Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Олигоспоровые актиномицеты в почвах разных типов

Диссертация: Олигоспоровые актиномицеты в почвах разных типов
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Использование сукцессионного подхода к исследованию актиномицетов позволило выявить временные промежутки и условия, определяющие максимальный показатель их популяционной плотности в почве. Исследование динамики численности актиномицетов показало, что максимумы популяционной плотности родов, объединяемых в группу олигоспоровых, отмечены на разных этапах сукцессии, что свидетельствует… Читать ещё >

Содержание

  • Глава I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Экология олигоспоровых актиномицетов
    • 1. 2. Прикладное значение олигоспоровых актиномицетов
    • 1. 3. Место представителей олигоспоровых актиномицетов в системах классификаций
    • 1. 4. Методы выделения актиномицетов из природных субстратов
      • 1. 4. 1. Этапы выделения микроорганизмов
      • 1. 4. 2. Методы, основанные на подавлении роста сопутствующих организмов
      • 1. 4. 3. Методы, основанные на особенностях спор
      • 1. 4. 4. Методы, основанные на особенностях вегетативных клеток
      • 1. 4. 5. Применение метода PCR для выявления и идентификации актиномицетов в почвах и других субстратах
      • 1. 4. 6. Другие методы выявления, изоляции и идентификации актиномицетов в почвах
      • 1. 4. 7. Селективное выделение олигоспоровых актиномицетов из природных источников
      • 1. 4. 8. Методы выявления комплекса актиномицетов в ходе инициированных сукцессий
  • Глава II. ОБЪКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Объекты исследования
    • 2. 2. Методы исследования
      • 2. 2. 1. Метод фаготипирования для выявления актиномицетов в почве
      • 2. 2. 2. Метод посева из разведений почвенных суспензий для учета и выделения олигоспоровых актиномицетов
      • 2. 2. 3. Методы идентификации актиномицетов
      • 2. 2. 4. Сукцессионный анализ
  • Глава III. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 3. 1. Численность и доля олигоспоровых актиномицетов в комплексе почвенных мицелиальных прокариот
    • 3. 2. Частота встречаемости олигоспоровых актиномицетов в почвах
    • 3. 3. Вертикально-ярусное распределение олигоспоровых актиномицетов в биогеоценозах
    • 3. 4. Динамика численности популяций олигоспоровых актиномицетов в ходе сукцессии
    • 3. 5. Выявление олигоспоровых актиномицетов в различных типах почв методом фаготипирования
    • 3. 6. Сравнительная характеристика методов, использованных для выявления олигоспоровых актиномицетов в различных типах почв
    • 3. 7. Выявление некоторых родов олигоспоровых актиномицетов с применением предобработки почвенных образцов растворами хлорамина Б
  • Глава IV. ИДЕНТИФИКАЦИЯ ВЫДЕЛЕННЫХ КУЛЬТУР АКТИНОМИЦЕТОВ
  • Глава V. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
  • ВЫВОДЫ

Олигоспоровые актиномицеты в почвах разных типов (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

• Актуальность темы. В настоящее время группа актиномицетов и родственных им организмов насчитывает более 100 родов. Однако, до последнего десятилетия считалось, что наиболее распространенными в почве являются актиномицеты родов Streptomyces и Micromonospora. Использование селективных методов выявления позволяет обнаружить и другие, считавшиеся редкими роды актиномицетов.

Олигоспоровые актиномицеты — понятие не таксономическое. Под олигоспоровыми актиномицетами подразумевают группу родов, представители которых характеризуются наличием коротких цепочек спор (не более десяти) на воздушном (реже на воздушном и субстратном) мицелии, причем диаметр спор превышает диаметр гиф.

Имеются сведения об обнаружении олигоспоровых актиномицетов родов Thermomonospora, Saccharopolyspora, Saccharomonospora в саморазогревающихся субстратах и в почвах южных зон (чернозем, каштановая почва). Однако закономерности распределения этих мицелиальных прокариот в наземных экосистемах не исследованы и неизвестна их доля в актиномицетном комплексе различных почв. Среди олигоспоровых актиномицетов много продуцентов ценных биологически активных веществ: антибиотиков, витаминов, ферментов и др. Они образуют внеклеточные ферменты гидролазы и участвуют в разложении целлюлозы, хитина, гумусовых веществ в почве (The Prokaryotes, 1991).

• Целью работы было выявление закономерностей распределения олигоспоровых актиномицетов в различных типах почв и по вертикальной структуре основных типов биогеоценозов для установления экологического статуса этих мицелиальных прокариот.

• Задачи исследования:

1. Разработка и подбор методических приемов селективного выделения олигоспоровых актиномицетов из почв и растительных субстратов.

2. Определение численности, пространственной и временной локализации олигоспоровых актиномицетов в почвах основных природных зон России и стран СНГ, а также в некоторых почвах Мексики, Монголии и Аргентины.

3. Выявление закономерностей вертикально-ярусного распределения олигоспоровых актиномицетов в биогеоценозах разных типов.

4. Определение наиболее благоприятных временных промежутков и условий в микробной сукцессии для выделения олигоспоровых актиномицетов из почв основных биоклиматических зон.

5. Составление коллекции культур — представителей олигоспоровой группы актиномицетов.

• Научная новизна.

Предложен комплексный метод для селективного выделения из почвы и растительных субстратов олигоспоровых актиномицетов (тепловая предобработка воздушно-сухих образцов почвы (120°С, 1 час) — посев почвенных и растительных суспензий на селективные среды с пропионатом натрия и с гороховой мукойдобавление комплекса антибиотиков в питательные средыдлительные сроки инкубирования посевов (3—4 недели)).

Впервые показано, что олигоспоровые формы являются минорным, но постоянно присутствующим компонентом почвенных актиномицетных комплексов. Количество олигоспоровых актиномицетов увеличивается от почв северных районов к южным. В лесной зоне наиболее благоприятным местообитанием для олигоспоровых актиномицетов являются нижние слои подстилки и верхние горизонты почвы. В степном биогеоценозе олигоспоровые актиномицеты сосредоточены в почвенном ярусе. В полупустынном биогеоценозе олигоспоровые актиномицеты преобладают в карбонатно-иллювиальном горизонте серозема, где их доля в комплексе превышает долю стрептомицетов.

Использование сукцессионного подхода к исследованию актиномицетов позволило выявить временные промежутки и условия, определяющие максимальный показатель их популяционной плотности в почве. Исследование динамики численности актиномицетов показало, что максимумы популяционной плотности родов, объединяемых в группу олигоспоровых, отмечены на разных этапах сукцессии, что свидетельствует об их экологическом разнообразии и последовательном участии в разложении органического вещества.

• Практическая значимость.

Установление экологической ниши олигоспоровых актиномицетов важно для пополнения наших знаний о биоразнообразии микробного мира и способах его сохранения.

Сведения, полученные при изучении динамики численности и таксономического состава актиномицетного комплекса в ходе сукцессии, инициированной увлажнением почвы, дает возможность оптимизировать процедуру выделения нужного объекта из природных субстратов, а также управлять объектом непосредственно в почве, что имеет важное значение с точки зрения поиска природных штаммов микроорганизмов для нужд биотехнологии.

• Апробация работы. Основные положения работы доложены на Международной конференции «Ломоносов-96» (Москва, 1996), Международной конференции «Ломоносов-97» (Москва, 1997), Н-ой Открытой городской научной конференции молодых ученых города Пущино (Пущино, 1997), Всероссийской конференции «Микробиология почв и земледелие» (Санкт-Петербург, 1998), 16th Word Congress of Soil Science (Montpellier, France, 1998), Международной конференции «Ломоносов-98» (Москва, 1998), Международной конференции «Ломоносов-99» (Москва, 1999), IX International Congress of Bacteriology @ Applied Microbiology (IX ICBAM) (Sydney, Australia, 1999) и на заседании кафедры биологии почв факультета почвоведения МГУ.

• Публикации. Материалы диссертации изложены в 12 печатных работах.

Автор выражает глубокую признательность заведующему кафедрой биологии почв академику РАЕН Звягинцеву Д. Г. за постоянное внимание к работе.

Автор благодарит профессора Владыченского А. С. за помощь в идентификации почв и профессора Судницына И. И. за консультации и ценные советы.

Автор выражает признательность к. б. н. Лихачевой А. А. и всему коллективу кафедры биологии почв факультета почвоведения МГУ им. М. В. Ломоносова за сотрудничество и поддержку.

ВЫВОДЫ.

1) Предложен комплексный метод для селективного выделения из почвы и растительных субстратов актиномицетов родов: А сшотайига, 5асскагоро1у^рога, ЗассНаготопоБрога, МкгоЫБрога, Мшо1е1гаБрога, ИосагсНа и Ткегтотопоьрога, объединенных в группу олигоспоровых (тепловая предобработка воздушно-сухих образцов почвы (120°С, 1 час) — посев почвенных и растительных суспензий на селективные среды с пропионатом натрия и с гороховой мукойдобавление комплекса антибиотиков в питательные средыдлительные сроки инкубирования посевов (3—4 недели)).

2) Численность олигоспоровых актиномицетов колеблется в разных типах почв от десятков до десятков тысяч КОЕ/г и на 1 — 2 порядка уступает численности стрептомицетов. Наибольшая численность олигоспоровых форм обнаружена в черноземе обыкновенном, наименьшая — в аллювиальной болотной перегнойно-глеевой (Мексика) и аллювиальной дерновой кислой почвах (Россия).

3) Впервые установлено, что олигоспоровые формы являются минорным, но постоянно присутствующим компонентом почвенного актиномицетного комплекса. Доля их, как правило, не превышает 15% от всех выявленных актиномицетов в комплексе. При этом частота встречаемости олигоспоровых форм в почве может быть высока.

4) Наиболее благоприятными местообитаниями для олигоспоровых актиномицетов в хвойных лесных биогеоценозах являются листья растений и слой Р лесной подстилки.

5) В степном и полупустынном биогеоценозах олигоспоровые актиномицеты сосредоточены в почвенном ярусев полупустынном биогеоценозе эти актиномицеты преобладают в карбонатном горизонте серозема светлого, где их доля в комплексе превышает долю стрептомицетов.

6) Применение сукцессионного подхода к исследованию актиномицетов впервые позволило выявить условия и временные промежутки наиболее благоприятные для выделения из почвы актиномицетов олигоспоровой группы. Ранние этапы сукцессии благоприятны для выделения представителей родов Microtetraspora и Thermomonospora, поздние этапы сукцессии — для выделения актиномицетов родов Actinomadura, Saccharomonospora, Saccharopolyspora и Microbispora. Уровень влажности почвы соответствующий наименьшей влагоемкости благоприятен для выделения родов Saccharomonospora, Actinomadura и Thermomonosporaпредставители родов Microbispora и Microtetraspora характеризуются наиболее высокими показателями популяционной плотности при увлажнении почвы до уровня влаги завядания и максимальной гигроскопической влажности соответственно.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Н. С. Систематика термофильных актиномицетов. Пущино. АН СССР. 1986. 132 с.
  2. И. В. Разработка методов селективного выделения из почвы актиномицетов редких родов — потенциальных продуцентов антибиотиков. Дисс. к. б. н. М. 1992.
  3. Т. Л. Экологическая характеристика почвенных актиномицетов на основе сукцессионного анализа. Дисс. к. б. н. М. 1997.
  4. А. Б. Полимеразная цепная реакция // Молекулярная биология. 1991. Т. 25. Вып. 4. С. 926−936.
  5. О. А. Изучение особенностей географического распространения актиномицетов рода Ас1тотас1ига и их антибиотических свойств. Дисс. к. б. н. М. 1983.
  6. О. А., Преображенская Т. П., Терехова Л. П. Направленное выделение актиномадур из различных почв // Поиск продуцентов антибиотиков среди актиномицетов редких родов. Алма-Ата: Гылым. 1990. С. 13−20.
  7. Г. Ф., Чугасова В. А., Терехова Л. П. Новый продуцент цефамицина С — ЗиерХотусез /Шрретгя уаг. серкатусШ // Антибиотики. 1976. Вып. 21. № 12. С. 1059−1062.
  8. Д. Почвы Монголии (генезис, систематика, география, ресурсы и использование). Дисс. д. б. н. М. 1992.
  9. Н. С. Основы учения об антибиотиках. М.: Изд-во МГУ, 1994.512 с.
  10. Ю.Звягинцев Д. Г., Бабьева И. П., Добровольская Т. Г., Зенова Г. М., Лысак Л. В., Мирчинк Т. Г. Вертикально-ярусная организация микробных сообществ лесных биогеоценозов // Микробиология. 1993. Т. 62. Вып. 1.С. 5−36.
  11. Л. В., Агре Н. С. Развитие актиномицетов. М.: «Наука», 1977. 283 с.
  12. Л. В., Зенова Г. М. Экология актиномицетов // Успехи микробиологии. 1984. Т. 19. С. 203−220.
  13. Л. В., Шарая Л. С. Актиномицеты и высшие растения // Успехи микробиологии. М.: «Наука», 1990. Т. 24. С. 26−64.
  14. Классификация и диагностика почв СССР. М.: «Колос», 1977.224 с.
  15. П. А., Полянская Л. М., Звягинцев Д. Г. Динамика популяций различных почвенных микроорганизмов // Микробиология. 1979. Т. 48. Вып. 3. С. 490−494.
  16. П. А. Динамика микробных популяций в почве // Вестн. Моск. Ун-та. Серия 17 почвоведение. 1992. № 2. С. 39−56.
  17. А.П. Справочник по антисептике. Минск: «Высшая школа», 1995. 368 с.
  18. Н. А. Лучистые грибки. М.: «Наука», 1970. 536 с.
  19. Методы почвенной микробиологии и биохимии. М.: Изд-во МГУ, 1991.340 с. 24.0дум Ю. Экология. М.: «Мир», 1986. Т. 2. 376 с.
  20. Почвоведение. Типы почв, их география и использование. М.: «Высшая школа», 1988. Ч. 2. 368 с.
  21. Применение растровой электронной микроскопии в почвоведении, мелиорации и сельском хозяйстве (методические указания). Москва — Новочеркасск, 1979. 64 с.
  22. М. Г., Тульская Е. М., Терехова JI. П. Некоторые химиотаксономические критерии рода Nocardiopsis II Доклады АН СССР. 1989. Вып. 309. № 2. С. 477−481.
  23. Е. 3. Микроорганизмы рода Nocardia и разложение гумуса. М.: Наука, 1976. 197 с.
  24. JI. П. Таксономия актиномицетов и поиск продуцентов антибиотиков. Автореф. дисс. д. б. н. М. 1992. 45с.
  25. Л. П., Галатенко О. А., Преображенская Т. П. Новые виды Actinomadura fluorescens sp. nov. и Actinomadura turcmeniaca sp. nov. и их антогонистические свойства // антибиотики. 1982. Т. 27. № 2. С. 87−92.
  26. Р. Сообщества и экосистемы. М.: «Прогресс», 1980.327 с.
  27. Н. М. Экологические сукцессии при разложении растительных остатков. М.: «Наука», 1977. 199 с.
  28. ЗЗ.Чормонова Н. Т. Выделение актиномадур из почв на селективных средах с канамицином и рифампицином // Антибиотики. 1978. Т. 23. № 1.С. 22−26.
  29. Н. Т., Преображенская Т. П. Распространение актиномицетов рода Actinomadura в почвах Казахстана // Поиск продуцентов антибиотиков среди актиномицетов редких родов. Алма-Ата: Гылым. 1990. С. 47−54.
  30. И. Г. Структура комплексов актиномицетов в биогеоценозах на осушенных торфяниках. Дисс. к. б. н. М. 1993.
  31. Awaka М., Satoi S., Muto N., Hayashi M., Sagai H., Sakakibara H. Saccharocin, a new aminoglycoside antibiotic, fermentation, isolation, characterisation and structural study // J. Antibiot. 1983. Vol. 36. P. 651−655.
  32. Ball A. S. and McCarthey A. J. Saccharification of straw by actinomycete enzymes //J. Gen. Microbiol. 1988. Vol. 134. P. 2139−2147.
  33. Barrowcliff D. E., Arblaster P. G. Farmer’s lung: A study of an early acute fatal case // Thorax. 1968. Vol. 23. P. 490−500.
  34. Bergey’s Manual of Determinative Bacteriology / Eds. J. A. Holt, N. R. Krieg, Peter H. A. Smath, J. T. Stanley, S. T. Williams. Baltimore: Williams & Wilkins Co., 1994.
  35. Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology / Eds. S. T. Williams, M. Sharpe, J. A. Holt. 9th Edition. Baltimore: Williams & Wilkins Co., 1989. Vol. 4.
  36. Bernier R., Kopp M., Trakas B. and Stutzenberger F. Production of extracellular enzymes by Thermomonospora curvata during growth on protein-extracted lucerne fibers // J. Appl. Bacterid. 1988. Vol. 65. P. 411−418.
  37. Beutler J. A., Clark P., Alvarado A. B., Golik J. Esperamicin-P, the Tetrasulfide Analog of Esperamicin-A (l) // J. of Natural Products Lloydia. 1994. Vol. 57. Iss. 5. P. 629−633.
  38. Brummond W. V., Kurup V. P., Resnick A., Milson T. J., Fink J. N. Immunologic response to Faenia rectivirgula in a dairy farm family // J. Allerg. Clin. Immun. 1988. Vol. 82. P. 190−195.
  39. Bulina T. I., Alferova I. V., Terekhova L. P. A new methods for isolation of actinomycetes using microwave treatment of soil samples // 9th Intern. Symp. Biology of Actinomycetes (ISBA). Moscow, Russia. 1994. P. 233.
  40. Bulina T. I., Alferova I. V., Terekhova L. P. A novel approach to isolation of actinomycetes involving irradiation of soil samples with microwaves // Microbiol. Vol. 66. № 2. Mar-Apr. 1997.P. 231−234.
  41. Campbell J. M. Acute symptoms following work with hay // Brit. Med. J. 1932. Vol. 2. P. 1143−1144.
  42. Cho M., Yoon J. H., Kim S. B., Park Y.H. Application of the Ribonuclease-P (RNase-P) RNA Gene Sequence for Phylogenetic Analysis ofthe Genus Saccharomonospora II Int. J. Syst. Bacterid. 1998. Vol. 48. Iss. Oct. P. 1223−1230.
  43. Chun J., Blackall L. L., Kang S. O., Hah Y. C Goodfellow M. A Proposal to Reclassify Nocardia piensis Blackall et al. as Skermania piniformis Gen. Nov, Comb. Nov. // Int. J. Syst. Bacterid. 1997. Vol. 47. Iss. 1. P. 127−131.
  44. Chun J., Seong C. N., Bae K. S., Lee K. J., Kang S. O., Goodfellow M., Hah Y. C. Nocardia flavorosea sp. nov. // Int. J. Syst. Bacterid. 1998. Vol. 48. Iss. Jul. P. 901−905.
  45. Cross T. Actinomycetes: a continuing sourse of new metabolits // Developments in Ind. Microbiol. 1982. Vol. 23. P. 1−18.
  46. Cross T. and Goodfellow M. Taxonomy and classification of actinomycetes // Actinomycetales: characteristics and practical importance. London: Academic Press. 1973. P. 11−112.
  47. Desai A. J., Dhala S. A. Purification and properties of proteolytic enzymes from thermophilic actinomycetes // J. Bacterid. 1969. Vol. 100. P. 149−155.
  48. Fergus C. L. Thermophilic and thermotolerant moulds and actinomycetes of mushroom compost during peak heating // Mycologia. Vol. 56. P. 267−284.
  49. Festenstein G. N. Biochemical changes during moulding of self-heated hay in Dewar flasks // J. Sci. Food. Agric. 1966. Vol. 17. P. 130−133.
  50. Gazenko S. V., Reponen T. A., Grinshpun S. A., Willeke K. Analysis of Airborne Actinomycete Spores with Fluorogenic Substrates // Applied and Enviromental Microbiol. 1998. Vol. 64. Iss. 11. P. 4410−4415.
  51. Goodfellow M., O’Donnel A. G. Search and discovery of industrially significant actinomycetes // Microbial products: new approaches. Cambridge: Cambridge University Press, 1989. P. 342−383.
  52. Goodfellow M., Pirouz T. Numerical classification of actinomycetes containing w^vo-diaminopimelic acid in the cell wall // J. Gen. Microbiol. 1982. Vol. 128. P. 503−507.
  53. Goodfellow M., Stackebrandt E., Kroppenstedt M. Chemotaxonomy and actinomycete systematics // Biology of actinomycetes '88. Tokyo: Japan Scientific Societies Press, 1988.
  54. Greene J. G., Treuhaft M. W., Arnsell R. M. Hypersensitivity pneumonitis due to Saccharomonospora viridis diagnosed by inhalation challenge // Ann. Aller. 1981. Vol. 47. P. 449−452.
  55. Greiner-Mai E., Korn-Wendisch F., Kutzner H. J. Taxonomic revision of the genus Saccharomonospora and description of Saccharomonospora glauca sp. nov. // J. System. Bacterid. 1988. Vol. 38. P. 398−405.
  56. Hayakawa M., lino H., Takeuchi S., Yamazaki T. Application of a method incorporating treatment with Chloramine-T for the selective isolation of Streptosporangiaceae from soil // J. of Fermentation and bioengineering. 1997. Vol. 84. Iss. 6. P. 599−602.
  57. Hayakawa M., Momose Y., Yamazaki T., Nonomura H. A Method for the Selective Isolation of Microtetraspora glauca and Related 4-Spored Actinomycetes from Soil I I J. of Applied Bacteriol. 1996. Vol. 80. Iss. 4. P. 375−386.
  58. Hayakawa M., Momose Y., Kajiura T., Yamazaki T., Tamura T., Hatano K., Nonomura H. A Selective Isolation Method for Actinomadura viridis in Soil // J. of Fermentation and bioengineering. 1995. Vol. 79. Iss. 3. P. 287−289.
  59. Hegde V. R., Barrett T., Gullo V., Horan A. C., McPhail A. T., Marques J., Patel M., Puar M. A novel naphthaquinone antibiotic Sch 3819 produced by
  60. Thermomonospora II Abstract 908, 28th Interscience Congress on Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 1986.
  61. Hirsch C. F., Christensen D. L. A novel method for the selective isolation of actinomycetes // Annual meeting ASM: Abstr. 1982. P. 112−113.
  62. Jiang C., Xu L. Identification of a new species in the genus Saccharopolyspora II Acta. Microbiol. Sin. 1986. Vol. 26. P. 17−20.
  63. Johnston D. V., Cross T. The occurrence and distribution of actinomycetes in lakes of the English Lake District // Freshwater Biol. 1976. Vol. 6. P. 457−563.
  64. Kamiya K., Deushi T., Iwasaki A., Watanabe I., Itoh H., Mori T. A new aminoglycoside antibiotic, KA-5685 // J. Antibiot. 1983. Vol. 36. P. 738−741.
  65. Kim S. B., YoonJ. H., Kim H. G., Lee S. T., Park Y. H., Goodfellow M. A Phylogenetic Analysis of the Genus Saccharomonospora Conducted with 16S Ribosomal-RNA Gene-Sequences // Int. J. Syst. Bacterid. 1995. Vol. 45. Iss. 2. P. 351−356.
  66. Kizuka M., Enokita R., Tanahashi K., Okazaki T. Studies on actinomycetes in plant leaves // 9th Intern. Symp. Biology of Actinomycetes (ISBA 94). Moscow. Russia. 1994. P. 232.
  67. Knox C. M., Whitcher J. P., Cevellos V., Margolis T. P., Irvine A. R. Nocardia scleritis I I American J. Ophthalmology Vol. 123. № 5. May. 1997. P. 713−714.
  68. Kobayashi J., Tsuda M., Nemoto A., Tanaka Y., Yazawa K., Mikami Y. Brasilidine A, a new cytotoxic isonitrile-containing indole alkaloid from the actinomycete Nocardia brasiliensis 11 J. of Natural Products. Vol. 60. № 7. Jul. 1997. P. 719−720.
  69. Krassirnikov N. A. and Agre N. S. The brown group of Actinobifida chromogena n. sp. //Microbiologia. 1965. Vol. 34. P. 284−291.
  70. Kurup V. P. Thermophilic actinomycetes, their role in hypersensitivity pneumonitis // Biological, biochemical and biomedical aspects of actinomycetes. Orlando: Academic Press, 1984. P. 145−159.
  71. Lacey J. The microbiology of moist barley stored in unsealed silos //Ann. Appl. Biol. 1971. Vol. 69. P. 187−212.
  72. Lacey J. Ecology of actinomycetes in fodders and related substrates // Nocardia and Streptomyces. Eds: Mordarski M. at al., 1978. P. 161−170.
  73. Lacey J., Crook B. Fungal and actinomycete spores as pollutants of the workplace and occupational allergens // Ann. Occup. Hyg. 1988. Vol. 32. P. 515 533.
  74. Lacey J., Goodfellow M. A novel actinomycete from sugar cane bagasse: Saccharopolyspora hirsuta gen. et sp. nov. // J. Gen. Microbiol. 1975. Vol. 88. P. 75−85.
  75. Lam K. S., Veitch J. A., Golik J., Krishnan B., Klohr S. E., Volk K. J., Forenza S., Doyle T. W. Biosynthesis of Esperamicin-(l), an Enediyne
  76. Antitumor Antibiotic I I J. of the American Chemical Society. 1993. Vol. 115. Iss. 26. P. 12 340−12 345.
  77. Laurent F. J., Provost F., Boiron P. Rapid identification of clinically relevant Nocardia species to genus level by 16S ribosomal-RNA gene PCR I I J. of clinical microbiology. 1999. Vol. 37. Iss. 1. P. 99−102.
  78. Lechevalier M. P. and Lechevalier H. A. Chemical composition as a criterion in the classification of aerobic actinomycetes // Int. J. Syst. Bacteriol. 1970. Vol. 20. P. 435−443.
  79. Makkar N. S., Cross T. Actinoplanetes in soil and on plant litter from freshwater habitants // J. Appl. Bacteriol. 1982. Vol. 52. P. 209−218.
  80. Mantyjarvi R. M., Kurup V. P. Dot-immunobinding assay in the detection of IgG antibodies against Farmer’s lung antigens // Mycopathologia. 1988. Vol. 103. P. 49−54.
  81. Martin J. R. and Rosenbrook W. Studies on the biosynthesis of the eiythtomycins. II. Isolation and structure of a biosynthetic intermediate 6-Dioxyerythronolide B. // Biochemistry. 1967. Vol. 6. P. 435−440.
  82. McCarthey A. J. Lignocellulose-degrading actinomycetes // FEMS Microbiol. Rev. 1987. Vol. 43. P. 145−163.
  83. McCarthey A. J., Paterson A., Broda P. Lignin solubilisation by Thermomonospora mesophila // Appl. Microbiol. 1986. Vol. 24. P. 347−352.
  84. McCarthey A. J., Broda P. Screening for lignin degrading actinomycetes and characterisation of their activity against 14C. lignin labelled wheat lignocellulose // J. Gen. Microbiol. 1984. Vol. 130. P. 2905−2913.
  85. McCarthey A. J. and Cross T. A note on a selective isolation medium for the thermophilic actinomycete Thermomonospora chromogena I I J. Appl. Bacteriol. 1981. Vol. 51. P. 299−302.
  86. McCarthey A. J. and Cross T. A taxonomic study of Thermomonospora and other monosporic actinomycetes // J. Microbiol. 1984a. Vol. 130. P. 5−25.
  87. McCarthey A. J. and Cross T. Taxonomy of Thermomonospora and related oligosporic actinomycetes // Biological, Biochemical and biomedical aspects of actinomycetes. San Diego: Academic Press, 1984b. P. 521−536.
  88. McCarthey A. J., Peace E., Broda P. Studies on the extracellular xylanase activity of some thermophilic aclinomycetes // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1985. Vol. 21. P. 238−244.
  89. McVeigh H. P., Munro J., Embley T. M. Molecular evidence for the presence of novel actinomycete lineages in a temperate forest soil // J. Industrial Microbiol. Vol. 17. № 3−4. Sep.-Oct. 1996. P. 197−204.
  90. Mertz F. P. and Yao R. C. Actinomadura oligospora sp. nov., the producer of a new polyether antibiotic // Int. J. Syst. Bacterid. 1986. Vol. 36. P. 179−182.
  91. Mertz F. P. and Yao R. C. Actinomadura fibrosa sp. nov. isolated from soil // Int. J. Syst. Bacterid. 1990. Vol. 40. P. 28−33.
  92. Meyer J. New species of the genus Actinomadura 11 Z. Allg. Microbiol. 1979. Vol. 19. P. 37−44.
  93. Mills and Bollen. Microflora of heat damaged rapeseed I I Can. J. Bot. 1976. Vol. 54. P. 2893−2902.
  94. Mishra S. K., Tail W. H., Putnam A. R., Ries S. K. Plant growth regulatory metabolites from novel actonomycetes // J. Plant Growth Reg. 1987. Vol. 6. P. 75−84.
  95. Miyadoh S., Amano S., Tohyama H., Shomura T. Actinomadura atramentaria, a new species of the Actinomycetales II Int. J. Syst. Bacterid. 1987. Vol. 37. P. 342−346.
  96. Miyashita K., Mikami Y., Arai T. Alkalophilic actinomycete, Nocardiopsis dassonvillei subsp. prasina subsp. nov., isolated from soil // Int. J. Syst. Bacterid. 1984. Vol. 34. P. 405−409.
  97. Morita T., Hara S., Matsushima Y. Purification and characterisation of lysozyme produced by Streptomyces erythaeus II J. Biochem. 1976. Vol. 83. P. 893−903.
  98. Momose I., Kinoshita N., Sawa R., Naganawa H., Iinuma H., Hamada M., Takeuchi T. Nothramicin, a new anthracycline antibiotic from Nocardia sp. MJ896−43F17 // J. of Antibiotics. Vol. 51. № 2. Feb. 1998. P. 130 135.
  99. Moron R., Gonzalez I., Genilloud O. New genus-specific primers for the PCR identification of members of the genera Pseudonocardia and Saccharopolyspora //Int. J. Syst. Bacterid. 1999. Vol. 49. Iss. Jan. P. 149−162.
  100. Mundt C., Becker W. M., Schlaak M. Farmer’s lung: Patients' IgG (2), antibodies specifically recognize Saccharopolyspora rectivirgula proteins and carbohydrate structures // J. of Allergy and Clinical Immunology. Vol. 98. № 2. Aug. 1996. P. 441−450.
  101. Nampoory M. R. N., Khan Z. U. Pulmonary Nocardia transvalensis infection: A case report and review I I Saudi Medical Jornal. Vol. 18. № 5. Sep-Oct. 1997. P. 516−518.
  102. Newman Taylor A. G. The lung and the work enviroment // Current perspectives in the immunology of respiratory disease. Edinburgh: Chuchill Livingstone, 1985. P. 56−67.
  103. Nonomura H. and Ohara Y. Distribution of actinomycetes in soil. XI. Some new species of the genus Actinomadura Lechevalier et al. I I J. Ferment. Tech. 1971. Vol. 49. P. 904−912.
  104. Pepys J., Jenkins P. A., Festenstein G. M., Gregory P. H., Lacey M. E., Skinner F. A. Farmers lung: Thermophilic actinomycetes as sources of «farmers lung hay» antigen //Lancet. 1963. Vol. 1. P. 607−611.
  105. Pipie H. M., Dawson C. O., Breeze R. G., Wiseman A., Hamilton J. A bovine disease similar to Farmer’s lung: extrinic allergic alveolitis // Vet. Rec. 1971. Vol. 88. P. 346−351.
  106. Ramasamy M., Khan Z. U., Kurup V. P. A partially purified antigen from Faenia rectivirgula in the diagnosis of Farmer’s lung disease // Microbios. 1987. Vol. 49. P. 171−182.
  107. Rippon T. W. Extracellular collagenase produced by Streptomyces madurae //Biochim. Biophys. Acta. 1968. Vol. 159. P. 147−152.
  108. Rowbotham T. J., Cross T. Ecology of Rhodococcus coprophilus and associated actinomyces in fresh water and agricultural habitats. 11 J. Gen. Microbiol. 1977. V. 100. P. 231−240.
  109. Runmao H. Saccharomonospora azurea sp. nov., a new species of the genus Saccharomonospora /1 Int. J. System. Bacteriol. 1987. Vol. 37. P. 60−61.
  110. HO.Runmao H., Lin C., Guizhen W. Saccharomonospora cyanea sp. nov. // Int. J. System. Bacteriol. 1988. Vol. 38. P. 444−446.
  111. Schuurmans D. M., Olson B. N., Clemente C. L. S. Production and isolation of thermoviridin, an antibiotic produced by Thermoactinomyces viridis n. sp. //Appl. Microbiol. 1956. Vol. 4. P. 61−66.
  112. Stanek M. Microorganisms inhabiting mushroom compost during fermentation//Mushroom Sc. 1972. Vol. 8. P. 797−811.
  113. Sternberg M. Microbial rennets // Adv. Appl. Microbiol. 1976. Vol. 20 P. 135−157.
  114. Stutzenberger F. J. Cellulase production by Thermomonospora curvata isolated from municipal solid waste compost // Appl. Microbiol. 1971. Vol. 22. P. 147−152.
  115. Tamura A. and Takeda I. Antibiotic AB-65, a new antibiotic from Saccharomonospora vinde II J. Antibiot. 1975. Vol. 28. P. 395−397.
  116. Tanaka, Y., Grafe U., Yazawa K., Mikami Y., Ritzau M. Nocardicyclins A and B: New anthracycline antibiotics produced by Nocardia pseudobrasiliensis //J. of Antibiotics. Vol. 50. № 10. Oct. 1997. P. 822−827.
  117. Tatsuta K., Takahashi M., Tanaka N. The first total synthesis of pyralomicin 2C//Tetrahedron Letters. 1999. Vol. 40. Iss. 10. P. 1929−1932.
  118. The Prokaryotes. A Handbook on Habitats, Isolation and Identification of Bacteria. Eds. Starr M. P. et al. Berlin, Heidelberg, New York: Springer-Verlag, 1991. V. 2. P. 1913−2125.
  119. Tsukamoto M., Murooka K., Nakajima S., Abe S., Suzuki H., Hirano K., Kondo H., Kojiri K., Suda H. BE-32 030 A, B, C, D and E, new antitumor substances produced by Nocardia sp. A32030 // J. of Antibiotics. Vol. 50. № 10. Oct. 1997. P. 815−821.
  120. H., Gomi S., Yamagishi Y., Obata T., Ikeda T., Hamada M., Kondo S. -N-Fonnirnidoylsporaricin A produced by Saccharopolyspora hirsuta subsp. kobensis II J. Antibiot. 1987. Vol. 40. P. 91−93.
  121. Wang Y., Zhang Z. S., Ruan J. S. Phylogenetic Analysis Reveals New Relationships Among Members of the Genera Microtetraspora and MicrobisporaU Int. J. Syst. Bacteriol. 1996. Vol.46. Iss. 3. P. 658−663.
  122. Wang Y., Zhang Z. S., Ruan J. S. A proposal to transfer Microbispora bispora (Lechevalier 1965) to a new genus, Thermobispora gen. no v., as Thermobispora bispora comb. nov. // Int. J. Syst. Bacteriol. Vol. 46. № 4. Oct. 1996. P. 933−938.
  123. Whaley H. A., Chidester C. G., Mizsak S. A., Wnuk R. J. Nodusmicin, The structure of a antibiotic // Tetrad. Lett. 1980. Vol. 21. P. 3659−3662.
  124. Wilkie B. N. Bovine allergic pneumonitis. An acute outbreak associated with mouldy hay // Can. J. Comp. Med. 1978. Vol. 42. P. 10−15.
  125. Williams S. T. Streptomycetes in the soil ecosystem // Zentr. Bl. Bakteriol., Parasiten. Infect. UndHyg. I. Abt. 1978. Bd. 6. Suppl. P. 137−144.
  126. Williams S. T., Beswick A., Embley T. M., McVeigh H., West M. Evaluation of methods for the detection, isolation and identification of actinomycetes in soils // 9th Intern. Symp. Biology of Actinomycetes (ISBA), Moscow, Russia. 1994. P. 57.
  127. Williams S. T., Wellington E. M. N, Tipler L. S. The taxonomic implications of representative Nocardia strains to actinophage // J. Gen. Microbiol. 1980. Vol. 119. P. 173−178.
  128. Yassin A. F., Rainey F. A., Burghardt J., Gierth D., Ungerechts J., Lux I., Seifert P., Bal C., Schaal K. P. Description of Nocardiopsis synnemataformans sp. nov., elevation of Nocardiopsis alba subsp. prasina to
  129. Nocardiopsis prasina comb, nov., and designation of Nocardiopsis antarctica and Nocardiopsis alborubida as later subjective synonyms of Nocardiopsis dassonvillei II Int. J. Syst. Bacteriol. Vol. 47. № 4. Oct. 1997. P. 983−988.
  130. Yoshida K., Sasaki A. and Inoue H. An anionic trypsin-like enzyme from Streptomyces erythraeus //FEBS Lett. 1971. Vol. 15. P. 129−132.
  131. Zhang Z. S., Wang Y., Ruan J. S. Reclassification of Thermomonospora and Microtetraspora II Int. J. Syst. Bacteriol. 1998. Vol. 48. Iss. Apr. P. 411−422.
  132. Zhou Z. H., Liu Z. H., Qian Y. D., Kim S. B., Goodfellow M. Saccharopolyspora spinosporotrichia sp. nov., a novel actinomycete from soil // Int. J. Syst. Bacteriol. 1998. Vol. 48. Iss. Jan. P. 53−58.
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?