Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Генофонд сорго для селекции на устойчивость к краснодарской популяции обыкновенной злаковой тли

ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

В результате исследований, которые проводятся в отделе иммунитета ВНИИ растениеводства им. Н. И. Вавилова, выделены источники устойчивости к обыкновенной злаковой тле в пределах всех хозяйственных групп сорго (зерновое, сахарное, веничное, травянистое), идентифицировано 15 генов устойчивости к насекомому (Радченко, 2000, 2006). Большая часть генов не использовалась в селекции, однако… Читать ещё >

Содержание

  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Особенности биологии, распространение и вредоносность обыкновенной злаковой тли
    • 1. 2. Устойчивость сорго к обыкновенной злаковой тле
      • 1. 2. 1. Типы устойчивости растений
      • 1. 2. 2. Иммунологические барьеры растений. Механизмы устойчивости
      • 1. 2. 3. Внутривидовая изменчивость обыкновенной злаковой тли
      • 1. 2. 4. Наследование устойчивости сорго к обыкновенной злаковой тле
      • 1. 2. 5. Селекция сорго на устойчивость к вредителю
  • 2. УСЛОВИЯ, МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 2. 1. Условия и климатическая характеристика Кубанской опытной станции ВИР
    • 2. 2. Материал исследований
    • 2. 3. Методы исследований
      • 2. 3. 1. Оценка устойчивости сорго к обыкновенной злаковой тле в полевых условиях
      • 2. 3. 2. Лабораторные методы
      • 2. 3. 3. Гибридологический анализ
      • 2. 3. 4. Создание новых доноров эффективных генов устойчивости зернового сорго к обыкновенной злаковой тле
    • 2. 4. Статистическая обработка данных
  • 3. УСТОЙЧИВОСТЬ КОЛЛЕКЦИОННЫХ ОБРАЗЦОВ СОРГО к
  • ОБЫКНОВЕННОЙ ЗЛАКОВОЙ ТЛЕ
    • 3. 1. Устойчивость сорго к обыкновенной злаковой тле в полевых условиях

Генофонд сорго для селекции на устойчивость к краснодарской популяции обыкновенной злаковой тли (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Обыкновенная злаковая тля (Schizaphis graminum Rond.) — самый опасный вредитель сорго, способный унести до 85% урожая (Бадулин, Любимен-ко, 1998). Селекция устойчивых сортов рассматривается как наиболее радикальный, дешевый и экологически безопасный способ борьбы с насекомым. В селекционных программах России использовали лишь один донор устойчивости (сорт Сарваши), что привело к генетической однородности посевов и, как следствие, к ускорению адаптивной микроэволюции насекомого. В настоящее время Сарваши и его производные сильно повреждаются тлей. Образцы, устойчивые в США к ряду биотипов насекомого, неэффективны против популяций тли из России.

В результате исследований, которые проводятся в отделе иммунитета ВНИИ растениеводства им. Н. И. Вавилова, выделены источники устойчивости к обыкновенной злаковой тле в пределах всех хозяйственных групп сорго (зерновое, сахарное, веничное, травянистое), идентифицировано 15 генов устойчивости к насекомому (Радченко, 2000, 2006). Большая часть генов не использовалась в селекции, однако дифференциальное взаимодействие с фитофагом не выявлено лишь для образцов, защищенных генами Sgrl — SgrW. Необходимость поиска образцов сорго с новыми генами устойчивости вполне очевидна.

В связи с этим следует отметить, что далеко не вся коллекция сорго ВИР исследована с достаточной полнотой. Например, практически не изучены образцы веничного сорго, которое в естественных условиях заселяется вредителем преимущественно в слабой степени. Кроме того, в силу характерной для местных форм сорго гетерогенности по многим признакам, в том числе и по устойчивости к обыкновенной злаковой тле, слабо повреждаемые насекомым биотипы можно выделить в пределах, казалось бы, хорошо изученных коллекционных образцов. Устойчивые формы обладают рядом отрицательных свойств (прежде всего, высокорослостью и позднеспелостью). Очевидно, для эффективного использования в селекционном процессе необходимо создание доноров устойчивости, характеризующихся агрономически приемлемым фенотипом. В связи с эти возникает еще одна проблема — достаточно слабая генетическая изученность выявленных источников. А целесообразное использование идентифицированного генофонда невозможно без анализа взаимоотношений фитофага с растением-хозяином, изучения внутривидовой изменчивости и структуры популяций насекомого, исследования генетической природы длительной устойчивости растений. Очевидно, исследования в этом направлении особенно актуальны для Краснодарского края — одной из основных зон соргосеяния в нашей стране.

Цель работы — изучить разнообразие рода Sorghum Moench по устойчивости к обыкновенной злаковой тле и определить иммунологически ценный генофонд сорго для обеспечения селекционных программ в Краснодарском крае.

Для этого необходимо было решить следующие задачи:

— в полевых и лабораторных условиях изучить наследственное разнообразие коллекции сорго по устойчивости к обыкновенной злаковой тле;

— определить иммунологически ценный генофонд сорго для обеспечения селекционных программ;

— изучить характер наследования устойчивости к тле у выделенных образцов;

— исследовать внутривидовую дифференциацию и структуру популяций обыкновенной злаковой тлиоценить размах сезонной изменчивости генетической структуры краснодарской популяции насекомого;

— проверить гипотезу о влиянии редко встречающейся вирулентности на жизнеспособность обыкновенной злаковой тли как причину длительной устойчивости растений;

— отобрать устойчивые частичные аналоги районированных и перспективных сортов, созданные с использованием образцов к-924 и к-1362, которые превосходят рекуррентные формы по ряду селекционно ценных признаков;

— исследовать донорские свойства образцов сорго к-928, к-929, к-1237 с новыми генами устойчивости к обыкновенной злаковой тле.

Научная новизна. В результате изучения 1290 коллекционных образцов выделено 9 форм зернового, сахарного и дикого сорго, обладающих устойчивостью к обыкновенной злаковой тле. С помощью анализа взаимодействия фитофаг — растение-хозяин показано отличие генов, обуславливающих слабую поврежденность насекомым этих форм сорго, от идентифицированных ранее генов Sgrl — Sgr6, Sgr 12. Впервые изучена устойчивость к фитофагу большей части коллекции веничного сорго. Свыше половины изученных образцов веничного сорго обладают более или менее выраженной устойчивостью к обыкновенной злаковой тле. Наиболее высоким уровнем экспрессии признака характеризуются 22 генотипа, а также 39 гетерогенных по изученному признаку форм. Показан доминантный характер наследования устойчивости к вредителю у образцов зернового сорго из Китая к-830, к-831, к-931, к-932, к-933, к-1238, к-1239, к-1241, к-1251 и к-2588. Образцы зернового сорго к-123 9 и к-1251 имеют по два эффективных гена устойчивости (доминантному и рецессивному), которые не тождественны идентифицированным ранее эффективным генам Sgr5 и Sgr6. Выявлена высокая общая и сезонная изменчивость генетической структуры краснодарской популяции обыкновенной злаковой тли. Показано влияние генов вирулентности, комплементарных эффективным генам устойчивости сорго, на жизнеспособность обыкновенной злаковой тли. Показано, что при создании высокопродуктивных и устойчивых к обыкновенной злаковой тле форм сорго целесообразно использовать ограниченные (1−2) беккроссы. Во многих случаях потомство.

BCi может быть более приемлемым по агрономическим признакам, чем ВС2. Устойчивость доноров устойчивости к-1362, к-924, к-928, к-929, к-1237 не сцеплена с отрицательными свойствами.

Практическая ценность результатов исследований. Выделены 22 образца веничного, 4 — зернового и 2 — сахарного сорго, которые могут быть использованы в селекции на иммунитет к обыкновенной злаковой тле в Краснодарском крае. Для вовлечения в селекцию рекомендуются также образцы зернового сорго к-1239 и к-1251, у которых изучено наследование устойчивости к краснодарской популяции вредителя. Для селекции высокопродуктивных сортов и гибридов зернового сорго предлагаются обладающие высокой устойчивостью к тле и другими ценными признаками линии F13BC1 (Л-100 х к-1362), F12BC! (Кубанское красное 1677х к-1362), FnBQ (Хегари 2259 х к-924), FnBCi (Зерноградское 54 х к-924), F10BCi (Кубанское красное 1677 х к-924).

Апробация работы. Результаты исследований доложены или представлены на:

— научной конференции, посвященной 100-летию научной селекции в России (Москва, 2003);

— международной конференции «Конференция по защите растений. Вредители, болезни и сорняки» (С.-Петербург, 2003);

— международной научно-практической конференции «Биологическая защита растений — основа стабилизации агроэкосистем» (Краснодар, 2004);

— Десятой Санкт-Петербургской ассамблее молодых ученых и специалистов (С.-Петербург, 2005);

— Международная научно-практической конференции «Генетические ресурсы для адаптивного растениеводства: мобилизация, инвентаризация, сохранение, использование» (Оброшино, 2005);

— международной конференции «Вопросы менеджмента в защите растений и устойчивом земледелии: исследования, развитие и информационные системы» (С.-Петербург, 2005);

— Седьмом международном симпозиуме по тлям (Фримантл, Австралия, 2005);

— II Всероссийском съезде по защите растений «Фитосанитарное оздоровление экосистем» (С.-Петербург, 2005);

— конференции молодых ученых и аспирантов Северо-Западного научно-методического центра Россельхозакадемии (С.-Петербург, 2005);

— научной конференции «Стратегия и тактика защиты растений» (Минск, 2006);

— конференции профессорско-преподавательского состава СПГАУ (С.Петербург, 2007).

Выражаю глубокую благодарность научному руководителю — д.б.н., зав. отделом иммунитета ГНЦ РФ ВИР Е. Е. Радченко. Считаю приятным долгом выразить благодарность также коллективу отдела иммунитета за помощь в работе. Глубоко благодарен зав. группой сорго Кубанской опытной станции ВИР Е. В. Малиновской и сотрудникам станции за постоянную помощь в проведении полевых экспериментальных работ.

Приношу искреннюю признательность Российскому фонду фундаментальных исследований за финансовую поддержку моей работы (инициативные гранты № 02−04−48 948, № 06−04−49 039) и ФЦП «Интеграция» (грант Э0052).

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

выводы.

1. В результате полевого и лабораторного изучения 1290 коллекционных образцов выделено 9 форм зернового, сахарного и дикого сорго, которые защищены генами устойчивости к обыкновенной злаковой тле, отличающимися от идентифицированных ранее генов Sgrl — Sgr6, Sgrl2.

2. Выявлена высокая частота устойчивых форм (51,8%) среди образцов коллекции веничного сорго. Наиболее высоким уровнем устойчивости к обыкновенной злаковой тле характеризуются 22 генотипа, а также 39 гетерогенных по изученному признаку форм.

3. Показан доминантный характер наследования устойчивости к вредителю у десяти образцов зернового сорго из Китая: к-830, к-831, к-931, к-932, к-933, к-1238, к-1239, к-1241, к-1251 и к-2588.

4. Образцы зернового сорго к-1239 и к-1251 имеют по два высокоэффективных гена устойчивости (доминантному и рецессивному), которые отличаются от идентифицированных ранее эффективных генов Sgr5 и Sgr6.

5. Выявлена высокая общая и сезонная изменчивость генетической структуры краснодарской популяции обыкновенной злаковой тли.

Плотность популяции обыкновенной злаковой тли на посевах сорго не влияет на внутрипопуляционный полиморфизм насекомого.

6. Показано влияние генов вирулентности, комплементарных эффективным генам устойчивости сорго, на жизнеспособность обыкновенной злаковой тли.

7. Показано, что при создании высокопродуктивных и устойчивых к обыкновенной злаковой тле форм сорго целесообразно использовать ограниченные (1−2) беккроссы. Во многих случаях потомство BCi может быть более приемлемым по агрономическим признакам, чем ВС2. Устойчивость доноров устойчивости к-1362, к-924, к-928, к-929, к-1237 не сцеплена с отрицательными свойствами.

Показать весь текст

Список литературы

  1. А.В., Любименко Т. А. Обыкновенная злаковая тля — вредитель сорго // Защита растений. — 1998. — № 5. — С. 25.
  2. Бей-Биенко Г. Я., Богданов-Катьков Н.Н., Ильинский A.M., Фалькен-штейн Б.Ю., Щеголев В. Н. Сельскохозяйственная энтомология. М.-Л.: Сельхозгиз. — 1941. — 648с.
  3. С.П. Совершенствование метода оценки устойчивости злаков к злаковым тлям (лабораторные опыты с Rhopalosiphum padi L.) на пшенице // Известия ТСХА. 1984. — Вып.З. — С. 134−140.
  4. Д.Д. Главная экспериментальная база ВИР. Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции. Л., 1974. — Т. 53 — вып. 3.
  5. Г. С. Злаковые тли на сорго // Вопросы биологии, селекции и семеноводства сорго. Сб. научн. тр. Ставропольского НИИСХ. Ставрополь. 1977. — вып. ЗЗ
  6. Н.И. Происхождение и география культурных растений. М.: Наука. — 1987. — 440с.
  7. Ван дер Планк Я. Устойчивость растений к болезням. М.: Колос. -1972. — 253с.
  8. В.В., Радченко Е. Е. Селекционная ценность продуктивных линий, устойчивых к злаковой тле // Зерновые и кормовые культуры России: Сборник научных трудов. Зерноград. 2002. — С.53−55.
  9. Н.Д. Тли, вредящие злаковым культурам в Нахичеванской АССР // Труды нахичеванской комплексной зональной опытной станции. Баку. — 1966. — Вып.4.- С.52−61.
  10. Н.А. Физиологические аспекты теории устойчивости растений к насекомым: Автореф. дис.. доктора с.-х. наук. Л. — 1980. — 49с.
  11. .А. Методика полевого опыта. М.: Колос. — 1979. — 416с.
  12. JI.A. Показатели иопуляционной изменчивости по полиморфным признакам. В кн.: Фенетика популяций. — М.: Наука. — 1982. — С.38−44.
  13. JI.A. Статистические методы анализа частот генов в природных популяциях //Итоги науки и техн. ВИНИТИ. Сер. Общая генетика. 1983. — Т.8. — С.76−104.
  14. П.М. Культурные растения и их сородичи. Л.: Колос. -1971.-751с.
  15. А.В. Насекомые, вредящие полеводству. 4.1 Вредители зерновых злаков // Труды Полтавской с.-х. опытной станции. 1926. -Вып.50. — 296с.
  16. Л.К., Виноградов З. С., Андрияш Н. В., Вахненко В. В. Каталог мировой коллекции ВИР. Вып. 535. Сорго сахарное. Л.: ВИР. -1990.-45с.
  17. В.И., Виноградов З. С., Жукова М. П., Пурдик Н., П., Якшин Г. В. Каталог мировой коллекции ВИР. Вып.476. Сорго (оценка на устойчивость к покрытой и пыльной головне, злаковой тле). Л.: ВИР. -1988.-55с.
  18. В.И., Одинцова И. Г. Современные стратегии селекции растений на устойчивость к болезням // Селекция и семеноводство. 1990. -Nl.-C.2−6.
  19. Г. Ф. Биометрия. М.: Высшая школа. — 1980. — 296с.
  20. Т., Хиллз Ф. Сельскохозяйственное опытное дело. Планирование и анализ. М.: Колос. — 1981. — 320с.
  21. .Н. Сорго на Северном Кавказе. Ростов-на-Дону: Изд-во Ростовского университета. 1992. — 208с.
  22. В.А. Тли сельскохозяйственных культур правобережной лесостепи УССР. Киев: Изд-во АН УССР.- 1953.- 72с.
  23. JI.А., Тырышкин Л. Г. Популяции возбудителя бурой ржавчины пшеницы // успехи современной генетики. М.: Наука. — 1994. -вып. 19 — С.81−95.
  24. А.К. Эволюция циклов и происхождение гетереции (миграций) у тлей // Защита раст. от вредителей. Л- 1925. — Т.2.- N7-С.476−484.
  25. О.С. Злаковая тля (Toxoptera graminum Rond.). (Биология, экология, испытание мер борьбы). Ростов-на Дону. 1930. — 60с.
  26. В.П. Тли Средней Азии. Ташкент: Узбекистанская опытная станция защиты растений. -1929. 424с.
  27. И.Г., Радченко Е. Е., Тырышкин Л. Г. Проблема длительно сохраняющейся устойчивости растений к вредным организмам // Журнал общей биологии. 2002. — Т.63. — № 3. — С.249−257.
  28. Паспорта доноров хозяйственно ценных признаков зерновых культур, созданных сотрудниками ВИР и опытной сети в 1997 г. Вып. 14. С. Петербург: ВИР. 1998.
  29. Паспорта доноров селекционно ценных признаков сельскохозяйственных культур. Вып. 15. С.-Петербург: ВИР. 1999. 24с.
  30. Е.Е. Генетика устойчивости зерновых культур к тлям и проблемы селекции // Генетика. 1994. — Т.30. — N10. — С.1374−1380.
  31. Е.Е. Новые гены устойчивости сорго к обыкновенной злаковой тле // Генетика. 1995. — Т.31. — N5. — С.668−673.
  32. Е.Е. Наследование различных механизмов устойчивости сорго к обыкновенной злаковой тле (Schizaphis graminum Rond.) // Журнал общей биологии. 1999а. — Т. 60. — N6. — С.622−632.
  33. Е.Е. Идентификация генов устойчивости зерновых культур к тлям. СПб.: ВИР, 19 996. 60с.
  34. Е.Е. Идентификация генов устойчивости сорго к обыкновенной злаковой тле // Генетика. 2000. — Т.36. — N4. — С.510−519.
  35. Е.Е. Наследование устойчивости образцов зернового сорго и суданской травы к обыкновенной злаковой тле // Генетика. — 2006. -Т.42. № 1. — С.65−70.
  36. Е.Е., Звейнек И. А., Тырышкин Л. Г., Коновалова Г. С., Семенова А. Г., Хохлова А. П. Каталог мировой коллекции ВИР. Вып. 751. Ячмень (устойчивость образцов из Юго-Восточной Азии к вредителям и болезням). Спб.: ВИР. 2004. — 43с.
  37. Е.Е., Лычагина Н. С. Изменчивость по вирулентности краснодарской и саратовской популяций обыкновенной злаковой тли // Проблемы защиты растений в Поволжье. Самара. — 2002. — С.94−97.
  38. Е.Е., Одинцова И. Г., Власова Т. В. Наследование признака слабо выраженной устойчивости сорго к обыкновенной злаковой тле // Генетика. 2001. — Т.37. — N10. — С.1364−1370.
  39. Е.Е., Андрияш Н. В., Алпатьев В. Н. Создание устойчивых к злаковой тле линий сорго // Кукуруза и сорго. 1996. — N1. — С. 11−12.
  40. Е.Е., Столяренко С. Б. Устойчивость сахарного сорго к обыкновенной злаковой тле // Исходный материал для селекции кукурузы и крупяных культур. Сб. научн. трудов по прикл. бот., ген. и сел. -1990. Т.136. — С.61−65.
  41. Е.Е., Якшин Г. В. Устойчивые к обыкновенной злаковой тле образцы сорго // Селекция и семеноводство. -1990. N1. — С.26−27.
  42. Е.Е., Якшин Г. В. Наследственное разнообразие сорго по устойчивости к обыкновенной злаковой тле // Устойчивость сортов генофонда ВИР к болезням и вредителям. Сб. научн. трудов по прикл. бот., ген. и сел. 2001. — Т. 159. — С.24−34.
  43. А.Г., Скляр В. И. Некоторые вопросы селекции сорговых культур на устойчивость к злаковым тлям // Селекция и семеноводство. Киев: Урожай. Вып.40. — 1978. — С.43−48.
  44. Н.К., Надирадзе Н. В. К изучению биологии обыкновенной злаковой тли Schizaphis (=Toxoptera) graminum Rond. в Грузии // Труды Грузинского с.-х. ин-та. 1977. — Т. 102. — С.97−104.
  45. Ф.К., Захарченко С. А. Итоги интродукции древесных пород в условиях степной зоны Кубани. Научные труды Кубанской опытной станции ВИР. вып. 2., Краснодар, 1963.
  46. И.Д. Иммунитет полевых культур к насекомым и клещам. JL: Зоологический институт АН СССР. 1985. — 322с.
  47. И.Д., Вилкова Н. А. Современные теоретические представления об иммунитете растений к вредителям //Экологические основы стратегии и тактики защиты растений. Труды ВИЗР. JI. — 1979. -С.41−55.
  48. Г. Х. Подотряд Aphidinea тли. — В кн.: Определитель насекомых Европейской части СССР. Т.1 Низшие, древнекрылые, с неполным превращением. Под редакцией Г. Я. Бей-Биенко. М.-Л.: Наука. — 1964. — С.489−616.
  49. Г. X. Эволюция тлей в связи со специализацией и сменой хозяев: Автореф. дис.. д-ра биол. наук. Л.: ЗИН. 1967. — 41 с.
  50. .С., Добрякова Е. П. Некоторые особенности биологии обыкновенной злаковой тли на сорго в Саратовской области // Защита растений от вредителей и болезней на юго-востоке и в западном Казахстане. Саратов. — 1980. — С.3−7.
  51. Е.С., Варадинов С. Г., Корнейчук В. А., Баняи Л. Широкий унифицированный классификатор СЭВ и международный классификатор СЭВ возделываемых видов рода Sorghum Moench. Jl. — 1982. -34с.
  52. Г. В. Устойчивость сорго к обыкновенной злаковой тле Schi-zaphis graminum Rond. в связи с селекцией на иммунитет: Автореф. дис.. канд. с.-х. наук. Л.: ВИР, 1990. 18с.
  53. Abid H.S., Kindler S.D., Jensen S.G., Thomas-Compton M.A., Spomer S.M. Isozyme characterization of sorghum aphid species and greenbug bio-types (Homoptera: Aphididae) // Ann. Entomol. Soc. Amer. 1989. — V.82. — N3. — P.303−306.
  54. Agrama H.A., Widle G.E., Reese J.C., Campbell L.R., Tuinstra M.R. Genetic mapping of QTLs associated with greenbug resistance and tolerance in Sorghum bicolor // Theor. Appl. Genet. 2002. — V. 104. — N8. — P.1373−1378.
  55. Archer T.L., Onken A.B., Matheson R.L., Bynum E.D.Jr. Nitrogen fertilizer influence on greenbug (Homoptera: Aphididae) dynamics and damage to sorghum // J. Econ. Entomol. 1982. — V.75. — N4. — P.695−698.
  56. Argandona V.H., Niemeyer H.M., Corcuera L.J. Effect of content and distribution of hydroxamic acids in wheat on infestation by the aphid Schizaphis graminum I I Phytochemistry. -1981. V.20. — N4. — P.673−676.
  57. Argandona V.H., Pena G.F., Niemeyer H.M., Corcuera L.J. Effect of cysteine on stability and toxicity to aphids of cyclic hydroxamic acid from Gramineae // Phytochemistry. 1982. — V.21. — N7. — P.1573−1574.
  58. Arnold D.C. Effects of cold temperatures and grazing on greenbug populations in wheat in Noble County, Oklahoma, 1975−76 // J. Kans. Entomol. Soc. 1981. — V.54. — N3. — P.571−577.
  59. Atkins I.M., Dahms R.G. Reaction of small-grain varieties to green bug attack //USDA.- 1945. Techn.bull. N901. — 30p.
  60. Beregovoy V.H., Peters D.C. Biotype J, a unique greenbug (Homoptera: Aphididae) distinguished by plant damage characteristics // J. Kans. Entomol. Soc. 1994. — V. 67. — N 3. — P.248−252.
  61. Behle R.W., Michels G.J.Jr. Greenbug (Homoptera, Aphididae) feeding affects nonstructural carbohydrate levels in seedling sorghum // J. Econ. En-tomol. 1993. — V.86. — N2. — P.363−368.
  62. Blackman R.L. Aphid genetics and host plant resistance // Bulletin SROP. -1981.-V.IV/1.-P.13−19.
  63. Bonvicini Pagliai A.M., Crema R. Evolutive models of heterogonic cycles of aphids //Boll. 1st. entomol. studi Bologna. 1987.- V.41. — P.101−108.
  64. Boozaya-Angoon D., Starks K.J., Edwards L.H., Pass H. Inheritance of resistance in oats to two biotypes of the greenbug // Environm. Entomol. -1981. V.10. — N4. — P.557−559.
  65. Brown H.D. The suitability of some crops to infestation by the wheat aphid, Schizaphis graminum (Homoptera: Aphididae) // Entomol. exp. et appl. -1972. V.15. — N1. — P.128−138.
  66. Burd J.D., Porter D.R. Biotypic dyversity in greenbug (Hemiptera: Aphididae): characterizing new virulence and host associations // J. Econ. Entomol.- 2006. V.99- N3. — P. 959−965.
  67. Cabrera H.M., Argandona V.H., Zuniga G.E., Corcuera L J. Effect of infestation by aphids on the water status of barley and insect development // Phy-tochemistry. 1995. — V.40. — N4. — P.1083−1088.
  68. Campbell B.C., Jones K.C., Dreyer D.L. Discriminative behavioral responses by aphids to various plant matrix polysaccharides // Entomol. exp. et appl. 1986. — V.41. — N1. — P.17−24.
  69. Chaudhary J.P., Ramzan M., Atwal A.S. Preliminary studies on the biology of wheat aphids // Indian J. Agr. Sci. 1969. — V.39. — N7. — P.672−675.
  70. Coppock S. Greenbugs. They’re back on sorghum // Crops and soils. 1969.- V.21. N9. — P.9−10.
  71. Corcuera L.J. Effects of indole alkaloids from Gramineae on aphids // Phy-tochemistry. 1984. — V.23. — N3. — P.539−541.
  72. Corcuera L.J., Queirolo C.B., Argandona V.H. Effects of 2-B-D-glycosyl-4-hydroxy-7-metoxy-l, 4-benzoxazin-3-one on Schizaphis graminum (Ron-dani) (Insecta, Aphididae) feeding on artificial diets // Experientia. 1985. -V.41. — N4. — P.514−516.
  73. Dahms R.G. Comparative tolerance of small grains to greenbugs from Oklahoma and Mississippi // J. Econ. Entomol. 1948. — V.41. — N5. — P.825−826.
  74. Dahms R.G., Connin R.V., Guthrie W.D. Grasses as hosts of the greenbug // J. Econ. Entomol. 1954. — V.47. — N6. — P.1151−1152.
  75. Dahms R.G., Storks KJ. Preventing greenbug outbreaks // USDA. -1973. -leaflet. N309. 8p.
  76. Dahms R.G., Wood E.A.Jr. Evaluation of greenbug damage to small grains //J. Econ. Entomol. 1957. — V.50. — N4. — P.443−446.
  77. Daniels N.E. Greenbug populations and their damage to winter wheat as affected by fertilizer applications // J. Econ. Entomol. 1957. — V.50. — N6. -P.793−794.
  78. Daniels N.E. The effects of high temperatures on greenbug, Schizaphis graminum, reproduction // J. Kans. Entomol. Soc. 1967. — V.40. — N2. -P.133−137.
  79. Dickson R.C., Laird E.F.Jr. Crop host preferences of greenbug biotype attacking sorghum // J. Econ. Entomol. 1969. — V.62. — N5. — P.1241.
  80. Dixon A.F.G. Structure of aphid populations // Annu. Rev. Entomol. Vol.30. Palo Alto, Calif. — 1985. — P.155−174.
  81. Dixon A.G.O., Bramel-Cox P.J., Harvey T.L. Diallel analysis of resistance in sorghum to greenbug biotype E: antibiosis and tolerance // Crop Sci. -1990a. V.30. — N5. — P.1055−1059.
  82. Dixon A.G.O., Bramel-Cox P.J., Harvey T.L. Complementarity of genes for resistance to greenbug Schizaphis graminum (Rondani)., biotype E, in sorghum Sorghum bicolor (L.) Moench. // Theor. Appl. Genet. 1991. — V.81. -Nl. -P.105−110.
  83. Dixon A.G.O., Bramel-Cox P.J., Reese J.C., Harvey T.L. Mechanisms of resistance and their interactions in twelve sources of resistance to biotype E greenbug (Homoptera: Aphididae) in sorghum // J. Econ. Entomol. 1990b. — V.83. — N1. — P.234−240.
  84. Dorschner K.W., Ryan J.D., Johnson R.C., Eikenbary R.D. Modification of host nitrogen levels by the greenbug (Homoptera: Aphididae): its role in resistance of winter wheat to aphids // Environm. Entomol. 1987. — V.16. -N4. — P.1007−1011.
  85. Dorschner K.W., Johnson R.C., Eikenbary R.D., Ryan J.D. Insect-plant interactions: greenbugs (Homoptera: Aphididae) disrupt acclimation of winter wheat to drought stress // Environm. Entomol. 1986 — V.15. — N1. — P.118−121.
  86. Dreyer D.L., Campbell B.C. Association of the degree of methylation of intercellular pectin with plant resistance to aphids and with induction of aphid biotypes // Experientia. 1984. — V.40. — N2. — P.224−226.
  87. Dreyer D.L., Campbell B.C., Jones K.C. Effect of bioregulator-treated sorghum on greenbug fecundity and feeding behavior implications for host-plant resistance // Phytochemistry. 1984. — V.23. — N8. — P.1593−1596.
  88. Dreyer D.L., Jones K.C. Feeding deterrency of flavonoids and related phe-nolics towards Schizaphis graminum and Myzus persicae: aphid feeding deterrents in wheat // Phytochemistry. -1981. V.20. — Nil. — P.2489−2493.
  89. Eisenbach J., Mittler Т.Е. Polymorphism of biotypes E and С of the aphid Schizaphis graminum (Homoptera: Aphididae) in response to different scotophases // Environ. Entomol. 1987a. — V.16. — N2. — P.519−523.
  90. Eisenbach J., Mittler Т.Е. Sex pheromone discrimination by male aphids of a biotype of Schizaphis graminum 11 Entomol. exp. et appl. 1987b. — V.43. -N2. — P.181−182.
  91. Flor H.H. The complementary genie systems in flax and flax rust // Adv. Genet. 1956. — V.8. — P.29−54.
  92. Frey K.J., Browning J.A., Simons M.D. Management systems for host genes to control disease loss // Ind. J. Genet. Plant Breed. 1979. — V.39. — N1. -P.10−29.
  93. Gardenhire J.H., Chada H.L. Inheritance of greenbug resistance in barley //Crop Sci.- 1961.- V.l. P.349−352.
  94. Gildow F.E. Increased production of alatae by aphids reared on oats infected with barley yellow dwarf virus // Ann. Entomol. Soc. Amer. 1980. — V.73.- P.343−347.
  95. Hackerott H.L., Harvey T.L., Ross W.M. Greenbug resistance in sorghums // Crop Sci. 1969. — V.9. — N5. — P.656−658.
  96. Hackerott H.L., Harvey T.L., Ross W.M. Registration of KS 30 sorghum germplasm // Crop Sci. 1972. — V.12. — N5. — P.719.
  97. Harvey T.L., Hackerott H.L. Plant resistance to a greenbug biotype injurious to sorghum // J. Econ. Entomol. 1969. — V.62. — N6. — P.1271−1274.
  98. Harvey T.L., Hackerott H.L. Chemical control of a greenbug on sorghum and infestation effects on yields // J. Econ. Entomol. 1970. — V.63. — N5. -P.1536−1539.
  99. Harvey T.L., Hackerott H.L. Effects of greenbugs on resistant and susceptible sorghum seedlings in the field // J. Econ. Entomol. 1974. — V.67. — N3.- P. 377−380.
  100. Harvey T.L., Hackerott H.L., Martin T.J., Dispersal of alate biotype С greenbugs in Kansas // J. Econ. Entomol. 1982. — V.75. — N1. — P.36−39.
  101. Harvey T.L., Kofoid K.D., Martin T.J., Sloderbeck P.E. A new greenbug virulent to E-biotype resistant sorghum // Crop Sci. 1991. — V.31. — N6. -P.1689−1691.
  102. Harvey T.L., Wilde G.E., Kofoid K.D. Designation of a new greenbug biotype K, injurious to resistant sorghum // Crop Sci. 1997. — V.37. — N3. -P.989−991.
  103. Haseman L. Influence of soil minerals on insects // J. Econ. Entomol. -1946. V.39. — N1. — P.8−11.
  104. Inayatullah C., Fargo W.S., Webster J.A. Use of multivariate models in differentiating greenbug (Homoptera: Aphididae) biotypes and morphs // Environ. Entomol. 1987. — V.16. — N4. — P.839−846.
  105. Jackson O.W., Vessels K.J., Potter D.A. Resistance of selected cool and warm season turfgrasses to the greenbug (Schizaphis graminum) I I Hort Science. 1981. — V.16. — N4. — P.558−559.
  106. Jenkins J.N. Breeding for insect resistance. In: Plant Breeding II. Edited by K.J.Frey. — The Iowa State University press. — 1981. — P.291−308.
  107. Johnson J.W., Rosenow D.T., Teetes G.L. Response of greenbug-resistant grain sorghum lines and hybrids to a natural infestation of greenbugs // Crop Sci. 1974. — V.14. — N3. — P.442−443.
  108. Juneja P. S., Gholson R.K. Acidic metabolites of benzyl alcohol in greenbug resistant barley // Phytochemistry. 1976. — V. 15. — N5. — P.647−648.
  109. Juneja P. S., Gholson R.K., Burton R.L., Starks K.J. The chemical basis for greenbug resistance in small grains. 1. Benzyl alcohol as a possible resistance factor // Ann. Entomol. Soc. Amer. 1972. — V.65. — N4. — P.961−964.
  110. Katsar K.S., Paterson A.H., Teetes G.L., Peterson G.C. Molecular analysis of sorghum resistance to the greenbug (Homoptera: Aphididae) // J. Econ. Entomol. 2002. — V.95. — N2. — P.448−457.
  111. Kawada K., Lohar M.K. Effect of gramine on the fecundity, longevity and probing behaviour of the greenbug, Schizaphis graminum (Rondani) // Ber. Ohara Inst. Landwirt. Biol. Okayama Univ. 1989. — V.19. — N4. — P.199−204.
  112. Kerns D.L., Peters D.C., Puterka G.J. Greenbug biotype and grain sorghum seed sale surveys in Oklahoma // Southwest. Entomol. 1987. — V.12. — N3. — P.237−243.
  113. Kerns D.L., Puterka G.J., Peters D.C. Intrinsic rate of increase for greenbug (Homoptera: Aphididae) biotypes E, F, G, and H on small grains and sorghum varieties // Environm. Entomol. 1989. — Y.18. — N6. — P.1074−1078.
  114. Kindler S.D., Elliott N.C., Giles K.L., Royer T.A., Fuentes-Granados R., Tao F. Effect of greenbugs (Homoptera: Aphididae) on yield loss of winter wheat // J. Econ. Entomol. 2002. — V.95. — N1. — P.89−95.
  115. Kindler S.D., Spomer S.M. Biotypic status of six greenbug (Homoptera: Aphididae) isolates // Environ. Entomol. 1986. — V.15. — N3. — P.567−572.
  116. Kindler S.D., Staples R. Schizaphis graminum: effect on grain sorghum exposed to severe drought // Environ. Entomol. 1981. — V.10. — N2. — P.247−248.
  117. Kirkland R., Peries I.D., Hamilton G.C. Differentiation and developmental rate of nymphal instars of greenbug reared on sorghum // J. Kans. Entomol. Soc. 1981. — V.54. — N4. — P.743−747.
  118. Kofoid K.D., Ross W.M., Hackerott H.L., Harvey T.L., Kindler S.D. Evaluation of greenbug resistance in S2 progenies of grain sorghum // Crop Sci. 1976. — V.16. — N2. — P.265−267.
  119. Kogan M., Ortman E.F. Antixenosis a new term proposed to define Painter’s «non-preference» modality of resistance // Bull. Entomol. Soc. Amer. — 1978. — V.24. — P.175−176.
  120. Maugh Т.Н. Exploring plant resistance to insects // Science. 1982. -V.216. — N4547. — P.722−723.
  121. Mayo Z.B.Jr., Starks K.J. Chromosome comparisons of biotypes of Schizaphis graminum to one another and to Rhopalosiphum maidis, R. padi, and Sipha flava // Ann. Entomol. Soc. Amer. 1972. — V.65. — N4. — P.925−928.
  122. Mayo Z.B., Starks K.J., Banks D.J., Veal R.A. Variation in chromosome length among five biotypes of the greenbug (Homoptera: Aphididae) // Ann. Entomol. Soc. Amer. 1988. — V.81. — N1. — P.128−131.
  123. Modawi R.S., Browder L.E., Heyne E.G. Reduced receptivity to infection associated with wheat gene Lr2c for low reaction to Puccinia recondita // Phytopath. 1985. — V. 75. — № 5. — P.573−576.
  124. Moharramipour S., Murata S., Kanehisa K., Tsumuki H. Relationship between gramine concentration and cereal aphid populations in seedling and maturation stages in barley lines // Bull. Res. Inst. Bioresour./ Okayama Univ. 1996. — V.4. — N1. — P.49−58.
  125. Montllor C.B., Campbell B.C., Mittler Т.Е. Natural and induced differences in probing behavior of two biotypes of the greenbug, Schizaphis graminum, in relation to resistance in sorghum // Entomol. exp. et appl. 1983. — V.34. — N1. — P.99−106.
  126. Morgan J., Wilde G., Johnson D. Greenbug resistance in commercial sorghum hybrids in the seedling stage // J. Econ. Entomol. 1980. — V.73. -N4. — P.510−514.
  127. Nass H.A., Pedersen W.L., MacKenzie D.R., Nelson R.R. The residual effects of some «defeated» powdery mildew resistance genes in isolines of winter wheat // Phytopath. 1981. — V. 71. — N 12. — P.1315−1318.
  128. Niemeyer H.F., Calcaterra N.B., Roveri O.A. Inhibition of energy metabolism by benzoxazolin-2-one // Сотр. Biochem. and Physiol. 1987. -V.87B. — N1. — P.35−39.
  129. Park S.-J., Huang Y., Ayobi P. Identification of expression profiles of sorghum genes in response to greenbug phloem-feeding using cDNA subtraction and microarray analysis // Planta. 2006. — V.223. — N5. — P.932−947.
  130. Patch E.M. Food plant catalogue of the aphids of the world including the Phylloxeridae // Maine Agr. Exp. Stn. 1938. — Bull. N293. — P.35−431.
  131. Peiretti R.A., Araj A., Weibel D.E., Starks K.J., McNew R.W. Relationship of «bloomless» (bm bm) sorghum to greenbug resistance // Crop Sci. 1980.- V.20. N2. — P.173−176.
  132. Peters D.C., Kerns D., Puterka G.J., McNew R. Feeding behavior, development, and damage by biotypes В, C, and E of Schizaphis graminum (Ho-moptera: Aphididae) on «Wintermalt» and «Post» barley // Environ. Ento-mol. 1988. — V.17. — N3. — P.503−507.
  133. Peterson G.C. Breeding sorghum for midge and greenbug resistance in the USA // Proc. Intern. Sorghum Entomol. Workshop. Patancheru. — 1985. -P.361−370.
  134. Peterson G.C., Suksayretrup K., Weibel D.E. Inheritance of some bloomless and sparse-bloom mutants in sorghum // Crop Sci. 1982. — V.22. — N1. -P.63−67.
  135. Porter K.B., Peterson G.L., Vise O. A new greenbug biotype // Crop Sci. -1982. V.22. — N4. — P.847−850.
  136. Powers Т.О., Jensen S.G., Kindler S.D., Stryker C.J., Sandall L.J. Mitochondrial DNA divergence among greenbug (Homoptera: Aphididae) biotypes // Ann. Entomol. Soc. Amer. 1989. — V.82. — N3. — P.298−302.
  137. Puterka G.J., Peters D.C. Inheritance of greenbug, Schizaphis graminum (Rondani), virulence to Gb2 and Gb3 resistance genes in wheat // Genome. -1989. V.32. — N1.- P.109−114.
  138. Puterka G.J., Peters D.C. Genetics of greenbug (Homoptera: Aphididae) virulence to resistance in sorghum // J. Econ. Entomol. 1995. — V.88. — N2.- P.421−429.
  139. Puterka G.J., Peters D.C., Kerns D.L., Slosser J.E., Bush L., Worrall D.W., McNew R.W. Designation of two new greenbug (Homoptera: Aphididae) biotypes G and H // J. Econ. Entomol. 1988. — V.81. — N6. — P.1754−1759.
  140. Puterka G.J., Slosser J.E. Inducing oviparae and males of biotype С green-bugs, Schizaphis graminum (Rond.) // Southwest. Entomol. 1983. — V.8. -N4. — P.268−272.
  141. Radchenko E.E., Lychagina N.S. Physiological and genetic variation in Schizaphis graminum (Sternorrhyncha: Aphididae) populations // Acta Soc. Zool. Bohem. 2003. — V.67. — № 3. — P.15−23.
  142. Reese J.C., Bramel-Cox P., Ma R., Dixon A.G.O., Mize T.W., Schmidt D J. Greenbug and other pest resistance in sorghum // 44th Annual Corn and Sorghum Research Conference. 1990. — 29p.
  143. Royer M.H., Nelson R.R. The influence of the interaction of host and pathogen genotypes on the residual expression of «defeated» major genes // Phy-topath. 1983. — V.73. — N 2. — P. 373−374.
  144. Royer M.H., Nelson R.R., MacKenzie D.R., Diehle D.A. Partial resistance of near-isogenic wheat lines compatible with Erysiphe graminis f. sp. tritici // Phytopath. 1984. — V.74. — N8. -P.1001−1006.
  145. Saxena R.C., Barrion A.A. Biotypes of the brown planthopper Nilaparvata lugens (Stal) and stratedies in deployment of host plant resistance // Insect Sci. and Appl. 1985. — V.6. — N3. — P.271−289.
  146. Schuster D.J., Starks K.J. Response of Lysiphlebus testaceipes in an olfactometer to a host and a non-host insect and to plants // Environ. Entomol. -1974. V.3. — N6. — P.1034−1035.
  147. Schuster D.J., Starks K.J. Preference of Lysiphlebus testaceipes for greenbug resistant and susceptible small grain species // Environ. Entomol. 1975. -V.4. — N6. — P.887−888.
  148. Schweissing F., Wilde G. Predisposition and nonpreference of greenbug for certain host cultivars // Environ. Entomol. 1979. — V.8. — N6. — P.1070−1072.
  149. Shufran K.A., Burd J.D., Anstead J.A., Lushai G. Mitochondrial DNA sequence divergence among greenbug (Homoptera: Aphididae) biotypes: evidence for host-adapted races // Insect Molec. Biol. 2000. — V.9. — N2. -P.179−184.
  150. Smith C.V., Boyko E.V. The molecular bases of plant resistance and defense responses to aphid feeding: current status // Ent. exp. et appl. 2007. -V.122. — N1. — P. l-16.
  151. Sneep J., Dieleman F.L. Breeding plant varieties resistant to pests // Bulletin OEPP. 1973. — V.3 — N3. — P.89−93.
  152. Starks K.J., Burton R.L. Greenbugs: determining biotypes, culturing, and screening for plant resistance with notes on rearing parasitoids // USDA. -1977. Techn.bull. N1556. — 12p.
  153. Starks K.J., Eberhart S.A., Casady A.J., Webster O.J. Developing greenbug resistant lines from the KP2BR sorghum breeding population // Crop Sci. -1976. V.16. — N3. — P.360−362.
  154. Starks K.J., Muniappan R., Eikenbary R.D. Interaction between plant resistance and parasitism against the greenbug on barley and sorghum // Ann. Entomol. Soc. Amer. 1972. — V.65. — N3. — P.650−655.
  155. Starks K.J., Weibel D.E. Resistance in bloomless and sparse-bloom sorghum to greenbugs // Environ. Entomol. 1981. — V.10. — N6. — P.963−965.
  156. Starks K.J., Wood E.A.Jr. Greenbugs: damage to growth stages of susceptible and resistant sorghum // J. Econ. Entomol. 1974. — V.67. — N3. -P.456−457.
  157. Teetes G.L., Johnson J.W. Assessment of damage by the greenbug in grain sorghum hybrids of different maturities // J. Econ. Entomol. 1974. — V.67. — N4. — P.514−516.
  158. Teetes G.L., Schaefer C.A., Gipson J.R., Mclntyre R.G., Iatham E.E. Greenbug resistance to organophosphorous insecticides on the Texas High Plains // J. Econ. Entomol. 1975. — V.68. — N2. — P.214−216.
  159. Todd G.W., Getahun A., Cress D.C. Resistance in barley to greenbug, Schizaphis graminum. 1. Toxicity of the phenolic and flavonoid compounds and related substances // Ann. Entomol. Soc. Amer. 1971. — V.64. — N3. -P.718−722.
  160. Tuinstra M.R., Wilde G.E., Kriegshauser T. Genetic analysis of biotype I greenbug resistance in sorghum // Euphytica. 2001. — V.121. — N1. — P.87−91.
  161. Van Marrewijk G.A.M., Dieleman F.L. Screening techniques for the determination of aphid resistance in barley // Bulletin SROP. 1977. — N3. -P.37−43.
  162. Walgenbach D.D., Elliott N.C., Kieckhefer R.W. Constant and fluctuating temperature effects on developmental rates and life table statistics of the greenbug (Homoptera: Aphididae) //J. Econ. Entomol. 1988. — V.81. — N2.- P.501−507.
  163. Webster J.A., Inayatullah C. Aphid biotypes in relation to plant resistance: a selected bibliography // Southwest. Entomol. 1985. — V.10. — N2. — P.116−125.
  164. Weibel D.E., Starks K.J. Greenbug nonpreference for bloomless sorghum // Crop Sci. 1986. — V.26. — N6. — P.1151−1153.
  165. Weibel D.E., Starks K.J., Wood E.A.Jr., Morrison R.D. Sorghum cultivars and progenies rated for resistance to greenbugs // Crop Sci. 1972. — V.12.- N3. P.334−336.
  166. Went D.F. Parthenogenetic strategies in insect reproduction // Adv. Invertebrate Reprod. 3. Amsterdam, e.a. — 1984. — P.303−315.
  167. Wiktelius S. Flight and settling behaviour of Rhopalosiphum padi (L.) (Homoptera: Aphididae) //Bull. Entomol. Res.- 1982 V.72. — N1. — P.157−163.
  168. Wilson R.L., Starks K.J. Effect of culture-host preconditioning on greenbug response to different plant species // Southwest. Entomol. 1981. — V.6. -N3. — P.229−232.
  169. Wood E.A.Jr. Biological studies of a new greenbug biotype // J. Econ. Entomol. 1961. — V.54. — N6. — P.1171−1173.119
  170. Wood E.A.Jr. Designation and reaction of three biotypes of the greenbug cultured on resistant and susceptible species of sorghum // J. Econ. Entomol.- 1971. V.64. — N1. — P.183−185.
  171. Wood E.A.Jr., Starks K.J. Incidence of paedogenesis in the greenbug // Environ. Entomol. 1975. — V.4. — N6. — P.1001−1002.
  172. Wu Y.Q., Huang Y., Tauer C.G., Porter D.R. Genetic diversity of sorghum accessions resistant to greenbugs as assessed with AFLP markers // Genome.- 2006. V.49. — N2. — P.143−149.
  173. Zhu-Salzman K., Salzman R.A., Ahn J.-E., Koiwa H. Transcriptional regulation of sorghum defense determinants against a phloem-feeding aphid // Plant Physiol. 2004. — V.134. — N1. — P.420−431.
  174. Zhu-Salzman K., Li H., Klein P.E., Gorena R.L., Salzman R.A. Using high-troughput amplified fragment length polymorphism to distinguish greenbug (Homoptera: Aphididae) biotypes // Agric. Forest Entomol. 2003. — V.5. -N.4. — P.311−315.
  175. Zuniga G.E., Argandona V.H., Niemeyer H.M., Corcuera L.J. Hydroxamic acid content in wild and cultivated Gramineae // Phytochemistry. 1983. -V.22. — N12. — P.2665−2668.
  176. Образцы веничного сорго, выделенные по устойчивости к обыкновенной злаковой тлепо каталогу ВИР Образец Происхождение Поврежденность, балл15/А Сорго вечнозелёное Украина 4, 8,1015/В Сорго вечнозелёное «» 8,10
  177. Сорго вечнозеленое кр.пл. «» 2,316 Сорго красное «» 4, 6,10
  178. Сорго метельчатое «» 7, 8, 9,1028/0 Sorghum метельчатое Дальний Восток 8,1028/А Sorghum метельчатое «» 2
  179. Sorghum Украина 4, 8, 9,10
  180. Чёрное обыкновенное Грузия 2, 3,10
  181. Развесистое коричневое Украина 8, 9,10
  182. Sorghum vulgare «Californien» golden Германия, Эрфурт 5, 7, 10 106 о Сорго Астрах. Обл. 4, 8, 10 107 Сорго «» 3,10 114 Сорго «» 2,3118 Сорго «» 1,2
  183. Карликовое веничное США 1,2160 Black Japanese «» 1,2173 Dwarf Broom Corn «» 3,4240 Broom Corn «» 1,2259/А Broom Corn «» 2,3259/В Broom Corn «» 1259 Broom Corn «» 1,2
  184. Black Japan Evergreen Broom304/А Corn «» 4,5,6
  185. Black Japan Evergreen Broom304 Corn (К 1,2
  186. Dwarf Evergreen Broom Corn «» 3,10
  187. Imprewed Tennessee «» 5,6
  188. Dwarf Okla Broom Corn «» 4,-5, Ю
  189. Sorgho a balais Франция 2,101. Палестина (исто- 6 7
  190. Сорго оранжевое рич.обл.) и, /
  191. Сорго метельчатое высоко- о о in389 стебельное Украина О, -LU
  192. Сорго метельчатое высоко- «» 2, 4, 6, 7, 8, 9, 10стебельное
  193. Сорго метельчатое низко- «» 6, 7, 8, 9, 10рослое
  194. Сорго чёрное Краснодарский край 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10
  195. Сорго красное Украина 3, 4, 5, 10
  196. Сорго коричневое «» 2, 3, 4, 5, 8, 10
  197. Сорго метельчатое «» 6, 7, 8, 9,10по каталогу ВИР Образец Происхождение Поврежденность, балл
  198. A. Sorghum Brot (Chaal- su-su) Манчжурия 6,10
  199. Сорго метельчатое низко- Украина 3, 4, 6, 8, 9,10рослое
  200. Сорго метельчатое высоко- «» 2, 5,10рослое
  201. Сорго метельчатое низко- «» 2, 3, 5, 6, 7, 8, 9,10рослое
  202. Сорго метельчатое высоко- «» 1, 2, 10рослое
  203. Сорго метельчатое «» 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9,10
  204. Сорго коричневое «» 2, 3, 7,8478 Сорго коричневое «» 1,2
  205. Сорго «червоне» «» 1, 2, 10
  206. Сорго красное «» 1, 4, 5, 7, 8,10
  207. Сорго метельчатое Воронеж. Обл. 3, 4, 5, 6, 10
  208. Сорго метельчатое Украина 4,5
  209. Сорго черное Ростовская обл. 3,4486 Сорго Саратов.обл. 4,5
  210. Сорго «» 3, 4, 5, 6, 7, 8,10 488 Сорго «» 2, 3, 8,10
  211. Сорго метельчатое низко- Туркмения 3, 10рослое
  212. Гаолян Приморск. край 2, 3, 8,10
  213. Гаолян метельчатый Китай 2, 3,10
  214. Сорго веничное Туркмения 6, 7, 9,10 571 Broom Corn США 2, 4,10
  215. Сорго местное Ростов.обл. 4, 6, 7, 8, 9,10
  216. Сорго веничное Армения 2,3
  217. Гаолян Манчжурия 2, 6, 8, 10 618 Гаолян «» 2, 3,4
  218. Джугара Буссепус Туркмения 1,2
  219. Джугара ранняя Узбекистан 2, 3, 4, 8, 10
  220. Сорго развесистое «супсе» Туркмения 8,10
  221. Сорго веничное Саратов, обл. 3,4,9
  222. Сорго веничное Узбекистан 7, 8, 10 751 Сорго Армения 8, 10
  223. Сорго веничное Узбекистан 1, 2, 8,10
  224. Сорго веничное Туркмения 7, 8, 9,10 983 Сорго «» 8, 9,10
  225. Сорго низкорослое Мекка- «» 8, 9,101. Дарры
  226. Сорго высокорослое Мекка- «» 8, 9,101. Дарры
  227. Сорго высокорослое «» 1, 2,10
  228. Сорго высокорослое «» 2, 10по каталогу ВИР Образец Происхождение Поврежденность, балл
  229. Веничное низкорослое «» 8, 9,10
Заполнить форму текущей работой