Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Штаммовый состав вирусов, поражающих овощные культуры на юге Дальнего Востока России

Диссертация: Штаммовый состав вирусов, поражающих овощные культуры на юге Дальнего Востока России
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Впервые изучены свойства изолятов ВТМ, идентифицированных на томате и баклажане в Нижнем Приамурье. Сравнительная характеристика приамурских и корейского изолятов ВТМ по биологическим и антигенным свойствам и изучение морфологии внутриклеточных включений показали, что данные изоляты ВТМ являются самостоятельными штаммами. Впервые на основании морфологии и физических свойств вирусных частиц, круга… Читать ещё >

Содержание

  • Глава 1. Штаммовое разнообразие вирусов, поражающих овощные культуры семейств Cucurbitaceae и Solanaceae (литературный обзор)
    • 1. 1. Вирус мозаики арбуза 1 рода Potyvirus семейства Potyviridae вредоносный для растений семейства Cucurbitaceae
      • 1. 1. 1. Характеристика вирусов рода Potyvirus
      • 1. 1. 2. История открытия и распространение вируса мозаики арбуза
      • 1. 1. 3. Биологические свойства вируса мозаики арбуза
    • 1. 2. Штаммы вируса огуречной мозаики рода Cucumovirus семейства Bromoviridae, распространенные на растениях семейств Cucurbitaceae и Solanaceae
      • 1. 2. 1. Общая характеристика вируса огуречной мозаики
      • 1. 2. 2. Биологические свойства штаммов вируса огуречной мозаики
      • 1. 2. 3. Антигенные свойства капсидного белка вируса огуречной мозаики
      • 1. 2. 4. Классификация штаммов вируса огуречной мозаики
    • 1. 3. Штаммы вируса табачной мозаики рода Tobamovirus, поражающие растения семейства Solanaceae
      • 1. 3. 1. Общая характеристика вируса табачной мозаики и некоторых его штаммов
      • 1. 3. 2. Биологические особенности штаммов вируса табачной мозаики
  • Глава 2. Материалы и методы
    • 2. 1. Вирусные изоляты, выявленные на овощных культурах семейств Cucurbitaceae и Solanaceae
    • 2. 2. Идентификация штаммов вирусов методом биологического тестирования
      • 2. 2. 1. Изучение экспериментального круга растений-хозяев и симптомов заболевания
      • 2. 2. 2. Механическая инокуляция
      • 2. 2. 3. Изучение роли тлей в передаче вирусной инфекции
      • 2. 2. 4. Определение физических свойств штаммов вирусов
      • 2. 2. 5. Изучение вирусных включений методом световой микроскопии
      • 2. 2. 6. Электронная микроскопия вирусных частиц
    • 2. 3. Выделение очищенных препаратов вирусных изолятов
      • 2. 3. 1. Получение очищенного препарата ВОМ (изолят из огурца)
      • 2. 3. 2. Методика выделения очищенного препарата ВТМ (изолят из томата)
    • 2. 4. Схема иммунизации животных
    • 2. 5. Реакция двойной иммунодиффузии
  • Глава 3. Результаты исследования
    • 3. 1. Выявление экспериментального круга растений-хозяев, проведение сравнительного анализа симптомов и изучение физических свойств изолятов вируса мозаики арбуза
      • 3. 1. 1. Изолят из кабачка
      • 3. 1. 2. Изолят из тыквы
      • 3. 1. 3. Определение антигенного родства изолятов вируса мозаики арбуза
    • 3. 2. Изучение изолятов вируса огуречной мозаики
      • 3. 2. 1. Характеристика биологических свойств изолятов
        • 3. 2. 1. 1. Изолят ВОМ из перца
        • 3. 2. 1. 2. Изолят ВОМ из баклажана
        • 3. 2. 1. 3. Изолят ВОМ, выявленный на томате
        • 3. 2. 1. 4. Изолят ВОМ, обнаруженный на огурце
      • 3. 2. 2. Характеристика очищенного препарата изолята ВОМ из огурца и специфической моноштаммовой антисыворотки
      • 3. 2. 3. Изучение антигенного родства изолятов ВОМ методом РДД
    • 3. 3. Исследование свойств изолятов вируса табачной мозаики и определение групповой принадлежности штаммов внутри вида
      • 3. 3. 1. Изолят ВТМ из томата
      • 3. 3. 2. Изолят ВТМ из баклажана
      • 3. 3. 3. Корейский изолят ВТМ
      • 3. 3. 4. Характеристика очищенного препарата изолята ВТМ из томата и специфической моноштаммовой антисыворотки
      • 3. 3. 5. Изучение антигенных взаимоотношений штаммов ВТМ методом РДД
  • Глава 4. Обсуждение результатов
  • Выводы

Штаммовый состав вирусов, поражающих овощные культуры на юге Дальнего Востока России (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Среди фитопатогенных вирусов наибольшее экономическое значение имеют вирусы, поражающие сельскохозяйственные растения, и, в частности, овощные культуры. На Дальнем Востоке России возделываются, главным образом, растения из семейств Cucurbitaceae Juss. (тыква, кабачок, огурец) и Solanaceae Juss. (томат, перец, баклажан, картофель).

Известно, что дальневосточный регион вследствие муссонного климата характеризуется повышенным инфекционным фоном, одной из составляющих которого является повсеместное распространение вирусных болезней растений. Причины этого разнообразны: возделывание сортов со слабой устойчивостью к вирусам, неконтролируемая торговля семенным и посадочным материалом, изменение агротехники и другие. Наиболее же важными являются наличие природных очагов в дикой флоре, распространение огромного числа насекомых и других переносчиков вирусов, а также появление новых, ранее неизвестных штаммов вирусов.

В процессе репродукции фитопатогенных вирусов, как правило, возникают вирионы, идентичные родительским. Вместе с тем, некоторые вирусные частицы в результате мутаций могут приобретать новые отличительные свойства. Так возникают штаммы вируса.

Мутации, приводящие к изменению свойств вируса, происходят в различных участках генома, поэтому штаммы вируса могут отличаться друг от друга по разным признакам. В связи с этим для идентификации и дифференциации штаммов фитопатогенных вирусов используются различные параметры. К числу классических критериев относятся биологические свойства (круг растений-хозяев и вызываемые симптомы заболевания), морфология и физические свойства вирионов (точка термической инактивации, период сохранения инфекционности вирусных частиц при комнатной температуре, предельное разведение инфекционного сока), физико-химические особенности вирусных капсидных белков (например, молекулярная масса белка оболочки и коэффициент седиментации частиц), антигенные свойства капсидных белков и другие (Билай, 1988; Краев, 2001; Гнутова, Толкач, 2001). С помощью молекулярно-генетических методов исследуют нуклеотидные последовательности отдельных генов или вирусной нуклеиновой кислоты в целом, аминокислотные последовательности капсидных белков и другие (Atabekov et al., 1999; Karpova et al., 1999; Novikov et al., 2000).

При изучении штаммов вирусов, как правило, преследуется две целиизучение различий между штаммами внутри данного вида вируса и определение степени родства между ними. Достижение этих целей становится возможным при изучении перечисленных выше свойств, отличающихся большой изменчивостью.

Согласно современной номенклатуре вирусы делятся на семейства, роды и виды. Штаммы по иерархической лестнице таксономии вирусов стоят на ступень ниже вида и пока не принимаются во внимание при классификации вирусов. Но, как показывают исследования последних лет, изучение конкретных штаммов вируса является актуальной задачей (Wahyuni et al., 1992; Chen et al., 2001; Gnutova, 2002). Возникновение новых штаммов является отражением мутационного процесса внутри популяции, и, следовательно, процесса эволюции вируса.

В азиатской части России, главным образом на юге Дальнего Востока и Сибири, идентифицировано 47 штаммов, 41 вид, 16 родов и 5 семейств вирусов (Гнутова, Толкач, 2001). При этом, как показывает ежегодный мониторинг распространения фитопатогенных вирусов на юге Приморского края, опасными и вредоносными в посадках овощных культур сем. Cucurbitaceae и Solanaceae остаются вирусы табачной мозаики (ВТМ) и огуречной мозаики (ВОМ). Мутационный процесс в популяциях этих вирусов происходит весьма интенсивно, следствием чего является их большое штаммовое разнообразие. Так, к концу 80-х годов XX столетия было известно более 60 штаммов ВОМ (цит. по Hayakawa et al., 1989) и 300 штаммов ВТМ (Nagai et al., 1987). И этот список ежегодно пополняется.

Цель настоящей работы состояла в исследовании биологических, физико-химических и антигенных свойств новых, ранее неизученных штаммов ВТМ, ВОМ и двух изолятов вируса мозаики арбуза 1 (ВМА-1), циркулирующих на юге Дальнего Востока на овощных культурах сем. Cucurbitaceae и Solanaceae.

При выполнении работы были поставлены следующие задачи:

1. провести мониторинг овощных культур, пораженных фитопатогенными вирусами на юге Приморского края и в Приамурье;

2. выявить ранее неизученные вирусы и штаммы вирусов;

3. исследовать морфологию вирионов изучаемых вирусов;

4. изучить экспериментальный круг растений-хозяев и провести сравнительный анализ симптомов, вызываемых выявленными штаммами вирусов;

5. получить данные о физических и физико-химических свойствах 6 вирусных частиц штаммов ВТМ, ВОМ и ВМА-1;

6. изучить антигенное родство изолятов ВМА-1 с ранее выявленными в дальневосточном регионе вирусами рода Potyvirus;

7. изучить морфологию внутриклеточных включений штаммов ВТМ;

8. исследовать антигенные взаимоотношения изолятов ВОМ, ВТМ внутри вида;

9. определить групповую принадлежность штаммов ВТМ в пределах вида tobacco mosaic virus;

10. провести сравнительный анализ биологических и антигенных свойств изолятов ВОМ для отнесения их к определенной группе штаммов внутри вида.

ВЫВОДЫ.

В ходе проведенного нами исследования штаммового состава вирусов, поражающих овощные культуры на юге Дальнего Востока России, были получены результаты, позволяющие сделать следующие выводы:

1. Впервые на основании морфологии и физических свойств вирусных частиц, круга растений-хозяев и симптоматологии идентифицирован новый для дальневосточного региона патоген, поражающий овощные культуры сем. Cucurbitaceae, — вирус мозаики арбуза 1 рода Potyvirus сем. Potyviridae. В дальневосточном регионе вирус представлен двумя штаммами.

2. Установлено, что большинство из тестированных и распространенных в регионе сортов культурных растений сем. Cucurbitaceae (С. sativus, С. реро, С. реро var. patisson, С. maxima), восприимчивы к вирусу мозаики арбуза 1.

3. Исследованы биологические, физические и антигенные свойства вирусных частиц четырех ранее неизученных изолятов вируса огуречной мозаики, выявленных на овощных культурах сем. Cucurbitaceae и Solanaceae (томат, баклажан, перец, огурец). Обнаружено, что биологические свойства исследуемых изолятов схожи, но не идентичны.

4. Получена антисыворотка против изолята ВОМ из огурца, проявившего свойства сильного иммуногена, с высоким титром — 1: 1024. Высокий титр противовирусных антител и строгая специфичность антисыворотки делают возможным ее использование для иммунодиагностики других изолятов ВОМ.

5. Исследование антигенного родства изолятов ВОМ, выявленных на овощных культурах, показало наличие на поверхности их капсидных белков идентичных эпитопов. Это позволило отнести их к группе обычных штаммов дальневосточного серотипа ВОМ рода Cucumovirus сем. Bromoviridae.

6. Впервые изучены свойства изолятов ВТМ, идентифицированных на томате и баклажане в Нижнем Приамурье. Сравнительная характеристика приамурских и корейского изолятов ВТМ по биологическим и антигенным свойствам и изучение морфологии внутриклеточных включений показали, что данные изоляты ВТМ являются самостоятельными штаммами.

7. Была определена групповая принадлежность изучаемых штаммов ВТМ. Приамурские изоляты были отнесены нами к группе томатных штаммов, корейский изолят — к табачным штаммам вида tobacco mosaic virus рода Tobamovirus.

8. Впервые в дальневосточном регионе была получена моноштаммовая.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Э.А. Вирусные болезни бахчевых культур в Казахстане // Труды ВНИИЗР. 1974. Вып. 41. С. 75−77
  2. В.И. Микроорганизмы возбудители болезней растений. Киев, 1988. 544 с.
  3. Ю.В. Сравнительная характеристика штаммов ВТМ при изучении внутриклеточных включений // Матер. Межд. конф. студентов и аспирантов по фундаментальным наукам «Ломоносов». М. 2000. С. 1112
  4. Т.Я., Можаева К. А. Свойства штамма ВТМ, выделенного из растений рода Allium // Штаммы вирусов растений. Владивосток, 1977. С. 75−77
  5. А.Х., Заитова А. З., Ахмеджанов Р. и др. Выделение томатного штамма ВТМ и получение его иммобилизованной формы // Биологические науки. 1988. № 2. С. 14−18.
  6. Ю.И. Вирусные и микоплазменные болезни растений. М., 1992. 208 с.
  7. Ю.И., Редько Т. А., Лытаева Т. К. Вирусные болезни овощных и бахчевых культур. Л., 1973. 72 с.
  8. Ю.И., Теплоухова Т. Н., Артемьева Н. Н. Эпифитотиология вируса огуречной мозаики в защищенном грунте // Бюлл. ВНИИЗР. 1986. № 66. С. 73−76
  9. Ю.И., Теплоухова Т. Н., Геворкян З. Г. Различные типы поражения томатов вирусом табачной мозаики в одинарной и смешанной инфекции // Бюлл. ВНИИЗР. 1976. № 35. С. 38−40
  10. Ю.И., Трубчанинова Т. А., Цыпленков А. Е. Об условиях появления и развития внутреннего некроза плодов томата // Вирусологические исследования на Дальнем Востоке. Владивосток, 1969. С. 139−141
  11. А., Харрисон Б. Основы вирусологии растений. М., 1978. 430 с.
  12. И.В. Сравнительная характеристика штаммов ВТМ (дальневосточные изоляты), идентифицированных на овощных культурах: дис. канд. биол. наук. Владивосток, 2000. 126 с.
  13. Р.В. Иммунологические исследования в фитовирусологии. М., 1985. 183 с.
  14. Р.В. Серология и иммунохимия вирусов растений. М., 1993. 301 с.
  15. Р.В., Волков Ю. Г., Люй-Вэньцин. Фитовирусы Дальнего Востока России и Китая // Проблемы фитовирусологии на Дальнем Востоке. Владивосток, 1996. С. 5−20
  16. Р.В., Козловская З. Н., Чуян А. Х. и др. Иммунологическая характеристика дальневосточных изолятов ВОМ // Взаимоотношения вирусов с клетками растения-хозяина. Владивосток, 1985. С. 64−71
  17. Р.В., Толкач В. Ф. Вирусы и их штаммы, идентифицированные наазиатской территории России // Микробиол. ж., в печати
  18. Р.В., Толкач В. Ф. Классификация фитопатогенных вирусов, идентифицированных на азиатской территории России //III Межд. конф. «Бюресурси та в1руси». Киев, 2001. С. 68.
  19. Р.В., Толкач В. Ф., Гнутова И.В. Tobamoviruses: новые штаммы ВТМ // Матер. Межд. конф. «Актуальные проблемы фитовирусологии и защиты растений». Минск, 1997. С. 40−41
  20. Р.В., Чуян А. Х., Крылова Н. В. и др. Характеристика некоторых дальневосточных штаммов вируса табачной мозаики // Биологические науки, 1980. № 1. С. 31−37
  21. М.И. Вирусные включения в растительной клетке и природа вирусов. М., 1963. 204 с.
  22. М.И. Мозаика у подорожника // Докл. АН СССР. 1953. Т. 88. № 5. С. 933−935
  23. М.И. Штамм вируса типа аукуба-мозаика томата // Докл. АН СССР. 1939. Т. 25. № 7. С. 632−634
  24. М.И., Вострова Н. Г. Новый штамм из группы вируса мозаики табака, дающий внутриядерные включения // Докл. АН СССР. 1959. Т. 128. № 1. С. 183−185
  25. К.Н., Варгина Г. Б. Морфологические симптомы мозаики огурцов // Грибные и вирусные болезни сельскохозяйственных культур Молдавии. Кишинев, 1977. С. 121−126
  26. Е.Н., Куст С. В. Различные методы выделения очищенного препарата ВТМ // Практикум по общей вирусологии / Под ред. И. Г. Атабекова. М., 1981. С. 69−74
  27. Т.И. Атлас вирусных и микоплазменных болезней декоративных растений. Киев, 1984. 150 с.
  28. Я. Сравнение реакции трех изолятов вируса табачной мозаики из томатов на индикаторных растениях в Латвийской ССР // Вирусы растений и насекомых. Елгава, 1974. Вып. 82. С. 20−26
  29. Н.Д. Новое заболевание огурцов «кольцевая пятнистость» // Бюлл. ВНИИЗР. 1979. № 45. С. 77−80
  30. Н.Н. Сравнительная антигенная характеристика капсидных белков потивирусов (дальневосточные изоляты) и их иммунодиагностика: автореф. дис. канд. биол. наук. Владивосток, 1995. 18 с.
  31. З.Н., Гнутова Р. В. Иммунологическая характеристика дальневосточного и европейского серотипов кукумовируса // Докл. ВАСХНИЛ. 1989. № 8. С. 20−23
  32. В.Г. Современная классификация и номенклатура вирусов растений // Микробиол. ж. 2001. Т. 63. № 2. С. 20−66
  33. А.В. Вирусы растений Дальнего Востока. II. Кукумовирусы // Влияние вирусов на обмен растений. Владивосток, 1983. С. 45−48
  34. А.В. Вирусы растений Дальнего Востока. Владивосток, 1992. 238 с.
  35. Р. Вирусы растений. М., 1973. 600 с.
  36. М. Вирусные болезни табака и меры борьбы с ними. Кишинев, 1979. 226 с.
  37. Н. Теория и практика вакцинации томатов в Японии // Вирусные болезни растений и меры борьбы с ними. Владивосток, 1980. С. 125−131
  38. Н. Штаммы ВТМ (штаммы вируса мозаики подорожника, выделенные из растений семейства Крестоцветные) // Штаммы вирусов растений. Владивосток, 1977. С. 58−69
  39. Л.П., Игнаш Я. Р. О вирусных болезнях томатов и огурцов закрытого грунта в Латвии // Матер. 7-го Прибалтийского совещ. по защите растений. Елгава, 1970. С. 89−91
  40. Т.А. Вирусные болезни сои // Болезни и вредители сои на юге Дальнего Востока и меры борьбы и ними. Владивосток, 1971. С. 104 144
  41. А.Е., Шведчикова Н. Г. Внутриклеточные включения у некоторых штаммов ВТМ // Штаммы вирусов растений. Владивосток, 1977. С. 54−57
  42. Г. Т., Полякова Г. П., Штейн-Марголина В.А. Упрощенный метод обнаружения в электронном микроскопе вирусных частиц из сока больных растений // Вопросы вирусологии. 1968. № 5. С. 633−635
  43. А.В., Полякова A.M., Рейфман В. Г. Ультраструктурная характеристика вирусного патогенеза в тканях молодых листьев табака, системно инфицированных ВТМ // Физиология растений. 1983. Т. 30. № 1. С. 115−122
  44. С.А., Леднева В. А. Вирус табачной мозаики на картофеле в Приморском крае // Фитовирусологические исследования на Дальнем Востоке, 1989. С. 191−193
  45. С.И., Гнутова Р. В. Антигенная характеристика вируса табачной мозаики, выделенного из картофеля в Приморском крае // Проблемы фитовирусологии на Дальнем Востоке. Владивосток, 1996. С. 52−58
  46. Ю.П., Макутенайте М. К., Зитикайте И. С. Некоторые свойства изолятов вируса огуречной мозаики (ВОМ), выделенных из бобовых и декоративных растений в Литве // Штаммы вирусов растений. Владивосток, 1977. С. 198−203
  47. Т.Н., Малевич В. М., Рублева Н. В. и др. Вирусные болезни овощных культур в Приморском крае // Пути повышения продуктивности растениеводства, кормопроизводства и садоводства на Дальнем Востоке. Владивосток, 1987. С. 183−187
  48. А.Н. Вредоносность вирусных болезней томатов в условиях Приморского края // Вирусологические исследования на Дальнем Востоке. Владивосток, 1969. С. 211−212
  49. В.Ф. Идентификация и биологическая характеристика поти- и тобамовирусов (дальневосточные изоляты): автореф. дис. канд. биол. наук. Владивосток, 1995. 24 с.
  50. В.Ф., Чуян А. Х., Шафрановская И. В. и др. Биологическая характеристика ВТМ, изолированного из ириса в Приморском крае // Бюлл. Гл. Бот. Сада. 1988. Вып. 157. С. 72−76
  51. В.Ф., Волков Ю. Г., Гнутова Р. В. Характеристика дальневосточного изолята ВТМ, обнаруженного на перце // Докл. ВАСХНИЛ. 1992. № 1. С. 30−35
  52. В.Ф., Волошина Н. М. Влияние вируса огуречной мозаики на урожайность овощных культур в Приморском крае // Тез. докл. Межд. конф. «Физиология растений наука III тысячелетия». М., 1999. С. 282 283
  53. А.Е. Реакция различных видов, сортов, гибридов томатов на изоляты ВОМ // Теория и практика использования иммунитета сельскохозяйственных культур к вирусным болезням. Вильнюс, 1984. С. 129−130
  54. А.Х., Крылов А. В., Малевич В. М. и др. Вирус огуречной мозаики в Приморском крае // Вирусные болезни сельскохозяйственных растенийи меры борьбы с ними. М., 1978. С. 147−148
  55. А.Х., Стрекозова В. Ф., Крылов А. В. Сравнительная характеристика двух штаммов вируса табачной мозаики, изолированных из нарциссов в Приморском крае // Взаимоотношения вирусов с клетками растения-хозяина. Владивосток, 1985. С. 72−78
  56. И.В., Козловская З. Н., Толкач В. Ф. и др. Биологические и антигенные свойства дальневосточного изолята ВОМ, выделенного на перце // Фитовирусы Дальнего Востока. Владивосток, 1993. С. 114−121
  57. Т.П. Биологические и молекулярные особенности изолятов вируса табачной мозаики (Tobamovirus), выделенных с различных регионов Украины: автореф. дис. канд. биол. наук. Киев, 2001. 18 с.
  58. Р.А. Вирусные болезни огурцов в закрытом грунте в некоторых хозяйствах Литвы // Матер. 7-го Прибалтийского совещ. по защите растений. Елгава, 1970. С. 101
  59. Abdalla О.А., Desjardins PR., Doddls J.A. Identification, disease incidence, and distribution of viruses infecting pepper in California // Plant Disease 1991. V. 75. № 10. P. 1019−1023
  60. Adlerz W.C. Spring aphid flights and incidence of watermelon mosaic viruses 1 and 2 in Florida // Phytopathology. 1974. V. 64. № 3. P. 350−353
  61. Ahmed A.H. Occurrence of watermelon mosaic virus in the Sudan // Tropical Pest Management. 1981. V. 27. № 2. P. 279−281
  62. Allison R., Johnston R.E., Dougherty W.G. The nucleotide sequence of the coding region of tobacco etch virus genomic RNA: evidence for the synthesis of a single polyprotein // Virology. 1986. V. 154. № 1. P. 9−20
  63. Alonso-Prados J.L., Aranda M.A., Malpica J.M. et al. Satellite RNA of cucumber mosaic cucumovirus spreads epidemically in natural populations of its helper virus // Phytopathology. 1998. V. 88. № 6. P. 520−524
  64. AlSaleh M.A., AlShahwan I.M. Viruses infecting cucurbits in Riyadh, Gassim and Hail regions of Saudi Arabia // Arab. Gulf. J. Sci. Res. 1997. V. 15. №. 1. P. 223−254
  65. Anderson C.W. Two watermelon mosaic virus strains from Central Florida // Phytopathology. 1954. V. 44. № 1. P. 198−202
  66. Assis F.F.M., Sherwood J.L. Evalution of seed transmission of turnip yellowmosaic virus and tobacco mosaic virus in Arabidopsis thaliana // Phytopathology. 2000. V. 90. № 11. P. 1233−1238
  67. Atabekov J.G., Malyshenko S.I., Morozov S.Yu. et al. Identification and study of tobacco mosaic virus movement function by complementation tests // Phil. Trans. R. Soc. Lond. B. 1999. V. 354. P. 629−635
  68. Atabekov J.G., Morozov S.Y. Translation of plant messenger RNAs // Adv. Virus Res. 1979. V. 25. № 1. P. 1−91
  69. Atiri G.I. An isolate of cucumber mosaic virus from fluted pumpkin in Nigeria // Phytopathol. Ztschr. 1985. Bd. 114. № 3. P. 268−273
  70. Atreya C.D., Atreya PL., Thornbury D.W. et al. Site-directed mutations in the potyvirus НС-Pro gene affect helper component activity, virus accumulation, and symptom expression in infected tobacco plants // Virology. 1992. V. 191. № 1. P. 106−111
  71. Auger J.G., Escaffi O., Nome F.S. Occurrence of watermelon mosaic virus 2 on cucurbits in Chile // Plant Disease Rep. 1974. V. 38. № 7. P. 599−602
  72. Bald J.G., Paulus A.O. A characteristic form of tobacco mosaic virus in tomato and Chenopodium murale // Phytopathology. 1963. V. 53. № 6. P. 627−629
  73. Baneijee N., Wang J.-Y., Zaitlin M. A single nucleotide change in the coat protein gene of tobacco mosaic virus is in the induction of severe chlorosis // Virology. 1995. V. 207. № 1. P. 234−239
  74. Bateson M.F., Henderson J., Chaleeprom W. et al. Papaya ringspot potyvirus: isolate variability and the origin of PRSV type (Australia) // J. Gen. Virol. 1994. V. 75. № 10. P. 3547−3553
  75. Beachy R.N., Zaitlin M. Characterization and in vitro translation of the RNAs from less-than-full-length, virus-related, nucleoprotein rods present in tobacco mosaic virus preparations // Virology. 1977. V. 81. № 1. P. 160−169
  76. Beachy R.N., Zaitlin M., Bruening G. et al. A genetic map for the cowpea strain of TMV // Virology. 1976. V. 73. № 2. P. 498−507
  77. Belenovich E.V., Novikov V.K., Zavriev S.K. Biological properties and genome structure of the Kazakh isolate of tobacco mosaic virus // Molecular Biol. 2000. V. 34. № 1. P. 152−155
  78. Bhargava B. Effect of watermelon mosaic virus on the yield of Cucurbita pepo // Acta phytopathol. Acad. sci. Hung. 1977a. V. 12. № 3−4. P. 165−168
  79. Bhargava В. Some properties of two strains of watermelon mosaic virus // Phytopathol. Ztschr. 19 776. Bd. 88. № 3. P. 199−208
  80. Bhargawa K.S., Tewari J.P. Trichosanthes dioica, an additional natural host of watermelon mosaic virus // Plant Disease Rep. 1970. V. 54. № 6. P. 728−728
  81. Bridgmon G.H., Walker J.C. Gladiolus as a virus reservoir // Phytopathology. 1952. V. 42. № 1. P. 65−70
  82. Bruckart W.L., Lorbeer J.W. Cucumber mosaic virus in weed hosts near commercial fields of lettuce and celery // Phytopathology. 1976. V. 66. № 3. P. 253−259
  83. Bruening G., Beachy R.N., Scalla R. et al. In vitro and in vivo translation of the ribonucleic acids of cowpea strain of tobacco mosaic virus // Virology. 1976. V. 71. № 2. P. 498−517
  84. Brunt A.A. The general properties of potyviruses // Arch. Virol. 1994. Supplement 5. P. 316
  85. Brunt A.A. The occurrence of cucumber mosaic virus and four nematode transmitted viruses in British narcissus crops // Plant Pathology. 1966. V. 15. № 2. P. 157−160
  86. Brunt A.A., Crabtree K., Dallwitz M.J. et al. Cucumber mosaic virus // Plant Viruses Online: Descriptions and Lists from the Vide Database. 1997. lip.
  87. Brunt A.A., Crabtree K., Dallwitz M.J. et al. Watermelon mosaic 1 potyvirus // Plant viruses Online: Descriptions and Lists from the Vide Database. 1997. 7 p.
  88. Burgyan J., Beczner L., Gaboijanyi R. Relationship among some tobamoviruses.
  89. A symptomatological and serological comparison // Acta phytopathol. Acad, sci. Hung. 1978. V. 13. № 1−2. P. 75−85
  90. Burgyan J., Beezner L., Nemeth M. Relationship among some tobamoviruses.1. Serological characterization of a tobacco mosaic virus isolated from plum // Acta phytopathol. Acad. sci. Hung. 1980. V. 15. № 1−4. P. 338−348
  91. Butterfield F.J., Tolin S.A., Lambe R.C. Watermelon mosaic viruses causes a serious disease of pumpkin in Southwestern Virginia // Phytopathology. 1983. V. 73. № 6. P. 964
  92. Canto Т., Choi S.K., Palukaitis P. A subpopulation of RNA1 of cucumber mosaic virus contains З'-termini originating from RNAs 2 or 3 // J. Gen. Virol. 2001. V. 82. № 4. P. 941−945
  93. Canto Т., Prior D.A.M., Hellwald K.-H. et al. Characterization of cucumber mosaic virus. IV. Movement protein and coat protein are both essential for cell-to-cell movement of cucumber mosaic virus // Virology. 1997. V. 237. № 2. P.237.248
  94. Castello J.D., Lakshman D.K., Tavantzis S.M. et al. Detection of infectious tomato mosaic tobamovirus in fog and clouds // Phytopathology. 1995. V. 85. № 10. P. 1138
  95. Chalam T.V., Reddy M.V., Nene Y.L. et al. Some properties of a strain of cucumber mosaic virus isolated from chickpea in India // Plant Disease 1986. V. 70. № 2. P. 128−130
  96. Chen Y.K., Derks A.F., Langeveld S. et al. High sequence conservation among cucumber mosaic virus isolates from Lily // Arch. Virol. 2001. V. 146. № 10. P. 1631−1636
  97. Chen В., Francki R.I.B. Cucumovirus transmission by the aphid Myzus persicae is determined solety by the viral coat protein // J. Gen. Virol. 1990. V. 71. № 4. P. 939−944
  98. Chen J., Watanabe Y., Sako N., Ohshina K., Okada Y. Mapping of host rang restriction of the rakkyo strain of tobacco mosaic vims in Nicotiana tabacum cv. Bright Yellow // Virology. 1996. V. 226. № 2. P. 198−204
  99. Cheo P.C., Gerard J.S. Differences in virus-replicating capacity among plant species inoculated with tobacco mosaic virus // Phytopathology. 1971. V. 61. № 8. P. 1010−1012
  100. Chessin M., Zaitlin M., Solberg R.A. A new strain of tobacco mosaic virus from Lychnis alba // Phytopathology. 1967. V. 57. № 4. P. 452−453
  101. Cho J.J., Ullman D.E., German T.L. et al. Viral diseases associated with cucurbits crops in Hawaii // Phytopathology. 1989. V. 79. N° 10. P. 1194
  102. Citovsky V., Wong M.L., Show A. et al. Vizualization and characterization of tobacco mosaic virus movement protein binding to single-stranded nucleic acids // Plant Cell. 1992. V. 4. № 3. P. 397−411
  103. Cohen S., Nitzany F.F. Identity of viruses affecting cucurbits in Israel // Phytopathology. 1963. V. 53. № 2. P. 193−196
  104. Conti M., Mozenga V. Identification and prevalence of pepper viruses in Northwest Italy // Phytopathology. 1977. V. 90. № 3. P. 212−222.
  105. Corbett M.K. Some distinguishing characteristics of the orchid strain of tobacco mosaic vims // Phytopathology. 1967. V.57. № 2. P. 164−172
  106. Crescenzi A., Barbarossa L., Gallitelli D. et al. Cucumber mosaic virus populations in Italy under natural epidemic conditions and after a satellite-mediated protection test // Plant Disease. 1993. V. 77. № 1. P. 28−33
  107. Cronin S., Verchot J., Haldeman-Cahill R. et al. Long-distance movement factor: a transport function of the potyvirus helper component proteinase //
  108. Plant Cell. 1995. V. 7. № 5. P. 549−559
  109. Daniels J., Cambell R.N. Characterization of cucumber mosaic virus isolates from California // Plant Disease 1992. V. 76. № 12. P. 1245−1250
  110. Davis R.F., Mizuki M.K. Detection of cucurbit viruses in New Jersey // Plant Disease 1987. V. 71. № 1. P. 40−44
  111. Dawson W.O., Bubrick P., Grantham G.L. Modifications of tobacco mosaic virus coat protein gene affecting replication, movement and symptomatology // Phytopathology. 1988. V. 78. № 6. P. 783−789
  112. Demski J.W., Chalkley J.H. Effect of watermelon mosaic vims on yield and marketability of summer squash // Plant Disease Rep. 1972. V. 56. № 2. P. 147 150
  113. Demski J.W., Chalkley J.H. Influence of watermelon mosaic virus on watermelon // Plant Disease Rep. 1974. V. 58. № 3. P. 195−198
  114. Deom C.M., Oliver M.J., Beachy R.N. The 30-kilodalton gene product of tobacco mosaic virus potentiates virus movement // Science. 1987. V.237. № 4813. P. 389−393
  115. Devergne J.-C., Cardin L. Contribution a l’etude du virus de la mosaique du concombre (CMV). IV. Essai de classification de plusieurs isolats sur la base de leur structure antigenique // Ann. Phytopathol. 1973. V. 5. № 4. P. 409−430
  116. Devic M., Jaegle M., Baulcombe D. Cucumber mosaic virus satellite RNA (strain Y): analysis of sequences which affect systemic necrosis on tomato // J. Gen. Virol. 1990. V. 71. № 7. P. 1443−1449
  117. Diaz F.F. Identification and distribution of watermelon mosaic virus 1 in El Salvador // Plant Disease Rep. 1972. V. 56. № 5 P. 437−440
  118. Ding S-W., Anderson В., Haase H., Symons R.H. New overlapping gene encoded by the cucumber mosaic virus genome // Virology. 1994. V.198. № 2. P. 593−601
  119. Domier L.L., Shaw J.G., Rhoads R.E. Potyviral proteins share amino acid sequence homology with picorna-, como-, and caulimoviral proteins // Virology. 1987. V. 158. № 1. P. 20−27
  120. Dorokhov Y.L., Mckinen K., Frolova O.Yu. et al. A novel function for a ubiquitous plant enzyme pectin methylesterase: the hosticell receptor for the tobacco mosaic virus movement protein // FEBS. 1999. V. 461. P. 223−228
  121. Dougherty W.G., Hiebert E. Translation of potyvirus RNA in a rabbit reticulocyte lysate: cell-free translation strategy and a genetic map of the potyviral genome // Virology. 1980a. V. 104. № 1. P. 183−194
  122. Ebrahim-Nesbat F. Distribution of watermelon mosaic virus 1 and 2 in Iran // Phytopathol. Ztschr. 1974. Bd. 79. № 2. P 352−358
  123. Edwards M.C., Gonsalves D. Grouping of seven biologically defined isolates of cucumber mosaic virus by peptide mapping // Phytopathology. 1983. V. 73. № 8. P. 1117−1120
  124. Ephraim E.J. A., Sattler A.W. Distribution pattern of bean common mosaic virus in Developing bean seed // Phytopathol. 1974. V. 64. № 2. P. 269−270
  125. Esau K., Cronshaw J. Tubular components in cells of healthy and tobacco mosaic virus-infected Nicotiana // Virology. 1967. V. 33. № 1. P. 26−35
  126. Eseriu E, Perry K.L., Garcia-Arenal F. Transmissibility of cucumber mosaic virus by Aphis gossypii correlates with viral accumulation and its affected by the presence of its satellite RNA// Phytopathology. 2000. V. 90. № 10. P. 10 681 072
  127. Farreyrol K., Person M.N., Grisoni M. et al. Severe stunting of Vanilla tahitensis in French Polynesia caused by cucumber mosaic virus (CMV), and the detection of the virus in V. fragrans in Reunion island // Plant Pathol. 2001. V. 50. № 3. P. 414
  128. Feldman J.M., Gracia O. Studies of weed plants as sources of viruses. III. Natural infections of some weeds with tobacco mosaic, cucumber mosaic and potato Y viruses // Phytopathol. Ztschr. 1972. Bd. 73. № 3. P. 251−255
  129. Fischer H.U., Lockhart B.E.L. Serious losses in cucurbits caused by watermelon mosaic virus in Morocco // Plant Disease Rep. 1974. V. 58. № 1. P. 143−146
  130. Francki R.I.В., Habili N. Stabilization of capsid structure and enhancement of immunogenicity of cucumber mosaic vims (Q strains) by formaldehyde // Virology. 1972. V. 48. № 2. P. 309−315
  131. Francki R.I.В., Randies J.W., Chambers T.C. et al. Some properties of purified cucumber mosaic virus (Q strain) // Virology. 1966. V. 28. № 4. P. 729−741
  132. Freitag J.H. Seven virus diseases of cucurbits in California // Phytopathology. 1952. V. 42. № 1. P. 8
  133. Fukuda M., Okada Y., Otsuki Y. et al. The site of initiation of rod assembly on the RNA of a tomato and a cowpea strain of tobacco mosaic virus // Virology. 1980. V. 101. № 2. P. 493−502
  134. Gallitelli D., Vovlas C., Martelli G. Satellite-mediated protection of tomato against cucumber mosaic virus: II. Field test under natural epidemic conditionsin Southern Italy // Plant Disease 1991. V. 75. № 1. P. 93−95
  135. Gal-On A., Kaplan I., Roossick M.J., Palukaitis P. The kinetics of infection of zucchini squash by cucumber mosaic virus indicate a function for RNA1 in virus movement.// Virology. 1994. V. 205. № 1. P.280−289
  136. Gibbs A.J., Harrison B.D. Cucumber mosaic virus // C.M.I./A.A.B. Descriptions of plant viruses. 1970. № 1. 8 p.
  137. Gilmer A., Wilks J.M. Seed transmission of tobacco mosaic virus in apple and pear // Phytopathology. 1967. V. 57. № 2. P. 214−217
  138. Gilmer R.M., Wilks J.M. Seed transmission of tobacco mosaic virus in apple and pear // Phytopahtology. 1967. V. 57. № 2. P. 214−217
  139. Gnutova R.V. Analysis diversity species and strains of phytoviruses in agrozenosis of the Asian territory in Russia // Abstr. VHI-th symposium «International plant virus epidemiology» Aschersliben. Germany. 2002. P. 123
  140. Gnutova R. V, Sibiryakova I.I., Romanova S.A. Cucumber mosaic virus on pepper and summer squash // Mater. XIII Intern. Conf. «On viruses diseased of vegetables». Praque. Coz. Republ. 1995. P. 136−139
  141. Gnutova I.V., Tolkach V.F., Gnutova R. V Identification of TMV strains from eggplant, tomato and pepper on biological properties // Abstr. IV-th conf. of the I.S.H.S. «Vegetable virus working group». 1998. Torino lsposizioni, P. 6
  142. Gnutova R.V., Tolkach V.F. Taxonomy of the family Potyviridae // Arch. Phytopath. Pflanz. 1998. V. 31. P. 543−548
  143. Goelet P., Karn J. Tobacco mosaic vims induces the synthesis of a family of 3r coterminal messenger RNAs and their complements // J. Mol. Biol. 1982. V. 154. № 4. P. 541−550
  144. Goelet P., Lomonossoff G. P, Butter P.J.C. et al. Nucleotide sequence of tobacco mosaic virus RNA // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1982. V. 79. № 19. P. 58 185 827
  145. Goldbach R. The recombinative nature of potyviruses: implications for setting up true phylogenetic taxonomy // Arch. Virol. 1992. Suppl. 5. P. 299−304
  146. Gonsalves D., Provvidenti R., Edwards M.C. Tomato white leaf: the relation of an apparent satellite RNA and cucumber mosaic virus // Phytopathology. 1982. V. 72. № 12. P. 1533−1538
  147. Gordejchuk O. G, Krylov A.V., Krylova N.V. et al. Virus diseases of some mechanically transmitted viruses detected in Primorye territory // ZBL. Bacteriol. parasitenk., infecktion. und hyg. abt. 2. 1977. Bd. 132. № 8. P. 686 707
  148. Goregaoker S.P., Lewandowski D.J., Culver J.N. Identification and functionalanalysis of an interaction between domains of 126/183-kDa replicase-associated proteins of tobacco mosaic vims // Virology. 2001. V. 282. № 2. p. 320−328
  149. Gould A.R., Palucaitis R, Symons R.H. et al. Characterization of a satellite RNA associated with cucumber mosaic vims // Virology. 1978. V. 84. № 2. P. 443−455
  150. Govier D.A., Kassanis B. Evidence that a component other than the virus particle is need for aphid transmission of potato vims Y // Virology. 1974. V. 57. № 1. P. 285−286
  151. Govier D.A., Kassanis В., Pirone T.P. Partial purification and characterization of the potato vims Y helper component // Virology. 1977. V. 78. № 1. P. 306 314
  152. GraftonCardwell E.E., Perring T.M., Smith R.F. et al. Occurrence of mosaic viruses in melons in the Central Valley of California // Plant Disease. 1996. V. 80. № 10. P. 1092−1097
  153. Granier F., Durand- Tardif M., Casse-Delbart F., Lecoq H., Robaglia C. Mutations in zucchini yellow mosaic vims helper component protein associated with loss of aphid transmissibility // J. Gen. Virol. 1993. V.74. № 12. P. 27 372 742
  154. Grdzelishvili V.Z., Chapman S.N., Dawson W.O. et al. Mapping of the tobacco mosaic virus movement protein and coat protein subgenomic RNA promotors in vivo // Virology. 2000. V. 275. № 1. P. 177−192
  155. Greber R.S. Watermelon mosaic virus-1 and virus-2 in Queensland cucurbit crops // Ausral. J. Agricult. Res. 1978. V. 29. № 6. P. 1235−1245
  156. Green S.K., Deng T.C. Turnip mosaic vims strains in cmciferous hosts in Taiwan // Plant Disease. 1985. V. 69. № 1. P. 28−31
  157. Grieco F., Lanava C., Gallitelli D. Evolutionary dynamics of cucumber mosaic virus satellite RNA during natural epidemics in Italy // Virology. 1997. V. 229. № 1. P. 166−174
  158. Grogan R.G., Hall D.H., Kimble K.A. Cucurbit mosaic vimses in California // Phytopathology. 1959. V. 49. № 6. P. 366−376
  159. Gusui W., Kaper J.M. et al. Tomato necrosis and the 369 nucleotide Y satellite of cucumber mosaic vims: factors affecting satellite biological expression // J. Gen. Virol. 1993. V. 74. № 2. P. 161−168
  160. Hanada K., Tochihara H. Genetic analisis of cucumber mosaic, peanut stunt and chrysanthemum mild mottle vimses // Ann. Phytopathol. Soc. Jap. 1980. V. 46. № 2. P. 159−168
  161. Hanada K., Tochihara H. Some properties of an isolate of the soybean stuntstrain of cucumber mosaic virus // Phytopathology. 1982. V. 72. № 7. P. 761 764
  162. Hayakawa Т., Mizukami M., Nakajima M. et al. Complete nucleotide sequence of RNA3 from cucumber mosaic virus (CMV) strain O: comparative study of nucleotide sequence and amino acid sequence among CMV strains O, Q, D,
  163. Y // J. Gen. Virol. 1989. V. 70. № 2. P. 499−504
  164. Hayakawa Т., Mizukami M., Nakajima M. et al. Complete nucleotide sequence of RNA 3 from cucumber mosaic virus (CMV) strain Q: comparative study of nucleotide sequences and amino acid sequences among CMV strains O, Q, D,
  165. Y // J. Gen. Virol. 1989. V. 70. № 2. P. 499−504
  166. Hayes R.J., Buck K.W. Complete replication of a eukaryotic virus RNA in vitro by a purified RNA-dependent RNA polymerase // Cell. 1990. V. 63 № 3. P. 363−368
  167. Hein A. Occurrence of watermelon mosaic virus 1 on zucchini (Cucurbita pepo L. var. giromontiina Alef) in South Germany // Phytopathol. Ztschr. 1977. Bd. 89. № 3. P. 221−228
  168. Hellwald K-H., Palucaitis P. Viral RNA as a potential target for two independent mechanisms of replicase mediated resistance against cucumber mosaic virus // Cell. 1995. V. 83. № 8. P. 937−946
  169. Hiebert E., McDonald J.G. Characterization of some proteins associated with viruses in the potato Y-group // Virology. 1973. V. 56. № 2. P. 349−361
  170. Hill H.J., Shepard R.J. Molecular weights of plant virus coat proteins by polyacrylamide gel electrophoresis // Virology. 1972. V. 47. № 3. P. 817−822
  171. Hills G.J., Plaskitt K.A., Young N.D. et al. Immunogold localization of the intracellular sites of structural and nonstructural tobacco mosaic virus proteins // Virology. 1987. V. 161. № 2. P. 488−496
  172. Holmes F.O. A distinctive strain of tobacco mosaic virus from Plantago // Phytopathology. 1941. V. 31. № 12. P. 1089−1098
  173. Horvath J. New artificial hosts and non-hosts of plant viruses and their role inthe identification and separation of viruses. X. Cucumovirus group: cucumber mosaic virus //Acta phytopathol. Acad. sci. Hung. 1979a. V. 14. № 3−4. P. 285 295
  174. Horvath J. The role of some plants in the ecology of cucumber mosaic virus with special regard to bean // Acta phytopathol. Acad. sci. Hung. 1983. V. 18. № 4. P. 217−224
  175. Hsu H.T., Barzuna L., Hsu Y.H. et al. Identification and subgrouping of cucumber mosaic virus with mouse monoclonal antibodies // Phytopathology. 2000. V. 90. № 6. P. 615−620
  176. Huet H., Gal-On A., Meir E., Lecoq H., Raccah B. Mutations in the helper component-proteinase gene of zucchini yellow mosaic virus affect its ability to mediate aphid transmissibility// J. Gen. Virol. 1994. V.75. № 6. P. 1407−1414
  177. Hunter T.R., Hunt Т., Knowland J. et al. Messenger RNA for the coat protein of tobacco mosaic virus // Nature. 1976. V. 260. № 6. P. 759−764
  178. Huttinga Y., Mosch E. Properties of virus of the potyviruses group // J. Plant Pathol. 1974. V. 80. № 1. P.19−27
  179. Jain R.K., Pappu H.R., Pappu S.S. et al. Molecular characterization of papaya ringspot potyvirus isolates from India // Ann. Appl. Biol. 1998. V. 132. № 3. P. 413−425
  180. Johnson E.M., Valleau W.D. Field strains of tobacco mosaic virus // Phytopathology. 1946. V. 36. № 2. P. 112−116
  181. Jones R.A.C., McKirdy S.I. Seed-borne cucumber mosaic virus infection of subterranean clover in Western Australia // Ann. Appl. Biol. 1990. V. 116. № 1. P. 73−76
  182. Kadare G., Haenni A. Virus-encoded RNA helicases // J. Virol. 1997. V. 71. № 11. P. 2583−2590
  183. Kado S., Regenmortel M.H.V., Knight C.A. Studies on some strains of tobacco mosaic virus in orchids // Virology. 1968. V. 34. № 1. P. 17−24
  184. Kaper J.M., Re G.G. Reexamination of the RNA content and the limiting RNA size of three strains of cucumber mosaic virus // Virology. 1974. V. 60. № 1. P. 308−311
  185. Kaper J.M., Tousignant M.E. Cucumber mosaic virus-associated RNA5. I. Role of host plant and helper strain in determining amount of associated RNA5 with virions // Virology. 1977. V. 80. № 1. P. 186−195
  186. Kaper J.M., Tousignant M.E., Steen M.T. Cucumber mosaic virus-associated RNA5: XI. Comparison of 14 CARNA5 variants relates ability to induce tomato necrosis to a conserved nucleotide sequence // Virology. 1988. V. 163. № 2. P. 284−292
  187. Kaper J.M., Waterworth H.E. Cucumber mosaic vims associated RNA5: causal agent for tomato necrosis // Science. 1977. V. 196. № 4288. P. 429−431
  188. Kaplan I.В., Gal-On A., Palukaitis P. Characterization of cucumber mosaic virus. III. Localization of sequences in the movement protein controlling systemic infection in cucurbits // Virology. 1997. V.230. № 2. P. 343−349
  189. Kaplan I.В., Zhang L., Palukaitis P. Characterization of cucumber mosaic vims. V. Cell-to-cell movement requires capsid protein but not virions // Virology. 1998. V. 246. № 2. P. 221−231
  190. Karpova O.V., Ivanov K.I., Rodionova N. P et al. Nontranslatability and dissimilar behavior in plants and protoplasts of viral RNA and movement protein complexes formed in vitro // Virology. 1997. V. 230. № 1. P. 11−21
  191. Karpova O.V., Rodionova N. P, Ivanov K.I. et al. Phosphorylation of tobacco mosaic vims movement protein abolishes its translation repressing ability // Virology. 1999. V. 261. № 1. P. 20−24
  192. Kasschau K.D., Cronin S., Carrington J.C. Genome amplification and longdistance movement functions associated with the central domain of tobacco etch potyvirus helper component-proteinase // Virology. 1997. V. 228. № 2. P. 251 262
  193. Kearney C.M., Gonsalves D., Prowidenti R. A severe strain of cucumber mosaic vims from China and its associated satellite RNA // Plant Disease. 1990. V. 74. № 10. P. 819−823
  194. Kearney C.M., Thomson M.J., Roland K.E. Genome evolution of tobacco mosaic virus populations during long-term passaging in a diverse range of hosts
  195. Arch. Virol. 1999. V. 144. № 8. P.1513−1526
  196. Kiriyama K. Preparation of mouse ascites antibody against tobacco stunt disease antigen and its application for serodiagnosis // Ann. Phytopathol. Soc. Jap. 1975. V. 41. № 3. P. 373−377
  197. Kiriyama K., Oshumi H. Antibody production in tumorous ascites of mice infected with plant viruses // Ibid. 1973. V. 39. № 4. P. 318−324
  198. Kiselyova O.I., Yaminsky I, V., Karger E.M. et al. Visualization by atomic force microscopy of tobacco mosaic vims movement protein-RNA complexes formed in vitro // J. Gen. Virol. 2001. V. 82. № 10. P. 1503−1508
  199. Klein P.G., Klein R.R., Rodriguez-Cerezo E. et al. Mutational analysis of the tobacco vein mottling vims genome // Virology. 1994. V. 204. № 2. P. 759−769
  200. Knapp E., Lewandowski D.J. Tobacco mosaic vims, not just a single component vims anymore // Mol. Plant Pathol. 2001. V. 2. № 3. P. 117−122
  201. Knorr D.A., Dawson W.O. A point mutation in the tobacco mosaic vims capsid protein gene induces hypersensitivity in Nicotiana sylvestris // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1988. V. 85. № 1. P. 170−174
  202. Kuan Ch.-R, Chen K.-H., Su H.J. Serological characterization of papaya ringspot vims isolates in Taiwan // Bot. Bull. Acad. Sin. 1999. V. 40. № 1. P. 231−236
  203. Kwon S-B., Sako N. A new strain of tobacco mosaic vims infecting rakkyo (Allium chinense G. Don) // Ann. Phytopathol. Soc. Jap. 1994. V. 60. № 1. P. 36−44
  204. Lain S., Martin M.T., Ricchmann J.L., Garcia J.A., Novel catalytic activity associated with positive-strand RNA vims infection: nucleic acid-stimulated ATP-ase activity of the plum pox potyvirus helicase protein // J. Virol. 1991. V. 65. № 1. P. 1−16
  205. Lana O.A., Agrios G.N. Properties of a strain of tobacco mosaic vims isolated from white ash trees // Phytopathology. 1974. V. 64. № 12. P. 1490−1495
  206. Lastra R. Occurrence of cucurbit vimses in Venezuela // Plant Disease Rep. 1968. V. 52. № 2. P. 171−174
  207. Lawson R.H. Oakleaf chlorosis symptomatic of cucumber mosaic vims infection in dahlia // Phytopathology. 1966. V. 56. № 3. P. 343−344
  208. Lecoq H., Lot H., Pitrot M. First identification of watermelon mosaic vims type 1 (WMV1) in southwestern France //Agronomie. 1982. V. 2. № 8. P. 787
  209. Leeuw G. Tobacco mosaic virus in Hippeastmm hybridum // Nether. J. Plant Pathol. 1972. V. 78. № 2. P. 69−71
  210. Lewandowski D.J. A single mutation in the tobacco mosaic vims 126/183 kDaproteins eliminates symptom production // Phytopathology. 1994. V.84. № 8. P. 869
  211. Lewandowski D.J., Dawson W.O. Functions of the 126- and 183-kDa proteins of tobacco mosaic virus // Virology. 2000. V. 271. № 1. P. 90−98
  212. Lindberg G.D., Hall D.H., Walker J.C. A study of melon and squash mosaic viruses // Phytopathology. 1956. V. 46. № 9. P. 489−495
  213. Lisa V., Boccardo G., DAgostino G. et al. Characterization of a potyvirus that causes zucchini yellow mosaic // Phytopathology. 1981. V. 71. № 5. P. 668−672
  214. Lot H., Kaper J.M. Physical and chemical differentiation of three strains of cucumber mosaic vims and peanut stunt virus // Virology. 1976. V. 74. № 1. P. 209−222
  215. Luis-Arteaga M., Alvarez J.M., Alonso-Prados J.L. et al. Occurrence, distribution, and relative incidence of mosaic viruses infecting field-grown melon in Spain // Plant Disease. 1998. V. 82. № 9. P. 979−982
  216. Maia I.G., Bernardi F. Nucleic acid-binding properties of a bacterially expressed potato vims Y helper component-proteinase // J. Gen. Virol. 1996. V. 71. № 1. P. 203−210
  217. Maia I.G., Haenni A-L., Bernardi F. Potyviral НС-Pro: a multifunctional protein // J. Gen. Virol. 1996. V. 77. № 7. P. 1335−1341
  218. Mamula D., Juretic N., Horvath J. et al. Identification and serological properties of tomato mosaic vims isolated in Hungary // Acta phytopathol. Acad. sci. Hung. 1974. V. 9. № 3−4. P. 261−276
  219. Mansour A., Al-Musa A. Incidence, economic importance and prevention of watermelon mosaic virus-2 in squash (Cucurbita pepo) fields in Jordan // Phytopathol. Ztschr.1982. Bd. 103. № 1. P. 35−40
  220. Marathe R., Anandalakshmi R., Liu Y. et al. The tobacco mosaic vims resistence gene, N // Mol. Plant Pathol. 2002. V. 3. № 3. P. 167−172
  221. Mayers C.N., Palukaitis P., Carr J.P. Subcellular distribution analysis of the cucumber mosaic virus 2b protein // J. Gen. Virol. 2000. V. 81. № 1. P. 219 226
  222. Mayo M.A., Pringle C.R. Vims taxonomy 1997 // J. Gen. Virol. 1998. V. 79. № 6. P. 649−657
  223. McDaniel L.L., Maratos M.L., Goodman J.E. et al. Partial characterization of a soybean strain of tobacco mosaic virus // Plant Disease 1995. V. 79. № 2. P. 206−211
  224. McRitchie J.J. Four pathogenic strains of TMV on tomato // Phytopathology. 1960. V 50. № 9. P. 645
  225. McRitchie J.J., Alexander L.J. Host-specific Lycopersicon strains of tobacco mosaic virus // Phytopathology. 1960. V. 53. № 4. P. 394−398
  226. Meer van der F.W., Garnett H.M. Purification and identification of South African isolate of watermelon mosaic virus Morocco // Phytopathol. Ztschr. 1987. Bd. 120. № 3. P. 255−270
  227. Mejia M. V. G., Hiebert E., Purcifull D.E. et al. Identification of potyviral amorphous inclusion as a nonstructural virus-specific protein related to helper component // Virology. 1985a. V. 142. № 1. P. 34−43
  228. Mejia M.V.G., Hiebert E., Purcifull D.E. Isolation and partial characterization of the amorphous cytoplasmic inclusions associated with infections caused by two potyviruses //Virology. 19 856. V. 142. № 1. P. 24−33
  229. Meshi Т., Motoyoshi F., Maeda T. et al. Mutations in the tobacco mosaic virus 30-kD protein gene overcome Tm-2 resistence in tomato// Plant Cell. 1989. V. 1. № 5. P. 515−522
  230. Milne K.S., Grogan R.G. Characterization of watermelon mosaic virus strains by serology and other properties // Phytopathology. 1969. V. 59. № 6. P. 809 818
  231. C.M., Фегла Г.1. Вплив Bipycy мозапси кавуна на розвиток гарбузових культур // Мжробюлопчний журнал. 1972. № 2. С. 240−244
  232. С.М., Фегла ГЛ., Глушак Л. Ю. Деяю BipycHi захворювання гарбузових культур в швденних областях Украши // М1кробюлопчний журнал. 1970. № 6. С. 735−738
  233. Mokra V., Cach М., Pordene J. et al. Tulip necrosis caused by tobacco mosaic vims // Phytopathol. Ztschr. 1973. Bd. 76. № 1. P. 46−56
  234. Montasser M.S., Tousignant E., Kaper J.M. Satellite-mediated protection of tomato against cucumber mosaic virus: 1. Greenhouse experiments and simulated epidemic conditions in the field // Plant Disease. 1991. V. 75. № 1. P. 86−92
  235. Moorman G.W. Cucumber mosaic virus disease-induced crystalline inclusion appearance, enlargement, and dispersal in sweet peppers // Phytopathology. 1982. V. 72. № 7. P. 939
  236. Moorman G.W., Woodbridge W.C. Morphogenesis of cucumber mosaic virusinduced crystalline inclusions in pepper // Phytopathology. 1983. V. 73. № 8. P. 1106−1108
  237. Mossop D.W., Francki R.I.B. Association of RNA3 with aphid transmission of cucumber mosaic virus // Virology. 1977. V. 81. № 1. P. 177−181
  238. Murphy F.A., Fauquet C.V., Bishop D.H.L. et al. Virus taxonomy // Arch. Virol. 1995. V. 128. № 6. P. 586−590
  239. Nagai J., Choi Y.M., Tochihara H. TMV-U, a new strain of tobacco mosaic virus isolated from sweet pepper // Ann. Phytopathol. Soc. Jap. 1987. V. 53. № 4. P. 540−543
  240. NG J.C.K., Liu S., Pery K.L. Cucumber mosaic virus mutamts with altered physical properties and defective in aphid vector transmission // Virology. 2000. V. 276. № 2. P. 395−403
  241. NG J.C.K., Perry K.L. Cucumber mosaic virus mutants with altered physical properties and defective in aphid transmission // Phytopathology. 2000. V. 90. № 6. P. 55
  242. Nitta N., Masuta C., Kuwata S. et al. Inoculation with RNA1 and 2 of cucumber mosaic virus induces viral RNA replicase activity in tobacco mesophyll protoplasts // J. Gen. Virol. 1988. V. 69. № 10. P. 2695−2700
  243. Novikov V.K., Belenovich E.V., Dobrov E.N. et al. Kazakh strains of tobacco mosaic virus: two strains with potentially destabilizing amino acid substitutions in the coat protein // Physiol. Mol. Plant Pathol. 2000. V. 56. № 2. P. 71−77
  244. Ogawa Т., Watanabe Y., Meshi Т., Okada Y. Trans complementation of virus-encoded replicase components of tobacco mosaic virus // Virology. 1991. V.85. № 2. P. 580−584
  245. Ohno Т., Aoyagi M., Yamanashi Y. et al. Nucleotide sequence of the tobacco mosaic virus (tomato strain) genome and comparison with common strain genome // J. Biochem. 1984. V. 96. № 6. P. 1915−1923
  246. Ohno Т., Takamatsu N., Meshi T. et al. Single amino acid substitution in 30 kDa protein of TMV defective in virus transport function // Virology. 1983. V. 131. № 1. P. 255−258
  247. O’Reilly E.K., Kao C.C. Analysis of RNA-dependent RNApolymerase structure and function as guided by known polymerase structures and computer predictions of secondary structure // Virology. 1998. V. 252. № 2. P. 287−303
  248. Owen J., Palukaitis P. Characterization of cucumber mosaic virus. I. Molecular heterogeneity mapping of RNA3 in eight CMV strains // Virology. 1988. V. 166. № 2. P. 495−502
  249. Owen J., Shintaku M., Aeschleman P. et al. Nucleotide sequences andevolutionary relationships of cucumber mosaic vims (CMV) strains: CMV RNA2 // J. Gen. Virol. 1990. V. 71. № 10. P. 2243−2249
  250. Palukaitis P., Zaitlin M. Satellite RNAs of cucumber mosaic virus: characterization of two new satellites // Virology. 1984. V. 132. № 2. P. 426 435
  251. Pares R.D., Gunn L.V. The role of non-vectored soil transmission as a primary source of infection by pepper mild mottle and cucumber mosaic virus in glasshouse-grown Capsicum in Australia // Phytopathol. Ztschr. 1989. Bd. 126. № 4. P. 353−360
  252. Patel K.V., Mali V.R. Comparative studies of three isolates of cucumber mosaic virus from banana // Indian Phytopathol. 1983. V. 36. № 3. P. 443−447
  253. Paulsen A., Niblett C.L., Willis W.G. Natural occurrence of tobacco mosaic vims in wheat // Plant Disease Rep. 1975. V. 59. № 9. P. 747−750
  254. Paulus A.O., Kendrick J.R., Weathers L.G. Cucumber mosaic vims on pepper in California // Phytopathology. 1962. V. 52. № 1. P. 25
  255. Peden K.W.C., Symons R.H. Cucumber mosaic vims contains a functionally divided genom // Virology. 1973. V. 53. № 2. P. 487−492
  256. Perry K.L., Habili N., Dietzgen R.G. A varied population of cucumber mosaic vims from pepper // Plant Pathol. 1993. V. 42. № 5. P. 806−810
  257. Perry K.L., Zhang L., Palucaitis P. Amino acid changes in the coat protein of cucumber mosaic vims differentially affect transmission by the aphids Myzus persicae and Aphis gossypii // Virology. 1998. V. 242. № 1. P. 204−210
  258. Phatak H.C., Verma V.S. A strain of tobacco mosaic virus from potato // Phytopathol. Ztschr. 1967. Bd. 59. № 1. P. 141−146
  259. Piazolla P., Diaz-miz J.R., Kaper J.M. Nucleic acid homologies of eighteen cucumber mosaic vims isolates determined by competition hybridization //J. Gen. Virol. 1979. V. 45. № 2. P. 361−369
  260. В.П., Будзашвська I.Г., Рижук С.М. et al. Мошторинг в1русних шфекцш рослин в бюценозах Украши. Кшв, 2001. 219 с.
  261. Pop I., Jilaveanu А. О boala necrotica a vinetelor pro dusl de vimsul mozaicului tutunului // Stud. Si. Cere. Biol. 1975. V. 27. № 3. P 239−243
  262. Porta C., Devergne J.C., Cardin L. et al. Serotype specificity of monoclonal antibodies to cucumber mosaic virus // Arch. Virol. 1989. V. 104. № 3−4. P. 271−285
  263. Price W.C., Fenne S.B. Tomato rosette, a severe disease caused by a strain of tobacco mosaic vims // Phytopathology. 1951. V. 41. № 12. P. 1091−1098
  264. Provvidenti R., Gonsalves D., Humaydan H.S. Occurrence of zucchini yellowmosaic vims in cucurbits from Connecticut, New York, Florida, and California // Plant Disease 1984. V. 68. № 5. P. 443−446
  265. Provvidenti R., Robinson R.W. Resistence to squash mosaic virus and watermelon mosaic vims 1 in Cucumis metulifems // Plant Disease Rep. 1974. V. 58. № 10. P. 735−738
  266. Purcifull D.E., Hiebert E. Serological distinction of watermelon mosaic vims isolates // Phytopathology. 1979. V. 69. № 2. P. 112−116
  267. Quemada H., Kearney C., Gonsalves D. et al. Nucleotide sequences of the coat protein genes and flanking regions of cucumber mosaic vims strains С and WL RNA3 // J. Gen. Virol. 1989. V. 70. № 5. P. 1065−1073
  268. Quemada H.L., Hostis В., Gonsalves D. et al. The nucleotide sequences of the З'-terminal regions of papaya ringspot vims strains W and P // J. Gen. Virol. 1990. V. 71. № 2. P. 203−210
  269. Raccah В., Lai-On A., Eastop V.F. The role of flying aphid vectors in the transmission of cucumber mosaic vims and potato vims Y to pepper in Israel // Ann. Appl. Biol. 1985. V. 106. № 3. P. 451−460
  270. Rao A.L.N., Francki R.I.B. Distribution of determinants for symptom production and host range on the three RNA components of cucumber mosaic vims // J. Gen. Virol. 1982. V. 61. № 2. P. 197−205
  271. Rao A.L.N., Hatta Т., Francki R.I.B. Comparative studies on tomato aspermy and cucumber mosaic vimses. VII. Serological relationships reinvestigated // Virology. 1982. V. 116. № 1. P. 318−326
  272. Raybov E.V., Roberts I.M., Palukaitis P. et al. Host-specific cell-to-cell and long-distance movements of cucumber mosaic virus are facilitated by the movement protein of groundnut rosette vims // Virology. 1999. V. 260. № 1. P. 98−108
  273. Regenmortel van M.H.V. Zone electrophoresis and electron microscopy of a watermelon mosaic vims in South Africa //Virology. 1960. V. 12. № 1. P. 127 130
  274. Regenmortel van M.H.V. Zone electrophoresis and particle size of cucumber mosaic virus // Virology. 1961. V. 15. № 1−2. P. 221−223
  275. Regenmortel van M.H.V., Brandes J., Bercks R. Investigations on the properties of watermelon mosaic virus // Phytopathol. Ztschr. 1962. Bd. 45. № 3. P. 205 216
  276. Regenmortel van M.H.V., Fauquet C.M., Bishop D.H.L. et al. Vims taxonomy. Seventh report of the international committee on taxonomy of viruses. New York, San Diego: Acad, press, 2000. 1121 p.
  277. Regenmortel van M.H.V., Hendry D.A., Baltz T. A reexamination of the molecular size of cucumber mosaic virus and its coat protein // Virology. 1972. V. 49. № 3. P. 647−653
  278. Restrepo-Hartwig M.A., Carrington J.C. The tobacco etch potyvirus 6-kilodalton protein is membrane associated and involved in viral replication // J. Gen. Virol. 1994. V. 68. № 11. P. 2388−2397
  279. Rezaian M.A., Williams R.H.V., Gordon K.H.J, et al. Nucleotide sequence of cucumber mosaic virus RNA2 reveals a translation product significantly homologous to corresponding proteins of other viruses // Europ. J. Biochem. 1984. V. 143. № 2. P. 277−284
  280. Rezaian M.A., Williams R.H.V., Symons R.H. Nucleotide sequence of cucumber mosaic virus RNA1 // Europ. J. Biochem. 1985. V. 150. № 2. P. 331 339
  281. Rhee Y., Tzfira Т., Chen M.-H. et al. Cell-to-cell movement of tobacco mosaic virus: enigmas and explanations // Mol. Plant Pathol. 2000. V. 1. № 1. P. 3339
  282. Riechmann J.L., Lain S., Garcia J.A. Highlights and prospects of potyvirus molecular biology // J. Gen. Virol. 1992. V. 73. № 1. P. 1−6
  283. Rist D.L., Lorbeer J.W. Occurrence and overwintering of cucumber mosaic virus and broad bean wilt virus in weeds growing near commercial lettuce fields in New-York // Phytopathology. 1986. V. 79. № 1. P. 65−69
  284. Rizzo T.M., Palukaitis P. Nucleotide sequences and evolutionary relationships of cucumber mosaic virus (CMV) strains: CMV RNA2 // J. Gen. Virol. 1988. V. 69. № 8. P. 1777−1787
  285. Robaglia C., Durand-Tardif M., Tronchet M. et al. Nucleotide sequence of potato virus Y (N strain) genomic RNA // J. Gen. Virol. 1989. V. 70. № 5. P. 935−947
  286. Rodriguez-Cerezo E., Ammar E.D., Pirone T.P. et al. Association of the nonstructural P3 viral protein with cylindrical inclusions in potyvirus-infected cells // J. Gen. Virol. 1993. V. 74. № 10. P. 1945−1949
  287. Rodriguez-Cerezo E., Shaw J.G. Two newly detected nonstructural viral proteins in potyvirus-infected cells // Virology. 1991. V. 185. № 2. P. 572−579
  288. Roggero P., Ciuffo M., Lenzi R. Natural infection by cucumber mosaic virus (Cucumovirus- Bromoviridae) in Fuchsia boliviana Carr and the insusceptibility of other Fuchsia species and hybrids to the virus // Plant Pathol. 2000. V. 49. № 6. P. 802
  289. Rojas M.R., Zerbini F.M., Allison R.F. et al. Capsid protein and helpercomponent-proteinase function as potyvirus cell-to-cell movement proteins // Virology. 1997. V. 237. № 2. P. 283−295
  290. Roossinck M.J. Cucumber mosaic virus, a model for RNA virus evolution // Mol. Plant Pathol. 2001. V. 2. № 2. P. 59−63
  291. Roossinck M.J., Zhang L., Hellwald K.H. Rearrangements in the 5'-nontranslated region and phylogenetic analysis of cucumber mosaic virus RNA3 indicate radial evolution of three subgroups // J. Virol. 1999. V. 73. № 8. P. 6752−6758
  292. Saito Т., Hosokawa D., Meshi T. et al. Immunocytochemical localization of the 130 К and 180 К proteins (putative replicase components) of tobacco mosaic virus // Virology. 1987. V. 160. № 2. P. 477−481
  293. Saito Т., Yamanaka K., Watanabe Y. et al. Mutational analysis of the coat protein gene of tobacco mosaic virus in relation to hypersensitive response in tobacco plants with N'-gene // Virology. 1989. V.173. № 1. P. 11−20
  294. Sammons В., Barnett O.W. Viruses infected yellow summer squash (Cucurbita pepo) in South Carolina // Phytopathology. 1984. V. 75. № 5. P. 632
  295. Sammons В., Barnett O.W., Davis R.F. et al. A survey of viruses infected yellow summer squash in South Carolina // Plant Disease. 1989. V. 73. № 5. P. 401 404
  296. Schaad M.C., Anderberg R.J., Carrington J.C. Strain-specific interaction of the tobacco etch virus Nia protein with the translation initiation factor eIF4E in the yeast two-hybrid system // Virology. 2000. V. 273. № 2. P. 300−306
  297. Schwinghamer M.W., Symons R.H. Fractionation of cucumber mosaic vims RNA and its translation in a wheat embryo cell-free system // Virology. 1975. V. 63. № 2. P. 252−262
  298. Schwinghamer M.W., Symons R.H. Translation of the four major RNA species of cucumber mosaic vims in plant and animal cell free system and toad oocytes // Virology. 1977. V. 79. № 1. P. 88−108
  299. Shevchenko T.P., Shevchenko O.V., Polischuk V.P. et al. Coat protein analysis of two isolates of tobacco mosaic virus that differed in their host range // Abstr. of Sixth Internat. Symposium on positive strand RNA viruses. 2001. Paris, France. P. 4
  300. Shintaku M.H., Carter S.A., Bao Y., Nelson R.S. Mapping nucleotides in the 126-kDa protein gene that control the differential symptoms induced by two strains of tobacco mosaic virus // Virology. 1996. V. 221. № 1. P.218−225
  301. Shukla D.D., Schmelzer K. Studies on viruses and vims diseases of cmciferous plants. XIV. Cucumber mosaic vims in ornamental and wild species // Actaphytopathol. Acad. sci. Hung. 1973. V. 8. № 1−2. P. 149−155
  302. Shukla D.D., Ward C.W. Amino acid sequence homology of coat proteins as a basis for identification and classification of the potyvirus group // J. Gen. Virol. 1988. V.69. № 11. P. 2703−2710
  303. Siegel A., Hari V., Montgomery I. et al. A messenger RNA for capsid protein isolated from tobacco mosaic virus-infected tissue // Virology. 1976. V. 73. № 2. P. 363−371
  304. Simons J.N. Three strains of cucumber mosaic virus affecting bell pepper in the everglades area of South Florida // Phytopathology. 1957. V. 47. № 3. P. 145−150
  305. Sivakumaran K., Chen M.-H., Roossinck M.J. et al. Core promotors for initiation of cucumber mosaic virus subgenomic RNA4A // Mol. Plant Pathol. 2002. V. 3. № 1. P. 43−47
  306. Sleat D.E., Palukaitis P. Site-directed mutagenesis of a plant viral satellite RNA changes its phenotype from ameliorative to necrogenic // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1990. V. 87. № 8. P. 2946−2950
  307. Snegireva P.B., Shiyan A.N., Istomina E.A. Complete nucleotide sequence of the V-69 tobacco mosaic vims vaccine strain // Rus. J. Gen. 1999. V. 35. № 7. P. 748−754
  308. Suzuki M., Kuwata S., Masuta S. et al. Point mutations in the coat protein of cucumber mosaic vims affect symptom expression and virion accumulation in tobacco // J. Gen. Virol. 1995. V. 76. № 7. P. 1791−1799
  309. Suzuki N., Kudo Т., Shirako Y. et al. Distribution of cylindrical inclusion, amorphous inclusion and capsid proteins of watermelon mosaic virus 2 in systemically infected pumpkin leaves // J. Gen. Virol. 1989. V. 70. № 5. P. 10 851 091
  310. Takanami Y. A striking change in symptoms on cucumber mosaic virus-infected tobacco plants induced by satellite RNA // Virology. 1981. V. 109. № 1. P. 120 126
  311. Takeshita M., Suzuki M., Takanami Y. Combination of amino acids in the 3a protein and the coat protein of cucumber mosaic vims determines symptom ezpression and viral spread in bottle gourd // Arch. Virol. 2001. V. 146. № 4. P. 697−711
  312. Taylor D.N., Carr J.P. The GCD10 subunit of yeast elF-3 binds the methyltransferase-like domain of the 126 and 183 kDa replicase protein of tobacco mosaic vims in the yeast two-hybrid system // J. Gen. Virol. 2000. V. 81. № 6. P. 1587−1591
  313. Thomas W. Watermelon mosaic vims the cause of a serious disease of cucurbits in the Cook Islands // New Zealand J. Exp.Agr. 1980. V. 8. № 3−4. P. 309−312
  314. Thornbury D.W., Pirone T.P. Helper components of two potyviruses are serologically distinct // Virology. 1983. V. 125. № 2. P. 487−490
  315. Tobias I., Maat D.Z., Huttinga H. Two Hungarian isolates of cucumber mosaic virus from sweet pepper (Capsicum annuum) and melon (Cucumis melo): identification and antiserum preparation // Neth. J. Plant Pathol. 1982. V. 88. № 5. P. 171−183
  316. Tolkach V.F., Gnutova R.V. Bean common mosaic vims (biology strain contents) // J. Russian Phytopathol. Soc. 2001. V. 2. № 1. P. 35−38
  317. Tolkach V.F., Gnutova R. V Taxonomy of phytopathogenic vimses identified in the Russian Far East // Arch. Phytopath. Pflanz. 2000. V.33. P. 187−205
  318. Toraku N, Tolin S.A. Natural infections of soybean with tobacco mosaic vims in Kosova // Acta Boil, et Med. Exp. (SERJ). 1985. V. 10. № 1. P. 17−25
  319. Tripathi G., Joshi R.D. Watermelon mosaic virus in pumpkin // Indian Phytopathol. 1985. V. 38. № 2. P. 244−247
  320. Verchot J., Carrington J.C. Debilitation of plant potyvirus infectivity by PI proteinase-inactivating mutations and restoration by second-site modifications // J. Gen. Virol. 1995. V. 69. № 8. P. 1582−1590
  321. Wahyuni W.S., Dietzgen R.G., Hanada K. et al. Serological and biological variation between and within subgroup I and II strains of cucumber mosaic vims // Plant Pathol. 1992. V. 41. № 3. P. 282−297
  322. Wang A.L., Knight C.A. Analysis of protein components of tomato strains of tobacco mosaic vims // Virology. 1967. V. 31. № 1. P. 101−106
  323. Ward C.M., Shukla D.D. Taxonomy of potyviruses: current problems and come solution // Intervirology. 1991. V.32. № 5. P.269−296
  324. Warmke H.E. Fine structure of inclusions formed by the aucuba strain of tobacco mosaic vims // Virology. 1968. V. 34. № 1. P. 149−159
  325. Warmke H.E., Edwardson J.R. Electron microscopy of crystalline inclusionsof tobacco mosaic in leaf tissue // Virology. 1966. V. 30. № 1. P. 45−57
  326. Waterworth H.E., Tousignant M.E., Kaper J.M. A lethal disease of tomato experimental induced by RNA5 associated with cucumber mosaic virus isolated from Commelina from El Salvador// Phytopathology. 1978. V. 68. № 4. P. 561 566
  327. Webb R.E. Separation and identificartion of some viruses infectious to cucurbits // Phytopathology. 1961. V. 51. № 11. P. 802−803
  328. Webb R.E. Watermelon mosaic viruses 1 and 2 in squash on the Atlantic seaboard // Plant Disease Rept. 1971. V. 55. № 2. P. 132−135
  329. Webb R.E., Scott H.A. Isolation and identification of watermelon mosaic vims 1 and 2 // Phytopathology. 1965. V. 55. № 8. P. 895−900
  330. Webb R.E., Scott H.A. Relations of 10 isolates of watermelon mosaic virus // Phytopathology. 1964. V. 54. № 7. P. 749
  331. Yamamoto Т., Ishii M., Katsube T. Serological grouping of watermelon mosaic virus isolates // Ann. Phytopathol. Soc. Jap. 1982. V. 48. № 5. P. 613−619
  332. Yilma A., Witcher W., Barnett O.W. Vimses of bell pepper, eggplant and tomato found in South Carolina // Phytopathology. 1984. V. 75. № 5. P. 634
  333. Yu M.H., Frenkel M.J., Mekern N.M. et al. Coat protein of potyviruses: 6. Amino acid sequences suggest watermelon mosaic vims 2 and soybean mosaic vims-N are strains of the same potyvirus // Arch. Virol. 1989. V. 105. № 1−2. P. 55−64
  334. Yuki V.A., Rezende J.A.M., Kitajima E.W. et al. Occurrence, distribution, and relative incidence of five vimses infecting cucurbits in the state of Sao Paulo, Brazil // Plant Disease 2000. V. 84. № 5. P. 516−520
  335. Zaitlin M. Tobacco mosaic vims and its contribution to virology // Amer. Soc. Microbiol. 1999. V. 65. № 10. P. 675−680
  336. Zaitlin M., Israel H.W. Tobacco mosaic virus (type strain) // CMI/AAB. Description of plant vimses. 1975. № 151. 5 p.
  337. Zhang L., Hanada K., Palucaitis P. Mapping local and systemic symptom determinants of cucumber mosaic cucumovirus in tobacco // J. Gen. Virol. 1994. V. 75. № 11. P. 3185−3191
  338. Zimmern D. The 5rend group of tobacco mosaic vims RNA is m7G5rppp5G //Nucleic Acids Res. 1975. V. 2. № 12. P. 1189−1201fl 61. Благодарности
  339. Автор благодарен Ю. В. Богунову за помощь в получении электронных микрофотографий.
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?