Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Оценка влияния различных факторов среды на инвазионную активность энтомопатогенных нематод и приемы ее повышения

Диссертация: Оценка влияния различных факторов среды на инвазионную активность энтомопатогенных нематод и приемы ее повышения
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

В результате маршрутных обследований сельскохозяйственных угодий в Египте выявлено повсеместное распространение в пахотном горизонте почвы различных видов энтомопатогенных нематод. При анализе собранных почвенных образцов и погибших насекомых обнаружено 6 их видов из 2-х сем. Steinernematidae и Heterorhabditidae — S. riobrave, S. feltiae, S. carpocapsa, S. rarum, S. glaseri и H. bacteriophora… Читать ещё >

Содержание

  • 1. Введение
  • 2. Биологические особенности развития энтомопатогенных нематод из рода
  • 81. етегпета
    • 2. 1. Влияние различных факторов внешней среды на активность нематод
      • 2. 1. 1. Активность нематод в зависимости от температуры
      • 2. 1. 2. Роль влажности
      • 2. 1. 3. Особенности распределения нематод в почве по вертикали
    • 2. 2. Инвазионная активность разных видов энтомопатогенных нематод
      • 2. 2. 1. Влияние некоторых факторов на длительность сохранения жизнеспособности нематод
    • 2. 3. Длительность сохранения инвазионной активности
  • 3. Использование энтомопатогенных нематод в борьбе с экономически значимыми насекомыми
    • 3. 1. Восприимчивость различных стадий вредителей
    • 3. 2. Экономическая эффективность применения энтомопатогенных нематод

Оценка влияния различных факторов среды на инвазионную активность энтомопатогенных нематод и приемы ее повышения (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Защита сельскохозяйственных культур от вредителей и, в частности, хлопчатника от наиболее вредоносного вредителя этой культуры — хлопковой совки (Spodoptera littoralis), имеющей в своем цикле развития почвенные стадии представляет особую сложность из-за способности их накапливаться при бессменном возделывании (Ellis, 1980, Shapiro-Ilan et al., 2002, 2006, 2010). Так, потери урожая хлопка — сырца при этом достигают 10−20% (Burrows et al., 1982). Вместе с тем применение радикального химического метода борьбы с вредителями этой культуры, несмотря на очевидный эффект, приводит к нежелательным последствиям, в частности, загрязнению пестицидами окружающей среды, особенно при многократных обработках, стимулированию появления резистентных к ним форм вредных организмов, подавлению или уничтожению полезных видов, участвующих в регуляции их численности. Не случайно поэтому, все шире в системах защитных мероприятий используются приемы биологической борьбы с вредителями (Jeffords, Hodgins, 1995). Следовательно, разработка приемов, способных активизировать естественные механизмы регуляции численности вредных видов, и внедрение их в производство путем замены в применяемых системах защиты пестицидных обработок биологическими средствами, ограничивающими развитие патогенов, является важной актуальной задачей (Помазков, Заец, 1998).

В последнее время в практике защиты растений от вредителей весьма интенсивно используются энтомопатогенные формы нематод, средой обитания которой является почва и находящиеся в ней их почвенные стадии. Заражая насекомых, они способны вызывать стерилизацию и гибель жертвы. Вместе с тем, они совершенно безопасны в отличие от химических веществ и даже некоторых биопрепаратов (например, Bacillus thuringiensis) для растений и животных. При их использовании не требуются какие — либо средства безопасности. Они способны инфицировать десятки различных видов насекомыхвредителей, не оказывая негативных последствий на полезных насекомых (Georgis et al., 1991; Akhurst, Smith, 2002). Для их массового производства и накопления не требуется специального оборудования. Однако, как и другие агенты биологической борьбы, нематоды требуют определенных условий для своего развития. Они быстро инактивируются под действием ультрафиолетового света, при высыхании почвы, что определяется ее типом, структурой и плодородием и ирригационным режимом. Их эффективность проявляется в сравнительно узком диапазоне температур (как правило, от 20 °C и 30°С), по сравнению с химическими веществами (Georgis, Gaugler, 1991; Shapiro-Ilan et al., 2006).

К наиболее перспективным для биологической борьбы с вредителями относятся нематоды из семейств Steinernematidae и Heterorhabditidae (Poinar, 1978, Wouts, 1985). Уже известно около 50 видов насекомых, в которых нематоды способны паразитировать (Doucet, 1994, Dergham, 1995, Scheepmaker et al, 1997, Jaworska, 1999). Однако их летальное действие на некоторые виды, против которых применяют нематодные препараты в виде суспензий инвазионных личинок 2-го возраста, не всегда обеспечивает должную эффективность вследствие их недостаточной плотности в местах локализации вредителей, чувствительности к действию факторов внешней среды (температура, влажность, тип почвы, наличие условий для сохранения и устойчивой циркуляции их популяций). Делаются многочисленные попытки для ее повышения. В частности, для этих целей испытываются их различные комплексы с пестицидами, патогенными грибами, маслами и другими компонентами. Так, для борьбы с походным червем Spodoptera frugiperda (Smith, 1997) (Lepidoptera: Noctuidae) — основным вредителем посевов кукурузы в Бразилии применяли энтомопатогенных нематод в комплексе препаратами, способными вызывать гибель вредителя. Использовали распыление смесей. Энтомопатогенные нематодные препараты уже предложены производству (Akhurst et al., 1990, Akhurst, 1990, Vanninen, 1990, Zimmerman et al., 1990, Kaya,.

1993). Однако до массового их внедрения еще далеко, поскольку недостаточно изучены биологические и экологические особенности жизнедеятельности наиболее перспективных видов нематод и не решены проблемы их культивирования, накопления и хранения. Относительно малая подвижность их инвазионных стадий предполагает многократное искусственное заселение энтомопатогенными формами популяций вредных видов. Это естественно создает трудности для практического использования нематодных «препаратов» .

Выводы:

1. В результате маршрутных обследований сельскохозяйственных угодий в Египте выявлено повсеместное распространение в пахотном горизонте почвы различных видов энтомопатогенных нематод. При анализе собранных почвенных образцов и погибших насекомых обнаружено 6 их видов из 2-х сем. Steinernematidae и Heterorhabditidae — S. riobrave, S. feltiae, S. carpocapsa, S. rarum, S. glaseri и H. bacteriophora. Найдено, что в процессе вегетации происходит снижение численности и активности их особей. Самая высокая инвазионная активность нематод отмечена в верхнем пахотном горизонте в посадках апельсина и манго, наименьшая — на хлопчатнике и кукурузе.

2. К доминирующим и наиболее распространенным относятся виды S. feltiae, S. carpocapsa и S. rarum, которые обнаруживаются в среднем в 35,6% всех образцов. При этом отмечена их приуроченность к многолетним культурамманго и апельсин — до 42−52% образцов соответственно.

3. Наиболее адаптированы к местным условиям S. feltiae и S. glaseri, способные сохраняться и проявлять инвазионную активность при 37 °C. Использование суспензий энтомопатогенных нематод — показало, что смертность хлопковой совки достигала 85,0%, что указывает на их высокую эффективность. Определены оптимальные режимы для применения суспензий (к-ция 3 тыс. шт./мл при 15−25°С).

4. Найдено, что активность инвазии зависит от типа почвы, ее плодородия и влажности. Наибольшая степень заражения почвенных стадий вредителей инвазионными личинками нематод отмечалась на легких песчаных почвах без удобрений или при малых их дозах (до 25%). Смертность вредителей в указанных случаях колебалась от 68.0 до 91%.

5. Использование в качестве субстрата личинок домашней мухи (М domestica) для накопления активных инвазионных стадий энтомопатогенных нематод Steinernema показало перспективность для указанных целей этого биологического материала. При данной технологии рабочие суспензии инвазионных личинок 3-х видов нематод удается получать в 2 раза быстрее и 3,8 раз дешевле, чем при их традиционном накоплении с помощью личинок большой вощинной моли.

6. Полученный по разработанной технологии биологический материалсуспензия инвазионных личинок энтомопатогенных видов Steinernemaпоказал высокую эффективность при лабораторных испытаниях на тест-объектах — колорадский жук и мучной хрущак, смертность которых после инфицирования достигала 53 и более 70% соответственно. При этом личиночные стадии проявили большую чувствительность, уровень заражения которых превышал 90%.

7. Расчет эффективности применения энтомопатогенных нематод показывает, что использование суспензий экономически выгодно и позволяет получать дополнительный урожай и прибыль. Рентабельность нематодных препаратов составляет 113,4 -124,2%, несколько уступая химическим пестицидам (118,7 -128,4%).

Показать весь текст

Список литературы

  1. А. Почвенные мерметиды: систематика, биология, использование //Из-во Воронежского ун-та, 1990.- 160 с.
  2. Н., Микульская Н. Энтомопатогенные нематоды: состояние и перспективы использования в борьбе с вредными насекомыми в Беларуси //Ж. Защита растений, в.25, 2000.- С. 53 59.
  3. Васильева-Некрасова С., Метлицкий О. Энтомопатогенные нематоды в защите садов и ягодников от вредителей (в условиях Подмосковья) //В сб. Производство экологически безопасной продукции растениеводства, Пущино, 1997.- С. 101−106.
  4. С. Энтомопатогенные нематоды-паразиты вредителей леса. Семейство рабдитиды //М.: Наука, 1982.-133 с.
  5. Г. О массовом разведении энтомопатогенного нематодно-бактериального комплекса //Паразитология. Т.6, вып. 4, 1972.- С. 376−380.
  6. JI., Карпова Е., Шиловская Т. Энтомопатогенные нематоды против капустных мух //Ж. Защита растений, 1995, N7,-С.40.
  7. Данилов JL, Махоткин А., Зверев А., Махоткина Л. Вредная черепашка и энтомопатогенные нематоды //Ж. Защита и карантин растений, N3, 2000.- С. 46.
  8. Е.П. Плотность популяции при культивировании личинок комнатной мухи Musca domestica в курином помёте //Тез. докл. 1-го Всесоюз. сов. по проблемам зоокультуры.- М.- 1986.- С. 153−156.
  9. М.А., Помазков Ю. И. Вирусы, вироиды и микоплазмы растений //М.-РУДН.-2003.-157 с.
  10. Е., Кралль Э. Паразитические нематоды растений и меры борьбы с ними.- Л.: Наука, 1969.-443 с.
  11. В. Нематоды: строение, развитие, классификация и филогения//М.: Наука, 1984, — 215 с.
  12. Ю., Заец В. Биологическая защита растений. М., РУДН, 1998.- 154 с.
  13. М., Агасьева И., Исмаилов В. Новые препаративные формы //Ж. Защита и карантин растений, N1, 1997.- С. 46−47.
  14. С.Э. Патогены насекомыхЖ структурные и функциональные аспекты (под ред. В. Глупова), М.: 2001.-С. 428−475.
  15. P.A., Мифтахов A.A. Оценка энтомоцидной активности нематоды Neoaplectana carpocapsae для насекомых вредителей леса и перспективы ее использования в интегрированной системе защиты леса //Леса Башкортостана, Уфа, 1997.-С. 197−198.
  16. И. Мерметиды. Классификация, значение, использование //Л.: Наука. 1978. 207 с.
  17. О. Энтомопатогенные нематоды двукрылых. Отряд Tylenchida //М.: Наука. 1984.- 198 с.
  18. Хабиес М.М. А. Нематоды STEINERNEMA эффективные паразиты насекомых //Сб. Концепции, практика и перспективы современного земледелия. -М. -РУДН. -2003 .-С.51−53.
  19. Хабиес М.М.А, Изучение нематод-энтомофагов в районах султаната Омана // Сб. Концепции, практика и перспективы современного земледелия.-М.-РУДН.-2003.-С.53−54.
  20. С., Безрученок Н. Меры борьбы со смородиннойстеклянницей (Synanthedon tipuliformis CL.) в Беларуси //Ж.
  21. Защита растений, N24, 2000. С. 15−23.
  22. Abbott, W.S. A method of computing the effectiveness of the insecticide.
  23. J.Econ. Entomol. V.18.- 1925, — C. 265−267.
  24. Abdel- Kawy A. G., Abdel- Bary N.A., El-Shrief, M.A. Susceptibility of Agrotis ipsilon, fourth, fifth and sixth instar larvae to Neoaplictana carpocapsae infection in soil //Bull. Zool. Soc., Egypt, V.37.-1987.-C.161−168.
  25. Abu Hatab M.A., Gaugler R. Influence of growth temperature on fatty acid phospholipids of Steinernema riobravis infective juveniles //J. Therm. Biol., V.22.- № 4.- 1997.- C. 237- 244.
  26. Akhurst R. Controlling insects in soil with entomopathogenic nematodes//In: Fundamental and applied aspects of invertebrate pathology, /ed. R. Samson et al., Wageningen, 1986.- 711 p.
  27. Akhurst R. Morfological and functional dimorphism in Xenorhabdus spp. bacteria symbiotically associated with the insect pathogenic nematodes
  28. Neoaplectana and Heterorhabditis //J.Gen.Microbiol., V.121.- 1980.- P. 303 -309.
  29. Akhurst R. Neoaplectana species: specificity of association with bacteria of genus Xenorhabdus //Exp. Parasitai., V.55.- 1983, — P. 258−263.
  30. Akhurst R., Bedding R. Natural occurrence of insect pathogenic nematodes (Steinernematidae: Heterorhabditidae) in soil on Australia //J. Aust. Entomol. Soc., V. 25.- 1986, — P. 241−244.
  31. Akhurst R., Boemare N. Biology and taxonomy of Xenorhabdus //See Ref., № 68.- 1990.-P. 75−92.
  32. Akhurst R., Brooks W. The distribution of entomophilic nematodes (Heterorhabditidae and Steinernematidae) in North Carolina //Invertebr. Pathol., № 44.- 1984.-P. 140−145.
  33. Akhurst R., Smith K. Regulation and safety. In: Gaugler, R. (Ed.) //Entomopathogenic Nematology. CABI, New York, NY, 2002.- P. 311−332.
  34. Albrecht M. K., Parwinder S. G., Eugene M. F. Divergences in penetration routes and establishment rates of four entomopathogenic nematode species into four white grub species. //Journal of Invertebrate Pathology, V.94.-2007.-P. 184−195.
  35. Armer C. A, Berry R.E., Reed G. L., Jepsen S. J. Colorado potato beetle control by application of the entomopathogenic nematode Heterorhabditis marelata and potato plant alkaloid manipulation //Entomologia Exp. Appl.-V.11L- № 1.- 2004.-P. 47−58.
  36. Baudoin J.P., Kamoin N.F. Le Haricot-igname Africain (Sphenostylis stenocarpa (Hochst.ex A.Rich.) Harms): une legumineuse a graines et a tubercules sous-exploitee //Troupeaux et Cultures des Tropiques.-V.2.- № 5.2004.- P. 44−46.
  37. Bednarek A., Gaugler R. Compatibility of Soil Amendments with Entomopathogenic Nematodes //J. Nematol.- V.29.- № 2.-1997.-P. 220−227.
  38. BeIton P. T., Rutherford A., Trotter D.B., Webster J.M. Heterorhabditis heliothidis: potential biological control agent of houseflies in caged- layer poultry barns //J. Nematol.- № 19.- 1987.- P. 263−266.
  39. Cabanillas H.E., Raulston J.R. Evaluation of Steinernema riobarvis, S. carpocapsae and irrigation timing for the control of corn earworm, Helicoverpa zea //J. Nematol., V. 28.- № 1.- 1996.- P. 75- 82.
  40. Cagnolo S., Campos, V. Effect of storage temperature on survival and infectivity of Steinernema rarum (OLI strain) (Rhabditida: Steinernematidae). //J. of Invertebrate Pathology.- V.98.- № 1.- 2008.- P. 114 115.
  41. Capinera J. L., Pelissier D., Menout G.S., Epsky N.D. Control of black cutworm, Agrotis ipsilon (Lepidoptera: Noctuidae) with entomogenous nematodes (Nematoda: Steinernematidae, Heterorhabditdae) //J. Invertebr. Pathol., V. 52.- № 3.-1988.- P. 427- 435.
  42. Caroli L., Glazer L., Gaugler R. Entomopathogenic nematodes infectivity assay: Comparison of penetration rate into different hosts //Biocontrol Science and Technology, V.6.- № 2.-1996.-P. 227 233.
  43. Colombo M., Frasce D., Daolio E. Basil: experimental trial for control of Spodoptera littoralis //Colture Protette, V.26.- № 5.-1997, — C. 73−78.
  44. Curran J., Heng J. Comparison of three methods for estimating the number of entomopathogenic nematodes present in soil samples //. Nematol.-№ 24.-1992.-P. 170−176.
  45. Darwish A. A., Said S. A., Abdel-Kawy A. M., Attia A. M. Biological control of insects with insect parasitic nematodes //Annals of Agricultural Science, Moshtohor.- V.36.- № 1.- 1998.- P. 603−618.
  46. De Doucet M., Doucet M. Steinernema ritteri n.sp. (Nematoda: Steinernematidae) with a key to the species of the genus //Nematologica, № 36.-1990.-P. 257 -265.
  47. De Doucet M., Giayetto A. Gama de Huespedes y especificidad en Heterorhabditis bacteriophora Poinar (Heterorhabditidae: Nematoda) //Nematol. Medit., V.22.-1994.- P. 171 178.
  48. Dergham Y. Biologische bekampfung //J. Champignon, № 388.- 1995.- P. 280−281.
  49. Dunphy G. B., Webster J. M. Temperature effects on the growth and virulence of Steinernema feltiae strains and Heterorhabdilis heliothidis //J. Nematol., V.18.- 1986, — P. 270−272.
  50. Dutkey S.R., Thompson J.V., Cantwell E. A. technique for the mass propagation of the DD-136 nematode //J. Insect. Path., V.6.- 1964.- P. 417 422.
  51. Eldeeb M.A. Economic entomology / Zagazig university A.R.E faculty of agriculture 1998.
  52. EI-Maghraby M. M., Mahrous M.E., Hashem M.H. Susceptibility of Spodoptera littoralis (Boisd.) to certain species and strains of entomogenous nematodes //Zagazig J. Agric. Res., V.18.- № 3.-1991.- P. 843- 848.
  53. Epsky N. D., Capinera J. L. Quantification of invasion of two strains of Steinernema carpocapsae (Weiser) into three Lepidopteran larvae //J. Nematol., V.25.- № 2.-1993. -P. 173 180.
  54. Epsky N.D., Capinera J.L. Invasion efficiency as a measure of efficacy of the entomogenous nematode Steinernema carpocapsae (Rhabditida: Steinernematidae) //J. Econ. Entomol. V.87.- № 7.- 1994.- PP. 366−370.
  55. Fan X., Hominick W. Efficiency of the Galleria (wax moth) baiting technique for recovering infecive stage of entomopathogenic rhabditids (Steinernematidae and Heterorhabditidae) from sand and soil //Rev.Nematol., № 14,.-1991.-P.381 -387.
  56. Fan X., Hominick W.M. Effect of low storage temperature on survival and infectivity of two Steinernema species (Nematoda: Steinernematidae). //Rev. Nematol., V. 14, — 1991.- P. 407−412.
  57. Finney J., Harding J. Some factors affecting the use of Neoaplectana sp. for mosquito control //Mosq.News, V.41.- 1981.- P. 798 799.
  58. Forlow L., Henneberry T.T. A method of distributing Steinernema riobravis in cotton furrow irrigation and pink bollworm larval mortality response //Proceedings BeHwide Cotton Confrences, Nashville, TN, USA, January 9−12 V. 2.-1996, — P. 707- 709.
  59. Geden C.J., Axtell R.C., Brooks W.M. Susceptibility of the house fly, Musca domestica (Diptera: Muscidae), to the entomogenous nematodes Steinernema feltiae, S. glaseri (Steinernematidae) //J. Med. Entomol. № 23.-1986.-P. 326−332.
  60. George A. P., Niessen R. J., Campbell J. A. Pollination and selection in annona species (cherimoya, atemoya, and sugar apple) //Acta Horticulturae. V. 321.- 1992.-P. 178−185.
  61. Georgis R. Formulation and application technology //See Ref. V.68.- 1990.-P. 173 191.
  62. Georgis R., Gaugler R. Predictability in biological control using entomopathogenic nematodes //J. Econ. Entomol., № 84.- 1991.- P. 713 720.
  63. Georgis R., Hague N. Nematodes as biological insecticides //Pestic. Outlook, № 2.- 1991, — P.29 32.
  64. Georgis R., Mullens B., Meyer J. Survival and movement of insect parasitic nematodes in poultry manure and their infectivity against Musca domestica //J. Nematol.- № 19.-1987.- P. 292 295.
  65. Georgis R., Poinar G. Effect of soil texture on the distribution and infectivity of Neoaplectana carpocapsae (Nematoda: Sreinernematidae) //J. Nematol., № 15.- 1983.- P. 308 311.
  66. Georgis R., Poinar G. Field effectiveness of entomophilic nematodes Neoaplectana and Heterorhabditis //See Ref.- V.108.- 1989.- P. 213 224.
  67. Georgis R., Dunlop D.B. Water dispersible granule: a novel formulation for nematode based bioinsecticides //Brighton Crop Protection Conference, Pesta and Diseases.- 1994,-P. 31−36.
  68. Georgis R., Dunlop D.B., Grewal P. S. Formulation of entomopathogenic nematodes. In Biorational Pest Control Agents //Formulation and Delivary, ACS Symposium Series No.595.- Chapter 13. 1995.- P. 197- 205.
  69. Georgis R., Wojcik W. F., SheltarD. J. Use of Steinernema feltiae’m a bait for control of blackworm (Agrotis ipsilori) and tawny mole crickets (Scapteriscus vicinus) //Florida Entomologist.- V.72.- № 1.- 1989.- P. 203 -204.
  70. Glazer I. Effects of infected insects on secondary invasion of steinernematid entomopathogenic nematodes //J. Parasitology.- V.114.- № 6.- 1997, — C. 597 -604.
  71. Glazer I. Survival and efficacy of Steinernema carpocapsae in an exposed environment //J. Biocontrol Science and Technology.- V.2.- 1992.- P. 101 -107.
  72. Glazer I., Liran N., Poinar G.O., Smits P.M. Identification and biological activity of newly isolated heterorhabditid populations from Israel // J. Fundam Appl. Nematol.- V.16.- № 5.-1993.- P. 467 472.
  73. Gouge D. H., Smith K.A., Lee L.L., Henneberry T.J. Effect of Soil Depth and Moisture on the Vertical Distribution of Steinernema riobrave (Nematoda: Steinernematidae) //J. Nematology.- V. 32, — № 2.-2000.-P. 223 228.
  74. Gouge D.H., Smith K.A., Lee L. L., Henneberry T. J. Effect of Soil Depth and Moisture on the Vertical Distribution of Steinernema riobrave 111. Nematology.- V.32.- № 2.-2000.-P. 223−228.
  75. Gray P. A., Johnson D.T. Survival of the nematode Neoaplectana carpocapsae in relation to soil temperature, moisture and time //J. Georgia Entomol. Soc.- 1983.- P.18- 454.
  76. GrewaI P. S., Gaugler R., Lewis E.E. Host recognition behavior by entomopathogenic nematodes during contact with insect gut contents // J. Parasitol. V.79.- № 4.- 1993.-P.495 503.
  77. Grewal P. S., Gaugler R., Kay a H.K., Wusaty M. Infectivity of the entomopathogenic nematode Steinernema scaptersci (Nematoda: Steinernematidae) //J. Invertebr. Pathol., V.62.-1993.-P. 22−28.
  78. Grewal P. S., Selvan S., Gaugler R. Thermal adaptation of entomopathogenic nematodes: niche breath for infection, establishment and reproduction //J. Therm. Biol. V.19.- № 4.-1994. p. 245 253.
  79. Haas G., Berg M., Koepke U. Agricultural Effects on Ground and Surface Waters (Steenvorden, J., F. Claessen, J. Willems, eds.) // Intern. Association of Hydrological Sciences, IAHS Publ, Oxfordshire, UK, № 273.- 2002.-P.131−136.
  80. Henneberry T.J., Forlow J.L., Burke R.A. Pink bollworm adult and larval susceptibility to steinernematid nematodes and nematode persistence in the soil laboratory and field tests in Arizona //Southwestern Entomologist.-V.21.- № 4.- 1996.-P. 537- 368.
  81. Henneberry T.J., Lindegreen J.E., Forlow J.L., Burke R.A. Pink bollworm (Lepidoptera: Galechiidae), cabbage looper, and beet armyworm (Lepidoptera: Noctuidae) pupal susceptibility to steinernematid nematodes
  82. Rhabditida: Steinernematidae) //J. Econ. Entomol.- V.88.- № 4.- 1995.- P. 835−839.
  83. Henneberry T.J., Lindegreen J.E., Forlow J.L., Burke
  84. R.A. Pink bollworm (Lepidoptera: Galechiidae), cabbage looper, and beet armyworm (Lepidoptera: Noctuidae) pupal susceptibility to steinernematid nematodes (Rhabditida: Steinernematidae) //J. Econ. Entomol., V.88.- № 4.-1995a.- P. 835−839.
  85. Henneberry T.J., Lindegreen J.E., Jech L.F., Burke R.A. Pink bollworm (Lepidoptera: Galechiidae): effect of steinernematid nematodes on larval mortality //J. Southwestern Entomologists, V.20.- № 1, — 1995b.- P. 25- 32.
  86. Howell J.F. New storage methods and improved trapping technique for the parasitic nematode, Neoaplectana carpocapsae //J. Invertebr. Pathol., V.33.-1979.-P. 155 158.
  87. Hsiao W.F. Effects of animal manure on the survival and pathogenicity of the entomopathogenic nematode, Steinernema carpocapsae //Chinese J. Entomol.-V.17, — 1997,-P. 53−65.
  88. IppoIito R., Triggiani. The efficacy of Heterorhabditis sp. and Steinernema feltiae (=bibionis) fit for the control of larvae of Lepidoptera, Noctuidae in irrigated globe artichoke fields //J. Informatore Fitopatologico.- V.45.- № 11.-1995.-P. 55−59.
  89. Ishibashi N. Recent Advances in biological control of insect pests by entomogenous nematodes in Japan //Saga Univ. Japan, N59860005.- 1987.179 p.
  90. Ishibashi N., Kondo E. Behavior of infective juveniles //See Ref., № 68.-1990,-P. 139 153.
  91. Ishibashi N., Takii, S. effect of insecticides on movement, nictation and infectivity of Steinernema carpocapsae //J. Nematol. V.25.- 1993.- P. 204−213.
  92. Jaworska M. Porownanie efektywnosci ochrony pieczarek metoda biologiczna i chemiczna//Prog. Plant Prot., V. 39.- № 1.-1999.- P. 180 186.
  93. Jaworska M. mushroom pests Lycoriella auripila (Diptera: Sciaridae) and Megaselia halterata (Diptera: Phoridae) by Steinernema feltiae (Nematoda: Steinernematidae) in field experiments //Ann. Appl. Biol., V.131.- № 3.1997, — P. 359−368.
  94. Kaya H.K. Susceptibility of early stages of Pseudoletia unipuncta and Spodoptera exigua (Lepidoptera: Noctuidae) to the entomogenous nematode, Steinernema feltiae (Rhabditida: Steinernematidae) //J. Invertebr. Pathol.- V.46.- 1985, — P. 58 62.
  95. Kaya H. K., Harra, A.H. Susceptibility of various species of Lepidopterous pupae to entomopathogenic nematode, Neoaplictana carpocapsae //J. Nematol., V.13.- № 3.-1981.- P. 291 294.
  96. Kaya H. K. Diseases caused by nematodesin (J.R. Fuxa, Y. Tanada eds.) //J. Epizootiology of insect diseases J. Wiley, New York. 1987.- P. 453−470.
  97. Kaya H. K. princes from todes. AM. Nurserymun. V.167.- 1988.-P. 63−69.
  98. Kaya H.K. Development of the DD- 136 strain of Neoaplectana carpocapsae at constant temperature //J. Nematol., V.9.- 1977.- P. 346 -349.
  99. Kaya H.K., Grieve B.J. The nematode, oiNeoaplectana carpocapsae and the beet army worm, Spodoptera littoralis: infectivity ofpre-pupae in soil and adults emergence from soil //J. Invertebr. Pathol.- V.39.- 1982.- P. 192— 197.
  100. Kaya H.K., Nelesen C.E. Encapsulation of steinernematid and heterorhabditid nematodes with calcium alginate: a new approach for insect control and other applications //Environ. Entomol., V.14.- № 5.-1985.- P. 572−574.
  101. Kaya H.K., Burlando T.M., Thurston G.S. Two entomopathogenic nematode species with different search strategies for insect suppression //Environ. Entomol.- V.22.-1993.- P. 859 864.
  102. Khlibsuwan, W., Ishibashi, N., Kondo, E. Response of Stienernema carpocapsae infective juveniles to the plasma of three insect species //J. Nematol., V.24.-№ 1.-1992a.-P. 156- 159.
  103. Khlibsuwan W., Ishibashi N., Kondo E. Effects of enzymes chemicals and temperature on Stienernema carpocapsae attraction to host plasma //J. entomol. V.24.- № 4.- 1992b.- P. 482 488.
  104. Klein M.G. Efficacy against soil-inhabiting insect pests.- In: Entomopathogenic nematodes in biological control (R. Gaugler, H. K. Kaya eds.) //CRC, Boca Raton, FL.- 1990, — P. 195−214.
  105. Klein M.G. Efficacy against soil-inhabiting insect pests //In: Entomopathogenicnematodes in biological control (R. Gaugler, H. K. Kaya eds.) //CRC, Boca Raton, FL.- 1990.- P. 195−214.
  106. Klinger J. Effect of cold storage on survival and parasitic activity of Heterorhabditis sp. //Entomophaga V.35.- № 3.-1990, — P. 493 496.
  107. Kondo E. Size- related susceptibility of Spodoptera littura (Lepidoptera: Noctuidae) larvae to entomogenous nematodes, Stienernema feltiae (DD-136) //Applied Entomology and Zoology.- V.22.- № 4.-1987.- P. 560 569.
  108. Koppenhofer A.M., Baur M. E., Kaya H. K. Competition between Two Steinernematid Nematode Species for an Insect Host at Different Soil Depths //J. Parasitology. V. 82.- № 1.-1996.-P. 34−40.
  109. Koppenhofer A. M., Kaya H. K., Shanmugam S., Wood G. L. Interspecific competition between steinernematid nematodes within an insect host //J. of Invertebrate Pathology.- V.66.- № 2.-1995.-P. 99−103.
  110. Koppenhofer A.M., Kaya H.K., Taormino S.P. Infectivity of entomopathgenic nematodes (Rhabditida: Steinernematidae) at different soil depths and moistures //J. Invertebr. Pathol. V.65.- № 2.- 1995.- P. 193 -199.
  111. Kung S. P., Gaugier R., Kaya H. K. Effects of soil temperature, moisture and relative humidity on entomopathgenic nematodes persistence //J. Invertebr. Pathol.- V. 57, — № 2, — 1991.-P. 242 249.
  112. Kung S.P., Gaugier R., Kaya H.K. Influence of soil PH and oxygen on persistence of Steinernema spp. //J. Nematol., V.22.- № 4.-1990.-C. 440 -445.
  113. Landazabal A.J., Fernandez A.F., Figueroa P.A. Biological control of Spodoptera frugiperda (J.E. Smith), on maize by the nematode, Neoaplectana carpocapsae //Acta Agronomica, Colombia., V.23.- №¾.-1973.-P. 41 -70.
  114. Laumond C., Mauleon H., Kermarrec A. New data on the host range and parasitism by the entomopathgenic nematode, Neoaplectana carpocapsae //J. Entomophaga V.24.- № 1.- 1979.-P. 13−27.
  115. Laznik T., Toth T., Lakatos M., Trdan S. Control of the Colorado potato beetle {Leptinotarsa decemlineata Say.) on potato under field conditions: a comparison of the efficacy of foliar application of two strains of
  116. Steinernema feltiae (Filipjev) and spraying with thiametoxam //J. Plant Dis. Prot.- V. l 17.- № 3, — 2010.-P.129 -135.
  117. Levine E., Oloumi Sadeghi H. Field evaluation of Steinernema carpocapsae (Rhabditida: Steinernematidae) against black cutworm (Lepidoptera: Noctuidae) larvae in field corn //J. Entomol. Science.- N21-№ 4.- 1992.-P. 427−435.
  118. Lindegren J. E., Henneberry T.J., Jech L.J.F., Burke R.A. Pink bollworm suppression response and field persistence of two insect parasitic nematodes //Proc. Beltwide Cotton Conferences, San Antonio, TX, USA.-V.2.- 1995.-P. 944- 946.
  119. Lindegren J.E., Valero K.A., Mackey B.E. Simple in Vivo production and storage methods for Steinernema carpocapsae infective juveniles //J. Nematol.-V.25.-№ 2.-1993.-P. 193 -197.
  120. Lindegren J.E., Valero K.A., MackeyB.E. Simple in Vivo production and storage methods for Steinernema carpocapsae infective juveniles //J. Nematol. V.25.-№ 2.-1993.-P. 193 -197.
  121. Lindegren J.E., Valero K.A., Mackey B.E. Simple in Vivo production and storage methods for Steinernema carpocapsae infective juveniles //J. Nematol. V.25.-№ 2.- 1993,-P. 193 -197.
  122. Miduturi J.S., Clercq R. de., Casteels H., Griss A. de. Effect of temperature on the infectivity of entomopathgenic nematodes against black vine weevil (Otiorhynchus sulcatus F.) //J. Parasitica, V.50.- № 3−4.- 1994.-P. 103 -108.
  123. Molyneux A. S, Bedding R.A. Infuence of soil texture and moisture on the infectivity of Heterorhabditis sp. D1 and Steinernema glaseri for larvaeof the sheep blowfy Lucilia cuprina //Nematologica.- V.30.- 1984.- P. 358 365.
  124. Molyneux A. S. Survival of infective juveniles of Heterorhabditis spp. and Steinernema spp. (Nematoda: Rhabditida) at various temperatures and their subsequent infectivity for insects //Rev. Nematol., 1985.- P. 8- 165.
  125. Molyneux A.S. The influence of temperature on the infectivity of heterorhabditid and stienernematid nematodes for the sheep blowfly, Lucilia cuprina //In: Pro. 4th Aust. Appl. Entomol.- Res. Conf., Adelaide, Bailey P., Swincer D. eds.-1984.- 344 p.
  126. Moore G.E. Moisture requirements of the DD-136 strain of Neoaplectana carpocapsae (Nematoda: Rhabditida) as related to host infection //J. Experimental Parasitology, V.33.- 1973.-P. 207 211.
  127. Moore G.E. The bionomics of an insect parasitic nematode //J. Kansas Entomol. Soc.1965.-P. 83- 101.
  128. Morris D.N., Converse V., Harding J. Virulence of entopmopathogenic nematode bacteria complexes for larvae of noctuids, a geometrid, and a pyralid //J. Canadian Entomologist.- V.122.- № 3−4.-1990.- P. 309−319.
  129. Morris O.N. Susceptibility of 31 species of agricultural insect pests to the entomopathgenic nematodes, Steinernema feltiae and Heterorhabditis bacteriophora //J. Canadian Entomologist. V. l 17.-1985.- P. 401 -407.
  130. Mracek Z., Webester J.M. Survey of Heterorhabditidae and Steinernematidae (Nematoda: Rhabditida) in Western Canada //J. Nematol., V.25.- № 4, — 1993.-P. 710−717.
  131. Mullens B.A., Meyer J.A., Cyr T.L. Infectivity of insect-parasitic nematodes (Rhabditida: Steinernematidae, Heterorhabditidae) for larvae of manure-breeding flies (Diptera: Muscidae) //Environ. Entomol. № 16.-1987.-P. 769−773.
  132. Hazir S., Stock P., Kaya H., Koppenhofer A., Kislin N. Developmental Temperature Effects on Five Geographic Isolates of the Entomopathogenic
  133. Nematode Steinernema feltiae (Nematoda: Steinernematidae) //J. of Invertebrate Pathology.- V.77.- 2001.- P.243−250
  134. Poinar G.O. Nematodes for biological control of insects //CRC, Boca Raton, FL.- 1979.
  135. Poinar G.O. Mesidionema praecomasculatis gen. et sp. n. Mesidionematidae fam. n. (Drilonematoidea: Rhabditida), a nematode parasite of earthworms //Proc.Helminthol. Soc. Wash., D.C. V.45.- № 1.-1978.-P. 97−102.
  136. Poinar G.O. Entomogenous nematodes//J. E. Brillhiden. 1975.
  137. Poinar G.O. Infection of the adult Lepidoptera by Neoaplectana carpocapsae (Nematoda) //J. Invertebr. Pathol. V.27.- 1975, — P. 413−414.
  138. Poinar G.O., Himsworth P. T. Neoaplectana parasitism of larvae of greater wax moth, Galleria mellonella /Ibid. -V.9.- 1967.- P. 241−246.
  139. Poinar G.O., Horn A. Survival and horizontal movement of infective stage Neoplectana carpocapsae in the field //J. Nematol. V.18.- 1986 .- P. 34−36.
  140. Poinar G.O. Biology and taxonomy of Steinernematidae and Heterorhabditidae. In Entomopathogenic nematodes in biological control //R. Gauglar, H.K. Kaya -eds.- CRC Press, Boca Raton, Florida, 1990, — P. 23−62.
  141. Poinar G.O. Description of Rhabditis (Rhabditoides) regina n. sp. (Nematoda: Rhabditidae) from the body cavity of beetle larvae in Guatemala//Revue de Nematologie.- V.14.-№ 1.- 1991.-P. 165−180.
  142. Poinar G.O. Generation polymorphism in Neoaplectana glaseri Steiner (Steinernematidae: Nematoda), redescribed from Strigoderma arboricola
  143. Fab.) (Scarabaeidae: Coleoptera) in North Carolina //Nematologica.-V.24.- 1978.- P. 105−114.
  144. Popiel I., Hominick W. Nematodes as biological control agents: Part II //Adv. Parasitol.- V. 31, — 1992, — P. 381 433.
  145. Pye A.E., Burman M. Neoaplectana carpocapsae infection and reproduction in large pine weevil larvae, Hylobius abietis //Exp. Parasitol.-V.46.-1978.-P. 1−11.
  146. Reed E. M, Carnei P.B. The suitability of nematode (DD-136) for control of some pasture insects //J. Invertebr. Pathol, 1967.- P. 9−196.
  147. Renn N., Barson G., Richardson P. N. Preliminary laboratory tests with two species of entomophilic nematodes for control of Musca domestica in intensive animal units //Ann. Appl. Biol. № 106.- 1985.-P. 229−233.
  148. Sander H., Pezowicze E. New possibilities and perspectives in the use of parasitic nematodes in plant protction (Poznan, Poland) //J. Panstwowe Wydawnictwo RolniczeLesne Oddzial w Poznaniu (1979).- publ. 1980.- P. 345- 352.
  149. Saringer G. Y., Lucskai A., Nadasy M., Fodor A., Sumegi Z.S., Klein
  150. M. New experiments with entomopathogenic nematodes in Hungary //Intern. Symp. on crop protection, Jubilee of 50 years, Tuesday, May 5, 1998, Gent, Belgium.
  151. Scheepmaker W., Geels F., Smits P., Griensven L., Shahina F., Maqbool M.A. Isolation of entomopathogenic nematodes (Heterorhabditidae and Steinernematidae) from Pakistan //Pak. J. Nematol., V.14.-1996.- P. 135−136.
  152. Schmeige, D.C. The feasibility of using a neoaplectanid nematode for control of some forest insect pests //J. Econ. Entomol.- V.56.- 1963.- P. 427−431.
  153. Selvan S., Gaugler R., Campbell J.F. Efficacy of entomopathogenic nematode strains against Popillia japonica (Coleoptera: Scarabaeidae) larvae. //J. of econ. entomol.- V.87.- 1993, — P. 353−359.
  154. Selvan S., Grewal P. S., Leustek T., Gaugler R. Head chock enhances thermotolerance of infective juveniles insect-parasitic nematode, Heterorhabditis bacteriophora (Rhabditida: Heterorhabditidae) //Experiment.- V.52.-1996.- P. 727 730.
  155. Shahina F., Maqbool M. A., Soomro M.H. Nematodes and their host association in northern areas Pakistan //Pak. J. Nematol.- V.16.- № 1.1998.- P. 25−39.
  156. Shapiro D. L., Tylka G. L., Lewis L.C. Effects of fertilizers on virulence of Steinernema carpocapsae //Appl. Soil Ecol. № 3.- 1996. -P. 27−34.
  157. Shapiro-Ilan D.I., Gouge D. H., Piggott S. J., Patterson J. F.
  158. Application technology and environmental considerations for use of entomopathogenic nematodes in biological control //J. Biolog. Control.-V.38.-2006.- P. 124−130.
  159. Simons, W. R., Poiner, G. O. The ability of Neoaplectana carpocapsae (Steinernematodae: Nematoda) to survive extended period of desiccation //J. Invertebr. Pathol.- N22.- 1973.- P. 228−230.
  160. Simons W.R., Poinar G.O. The ability of Neoaplectana carpocapsae, (Steinernematidae: Nematoda) to survive extended periods of desiccation //J. Invertebr. Pathol.- 1973.- P. 222- 228.
  161. Smith C.M., Pantoja A., Robinson J.F. Development of the fall armyworm, Spodoptera frugiperda, strains from Louisiana and Puerto Rico //Envirom. Entomol.- V.16.- 1997.-P. 116−119.
  162. Theunissen J., Fransen J.J. Biological control of cutworm in lettuce //Med. Fac. Landbouww. Gent.- V.49.- № 3.- 1984.- P. 771 776.
  163. Timper P., Kaya H.K., Jaffee B.A. Survival of entomogenous nematodes in soil infested with the nematode -parasitic fungus, Hirsutella rhossiliensis (Deuteromycotina: Hyphomycetes) //Biol. Contr.- V. 1.-1991.- P. 42 50.
  164. Vanninen I. Depletion of endogenous lipid reserves in Steinernema feltiae and Heterorabditis bacteriophora and effect on infectivity //In: Proc. Int. Colloq. Invertebr. Pathol. Microb. Control. 5th «1990.-232 p.
  165. Vyas R.V., Yadav D.N. Infectivity of entomopathogenic nematode, Steinernema glaseri to two soil dwelling Lepidopterans //Ann. of Biol.-V.8.-№l.-1992.-P. 59 63.
  166. Wang J.X., Li L.Y. Entomogenous nematode research in China//Revue de Nematologie.- V.10.- № 4.-1987, — P. 483 485.
  167. White G.F. A method for obtaining infective nematode larvae from cultures //Science (Wash. D.C.).- № 66.- 1927.- P. 302−303.
  168. Williams B.C., Macdonald O.C. Critical factors required by the nematode, Steinernema feltiae for the control of the leafminers, Liromyza huidobrensis, Liriomyza broyoniae and Chronatomyia syngenesiae //Ann. Appl. Biol.-V.127.- 1995.- P.329−341.
  169. Williams E.C., Walters K.F.A. Nematode control of leafminers: Efficacy, timing and temperature /Brighton Crop Protection Conference-Pests and Diseases. Farnham, Surrey, United Kingdom.-1994.- P.1079−1084.
  170. Wolits W. M. Steinernema (Neoaplectana) and Heterorhabditis species //Manual of agriculture nematology.-New York.- M. Dekker., Nickle W.R., ed.-1991.-P 855−897.
  171. Wolits W. M. Phylogenetic classification of the family Heteroderidae (Nematoda: Tylenchida)//System. Parasit.-. № 7.1985.- P.295−328.
  172. Womersley C.Z. Dehydration, survival and anhydrobiotic potential //In:Entomopathogenic in Biological Control. Gaugler R., Kaya H.K., eds., CRC Press, Boca Raton, FL, Chap. 6.-1990.
  173. Woodring J., Kaya H. Steinernematid and heterorabditid nematodes: a handbook of techniques //South.Coop.Ser. Bull.Arkans. Agric. Exp. Stn. Favetteville.V. 331.- 1988.- P.869 874.
  174. Wright K.A. Peripheral sensilla of some lower invertebrates: the platyhelminths and nematoda//Microsc. Res. Tech. V .22.- 1992.- P.285−297.
  175. Wright PJ. Cool temperature reproduction of steinernematid and heterirhabditid nematodes //J. Invertebr. Pathol., V.60.- № 2.- 1992.- P. 148 -151.
  176. Wu H.J., Chow Y.S. Susceptibility of Pieris rapae crucivora (Lepidoptera: Pieridae) to the imported entomogenous nematode, Steinernema feltiae //Bull, of the Ins. of Zoology, Academia. Sinica, V.28.-№ 4, — 1989.- P.237−244.
  177. Yeh T., Aim S.R. Effects of entomopathogenic nematode species, rate of soil moisture, and bacteria on control of Japanese beetle (Coleoptera: Scarabaeidae) larvae in the laboratory //J. Econ. Entomol. V.85.- № 6.-1992.-P. 2144−2148.
  178. Zaki F.N. Field application of Steinernema feltiae in the form of baits against the greasy cutworm, Agrotis ipsilon in an okra field in Egypt //J. Anzeiger fur Schadlingskunde, Pflanzenschutz, Umweltschutz.-V.69.- № 4,1996.- P.79−80.
  179. Zimmerman R.J., Cranshaw W.S. Compatibility of three entomopathogenous nematodes (Rhabditida) in aqueous solutions of pesticides used in turfgrass maintenance //J. of Econom.Entomol.-V.83.-1990.-P. 97−100.
  180. Для накопления инвазионных стадий энтомопатогенных нематод и получения их рабочих суспензий (3000 особей/мл) экономически целесообразно использовать в качестве субстрата личинок домашней мухи М. domestica.
  181. По теме диссертации опубликованы следующие работы:
  182. М.А. Получение препаратов энтомопатогенных нематод и оценка их эффективности //Вестник РУДН.-№ 3.-2010.- С.
  183. В.Г., Ахмед М. А., Помазков Ю. И., ЕЬе^апу М.Е. Использование биодобавок для повышения эффективности энтомопатогенных // Защита и карантин растений.-№ 1.- 2012.-С.
  184. В.Г., Ахмед М. А., Помазков Ю. И., ЕЬе^апу М.Е. Влияние энтомопатогенных нематод на хлопковую совку при разных режимах удобрения //Ж. Защита и карантин растений.-№ 2.-2012.-С.
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?