4), 633−7.
- Shinagawa, E.- Matsushita, K.- Adachi, O.- Ameyama, M., Evidence for electron transfer via ubiquinone between quinoproteins D-glucose dehydrogenase and alcohol dehydrogenase of Gluconobacter suboxydans. Journal of biochemistry 1990, 107, (6), 863−7.
- Matsushita, K.- Toyama, H.- Adachi, O., Respiratory chains and bioenergetics of acetic acid bacteria. Adv. Microb. Physiol. 1994, 36, 247 301.
- Keliang, G.- Dongzhi, W., Asymmetric oxidation by Gluconobacter oxydans. Applied microbiology and biotechnology 2006, 70, (2), 135−9.
- Ameyama, M.- Shinagawa, E.- Matsushita, K.- Adachi, O., D-glucosedehydrogenase Gluconobacter suboxydans: solubilisation, purification and characterization. Agric. Biol. Chem. 1981,45, 851−861.
- Dokter, P.- Frank, J.- Duine, J.- Duine, J. A., Purification and characterization of quinoprotein glucose dehydrogenase from Acinetobacter calcoaceticus L.M.D. 79.41. Biochem. J. 1986, 239, 163−167.
- Smolander, M.- Buchert, J.- Viikari, L., Large-scale applicable purification and characterization of a membrane-bound PQQ-dependent aldose dehydrogenase. Journal of biotechnology 1993, 29, (3), 287−97.
- Ameyama, M.- Shinagawa, E.- Matsushita, K.- Adachi, O., D-fructose dehydrogenase of Gluconobacter industrius: purification, characterization, and application to enzymatic microdetermination of D-fructose. Journal of bacteriology 1981, 145, (2), 814−23.
- Islami, M.- Shabani, A.- Saifi-Abolhassan, M.- Sepehr, S.- Soudi, M. R.- Mossavi-Nejad, S. Z., Purification and characterization of alcohol dehydrogenase from Gluconobacter suboxydans. Pak J Biol Sci 2008, 11, (2), 208−13.
- Sugisawa, T.- Hoshino, T., Purification and properties of membrane-bound D-sorbitol dehydrogenase from Gluconobacter suboxydans IFO 3255. Biosci Biotechnol Biochem 2002, 66, (1), 57−64.
- Holscher, T.- Weinert-Sepalage, D.- Gorisch, H., Identification of membrane-bound quinoprotein inositol dehydrogenase in Gluconobacter oxydans ATCC 621H. Microbiology 2007, 153, (Pt 2), 499−506.
- Adachi, O.- Yoshihara, N.- Tanasupawat, S.- Toyama, H.- Matsushita, K., Purification and characterization of membrane-bound quinoprotein quinate dehydrogenase. Biosci Biotechnol Biochem 2003, 67, (10), 2115−23.
- Treu, B. L.- Minteer, S. D., Isolation and purification of PQQ-dependent lactate dehydrogenase from Gluconobacter and use for direct electron transfer at carbon and gold electrodes. Bioelectrochemistry 2008, 74, (1), 737.
- Zhang, J.- Li, S.- Xu, H.- Zhou, P.- Zhang, L.- Ouyang, P., Purification of xylitol dehydrogenase and improved production of xylitol by increasing
- XDH activity and NADH supply in Gluconobacter oxydans. Journal of agricultural and food chemistry 2013.
- Buchert, J., A xylose-oxidizing membrane-bound aldose dehydrogenase of Gluconobacter oxydans ATTC 621 J. Biotechnol. 1991, 18, 103−114.
- Anthony, C.- Ghosh, G., The structure and function of the PQQ-containing quinoprotein dehydrogenases. Progress in Biophysics & Molecular Biology 1998, 69, (1), 1−21.
- Cozier, G. E.- Anthony, C., Structure of the quinoprotein glucose dehydrogenase of Escherichia coli modelled on that of methanol dehydrogenase from Methylobacterium extorquens. Biochem. J. 1995, 312, y'^l/A y r J—0/V-DOD.
- Dewanti, A. R.- Duine, J. A., Reconstitution of membrane-integrated quinoprotein glucose dehydrogenase apoenzyme with PQQ and the holoenzyme’s mechanism of action. Biochemistry 1998, 37, (19), 6810−6818.
- Ameyama, M.- Nonobe, M.- Hayashi, M.- Shinagawa, E.- Adachi, O.- Matsushita, K., Mode of binding of pyrroloquinoline quinone to apo-glucose dehydrogenase. Agric Biol Chem 1985,49, 1227−1231.
- Matsushita, K.- Adachi, O., Bacterial quinoproteins glucose dehdyrogenase and alcohol dehydrogenase. In Principles and application of quinoproteins, Davidson, V. L., Ed. Marcel Dekker Inc: New York, 1993- pp 47−63.
- Fujimoto, H.- Kosaka, T.- Yamada, M., Menaquinone as well as ubiquinone as a crucial component in the Escherichia coli respiratory chain. In Chemical Biology, Ekinci, D., Ed. In-Tex: 2012- pp 187−208.
- Yamada, M.- Sumi, K.- Matsushita, K.- O., A.- Yamada, Y., Topological analysis of quinoprotein glucose dehydrogenase in Escherichia coli and its ubiquinone-binding The Journal of biological chemistry 1993, 268, (17), 12 812−12 817.
- Matsushita, K.- Arents, J.- Bader, R.- Yamada, M.- Adachi, O.- Postma, P. W., Escherichia coli is unable to produce pyrroloquinoline quinone (PQQ). Microbiology 1997,143, (10), 3149−3156.
- Frebortova, J.- Matsushita, K.- Arata, H.- Adachi, O., Intramolecular electron transport in quinoprotein alcohol dehydrogenase of Acetobacter methanolicus: a redox-titration study. Biochimica et biophysica acta 1998, 1363, (1), 24−34.
- Lei, Y.- Chen, W.- Mulchandani, A., Microbial biosensors. Analytica ChimicaActa 2006, 568, (1−2), 200−210.
- Rodriguez-Mozaz, S.- Lopez de Alda, M. J.- Barcelo, D., Biosensors as useful tools for environmental analysis and monitoring. Analytical and bioanalytical chemistry 2006, 386, (4), 1025−41.
- Karyakin, A. A., Principles of direct (mediator free) bioelectrocatalysis. Bioelectrochemistry 2012, 88, 70−75.
- Tkac, J.- Svitel, J.- Vostiar, I.- Navratil, M.- Gemeiner, P., Membrane-bound dehydrogenases from Gluconobacter sp.: interfacial electrochemistry and direct bioelectrocatalysis. Bioelectrochemistry 2009, 76, (1−2), 53−62.
- Watanabe, K., Recent developments in microbial fuel cell technologies for sustainable bioenergy. Journal of bioscience and bio engineering 2008, 106, (6), 528−36.
- Sleutels, T. H.- Ter Heijne, A.- Buisman, C. J.- Hamelers, H. V., Bioelectrochemical systems: an outlook for practical applications. ChemSusChem 2012, 5, (6), 1012−9.
- Lovley, D. R., Electromicrobiology. Annual review of microbiology 2012, 66, 391−409.
- Chaubey, A.- Malhotra, B. D., Mediated biosensors. Biosensors & bioelectronics 2002, 17, 441−456.
- Bentley, A.- Atkinson, A.- Jezek, J.- Rawson, D. M., Whole cell biosensors-electrochemical and optical approaches to ecotoxicity testing. Toxicology in vitro: an international journal published in association with BIBRA 2001, 15, (4−5), 469−75.
- Chen, H.- Ye, T.- Qiu, B.- Chen, G.- Chen, X., A novel approach based on ferricyanide-mediator immobilized in an ion-exchangeable biosensing film for the determination of biochemical oxygen demand. Anal Chim Acta 2008, 612,(1), 75−82.
- Wilson, R.- Turner, A. P., Glucose oxidase: an ideal enzyme Biosensors & bioelectronics 1992, 7, 165−185.
- Reshetilov, A. N.- Il’iasov, P. V.- Lakhina, L. V.- Pankratova, E. V.- Pershikov, R. V., Sensor for rapid measurement of blood glucose. Klinicheskaia laboratornaia diagnostika 1996, (2), 26−9.
- Reshetilov, A. N.- Donova, M. V.- Dovbnya, D. V.- Boronin, A. M.- Leathers, T. D.- Greene, R. V., FET-microbial sensor for xylose detection based on Gluconobacter oxydans cells. Biosensors & bioelectronics 1996, 11, (4), 401−8.
- Reshetilov, A.- Iliasov, P.- Donova, M.- Dovbnya, D.- Boronin, A.- Leathers, T.- Geene, R., Evaluation of a Gluconobacter oxydans whole cell biosensor for amperometric detection of xylose. Biosensors & bioelectronics 1997, 12, (3), 241−247.
- Svitel, J.- Curilla, O.- Tkac, J., Microbial cell-based biosensor for sensing glucose, sucrose or lactose. Biotechnology and applied biochemistry 1998, 27 (Pt 2), 153−8.
- Tkac, J.- Vostiar, I.- Gemeiner, P.- Sturdik, E., Monitoring of ethanol during fermentation using a miciubial biosensor with enhanced selectivity. Bioelectrochemistry 2002, 56, (1−2), 127−9.
- Sefcovicova, J.- Filip, J.- Mastihuba, V.- Gemeiner, P.- Tkac, J., Analysis of ethanol in fermentation samples by a robust nanocomposite-based microbial biosensor. Biotechnology letters 2012, 34, (6), 1033−9.
- Tkac, J.- Gemeiner, P.- Svitel, J.- Benikovsky, T.- Sturdik, E.- Vala, V.- Petrus, L.- Hrabarova, E., Determination of total sugars in lignocellulose hydrolysate by a mediated Gluconobacter oxydans biosensor Anal Chim Acta 2000, 420, 1−7.
- Tkac, J.- Vostiar, I.- Gorton, L.- Gemeiner, P.- Sturdik, E., Improved selectivity of microbial biosensor using membrane coating. Application to the analysis of ethanol during fermentation. Biosensors & bioelectronics 2003,18, (9), 1125−34.
- Ikeda, Т.- Kurosaki, Т.- Takayama, К.- Капо, K.- Miki, K., Measurements of oxidoreductase-like activity of intact bacterial cells by an amperometric method using a membrane-coated electrode. Analytical chemistry 1996, 68, (1), 192−8.
- Indjgia, Е.- Ponamoreva, О.- Alferov, V.- Reshetilov, A., Interaction of ferrocene mediators with Gluconobacter oxydans immobilized whole cellsand membrane fractions in oxidation of ethanol. Electroanalysis 2012, 24, (4), 924 930.
- Чигринова, E. Ю.- Бабкина, E. E.- Понаморева, О. H.- Алферов, В. А.- Решетилов, А. Н., Микробные сенсоры на основе производных ферроцена и бензохинона, применяемых в качестве медиаторов. Сенсорные системы 2007, 21, (3), 263−269.
- Vostiar, I.- Ferapontova, Е. Е.- Gorton, L., Electrical «wiring» of viable Gluconobacter oxydans cells with a flexible osmium-redox polyelectrolyte. Electrochemistry Communications 2004, 6, (7), 621−626.
- Hasan, K.- Patil, S. A.- Leech, D.- Hagerhall, C.- Gorton, L., Electrochemical communication between microbial cells and electrodes via osmium redox systems. Biochemical Society transactions 2012, 40, (6), 1330−5.
- Tkac, J.- Svitel, J.- Novak, R.- Sturdik, E., Triglyceride assay by amperometric microbial biosensor: Sample hydrolysis and kinetic approach. Anal Lett 2000, 33, 2441−2452.
- Odaci, D.- Timur, S.- Telefoncu, A., A microbial biosensor based on bacterial cells immobilized on chitosan matrix. Bioelectrochemistry 2009, 75,(1), 77−82.1. V
- Valach, M.- Katrlik, J.- Sturdik, E.- Gemeiner, P., Ethanol Gluconobacter biosensor designed for flow injection analysis. Sensors and Actuators B: Chemical 2009, 138, (2), 581−586.
- Tuncagil, S.- Odaci, D.- Vans, S.- Timur, S.- Toppare, L., Electrochemical polymerization of l-(4-nitrophenyl)-2,5-di (2-thienyl)-l H-pyrrole as a novel immobilization platform for microbial sensing. Bio electrochemistry 2009, 76, (1−2), 169−74.
- Lovley, D. R., Bug juice: harvesting electricity whih microorganisms. Nature Reviews Microbiology 2006, 4 497−508.
- Rengasamy, K.- Berchmans, S., Simultaneous degradation of bad wine and electricity generation with the aid of the coexisting biocatalysts Acetobacter aceti and Gluconobacter roseus. Bioresource technology 2012, 104, (0), 388−393.
- Reshetilov, A.- Alferov, S.- Tomashevskaya, L.- Ponamoreva, О., Testing of bacteria Gluconobacter oxydans and electron transportmediators composition for application in biofuel cell. Electroanalysis 2006, 18, 20 302 034.
- Алферов, С. В.- Воеводская, О. А.- Нгуен, В. Т.- Арляпов, В. А.- Понаморева, О. Н.- Решетилов, А. Н., Уксуснокислые бактерии
- Gluconobacter oxydans как биокатализаторы в медиаторном биотопливном элементе. Сенсорные системы 2011, 25, (4), 346−351.
- Справочник биохимика: Пер. с англ. Мир: М., 1991- р 554.
- Степанов, Б. И.- Попов, С. П., Введение в химию и технологию органических красителей. 3 е изд. 1984- р 342.
- Schaule, G.- Flemming, H. C.- Ridgway, H. F., Use of 5-cyano-2,3-ditolyl tetrazolium chloride for quantifying planktonic and sessile respiring bacteria in drinking water. Applied and environmental microbiology 1993, 59, (11), 3850−7.
- Tote, K.- Vanden Berghe, D.- Maes, L.- Cos, P., A new colorimetric microtitre model for the detection of Staphylococcus aureus biofilms. Letters in applied microbiology 2008,46, (2), 249−54.
- Nakamura, H.- Hattori, D.- Tokunaga, D.- Suzuki, Y., An isothermal absorptiometric assay for viable microbes using the redox color indicator 2,6-dichlorophenolindoprienol. Analytical biochemistry 2013, 441, (2), 1406.
- Bennetto, H. P.- Dew, M. E.- Stirling, J. L.- Tanaka, K., Rates of reduction of phenothiazine 'redox' dyes by E. coli. Chem and Ind 1981, 8, (776).
- Laurinavieius, V.- Razumiene, J.- Kurtinailiene, B.- Gureviene, V.- Marcinkeviciene, L.- Bachmatova, I., Comprative characterization of soluble and membrane-bound PQQ-glucose dehydrogenases. Biologija 2003, (2), 31−34.
- Richhardt, J.- Bringer, S.- Bott, M., Role of the pentose phosphate pathway and the Entner-Doudoroff pathway in glucose metabolism of Gluconobacter oxydans 621H. Applied microbiology and biotechnology 2013, 97, (10), 4315−4323.
- Lapenaite, I.- Kurtinaitiene, B.- Razumiene, J.- Laurinavieius, V.- Marcinkeviciene, L.- Bachmatova, I.- Meskys, R.- Ramanavicius, A.,
- Properties and analytical application of PQQ-dependent glycerol dehydrogenase from Gluconobacter sp. 33. Analytica Chimica Acta 2005, 549, (1−2), 140−150.
- Gorton, L., Selective detection in flow analysis based on the combination of immobilized enzymes and chemically modified electrodes. Anal. Chim. Acta 1991, 250, 203−210.
- Katz, E.- Shipway, A. N.- Willner, I., Mediated electron-transfer between redox-enzymes and electrode supports. In Encyclopedia of Electrochemistry, Wilson, G. S., Ed. Wiley-VCH GmbH: Weinheim, Germany, 2002- Vol. 9, pp 559−626.
- Перевалова, Э. Г.- Решетова, M. Д.- Гранберг, К. И., Методы элементоорганической химии. Ферроцен. Наука: М., 1983- р 557.
- Martic, S.- Labib, М.- Shipman, Р. О.- Kraatz, Н. В., Ferrocene-peptido conjugates: from synthesis to sensory applications. Dalton transactions 2011,40, (28), 7264−90.
- Hall, D. W.- Russell, C. D., Substituent effects in the chronopotentiometric oxidation of ferrocene derivatives. Internal solvation of certain substituted ferricenium ions'. Journal of the American Chemical Societ 1967, 89, (10), 2316−2322.
- Skiadai, P.- Morozova, N. O.- Reshetilov, A. N., Amperometric biosensors for detection of phenol using chemically modified electrodes containing immobilized bacteria. Biosensors and Bioelectronics 2002, 17, (10), 867 873.
- Wang, X.- Liu, M.- Wang, X.- Wu, Z.- Yang, L.- Xia, S.- Chen, L.- Zhao, J., p-Benzoquinone-mediated amperometric biosensor developed with
- Psychrobacter sp. for toxicity testing of heavy metals. Biosensors & bioelectronics 2013, 41, 557−62.
- Ikeda, T.- Kano, K., An electrochemical approach to the studies of biological redox reactions and their applications to biosensors, bioreactors, and biofuel cells. Journal of Biosience and Bio engineering 2001, 92, (1), 9−18.
- Ikeda, T.- Kano, K.- Maeda, M.- Tatsumi, H.- Matsushita, K., Electrocatalytic properties of Acetobacter aceti cells immobilized on electrode for the quinone-mediated oxidation of ethanol. J. Electroanal. Chem. 1997,430, 197−204.
- Polak, M.- Rawson, D.- Haggett, G. D., Redox mediated biosensors incorporating cultured fish cells for toxicity assessment. Biosensors & bioelectronics 1996, 11, (12), 1253−1257.
- Hoh, G. L. K.- McEven, W. E.- Kleinberg, J., Chronopotenciometric oxidation of ferrocenes. Org. Biolog. Chem. 1961, 3949−3953.
- Okochi, M.- Matsunaga, T., Electrochemical sterilization of bacteria using graphite electrode modified with adsorbed ferrocene Electrochimica Acta 1997,42, (20−22), 3247−3250.
- Babanova, S.- Hubenova, Y.- Mitov, M., Influence of artificial mediators on yeast-based fuel cell performance. Journal of bioscience and bioengineering 2011, 112, (4), 379−87.
- Smolander, M.- Marko-Varga, G.- Gorton, L., Aldose dehydrogenase-modified carbon paste electrodes as amperometric aldose sensors. Anal Chim Acta 1995, 302, 233−240.
- Matsumoto, K.- Kano, K.- Ikeda, T., Theory of steady-state catalytic current of mediated bioelectrocatalysis. Journal of Electroanalytical Chemistry 2002, 535 37−40.
- Ikeda, T.- Kano, K., Bioelectrocatalysis-based application of quinoproteins and quinoprotein-containing bacterial cells in biosensors and biofuel cells.
- Biochimica et Biophysica Acta (BBA) Proteins and Proteomics 2003, 1647, (1−2), 121−126.
- Albery, W. J.- Bartlett, P. N., Amperometric enzyme electrodes: Part I. Theory. Journal of Electroanalytical Chemistry and Interfacial Electrochemistry 1985, 194, (2), 211−222.
- Bunte, C.- Prucker, O.- Konig, Т.- Ruhe, J., Enzyme containing redox polymer networks for biosensors or biofuel cells: a photochemical approach. Langmuir: the ACS journal of surfaces and colloids 2010, 26, (8), 6019−27.
- Кузнецов, Б.- Хлупова, M.- Шлеев, С.- Карапетьянц, А.- Ярополов, А., Электрохимический метод измерения метаболической активности и числа клеток. Прикладная биохимия и микробиология 2006, 42, (5), 599 608.
- Heiskanen, A.- Spegel, C.- Kostesha, N.- Lindahl, S.- Ruzgas, Т.- Emneus, J., Mediator-assisted simultaneous probing of cytosolic and mitochondrial redox activity in living cells. Analytical biochemistry 2009, 384, (1), 11−19.
- Clark, L. C.- Wolf, R.- Granger, D.- Taylor, Z., Continuous recording of blood oxygen tensions by polarography. Journal of applied physiology 1953, 6, (3), 189−193.
- Beyersdorf-Radeck, В.- Riedel, K.- Karlson, U.- Bachmann, Т. Т.- Schmid, R. D., Screening of xenobiotic compounds degrading microorganisms using biosensor techniques. Microbiol Res. 1998, 153, (3), 239−243.
- Российская, И. В.- Есикова, Т. 3.- Понаморева, О. Н.- Решетилов, А. Н., Биосенсорная оценка катаболической активности штаммов-деструкторов е-каполактама с различными сочетаниями «САР-плазмида бактериальный хозяин». Биотехнология 2008, 4, 44−47.
- Gad, S. С.- Robinson, К.- Serota, D. G.- Colpean, В. R., Developmental toxicity studies of capiolactam m the rat and rabbit. J Appl Toxicol. 1987, 7, (5), 317−326.
- Reinhold, R. W.- Hoffman, G. M.- Bolte, H. F.- Rinehart, W. E.- Rusch, G. M.- Parod, R. J.- M., K., Subchronic inhalation toxicity study of caprolactam (with a 4-week recovery) in the rat via whole-body exposures. Toxicol Sci. 1998,44, (2), 197−205.
- Recommendation from the scientific expert group on occupational exposure limits for s-caprolactam In European Commission: Employment, S. A. a. I., Ed. 1995.
- Анализ рынка, капролактама в России в 2008—2012 гг., прогноз на 20 132 017 гг BusinesStat: 2013- р 47.
- Вольф, JL А.- Хайтин, Б. Ш., Производство поликапроамида. Химия: М., 1977- р 208.
- Anastas, Р. Т.- Warner, J. С., Green chemistry: theory and practice. Oxford University Press: Oxford, UK, 1998- p 135.
- В.В.Лунин, E. С. Л., «Зеленая» химия в России. In Сборник статей «Зеленая химия в России», Лунина, В. В.- Тундо, П.- Локтева, Е. С., Eds. Издательство Московского университета: М., 2004- рр 10−23.
- Thomas, J. M.- Raja, R., Design of a «green» one-step catalytic production of epsilon-caprolactam (precursor of nylon-6). Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 2005, 102, (39), 13 732−6.
- Соколов, А. Б.- Печатников, M. Г.- Крижановский А.С.- Петров, Г. Г., Комбинирование химических и биологических способов очистки капролактам со держащих стоков. Рос. хим. ж. (Ж. Рос. хим. об-ва им. Д.И. Менделеева) 2006,1, (3), 48−53.
- Глазко, И. Л.- Леванова, С. В.- Канаев, А. В.- Сабитов, С. С.- Петров, Г. Г.- Носикова, Е. А., Оптимизация стадии дистилляции капролактама. Рос. хим. ж. (Ж. Рос. хим. об-ва им. Д.И. Менделеева) 2006, L, (3), 5964.
- Карасёва, С. Я.- Красных, Е. Л.- Леванова, С. В.- Петров, Г. Г.- Садивский, С. Я., К вопросу о качестве капролактама и полиамида. Рос. хим. ж. (Ж. Рос. хим. об-ва им. Д.И. Менделеева) 2006, L, (3), 54−58.
- Леванова, С. В.- Герасименко, В. И.- Глазко, И. Л.- Соколов, А. Б.- Сумарченкова, И. А.- Канаев, А. В., Синтез сложных эфиров из жидких отходов производства капролактама. Рос. хим. ж. (Ж. Рос. хим. об-ва им. Д.И. Менделеева) 2006, L, (3), 37−42.
- Наумова, Р. П.- Голованова, Э. В.- Губернаторова, В. А.- Б.В., В., Контроль биохимической очистки стоков производства капролактама. Вест. техн. и экон. информации 1963, (8), 30.
- ПНД Ф 14.1:2:4.211−05 (ФР.1.31.2001.360) Количественный химический анализ вод. Методика выполнения измерений массовой концентрации капролактама в пробах питьевых, природных и сточных вод газохроматографическим методом.
- Bergmany, F., Colorimetric determination of amides as hydroxamic acids Analytical chemistry 1952, 24, (8), 1367−1369.
- МУ 1671−77. Методические указания на колориметрическое определение капролактама в воздухе. Министерство здравоохранения СССР. 1977. 18 с.
- А.с. 1 679 362 СССР. Способ количественного определения капролактама в водных растворах МКИ G 01 N 30/02 — Заявлено
- Л Г Л Г>Г Т"1 «Г. Л Г /Т ЛЛ АЛ Л1 Г 1 ЛЛ1
- Кич-.ОУ — Г>НШ.Л» О J WliyUJi. ?j.vjy.y 1. — z С.. 1УУ1.
- Fukumura, T., Bacterial breakdown of e-caprolactam and its cyclic oligomers. Plant Cell Physiol 1966, 7, 93−104.
- Shama, G.- Wase, D. A., The biodegradation of caprolactam and some related compounds. International Biodeterioration Bulletin. A review 1981, 17,(1), 1−9.
- Baxi, N. N.- Shah, A. K., e-Caprolactam-degradation by Alcaligenes faecalis for bioremediation of wastewater of a nylon-6 production plant. Biotechnology letters 2002, 24, 1177−1180.
- Kulkarni, R. S.- Kanekar, P. P., Bioremediation of epsilon-caprolactam from nylon-6 waste water by use of Pseudomonas aeruginosa MCM В-407. Curr Microbiol 1998, 37, (3), 191−4.
- Грищенков, В. Г.- Аминов, Р. И.- Воронин, А. М., Конкурентные взаимодействия в смешанных культурах изогенных штаммов Pseudomonas putida BS394, несущих четыре разные природные плазмиды утилизации капролактама. Микробиология 1993, 62, (3), 460 468.
- Есикова, Т. 3.- Грищенков, В. Г.- Воронин, А. М., Плазмиды деградации капролактама Микробиология 1990, 59, (4), 547−552.
- Есикова, Т. 3.- Грищенков, В. Г., Регуляция экспрессии плазмидных детерминантов, ответственных за деградацию капролактама бактериями рода Pseudomonas. Микробиология 1992, 61, (5), 843-851.
- Kinoshita, S.- Okada, Н., Degradation of e-caprolactam by subcellular fraction of Achromobacter guttatus. J. Ferment. Technol. 1973, 51, 753−756.
- Baxi, N., Influence of s-caprolactam on growth and physiology of environmental bacteria. Ann Microbiol 2013, 1−6.
- Есикова, Т. 3. Плазмиды биодеградации е-капролактама бактерий рода Pseudomonas. Пущино, 1990.
- Наумова, Р. П.- Есикова, Т. 3.- Ильинская, О. Н., метаболизм капролактама у псевдомонад в связи с его плазмидной обусловленностью. Микробиология 1988, 57, (3), 426−430.
- Воронин, А. М.- Грищенков, В. Г.- Кулаков, JI. А.- Наумова, Р. П., Характеристика плазмиды pBS271, контролирующей деградацию 8-капролактама бактериями рода Pseudomonas. Микробиология 1986, 55, (2), 231−236.
- Park, Е. S.- Kim, М.- Shin, J. S., Molecular determinants for substrate selectivity of omega-transaminases. Applied microbiology and biotechnology 2012, 93, (6), 2425−35.
- Наумова, Р. П.- Белов, И. С., Превращение г-аминокапроновой кислоты при бактериальном разрушении капролактама. Биохимия 1968, 33, 946.
- Markova, M.- Peneff, C.- Hewlins, M. J.- Schirmer, Т.- John, R. A., Determinants of substrate specificity in omega-aminotransferases. The Journal of biological chemistry 2005, 280, (43), 36 409−16.
- Yagi, Т.- Misono, H.- Tanizawa, K.- Yoshimura, Т.- Soda, K., Characterization of the half and overall reactions catalyzed by L-lysine:2-oxoglutarate 6-aminotransferase. Journal of biochemistry 1991, 109, (1), 615.
- Fujii, Т.- Narita, Т.- Agematu, H.- Agata, N.- Isshiki, K., Characterization of L-lysine 6-aminotransferase and its structural gene from Flavobacterium lutescens IF03084. J Biochem. 2000, 128, (3), 391−397.
- Liras, P.- Demain, A. L., Methods in enzymology. Chapter 16. Enzymology of J3-lactam compounds with cephem structure produced by Actinomycete. In David, A. H" Ed. Academic Press: 2009- Vol. Volume 458, pp 401−429.
- Malik, M. S.- Park, E. S.- Shin, J. S., Features and technical applications of omega-transaminases. Applied microbiology and biotechnology 2012, 94, (5), 1163−71.
- Herai, S.- Hashimoto, Y.- Higashibata, H.- Maseda, H.- Ikeda, H.- Omura, S.- Kobayashi, M., Hyper-inducible expression system for streptomycetes. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 2004, 101, (39), 14 031−5.
- Boronin, A. M.- Naumova, R. P.- Grishchenkov, V. G.- Ilijunskaya, O. N., Plasmid specifying e-caprolactam degradation in Pseudomonas strains. FEMS Microbiol. Lett. 1984, 22, 167−171.
- Esikova, T. Z.- Grishchenkov, V. G.- Kulakov, L. A.- Morenkova, M. A.- Boronin, A. M., Incompatibility groups of epsilon-caprolactam biodegradation plasmids from bacteria of Pseudomonas genus. Mol Gen Mikrobiol Virusol. 1990, (4), 25−33.
- Kulkarni, R. S.- Kanekar, P. P., Effect of some curing agents on phenotypic stability in Pseudomonas putida degradation s-caprolactam Wor ld Journal of Microbiology and Biotecnology 1998, 14, 255−257.
- Литвиненко, Л. А.- Петрикевич, С. Б.- Кравчук, А. В.- Грищенков, В. Г., Катаболизм капролактама и его интермедиатов производными штамма Pseudomonas putida BS394, содержащими различные сар-плазмиды. Микробиология 1993, (3), 447−452.
- Fukumura, Т., Hydrolysis of cyclic and linear oligomers of 6-aminocaproic acid by a bacterial cell extract. Journal of biochemistry 1966, 59, 531−536.
- Negoro, S., Biodegradation of nylon oligomers. Applied microbiology and biotechnology 2000, 54, (4), 461−6.
- Kato, K.- Ohtsuki, K.- Koda, Y.- Maekawa, T.- Yomo, T.- Negoro, S.- Urabe, I., A plasmid encoding enzymes for nylon oligomer degradation: nucleotide sequence and analysis of pOAD2. Microbiology 1995, 141 (Pt 10), 2585−90.
- Okada, H.- Negoro, S.- Kimura, H.- Nakamura, S., Evolutionary adaptation of plasmid-encoded enzymes for degrading nylon oligomers. Nature 1983, 306, (5939), 203−6.
- Kanagawa, K.- Negoro, N.- Takada, N.- Okada, H., Plasmid dependence of Pseudomonas sp. strain NK 87 enzymes that degrade 6-aminohexanoate-cyclic dimer. J. Bacteriol. 1989, 171, (6).
- Kanagawa, K.- Oishi, M.- Negoro, S.- Urabe, I.- Okada, H., Characterisation of the 6-aminohexanoate-dimer hydrolase from Pseudomonas sp. NK87. J. Gen. Microbiol. 1993, 139, 787−795.
- Negoro, S.- Shinagawa, H.- Nakata, A.- Kinoshita, S.- Hatozaki, T.- Okada, H., Plasmid control of 6-aminohexanoic acid cyclic dimer degradation enzymes of Flavobacterium sp. K172. Journal of bacteriology 1980, 143, (1), 238−45.
- Yasuhira, K.- Uedo, Y.- Takeo, M.- Kato, D.- Negoro, S., Genetic organization of nylon-oligomer-degrading enzymes from alkalophilic bacterium, Agromyces sp. KY5R. Journal of bioscience and bio engineering 2007, 104, (6), 521−4.
- Prijambada, I. D.- Negoro, S.- Yomo, T.- Urabe, I., Emergence of nylon oligomer degradation enzymes in Pseudomonas aeruginosa PAO through experimental evolution. Applied and environmental microbiology 1995, 61, (5), 2020−2.
- Wang, C. C.- Lee, C. M., Isolation of the epsilon-caprolactam denitrifying bacteria from a wastewater treatment system manufactured withacrylonitrile-butadiene-styrene resin. Journal of hazardous materials 2007, 145,(1−2), 136−41.
- Baxi, N.- Shah, A., The use of solid waste of a nylon-6 plant as a nutrient for bacterial decolourisation of dyes. World Journal of Microbiology and Biotechnology 2007, 23, (9), 1321−1326.
- Baxi, N. N.- Shah, A. K., Biological treatment of the components of solid oligomeric waste from a nylon-6 production plant. World J Microbiol Biotechnol Adv 2000,16, 835−840.
- Truppo, M. D.- Rozzell, J. D.- Moore, J. C.- Turner, N. J., Rapid screening and scale-up of transaminase catalysed reactions. Organic & biomolecular chemistry 2009, 7, (2), 395−8.
- Bartos, J.- Pesez, M., Colorimetric and fluorimetric determination of aldehydes and ketones Pure & Appi. Chem., Vol. 1979, 51, 1803−1814.
- Васильев, В. Ю.- Ерёмин, В. П., Экспресс-метод определения активности у-аминобутират-а-кетоглутарат трансаминазы Экспериментальная биологическая медицина 1968, 66, (9), 123−125.
- Jaffrezic-Renault, N.- Dzyadevych, S. V., Conductometric Microbiosensors for Environmental Monitoring. Sensors 2008, 8, 2569−2588.
- Marquis, B. J.- Love, S. A.- Braun, K. L.- Haynes, C. L., Analytical methods to assess nanoparticie toxicity. Analyst 2009, 134, (3), 425−39.
- Hsieh, C. Y.- Tsai, M. H.- Ryan, D. K.- Pancorbo, О. C" Toxicity of the 13 priority pollutant metals to Vibrio fisheri in the Microtox chronic toxicity test. The Science of the total environment 2004, 320, (1), 37−50.
- Liu, X.- Germaine, K. J.- Ryan, D.- Dowling, D. N., Whole-cell fluorescent biosensors for bioavailability and biodegradation of polychlorinated biphenyls. Sensors 2010,10, (2), 1377−98.
- Shin, H. J., Genetically engineered microbial biosensors for in situ monitoring of environmental pollution. Applied microbiology and biotechnology 2011, 89, (4), 867−77.
- D’Souza, S. F., Microbial biosensors. Biosensors & bioelectronics 2001, 16, (6), 337−53.
- Baeumner, A. J., Biosensors for environmental pollutants and food contaminants. Analytical and bioanalytical chemistry 2003, 377, (3), 434−45.
- Reshetilov, A., Microbial, enzymatic, and immune biosensors for ecological monitoring and control of biotechnological processes. Applied Biochemistry and Microbiology 2005,41, (5), 442−449.
- Campanella, L.- Favero, G.- Tomassetti, M., Immobilized yeast cells biosensor for total toxicity testing. The Science of the total environment 1995,171,227−234.
- Timur, S.- Pazarlioglu, N.- Pilloton, R.- Telefoncu, A., Thick film sensors based on laccases from different sources immobilized in polyaniline matrix. Sensors and Actuators B: Chemical 2004, 97, (1), 132−136.
- Kirgoz, U. A.- Odaci, D.- Timur, S.- Merkoci, A.- Alegret, S.- Besun, N.- Telefoncu, A., A biosensor based on graphite epoxy composite electrode for aspartame and ethanol detection. Anal ChimActa 2006, 570, (2), 165−9.
- Timur, S.- Anik, U.- Odaci, D.- Gorton, L., Development of a microbial biosensor based on carbon nanotube (CNT) modified electrodes. Electrochemistry Communications 2007, 9, (7), 1810−1815.
- Emelyanova, E. V.- Reshetilov, A. N., Rhodococcus erythropolis as the receptor of cell-based sensor for 2,4-dinitrophenol detection: effect of 'co-oxidation'. Process Biochemistry 2002, 37, 683−692.
- Reshetilov, A. N.- Semenchuk, I. N.- Iliasov, P. V.- Taranova, L. A., The amperometric biosensor for detection of sodium dodecyl sulfate. Anal Chim Acta 1997, 347, (1−2), 19−26.
- Taranova, L.- Semenchuk, I.- Manolov, T.- Iliasov, P.- Reshetilov, A., Bacteria-degraders as the base of an amperometric biosensor for detection of anionic surfactants. Biosensors & bioelectronics 2002, 17, (8), 635−40.
- Belkin, S., Microbial whole-cell sensing systems of environmental pollutants. Current Opinion in Microbiology 2003, 6, (3), 206−212.
- Popovtzer, R.- Neufeld, T.- Biran, D.- Ron, E. Z.- Rishpon, J.- Shacham-Diamand, Y., Novel Integrated Electrochemical Nano-Biochip for Toxicity Detection in Water. Nano Letters 2005, 5, (6), 1023−1027.
- Neufeld, T.- Biran, D.- Popovtzer, R.- Erez, T.- Ron, E. Z.- Rishpon, J., Genetically Engineering pfabA pfabB Bacteria: in Electrochemical Whole Cell Biosensor for detection Water Toxicity. Anal. Chem. 2006, 78, 49 524 956.
- Ivask, A.- Rolova, T.- Kahru, A., A suite of recombinant luminescent bacterial strains for the quantification of bioavailable heavy metals and toxicity testing. BMC biotechnology 2009, 9, 41.
- Elad, T.- Belkin, S., Whole-cell biochips for online water monitoring. Bioengineered bugs 2012, 3, (2), 124−8.
- Horsburgh, A. M.- Mardlin, D. P.- Turner, N. L.- Henkler, R.- Strachan, N.- Glover, L. A.- raton, G. I.- Kiiinam, K., On-line microbial biosensing and fingerprinting of water pollutants. Biosensors & bioelectronics 2002, 17, 495−501.
- Bechor, O.- Smulski, D. R.- Van Dyk, T. K.- LaRossa, R. A.- Belkin, S., Recombinant microorganisms as environmental biosensors: pollutants detection by Escherichia coli bearing fabA':lux fusions. Journal of biotechnology 2002, 94, 125−32.
- Tiensing, T.- Strachan, N.- Paton, G. I., Evaluation of interactive toxicity of chlorophenols in water and soil using lux-marked biosensors. Journal of Environmental Monitoring 2002, 4, (4), 482−489.
- Song, W.- Pasco, N.- Gooneratne, R.- Weld, R. J., Comparison of three genetically modified Escherichia coli biosensor strains for amperometric tetracycline measurement. Biosensors & bioelectronics 2012, 35, (1), 69−74.
- Rensing, C.- Maier, R. M., Issues underlying use of biosensors to measure metal bioavailability. Ecotoxicology and environmental safety 2003, 56, (1), 140−147.
- Gooding, J. J.- Chow, E.- Finlayson, R., Biosensors for Detecting Metal Ions: NewTrends. Current Chemistry 2003, 56, 159−162.
- Tibazarwa, C.- Corbisier, P.- Mench, M.- Bossus, A.- Solda, P.- Mergeay, M.- Wyns, L.- van der Lelie, D., A microbial biosensor to predict bioavailable nickel in soil and its transfer to plants. Environmental pollution 2001, 113,(1), 19−26.
- Fu, Y.-J.- Chen, W.-L.- Huang, Q.-Y., Construction of two lux-tagged Hg2±specific biosensors and their luminescence performance. Applied microbiology and biotechnology 2008, 79, (3), 363−370.
- Tom-Petersen, A.- Hosbond, C.- Nybroe, O., Identification of copper-induced genes in Pseudomonas fluorescens and use of a reporter strain to monitor bioavailable copper in soil. FEMS microbiology ecology 2001, 38, (1), 59−67.
- Polyak, В.- E. Bassis- Novodvorets, A.- Belkin, S.- Marks, R. S., Optical fiber bioluminescent whole-cell microbial biosensors to genotoxicants. Water Science and Technology 2000, 42, (1−2), 305−311.
- Rosen, R.- Davidov, Y.- LaRossa, R. A.- Belkin, S., Microbial sensors of ultraviolet radiation based on recA':lux fusions. Appl Biochem Biotechnol 2000, 89, (2−3), 151−60.
- Wang X, He Y, Liu M. Toxicities assessment of Cu2+ and Zn2+ on activated sludge by ToxTell biosensor. Acta Scientiae Circumstantiae 2012, 32, (5), 1049−53.
- Возная, H. Ф., Химия воды и микробиология. Высшая школа: М., 1979- р 361.
- Методы охраны внутренних вод от загрязнения и истощения. М: Агропромиздат. 1985- р 220.
- Лурье, Ю. Ю., Аналитическая химия промышленных сточных вод. Химия: М., 1984- 448 с.
- Hikuma, М.- Suzuki, Н.- Yasuda, Y.- Karube, I.- Suzuki, S., Amperometric estimation of BOD by using living immobilized yeasts. European Journal of Applied Microbiology and Biotechnology 1979, 8, (4), 289−297.
- Karube, I.- Matsunaga, Т.- Mitsuda, S.- Suzuki, S., Microbial electrode BOD sensors. Biotechnol Bioeng. 1977, 19, (10), 1535−1547.
- Reshetilov, A.- Arlyapov, V.- Alferov, V.- Reshetilova, Т., BOD Biosensors: Application of Novel Technologies and Prospects for the Development. In State of the Art in Biosensors Environmental and Medical Applications, InTech: 2013.
- Chen, D.- Cao, Y.- Liu, В.- Kong, J., A BOD biosensor based on a microorganism immobilized on an A1203 sol-gel matrix. Analytical and bioanalytical chemistry 2002, 372, (5−6), 737−9.
- Veiling, S.- Tenno, Т., Different calibration methods of a microbial BOD sensor for analysis of municipal wastewaters. Sensors and Actuators B: Chemical 2009, 141, (1), 233−238.
- Понаморева, О. H.- Арляпов, В. А.- Алферов, В. А.- Решетилов, А. Н., Микробные биосенсоры для определения биологического потребления кислорода (обзор). Прикладная биохимия и микробиология 2011, 47, (1), 5−15.
- Bourgeois, W.- Burgess, J. Е.- Stuetz, R. M., On-line monitoring of wastewater quality: a review. Journal of Chemical Technology & Biotechnology 2001, 76, (4), 337−348.
- Rodriguez-Mozaz, S.- Alda, M. J.- Marco, M. P.- Barcelo, D., Biosensors for environmental monitoring A global perspective. Talanta 2005, 65, (2), 2917.
- Liu, J.- Mattiasson, В., Microbial BOD sensors for wastewater analysis. Water research 2002, 36, 3786−3802.
- Liu, J.- Bjornsson, L.- Mattiasson, В., Immobilised activated sludge based biosensor for biochemical oxygen demand measurement. Biosensors and Bioelectronics 2000, 14, (12), 883−893.
- Jia, J.- Tang, M.- Chen, X.- Qi, L.- Dong, S., Co-immobilized microbial biosensor for BOD estimation based on sol-gel derived composite material. Biosensors and Bioelectronics 2003, 18, (8), 1023−1029.
- Kumlanghan, A.- Kanatharana, P.- Asawatreratanakul, P.- Mattiasson, B.- Thavarungkul, P., Microbial BOD sensor for monitoring treatment of wastewater from a rubber latex industry. Enzyme and microbial technology 2008,42, (6), 483−491.
- Kim, M. N.- Kwon, H. S., Biochemical oxygen demand sensor using Serratia marcescens LSY 4. Biosensors & bio electronics 1999, 14, (1), 1−7.
- Tag, K.- Lehmann, M.- Chan, C.- Renneberg, R.- Riedel, K.- Kunze, G., Measurement of biodegradable substances with a mycelia-sensor based on the salt tolerant yeast Arxula adeninivorans LS3. Sensors and Actuators B: Chemical 2000, 67, (1−2), 142−148.
- Yang, Z.- Suzuki, H.- Sasaki, S.- Karube, I., Disposable sensor for biochemical oxygen demand. Applied microbiology and biotechnology 1996, 46, (1), 10−14.
- Yoshida, N.- Nakamura, H.- Karube, I.- Yano, K.- Morita, T.- McNiven, S. J., A mediator-type biosensor as a new approach to biochemical oxygen demand estimation. The Analyst 2000, 125, (12), 2280−2284.
- Pasco, N.- Baronian, K.- Jeffries, C.- Webber, J.- Hay, J., MICREDOX-development of a ferricyanide-mediated rapid biochemical oxygen demand method using an immobilised Proteus vulgaris biocomponent. Biosensors & bioelectronics 2004, 20, (3), 524−32.
- Trosok, S. P.- Driscoll, B. T.- Luong, J. H., Mediated microbial biosensor using a novel yeast strain for wastewater BOD measurement. Applied microbiology and biotechnology 2001, 56, (3−4), 550−554.
- Riedel, К.- Naumov, А. V.- Grishenkov, V. G.- Boronin, A. M.- Stein, H. J.- Scheller, F.- Mueller, H.-G., Plasmid-containing microbial sensor for e-caprolactam. Appl. Microbiol Biotechnol. 1989, 31, 502−504.
- Thevenot, D. R.- Toth, K.- Durst, R. A.- Wilson, G. S., Electrochemical biosensors: recommended definitions and classification. Biosensors & bioelectronics 2001, 16, (1−2), 121−31.
- Борисов, И. А.- Лобанов, А. В.- Решетилов, A. H.- Курганов, Б. И., Количественный анализ калибровочных зависимостей биосенсоров Прикладная биохимия и микробиология 2000, 36, (3), 256−262.
- Гигиеническая оценка одежды для детей, подростков и взрослых: МУК 4.¼.3.1485−03. М.: Федеральный центр Госсанэпиднадзора Минздрава России, 2003 .-15с.
- Textbook of Modern Toxicology. 3rd ed.- A JOHN WILEY & SONS, INC., PUBLICATION: Canada, 2004.
- Общая токсикология. Под ред. А. О. Лойд. СПб.:ЭЛБИ-СПб. 2006. 224 с.
- Захаров, И. С.- Пожаров, А. В.- Гурская, Т. В.- Финогенов, А. Д., Биосенсорные системы в медицине и экологии. С.Пб.: Санкт-Петербургский государственный университет телекоммуникаций им. проф. М.А. Бонч-Бруевича. 2006- 99 с.
- Gleeson, М. A. G.- Sudbery, P. Е., Genetic analysis in the methylotrophic yeast Hansenula polymorpha Yeast 1988,4, 293−303.
- Зайцев, M. Г.- Арляпов, В. А.- Алферов, В. А.- Решетилов, А. Н., Характеристика рецепторных элементов биосенсора при двух способах иммобилизации метилотрофных дрожжей. Прикладная биохимия и микробиология 2012, 48, (5), 1−7.
- Robbens, J.- Dardenne, F.- Devriese, L.- Coen, W.- Blust, R., Escherichia coli as a bioreporter in ecotoxicology. Applied microbiology and biotechnology 2010, 88, (5), 1007−1025.
- Blattner, F. R., The Complete Genome Sequence of Escherichia coli K-12. Science 1997,277, (5331), 1453−1462.
- Санитарно-микробиологический анализ питьевой воды: МУК 4.2.101 801. М.: Федеральный центр гигиены и эпидемиологии Роспотребнадзора, 2001. — 76 с.
- Smith, Н. W., Survival of orally administered E. coli K-12 in alimentary tract of human. Nature Biotechnology 1975, 55, 500−502.
- Gvozdev, A. R.- Tukhvatullin, I. A.- Gvozdev, R. I., Quinone-dependent alcohol dehydrogenases and FAD-dependent alcohol oxidases. Biochemistry. Biokhimiia 2012,77, (8), 843−56.
- Гершкович, А. А.- Кибирев, В. К., Синтез пептидов. Реагенты и методы. Наукова думка: Киев, 1992.
- Gruzman, М. В.- Titorenko, V. I.- Ashin, V. V.- Lusta, К. A.- Trotsenko, Y. A., Multiple molecular forms of alcohol oxidase from the methylotrophic yeast Pichia methanolica. Biochemistry. Biokhimiia 1996, 61, 1537−1544.
- Ю.Ю., JL, Справочник no аналитической химии 6-е изд. перераб. и доп. ed.- Химия: М., 1989- р 448.
- Bradford, М. М., Rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical biochemistry 1976, 72, 248−254.
- Яровенко, В. Jl., Технология спирта. Колос: М., 2002.
- Гигиеническая оценка одежды для детей, подростков и взрослых: МУК 4.¼.3.1485−03. М.: Федеральный центр Госсанэпиднадзора Минздрава России, 2003 .-15с.