Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Антиоксидантная система семенников крыс при физических нагрузках разной интенсивности

Диссертация: Антиоксидантная система семенников крыс при физических нагрузках разной интенсивности
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Актуальность работы. Чрезмерные физические нагрузки (ЧФН), превышающие адаптационные возможности организма и приводящие к их истощению нередко встречаются’в практике физической культуры, спорта,.в военном деле, на тяжелом производстве, в том числе и сельскохозяйственном, например, при длительных перегонах животных (Антонов, 2009; Корнякова и др., 2009; Роженцов, Полевщиков, 2006; Kavazis et al… Читать ещё >

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Свободнорадикальные процессы и их биологическая роль
    • 1. 2. Образование активированных кислородных метаболитов при катаболизме пуриновых мононуклеотидов
    • 1. 3. Свободнорадикальные процессы и антиоксидантная защита при физических нагрузках и других гипоксических состояниях
    • 1. 4. Применение рибозы при гипоксических состояниях
    • 1. 5. Роль селена в функционировании антиоксидантной’системы
  • ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Характеристика подопытных животных и дизайн исследования
    • 2. 2. Моделирование физических нагрузок у крыс
    • 2. 3- Схема исследования влияния-экзогенных веществ на антиоксидантную систему при чрезмерных физических нагрузках
      • 2. 4. Забор материала и подготовка проб для исследования
      • 2. 5. Методы исследования.49г
        • 2. 5. 1. Проведение биохимического анализа крови и семенников
        • 2. 5. 2. Проведение иммуноферментного анализа
        • 2. 5. 3. Проведение гематологических исследований
      • 2. 6. Статистический анализ полученных данных
  • ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 3. 1. Состояние антиоксидантной системы и инкреция тестостерона. у крыс при разных режимах физической нагрузки
      • 3. 1. 1. Работоспособность крыс при оптимальных и чрезмерных физических нагрузках
      • 3. 1. 2. Состояние окислительных процессов у крыс при разных режимах физической нагрузки
      • 3. 1. 3. Антиоксидантная защита эритроцитов при разных режимах физической нагрузки
      • 3. 1. 4. Состояние антиоксидантной защиты в семенниках крыс, подверженных оптимальным и чрезмерным физическим нагрузкам
      • 3. 1. 5. Взаимосвязь показателей характеризующих состояние антиоксидантной системы в крови и семенниках при чрезмерных физических нагрузках
      • 3. 1. 6. Состояние инкреторной функции семенников при разных режимах физической нагрузки
    • 3. 2. Состояние антиоксидантной системы и инкреция тестостерона у крыс при чрезмерных нагрузках на фоне введения рибозы
      • 3. 2. 1. Влияние рибозы на работоспособность крыс
      • 3. 2. 2. Влияние рибозы на окислительные и антиокислителные процессы у крыс в условиях чрезмерных физических нагрузок
      • 3. 2. 3. Состояние антиоксидантной системы в семенниках крыс при чрезмерных физических нагрузках на фоне введения рибозы
      • 3. 2. 4. Влияние экзогенной рибозы на секрецию тестостерона в условиях чрезмерных физических нагрузок
    • 3. 3. Антиоксидантная защита и инкреция тестостерона у крыс при чрезмерных физических нагрузках на фоне введения селенита натрия
      • 3. 3. 1. Влияние селенита натрия на работоспособность крыс
      • 3. 3. 2. Влияние селенита натрия на окислительные и антиокислителные процессы у крыс в условиях чрезмерных физических нагрузок
      • 3. 3. 3. Влияние селенита натрия на антиоксидантную систему семенников крыс при чрезмерных физических нагрузках
      • 3. 3. 4. Влияние селенита натрия на инкрецию тестостерона в условиях чрезмерных физических нагрузок
  • ГЛАВА 4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ
  • ВЫВОДЫ

Антиоксидантная система семенников крыс при физических нагрузках разной интенсивности (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность работы. Чрезмерные физические нагрузки (ЧФН), превышающие адаптационные возможности организма и приводящие к их истощению нередко встречаются’в практике физической культуры, спорта,.в военном деле, на тяжелом производстве, в том числе и сельскохозяйственном, например, при длительных перегонах животных (Антонов, 2009; Корнякова и др., 2009; Роженцов, Полевщиков, 2006; Kavazis et al., 2004; Schuback, Essen-Gustavsson, 2000; Sewani-Rusike et al., 2000). ЧФН приводят к снижению спортивных результатов, производительности труда, появлению переутомленияразвитию предпатологических состояний в различных системах организма (Бровкина и др., 2008; Moir et al., 2010; Podhorska-Okolow et al., 2006; Somani, Husain 1996), в том числе органах репродуктивной системы (Aitken, Roman, 2008; Aksoy et al., 2006; Hackney et al., 2005; Manna et al., 2003).

Негативное их воздействие на организмсвязывают со многими факторами. Влитературе имеются разрозненные сведения об изменении уровня ряда биохимических показателей при этом состоянии. Данные об/ увеличении в крови концентрации лактата при физических нагрузках высокой интенсивности приведены в работах (Гришина и др., 2008; Дементьева, 2003; Мохан и др., 2001; Cochran et al., 2010; Goto, 2009; Lucia et al., 2001; Mori et al., 1999), Р-оксибутирата — (Макарова, Холявко, 2006; Теркотт и др., 1998), мочевины — (Макарова, Холявко, 2006; Kraemer et al., 2009; Lima, 2001), креатинина и триглицеридов. — (Давыдович, 2009). В" исследованиях (Hellstein et al., 2004; Tullson et al1., 1996) отмечено возрастание в крови спортсменов гипоксантина и мочевой кислоты после интенсивной физической нагрузки. Уровень урикемии не возвращался к норме даже 10 часов спустя (Hellstein et al., 2004).

Воздействие на организм ЧФН сопровождается нарушением инкреторной функции семенников, о чем свидетельствует уменьшение в крови концентрации тестостерона (Cormack et al., 2008; Grandys et al., 2009; Hackey et al., 2003; Hu et al., 2008; Jankowska et al., 2009; Lucia et al., 2001). Недостаточная выработка последнего приводит к нарушению сперматогенеза (Aitken, Roman, 2008; Mingoti et al., 2003). Однако до сих пор нет ясного понимания механизмов метаболических нарушений, происходящих в этих условиях как в целостном организме, так и в семенниках (Hackney et al., 2005; Lane et al., 2010). Эти механизмы могут быть связаны с острым нарушением метаболизма пуринов (ОНМП), описанным впервые на модели клинической смерти и реанимации (Киреев, Конвай, 1976). В дальнейшем было установлено, что ОНМП является типовым патологическим процессом, развивающимся при различных гипоксических состояниях (Золин, 2001; Конвай, Золин, 2003; Конвай, 2009). Суть ОНМП заключается в усилении катаболизма аденозинтрифосфата до гипоксантина и дальнейшего его окисления до мочевой кислоты. Этот процесс сопряжен с усиленной генерацией ксантиноксидазой активированных кислородных метаболитов (АКМ), истощающих антиоксидантную систему (АОС) и приводящих к чрезмерной липопероксидации мембранных структур в. различных органах (Конвай, Золин, 2003). Не исключено, что ОНМП и перекисное окисление липидов (ПОЛ), индуцированное им, является пусковым фактором в нарушении эндокринной функции семенников при ЧФН. Поскольку АКМ и продукты ПОЛ обезвреживаются антиоксидантной системой, актуальным является изучение ее функционирования в семенниках при ЧФН.

В научной литературе недостаточно данных об ОНМП, сопряженных с ним свободнорадикальных процессах и антиоксидантной защите семенников, а также их влиянии на инкрецию тестостерона в условиях ЧФН.

Цель работы: охарактеризовать антиоксидантную систему семенников крыс при физических нагрузках разной интенсивности и выявить ее взаимосвязь с окислительными процессами и инкрецией тестостерона.

Задачи исследования:

1. Изучить состояние антиоксидантной защиты семенников и инкреции ими тестостерона в условиях физических нагрузок разной интенсивности.

2. Установить взаимосвязь между показателями, характеризующими состояние окислительных, антиокислительных процессов и инкрецию тестостерона в крови и семенниках, при чрезмерных физических нагрузках.

3. Оценить окислительные процессы, антиоксидантную защиту и инкреторную функцию семенников крыс, подвергшихся чрезмерным физическим нагрузкам на фоне введения рибозы.

4. Изучить изменение активности процессов, перекисного окисления липидов, состояние антиоксидантной защиты и эндокринной функции семенников в условиях чрезмерных физических нагрузок при введении в организм крыс селенита натрия.

Научная новизна исследования. Установлено, что чрезмерные физические нагрузки приводят к повышению интенсивности в семенниках крыс свободнорадикальных процессов, снижению уровня восстановленного глутатиона, подавлению активности супероксиддисмутазы, каталазы, глутатионпероксидазы, глутатионредуктазы и глюкозо-6фосфатдегидрогеназы, а также к уменьшению секреции, тестостерона данными органами. Впервые установлено, что-экзогенная рибоза обладает гонадопротекторным эффектом в условиях ЧФН. Благодаря введению данного углевода в организм усиливается реутилизация пуриновых мононуклеотидов, ' улучшается работа пентозного цикла семенников, снижается интенсивность ПОЛ и нормализуется секреция половых гормонов. Установлено, что введение селенита натрияпри. ЧФН способствует улучшению работы АОС семенников, нормализации окислительных процессов и эндокринной функции данных органов.

Практическая значимость работы. Данные об изменении биохимических показателей в крови и семенниках крыс и корреляции между ними, изложенные в диссертации, могут послужить основой при разработке биохимических тестов для оценки состояния репродуктивной системы у человека и животных, находящихся в условиях ЧФН. Данные о* влиянии рибозы и селенита натрия на функционирование семенников в условиях ЧФН могут быть использованы дляразработки методов лечения тестикулярной недостаточности у человека и животных, подвергающихся физическим нагрузкам высокой интенсивности. Положения, выносимые на защиту:

1. Чрезмерные физические нагрузки приводят к повышению интенсивности в семенниках крыс свободнорадикальных процессов, угнетению антиоксидантной системы и уменьшению инкреции тестостерона данными органами.

2.

Введение

рибозыкрысам при чрезмерных физических нагрузках снижает интенсивность катаболизма пуринов и свободнорадикальных процессов в семенниках, повышает антиоксидантную защиту и инкрецию тестостерона.

3.

Введение

селенита натрия крысамподвергшимся чрезмерным физическим нагрузкам,. снижает интенсивность перекисного окисления липидов в семенниках, повышает эффективность антиоксидантной защиты, сохраняет их эндокринную функцию.

Апробация работы. Основныематериалы диссертации доложены и представлены на 12-й и 13-й всероссийской научно-практической конференции молодых ученых «Проблемы, совершенствования^ физической* культуры, спорта и олимпизма» (Омск, 2007, 2008), международном-форуме по проблемам науки, техники и образования «III тысячелетие — новый мир» (Москва,.2009), 2-й международной дистанционной научной конференции и • конкурсе проектов «Инновации в медицине» (Курск, 2009), межрегиональной1 научно-практической конференции «Инновационные технологии диагностики и лечения в здравоохранении» (Омск, 2009), 14-й, 15-й и 16-й конференциях профессорско-преподавательского состава и аспирантов Омского государственного аграрного университета (Омск, 2008, 2009, 2010).

Публикации. По теме диссертации опубликовано 12 научных работ, в том числе 2 в журналах, рекомендованных ВАК Министерства образования и науки РФ. Получено свидетельство ФГУП «ВНТИЦ» на интеллектуальный продукт № 73 200 800 072 «Величина груза и объем нагрузки при вынужденном плавании крыс как средство моделирования физических нагрузок в биологических исследованиях».

Объем и структура диссертации. Работа изложена на 150 страницах машинописного текста, содержит 19 таблиц и 21 рисунок. Состоит из введения, обзора литературы, материалов и методов исследования, результатов исследования, обсуждения результатов исследования, выводов и библиографического списка, который включает 328 источников.

выводы.

1. Чрезмерные физические нагрузки приводят к повышению интенсивности в семенниках свободнорадикальных процессов, снижению уровня восстановленного глутатиона, торможению активности ферментов антиоксидантной системы, а также к уменьшению инкреции тестостерона данными органами.

2. Между показателями, характеризующими окислительные, антиокислительные процессы и инкрецию тестостерона в крови и семенниках крыс, находящихся под действием чрезмерных физических нагрузок, существует тесная взаимосвязь.

3.

Введение

рибозы крысам, подвергшимся чрезмерным физическим нагрузкам, снижает в семенниках интенсивность свободнорадикальных процессов, предотвращает истощение фонда восстановленного глутатиона, снижение активности ферментов антиоксидантной защиты и торможение инкреции тестостерона данными органами.

4.

Введение

крысам селенита натрия при чрезмерных физических нагрузках повышает эффективность антиоксидантной защиты и снижает выраженность липопероксидации мембранных структур клеток семенников, сохраняет их эндокринную функцию.

Показать весь текст

Список литературы

  1. A.B. Перекисное окисление липидов у спортивных лошадей при тренинге // С.-х. биол. 2009. — № 2. — С. 65−68.
  2. И.Л., Лосенок С. А., Прокопенко Л. Г. Тромбоэритроцитарная иммуносупрессия и ее коррекция стабилизаторами клеточных мембран при интенсивных физических нагрузках // Патологическая физиология и экспериментальная терапия. — 2008. — № 2. — С. 20−22.
  3. А.Ф. Оксид азота в биомедицинских исследованиях // Вестн. РАМН. 2000. — № 4. — С. 3−5.
  4. O.A. О повышенных потерях макро- и микроэлементов при занятиях спортом и целесообразности их компенсации биологически активными добавками // Вопр. питания. 2009. — Т. 78, № 2. — С. 67—71.
  5. Ю.А. Свободные радикалы в биологических системах // Соросовский образовательный журнал. 2000. — Т. 6, № 12. — С. 13−19.
  6. Ю.А. Активные формы кислорода и азота: значение для диагностики, профилактики и терапии // Биохимия. — 2004. — Т. 69, № 1.-С. 5−7.
  7. Ю.А., Проскурнина Е. В. Свободные радикалы и клеточная хемилюминесценция // Усп. биол. химии. 2009. — Т. 49. — С. 341−388.
  8. С.Н., Шабунина Е. И., Переслегина И. А. Активность глутатионзависимых ферментов эритроцитов при хронических заболеваниях печени у детей // Лаб. дело. 1990. — № 8. — С. 19−21.
  9. A.B. Влияние пренатального стресса на процессы окислительной модификации белков и активность Zn-Cu-супероксиддисмутазы в головном мозге крыс: дис.. канд. биол. наук. -СПб, 2006.-122 с.
  10. В.В. Фармакологическая коррекция энергетического обмена ишемизированного миокарда. М.: Антекс, 1993. — 252 с.
  11. И.В., Мазо B.K. Селен в питании: краткий обзор // Medicina Altera. 1999. — № 4. — С. 18−22.
  12. А.Г. Изнанка метаболизма // Биохимия. 1996. — Т. 61, № 11.-С. 2018−2939.
  13. H.A., Папазян Т. Т. Селен в питании: растения, животные, человек. М.: Печатный город, 2006. — 254 с.
  14. Е.В., Хаустова, Я.В., Погорелова В. Г. Ускорение утилизации лактата под влиянием гипоксена после напряженной мышечной работы // Бюл. экспер. биол. 2008. — Т. 145, № 2. — С. 158−161.
  15. И.И. Мониторинг концентрации лактата и кислородного статуса для диагностики и коррекции гипоксии у больных в критическом состоянии // Клин. лаб. диагн. 2003. — № 3. — С. 25−32.
  16. Е.Е. Роль активных форм кислорода в качестве сигнальных молекул в метаболизме тканей при состояниях окислительного стресса // Вопр. мед. химии. 2001. — Т. 47, № 6. — С. 561−581.
  17. Н.К., Меныцикова Е. Б., Вольский H.H., Козлов В. А. Внутриклеточный окислительный стресс и апоптоз // Усп. совр. биол. -1999. Т. 119, № 5. — С. 44050.
  18. Н.К., Ланкин В. З., Меныцикова Е. Б. Окислительный стресс: Биохимические и патофизиологические аспекты. — М.: Наука /Интерпериодика, 2001. 340 с.
  19. П.П., Конвай В. Д. Механизмы нарушений метаболизма гипоксантина в печени реанимированных крыс // Бюл. экспер. биол. — 1997.-Т. 124, № 12.-С. 629−631.
  20. П.П. Постреанимационные нарушения обмена гипоксантина и-их коррекции: дис.. канд. мед. наук. Челябинск, 2001. — 250 с.
  21. П.П., Лебедев В. М., Конвай В. Д. Математическое моделирование биохимических процессов с применением регрессионного анализа. Омск: Изд-во Омск. гос. ун-та, 2009. — 344 с.
  22. И.Ю. Митохондриальные белки-разобщители и действие супероксид-радикала Has митохондрии почек и печени крыс: дис.. канд. биол. наук. Воронеж, 2008. — 128*с.
  23. H.A. Биохимические механизмы дезинтеграции эритроцитов человека: дис.. д-ра биол. наук. — Тюмень, 2003. — 271 с.
  24. Я., Рём К.-Г. Наглядная биохимия: пер. с нем. М.: Мир, 2000.-469 с.
  25. Кольтовер В'.К. Свободнорадикальная теория старения: исторический очерк // Усп. геронтол. 2000.' - № 4. — С. 33−40.
  26. В.П., Шведова В. Н. Биохимия. М.: Дрофа, 2004. — 638 с.
  27. В.Д. Нарушение пуринового обмена в печени в постреанимационном периоде и его профилактика: дис.. д-ра мед. наук. Томск, 1988. — 426 с.
  28. В.Д. Острое нарушение метаболизма пуринов как фактор ишемического повреждения // Омск, научн. вестн. 2009. — № 1. — С. 45−48.
  29. В.Д., Золин П. П. Роль острого нарушения метаболизма пуринов в развитии постреанимационной патологии печени // Омск, научн. вестн. 2003. — № 3. — С. 168−172.
  30. В.Д., Воронов О. Э. Роль острого нарушения метаболизма пуринов в развитии повреждений, вызванных криодиструкцией ворот печени // Омск, научн. вестн. 2007. — № 2. — С. 18−23.
  31. Корнякова^ В: В., Конвай, В. Д, Рейс Б. А., Дятлова А. Ю. Утомление после чрезмерных физических нагрузок: механизмы- развития, коррекция // Теор. и практ. физич. культуры. 2009: — № 3. — С. 23−25.
  32. Королюк М.А.,. Иванова Л. И., Майорова ИТ. Метод определения активности каталазы // Лаб. дело. 1988. — № 1. — С. 16−19.
  33. М.В., Акопян' A.C. Структурный анализ причин мужского бесплодия // Молекулярные исследования мужской субфертильности / Иод ред. A.A. Николаева. Астрахань, 2000. — С. 19−41.
  34. H.A., Суменков Е. А. Определение- глутатиона фотоколориметрическим методом исследования // Вестн. РАСХН. — 2005:-№ 5.-С. 69−70.
  35. В.И., Колесниченко Л. С. Глутатион митохондрий // Биохимия. 2007. — Т. 72, № 7. — С. 856−859.
  36. Кулинский> В.И., Колесниченко Л. С. Система глутатиона I. Синтез, транспорт, глутатионтрансферазы, глутатионпероксидазы // Биомед. химия. 2009. — Т. 55, № 3. — С. 255−277.
  37. В.И., Колесниченко JI.C. Глутатион ядра клетки и его функции // Вопр. биол. мед. фарм. химии. — 2010. — № 5. С. 3−5.
  38. В.И. Свободнорадикальное окисление белков и его связь с функциональным состоянием организма // Биохимия. 2007. — Т. 72, № 8.-С. 995−1017.
  39. Г. А., Холявко Ю. А. Лабораторные показатели в практике спортивного врача. М.: Советский спорт, 2006. — 200 с.
  40. Ф.З., Пшенникова М. Г. Адаптация к стрессорным ситуациям и физическим нагрузкам. М.: Медицина, 1988. — 251 с.
  41. Е.Б., Ланкин В. З., Зенков Н. К. и др. Окислительный стресс. Прооксиданты и антиоксиданты. М.: Фирма «Слово», — 2006. -556 с.
  42. Е.Б., Зенков Н. К., Ланкин В. З. и др. Окислительный стресс: патологические состояния и заболевания. Новосибирск: APTA, 2008. — 248 с.
  43. С.С., Фактор Э. А. Влияние физической нагрузки на интенсивность перекисных процессов в организме спортсмена // Физкультура и спорт. 1990. — № 3. — С. 20−23.
  44. A.A., Луцкий Д. Л., Ложкина Л. В. и др. Применение селена для коррекции субфертильности у мужчин // Урология. 1999.* - № 4. -С.29−32.
  45. C.B. Новые тиоловые оксидоредуктазы систем тиоредоксина и глутаредоксина. Их роль в регуляции окислительно-восстановительного баланса клетки: дис.. д-ра. биол. наук. Пущино, 2008.- 170 с.
  46. Ш. Ф., Краснокупская A.B. Влияние селена- на липидный обмен и перекисное окисление липидов у жителей* высокогорных районов // Клин, геронтол. —2005- Т. 11, № 2. — С. 51−53.
  47. Л.Е., Потеряева О. Н., Атучина Н.ВПоляков Л. М. Содержание. аполипопротеинов А-1,.В и Е при интенсивной физической нагрузке и в восстановительный период. 1998. — Т. 126, № 12 — 615−617.
  48. Л.Е., Усынин И. Ф., Хощенко O.M. Роль аполипопротеина А-1 в реализации, анаболического действия стероидных гормонов // Пробл. э11докринол. 2002. — № 6. — С. 45−48.
  49. Пат. 2 169 568 Российская Федерация- МПК7 А61К31/70, А61Р43/00. Средство для коррекции ¡-энергетического обмена / Конвай В. Д. Золин 11.П.- заявитель, и- патентообладатель Омская, гос. мед. акад. — № 98 114 046/14 — заявл. 14.07.1998'- опубл. 27.06:2001.
  50. А. Наглядная статистика в медицине. — Mi: Из-во ГЭОТАР-Медиа, 2003.- 144 с.
  51. Петрович: Ю: А., Подорожная^ Р: П: Сёленоэнзимыг. и другие селенопротеиды- и" их биологическое значение. // Усп. совр. биол. — 1981.- Т. 91, № 1.-С. 127−142.
  52. А.Е. Статистическишанализ в медицине и, биологии: задачи, терминология, логика, компьютерные методы. М.: Из-во РАМН, 2000. — 52 с.
  53. И.Е. Изучение структурных свойств эритроцитов крови новорожденных при окислительном стрессе, вызванном гипоксией: дис.. канд. биол. наук. Воронеж, 2007. — 250 с.
  54. С.Я., Габай В. Л., Коноплянников А. Г. Некроз — активная, управляемая форма программируемой клеточной гибели // Биохимия. -2002. Т. 67, № 4. — С. 467−491.
  55. Ю.Э., Наглер Л. Г., Вартанян Л. С. и др. Является ли ксантиноксидаза универсальным источником супероксидных радикалов при ишемических и реперфузионных повреждениях? // Бюл. экспер. биол. 1990. — № 6. — С. 548−550.
  56. М.Р., Сорураддин М. Х., Терзаде Ф., Фжоуйбен А. Ксантиноксидаза в водно-органических смесях: каталитическая активность и термостабильность // Биохимия. 2009. — Т. 74, № 1. — С. 124−130.
  57. В.В., Полевщиков М:М. Утомление при занятиях физической культурой и спортом: проблемы, методы исследования. М.: Советский спорт, 2006. — 280 с.
  58. В.Д., Олескин A.B., Лагунова E.Mi Программируемая клеточная смерть // Биохимия. 2000. — Т. 65, № 8. — С. 1029−1046.
  59. С.Н., Селютин А. Ю., Паль А. И. Модификация определения концентрации ТБК-активных продуктов сыворотки крови // Клин. лаб. диагн. 2000. — № 2. — С. 8−10.
  60. Т.В. Новый подход в исследовании процесса аутоокисления адреналина и использование его для измерения активности супероксиддисмутазы // Вопр. мед. химии. 1999. — Т. 45. — С. 263−272.
  61. В.П. Старение организма особая биологическая функция, а не результат поломки сложной живой системы: биохимическое обоснование гипотезы Вейсмана // Биохимия. — 1997. — Т. 62. № 11. — С. 1394—1399.
  62. В.П. Старение как атавистическая программа, которую можно попытаться отменить // Вестн. РАН. 2005. — Т. 75. № 9. -С.831−843.
  63. В.П. Попытка биохимиков атаковать проблему старения: «Мегапроект» по проникающим ионам. Первые итоги и перспективы // Биохимия. 2007. — Т. 72, № 12. — С. 1700−1714.
  64. Е.А., Бухов В. А., Окороков В. Г. Значение определения рибозы в крови методом газожидкостной хроматографии при ишемической болезни сердца // Клин. лаб. диагн- 2001. — № 5. — С. 23−24.
  65. Сумбаев В. В: Влияние восстановителей-антиоксидантов и кофеина на* активность ксантиндегидрогеназы // Укр. биохим. журн. 1999. — Т. 71, № 3.-С. 39−43.
  66. Г. А., Серебров В. Ю. Биохимия клетки. Томск: Чародей, 2000.- 184 с.
  67. С.О. Ферменты метаболизма пуриновых, нуклеотидов в оценке функциональной полноценности иммунитета // Биомед. химия.- 2005. Т. 51, № 2. — С. 199−205.
  68. М.В. Показатели уровня тревожности и концентрации продуктов перекисного окисления липидов у спортсменов вциклических и ациклических видах спорта // Вести. ЮУрГУ. Сер., образован-, здравоохран., физич. культура. 2008. — № 4. — С. 125−126.
  69. Тренева' М. В-, Львовская Е. И. Соотношение уровня тревожности, процессов перекисного окисления, липидов и активности некоторых ферментов у спортсменов в циклических и ациклических видах спорта // Теор. и практ. физич. культуры. 2008. — № 4. — С. 31−34.
  70. М.Г., Бубнова Н. И., Куликова Г. В. Влияние пренатального воздействия свинца на активность супероксиддисмутазы мозга и печени плодов крыс // Бюл. экспер. биол. 2007. — Т. 144, № 12. — С. 632−634.
  71. Э.А. Перекисное окисление при физических нагрузках и его коррекция экзогенными антиоксидантными с целью повышения физической работоспособности спортсмена: дис.. д-ра биол. наук. -СПб., 1995. -338 с.
  72. Фисенко В. М-, Зориков П. С., Хасина- Э. И. Влияние шума на физическую работоспособность и- ее: оптимизация адаптогенами // Естеств. и техн. наукш 20 091 -№ 5. — С. 109−1131
  73. Д.В., Винник Ю. С., Каспаров Э. В. и др. Диагностика и лечение окислительного! стресса, при остром панкреатите. -Красноярск: АРТЭ, 2002. 148 с.
  74. Е.А. О возможных пусковых механизмах апоптоза в семенниках при чрезмерных физических нагрузках // Мед. науки. -2010. -№ 2.-С. 46−48.
  75. А.П. Функциональное, состояние дыхательной^ цепи, митохондрий^ гепатоцитов, крыс при- экспериментальном- токсическом? гепатите: дис— канд. биол. наук. — СПб, 2008. 122 с.
  76. К.К. Получение и свойства глутатионпероксидазы // Прикл. биохим. микробиол. 2008. — Т. 44, №" 3. — С. 276−280.
  77. В., Эллиот Д. Биохимия и молекулярная биология. М.: Изд-во НИИ биомед. химии РАМН, 2000. — 367 с.
  78. Acharya U.R., Mishra М., Parto J., Panda M.K. Effect of vitamins С and E on spermatogenesis in mice exposed to cadmium // Reprod. Toxicol. 2008. -Vol. 25, № l.-P. 84−88.
  79. Aitken R.J., de Iuliis G.N. Origins and consequences of DNA damage in male germ cells // Reprod. Biomed. Online. 2007. — Vol. 14. — P. 727−733.
  80. Aitken R.J., Roman S.D. Antioxidant systems and oxidative stress in the testis // Molecular mechanisms in, spermatogenesis. Newcastle: Landes Bioscience and Springer sciense + Business media, 2008. — P. 154—171.
  81. Aksoy H., Yapanoglu Т., Aksoy Y. et al: Dehydroepiandrosterone treatment attenuates reperfusion injury after testicular torsionand detorsion in rats // J., Pediatr. Surg. 2007. — Vol. 42, № 40. — Pi 17 404 744.
  82. Aksoy Y., Yapanoglu Т., Aksoy H. et al. Effects of endurance training on antioxidant' defense mechanisms and lipids peroxidation in testis of rats // Arch. AndroL 2006. — Vol. 52, № 4. — P. 319−323.
  83. Al-Bekairi A.M., Shah' A.H., Ghaudhry. M.A., Qureshi S. Uric acid as an inhibitor of biochemical changes induced by cyclophosphamide in mice // Toxicol. Lett.- 1991.-Vol. 58,№ l.-P. 69−75.
  84. Almaas R., SundarT.B., Rootwelt T. et al. Plasma hypoxanthine reacts more abruptly to changes in oxygenation than base- deficit and uric acid in newborn piglets // J. Perinat. Med. 1997. — Vol. 25- № 4. — P. 353−360.
  85. Amara S., Abdelmelek H., Garrel C. et al. Preventive effect of zinc against cadmium-induced oxidative stress in the rat testis // J. Reprod. Dev. 2008. -Vol. 54, № 2.-P. 129−134.
  86. Amin A. Ketoconazole-induced testicular damage in rats reduced by Gentiana extract // Exp: Toxicol. Pathol: 2008. — Vol. 59, № 6. — P: 377 384.
  87. Anbalagan J., Sashi A.M., Vengatesh G. et al. Mechanism! underlying transient gestational-onsethypothyroidism-indyced impaiment of posttesticular sperm maturation in adult rats // Fertil. Steril. 2010. — Vol. 93, № 8. -P. 2491−2497.
  88. Arch J.R.S., Newsholm E. The control of the metabolism and the hormonalrole of adenosine // Essay Biochem. 1978. — Vol. 14.- P. 82 123.
  89. Ardais A.P., Santos F.W., Nogueira C. W: Ebselen attenuates cadmium-induced testicular damage in mice?// J: Appli Toxicol: 2008- - Vol. 28, № 3.-P. 322−328. ,
  90. Atessahin A., Karahan I., Turk G. et al. Protective role of lycopene on cisplatin-induced changes- in sperm characteristics, testicular, damage and oxidative stress in rats // Reprod. Toxicol. 2006. — Vol. 21. — P. 42−47.
  91. Bagchi G., Waxman D.J. Toxicity of ethylene glycol monomethyl ether: impact on testicular/gene expression^ Int. J. Androl. 2008! — Vol- 31v№ 2.-P. 269−274.
  92. Behne D., Weiler H., Kyriakopolos A. Effects of selenium deficience on testicular morphology and function in rats // J. Reprod. Fertil. 1996. — Vol. 106, № 2.-P. 291−297.
  93. BerardiJ.M., Ziegenfuss T.N. Effects of ribose supplementation on repeated sprint performance in men // J. Strength Cond. Res. 2003. — Vol. 17, № 1. -P. 47−52.
  94. Berry C.E., Hare J.M. Xanthine oxidoreductase and cardiovascular disease: Molecular mechanisms and pathophysiological implications // J. Physiol. -2004. Vol. 555. — P. 589−606.
  95. Bertelsmann H., Behne D., Kyriakopoulos A. Studies with regard to the apoptosis of testicular germ cells, in rats fed a diet enriched with polyunsaturated Fatty acids. // Ann. N. Y. Acad. Sci. 2009. — Vol. 1171.-P. 372−376.
  96. Bloomer R.J. Effect of exercise on oxidative stress biomarkers // Adv. Clin. Chem. 2008. — Vol. 46. P. 1−50.
  97. Boitani C., Puglisi R. Selenium, a key element in spermatogenesis and male, fertility // Adv. Exp. Med. Biol. 2008. — Vol. 636. — P. 65−73.
  98. Boonstra J., Post J.A. Molecular events associated with reactive oxygen species and cell cycle progression in mammalian cells // Gene. 2004. -Vol. 337.-P. 1−13.
  99. Bork P., Sander C., Valencia A. Convergent evolution of similar enzymatic function on different protein folds: the hexokinase, ribokinase, and galactokinase families of sugar kinases // Protein Sci. 1993. — Vol. 2, № 1. -P. 31−40.
  100. Borutaite V., Brown G.C. Nitric oxide induced apoptosis via hydrogen peroxide, but necrosis via energy and thiol depletion // Free Radic. Biol. Med. 2003. — Vol. 35. — P. 1457−1468.
  101. Bolouri-Moghaddam M.R. Le Roy K., Xiang L. et al. Sugar signalling and antioxidant network connections in plant cells // FEBS J. 2010. — Vol. 277, № 9.-P. 2022−2037.
  102. Brancaccio P., Lippi G., Mffulli N. Biochemical markers of muscular damage // Clin. Chem. Lab. Med. 2010. — Vol. 48, № 6. — P. 757−767.
  103. Broedbaek K., Poulsen H.E., Weimann A. et al. Urinary excretion of biomarkers of oxidatively damaged DNA and RNA in hereditary hemochromatosis // Free Radic. Biol. Med. 2009. — Vol. 47. — P. 12 301 233.
  104. Brookes P. S., Yoon Y., Robotham J.L. et al. Calcium, ATP, and ROS: a mitochondrial love-hate triangle // Am. J. Physiol. Cell. Physiol. 2004. -Vol. 287.-P. 817−833.
  105. Buhl M.R. Purine metabolism in ischemic kidney tissue // Dan. Med. Bull. -1982. Vol. 29, № 1. — P. 1−26.
  106. Burk R.F., Hill K.E. Regulation of selenoproteins // Annu. Rev. Nutr. -1993.-Vol. 13.-P. 65−89.
  107. Burk R.F., Hill K.E. Selenoprotein P: an extracellular protein with unique physical characteristics and a role in selenium homeostasis // Annu Rev. Nutr. 2005. — Vol. 25. — P. 215−235.
  108. Burk R.F., Hill K.E. Selenoprotein P-expression, functions, and roles in mammals // Biochim. Biophys. Acta. 2009.' - Vol. 1790, № 11. — P. 14 411 447.
  109. Byczkowski J.Z., Gessner T. Biological role of superoxide ion-radical // Int. J. Biochem. 1998. — Vol. 20. — P. 569−580.
  110. Bykova M., Titova N., Sharma R., Agarwal A. Glutathione and glutathione-dependent enzymes in sperm and seminal plasma from infertile men // Fertil. Ster. 2007. — Vol. 88. — P. 366−367.
  111. Camici M., Micheli V., Ipata P: L., Tozzi M.G. Pediatric neurological syndromes and- inborn errors of purine metabolism // Neurochem. Int. — 2010 Vol. 56, № 3. — P. 367−378.
  112. Cappelli K., Felicetti M., Capomaccio S. et.al. Exercise induced stress in horses: selectiomof the most stable reference genes for quantitative RT-PCR normalization // BMC Mol. Biol. 2008. — Vol. 9. — P. 49.
  113. Carlson B.A., Schweizer U., Perella C. et al. The selenocysteine tRNA-, STAF-binding region is essential for adequate selenocysteine tRNA status, selenoprotein expression and early age survival of mice // Biochem. J. -2009. Vol. 418, № i. p- 61−71.
  114. Chandra A.K., Ghosh- R., Chatteijee: A., Sarkar M: Amelioration" of vanadium-induced testicular toxicity and adrenocortical hyperactivity by vitamin E acetate in. rats // Moli Celll.Biochem. 2007. — Vol. 306, № 1−2. -P. 189−200.
  115. Cormack S.J., Newton R.U., McGuigan M.R. Neuromuscular and endocrine responses of elite players to an Australian rules football match // Int. J. Sports Physiol: Perform- 2008. — Vol. 3, № 3. — P. 359−374.
  116. Coupland C.A., Ghilvers C.E., Davey G. et al. Risk factors for testicular germ cell tumours by histological tumour type. United Kingdom Testicular Gancer Study Group // Br. J. Cancer. 1999. — Vol. 80, № 11. — P. 18 591 863.
  117. Dammeyer P., Damdimopoulos A.E., Nordman T. et al. Induction of cell membrane protrusions by the N-terminal glutaredoxin domain of a rare splice variant of human thioredoxin reductase 1 // J. Biol. Chem. 2008. -Vol. 283, № 5. — P. 2814−2821.
  118. Diemer T., Allen J.A., Hales- K. H, Hales D.B. Reactive oxygen disrupts mitochondria in MA-10 tumor Leydig: cells and inhibits steroidogenic acute regulatory (StAR) protein and steroidogenesis // Endocrinology. 2003. Vol: 144, № 7. — P. 2882−2891.
  119. Dworak M., Diel P., Voss, S. et al. Intense exercise increases adenosine concentrations in rat brain: implications for a homeo static sleep drive // Neuroscience. — 2007. — Vol: 150, № 4. — P. 789−795.
  120. Eghwrudjakpor P.O., Allison: A. B- Oxidative stress following traumatic brain injury: enhancement of endogenous antioxidant defense systems and the promise of improved outcome // Niger. J. Med. 2010. — Vol: 19, № 1./ P. 14—21. '
  121. Eliakim A., Portal S., Zadik Z. et al. The effect of a volleyball practice on anabolic hormones and inflammatory markers in elite male and female adolescent players // J. Strength Cond. Res. 2009. — Vol. 23. № 5. — P. 1553−1559.
  122. Grandys M., Majerczak J., Duda K. et al: Endurance training of moderate intensity increases testosterone concentration in young, healthy men // Int. J. Sports Med. 2009. — Vol. 30, № 7. — P. 48995.
  123. Erol A. Systemic DNA damage response and metabolic syndrome as a premalignant state // Curr. Mol. Med. 2010. — Vol: 10, № 3. — P. 321−334.
  124. Farthing D., Xi L., Gehr L. et al. HPLC determination of a potential biomarker of initial cardiac ischemia using isolated mouse hearts // Biomarkers. 2006. — Vol. 11, № 5. — P. 449M59:
  125. Farthing Dl, Gehr L., Karnes H: T. et al. Dose-dependent effects of salicylic acid on post-ischemic ventricular function and. purine efflux in isolated mouse hearts // Biomarkers. 2007. — Vol. 12, № 6. — P. 623−634.
  126. Fahrner C.L., Hackney A.C. Effects of endurance exercise on* free testosterone concentration and-the binding affinity of sex hormone binding globulin (SHBG) // Int. J. Sports Med. 1998. — Vol. 19, № 1. — P. 12−15.
  127. Feng J.D., Yeung P.K. A simple high-performance liquid chromatography assay for simultaneous measurement of adenosine, guanosine, and theoxypurine metabolites in plasma-// Ther. Drug Monit. 2000: — Vol. 22, № 2.-P. 177 -183. '
  128. Ferreira L.F., Reid M.B. Muscle-derived ROS and thiol-regulation in muscle fatigue // J. Appl- Physiol: 2008. — Vol. 104, № 3. — P. 853−860.
  129. Flohe L. Selenium in mammalian spermiogenesis//Biol. Chem. 2007. -Vol. 388, № 10. — P. 987−995.
  130. Gardner-Thorpe D., O’Hagen C., Young I., Lewis- S J. Dietary supplements of soya flour lower serum testosterone concentrations and improve markers of oxidative stress in men // Eur. J. Clin. Nutr. 2003. — Vol. 57j № 1. -P. 100−106.
  131. Gautam- D.K., Misro M.M., Chaki S.P. et a. hCG treatment raises H202 levels andinducesgermcellapoptosisinrat testis// Apoptosis. 2007. — 12,. № 7.-P. 1173−1182.
  132. Gavazza M!, Catala A. Melatonin preserves arachidonic- and docosapentaenoic acids during ascorbate-Fe2+ peroxidation of rat testis microsomes and mitochondria // Int. J. Biochem. Cell. Biol! — 2003: Vol. 35.-P. 359−366.
  133. Gonzalezjurado J.A., de Teresa C., Molina E. et al. Effects of the consumption of Phlebodium Decumanum on plasma Cortisol- and testosterone levels in subjects participating in an exercise program // Rev. Med. Chil. 2009. — Vol. 137, № 4. — P. 497−503.
  134. Gorman M.W., Feigl E.O., Buffington C.W. Human plasma ATP concentration // Clin. Chem. 2007. — Vol. 53, № 2. — P. 318−325.
  135. Goto K., Ishii N., Kizuka T. et al. Hormonal and metabolic responses to slow movement resistance exercise with different durations of concentric and eccentric actions // Eur. J. Appl. Physiol. 2009. — Vol'. 106, № 5. — P. 731−739.
  136. Green H.J., Burnett M.E., Smith P.C. et al. Failure of hypoxia to exaggerate the metabolic stress in working muscle following short-term' training // Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 2009! — Vol. 297, № 3. — P.* 593 604.
  137. Gross. M., Reiter S., Zollner N. Metabolism^ of D-ribose administered continuously to healthy persons and to patients with, myoadenylate deaminase deficiency // Klin. Wochensch- 1989.* - Vol. 67, № 23. — P. 1205−1213.
  138. Gumieniczek A., Hopkala H., Zabek A. Protective effects of a PPARgamma agonist pioglitazone on anti-oxidative system in. testis of diabetic rabbits // Pharmazie. 2008. — Vol: 63, № 5. — P. 377−378.
  139. Guneli E., Tugyan K., Ozturk H. et al. Effect of melatonin on testicular damage in streptozotocin-induced diabetes rats // Eur. Surg. Res. 2008. -Vol. 40, № 4.-P. 354−360.
  140. Hackney A.C., Szczepanowska E., Viru A.M. Basal testicular testosterone production in endurance-trained men is suppressed7/ Eur. J. ApplPhysiol. -2003.-Vol. 89,№ 2.-P. 198−201.
  141. Hackney A.C., Moore A.W., Brownlee K.K. Testosterone and endurance exercise: development of the «exercise-hypogonadal male condition» // Acta Physiok Hung. 2005. — Vol. 92, № 2. — P: 121−137.
  142. Hageman G.J., Lank I., Pennings H.-J. et al. Systemic poly (ADP-ribose) polymerase-1 activation, chronic inflammation, and oxidative stress in cordpatients // Free Radie. Biol. Med. 2003.-Vol. 35, № 2: — P^ 140−148:
  143. Hales D.B., Allen J.A., Shankara T. et al. Mitochondrial function' in Leydig cell steroidogenesis // Ann. N. Y. Acad: Sei. 2005. — Vol., 1061. — P. 120 134.
  144. Hellsten Y., Tullson P.C., Richter E.A., Bangsbo J. Oxidation of urate in human skeletal muscle during exercise // Free Radie. Biol. Med. 1997. -Vol. 22, № 1−2. — P. 169−74.
  145. Hellsten Y., Skadhauge L., Bangsbo J. Effect of ribose supplementation on resynthesis of adenine nucleotides after intense intermittent training in humans // Am. J. Physiol. Regul: Integr. Comp. Physiol. 2004. — Vol. 286. -P. 182−188.
  146. Heptinstall S., Johnson A., Glenn J.R., White A.E. Adenine nucleotide metabolism in human blood important roles for leukocytes and erythrocytes // J. Thromb. Haemost. — 2005. — Vol. 3. — P. 2331−2339.
  147. Hikim A.P., Lue Y., Yamamoto C.M. et al. Key apoptotic pathways for heat-induced programmed germ cell death in the testis // Endocrinology. -2003,-Vol. 144,№ 7.-P. 3167−3175.
  148. Hikim A.P., Vera Y., Verner D. et al. Involvement of nitric oxide-mediated intrinsic pathway signaling in age-related increase in germ cell apoptosis in male Brown-Norway rats // J. Gerontol. A. Biol. Sci. Med. Sci. 2005. -Vol. 60, № 6.-P. 702−708.
  149. Hoffman J.R., Kraemer W.J., Bhasin S. et al. Position stand on androgen and human growth hormone use // J. Strength Cond. Res. 2009. — Vol. 23, № 5 (Suppl.). — S.1-S.59.
  150. Homma-Takeda S., Hiraku Y., Ohkuma Y. et al. 2,4,6-trinitrotoluene-induced reproductive toxicity via oxidative DNA damage by its metabolite // Free Radic. Res. 2002. — Vol. 36. — P. 555−566. .
  151. Hu G.X., Lian Q.Q., Lin H. et al. Rapid mechanisms of glucocorticoid signaling in the Leydig cell // Steroids. 2008. — Vol. 73, № 9−10. — P. 1018−1024.
  152. Huang J.Y., Liao J.W., Liu Y.C. et al. Motorcycle exhaust induces reproductive toxicity and testicular interleukin-6 in male rats // Toxicol. Sci. -2008.-Vol. 103,№ l.-P. 137−148.
  153. Hurtado de Gatalfo G.E., de Alaniz M: J., Marra C.A. Dietary lipids modify redox homeostasis and steroidogenic status in rat testis // Nutrition. 2008. — Vol. 24, № 7−8. — P. 717−726.
  154. Ikeda M., Kodama H., Fukuda J. et al. Role of radical oxygen species in rat testicular germ cell apoptosis induced by heat stress // Biol: Reprod. 1999. -Vol. 61.-P. 393−399.
  155. Imai H., Hakkaku N., Iwamoto R. et al. Depletion of selenoprotein GPx4 in spermatocytes causes male infertility in mice // J. Bioll Chem. 2009. — Vol. 284, № 47. — P. 32 522−32 532.
  156. Inan M., Basaran U.N. Dokmeci D. et al. Methylene blue increases contralateral testicular ischaemia-reperfusion injury after unilateral testicular torsion // Clin. Exp. Pharmacol. Physiol. 2008. — Vol. 35, № 1. — P. 50−54.
  157. Bozlu M., Coskun B., Cayan S. et al. Inhibition of poly (adenosine diphosphate-ribose) polymerase decreases long-term histologic damage in testicular ischemia-reperfusion injury // Urology. 2004. — Vol. 63, № 4. -P. 791−795.
  158. Ishii T., Matsuki S., Iuchi Y. et al. Accelerated impairment of spermatogenic cells in SOD1-knockout mice under heat stress // Free Radic. Res. 2005. -Vol. 39.-PI 697−705.
  159. Ishikawa T. Fujioka H, Ishimura T. et al. Increased-testicular 8-hydroxy-2'-deoxyguanosine in patients with* varicocele // BJU Int: 2007. — Vol. 100, №•4.-P. 863−866.
  160. Jaeschke H. Mechanisms, of oxidant stress-induced acute tissue injury // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1995. — Vol. 209. — P. 104−11!
  161. Jankowska E.A., Filippatos G., Ponikowska B: et al. Reduction in circulating testosterone relates to exercise capacity in men with. chronic heart failure // J. Card. Fail. 2009. — Vol. 15, № 5. — P: 442−450.
  162. Jin M.H., Hong C.H.,.Lee H.Y. et al: Enhanced TGF-betal is involved in 2,3,7,8-tetrachlorodibenzo-p-dioxin (TCDD)' induced oxidative stress in C57BL/6 mouse testis // ToxicoK Lett. 2008. — Vol- 178, № 3. — P. 202 209.
  163. Jinnah H.A., Ceballos-Picot I., Torres R.J.et al. Attenuated variants of Lesch-Nyhan disease // Brain. 2010. — Vol. 133. — P. 671−689.
  164. Kasahara E., Sato E.F., MiyoshiM. et al. Role of oxidative stress in" germ-cell apoptosis induced by di (2-ethylhexyl)phthalate // Biochem. J. 2002. -Vol. 365-P. 849−856.
  165. Kaushal N., Bansal M.P. Dietary selenium variation-induced oxidative stress modulates CDC2/cyclin B1 expression and apoptosis of germ cells in mice testis // J. Nutr. Biochem. 2007. — Vol. 18, № 8. — P. 553−564.
  166. Kavazis A.N., Kivipelto J., Choe H.S. et al. Effects of ribose supplementation on selected metabolic measurements and performance in maximally exercising Thoroughbreds // J. Anim. Sci. 2004. — Vol. 82. — P. 619−625.
  167. Kavitha T.S., Parthasarathy C. Sivakumar R. et al. Effects of excess corticosterone on NADPH generating enzymes and glucose oxidation in Leydig cells of adult rats // Hum. Exp. Toxicol. 2006. — Vol. 25, № 3. — P. 119−125.
  168. Kawaguchi T., Veech R.L., Uyeda K. Regulation of energy metabolism in macrophages during hypoxia. Roles of fructose 2,6-bisphosphate and ribose 1,5-bisphosphate // J. Biol. Chem. 2001. — Vol. 276, № 30. — P. 2855^ 28 561.
  169. Kehinde E.O., Anim J.T., Mojiminiyi O.A. et al. Allopurinol provides long-term protection for experimentally induced testicular torsion in a rabbit model // B.J.U. Int. 2005. — Vol. 96. — P. 175−180.
  170. Kehr S., Malinouski M., Finney L. et al. X-ray fluorescence microscopy reveals the role of selenium in spermatogenesis // J. Mol. Biol. 2009. -Vol. 389, № 5.-P. 808−818.
  171. Kerksick C., Rasmussen C., Bowden R. et al. Effects of ribose supplementation prior to and during intense exercise on anaerobic capacity and metabolic markers // Int. J. Sport Nutr. Exerc. Metab. 2005. — Voir 15, № 6.-P. 653−664.
  172. Kernstock R.M., Girotti A.W. New strategies for the isolation and activity determination of naturally occurring type-4 glutathione peroxidase // Protein Expr. Purif. -2008. Vol. 62, № 2. — P. 216−222.
  173. Kinugawa T., Fujita M., Ogino K. et al. Catabolism of adenine nucleotides favors adenosine production following exercise in patients with chronic heart failure // J. Card. Fail. 2006. — Vol. 12, № 9. — P. 720−725.
  174. Koc A., Narci A., Duru M. et al. The protective role of erdosteine on testicular tissue after testicular torsion and detorsion // Mol. Cell Biochem. -2005.-Vol. 280, № 1−2.-P. 193−199.
  175. Korzeniewski B. AMP deamination delays muscle acidification during heavy exercise and hypoxia // J. Biol. Chem. 2006. — Vol. 281, № 6. — P. 3057−3066.
  176. Kowaltowski A.J., Castilho R.S., Vercesi A.E. de Souza-Pinto N.C. Mitochondrial and reactive oxygen species // Free Radic. Biol. Med. 2009. -Vol. 47.-P. 333−343.
  177. Kraemer W.J., Hatfield D.L., Volek J.S. et al. Effects of amino acids supplement on physiological adaptations to resistance training // Med. Sci. Sports Exerc. 2009. — Vol. 41, № 5. — P. 1111−1121.
  178. Kudo M., Saito Y. Sasaki T. et al. Genetic variations in the HGPRT, ITPA, IMPDH1, IMPDH2, and GMPS genes in Japanese individuals // Drug. Metab. Pharmacokinet. 2009. — Vol. 24, № 6. — P. 557−564.
  179. Kumagai A., Kodama H., Kumagai J. et al. Xanthine oxidase inhibitors suppress testicular germ cell apoptosis induced by experimental cryptorchidism // Mol. Hum. Reprod. 2002. — Vol. 8. — P. 118−123.
  180. Kuppusamy P., Zweier J.L. Characterization of free radical generation by xanthine oxidase. Evidence for hydroxyl radical generation // J. Biol. Chem. 1989. — Vol. 264. — P. 9880−9884.
  181. Lamina S., Okoye C.G. Effect of low intensive continuous training programme on serum uric acid in the non pharmacological management of hypertension: a randomized controlled trial // Niger. J. Med. 2010. — Vol. 19, № 1. — P. 77−86.
  182. Lane A.R., Duke J.W., Hackney A.C. Influence of dietary carbohydrate intake on the free testosterone: Cortisol ratio responses to short-termintensive exercise training // Eur. J. Appl. Physiol. 2010. — Vol. 108. — P. 1125−1131.
  183. Li D., Yuan C., Gong Y. et al. The effects of methyl tert-butyl ether (MTBE) on the male rat reproductive system // Food Chem. Toxicol. 2008. — Vol. 46, № 7. — P. 2402−2408.
  184. Liao W., Cai M., Chen J. et al. Hypobaric hypoxia causes deleterious effects on spermatogenesis in rats // Reproduction. 2010. — Vol. 139, № 6. — P. 1031−1038.
  185. Lima F. de Falco V. Baima J. et al. Effect of impact load and active load on borie metabolism and body composition of adolescent athletes // Med. Sci. Sports. Exerc. 2001. — Vol. 33, № 8. — P. 1318−1323.
  186. Lucia A., Diaz B., Hovos J. et al. Hormone levels of world class cyclists during the Tour of Spain stage race // Br. J. Sports Med. 2001. — Vol. 35, № 6. — P. 424−430.
  187. Ma A. Yang X, Wang Z. et al. Adult exposure to diethylstilbestrol induces spermatogenic cell apoptosis in vivo through increased oxidative stress in male hamster // Reprod. Toxicol. 2008. — Vol. 25, № 3. — P. 367−373.
  188. Machado M., Koch A.J., Willardson J.M. et al. Caffeine does not augment markers of muscle damage or leukocytosis following resistance exercise // Int. J. Sports Physiol. Perform. 2010. — Vol. 5, № 1. — P. 18−26.
  189. Manna P, Sinha M. Sil P.C. Protection of arsenic-induced testicular oxidative stress by aijunolic acid // Redox Rep. 2008. — Vol. 13, № 2. — P. 67−77.
  190. Marchlewicz M., Wiszniewska B., Gonet B. et al. Increased lipid peroxidation and ascorbic acid utilization in testis and epididymis of rats chronically exposed to lead // Biometals. 2007. — Vol. 20, № 1. — P. 13−19.
  191. Masiulis I., Quill T.A., Burk R.F., Herz J. Differential functions of the Apoer2 intracellular domain in selenium uptake and cell signaling // Biol. Chem. 2009. — Vol. 390, № 1. — P. 67−73.
  192. Masuoka N., Kubo I. Characterization of xanthine oxidase inhibition by anacardic acids // Biochim. Biophys. Acta. 2004. — Vol. 1688. — P. 245 249.
  193. Mathews I.I., Erion M.D., Ealick S.E. Structure of human adenosine kinase at 1.5 A resolution // Biochemistry. 1998. — Vol. 37, № 45. — P. 1 560 715 620.
  194. McConell G.K., Shinewell J., Stephens T.J. et al. Creatine supplementation reduces muscle inosine monophosphate during endurance exercise in humans // Med. Sci. Sports. Exerc. 2005. — Vol. 37, № 12. — P. 20 542 061.
  195. Mi Y., Zhang C., Taya K. Quercetin protects spermatogonial cells from 2,4-d-induced oxidative damage in embryonic chickens // J. Reprod. Dev. -2007. Vol. 53, № 4. — P. 749−754.
  196. Mikami T., Kitagawa J. Intense exercise induces the degradation of adenine nucleotide and purine nucleotide synthesis via de novo pathway in the rat liver // Eur. J. Appl. Physiol: 2006. — Vol. 96, № 5. — P. 543−550.
  197. Mingoti G.Z., Pereira R.N., Monteiro C.M. Fertility of male adult rats submitted to forced swimming stress // Braz. J. Med. Biol. Res. 2003. -Vol. 36, № 5.-P. 677−681.
  198. Moir H., Hughnes M.G., Potter S. et al. Exercise-induced immunosuppression roles of reactive oxygen species and 5-AMP-activated protein kinase dephosphorilation within immune cells // J. Appl. Physiol. -2010. Vol. 108, № 5. — P. 1284−1292.
  199. Monticone M., Tonachini L. Tavella S. et al. Impaired expression of genes coding for reactive oxygen species scavenging enzymes in testes of Mtfrl/Chppr-deficient mice // Reproduction. 2007. — Vol. 134, № 3. — P. 483−492.
  200. Mori M., Kinugava T., Endo A. Effects of hypoxis exercise conditioning on work capacity, lactate, hypoxanthine and hormonal factors in men // Clin. Exp. Pharmacol. Physiol. 1999. — Vol. 26, № 4. — P. 309−314.
  201. Mougeot F., Martinez-Padilla J., Webster L.M. et al. Honest sexual signalling mediated by parasite and-testosterone effects on oxidative balance // Proc. Biol. Sci. 2009. — Vol. 276, № 1659. — P. 1093−1100.
  202. Murugesan P., Balaganesh M., Balasubramanian K. Arunakaran J. Effects of polychlorinated biphenyl (Aroclor 1254) on steroidogenesis and antioxidant system in cultured adult rat Leydig cells // J: Endocrinol. 2007. — Vol. 192. -P. 325−338.
  203. Nakao C., Ookawara T., Sato Y. et al. Extracellular" superoxide dismutase in tissues from obese (ob/ob) mice // Free Radic. Res. 2000: — Vol. 33, № 3. -P. 229−241.
  204. Narayana K. An aminoglycoside antibiotic gentamycin induces oxidative stress, reduces antioxidant reserve and"impairs spermatogenesis, in rats // J. Toxicol. Sci. 2008. — Vol. 33, №¦ 1. — P. 85−96.
  205. Nauseef W.M. Assembly of the phagocyte NADP№ oxidase // Histochem. Cell. Biol. 2004. — Vol. 122. — P. 277−291.
  206. Nikolaidis M.G., Jamurtas A.Z., Paschalis V. et ah The effect of muscle-damaging exercise on blood and skeletal muscle oxidative stress: magnitude and time-course considerations // Sports Med. 2008. — Vol. 38, № 7. — P. 579−606.
  207. Niviere V., Fontecave M. Discovery of superoxide reductase: an historial perspective // J. Biol. Inorg. Chem. 2004. Vol. 9. P. 379−384.
  208. Niwa T. Uremic toxicity of indoxyl sulfate // Nagoya J. Med. Sci. 2010. -Vol. 72, № 1−2.-P. 1−11.
  209. Norberg E., Orrenius S., Zhivotovsky B. Mitochondrial regulation of cell death: processing of apoptosis-inducing factor (AIF) // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2010. — Vol. 396, № 1. — P. 95−100.
  210. Norman B., Nygren A.T., Nowak J., Sabina R.L. The effect of AMPD1 genotype on blood flow response to sprint exercise // Eur. J. Appl. Physiol. -2008.-Vol. 103, № 2.-P. 173−180.
  211. Okabe H. The role of xanthine dehydrogenase (xanthine oxidase) in ischemia-reperfusion injury in rat kidney // Nippon Jinzo Gakkai Shi. -1996. Vol. 38, № 12. — P. 577−584.
  212. Oliveira K. de J., Donangelo C.M., Oliveira A.V. Jr. et al. Effect of zinc supplementation on the antioxidant, copper, and iron status of physically active adolescents // Cell Biochem. Funct. 2009. — Vol. 27, № 3. — P. 162 166.
  213. Olson G.E., Winfrey V.P., Nagdas S.K. et al. Apolipoprotein E receptor-2 (ApoER2) mediates selenium uptake from selenoprotein P by the mouse testis // J. Biol. Chem. 2007. — Vol. 282, № 16. — P. 12 290−12 297.
  214. Olson G.E., Winfrey V.P., Hill K.E., Burk R.F. Megalin mediates selenoprotein P uptake by kidney proximal tubule epithelial cells // J. Biol. Chem. 2008. — Vol. 283, № 11. — P. 6854−6860.
  215. Ozturk A., Baltaci A.K. Mogulkoc R. et al. Effects of zinc deficiency and supplementation on malondialdehyde and glutathione levels in blood and tissues of rats performing swimming exercise // Biol. Trace Elem. Res. -2003. Vol. 94, № 2. — P. 157−166.
  216. Parlaktas B.S., Ozyurt B., Ozyurt H. et al. Levels of oxidative stress parameters and the protective effects of melatonin in psychosis model rat testis // Asian J. Androl. 2008. — Vol. 10, № 2. — P. 259−265.
  217. Pasquali M.A., Gelain D.P., Zanotto-Filho A. et al. Retinol and retinoic acid modulate catalase activity in Sertoli cells by distinct and gene expression-independent mechanisms // Toxicol. In Vitro. 2008. — Vol. 22, № 5. — P. 1177−1183.
  218. Payabvash S., Salmasi A.H., Klumehr S. et al. Salutary effects of N-acetylcysteine on apoptotic damage in a rat model of testicular torsion // Urol. Int. 2007. — Vol. 79- № 3. P. 248−254.
  219. Payabvash S., Kiumehr S., Tavangar S.M., Dehpour A.R. Ethyl pyruvate reduces germ cell-specific apoptosis and oxidative stress in rat model of testicular torsion/detorsion // J. Pediatr. Surg. 2008. — Vol. 43, № 4. — P. 705−712.
  220. Pedzik A., Paradowski M., Rysz J. Oxidative stress in nephrology // Pol. Merkur. Lekarski. 2010. — Vol. 28, № 163. — P. 56−60.
  221. Pekcetin C., Ergur B.U., Kiray M. et al. The protective effects of trimetazidine on testicular, ischemia and reperfusion injury in rats // Pediatr. Surg. Int. 2007. — Vol. 23, № 11. — P. 1113−1118.
  222. Peltola V., Huhtaniemi I, Metsa-Ketela T. et al. Induction of lipid peroxidation during steroidogenesis in the rat testis // Endocrinology. -1996.-Vol. 137.-P. 105−112.
  223. Peveler W.W., Bishop P.A., Whitehorn E.J. Effects of ribose as an ergogenic aid // J: Strength. Cond. Res. 2006. — Vol. 20, № 3. — P. 519−522.
  224. Podhorska-Okolow M, DziegieL P., Gomulkiewicz A. et al: Exercise-induced apoptosis in rat kidney is mediated*by both angiotensin II ATI and AT2 receptors // Histol: Histopathol. 2006. — Vol'. 21, № 5: — Pi 45966.
  225. Poon R., Rigden M., Chu I., Valli V.E. Short-term oral toxicity of pentyl ether, 1,4-diethoxybutane, and 1,6-dimethoxyhexane in male rats // Toxicol. Sci. 2004. — Vol. 77, № 1. — P. 142−50.
  226. Reid M.B. Free radicals and muscle fatigue: Of ROS, canaries, and the IOC // Free Radic. Biol. Med. 2008. — Vol. 44, № 2. P. 169−179.
  227. Renko K., Werner M., Renner-Miiller I., et al. Hepatic selenoprotein P (SePP) expression restores selenium transport and prevents infertility and motor-incoordination in Sepp-knockout mice // Biochem J. 2008. — Vol. 409, № 3.-P. 741−749.
  228. Roberts M.D., Dalbo V.J., Hassell S.E., Kerksick C.M. The expression of androgen-regulated genes before and after a resistance exercise bout in younger and older men // J. Strength Cond. Res. 2009. — Vol. 23, № 4. — P. 1060−1067.
  229. Roth S., Rosenbaum P. S. Osinski J. et al. Ischemia induces significant changes in purine nucleoside concentration in the retina-choroid in rats // Exp. Eye. Res. 1997. — Vol. 65, № 6. — P. 771−779.
  230. Ru W., Peijie C. Modulation of NKT cells and Thl/Th2 imbalance after alpha-GalCer treatment in progressive load-trained rats // Int. J. Biol. Sci. -2009. Vol. 5, № 4. — P. 338−343.
  231. Sahoo D.K., Roy A., Bhanja S., Chainy G.B. Hypothyroidism impairs antioxidant defence system and testicular physiology during development and maturation // Gen. Comp. Endocrinol. 2008. — Vol. 156, № 1. — P. 6370.
  232. Saito T., Nishino T. Differences in redox and kinetic properties between NAD-dependent and 02-dependent types of rat liver xanthine dehydrogenase // J. Biol. Chem. 1989. — Vol. 264. — P. 10 015−10 022.
  233. Sattler F.R., Castaneda-Sceppa C., Binder E.F. et al. Testosterone and growth hormone improve body composition^ and muscle performance in older men // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2009. — Vol. 94, № 6. — P. 19 912 001.
  234. Schriever. S.C., Barnes K.M., Evenson J.K. et al. Selenium requirements are higher for glutathione peroxidase-1 mRNA than gpxl activity in rat testis // Exp. Biol. Med. (Maywood). 2009. — Vol. 234, № 5. — P. 513−521.
  235. Schuback K., Essen-Gustavsson* B. Persson S.G. Effect of creatine supplementation on muscle metabolic response to a maximal treadmill exercise test in Standardbred horses // Equine Vet. J. 2000. — Vol. 32. — P. 533−540.
  236. Shalini S., Bansal M.P. Role of selenium in regulation of spermatogenesis: involvement of activator protein 1 // Biofactors. 2005: — Vol. 23, № 3. — P. 151−162.
  237. Shalini ~S., Bansal M.P. Role of selenium in spermatogenesis: differential expression of cjun and cfos in tubular cells of mice testis // Mol. Cell. Biochem. 2006. — Vol. 292, № 1−2. — P. 27−38.
  238. Shiraisi K., Shimabukuro T., Naito K. Effects of hemodialysis on testicular volume and oxidative stress in humans // J. Urol. 2008. — Vol. 180, № 2. -P. 644—650.
  239. Sikka S.C. Relative impact of oxidative stress on male reproductive function // Curr. Med. Ghem. 2001. — Vol. 8. — P. 851−862.
  240. Singh M., Kalla NR., Sanyal S.N. Effect of monensin, a Na±specific carboxylic ionophore on the oxidative defense system in rat testis // Pharmacol: Rep. 2007. — Vol. 59, № 4. -P. 456−461.
  241. Smith R., Kaune H, Parodi D. et al: Increased' sperm DNA damage in patients with varicocele: Relationship with seminal oxidative stress // Hum. Reprod-.-2006-- Vol- 21.- P: 986−993-
  242. Stathis C.G., Carey M.F., Snow. R.J. The-influence oftallopurinol on urinary purine loss after repeated sprint exercise in man' // Metabolism. — 2005. -Vol. 54, № 10. P. 1269−1275.
  243. Steiner M.C., Evans R., Deacon S.J. et al. Adenine nucleotide loss in the skeletal muscles during exercise in chronic obstructive pulmonary disease // Thorax. 2005. — Vol. 60, № 11. — P: 9324−936.
  244. Suzuki S., Yoneyama Y. Maternal plasma hypoxanthine levels in nonpreeclamptic twin pregnancies // Tohoku J. Exp. Med. 2004. — Vol. 203, № 4.-P. 349−352.
  245. Taneli-F., Vatansever S., Ulman C. et al: The effect of spermatic vessel ligation on testicular nitric oxide levels and germ cell-specific apoptosis in rat testis // Acta Histochem. 2005. — Vol. 106. — P. 459−466.
  246. Tang X.Y., Zhang Q., Dai D.Z. et al. Effects of strontium fructose 1,6-diphosphate on expressionof apoptosis-related genes, and oxidative stress in testes of diabetic rats // Int. J. Urol. 2008. — Vol: 15, № 3. — P. 251−256.
  247. Teitelbaum J.E., Johnson C., Cyr J: St. The use of D-ribose in chronic fatigue syndrome and fibromyalgia: a pilot’study // J. Altern. Complement. Med. -2006. Vol. 12, № 9. p. 857−8621
  248. Tramontano F., Malanga M., Farina B. et al. Heat stress reduced poly (ADPR)polymerase expression- in rat testis // Mol. Hum. Reprod. -2000: Vol. 6, № 7.'- P: 575−581.
  249. Tullson P.C., Teijung R.L. Adenine nucleotide metabolism in contracting skeletal muscle // Exerc. Sport Sci. Rev. 1991. — Vol. 19. — P. 507−537.
  250. Tullson P.C., Bangsbo J., Hellsten Y., Richter E.A. IMP metabolism in human skeletal muscle after exhaustive exetcise // J. Appl. Physiol. 1995. -Vol. 78, № l.-P. 146−152.
  251. Tullson P.C., Arabadjis P.G., Rundell K.W., Teijung R.L. IMP reamination to AMP in rat skeletal muscle fiber types // Am. J. Physiol. 1996. — Vol. 270.-P. 1067−1074.
  252. Tullson P.C., Rush J.W., Wieringa B., Teijung R.L. Alterations in AMP diaminase activity and kinetics in skeletal muscle of creatine kinase-deficient mice // Am. J. Physiol. 1998. — Vol. 274. — P. 1411−1416.
  253. Tunc O., Thompson J., Tremellen K. Improvement in sperm DNA quality using an oral antioxidant therapy // Reprod: Biomed: Online. 2009. — Vol. 18, № 6.-P. 761−768.
  254. Unsal A., Devrim E., Guven C. et al. Propofol attenuates reperfusion injury after testicular torsion and detorsion // World’J. Urol. 2004. — Vol. 22, № 6.-P. 461−465:
  255. Vaithinathan S., Saradha B., Mathur P.P. Methoxychlor induces apoptosis via mitochondria and FasL-mediated pathways in. adult rat testis // Chem. Biol. Interact. 2010. — Vol. 185, № 2. — P. 110−118.
  256. Vazquez-Memije M: E., Gapin R., Tolosa A., El-Hafidi M. Analysis of age-associated changes in mitochondrial free radical generation by rat testis // Mol. Cell. Biochem. 2008. — Vol. 307, № 1−2. — P. 23−30.
  257. Verratti V., Di Giulio C, Berardinelli F. et al. Pampiniform-plexus and oxidative- stress during- chronic hypoxia and hyperoxia // Int. J: Immunopathol. Pharmacol. 2008. — Vol. 21, № 2. — P. 353−357.
  258. Wang: J.S., Lin C.T. Systemic hypoxia promotes lymphocyte apoptosis induced .by oxidative stress during moderate exercise // Eur. J. Appl. Physiol. -2010--Vol. 108, № 2.-P. 371−382.
  259. Zanotto-Filho A., Schroder R.,.Moreira J.G. Xanthine oxidase-dependent ROS production mediates vitamin A pro-oxidant effects in cultured Sertoli cells // Free Radic. Res. 2008. — Vol- 42, № 6. — P. 593−601.
  260. Zhang K., Shang Y., Liao S. et al. Uncoupling protein 2 protects testicular, germ cells from hyperthermia-induced- apoptosis // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2007. — Vol. 360, № 2. — P. 327−332.
  261. Zhang Z., Blake D.R., Stevens C.R. et al. A reappraisal of xanthine dehydrogenase and oxidase in hypoxic reperfusion injury: the role of NADH as an electron donor // Free Radic: Res. 1998: — V. 28-.№ 2. — V. 151−164.
  262. Zhao- S., Snow R.J.: Stathis G.G. et al. Muscle adenine nucleotide metabolism during andl int recovery- fromsmaximali exercise in humans // J. Appl. PhysioK 2000″ - Vol- 88j № 5: — PM'516−15 191
  263. Zhou J.C., Zhao H., Li J.G., et al. Selenoprotein^gene expression in thyroid andlpituitary of young-pigs, is not affected by dietary selenium deficiency or excess//LNutr-2009/-Vol: 139? № 6--P- 1061−1066-
  264. Zhu- Q: Emanuele MiA., La, Paglia Ni et: al- Vitamin* E prevents ethanol-induced inflammatory, hormonal, andi cytotoxic changes in reproductive tissues // Endocrine: 2007. — Vol- 32, № 1. — P- 59−68:.
  265. Zimmer H-G. Regulation of and intervention into the oxidative pentose phosphate pathway and adenine nucleotide metabolism in the heart // Mol. Gell. Biochem. 1996. — Vol. 160−161. — P. 101−109.
  266. Zimmer H:-G. Significance of the 5-phosphoribosyl-1 -pyrophosphate pool for- cardiac-purine- and pyrimidine. nucleotide synthesis: studies withiribose, adenine, inosine, and^orotic acid in rats// Cardiovasc. Drugs. Ther. 1998. Vol. 12.-P. 179−187.
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?