Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Молекулярно-генетический анализ тапеторетинальной абиотрофии в Республике Башкортостан

Диссертация: Молекулярно-генетический анализ тапеторетинальной абиотрофии в Республике Башкортостан
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

В настоящее время доказано, что разнообразие клинически выраженных" стертых н переходных форм ТРА обусловлено различными мутациями в генах" кодирующих белки каскада фототрансдукцин. интоскелета фоторецепторов н пигментного эпителия сетчатки. Наиболее частой причиной возникновения TP, А являются мутации в генах родопсина (RHQ)t переферина (RDS1' PR PHI) и транеретннальацетнлазы {RPE65). Однако… Читать ещё >

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
  • Д ЭПИДЕМИОЛОГИЯ ТАПЕТОРЕТИНАЛЬНОЙ АБИОТРОФИИ
    • 12. КЛАССИФИКАЦИЯ ТАПЕТОРЕТИНАЛЬНОЙ АБИОТРОФИП.] ]
      • 1. 3. КЛИНИЧЕСКАЯ КАРТИНА И ЛЕЧЕ11ИЕ ТАПЕТОРЕТИНАЛЬНОЙ
      • 1. 4. ПАТОГЕНЕЗ ТАПЕТОРЕТИНАЛЬНОЙ АБИОТРОФИИ. IS
    • 1. 4−1 Анатомия к нейрофизиология сетчатки. IS
      • 1. 4. 2. Молекулярные механизмы зрительной рецепнни
      • 1. 4. 3. Патогенетические механизмы таютрретн яальноН (Ли1>:-К1фна. j гены и их продукты, участвующие в патогенезе
  • ТАПЕТОРЕТИНАЛЬНОЙ АБИОТРОФИИ ."
    • 1. 5. 1. Ген родопсина RNO.,
      • 1. 5. 2. Строение н функции барка RHQ.""
      • 1. 5. 3. Мутации, а гене RHO.".,
      • 1. 5. 4. Ген периферия"RDS/PRFH
    • 1. 5−5 Строение н функции белка пернферкна RDS/PRPH
    • I. 5.6Мутяиш, а гене RDS/PRP/K
    • I. J.7 Ген трансретннальацргшЕазы RPE
      • 1. 5. 8. Строение и функции белка КРЕ65.&bdquo-&bdquo-,
      • 1. 5. 9. Мутаини в гене RPE
      • 1. 6. АМАВРОЭ ЛЕБЕРА

Молекулярно-генетический анализ тапеторетинальной абиотрофии в Республике Башкортостан (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Тапеторетииальную абнотрофию (ТРА) можно определить как наследственное заболевание с первичным диффузным поражением фоторецепторов н пигментного эпителия сетчатки, при котором отмечаются характерные функциональные изменения и типичная картина глазного дна с пигментными костными тельцами. ТРА — наиболее распространенное заболевание из всех дистрофий сетчатки, выявляемое е частотой 20−28 на 10s населенияВо всем мире насчитывается более 2 млн. больных тапеторетиналыюй абнотрофией [Hamel С. et aL, 2006),.

Типы наследования ТРА разнообразны и их частота существенно различается в разных популяциях: рецессивная форма, в среднем, встречается с частотой 20−35%, доминантная — с частотой 9−4.1% и сцепленная с полом — с частотой 8−45%. Высока частота спорадически.* форм ТРА — 23−48% [Rivofta С. el aL 2002],.

Основой заболевания является дегенеративный процесс в палочках и колбочках. приводящий к нарушению световой и контрастной чувствительности. Как показали многочисленные исследования зарубежных авторов, причиной дегенерации фоторецепторов при этом заболевании являются мутации в генах белков, обеспечивающих передачузрительного сигнала и принимающих участие в функционировании лнгмеитнога эпителия. При этом происходит разрушение наружных сегментов фоторецепторных клеток, окклюзия мелких сосудов сетчатки, гиперплазия пигментного эпителия и уменьшение числа фоторецепторных клеток вплоть до их полного исчезновения из-за активации процессов апоптоэа [Мао W. el aL 2002, Strauss О,. 2005: Fain G.L. ei aL 2006, Paskowite D M. et aL 2006J.

Многие формы наследственной патологии характеризуются специфическим фенотипом, поэтому клинический анализ с синдрома логическим подходом позволяет поставить точный диагноз, В то же 5 время, существует ряд заболеваний, клинический подход для диагностик" которых недостаточен. Различные типы пигментных дегенерацнй сетчатки относятся как раз к тем заболеваниям, & которых анамнсстмческис и клинические данные, к сожалению" недостаточны для постановки точного клинического диагноза и определения этиологии и патогенеза заболевания. Кроме того, диагностика пигментных дегенерацнй усложняется тем, что заболевание по своей природе генетически гетсрогенно [Phclan J, K. el al" 2000; Rivolta С. et al" 2002; Hamel С. et а! 2006], Следует отметить, что применение молекулярно-генетнчееких подходов к диагностике пигментных дегенерацнй сетчатки в клинической практике врача-офтальмолога необходимо для постановки правильного диагноза и выбора оптимального метода лечения пациента. Без преувеличения можно сказать, 'гго современная молекулярная генетика, обладая обширнейшим арсеналом методов аналнча генома человека, позволяет решать практически все вопросы, относящиеся к идентификации генов, ответственных за функционирование фоторецепторов н других клеток сетчатки у человека, мутации в которых являются причиной возникновения ряда наследственных пигментных дегенерацнй сетчатки.

В настоящее время доказано, что разнообразие клинически выраженных" стертых н переходных форм ТРА обусловлено различными мутациями в генах" кодирующих белки каскада фототрансдукцин. интоскелета фоторецепторов н пигментного эпителия сетчатки. Наиболее частой причиной возникновения TP, А являются мутации в генах родопсина (RHQ)t переферина (RDS1' PR PHI) и транеретннальацетнлазы {RPE65) [Phelan Ж. et aL. 2000; Maubarei et. ah, 2005]. Однако" несмотря на значительный прогресс, достигнутый в понимании молекулярно-генетнчееких основ TP А, остается еще открытым ряд ключевых вопросов, касающихся патогенеза этого заболеванияТаким образом, ннвалндизирующее течение, значительный генетический полиморфизм TP А. наличие различных клинических форм заболевания, возможный риск повторного заболевания, а семье и отсутствие терапевтических методов лечения делают наиболее актуальным проведение профилактических мероприятий. направленных 6 на предотвращение возникновения повторных случаев заболевания в отягощенных семьях Эффективное меднко-генегическос консультирование и значительной мере зависит от результатов молекулярн о-генетических исследований, направленных на выявление первичного генетического дефекта заболевания, что позволит, а будущем проводить дифференциальную, прссимптоматическую и пренатальную диагностику 'ГРА.

Цель к задачи исследования.

Цель и «адачн исследовании. Целью исследования является изучение распространенности тапсторстннальной абнотрофин и анализ генов родопсина (RHO), трансретннапьаистнлазы (RPE65) н пернфернна (RDS/PRPH2) у больных с тапеторетннальной абиотрофиеи и в контрольной группе из Республики Башкортостан.

В соответствии с целью исследования были поставлены следующие задачи;

1) оценить распространенность тапеторетннальной абнотрофин н Республике Башкортостан;

2) провести поиск мутаций и полиморфных вариантов гена родопсина (RHO) у больных с ТРА из Республики Башкортостан;

3) провести поиск мутаций и полиморфных вариантов гена трансретинальацетилаш (RPE6S) у больных с ТРА из Республики Башкортостан;

4) провести поиск мутаций и полиморфных вариантов гена пернфернна (RDS/PRPH2) у больных с ТРА из Республики Башкортостан;

5) создать национальный компьютерный регистр «Та пето ретин ал ьная абнотрофия» в Республике Башкортостан.

Научная новизна.

Впервые получены данные по распространенности ТРЛ в Республике Башкортостан: распространенность тапеторетинальной абиотрофии составила 21 на 30s населения, что сопоставимо с уровнем распространен поста н европейских популяциях.

Проведенный впервые анализ мутаций генов родопсина (RHO), транеретинальацетилазы (RPE6S) и пернфернна {RDS/PRPH2) у больных с ТРЛ и, а Республики Башкортостан позволил установить, что к диагностически значимым мутациям, приводяшнм к развитию этого заболевания у больных из Республики Башкортостан, откосятся P347L, R252P в гене родопсина {RHO) и R91W, 927dclC в гене трансрстннальацетнлазы (RPE65), Впервые обнаружены две новые мутации R252P в гене родопсина (RHQ) и 927deIC в гене транерегннадьацетнлазы (RPE65) у 3 членов одной семьи с ТРЛ.

Впервые у больных ТРЛ и в контрольной группе здоровых индивидов нз Башкортостана установлены различия в характере распределения частот генотипов по полиморфным локусаы 91QOG (Q3A (R3I0KK 1013A>G (D338G) н |054С>Тгена перифернна (RDS/PRPH2).

Hayчно-иряктичесш значнмоеi ь.

Полученные данные представляют интерес для понимания молекулярное генетических механизмом возникновения TP, А н позволяют предложить новые направления в разработке подходов для ДНК-диагиостики TP А.

Результаты исследования могут быть использованы при чтении спецкурсов в медицинских ВУЗах и на курсах повышения квалификации медицинских работников.

Национальный автоматизированный регистр «Тапеторетннальная абиотрофии» обеспечивает эпидемиологический мониторинг заболевания и оптимизацию лечебно-диагностической и диспансерной работы офтальмологов, 8.

Положении. выносимые на lamim Распространенность ТРА в Республике Башкортостан сопоставима с показателями распространенности ТРА в странах Европы.

2. В гене RHO идентифицировано две мутацииP347L, новая мутация R252P н два изменения нуклеотндкой последовательности у больных ТРА из Республики Башкортостан.

3. Существуют статистически значимые различия в характере распределения частот аллелей и генотипов IVS3+4c>t гена родопсина (RHO) у больных с ТРА и в контрольной группе здоровых индивидов нз Республики Башкортостан,.

4. В гене RPE65 идентифицировано две мутации: R91W, новая мутация 927dclC и один полиморфизм у больных ГРА из Республики Башкортостан,.

5. Существуют статистически значимые различия в характере распределения частот генотипов, но полиморфным локусам 910C>G (Q304H), 929G>A (R3I0K), I0I3A>GТ гена пернферина (ftDS. PR/iH2> у больных с ТРА и в контрольной группе здоровых индивидов из Республики Башкортостан.

Выводы.

I Распространённость ТРА в Республике Башкортостан составляет 21 на Ю5 населения, что сопоставимо с уровнем распространенности 'ГРА в странах Европы.

2. Скрининг 5 зкзонов гена родопсина (RHO) у больных с ТРА из Республики Башкортостан выявил 2 мутаиии: R252P и P347L в отдельных семьях. Мутация R252P описана впервые.

3. Выявлены статистически значимые различия в характере распределения частот аллелей н генотипов варианта IVS3+4c>l гена RHO у больных с ТРА и в контрольной группе здоровых индивидов из Республики Башкортостан.

4. Анализ 14 экэонов гена транеретииальацетнлазы (RPE65) у больных с ТРА из Республики Башкортостан выявил 2 мутации: R91W и 927delC в отдельных семьях. Мутация dcl927C описана впервые.

5. Установлены статистически значимые различия в характере распределения частот генотипов по полиморфным локусам 910C>G (Q304E), 929G>A (R310K), 1013A>G (D338G) и 1054С>Т гена RDS у больных ТРА и в контрольной группе здоровых индивидов из Республики Башкортостан. й. Разработан автоматизированный регистр «Тапеторетннальная абиотрофия» в Республике Башкортостан, который позволяет хранить и анализировать данные о больных ТРА и их семьях, проводить мониторинг заболевания, а республике.

Заключение

.

Высокий удельный юее тапеторетинадьной абиотрофин (ТРА) среди наследственных дегенераинй сетчатки, инвалнднзнрующее течение и отсутствие эффективных терапевтических методов ставит проблему изучения этого заболевания и проведения профилактических мероприятий, направленных на предотвращение возникновения повторных случаев заболевания в семьях, в число первостепенных и социально-значимых. Для проведения эффективной целенаправленной профилактики необходимо выяснение популяцнонно-географических закономерностей распространения заболевания. Поскольку каждый регион имеет свои географические, этнические и социальные особенности, которые влияют как на структуру генофонда населения, тик и на структуру и частоту наследственных заболеваний, то для правильной организации специализированной медицинской помощи, разработки программ профилактики и их лечения, осуществления медико-генетического конультнроваиия необходима информация о распространенности н особенностях проявления заболевания в каждом регионе [Гннтер F. K,. 2003]. Подобные исследования в Республике Башкортостан ранее не проводились. До конца 80-х гг. прошлого столетня диагностика наследственных болезней, и, в частности, ТРА опиралась, в основном, на клнннко-генеалогический метод анализа и результаты дополнительных инструментальных методов исследованияПолиморфизм клинических проявлений и генетическая гетерогенность ТРА затрудняют постановку диагноза, венязн. с чем большое значение приобретает молекулярно-гснетичсский метод исследования, как основной метод диагностики такого рода патологии. В последние годы идет интенсивное накопление знаний о дегенерациях сетчатки, расширяются возможности проведения дополнительных методов исследования, разрабатываются методы ДНК-днагностикн, поэтому в настоящее время особый интерес представляет изучение распространенности ТРА и ее отдельных генетических форм с одновременным проведением молекулярногенетического исследования с целью получения надежных данных о частоте встречаемости ТРА на территории РБ,.

Для оценки распространенности ТРА на территории РБ использована бэта данных по больным, состоящим на учете в ГУ Уфимском научно-исследовательском институте глазных болезней АНРБ с клиническим диагнозом гапсгорстинальная абиотрофия и материалы ежегодных отчетов офтальмологической службы РБ за 2001 — 2005 гг&bdquoпредоставляемых ЦРБ и Jit [У г. Уфы в распоряжение Мели ко-информационного аналитического центра МЗ РБ.

Распространенность ТРА в Республике Башкортостан составляет 21 на 10' населения, что сопоставимо с уровнем распространенности в странах Европы. Анализ данных свидетельствует о разбросе значения распространенности ТРА — от 0 до 30 на 10* населения. При статистическом анализе показателен распространенности тапеторетинальной абиотрофии, случаев накопления ТРА в отдельных районах Республики Башкортостан установлено не было. Выявлено 6 районов Республики Башкортостан, в которых вопреки ожидаемому уровню распространенности отсутствуют случаи ТРА.о может быть связано как с отсутствем больных с ТРА. так и с низким уровнем диагностики «IPА в зтих районах.

С целыо улучшения методов диагностики и профилактики ТРА в республике, нами был проведен скрининг генов RHO, RDS и RPE65 у 123 неродственных больных с ТРА. а также членов их семей (всего 180 человек) из Республики Башкортостан.

При исследовании генов RHO, RDS и RPE6S выявлено 4 мутации. Две мутанни P347L в гене RHO и R9IW в гене RPE6S встречаются у больных ТРА в различных популяциях мира, а две мутации: R252P в гене RHO и 927delC в гене RPE65 выявлены впервые у больных ТРА из Республики Башкортостан. P347L является наиболее частой мутацией гена RHO, обуславливающей развитие тяжелой формы ТРА с аутосомно-домннантным типом наследования. Она была обнаружена в гетерошготиом состоянии у одной больной русской 153 этнической принадлежности и ее материДругая мутация R9t W в гене RPE65, в гомозиготном состоянии вызывающая развитие амапроза Лебера, была обнаружена также в гомозиготном состоянии у пациентки с диагнозомамавроз ЛебераМутации R252P в гене RHQ н 927delT в гене RPE65 выявлены у трех членов одной семьи татарской этнической принадлежности с диагнозом ТРА, смешанная форма. Сделать какое-либо предположение о функциональной роли сочетания этих мутаций в двух разных генах пока достаточно трудно. Обе мутации выявлены, а гетерозиготном состоянии. Мутация 927dclC в гене RPE65 ведет к преждевременной термннаинн синтеза белка в результате образования стоп-кодона в 9 экзонс (всего N экзонов). Мутация R252P в гене RHO может также участвовать в патогенезе ТРА. так как кодон 252 входит в участок связывания G-белка — транедуцнна (кодоны 231−252). Следовательно, изменение аминокислотного состава белка в этом регионе может влиять на присоединение транедуцниа и дальнейшую активаиню ферментного каскада. Развитие ТРА у данных больных может быть результатом, как отдельного проявления одной из мутации, так и следствием их совместного влияния, 13 ли гературе уже описаны случаи лнгенного варианта ТРА [Loewen, С. J. R. et а!., 200 [], Необходимо изучение механизмов, с помощью которых мутации R252P в гене НПО и 927dclT в гене RPE65 могут приводить к развитию ТРА на животных моделях.

Кроме того, в гене RHO обнаружено два изменения нуклеотидной последовательности: JVSI+10g>a в 1 нитроне и IVS3+4e>t в 3 нитроне. Изменение IVSI+IOg>a выявлено в гетерозиготном состоянии у одной больной ТРА русской этнической принадлежности. В группе контроля данное изменение обнаружено не было. Частота другого изменения нуклеотидной последовательности IVS3+4c>t на хромосомах больных составляет 0,34±0,03, что достоверно выше, чем на хромосомах здоровых индивидов 0,0б±-0,01 (jf=63,4: р=0,0005) Частота этого изменения нуклеотидной последовательности в трех этнических группах РБ (русских" татар и башкир) соответствует значению, полученному при анализе частоты этого изменения у здоровых 154 индивидов цз контрольной группы, и составляет, в среднем, 0,06. Изменение нуклеотидной последовательности IVS3+4c>l гена RHO в гомозиготном состоянии ни в группе больных ТРА, ни, а группе контроля, выявлено не было. Было установлено, что шесть первых нуклеотнлов 3-го нитрона образуют один из сайтов сплайсинга гена RHO и любое изменение нуклеотидной последовательности в этом регионе может нарушать данный процесс. Обобщая вышеизложенное, изменение нуклеотидной последовательности IVS3+4c>t можно оценить как патогенетически значимое.

В гене RPE65 так же был обнаружен полиморфизм 1056G>A. который выявлялся с частотой 0.04±0,01 на хромосомах здоровых индивидов нз группы контроля и с частотой Q, 03±0,01 иа хромосомах больных ТРА, Практически одинаковая частота этого полиморфизма в группе контроля и в группе бальных, а так же отсутствие изменения аминокислотной последовательности говорит об отсутствии вовлеченности полиморфизма 1056G>A гена RPE65 в патогенез ТРА.

При исследовании гена перифернна выявлено 6 полиморфных вариантов, два нз которых: 318Т>С и 14 260>А З'-UTR не участвуют и патогенезе ТРА. Полиморфизм 31ST—G" не приводит к изменению аминокислотой последовательности белка, частота аллеля *С полиморфизма 318Т>С в группе больных ТРА и в группе контроля из РБ составила 0,2б±-0.028 и 0, 33±0,029, соответственно, полиморфизм I426G-A З'-UTR находится в некоднруюадей части 3 экзона гена RDS, его частота в группе больных ТРА • ОДЗ±-0,027. в группе контроля ¦ 0,27±0,027, Известно, что четыре полиморфных варианта в позициях 910. 929, 1013 и J 054 3-го эк-юна гена RDS могут образовывать 16 минщ аплотмноа, 4 иэ которых были найдены ранее [Tclmer С-А. et al" 2003]. Обследование больных ТРА и группы контроля из РБ кроме четырех известных, выявило 5-й мнннгаплотнп *c'" n*A91v*Ami*Ti05i (аллель V) в группе больных ТРА, Сочетания 5-ти минигаплотипов образуют 7 Bapnairroa генотипов в группе больных ТРА н в группе здоровых индивидов нз РБ. Три генотипа: *С/*С" ° *APAW *А/*Ат *С/*С, т (2 генотип), •0*<?п *А/*Ат 155.

A/*Ami *0*TMS4tt генотип) н *C/*(f" ' щАГАт *А/*С, Ш *а*Т" ^(7 генотип) предположительно содержат минигаплотнп ii —, c9w*i4m4″ «j, c№h, описанный Tclrrwr С. в 2003 году. Генотипы 2, б и 7 в группе контроля не встречаются. Есть данные о сцеплении мнннгаплотипа ii с мутацией сайта сплайсинга 2-го нитрона гена RDS IVS2+3a>t [Telmer С.А. et al, 2003}. При ссквскированни 2-го нитрона гена RDS у всех образцов ДНК больных, содержащих мн ни ran логин ii никаких изменений нуклеотндной последовательности, а этой области выяачено не было.

Таким образом, полученные данные представляют интерес для понимания молекулярно-гснетнчсскнх механизмов возникновения ГРА, а также позволяют предложить новые направления в разработке подходов для ДНК-диагност нкн ТРА.

Для систематизации и стандартизации полученной информации нами была составлена формализованная карта, послужившая основой для последующей разработки автоматизированной базы данныхавгомашзированный генетический регистр «Тапсторетннальная абнотрофня» в Республике Башкортостан, Регистр служит для хранения н быстрой обработки информации, позволяет повысить эффективность профилактики этой группы заболевании за счет своевременного выявления семей, члены которых нуждаются в консультации или дородовой диагностике, оптимизировать их диспансерное наблюдение, организовать мониторинг ТРА в РБ,.

Работа была выполнена в рамках научно-исследовательских проектов Института биохимии и генетики УНЦ РАН при поддержке грантов РФФИ (0404−8 134 офи-э «Разработка оптимальных для населения Волго-Уральского региона методов ДНК-лиагностнки и создание лабораторных тест-систем для выявления ряда наследственных н наследственно-обуслоаченных заболеваний" — Л? 05−04−97 909-рагндельа, «Молекулярно-гснстнчсскнй анализ наследственной патологии органов зрения и слуха у больных и в популяциях Башкортостана»).

Показать весь текст

Список литературы

  1. Л.Р. Наследственные нервно-мышечные заболевания в Республике Башкортостан: автореф. дне. д-ра мед. наук. Пермь. 2001. -39 с.
  2. Всероссийская перепись населения 2002 года. wvw. perepis2002-ru/i ndex. html
  3. Е. К. Хлебникова О. В. Хяатова А. В. Проспективное и ретроспективное медико-генетическое консультирование семей с эфгальмопатологией в популяциях с высокой частотой кровнородственных браков. М.: Мннздравмедпром РФ. 1995. 17с,
  4. Е.К. Медицинская генетика. М.: Медицина, 2003. 448с.
  5. Л.А., Ярцева Н. С. Анатомия органа зрения. М.: Наука, 2003. 150с.
  6. Демографические процессы в Республике Башкортостан: статистический сборник. Комитет государственной статистики Республики Башкортостан. Уфа. 2004. — 77 с,
  7. Л.А. Популяцнонная биометрия. М.: Наука. 1991. С. 128 130.
  8. Информационно-аналитическая и вычислительная система «Федеральный Генетический Регистр» / Б. А. Кобринекий. И. Б, Тестер. А. Е. Фельдман (и лр,. // Компьютерная хроника. 2000. -№ 1,-С. 77−96.
  9. Г. Р., Островский М. А. Молекулярные механизмы зрительной рецепции. М.: Наука. 2002. — 279с.
  10. Л.А. Классификация атеросклеротическнх и наследственных дистрофий хорнонлеи и сетчатки // Вести, офтальм. -1973. 6, С-14 -20,
  11. . Б.А. Компьютерная поддержка врачебных решений, а педиатрии: регистр и диагностическая система по наследственным болезням / Б, А, Кобринский Н Вестник Всесоюзного общества информационной и вычислительной техники.. 991. — № 1. — С. 20 — 25,
  12. З.Копаева В. Г. Глазные болезни. М.: Медицина, 2002. — 560с,
  13. , И.А. Анализ гена хореи Гентинпона у больных и в популяциях Вал го-уральского региона: дне. канд. мед. наук. Уфа, 2002, — 141 с.
  14. В.М. Зрисельная система. Механизмы передачи к усиления зрительнот сигнала в сетчатке глаза // СОЖ 2001. — № 9. — С. 2 — 8.
  15. М.Б., Зннченко Р. А. Хлебникова О.В. Распространенность н клинический полиморфизм наследственной офтальмопатологнн в четырех районах тверской области // Медицинская генетика 2006. — № 12.-С. 13−18.
  16. Ю.А., Абдуллаев Н. Г., Фейгнна М. Ю. Полная аминокислотная последовательность родопсина И Биооргаи. Химия. -.*>S2. -Л? 8,-С. 1011 1014.
  17. О.А. Клннико-генетнческие исследования тапеторетинальных дегенераций. Автореф. Дне.канд. мед. наук.М. 1970.- 250 с,
  18. Е.Е. Клиническая офтальмология, М. Медицина 2005, 392с.
  19. Структура генетического регистра врожденных пороков развития и наследственных болезней в Литве / В. К. Кучннскас. П. И. Мощннскас, Л. А. Цимбал нетене |н др.) //Тезисы докладов 2-го Всесоюз. съезда мед. генетиков. М., 1990. — С. 535−536.
  20. П.П., Аршавский 8.Ю., Днжур А. М, Биохимия зрительной рецепции. М.: ВИНИТИ, 1997, 117с.
  21. A.M. (Наследственные и врожденные заболевания сетчатки и зрительного нерва. М: Медицина. 2001. — 528 с, t5923.11амшннова A.M. Волков В. В. Функциональные исследования в офтальмологии, М: Медицина, 2005, — 416с.
  22. Acuso C-. Garcia Sandoval В., Najcra С et al. Retinitis pigmentosa in Spain. Spanish Multicentric and Multidiscipllmuy Group for Research // Clin. Genet. 1995 — Vol, 48., Jfc 3. — P 120−122.
  23. Alloway P.G., Howard L. Dolph P.J. The formation of stable rhodopsin-arrest in complexes induces apoptosis and photoreceptor cell degeneration U Neuron 2000. — Vol. 28. — P. 129−138.
  24. Andres A. Garriga P., Manyosa J. Altered functionality in rhodopsin point mutants associated with retinitis pigmentosa It Biochem. Bjophys. Res. Commun. 2003- - Vol. 28. — P. 294−301.
  25. Aimaca L.S., Sagli B.S., Akarsu N. Genclik features оГretinitis pigmemtoso in Turkey ft Doc. Ophthalmol. 1995. — Vol. 89, № 4. — P. 337−392.
  26. BareiI C-. Dclague V., Arnaud В., Demaille J., Наше! С., Claustres M. W179R: A novel missense mutation in the peripherin/RDS gene in a family with autosomal domrnani retinitis pigmentosa // Hum. Mutat. 2000. — Vol. II.-P. 137−142.
  27. Bavik C.O., Busch C., Eriksson U. Characterization of a plasma retinol-binding protein membrane receptor expressed in the retinal pigment epithelium //J. Biol. Chem. 1992. — Vol. 267. — P. 23 035−23 042.
  28. Bennett J. Tanabe Т., Sun D" Zeng Y, Kjcldbvc H-, Gouras P. Maguire A. M, Photoreceptor cell rescue in retinal degeneration (rd) mice by in vivo gene therapy П Nature Med, 1996, — Vol. 2. — P. 649−654.
  29. Berson H.L., Rosner В. We igcl-Di Franco С., Dryja T.P., Sand berg M.A. Disease progression in patients with dominant retinitis pigmentosa and rhodopsin mutations // Invest, Ophthalmol. Vis. Sci. 2002, — Vol, 43, № 9. -P. 3027−3036.
  30. Bcssanl DA, Kaushal S., Bhattacharya S.S. Genetics and biology of the inherited retinal dystrophies. In: Kaufman P.L., Aim A., eds. Adler’s Physiology of the Eye, 10th ed, St Louis- Mosby. 2003. ~ P. 358−381.
  31. Bessant DA, Payne A.M., Mitton K.P., Wang Q.L., Swain P.K., Plant C., Bird A.C. Zack D. J" Swaroop A" Bhattacharya S.S. A mutation in NRL is associated with autosomal dominant retinitis pigmenios // Nat. Genet. 1999, — Vol, 21 -P, 355−356
  32. Birch D.G., Fish G.E. Rod ERGs in retinitis pigmentosa and con-rod degeneration К Invest, Ophthalmol, Vis. Sci. 1987 — Vol. 28. — P 140−150.
  33. Bok D, Photoreceptor «retinoid pumps» in health and disease // Neuron 1999. -Vol. 23-P. 412*414.
  34. Boughman J.A., Conneally P.M., Nance W E. Population genetic studies of retinitis pigmentosa it Am. J. Hum. Genet. 1980. — Vol. 32, — P. 223−235.
  35. Bourne H.R., Meng H. C Rhodopsin sees the light // Science 2000. — Vol, 289. — P. 733−734.
  36. Rundey S., Crews S.J., A study of retinitis pigmentosa in the City of Birmingham // J. Med. Genet. 1984. — Vol, 21. — P. 417−420.
  37. Caiison A. Role of cellular teiinaldehyde-binding protein and interphotonccepior retinoid-binding protein in retinoid transport and metabolism in the mammalian retina dissertation., Los Angeles- Univ. of California- 1994. -667p,
  38. Chuang 1.2., Vega C, Jun W., Sung C.H. Structural and functional impairment of cndocyiic pathways by retinitis pigmentosa mutant rhodopsin-arrestin complexes H J. Clin. Invest. 2004. — Vol, 114. — P. 131−140.
  39. Stargardt’s disease gene ABCR ti Hum. МЫ- Genet. 1998. — Vol. 7 — P. 355 362.
  40. Cremers F.P. van den Murk J.A., den Hollander AX Molecular genetics of Leber congenital amaurosis // Hum. Molec, Genet. 2002, — Vol, II. — P. 1169−1176.
  41. Damek-Poprawa M., Krouse J. Gretzula C" Boesxe-attaglia K. A Novel Tetraspanin Fusion Protein, Peripherin-2. Requires a Region Upstream of the Fusion Domain for Activity U J. Biol. Chem. 2005, — Vol. 280, № 10. — P. 9217−9224.
  42. Danciger M., Qlaney J-, Gao Y.Q., Zhao D.Y., Hecken lively J R., Jacobson S. G" Fartwr D.B. Mutations in the PDE6B gene in autosomal recessive retinitis pigmentosa If Genomics- 1995, Vol. 30. — P. 1 -7,
  43. Dharmaraj S, Li Y., Robitaille J. M., Silva E.+ Zhu D., Mitchell T. N" Maltby L P. BafFoc-Bonnie A.B. Maumenee LH. A novel locus for Leber congenital amaurosis maps to chromosome 6q // Am. J. Hum. Genet. 2000. — Vol. 66. -P. 319−326.
  44. Drkshii M-. Agarwal R. Mutation analysis ofcodons 345 and 347 of rhodopsin gene in Indian retinitis pigmentosa patients // J, Genet. 2001 — Vol. 80. — P. П1-П6.
  45. Donis-Keller H. Green P. Helms C, Cartinhour S" Weiffcnbach В., Stephens К, Keith Т Р., Bowden D.W., Smith D.R., Lander E.S., Botstcin D., Akots G. et al, A genetic linkage map of the human genome И Cell 1987. — Vol. 51.-P. 319−337.
  46. Dryja T.P., Berson E. L, Rao V.R., Oprian D. D, Heterozygous missense mutation in the rhodopsin gene as a cause of congenital stationary night blindness it Nat. Genet 1993 — Vol. 4. — P. 280−283.
  47. Dryja Г. P., Hahn L.B., Reboul Т., Amaud B, Missense mutation in the gene encoding the alpha subunit of rod transducin in the Nougaret form of congenital stationary night blindness // Nat.Genct. 19%, — Vol. 13. — P. 358 360.
  48. Dryja T.P., l-i T. Molecular genetics of retinitis pigmentosa ti Hum. Mol. Genet. -1995 Vol. 4, — P, 1739−1743 b.
  49. Duke-Elder S-. Dobrcc J.H. System of ophthalmology. Vol. X. Diseases of the retina, London: Henry Kimpton. 1967. — 878 p,
  50. Ehinger B, Transplantation of photoreceptors and of full thickness retina //Abstracts of 10th World Conference of IRPA (International Retinitis Pigmentosa Association). Lugano, 1998, — P. 16,
  51. Ehrlich D. A comparative study in the use of closed-circuit television reading mashincs and optical aids by patients with retinitis pigmentosa and maculopathy // Ophthalmic. Physiol. Opt. 1987. — Vol. 7, — P. 293−302.
  52. E!ias R.V. Sezatc S.S., Cao W., McGinms J.F. Temporal kinetics of the light/dark translocation and compartmentation of arrestin ami alphatransducin in mouse photoreceptor cells // Mol. Vis, 2004. — Vol. 10. — P. 672−681.
  53. Elliott R.W. Sparkes R.S., Mohandas T" Gram S.G., McGinnis J.F. Localization of the rhodopsin gene to die distal half of mouse chromosome 6 U Genomics- 1990. Vol. 6. — P. 635−644.
  54. Farrar G.J., Kenna P., Jordan S, A. el al. A three base-pair deletion in the pcriphcrin-RDS gene in one form of retinitis pigmentosa И Nature 1991. -Vol.354,-P, 478−480 b.
  55. Faurobert E, I lurley J.B. The cone domain of a new retina specific RGS protein stimulates the GTPase activity of uansducin in vitro U Proc, Natl, Acad. Sci. USA. 1997. — Vol. 94. = P. 2945 — 2950.
  56. Fein A. Szuts E.2. Photoreceptors: Their role in vision: Cambridge, 1982. -132 p.
  57. Felius J., Thompson DA. Khan N. W" Bingham E. L-, Jamison J-A,. Kemp J A, Sieving P.A. Clinical course and visual function in a family with mutations in ihc RPE65 gene tt Arch. Ophthal. 2002. — Vol. 120. — P. 55 — 6t.
  58. Fishman GA, Stone E.M., Gilbert L.D., Sheffield V.C. Ocular findings associated with a rhodopsin gene codon 106 mutation: glycine-to-arginine change in autosomal dominant retinitis pigmentosa U Arch, Ophthal. 1992. -Vol. 110.-P. 646 — 653.
  59. Fouadis D., Liang Y. Filipek S. Saperstein D. A., IHngel A. Palczewski K. Rhodopsin dimers in native disc membranes: neat rows of paired photon receptors are caught on camera in their natural stale U Nature 2003. — Vol. 42).-P. 127 * 128.
  60. SO.Franeeschetti A., Dieterle P. L’i importance diagnostique de I’eleetronjtirvogramme dans les degenerescences lapeto-retineitnes avec retrecissement du champ visuel et hemeraJopie И Conf, Neurol, 1954. — Vol 14. -P. 184- 186.
  61. Freund C.L., Wang Q. L" Chen S" Muskat B.L., Wiles C.D. Sheffield V.C., jacobson S. G-, Mclnnes R.R., Zack D.J., Stone E.M. De novo mutations in the CRX homcobox gene associated with Leber congenital amaurosis // Nat. Genet. 1998.-Vol. 18. — P. 311−312.
  62. Fumkawa Т. Morrow E.M., Li T" Davis F.C. Ccpko CL. Retinopathy and attenuated circadian cntrainmcnt in Crx-deficient mice // Nat Genet. 1999. -2 3. — P. 466−470,
  63. Gal Л. Artlich A. Ludwig M. Niemeyer G" OJek K" Sehwinger E" Schinzel A. Pro347-to-arg mutation of the rhodopsin gene in autosomal dominant retinitis pigmentosa // Genomics 1991 — Vol II. — P 468 — 470.
  64. Gal A., Orth U" Baehr W., Schwinger E., Rosenberg T. Heterozygous missense mutation in the rod cGMP phosphodiesterase bcta-subunit gene in autosomal dominant stationary night blindness // Nat. Genet. 1994. — Vol. 7.- P. 64−68.
  65. GollapaUi D R., Maiti P., Rando R.R. RPE65 operates in the vertebrate visual cycle by stereospecificalJy binding all-trans-retiny. esters // Biochemistry -2003. Vol 42- - P. 11 824 — 1830.
  66. Green E.$" Men/ M.D., LaVail M-M.r Flannery J. G, Characterization ofrhodopsin mis-sorting and constitutive activation in a transgenic rat model of retinitis pigmentosa П Invest. OphthaJmol. Vis. Sci. 2000. — Vol. 41. — P. 1546- 1553.
  67. Gregory-Evan5 K-, Bhattaeharya S.S. Genetic blindness: current concepts in the pathogenesis of human outer retinal dystrophies U Trends Genet. 1998. -Vol. 14.- P. 103−108.
  68. GrondaM J Estimation of prognosis and prevalence of retinitis pigmentosa and Usher syndrome in Norway // Clin. Genei. 1987. — Vol. 31. — P. 255 -264.
  69. Gal A. Mutations in RPE65 cause autosomal recessive childhood-onset severe retinal dystrophy // Nat. Genet. 1997. — Vol. 17 — P. 194−197.
  70. Haim M. Epidemiology of retinitis pigmentosa in Denmark H Acta ophtalmol Scand. Suppl. 2002. — Vol, SO. — P. I — 34.
  71. Mantel CP. Retinitis pigmentosa. Review.// Orphanet Journal of Rare Diseases. 2006. — Vol, 13. — P. t — 40.
  72. Hamel C, P. Jenkins N.A., Gilbert D.J. Copeland N. G,. Redmond T.M. The gene for the retinal pigment epithelium-specific protein RPE65 is localized to human 1рЗ I and mouse 3 fi Genomics 1994. — Vol. 20. — P. 509−512,
  73. Hao W. Wenzcl A, Obin M.S., Chen C.K., Brill E. Evidence for two apoptotic pathways in light-induced retinal degeneration // Nature Genetics -2002. Vol. 32. — P. 254 — 260.
  74. Margrave P.A. Rhodopsin structure, function, and topography the Friedenwald lecture H Invest, Ophtalmol. Visual ScL 2001. — Vol. 42. — P, 3 -9.
  75. Heckenlively J The frequency of posterior subcapsular cataract in the hereditary retinal degenerations // Am. J. Ophthalmol. 1982. • Vol. 93, № 4. — P, 733 — 738,
  76. Heckenlively J. R" Nowakowski R,. Fishman G., Gouras P. Nathans J. Rhodopsin mutations in autosomal dominant retinitis pigmentosa // Proc- Nat Acad. Sci. 1991. — Vol. 88. — P, 6481 — 6485,
  77. Hcmlcr M.T. Specific tetraspanin ftinctions H «Hie Journal of Cell Biology. 200!, — Vol. 155, № 7. — P. 1103 — 1107.
  78. Hims MM. Digger S.P., Inglchearn C. F, Retinitis pigmentosa: genes, proteins and prospects // Dev. Ophthalmol 2003. — Vol, 37, — P. 109 — 125.
  79. Hsu Y. Th Motday R, S, Modulation of the cGMP-gaten channel of rod photoreceptor cells by calmodulin U Nature. 1993. — Vol.361. — P 76 — 79.
  80. Huang S.H. Pittler S.J., Huang X., Oliveira L., Berson E.L.t Dryja T P. Autosomal recessive retinitis pigmentosa caused by mutations in the alpha subunit of rod cGMP phosphodiesterase // Nat, Genet, 1995. — Vol, II. — P. 468−471.
  81. Huber A. Genetic disca. scs of vision // Curr. Ophih. Neurol. 1994, -Vol 7,№ l.-P 65 -68.
  82. Humphries P., Ferrer G.I., Kenna P, et al, Retinitis pigmentosa: genetic mapping in X-linked and autosomal forms of the disease // СI in, Genet, 1990, -Vol. 38, № 1,-P. ЫЗ.
  83. Jordan S. A, Fairer GJ» Kumar-Singhe R, Et al, Autosomal dominant retinitis pigmentosa (adRP- RP6): Cosegregation of RP6 and peripherin-RDS locus in late-onset fsmily of Irish origin /I Amcr. J. Hum. Genet, 1992. -Vol. 50.-P. 634−639,
  84. Kajhwara K" Berson E. L, Drvja T. P, Digenic retinitis pigmentosa due to mutations at the unlinked periphcrin/RDS and ROMI loci // Science, 1994. -V 264, — P. 1604- 1608.
  85. Kajiwara К., Hahn L.B., Mukal S., Travis G.H. Berson EX., Dryja T.P. Mutations in the human retina) degeneration slow gene in autosomal dominant retinitis pigmentosa// Nature, 199L — V. 354. — P. 480 — 483.
  86. Kalloniatis M. and Fletcher E. L, Retinitis pigmentosa: understanding the clinical presentation, mechanisms and treatment options // Clin, Exp. Optom, -2004 Vol. 87, № 2. — P 65−80.
  87. Kaupp U.B., Seifert R. Cyclic nucleotide-gated ion channels // Physiol. Rcv, 2002. — Vol. 82. — P 769 — 824.
  88. Keen T.J. Inglehearn C. F, Lester D.H. Bashir R., Jay M. Bird AC., Jay B, Bhattacharya S, S, Autosomal dominant retinitis pigmentosa: tour new mutations in rhodopsin, one of them in the retinal attachment site // Genomics 1991 — Vol. EL-P. 199 — 205.
  89. Khorana H.G. Rhodopsin, photoreceptor of the rod cell- an emerging pattern for structure and function // J. Biol. Chem. 1992, — Vol. 267. — P. 1−4.
  90. Kiselev A. et at. A molecular pathway tor light-dependent photoreceptor apoptosis in Drosophila И Neuron. 2000, — Vol, 28. — P. 139−152.
  91. Kissclcv O.G., Meyer C, K" Heck M. et al. Signal transfer from rhodopsin to the G-prolcin: evidence for a two-site sequential fit mechanism I/ Proc. NaL Acad. Sci. Usa. 1999. — Vol. 96. — P, 4898−4903.
  92. Kloer DP., Ruch S., Al-Babili S" Beyer P., Schulz G.E. The structure of a retinal-forming carotenoid oxygenase // Science 2005. — Vol. 308. — P. 267 -269,
  93. Lambert S.R., Sherman S., Taylor D., Kriss A., Coffey R., Pembrey M. Concordance and recessive inheritance of Leber congenital amaurosis // Am. J. Med Genet. 1993. — Vol. 46. — P. 275 — 277.
  94. Leber T. Ueber anomale Formen der Retinitis pigmentosa H Albrecht von Graefes Arch. Ophthal. 1871. — Vol. 17. — P. 314 — 340.
  95. Li И. Volpp K, Applcbury M.L. Bovine cone photoreceptor cGMP phosphodiesterase structure deduced from a cDNA clone // Proc, Natl. Acad. Sci. USA. 1990. — Vol. 87. — P. 293 — 297.
  96. Li J. Edwards P.C. Burghammer M. Villa C" Schcnler G.F. Structure of bovine rhodopsin in a trigonal crystal form It J. Mol. Biol. 2004. — Vol. 343.- P. 1409- 1438.
  97. Lin S.W., Han M" Sakmar T, P, Analysis of functional microdomains of rhodopsin // Meth, Enzymol 2000. — Vol. 315. -P. 116 — 130.
  98. Loewen C.J.t Moritz O.L., Molday R.S. Molecular characterization of peripherin-2 and rom-1 mutants responsible for digenic retinitis pigmentosa H J Biol. Chem. 2001. — Vol. 276. — P. 22 388 — 22 396.
  99. R.D., К wan A.S., Keegan D.J., Sauve Y., Coffey PJ-t Lawrence J.M. Cell transplantation as a treatment for retinal disease It Prog. Retin. Eye Res. 200L- Vol. 203. — P 415- 449,
  100. Marlhens FM GrifToin J.M., Barcil C. Arnaud В., Clauslres M, Hamel
  101. C.P, Autosomal recessive retinal dystrophy associated with two novel mutations in die RPE65 gene И Eur J Hum GeneL. 1998. — Vol. 6. — P. 527 -531.
  102. Martine/.-Mir A., Paloma E., Allikmets R. Ayuso C. del Rio Т. Dean M., Vilageliu L. Gonzale/.-Duarte R. Balcells S. Retinitis pigmentosa caused by a homozygous mutation in the Stargardt disease gene ABCR // Nat. GeneL 1998.-Vol, 18- P, 11−12.
  103. Massof R.W., Dagnefie G-, BerazschaweJ Т. Palmer R.W., Finkcbtein
  104. D. First order dynamics of visual field loss in retinitis pigmentosa И Clin. Vis. Set. 1990. — Vol. 5. — P. 1 — 26.
  105. Mata N.L., Moghrabi W. N" Lee J.S., Bui T.V. Radu R.A. Horwitz J, Travis G.H. Rpe65 is a retinyl ester binding protein that presents insoluble substrate to the isomerase in retinal pigment epithelial cells H J, Biol. Chem. -2004. Vol, 279,-P. 635−643.
  106. Mathew C. C, The isolation of high molecular weight cucaryotic DNA, Methods in Molecular Biology Humana Press. 1984. 2,31 '34.
  107. Maubaret C., Hamel C. Genetics of retinitis pigmentosa: metabolic classification and phenotype/genotype correlations it J. Fr. Ophtalmol. 2005.1. Vol. 28. № 2,-P. 71 -92.
  108. McBee J. K" Palczewski K. Baehr W, Pepperberg D. R, Confronting complexity: the interlink of phototransduction and retinoid metabolism in the vertebrate retina U Prog. Retin. Eye Res. 2001. — Vol 20, — P. 469 — 529.
  109. McGee Sanftner L.H., Abel H" Hauswirth WW,. Flannery J.G. Glial cell line derived neurotrophic factor delays photoreceptor degeneration in atransgenic rat model of retinitis pigmentosa U Mol. Ther, 2001, — Vol. 4. — P. 622 — 629.
  110. McLaughlin M. E, Sandberg M.A., Berson EX., Dryja T.P. Recessive mutations in the gene encoding die beta-subunit of rod phosphodiesterase in patients with retinitis pigmentosa // Nat. Genet 1993. — Vol. 4. — P. 130−134.
  111. Merin S. I nherited eye diseases. Векет. 1993 .-370p.
  112. Moisevev G" Chen Y" Takahashi Y., Wu B.X., Ma J. RPE65 is the isomerohydrolase in the retinoid visual cycle H Proc, Nat, Acad, Sci, 2005. -Vol. 102,-P. 12 413- 12 418.
  113. Morimura H., Fishman G. A,. Grover SA" Fulton A, B. t Berson E.L., Dryja T.P. Mutations in the RPE65 gene in patients with autosomal recessiveretinitis pigmentosa or Leber congenital amaurosis // Proc. Nat. Acad. Sci, -1998. Vol. 95. — P- 3088 — 3093,
  114. Municr A., Gunning Т., Kenny D" OKeefe M. Causes of blindness in die adult population of die Republic of Ireland U Br. J, Ophthalmol. 1998. -Vol, 82,-P. 630−633.
  115. Nakamuehi V., Nakamura M-, Fujii S, Yamamoto M., Okubo K, Oguchi disease with sectoral retinitis pigmentosa harboring adenine deletion at position 1147 in the arrestin gene И Am. J. Ophthalmol, 1998. — Vol. 125. -P.249−251.
  116. Nakayawa M., Wad a Y., Tamai M. Arrestin gene mutations in autosomal recessive retinitis pigmentosa // Arch. Ophthalmol. 1998. — Vol. 116. — P. 498−501,
  117. Nathans J. Hogness D S, Isolation and nucleotide sequence of the gene encoding human rhodopsin, U Proc, Nat. Acad, Sci 1984. — Vol, 81. — P. 4851−4855.
  118. Orita M., Iwahana H., Kanazawa H., Sekya T, Detection of polymorphism of human DNA by gel electrophoresis as single cell conformation polymorphism U Proc. Natl. Acad. Sci, USA. 1989. — Vol. 86. -P. 2766−2770.
  119. Palczewski K-, Buczylko J, Kaplan M. W. et al, Mechanism of rhodopsin kinase activation //J, Biol. Chem, 1991. — Vol. 226. — P. 12 949 — 12 955,
  120. Palczewski K., Kumasaka Т., Hon Т. Bchnke C, A, t Motoshima H" Fox B.A. Le Trong L. Teller D. C" Okada Т. Stenkamp R.E. Yamamoto M, Miyano M. Crystal structure of rhodopsin: a G protein-coupled receptor it Science 2000, — Vol. 289, — P. 739 — 745.
  121. Palczewski К, McDowell J.H., Hargrave PA- Purification and characterization of rhodopsin kinase H J, Biol. Chcm, 1988. — Vol. 263. — P. 14 067 -14 073,
  122. Paskowitz D.M., LaVail M. M,. Duncan IX. Light and inherited retinal degeneration H Br, J. Ophthalmol. 2006. — Vol. 90, № 8. — P. 1060 — 1066.
  123. Perrault L, Hanein S., Gerber S. Barbct F" Ducnxj D, Dollfus H., Hamel C" Dufier J.L., Munnich A^ Kaplan J., Rom J. M, Retinal dehydrogenase 12 (RDH12) mutations in Leber congenital amaurosis // Am. J. Hum. Genet, 2004, — Vol, 75. — P, 639 — 646,
  124. Perrault I., Rozct J.M., Gerber S., Kelsell R.E., Souicd E, Cabot A" Hunt D.M., Munnich A., Kaplan J, A retGC-l mutation in autosomal dominant cone-rod dystrophy // Am J, Hum. Genet, 1998. — Vol. 63. — P. 651 -654,
  125. Phelan J.K., Bok D A brief review of retinitis pigmentosa and the identified retinitis pigmentosa genes // Mol. Vis. 2000. — Vol. 6. — P. 116 -124.
  126. Portera-Cailliau C., Sung C.H., Nathans J., Alder R. Apoptotic photoreceptor cell death in mouse models of retinitis pigmentosa it Proc, Natl Acad. Sci, USA- 1994. Vol. 91. — P. 974 -978.
  127. Pugh E.N., Duda Т., Sitaramyya A., Shamia R.K. Photoreceptor guanylaie cyclases: A review. И Biosci. Rep, Reports 1997. — Vol. 17. -P 429 — 473.
  128. Pugh E, N. Lamb T. D, Phototransduction in Vertebrate rods and Cones: molecular mechanisms оГ Amplification, Recovery and Light Adaptation U Handbook of Biological Physics. Elsevier Science. 2000. 255p,
  129. R, A. Pagon, S. P. ftaigcr Retinitis Pigmentosa // Proc, Natl Acad. Sci. USA 2005. — Vol, 9.-P N4−128.
  130. Rajan R.S. and Kopito R.R. Suppression of Wild-type Rhodopsin Maturation by Mutants Linked to Autosomal Dominant Retinitis Pigmentosa // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci 2005. — Vol. 28- P 1284 — 1291
  131. Redmond T M" Poliakov E., Yu S. Tsai J.Y., Lu Z. Gentleman S. Mutation of key residues of RPE65 abolishes its enzymatic role as isomerohydrolasc in the visual cycle // Proc, Natl, Acad. Sci, USA- 2005. -Vol. 102. № 38. P 13 658 — 13 663.
  132. Redmond T, M., Yu S. Lee E. Bok D. Hamasaki D., Chen N., Goletz P., Ma J.X., Crouch R.K., Pfeifcr K. Rpc65 is necessary for production of 11-cis-vitamin A in the retinal visual cycle П Nature Genet. 1998, — Vol, 20. — P, 344−351.
  133. Remc C.E. Grimm С., Ha fez i F., Marti A., Wenzel A. Apoptotic cell death in retinal degenerations // Proc. Natl. Acad, Sci, USA 2000. — Vol, 97. -P. 7154−7159,
  134. Richard S. Saliba R.S., Munro P. M, Luthert P.J., Cheetham M.E. The cellular fate of mutant rhodopsin: quality control, degradation and aggresome formation И Journal of Cell Science- 2002, Vol, 115. — P. 2907 — 2918.
  135. S3, Rivolla С., Sharon D., DeAngetis M.M., Dryja TJJ. Retinitis pigmentosa and allied diseases- numerous diseases, genes, and inheritance patterns // Hum, Mot. GeneL -2002. Vol. 11.-P. 1219- 1227,
  136. Rohier В., Goletz P., Znoiko S-, Ablonczy Z., Ma J., Redmond Т. M" Crouch R. K. Correlation of regenerable opsin widi rod ERG signal in Rpe65 -/- mice during development and aging ft Invest, Ophthal- Vis, Sci, 2003. -Vol. 44.-P. 310−619 315.
  137. Sachs K" Maretzki D" Meyer C, K" Hofmann K.P. Diffusible Ligand AlL/ram-retinal Activates Opsin via a Palmitoylation-dcpcndcnt Mechanism ft Proc. Nat. Acad. Sci. Usa. 2000. — Vol. 275. № 9. — P. 6189 — 6194,
  138. Samuel G., jacobson K., Roderick R., Mclnnes C. Blinded by the tight It Nat. Genet, 2002, — Vol 32, № 2. — P. 254 — 260,
  139. Sandberg M.A., Weigcl-DiFranco C. Rosner В., Berson E.L. The relationship between visual field size and electroretinogram amplitude in retinitis pigmentosa // Inves. t Ophthalmol. VLs Sci. 1996. — Vol. 37, — P. 1693−1698.
  140. Seuchter. S.A. HGDBMS: A human genetic database management system / SA. Seuehter. M i l. Skolnick //CompuL Biomed. Res. 1988. — Vol. 21, ЛЬ 5.-P. 478−487.
  141. Shichida Y., Itai H, Visual pigment: G-protcin-couplcd receptor for light signals U Cell, and Mol. Life Sci. 1998. — Vol. 54, — P. 1299 — 1315.
  142. Simovich MJ., Miller В., Ezzeldin H., Kirkland B.T., McLeod G" Fulmer C. Nathans J" Jacobson S.G., Pittler SJ. Four novel mutations in the RPE65 gene in patients with Leber congenital amaurosis H Hum, Mutat. -2001, -Vol. 18. № 2.-P 164- 172.
  143. Strauss O, The Retinal Pigment Epithelium in Visual Function // Physiol. Rev. -2005. № 85. — C.845 — 881
  144. Takahashi Y., Chen Y" Moiseyev G., Ma J, Two Point Mutations of RPE65 from Patients with Retinal Dystrophies Decrease the Stability of 179
  145. RPE65 Protein and Abolish Its Isomerohydrolase Activity // J. Biol- Chem. -2006. «Vol. 281, № 31. P. 21 820- 21 826.
  146. Jam B. M, Moriiz O.L., Papermaster D.S. The С Terminus of Peripherin/rds Participates in Rod Outer Segment Targeting and Alignment of Disk Incisures it Molecular Biology of the Cell 2004. — Vol. 15, — P. 2027 -2037.
  147. Travis G.H., Brennan M B. Danielson P.E. Kozak C.A., Sulciiffe J. G, Identification of* a photoreceptor-specific mRNA encoded by the gene responsible for retinal degeneration slow (rds) U Nature 1989, — Vol. 338.1. P. 701 73,
  148. Van Lilh-Vcrhoeven J, C. Cremers P.P. Van den Helm. B, et al. Genetic heterogeneity of butterfly-shaped pigment dystrophy of the fovea U Mol. Vis. -2003. -Vol.9.-P. 138- 143.
  149. Vinchurkar M.S., Salhye S, M., Dikshit M. Retinitis pigmentosa genetic: a study in Indian population H Indian. J, Ophthalmol. 1996, — Vol. 44. № 2. — P. 77 — 82.
  150. W. Л jjenetic services microcomputer data base. Pari J. Design and implementation / W, Wertelecki, D.W. Supemeau // Alabama J. Med. Sci. 1987. — Vol. 24. — P. 281 — 289 a.
  151. Wcrtclecki, W, A genetic services microcomputer data base. Part II. Results and trends f W. Wertelecki, D.W. Supemeau // Alabama J. Med. Sci. -1987. Vol. 24. — P 397- 399 b.
  152. Wieland T» Chen C.K., Simon M L The retinal specific protein RGS-r competes with the gamma subunit of cGMP phosphodiesterase for the alpha subunit of transducin and facilitates signal termination // J. Biol. Chem, 1997. -Vol. 272.-P. 8853−8856.
  153. Wilson J, H" Wensel T. G, The nature of dominant mutations of rhodopsin and implications for gene therapy // Mol. Neurobiol. 2003. — Vol. 28. N*2. -P. 149- 158.
  154. Wing H.D. Prevalence and mode inheritance of major genetic eye diseases in China H J. Med, Genet. 1987, — Vol. 24, .№ 10. — P. 584 — 588.181
  155. Wright M.D., Tomlinson M. G, The ins and outs of the transmembrane 4 superfamily // Immunol. Today 1994. — Vol. 15. — P. 588−594,
  156. Xuc L. Gollapalli DR., Mailt P-, Jahng W.J., Rando R, R, A palmitoylation switch mechanism in the regulation of die visual cycle // Cell -2004. — Vol. 117.-P. 761 -771.
  157. Yamamoto S., Sippel K.C. Bcrson EX. Dryja T.P. Defects in the rhodopsin kinase gene in the Oguchi form of stationary night blindness // NaL Genet, 1997. — Vol. 15. — P. 175−178.
  158. Yatnashita Г., Terakka A., Shichida Y. Distinct roles of the second and third cytoplasmic loops of bovine rhodopsin in G protein activation // J. Biol. Chcm. 2000. — Vol. 275, — P. 34 272 — 35 279.
  159. Yoshii M., Murakami A. Akco K., Nakamura A., Shimoyama M., Ikeda Y., Kikuchi Y" Okisaka S., Yanashima K" Oguchi Y. Visual function and gene analysis in a family with Oguchi’s disease// Ophthalmic- Res. 1998. -30. — P. 394−401.
  160. Yount E.A. Applications of the MEGADATS database system in medical genetics / E.A. Yount, P.M. Conneally, J, M, Gcrsting // Am. J. Med. Genet. -(987.-Vol.26.-P.331 -335.
  161. Zhang X.L., Liu M., Meng X.H. el al, Mutational analysis of the rhodopsin gene in Chinese ADRP families by conformation sensitive get electrophoresis // Life Sci 2006. — Vot. 78, № 13. — P. 1494 — 1498,
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?