Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Биологические свойства рекомбинантного вируса осповакцины, экспрессирующего ген env вируса лейкоза крупного рогатого скота

ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Иванова A.B. Сравнительная характеристика рекомбинантных штаммов вируса осповакцины, экспрессирующих поверхностный гликопротеид вируса лейкоза крупного рогатого скота: Автореф.дис. .канд.биол.наук// ВИЭВ, М.-1997. Парфанович М. И., Симонян Г. А., Лазаренко A.A. и др. Исследование инактивированной цельновирионной вакцины из вируса лейкоза крупного рогатого скота. Тез. Докл.Всесоюзн.конф. 9−11 окт… Читать ещё >

Содержание

  • 1. ВВЕДЕНИЕ
    • 1. 1. Актуальность темы

    Вирус лейкоза крупного рогатого скота вызывает у животных хроническую персистентную инфекцию. Хотя вирус не обладает сильной контагиозностью, уровень инфицированное&trade- в стадах, где не проводят противолейкозные мероприятия, может достичь 80−90% (Schwartz- et Levy, 1994). Существующие методы борьбы с распространением BJIKPC-инфекции основаны на выявлении и изоляции инфицированных животных. Однако в хозяйствах с высоким уровнем инфицированности такой подход не дает желаемого результата и экономически нецелесообразен.

    Введение в систему мер борьбы с лейкозом крупного рогатого скота вакцинопрофилактики может существенно ускорить и удешевить процесс оздоровления стад от ВЖРС (Шишков В.П. и др., 1983- Ohishi et al., 1988).

    Поиски новых подходов к разработке вакцины против BJIKPC связаны с уникальными свойствами этого вируса: способностью встраиваться в геном клетки иммунного ряда, успешно избегать иммунного ответа хозяина и, в результате, устанавливать персистентную инфекцию. Использование вируса осповакцины в качестве вектора, экспрессирующего гены BJIKPC, — одно из перспективных направлений создания нового типа вакцин.

    При разработке любых вакцин основными требованиями являются безопасность и иммунологическая эффективность. В случае с рекомбинантными вакцинами проблема безопасности становится наиболее актуальной (Marcus-Secura et al., 1989). Пока не разработаны методы определения полной безвредности генноинженерных вакцин, поскольку результатом генетических модификаций могут быть изменения вирулентности, тканевого тропизма, круга хозяев вируса и т. д. Важная часть оценки безвредности рекомбинантных вирусов осповакцины (РВОВ) — оценка генетической стабильности вирусов. Также необходима более тщательная идентификация генотипических и фенотипических маркеров аттенуации (Moss, 1996).

    Для определения безвредности и иммуногенности РВОВ Меморандум ВОЗ (1985) предусматривает:

    1. исследование безвредности и эффективности препарата на лабораторных животных-

    2. клиническое исследование вакцины на том виде животных, для которых она предназначена, поскольку данные о безопасности и эффективности вакцины, полученные для одного вида животных, не могут быть применимы к другому виду-

    3. изучение возможной передачи вируса среди животных одного вида, между различными видами, а также от животного человеку.

    Предметом настоящего исследования является изучение безвредности, реактогенности и профилактической эффективности противолейкозного вакцинного препарата на основе рекомбинантного вируса осповакцины.

    1.2. Цель и задачи исследования

    Целью настоящей работы является определение безвредности, реактогенности и профилактической эффективности нового рекомбинантного вакцинного препарата против лейкоза крупного рогатого скота на основе вируса осповакцины штамм ?11-ВЬУ-4Ю-к+.

    В процессе выполнения настоящей работы решались следующие задачи:

    1. определить безвредность РВОВ для крупного рогатого скота-

    2. изучить реактогеность и особенности инфекционного процесса, вызываемого РВОВ у телят-

    3. изучить способность РВОВ к диссеминации в организме крупного рогатого скота-.

    4. определить способность РВОВ передаваться от вакцинированных животных невакцинированным-

    5. определить профилактическую эффективность вакцинного препарата на основе штамма WR-BLV-4Ktk.

    6. определить критерии успешной вакцинации рекомбинантным вирусом осповакцины.

    Научная новизна и практическая ценность работы.

    Создание рекомбинантных вирусов, экспрессирующих ген епу ВЛКРС -новое направление в области разработки специфических средств иммунопрофилактики лейкоза крупного рогатого скота.

    Проведено изучение безвредности нового вакцинного препарата для крупного рогатого скота- определены особенности течения инфекционного процесса, вызванного РВОВ у телят. Выявлена неспособность РВОВ к диссеминации в организме крупного рогатого скота и распространению его среди животных. В производственных условиях показано, что препарат обладает профилактической эффективностью против ВЛКРС.

    Список сокращений

    ВЛКРС — вирус лейкоза крупного рогатого скота

    ВЛКРС-инфекция — инфекция, вызываемая у животных крупного рогатого скота

    ВОВ — Ьирус осповакцины

    РВОВ — рекомбинантный вирус осповакцины

    Крс — крупный рогатый скот

    БОЕ — бляшкообразующие единицы

    ИД50 — инфицирующая доза

    СУ- 1 — линия клеток почки зеленой мартышки

    РЬК — линия клеток почки эмбриона овцы вр51 — гликопротеид ВЛКРС с м.м. 51 кД

    ОрЗО — гликопротеид ВЛКРС с м.м. 30 кД

    РИД — реакция иммунодиффузии

    РГЗТ — реакция гиперчувствительности замедленного типа

    2. Литературный обзор

Биологические свойства рекомбинантного вируса осповакцины, экспрессирующего ген env вируса лейкоза крупного рогатого скота (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

5.Выводы.

1. Показано, что рекомбинантный вирус осповакцины штамм WRBLV4Ktk+, экспрессирующий ген епу ВЛКРС, безопасен для крупного рогатого скота при внутрикожном введении в дозе 0,2 мл с титром 109 БОЕ/мл.

2.' Инфекционный процесс, вызванный у крупного рогатого скота рекомбинантным вирусом осповакцины, экспрессирующим ген епу ВЛКРС, штамм \П-ВЬУ-4Ю:к+, идентичен инфекционному процессу, вызванному вирусом осповакцины.- .

3. Определена реактогенность вакцинного препарата на основе штамма WR-BLV-4Ktk+ для крупного рогатого скота. Реактогенность выражается в образовании типичного оспенного поражения на месте введения препарата, кратковременного небольшого повышения температуры у некоторых животных и развития регионарного лимфаденита.

4. У крупного рогатого скота, вакцинированного рекомбинантным вирусом осповакцины, экспрессирующим ген епу ВЛКРС, не развилось никаких поствакцинальных осложнений за весь период наблюдения (39 месяцев).

5. Не установлена возможность передачи рекомбинантного вируса осповакцины, экспрессирующего ген епу ВЛКРС, от вакцинированных невакцинированным животным при совместном содержании. Показана невозможность повторного пассажа рекомбинантного вируса осповакцины на.

107 телках.

6. Рекомбинантный вирус осповакцины штамм ?11-ВЬУ-4К1к+ полностью элиминируется из кожи с места введения через 16−24 суток после введения препарата, в зависимости от введенной дозывне места введения в организме привитых телок вирус не обнаружен.

7. Вакцинный препарат на основе рекомбинантного вируса осповакцины штамм \^-ВЬУ-4КЛк+ при введении телкам обеспечивает защиту их от заражения ВЛКРС в течение года после прививкизатем профилактическая эффективность препарата снижается.

8. Показано уменьшение вероятности развития гематологической стадии лейкоза у крупного рогатого скота, вакцинированного рекомбинантным вирусом осповакцины, экспрессирующим ген епу ВЛКРС штамм WR-BLV-4Ktk+ по сравнению с невакцинированными животными.

9. Апробирован метод определения успешности вакцинации крупного рогатого скота рекомбинантным вирусом осповакцины, экспрессирующим ген епу ВЛКРС. Показано, что введение крупному рогатому скоту, вакцинированному рекомбинантным вирусом осповакцины, инактивированного гликопротеида ВЛКРС вызывает у животных появление антител кр51 в более ранние сроки, чем у невакцинированных.

1. Альтштейн А. Д., Анджапаридзе О. Г., Антонова О. Г. и др. Двойные рекомбинанты вируса осповакцины, экспрессирующие поверхностный антиген вируса гепатита В и тимидинкиназу вируса простого герпеса./ДАН СССР.-1986.-т.289.-с.1493−1496.

2. Альтштейн А. Д., Бендукидзе К. А., Захарова Л. Г. и др. Экспрессия оболочечного гликопротеида вируса бычьего лейкоза рекомбинантными вирусами осповакцины/Тр.ВИЭВ.-1991.-т.70.-с.101−107.

3. Альтштейн А. Д. Вирусные инфекции и генетическая инженерия.//Биотехнология.-1987.-т, 3,№ 3.-с.276−283.

4. Альтштейн А. Д., Валихов А. Ф. Подходы к живой вакцине против бычьего лейкоза на основе вируса осповакцины.- 5 конф.Рос.Федерации"Новые направления биотехнологии", Пущино 18−22 мая 1992: Тез.докл.-Б.М.Д992.-С.52.

5. Альтштейн А. Д., Захарова Л. Г., Гриненко Н. Ф. Получение и изучение поксвирусных рекомбинантов, экспрессирующих чужерожные гены//Молекул.генет., микробиол. и вирусол. 1994.-№ 4.-с.27.

6. Альтштейн А. Д., Захарова Л. Г., Лопарев В. Н. и др. Получение рекомбинанта вируса осповакцины, индуцирующего поверхностный антиген вируса гепатита Б, на основе штамма ЛИВП./ ДАН СССР.-1985.-т.285.-с.696−699 109.

7. Брацлавская О. И., Нагаева Л. И., Ильина Я. С. и др. Экспрессия генома BLV в патогенезе лейкоза крупного рогатого скота //Изв. Ан ЛатвССР, 1986.-№ 11.-c.69−74.

8. Букринская А. Г., Жданов В. М. Молекулярные основы патогенности вирусов.//М.:Медицина, 1991.

9. П. Бургасов П. Н., Безденежных И. С. Научные основы организации профилактики инфекционных болезней. // М.:Медицина, 1977.-с.38−40Д 19 138.

10. Вагабов P.M. О неспецифической резистентности к гетерологической вирусной инфекции после иммунизации осповакциной.//Вопр. Вирусологии.-1978.-№ 4.-с.463−466.

11. Валихов А. Ф. Биологические свойства вируса лейкоза крупного рогатого скота: диагностика и профилактика инфекции.: Дисс. доктора биол. наук/ М., 1 992 110.

12. Валихов А. Ф., Галеев Р. Ф. Динамика иммунного ответа у телят при введении инактивированного иммуногена на основе гликопротеида вириона ретровируса лейкоза.// Бюл.ВИЭВ.-1982.-№ 48.-с.12−13.

13. Валихов А. Ф., Кузьмичев B.C., Иванова JI.A. и др. Иммуногенность рекомбинантного вируса осповакцины, экспрессирующего оболочечный гликоиротеид вируса бычьего лейкоза.// Тр.ВИЭВ.-1991.-т.70.-с.92−100.

14. Варшавер Н. Б. Гены-супрессоры злокачественности.// Мол.ген., микробиол. и вирусол.- 1996.-№ 1.-с. 3−10.

15. Воробьев A.A., Подкуйло В. Н., Михайлов В. В. и др. Непарантеральные методы иммунизации против оспы.// ЖМЭИ.-1997.-№ 5.-сЛ 17−121.

16. Вороненко И. Е., Дубов Н. С., Черкас Г. И. и др. К вопросу об этиологии вспышки оспенного заболевания коров и работников животноводческих ферм.//ЖМЭИ.-1971.-№ 1.-с. 98−99.

17. Вылков И. Н. Патология лимфатических узлов.// София: Мед и физк.-1980.-е. 106−118.

18. Гурвич Э. В., Вилесова И. С. Вирус вакцины и поствакцинальный энцефалит.//Ас1а Virol.-1 983.-t.27.-c. 154−159.

19. Гурвич Э. Б., Мовсесянц A.A., Степаненкова Л. П. Об участии вируса вакцины в патогенезе различных клинических форм поствакцинальных осложнений.//Ж.микробиол.-1979.-№ 11.-е.73−781.I.

20. Жданов B.M. Эволюция вирусов.// М.?Медицина.- 1990. с. 287 297.

21. Заграбян Л. И., Арзуманян Ж. Р., Аракелян B.C. и др. Случай оспы у коров.//Ветеринария.-1986.-№ 6.-с.30−31.

22. Залевский Д. И. Некоторые аспекты специфической профилактики лейкоза крупного рогатого скота.//Тр. ВИЭВ.-1991 .-т.70.-с. 107−111.

23. Залевский Д. И., Галеев Р. Ф., Валихов А. Ф. Изучение иммунного ответа у телят и кроликов на введение инактивированного вируса лейкоза крупного рогатого скота.//Бюл.ВИЭВ.-1988.-вып.67.-с.48−50.

24. Иванова A.B. Сравнительная характеристика рекомбинантных штаммов вируса осповакцины, экспрессирующих поверхностный гликопротеид вируса лейкоза крупного рогатого скота: Автореф.дис. .канд.биол.наук// ВИЭВ, М.-1997.

25. Кадыров У. Г. Оспа./В кн. Патолого-анатомическая диагностика болезней крупного рогатого скота.- Под ред. Шишкова В. П. и др.-М.:Агропромиздат.-1987.-с. 141 -146.

26. Kapp Я., Хэнкок, Хенри Л. и др. Лимфоретикулярные болезни.// М.'.Медицина.-1980.-С.43−50 112с.

27. Кауфман P.C., Филдс Б. Н. Патогенез вирусных инфекций. В кн.Вирусология.//М.: Мир.-1989.-т.1.-с.277−306.

28. Кокуричев П. И. Атлас патологической анатомии сельскохозяйственных животных.// JI.:Колос.-1973 .-с. 108−111.

29. Колонцов A.A. Классификация вирусов человека и животных по материалам 6-го доклада Международного комитета по таксономии вирусов.//Мол.ген., микробиол. и вирусол.-1998.-№ 2.-с.З8−41.

30. Конычева В. В., Ильинская Т. Н., Чапенко C.B. и др. Роль экспрессии вируса лейкоза крупного рогатого скота в патогенезе гемобластозов.// Вопросы онкологии.-1987;т.ХХХ 111 .-№ 1.

31. Корзенко В. Н., Сайковская В. А., Протасеня С. Г. и др. Оспа крупного рогатого скота.//Ветеринария.-1964.-№ 7.-с.312−34.

32. Лихачев Н. В., Борисович Ю. Ф. Биологические свойства возбудителя оспы.// Ветеринария.-1964.-№ 7.-с. 12−15.

33. Лоуи Д. Р. • Трансформация и онкогенез: ретровирусы. В кнБирусология.//М. :Мир.-1989.-С.433−486.

34. Медуницын Н. В. Вакцинология.//М.:Триада-Х.-1999.-е. 129−132.

35. Мельников С .Я. Коревые вакцины: новые направления, новые стратегии.//Вопр. Вирусол.-1996.-№ 2.-с.79−81.

36. Минаев В. Д. К вопросу об оспе у животных.// ЖМЭИ.- 1970.-№ 1.-е. 146 113.

37. Мэрфи Ф. А. Таксономия вирусов. В кн. Вирусология.//М.:Мир.-1989.-С.20−54.

38. Мэрфи Б., Ченок Р. Противовирусная иммунизация. В кн. Вирусология.// М. :Мир.-1989.-е. 145−190.

39. Парфанович М. И., Симонян Г. А., Лазаренко A.A. и др. Исследование инактивированной цельновирионной вакцины из вируса лейкоза крупного рогатого скота. Тез. Докл.Всесоюзн.конф. 9−11 окт. 1984. УНИВИ, Ташкент.-1984.-с.159.

40. Райзман Б. Размножение фирусов: общие представления.: В кн Вирусология.// М: Мир.-1989.-т. 1.-е. 124−137.

41. Руководство по общей эпизоотологии. Под ред. Бакулова В. И., Третьякова А.Д.//М.:Колос.-1979.

42. Руководство по эпидемиологии инфекционных болезней. Под ред. Покровского В.И.//М.Медицина.-1993.

43. Сарнгадхаран М. Г., Маркхэм П. Д., Галло Р. Вирусы Т-клеточных лейкозов человека. В кн. Вирусология.// М.:Мир.-1989.-с.ЗЗ 1−382.

44. Симонян Г. А., Хисамутдинов Ф. Ф. Ветеринарная гематология.// М.:Колос.-1995.-е. 126−127.

45. Скалинский Е. И., Борисович Ю. Ф., Штефан М. К. Лабораторная диагностика оспы животных.// Ветеринария.-1968.-№ 11 .-с.67−69.

46. Феннер Ф., Мак-Ослен Б., Миме С. и др. Биология вирусов животных.//М. :Мир.-1977.-c.281−342 114.

47. Хайдрих Х.-Д., Грунер И. Болезни крупного рогатого скота.// М.:Агропромиздат.-1985.-c.70.

48. Цибиногин В. В., Чапенко C.B., Нагаева C.B. и др. Делеция нуклеиновых последовательностей БЛВ в клетках тканей крупного рогатого скота.//Изв. АН ЛатвССР.-1982.-№ 7.-с. 104−109.

49. Цилинский Я. Я. Популяционная структура и эволюция вирусов.// М. Медицина.-1988.

50. Черное В. И., Антонова Т. П., Митина И. В. и др. //Молекул.генетика.-1983 .-№ 10.-С.21−24.

51. Черное В. И., Челяпов Н. В., Антонова Т. П. и др. Использование вируса осповакцины в качестве вектора для создания живых генно-инженерных вакцин.// Вирусы и вирусные, забол.- 1990.-№ 18.-с.59−60.

52. Черное В. И., Унанов С. С., Антонова Т. П. и др. Изучение свойств тканевой оспенной вакцины производства Московского научно-исследовательского института вирусных препаратов.// Вопр.вирусологии.-1977.-№ 1.-с.71−75.

53. Шишков В. П., Бурба Л. Г., Валихов А. Ф. и др. Опыты по иммунизации крупного рогатого скота против экспериментальной инфекции.//Труды ВИЭВ.-1983.-Т.59.-С.56−58.

54. Щелкунов С. Н. Молекулярные основы вирулентности ортопоксвирусов.//Вестник РАМН.-1998.-№ 3.-с.24−29 115.

55. Яковлева И. Я., Корчмару И. Ф., Богданская Н. И. Диагностика лимфаденопатий.// Кишинев: Штиинца.-1984.-е.

56. Ada G.L. How do vaccinia-vectored vaccines fit into human immunization programmes? //Res.Virol.-1989.-140, № 5 .-p.470−473.

57. Alexandersen S., Carpenter S., Christensen J. et al. Identification of alternatively spliced mRNAs encoding potencial new regulatory proteins in cattle infected with bovine leukemia virus. //J.Virol.-1993.-67.-p.39−52.

58. Appleyard G., Haper A.J., Boulter E.A. An antigenic difference between intracellular and extracellular rabbitpox virus.// J.Gen. Virol.-1971.-13.-p.9−17.

59. Becker Y. The need for characterization of pathogenicity genes of recombinant DNA viruses used as human vaccines.// Virus Genes.- 1987.-1,N1.-p.l 17−120.

60. Berkowitz E.M., Pogo B. G-T. Molecular characterization of two strains of Shop fibroma virus.//Virology.-1985.-142,N2.-p.437−440.

61. Bolognesi D.P. Potential leukemia virus subunit vaccines: discussion.// Cancer Res.- 1976.-36, N2.-p.655−656.

62. Brown F. From Jenner to genes the next generation of virus vaccines./ZMol.Pathol. :Symp., London, Dec., 1986.-London, 1987.-p.75−84.

63. Brown F. How do vaccinia-vectored vaccines fit into animal immunization programes?//Res.Virol.-1989.-140,N5.-p.474−476 116.

64. Bruck K., Rensonnet N., Portetelle D. et al.// Biologically active epitopes of bovine leukemia virus glicoprotein GP51: their dependence on protein glycosylation and genetic variability.// Virology.-1984.-136,Nl .-p.20−31.

65. Burny A., Bruck C., Couez D. et al. Enzootic bovine leukemia: its relevance as a model system for human T-cell leukemia.// Hum. T-cell Leuk./Lymphoma Virus. Cold Spring Harbor, N.Y.-1984.-h. 17−24.

66. Burny A., Bruck C., Cleuter Y. et al. Bovine leukemia virus, a versatile agent with various pathogenic effects in various animal species.//Cancer Res.-1985.-45,N9,Suppl.-p.4578−4582.

67. Burny A., Cleuter Y., Kettmann R. et al. Bovine leukemia: Facts fnd hypotheses derived from the study of an infectious cancer.// Adv.Vet.Sci.and Comp.Med.-1988.-32.-p. 149−170.

68. Buller B., Smith G.L., Cremer K. et al. Decreased virulence of recombinant vaccinia virus expression vectors is associated with a thymidine kinase-negative phenotype.//Nature (London).-1985.-317.-p.813.

69. Buller R., Mark L., Chakrabarti S. et al. Deletion of the vaccinia virus growth factor gene reduces virus virulence.// J.Virol.-1988.-62,N3.-p.866−874.

70. Chen G., Willems L., Portetelle D. et al. Synthesis of functional bovine leukemia virus (BLV) p34tax protein by recombinant baculoviruses.//Virology.-1989.-173,NL-p.343−347.

71. Chevallier N., Berthellemy M., Rhun D. et al. Bovine leukemia virus induced lymphocytosis and increased cell survival mainly involve the CD 1 lb+ B-lymphpcyte subset in sheep.// J.Virology.-1998.-72,N5.-p.4413−4420.

72. Chua T., Smith C., Reith R. et al. Inflammatory responses and the generation of chemoattractant activity in cowpox virus-infected tissues.// Immunology.-1990.-69,N2.-p.202−208.

73. Coulstone J., Naif H., Brandon R. et al. Molecular cloning and sequencing of an Australian isolate of proviral bovine leukemia virus DNA: comparison with other isolates.// J.Gen.Virology.-1990.-71, N8.-p. 1737−1746.

74. Dalrymple J. Vaccinia-vectored vaccines for exotic diseas immunization programmes.// Res.Virol.-1989.-140,N5. p.477−480.

75. Daniel R. v Gatei M., Good M. Recombinant viral vaccines for enzootic bovine leucosis.// Immunol. Cell Biol.- 1993.-7l/5.-p.399−404.

76. Datt N. Comparative studies of pigpox and vaccinia viruses. Serological relationship. Host range pathogenicity.// J.Comp.Path.-l964.-74.-p.62−80.

77. Depelchin A., Letesson J., Lostrie-Trussart N. et al. Bovine leukemia virus (BLV) infected B-cells express a marker similar to the CD5T cell marker.// ImmunolXetters.-1989.-v.20.-p.69−76 118.

78. Dequiedt F., Kettmann R., Burny A. et al. Mutation in the p53 tumor-supressor gene are frequentlt associated with bovine leukemia virus-induced leukemogenesis in cattle, but not in sheep.//Virology.-1995.-209.-p.676−683.

79. Dequiedt F., Willems L., Kerkhofs P. et al. Lack of mutation in the WAF-1/CIP1 gene during bovine leukemia virus induced leukemogenesis.// Vet.Imtnunol.Immunopathol.-1997.-59.-p.311−322.

80. Doherty P., Allan J., Lynch F. et al. Dissection of an inflammatory process induced by CD8+ T cells.// Immunol.Today.-1990.-11 .-p.55−59.

81. Fenner F., Burnet F. A short description of the poxvirus group (vaccinia and related viruses).// Virology.-1957.-4.-p.305−314.

82. Flexner C., Moss B., London W et al. Attenuation and immunogenicity in primates of vaccinia virus recombinants expressing human interleukin-2.//Vaccine.-1990.-8,N1 .-p. 17−21.

83. Giavedoni L., Jones L., Mebus C. et al. A vaccinia virus double recjmbinant expressing the F and H genes of rinderpest virus protects cattle against rinderpest and causes no pock lesions.// Proc.Nat.Acad.Sci.USA.-1991.-88(18).-p.8011−8 015 119.

84. Gibbs E., Johnson R., Osborn A. The differential diagnosis of viral scin infections of the bovine teat. //Vet.Rec.-1970.-87.-p.602−609.

85. Gillispie J., Geissinger C., Scott F. et al. Response of dairy calves to vaccinia virus that express foreign genes.// J.Clin.Microbiol.-l986.-23.-p.283−288.

86. Gupta P., Kashmiri S., Erisman M. et al. Enchanced expression of the c-myc gene in bovine leukemia virus-induced bovine tumors.// Cancer Res.-1986.-46,N12.-p.6295−6298.

87. Haas L., Divers T., Casey W. Bovine leukemia virus gene expression in vivo.//J. Virol.-1992.-66.-p.6223−6225.

88. Hanlon C., Ziermers E., Hamir A. et al. Cerebrospinal fluid analysis of rabid and vaccinia-rabies glycoprotein recombinant in orally vaccinated raccoons.// Am. J. Vet.Res.-1989.-50.-p.364−367.

89. Hartsock R. Post vaccinal lymphadenitis hyperplasia of lymphoid tissue that simulates malignant lymphomas.//Cancer.-1968.-21 .-632−649.

90. Heeney J., Valli P., Jacobs R. et al. Evidence for bovine leukemia virus infection of peripheral blood monocytes and limited antigen expression in bovine lymphoid tissue.//Lab.Invest.-1992.-66.-p.608−617.

91. Herrera E., Del Mar Lorenzo M., Blasco R. et al. Functional analysis of vaccinia virus B5R protein: Essential role in virus envelopment is independent of a large portion of the extracellular domain.// J.Virol.-l 998.-72/1 .-p.294−302.

92. Honma T., Onuma M., Suneya M. et al. Cytotoxic antibody on cattle and sheep exposed to bovine leukemia virus.// Arch.Virol.-1980.-66.-p.293−299 120.

93. Ichibashi Y. Vaccinia-specific hemagglutinin.// Virology.-1977.-76.-p.517−538.

94. Ichibashi Y., Dales S. Biogenesis of poxvirus: Interrelationship between hemagglutinin production and polycaryocetosis.// Virology.-1971.-46.-p.533−543.

95. Imada T., Kawamura H., Nishimori T. et al. Evaluation of the pathogenicity and immunogenicity of vaccinia virus to piglets.// Jap.J.Vet.Sci.-1989.-51,Nl.-p.96−104.

96. Itamura S., Morikawa Y., Shida H. et al. Biological and immunological charaterization of influenza virus hfemagglutinin expression from the haemagglutinin locus of vaccinia virus.//J.Gen. Virol.-1990.-71.-p. 1293−1301.

97. Jonson R., Kaneene J. Bovine leukemia virus and enzootic bovine leucosis.//Vet.Bul.-1992.-62,N4.-p.288−312.

98. Karupiah G., Coupar B., Ramshaw I. Et al. Vaccinia virus-mediated damage jf murin ovaries and protection by virus-expressed interleukin-2.//Immunol.and Cell Biol.-1990/-68,N5.-p.325−333.

99. Keefe R., Choi Y., Ferrick D. et al. Bovine cytokine expression during different phases of bovine leukemia virus infection.// Vet.Immunol.Immunopathol.-1997.-56, /4.-p.39−51.

100. Keefe R., Ferrick D., Stott J. Cytokine transcription in lyphonodes of cattle in different stages of bovine leukemia virus infection.// Vet.Immunol.Immunopathol.-1997.-59.-p.271 -283 121.

101. Kerkhofs P., Heremans H., Burny A. et al. In vitro and in vivo oncogenic potencial of bovine leukemia virus G4 protein.// J.Virol.-1998.-72,N3/-2554−2559.

102. Kettmann R., Cleuter Y., Mammerickx M. et al. Genomic integration of bovine leukemia virus: comparison of persistent lymphocytosis with lymphnode tumor form of enzootic bovine leucosis.// Proc.Nat.Acad.Sci.USA.-1980.i, 77.-2577−2581.

103. Kettman R., Deschamps J., Claustriaux J. et al. Chromosome integration domain for bovine leukemia provirus in tumors.// J.Virology.-1983.-47.-p.l46−150.

104. Kieny M., Lathe R., Drillien R. et al. Exoression of rabies virus glycoprotein from a recombinant vaccinia virus.//Nature.- 1984.-312.-p. 163−166.

105. Klintewall K., Ballagi-Pordany A., Naslund K. et al. Bovine leukemia virus: Rapid detection of proviral DNA by nested PCR in blbod and organs of experimentally infected cjalves.//Vet.Microbiol.-1994.-42.-p.l91−204.

106. Kotwal G., Moss B. Vaccinia virus encoded a secretory polypeptide structurally related to complement control proteins.// 1988. 335, N6168. p.176−178.

107. Kono Y., Arai K., Sentsui H. et al. Protection against bovine leukemia virus infection in sheep by active and passive immunization.// Jap.J.Vet.Sci.-1986.-48,Nl.-p.l 17−125 122.

108. Knowless D., Cheevers W., McGuire T. et al. Severity of arthritis is predicted by antibody response to gpl35 in chronic infection with caprine arthritis-encephalitis virus.//J. Virology.-1990.-64.-p.2396−2398.

109. Kumar S., Andrew Expression of bovine leukemia env gene by recombinant vaccinia virus.// Virus.Res.-1990.-17,N2.-p. 131−142 115- Lane J., Ruben F., Neff J. et al. Complications of smallpox vaccination.//N.Engl. J.Med.-1969.-281 .-p. 1201 -1208.

110. Lane J., Ruben F., Neff J. et al. Cjmplications of smallpox vaccination, 1968: results of ten statewide surveys. Z/J.Infect.Diseases.-1970.-122.-p.303−309.

111. Lasky L. Current status of the development of an AIDS vaccine.// J. Arnold Arboretum.-1989.-70,N3.-p. 153−172.

112. Lauder I., Martin W., Murrey M. et al. Experimental vaccinia infection of cattle: A comparison with other virus infection of cow’s teats.// Vet.Rec.-l 971 .-89.-p.571.-578.

113. Letessson J., Van der Broecke A., Marbaix C. et al. FACS analysis of bovine leukemia virus (BLV) — infected cell lines with monoclonal antibodies (mAbs) to B cells and to monocytes/macrophages.// Vet.Immunol.Immunopathol.-1991.-27.-p.207−213.

114. Leteson J.J., Mulumba M., Depelchin A. Reactivity of the workshop CD5 panel antibodies on western blot of cell lysate.// Vet.Immunol. and Imunopathol.-1991 .-27.-p.239 123.

115. Loh P., Riggs J. Demonstration of the sequential development of vaccinia antigens and virus in infected ctlls: observation with cytochemical and differential fluorescent procedures.// J.Exptl.Med.-1961.-114.-p. 149−160.

116. Mackett M., Yilma T., Ross T. et al. Vaccinia virus recombinants: expression of VSV genes and protective immunization of mice and cattle.// Science,.-1985.-227 -p.226−227.

117. Mackett M., Smith G. Vaccinia virus expression vectores.// J.Gen.Virol.-1986.-67.-p.2067;2082.

118. Mamoun R., Astier T., Guillemain J. et al. Bovine Lymphosarcoma: processing of bovine leukemia virus-coded proteins.// J.Gen. Virol.-1983.-64,N12.-p.2791−2795.

119. Mamoun R., Morisson M., Rebeyrotte N. Sequence variability of bovine leukemia virus env gene and its relevance to the structure and antigenicity of the glycoproteins.//J.Virol.- 1990.-64,N9.-p.4180−4188.

120. Marbaix G.,.Kettmann R., Deschamps J. Enzootic bovine leucosis and bovine leukemia virus. Gene Express. Norm, and Transform.Cells. Proc. NATO/Gulbenkian Found., Sintra-Estoril, 25 May-4 June, 1982.// New York-London.- 1983.-p.231−245.

121. Marcus-Secura C., Quinnan G., Risk and benefits of vaccinia-vectored vaccine use from the regulatory respective.// Res.Virol.-1989.-140,N5.-p.467−469 124.

122. Marly F. The promise and challenge of vaccinia-vectored vaccines.//Res. Virol.-1989.-140, N5.-p.463−465.

123. Miller J. Bovine leukemia virus vaccine.// Anim. Models of Retrov.Inf. and their Relationship to AIDS.-1987.-p.421−430.

124. Miner J., Hruby D. Vaccinia virus: A versatile toole for moleculat biologist.//Trends Biotechnol.-1990.-8,Nl.-p.20−25.

125. Monke D.R., Rohde R.F., Hueston W. H et al. Estimation of the sensitivity and specificity of the agar gel immunodiffusion test for bovine leukemia virus: 1296 cases (1982;1989).//JAVMA.-1992.-12.-p. 2001;2004.

126. Morens D. Antibody-dependent enchancement of infection and the pathogenesis of viral disease.// Clin.Infec.Diseases.-1994.-19,N3.-p.500−512.

127. Morgan M., Copeland T., Oroszlan S. Structural and antigenic analysis of bovine and feline leukemia viruses.// J. Virol.-1983 .-46,N1.-177−186.

128. Moss B. Genetically engineered poxvirus for vaccination and safety.// Proc.Natl.Acad.Sci.USA.-1996.-93.-p.l 1341−11 348 125.

129. Moss B., Flexner C. Vaccinia virus expression vectors.// Annu.Rev.Immunol.-1987.-5.-305−324.

130. Mussgay M., Dietrshold B., Frenzel B. et al. The bovine leucosis virus.//Med.Microbiol. and Immunol.-1977.-164,N1−3.-p.131−138.

131. Naotaka I., Hidefiimi F., Takane M. et al. p53 mutation as a potencial factor / for tumor development in enzootic bovine leucosis.// Vet.Immunol.Immunopathol.-1997.-55.-p.351−358.

132. Ohishi K., Maruyama T., Shida H. et al. Immunogenicity of a recombinant vaccinia virus expression envelop glycoprotein of bovine leukemia virus.//Vaccine.-1988.-6,N5.-p.428−432.

133. Okada K., Kuwamoto R., Numakunai S ey al. An observation of persistent lymphocytosis in calves inoculated with the vaccinia virusbovine leukemia virus env gene recombinant.// J. Faculty Agriculter Iwate University.-1993.-21,N3.-191−200.

134. Oldstone, Tishon A., Eddleston M. Vaccination to prevent persistent viral infection.// J.Virol.-1993.-67/7.-p.4372−4378.

135. Onuma M., Driscoll D., Olson C. Location of antigens associated with bovine leukemia virus.//Arch.Virol.-1977.-55.-p.131−137.

136. Onuma M., Watarai S., Mikami T et al. Cell fusion activity of bovine leukemia virus.//J.Gen.Virol.-1980.-48,N2.-p.421 127.

137. Onuma M., Sagata N., Okada K. et al. Integration of bovine leukemia virus DNA in the genoms of bovine lymphosarcoma cells.// Microbiol. And Immunol.-1982.-26,N9.-p.813−820.

138. OnumaM., Hodatsu T., Yamamoto S. et al. Protection by vaccination against bovine leukemia virus infection.// Amer.J.Vet.Res.-1984/-45,N6.-p.l212−1215 ,.

139. Oroszlan S., Copeland T., Schultz A. et al. Biosynthesis and chemical characterization of bovine leukemia virus gene products.// J. Cell Biochem.-1986.Suppl.-N 10a.-p.209.

140. Palumbo G., Pickup D., Fredrickson T. et al. Inhibition of an inflammatory response mediated by a 38-K protein of cowpox virus.// Virology.-1989 -172.-p.262−273.

141. Panicali D., Mazzara G., McKenzie S. et al. Expression of HIV-1 genes by monovalent and multivalent vaccinia vectors.//J.Cell. Biochem.-1989.-suppL138.-p.258.

142. Patarca R., Haseltine W. Similarities among retrovirus proteins.// Nature.-1984.-312,N5994.-p.496 128.

143. Patrascu I., Coman S., Sandu I et al. Specific protection against bovine leukemia virus infection conferred on cattle by the Romanian inactivated vaccine BL-VACC-RO.// Rev.Roum.MedVirol.- 1980.-3 l, N2.-p.95−102.

144. Payne E., Norrby Adsorbtion and penetration of enveloped and naked vaccinia virus particles.//J.Virol.-1978.-27.-p. 19−27.

145. Payne L. Identification of the vaccinia hemagglutinin polypeptide from a ctll system yielding large amounts of extracellular enveloped virus.// J. Virol -1979.-31 .-p. 147−155.

146. Payne L. Significance of extracellular enveloped virus in the in vitro and in vivo dissemination of vaccinia.// J.Gen.Virol.-1980.-50.-p.89−100.

147. Pensiero M., Jennings G., Schmaljohn C. et al. Expression of the Hantaan virus M genom segment by using a vaccinia virus recombinant.// J.Virol.-1988.-3 .-p.696−702.

148. Portetelle D., Bruck C., Burny A. et al. Detection of complement dependent lytic antibodies in sera from bovine leukemia virus infected animals.// Vet.Res.-1978.-9.-p.667−674 129.

149. Portetelle D., Dandoy C., Burny A. et al. Syntetic peptides approach to identification of epitopes on bovine leukemia virus envelope glycoprotein gp51.// Virology.-1989.-169,N1 .-p.34−41.

150. Portetelle D., Limback K., Burny A. Recombinant vaccinia virus expression of the bovine leucosis virus env gene.// Vaccine.-199 l.-9.-p. 194−200.

151. Powers M., Grossman D., Kidd L. et al. Episodic occurrence of antibodies against the bovine leukemia virus rex proyein during the course of infection in sheep.//J.Virol.-1991.-65.-p.4959−4965.

152. Pyeon D., O’Reilly K., Splitter G. Increased interleurin-10 mRNA expression in tumorbearing or persistently lymphocytotic animals infected with bovine leukemia virus.//J.Virol.-1996.-70.-p.5706−5710.

153. Pyeon D., Splitter G.A. Interleukin-12 p40 mRNA expression in bovine leukemia virus-infected animals: increase in alymphocytosis but decrease in persistene lymphocytosis.//J.Virol.-1998.-72:8.-p.6917−6921.

154. Sagata N., Yasunaga T., Ohishi K. et al. Comparison of the entire genomes of bovine leukemia virus and human T-cell leukemia virus and characterization of their unidentified open reading frames.// EMBO Journal.-1984.-3,N13.-p.3231−3237.

155. Sagata N., Yasunaga T., Tzuzuku-Kawamura J. et al. Complete nucleotide sequence of the genom of bovine leukemia virus: Its evolutionary relationship to other retroviruses.// Proc.Natl.Acad.Sci USA.-1985.-82.-p.677−681 130.

156. Sagata N., Yasinaga T., Ogawa Y. et al. Bovine leukemia virus: unique structural features of its evolutionary relationship to human T-cell leukemia virus.//Proc.Natl.Acad.Sci.USA.-1984.-81.-p.4741−4745.

157. Sastry K., Arlinghaus R. A novel HIV vaccine strategy.// hematol.Pathol.-l 990.-4,N3.-p. 157−159 173,. Schwartz I., Levy D. Bovine leukemia virus.// Vet.Res.-1994.-25.-p.521−536.

158. Schwartz I., Bensaid A., Polak B. et al. In vivo leukocyte tropism of bovine leukemia virus in sheep and cattle.// J.Virol.-1994.-68.-p.4589−4596.

159. Simon J., Werner G. Vaccinia virus infection of the central nervous system in X-irradiated mice.// Infect.Immun.-1979.-25.-p. 1035−1042.

160. Smith G., Mackett M., Moss B. Infection vaccinia virus recombinants that express hepatitis B virus surface antigen. //Natura (London).-1983 .-302.-p.490−495.

161. Thomas I., Brohier B., Languet B. et al. Primary multiplication site of the vaccinia-rabies glycoprotein recombinant virus administered to foxes by the oral route.//J.Gen.ViroL-1990.-71,Nl.-p.37 042.

162. Uckert W., Hertling I., Kraft R. et al. Structural components of bovine leukemia virus: further biochemical and immunological characterization of major structural proteins and glycoproteins.//Virus Res.- 1986.-4,N4.-p.343−356.

163. Voneche V., Callebant J., Kettmann R. et al. The 19−29 amino acid fragment of GP51 adopts an amphiphillic structure and plays a key role in the131fusion events induced by bovine leukemia virus.// J.Biol.Chem.-1992.-267.-p.15 193−15 197.

164. Willems L., Chen G., Portetelle D. et al. Cellular immortalization and transformation by the bovine leukemia virus tax gene product.// Arch.lnt.Physiol.of Biochem.-1990.-98,N2.-p.749.

165. Willems L., Thienpont E., Kerkhofs D. et al. Bovine leukemia virus an animal model for the study of intrastrayn variability.// J.Virol.-1993.-63/2.-p. 1086−1089.

166. Yilma T., Hsu D., Jones L. et al. Protection of cattle against rinderpest with vaccinia virus recombinants expressing the HA or J gene.// Science.-1988.-242,N4881 .-p. 1058−1061.

167. Yoshinaka Y., Oroszlan S. Bovine leukemia virus post-envelope gene coded protein: evidence for expression in natural infection.// Biochem. And Biophys.Res.Commun.-1985.-131,Nl.-p.347−354.

168. Zhou J., Crawford L., McLean L. et al. Increased antibody responses to human papillomavirus type 16 LI protein expressed by recombinant vaccinia132virus lacking serine protease inhibitor genes.// J.Gen.Virol.-1990.-7l, N9.-p.2185 2190.

Показать весь текст
Заполнить форму текущей работой