Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Разработка новой препаративной формы биологических фунгицидов на основе клеток микроорганизмов Trichoderma viride и Pseudomonas fluorescens

Диссертация: Разработка новой препаративной формы биологических фунгицидов на основе клеток микроорганизмов Trichoderma viride и Pseudomonas fluorescens
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Показана возможность применения созданных иммобилизованных систем в качестве новых препаративных форм средств защиты растений. Разработанные формы по сравнению со свободными клетками имеют увеличенный срок хранения, повышенную адаптивность и конкурентоспособность, а также большую устойчивость к воздействию внешних факторов, включая кратковременные обработки химическими фунгицидами и бактерицидами. Читать ещё >

Содержание

  • ГЛАВА I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Суть и значение биологического метода защиты растений
      • 1. 1. 1. Механизмы действия полезных почвенных микроорганизмов
      • 1. 1. 2. Достоинства и недостатки препаративных форм биопестиц^дов
      • 1. 1. 3. Экосистема обитания биологических агентов
    • 1. 2. Природная и искусственная иммобилизация клеток микроорганизмов
      • 1. 2. 1. Иммобилизация микроорганизмов в почве и её преимущества
      • 1. 2. 2. Поведение биообъектов, вносимых в почву
      • 1. 2. 3. Способы иммобилизации клеток
      • 1. 2. 4. Выход клеток из иммобилизованного состояния в свободное
      • 1. 2. 5. Применение иммобилизованных клеток для защиты окружающей среды
      • 1. 2. 6. Иммобилизация клеток совместно с субстратом

Разработка новой препаративной формы биологических фунгицидов на основе клеток микроорганизмов Trichoderma viride и Pseudomonas fluorescens (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

подразумевает.

Интенсивное развитие технологий защищенного грунта применение биологического метода защиты растений дф улучшения экологической обстановки и снижения пестицидной нагрузки.

Большинство препаративных форм биологических препаратов на основе полезных микроорганизмов для борьбы с патогенными представляют собой споровые формы или вегетативные клетки. Также препаративные формы обладают рядом общих недостатков, а именно: коротким сроком хранения клеток, крайне низкои приживаемостью в реальных неустойчивостью к физико-химическим взаимодействиям. Э: и недостатки экосистемах, эв на основе ведут к снижению эффективности биологических препарат микроорганизмов. Разработка новых препаративных форм, ко-орые лишены данных недостатков, является актуальной задачей современной биотехнологии. Целью исследования явилась разработка новой препаративной формы I биологических фунгицидов на основе клеток гриба Trichodprma viride и бактерии Pseudomonas fluoresceins. Для достижения поставленной цели предстояло решить следующие задачи:

• Разработать принципиально новый метод иммобилизации клеток исследуемых микроорганизмов и специально подобранного для их метаболизма субстрата в Са-альгинатном геле;

• Исследовать динамику роста клеток из иммобилизованной системы;

• Подобрать высокомолекулярный субстрат для егс иммобилизации с микроорганизмами и исследоЕ концентрации этого субстрата на свойства иммобилизованной системы;

• Изучить влияние фазы развития микроорганизмов и их ко кинетические характеристики роста клеток;

• Исследовать влияние концентрации альгината натрия иммобилизованной системы клеток с субстратомразработанной совместной ать влияние нцентрации на на свойства.

• Изучить сохранение клетками своих фунгицидных свойств при совместной иммобилизации с субстратом;

• Изучить фитотоксические свойства иммобилизованной системы в I лабораторных условиях и возможность её применения в производственных условиях в качестве новой препаративной формы средств защиты растений. I.

выводы.

1. Разработан метод совместной иммобилизации клеток гриба Tviride или бактерии P. fluorescens в Са-альгинатных гранулах с высокомолекулярными субстратами (крахмалом, либо желатином).

2. Показано, что исследуемые микроорганизмы способны к образованию колоний вокруг гранул за счёт метаболизма иммобилизованных в них субстратов.

3. Изучено влияние концентрации раствора альгината натрия, начальной концентрации клеток, их физиологического состояния на параметры выхода клеток из гранул после иммобилизации (время начала выхода, удельную скорость роста колонии, максимальную степень колонизации).

4. Показано, что клетки, иммобилизованные в Са-альгинатных гранулах одновременно с высокомолекулярными субстратами, сохраняли присущие им фунгицидные свойства после выхода из гранул.

5. Показана возможность применения созданных иммобилизованных систем в качестве новых препаративных форм средств защиты растений. Разработанные формы по сравнению со свободными клетками имеют увеличенный срок хранения, повышенную адаптивность и конкурентоспособность, а также большую устойчивость к воздействию внешних факторов, включая кратковременные обработки химическими фунгицидами и бактерицидами.

6. Разработана техническая документация (ТУ и опытно-промышленный регламент) на выпуск препаративных форм на основе иммобилизованных систем и осуществлён выпуск опытных партий. Проведены успешные испытания препаративных форм в различных тепличных комбинатах в условиях защищённого грунта.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Биологические средства защиты растений нашли широкое применение в растениеводстве защищенного грунта. Однако большинство из них не обладают высокой эффективностью и чаще всего используются в качестве профилактических, нежели лечебных средств. Несмотря на то, что многие научные центры по всему миру производят постоянный поиск штаммов, обладающих высокой антагонистической активностью, и количество патентов в области биопестицидов из года в год только растёт, практические применении биопрепаратов не увеличивается. Связано это прежде всего с недостатками, касающимися препаративных форм.

В ходе лабораторных и производственных испытаний была разработана новая препаративная форма биологических фунгицидов на основе грибов Trichoderma viride и бактерий Pseudomonas fluores cens, которая обладает целым рядом преимуществ по сравнению с другими препаративными формами биофунгицидов, а именно: длительным сроком хранениявысоким уровнем приживаемости и стабильности клеток микроорганизмов в субстратах и почвенных экосистемахудобством использования и обращениябезопасностью и биодеградируемостью всех компонентов.

Основой препаративной формы является принципиально новая иммобилизованная система «полисахаридная матрица-клетки-субстрат».

Другим отличительным моментом является то, что иммобилизация была использована не для удержания клеток в объёме гранулы, как это было принято раньше для использования в биореакторах и для препаратов в области защиты окружающей среды, а с целью обеспечения максимально возможного выхода клеток в объём вокруг гранулы.

В ходе лабораторных и производственных испытаний были определены оптимальные характеристики новой препаративной формы и ориентировочная норма расхода для использования в области защищённого грунта.

В связи с тем, что штаммы-антагонисты обладают определённым направленным спектром действия, перспективным является построение интегрированной защиты, в которой чередовались бы различные штаммы, или разработка и производство препаративных форм на основе не одного, а нескольких эффективных штаммов.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Abu-Ashour J., Joy D.M., Lee H., Transport of microorganisms through soil // Water Air Soil Poll. 1994 — Vol. 75- 141−158.
  2. Acea M.J., Moore C.R., Alexander M. Survival and growth of bacterias introduced into soil 1988 — Vol. 20 — 509−515.
  3. Andrews J.H., Harris R.F. The ecology and microbiology of microorganisms on plant surface // Annu. Rev. Phytopathol. 2000. -Vol. 38-p. 145−180.
  4. Anselmo A.M., Novais J.N. Biological treatment of phenolic wastes: comparison between free and immobilized cells // Biothecnol. Lett. -1985 -Vol.14-p. 1−7.
  5. Babu G.R.V., Wolfram J.N., Chapatwala K.D. Conversion of sodium cyanide to carbon dioxide and ammonia by immobilized cells J. Ind. Microbiol. — 1992 — Vol. 9 — p. 235−238.
  6. Backman P.A., Wilson M., Murphy J.F. Bacteria for biological control of plant diseases. 1997 — In: Rechcigl NA, Rechcigl JE (eds) Environmentally safe approaches to crop disease control CRC/Lewis Press, Boca Raton, Fla., — 1997 — 95−109.
  7. Bais H.P., Park S.W., Weir T.L. How plants communicate using the underground information superhighway // Trends Plant Sci. 2004 -Vol. 9, p.26−32.
  8. Baker R. Trichoderma spp. as plant growth stimulants. // CPC Critical Reviews in biotechnology 1988 — Vol.7 — p. 240−244.
  9. Barros M.R.A., Cabral J.M.S., Novais J.M. Production of ethanol by immobilized Saccharomyces bayanus in an extractive fermentation system // Boitechnol bioeng 1987 — Vol. 29 — p. 1097−1104.
  10. Bloemberg G.V., Lugtenberg B.J.J. Molecular basis of plant growth promotion and biocontrol by rhizobacteria. // Curr.Opin. Plant Biol. -2001 -Vol.4-p. 139−149
  11. Boby V.U., Bagyaraj D.J. Biological control of root-rot of Coleus forskohlii Briq. using microbial inoculants. // World J. of Microbiol, and Biotechnol. 2003.-Vol. 19 — p. 175−180.
  12. H.Boland G.J., Kuykendall L.D. Plant-microbe interactions and biological control 1998 — Deker — New-York.
  13. Brodhagen M., Henkels D., Loper J.E. Positive auto regulation and signaling properties oh pyoluteorin, an antibiotic produced by the biological control organism Pseudomonas fluorescens Pf-5. // Appl. Envierom. Microbiol. 2004 — Vol.70 — 1758−1766.
  14. Buzas Z., Dallmann K., Szafanni Influence of pH on the growth and production of free and immobilized cells Sacchoromyces cerevisiae cells // Biotechnol. Bioeng. 1989 — Vol. 34 — p. 882−884.
  15. Calistru C., McLean M., Berjak P. In vitro studies on the potential for biological control of Aspergillus flavus and Fusarium moniliforme by Trichoderma species. Mycopatologia in press.
  16. Cassidy M.B., Lee H., Trevors J.T. Environmental application of immobilized microbial cells: a review. // J. Ind. Microbiol 1996 — Vol. 16-p. 79−101/
  17. Caunt P. Immobilisation of the cells in the linear polyacrilamide matrix: degradation of a mixture of volatile fatty acids by Alcoligenes denitrificans II Biotechnol. Lett. 1987 — Vol. 9 — p. 47−48.
  18. Chen K.S., Huang C.T. Effects of the growth of Trichosporon cytaneum in calcium alginate gel beads structure and oxygen transfer characteristics // Enzyme Microbiol. Biotechnol. 1988 — Vol. 10 — p. 284−292.
  19. Chernin L., Chet I. Microbial enzymes in biocontrol of plant pathogens and pests // In R.G. Burns and R.P.Dick (ed), Enzymes in the environment: activity, ecology and application Marcel dekker, New-York — 2002 — p. 171−225.
  20. Chet A., Baker R. Isolation and biological potential of Trichoderma hamatum from soil naturally suppressive of Rhizoctonia solani. II Phytopatology 1981 — Vol. 71 -p.268−290.
  21. Chet I., Inbar J. Biological control of fungal pathogens. // Appl. Biochem. and biotechnol. 1994 — Vol. 48 — p. 37−42.
  22. Compant S., Duffy В., Nowak J., Clement C. Minireview. Use of plant-growth promoting bacteria for biocontrol of plant diseases: principles, mechanisms of action, and future prospects. // Appl. and environm. Microbial.-2005 -p.4951−4959.
  23. Corbell N., Loper J.E. A global regulator of secondary metabolite production in Pseudomonas fluorescens Pf-5. // J. Bacteriology.- 1995-Vol.177−6230−6236.
  24. Danso S.K.A., Keya S.O., Alexander M. Protozoa and the decline of Rhizobium populations added to soil // Can. J. Microbiol. 1975 — Vol. 21-p. 884−895.
  25. De Weger L.A., A.J. van der Bij, Dekkers L.C., Simons M. Colonization of the rhizosphere of crop plants by plant-beneficial Pseudomonas. II FEMS Microbiol. Ecol. 1995.- Vol.17- p. 221−228.
  26. Duffy B.K., Defago G. Environmental factors modulating antibiotic and siderophore biosynthesis by Pseudomonas fluorescens biocontrol strains. // Appl. Envierom. Microbiol. 1999. — Vol.65- p.2429−2438.
  27. Duffy B.K., Schoten A., Raajmakers J.M. Pathogenic self defense: mechanisms to counteract microbial antagonism // Annu. Rev. Phytopathol. 2003. — Vol.641- p.501−538.
  28. England L.S., Lee H., Trevors J.T. Bacterial survival in soil: effect of clay and protozoa // Soil Biol. Biochem. 1993 — Vol. 25 — p. 525−531.
  29. Ferschl A., Loidl M., Ditzelmuller G. Continuous degradation of 3-choloroaniline by calcium-alginate entrapped of Pseudomonas acedovorans CA28: influence of additional substrates // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1991 — Vol. 35 — p. 544−550.
  30. Fravel D.R. Role of antibiosis in biocontrol of plant diseases. // Annual rev. Phytopathol. 1988 — Vol. 26 — p. 74−91.
  31. Gerhardson Biological substitutes for pesticides.// Trends Biotechnol -2002 Vol.20 — p.338−343.
  32. Ghisalberti E.L., Sivasithamparam Antibiotics produced by Trichoderma spp. // Soil Biol, and Biochem. 1991 — Vol. 23 — p. 10 111 020.
  33. Gosmann В., Rehm H.J. Influence of growth behavior and physiology of alginate-entrapped microorganisms on the oxygen consumption // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1988 — Vol. 29 — p. 554−559.
  34. НаЫе M., Alexander M. Further evidence for the regulation of bacterial populations in the soil by protozoa // Arch. Microbiol. 1977 — Vol. 13 -p. 181−183.
  35. Hallman J, Quadt-Hallman A, Mahafee W.F.and Kloepper J.W. Bacterial endophytes in agricultural crops. // Can.J.Microbiol 1997 -Vol.43 -p.895−914.
  36. Harman G.E. Myths and dogma of biocontrol: changes in perception derived research of Trichoderma harzianum T-22 // Plant Dis.-2000 -Vol.84-p. 377−393.
  37. Heijnen C.E., J.D. van Elsas, Kuikman P.J. Dynamics of Rhizobium leguminosarum biovar trifolii introduced into soil- the effect of betonite clay on predation by protozoa // Soil Biol. Biochem. 1988 — Vol. 20 -p. 483−488.
  38. Heijnen C.E., J.D. van Elsas, Kuikman P.J. Improvements to the use of betonyte clay as a prospective agent, increasing survival levels of bacteria, introduced into soil // Soil Biol. Biochem. 1992 — Vol. 24 -p. 533−538.
  39. Jackson S.J., Leek R., Microencapsulation and the food industry // Lebensm Wiss. Technol. Vol. 25 — p. 289−297.
  40. Jones D.G. Exploitation of microorganisms. // Chapman Hall London — 1993.
  41. Barea J-M., Azcon R. Mycorhizospere interactions to improve plant fitness and soil quality // Antonie van Leeuwenhoek 2002 — Vol. 81 -p. 343−351.
  42. Lancy E.D., Tuovinen O.H. Ferrous ion oxydation by Thiobacillus ferrooxydans immobilized in calcium alginate // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1984 — Vol. 20 — p.94−99.
  43. Lefebvre .J, Vincent J-C. Diffusion-reaction-growth coupling in gel-immobilized cell systems: model and experiment // Enzyme Microb. Technol.- 1995-Vol. 17-p. 276−284.
  44. Lodewyckx C., Vangronsveld J., Porteous F. Entophytic bacteria and their potential applications // Crit. Rev. Plant Sci. 2002 — Vol.21 -p.583−606.
  45. Loper J.E., Henkels M.D. Availability of iron to Pseudomonas fluorescens in rhizosphere and bulk soil evaluates with an ice nucleation reporter gene // Appl. Environ. Microbiol 1997 — Vol. 63 — p.99−105.
  46. Lorito M., Woo S.L., Ruocco M. The molecular cross-talk between Trichoderma, plants and pathogens provides new tools for disease control // 9-th international workshop on Trichoderma and Gliocladium, Vienna, Austria 2006.
  47. McLoughlin A.J. Controlled release of immobilized cells as a strategy to regulate ecological competence of inocula // Adv. Biochem. Eng./Biotechnol. 1994 — Vol. 51 — p. 1−45.
  48. Michrina J., Michalikova A., Konacik T. Antibiosis as a possible mechanism of antagonistic action of Trichoderma harziannum against Fusarium culmorum II Ochrana rostlin 1995 — Vol.31 — p. 177−184.
  49. Milner J.L., Silo-Suh L., Lee J.C. Production of kanosamine by Bacillus cereus UW 85 // Appl. Environ. Microbiol. 1996 — Vol. 63 — p. 30 613 065.
  50. Montesinos E., Bonatera A. Dose-response models in biological control of plant pathogens. An empirical verification.// Phytopathol. 1996 -Vol. 86−464−472.
  51. Montesinos E. Development, registration and commercialization of microbial pesticides for plant protection // Int. Microbiol. 2003 -Vol.6−245−252.
  52. Montesios E., Bonaterra A., Badosa E., Plant-microbe interactions and the new biotechnological methods of plant disease control // Int. Microbiol. 2002 — Vol.5 — p. 169−175.
  53. Nakayama Т., Homma Y., Hashidoko J. Possible role of xanthobaccins produced be Stenotrophmonas sp. strain SB-K88 in suppression of sugarbeet damping-off disease // Appl. Environ. Microbiol. 1999 — Vol. 65 -p.4334−4339.
  54. Papavizas G.C. Trichoderma and Gliocladium: biology, ecology and potential for biological control. // Annual Rev. Phytopathol. 1985 -Vol. 23-p. 23−54.
  55. Paulitz T.C., Belanger R.B. Biological control in green-house systems. / Annu. Rev. Phytopatol. Vol. 39 — p. 103−133.
  56. Pilar Pons M., Carmen Fuste M. Uranium uptake by immobilized cells of Pseudomonas strain EPS 5028 // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1993 -Vol. 39-p. 661−665.
  57. Portier R.J., Fujisaki K. Continuous biodegradation and detoxification of chlorinated phenols using immobilized bacteria // Toxity assessment 1986-Vol. 1 — p. 501−513.
  58. Powell K.A., Jutsum A.R. Technical and commercial aspects of biocontrol products//J. Pestic. Sci. Vol. 37-p. 315−321.
  59. Pristchepa L., Voitka D. Use of a new biofiingicide Lignorin {Trichoderma harzianum S-4) for plant protection against diseases. // Bulletin of the polish Academy of Sci., Biol. Sci. 2003. — vol.51 -nub.3.
  60. Prusky D., Yakoby N. Pathogenis fungi: leading or led by ambient pH? // Mol. Plant Pathol. 2003 — Vol.4 — 509−516.
  61. Rhodes D.J. Formulation of biological control agents. In: Exploitation of Microorganisms // Chapman and Hall London, UK — 1993 — p. 411 439.
  62. Schroth M., Hancock J. Selected topics in biological control // Annu. Rev. Microbiol. -1981 Vol. 35 — p. 453−476.
  63. Shreve G.S., Vogel T.M. Comparison of substrate utilization and growth kinetics between immobilized and suspended Pseudomonas cells // Biotechnol. Bioeng. 1993. — Vol. 41 — p. 370−379.
  64. Siahpush A.R., Lin J.E., Wang H.Y. Effects of adsorbents on degradation of toxic organic compounds by coimmobilized systems // Biotecnol. Bioeng. 1991. — Vol. 39 — p. 619−628.
  65. Tanaka H., Matsumura M., Veliky I.A. Diffusion characteristics of substrates in Ca-alginate beads // Biothechnol. Bioeng. 1984. — Vol. 26-p. 53−58.
  66. Toyoda H., Utsumi R. Method for the prevention of Fusarium diseases and microorganisms used for the same. // U.S. Patent 4,988,586 -January 1991.
  67. Van Elsas J.D., Heijen C.E. Methods for the introduction of bacteria into soil: a review.//Biol. Fertil. Soil-1992.-Vol. 14-p. 14−22.
  68. Van Loon L.C., Bakker P.A.H.M, Pieterse C.M.J. Systemic resistance induced by rhizosphere bacteria.// Annu. Rev. Phitopatol. 1998 -Vol.35-p. 453−483.
  69. Vargas R., Hattori T. Protozoan predation of bacterial cells in soil aggregates // FEMS Microbiol. Ecol. 1986. — Vol. 38 — p. 467−472.
  70. Weir S.C., Lee H., Trevors J.T. Survival of free and alginate-encapsulated Pseudomonas aeruginosa UG2Lr in soil treated with disinfectants // J. Appl. Bacteriol. 1995a.
  71. Welbaum G., Sturz A.V., Dong Z., Nowak J. Fertilizing soil microorganisms to improve productivity of agroecosystems // Crit. Rev. Plant Sci. 2004 — Vol.23 — p.175−193.
  72. Weller DM. Biological control of soil born plant pathogens in the rhizospere with bacteria // Annu. Rev. Phytopathol. 1988 — Vol.26 — p. 379−407.
  73. Wheayley R.E. The consequences of volatile organic compounds mediated bacterial and fungal interactions // Antonie van Leeuwenhoek -2002-Vol. 81 -p. 357−364.
  74. Whipps J.M., Lumsden R.D., Biological control of Pythium species. // Biocontrol sci. and technol. 1991 — Vol. 1 — p.75−90.
  75. Wipps J.M. Microbial interactions and biocontrol in the rhizosphere // J. Exp. Bot. 2001 — Vol. 52 — p.487−511.
  76. Wong P.K., Lam K.C., So C.M. Removal and recovery of Си (II) from industrial effluent by immobilized cells of Pseudomonas putida II-11 // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1993. — Vol. 39 — p. 127−131.
  77. Zhang L., Brich R.G. The gene for akbicidin detoxification from Pantoae disrersa encodes an esterase and attenuates pathogenesity of Xanthomonas albilineans to sugarcane.// Proc.Natl. Acad. Sci. USA -1997- Vol.94 p.9984−9989.
  78. Алимова Ф.К. Trichoderma/Hypocrea (Fungi, Ascomycetes, Hypocreals): таксономия и распространение. // Казанский государственный Университет. Казань. — 2005, стр. 264.
  79. Ф.К. Промышленное применение грибов рода Trichoderma // Казанский государственный Университет. Казань -2006, стр. 210.
  80. И.А., Гусарова Г. А., Паников Н. С. Биотрансформация азотсдержащих соединений в процессе непрерывной очистки стоков свинокомплексов иммобилизованными клетками // Москва «Микробиология» 1996, т.65, № 5, с.621−626
  81. Н.Р. Практикум по микробиологии // Москва, Агропромиздат, 1998, с. 155.
  82. А.К., Джалилов Ф. С., Белошапкина О. О. Защита овощных культур и картофеля от болезней // Москва. 2006, стр. 352.
  83. И.П., Зенова Г. М. Биология почв // Москва 1989, стр. 238.
  84. Биотехнология под.ред. Баева А. А. // Издательство «Наука». -Москва. 1984.
  85. С.П., Броделиус П., Кабрал И. М. «Иммобилизованные клетки и ферменты. Методы. Москва, Мир, 1988, стр. 215.
  86. И.А. Использование хитозана и его производных для иммобилизации ферментов / Тез. докл. науч-практ. конф. «Новые перспективы в использовании хитина и хитозана», Москва, 1999, с.265−267.
  87. ВНИИБЗР «Культивирование и применение грибов против вредителей», 1985, стр. 48−56.
  88. Т.Г. Биотехнология // Изд-ва СО РАН, Новосибирск, 1999, стр. 253.
  89. Л.И. Промышленная микробиология // Изд-во Московского Государственного Университета. 1989, стр. 296.
  90. Вредители тепличных и оранжерейных растений, под.ред. Ахатова А.К.и Ижевского С. С. //М.: Товарищество Научных Изданий КМК, 2004, стр. 307.
  91. Д. Иммобилизация клеток и ферментов // Москва «МИР», 1988, стр. 162.
  92. В.И. Самоорганизация в макропористом геле с иммобилизованными клетками. Кинетическая модель биоселективной мембраны сенсора // Доп.нац. АН Украины, № 2, с.175−179.
  93. Т.И., Бондаренко Г. И. Использование иммобилизованных в каррагинан клеток микроорганизмов дляполучения органических веществ // Москва, Успехи химии, 1990, т.59, № 3, с.509−521.
  94. Т.Г. Структура бактериальных сообществ почв. М.: Академкнига, 2002, 281 стр.
  95. Р., Эллиот Д., Элиот У., Джонс К. Справочник биохимика, Москва «Мир», 1991, стр.
  96. Д.Г. Почва и микроорганизмы. М.: Изд-во МГУ, 1987, стр. 256.
  97. Д.Г., Бабьева И. П., Зенова Г. М. Биология почв. М.: изд-во Московского Университета. 2005, стр. 358.
  98. А.Е., Кувичкина Т. Н., Аринбасарова А. Ю. Деградация 2,4-динитрофенола свободными и иммобилизованными клетками Rhodococcus erythropolis HL РМ-1 // «Прикладная микробиология и биотехнология», 2004, т.40, № 3, с.307−311.
  99. К.А. Иммобилизованные клетки микроорганизмов и их применение. В кн.: Иммобилизованные клетки. Пущино, 1978, с.5−36.
  100. К.А. Иммобилизованные клетки. В кн.: Итоги науки и техники. Сер.микробиология.М.:ВИНИТИ, 1981, 11, с.55−157.
  101. Н.А. Микроорганизмы почвы и высшие растения.М., 1958, стр. 376.
  102. Лабораторный практикум по общей биотехнологии // М.: ИЦ РХТУ имени Менделеева, 2001, стр. 68.
  103. О.Н. Бактерии p. Pseudomonas и Azotobacter как объекты сельскохозяйственной технологии // М.: Наука. 2005 стр. 165.
  104. А.А., Аринбасарова А. Ю., Кувичкина Т. Н., Балашов С. В., Решетилов А. Н. Деградация п-толуолсульфоната иммобилизованными клетками Comamomas testosteroni BS 1310 // «Прикладная биохимия и микробиология», 2005, т.41, № 5, с.521−524.
  105. Ю.Г., Кузнецова М. В., Козлов С. В., Максимов А. Ю. Влияние различных способов иммобилизации на нитрилгидратазную активность штамма Rhodococcus sp.gtl//B кн: Современные проблемы экологии, микробиологии и иммунологии. -Пермь, 2004.- с.93−101.
  106. В.Г. Агрохимия. // М.: изд. МГУ, 2003 г, стр. 268.
  107. Т.Г. Почвенная микология. М.:Из-во МГУ — 1976, стр. 321.
  108. Общая биотехнология. Лабораторный практикум. //Москва, Министерство образования РФ. РХТУ имени Менделеева, 2001, стр.57
  109. В.А., Новикова Н. Н., Бойкова И. В. и др «Новые препараты для комплексной защиты растений от болезней разной этиологии», Доклады Российской Академии сельскохозяйственных наук, 2004, № 6, стр. 17−21
  110. Н.С. Кинетика роста микроорганизмов // Москва «Наука», 1991, стр. 312.
  111. С., «Основы культивирования микроорганизмов и клеток» Москва, Мир, 1978, стр. 331.
  112. Практикум по микробиологии под ред.А. И. Нетрусова // М.: Академия, 2005, стр. 606.
  113. Е.Л. Физиология и биохимия представителей p.Pseudomonas // Москва «Наука», 1986, с. 151−156.
  114. Н.М., Мотина Л. Г., Ерещенко Л. И. Исследование свойств иммобилизованной протеазы // Прикладная биохимия и микробиология, 1978, № 4, стр.554−557.
  115. Ю.Я., Абдуллаева Л. В., Ефременко Е. Н., Райнина Е. И. Иммобилизованные дрожжи в биотехнологии переработки сыворотки.// Тез. докл. науч.-практ.конф. «Вклад науки в развития маслоделия и сыроделия», Углич, 15−17.09.1994, Россия, с. 156.
  116. Г. Ш. Грибы рода Триходерма и их использование на практике. Изд-во «Наука» Казахской ССР. Алма-Ата, 1982, стр. 248.
  117. А.П., Райнина Е. И., Лозинский В. И., Спасов С. Д. Иммобилизованные клетки микроорганизмов // Москва, Изд-ва МГУ, 1994, стр. 228.
  118. Министерство сельского хозяйстваи продовольствия РФ. ООО «РостПромТорГ»
  119. Закрытое Акционерное Генеральному директору1. Общество «Калининское"170 015, Тверь, ул, Димитрова, 52 Тел. (4822) 31−63−39, 31−67−25
  120. Факс (4822) 31−54−09 № от DLOfiSjftOfc. На№от
  121. Акт о производственных испытаниях.
  122. Хозяйство: ЗАО «Калининское» г. Тверь Теплица 4 га.
  123. Дата начала эксперимента: 06.01.2006. Дня» окомпяиив чтесттеримвнта: 29.06,2006. I
  124. Дата отбора проб: 9−10.02., 840.03., 12−14.04., 10−12.05.2006. | Методика отбора проб: отбор среднего образца по всему ' объему субстрата с высевом на питательные среды, |
  125. Кем отобрана проба: Голубева В В. Заболевание: Корневые гаили, питиоз, фузариоз, верпициллез. Препарат: Иммобилизованный триходермив. Культура: Огурец пчелоопьшемый Fj Атлет. Субстрат: Экоторф торфоплита, Площадь, га: 1 га
  126. SEP-06 11:12 ZflO KfiRELSKIY 201 Ml• fti^T1. M-q ?
  127. J ¦ ^ ^ ~ сёшл^иг^) aji Soy-q-меч*,** 1 Г. Щ
  128. Qf > d-Ь.ОЪ ^0cplu4> ^jo^rvf KJ^Ci
  129. JLUAJLJirt^im ьЛ* К С: .^iC^&O^^a^h fa № l2*-fi?C (1. Уфс&СОгч l&kAUt^o L? 3-V, la. 7
  130. CIoclJ^JUlu^. fxClC^tXuA 1g V A a1. Те*,. , (c)T^ .- б? cfw^TMл ^ 1. TOTAL P.01 145
  131. Акт о производственных испытаниях препарата иммобилизованный’триходермин.
  132. Цель исследования: исследование уровня встречаемости микроорганизма Trichodermaviride после внесения в субстрат для выращивания зеленных культур
  133. Кем отобрана проба (Ф.И.О.): Будынков Н.И.
  134. Хозяйство (Предприятие): ЗАО «Агрофирма Белая Дача"1. Теплица: № 491. Площадь обработки: 600 м²
  135. Субстрат: торфосмесь на основе торфа «Росторфинвест» с добавлением удобрения «Кемира».
  136. Методика внесения: внесение раствора препарата иммобилизованный триходермин через бочки ОЗГ-400 в 632 лотка по 900 л торфосмеси каждый.1. Результаты испытанийнаименование обнаруженных микроорганизмов Обнаруженная концентрация Метод исследования
  137. Trichoderma viride 10 От£ конструк чашки Пег после юр проб с ций и рассев на 1ри через 7 дней обработки1. Agrobacterium 74 *1. Pseudomonas 48
  138. Заключение: по сравнению с контролем отмечалось полное отсутствие Erwinia carotovora и Pythium debaryanum. Произошло увеличение уровня грибов Trichoderma viride в 3 раза.
  139. Фамилия и подпись ответственного лица: Юваров В.!1. М.П.патогенных грибов вс гречаемости
  140. Акт о производственных испытаниях препарата иммобилизованный '1. Триходермин.
  141. Цель исследования: исследование уровня встречаемости микроорганизма Trichodermaviride после обработки конструкций
  142. Кем отобрана проба (Ф.И.О.): Будынков Н.И.
  143. Хозяйство (Предприятие): ЗАО «Агрофирма Белая Дача"1. Площадь обработки: 2га
  144. Trichoderma viride 100% Отб|>р проб с конструкций и рассев на чашки Пет|ри через 7 дней после обработки
  145. Заключение: после нанесения препарата на обледеневшие части констр) показал 100% встречаемость гриба Trichoderma viride и отсутствие постор микрофлоры.
  146. Фамилия и подпись ответственного лица: Юваров В.Н.1. М.П.й отбор проб ей
  147. Акт о производственных испытаниях препаратов иммобилизованныйпланриз.
  148. Цель исследования: исследование уровня встречаемости микроорганизма Pseudomonas fluorescens.
  149. Кем отобрана проба (Ф.И.О.): Будынков Н.И.
  150. Хозяйство (Предприятие): ЗАО «Агрофирма Белая Дача"1. Теплица: № 58.1. Субстрат: торфосмесь.1. Культура: огурец.1. Сорт: «Кураж».
  151. Дата внесения: 10.07.2005.
  152. Дата отбора проб: 20.07.05.
  153. Методика отбора проб: из субстрата, корневой шейки и корневой системы. Методика внесения: пролив по горшочкам.
  154. Результаты влияния препаратов серии «планриз» на развитие рассады огурца.
  155. Вариант Длина стебля, см Длина корня, см Масса растения г1. Контроль 31 8.1 24.8
  156. Планриз обыкн. 25 8.6 28.21. ПИМ 30 9.0 27.21. ПИМ Fe 30 9.8 23.81. HCPoos 6 1.4 4.9
  157. Подлив под корень иммобилизованного планриза практически никак не повлиял на рост стебля в длину.
  158. В то же время отмечалось значительное увеличении длины корня: добавлением железа значимое, в варианте с иммобилизованным планризом без добавления железа — в виде заметной тенденции.
  159. Масса растений в варианте с иммобилизованным планризом была выше, чем в необработанном контроле. При добавлении железа в ПИМ масса растений в сравнении в необработанным контролем не увеличивалась.
  160. Фамилия и подпись ответственного лица: Юваров В.1. М.П.
  161. ОБЩЕСТВО С ОГРАНИЧЕННОЙ ОТВЕТСТВЕННОСТЬЮ «РостПромТорг"1. СОГЛАСОВАНО1. Председатель1. Госхимкомиссии2006г.
  162. Биопрепарат на основе иммобилизованных в биоразлагаемом полимере микроорганизмов «Иммобилизованный Планриз»
  163. Технические условия ТУ 9192−006−76 399 909−20 061. Срок введения с ««2006.
  164. СОГЛАСОВАНО Заместитель главного Государственного санитарного врача РФ2006г.
  165. Главный государственный санитарный врач
  166. Санитарно-эпидемиологическоезаключение1. Москва 2006 г.
  167. Препарат обладает способностью подавлять широкий спектр фитопатогенных грибов, возбудителей корневых и при корневых гнилей.
  168. По органолептическим, физико-химическим и микробиологическим показателям продукт должен соответствовать требованиям и нормам, указанным в таблице 1.
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?