Физико-химическая организация цитоскелета и водный обмен озимой пшеницы при действии низкой температуры и абсцизовой кислоты
Сделать вывод о более высокой устойчивости МТ в клетках зоны дифференциации по сравнению с таковой в клетках зон меристемы и растяжения. В клетках последних актиновый цитоскелет был представлен толстыми, состоящими из нескольких МФ пучками, по-видимому, выполняющими роль остова, организующего многочисленные тубулиновые компоненты цитоскелета корней. Это предположение подтверждается данными других… Читать ещё >
Содержание
- ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
- 1. 1. Цитоскелет растений: интегрирующая и структурно -функциональная роль в клетках
- 1. 1. 1. Микротрубочки
- 1. 1. 2. Микрофиламенты
- 1. 1. 3. Промежуточные филаменты
- 1. 1. 4. Цитоскелет как целостная внутриклеточная система
- 1. 2. Мембранно-ассоциированный цитоскелет
- 1. 3. Влияние низких температур на структурное состояние и стабильность цитоскелета
- 1. 3. 1. МТ и МФ растительных клеток при действии низких температур
- 1. 3. 2. Механизмы увеличения стабильности основных компонентов цитдскелета к холоду
- 1. 4. Зависимость состояния и транспорта воды в клетках от цитоскелета
- 1. 5. АБК как индуктор морозоустойчивости растений
- 1. 1. Цитоскелет растений: интегрирующая и структурно -функциональная роль в клетках
- ГЛАВА 2. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТ
- 2. 1. Объекты, схема и методика исследований
- 2. 1. 1. Условия выращивания растений и схема опытов
- 2. 1. 2. Исследование цитоскелетных и фосфорилированных белков в клетках методом одномерного электрофореза и иммуноблотинга
- 2. 1. 3. Метод непрямой иммунофлуоресцентной микроскопии для визуализации тубулинового и актинового цитоскелета в клетках разных органов проростков с использованием воска Стидманса
- 2. 1. 3. 1. Методика I для визуализации МТ в клетках корней
- 2. 1. 3. 2. Методика II для визуализации МТ и МФ в клетках корней, колеоптилей и листьев
- 2. 1. 4. Методический подход для выявление зависимости водного обмена от структурного состояния цитоскелета
- 2. 1. 5. Приготовление растворов ингибиторов и стабилизаторов цитоскелета
- 2. 1. 6. Методика определения водоудерживающей способности
- 2. 1. 7. Измерение биофизических показателей водного обмена
- 2. 1. 8. Изучение проницаемости мембран по выходу электролитов из тканей
- 2. 1. 9. Оценка морозоустойчивости растений по ЛТ
- 2. 1. 10. Статобработка
- 2. 1. Объекты, схема и методика исследований
- 3. 1. Иммунохимическое изучение цитоскелетных и фосфорилированных белков в экстрактах листьев и корней проростков разных сортов озимой пшеницы при действии низких температур и АБК
- 3. 1. 1. Иммунохимическое исследование цитоскелетных белков
- 3. 1. 1. 1. Иммуноблоты а-тубулиновых белков
- 3. 1. 1. 2. Иммуноблоты {3-тубулиновых белков
- 3. 1. 1. 3. Иммуноблоты актиновых белков
- 3. 1. 1. 4. Иммуноблоты (3-тубулиновых и актиновых белков молодых проростков
- 3. 1. 1. 5. Иммуноблоты а- и (3-тубулиновых белков проростков, подвергшихся криострессу
- 3. 1. 2. Иммунохимическое исследование фосфорилированных белков
- 3. 1. 1. Иммунохимическое исследование цитоскелетных белков
- 3. 2. Иммунофлуоресцентная визуализация тубулинового и актинового цитоскелета в клетках корней, колеоптилей и листьев с использованием воска с низкой точкой плавления
- 3. 2. 1. Конфокальные изображения тубулинового цитоскелета в интерфазных меристематических клетках корней разных сортов пшеницы
- 3. 2. 2. Визуализация тубулиновых компонентов в делящихся клетках, разных зонах корней, колеоптилях и листьях проростков различного возраста
- 3. 2. 3. Визуализация актиновых МФ в клетках разных зон корней
- 3. 3. Иммуноцитохимическое исследование влияния АБК и закаливания растений к холоду на содержание, структуру и стабильность тубулиновых и актиновых компонентов цитоскелета в разных зонах корней
- 3. 3. 1. Содержание тубулиновых белков
- 3. 3. 2. Содержание тубулиновых белков в обработанных оризалином корнях
- 3. 3. 3. Структура тубулинового цитоскелета: ориентация, пространственная локализация, уровень агрегации и иммунофлуоресценции МТ
- 3. 3. 4. Структура и стабильность МТ в обработанных оризалином корнях
- 3. 3. 5. Структура актинового цитоскелета: ориентация, пространственная локализация, уровень агрегации и иммунофлуоресценции МФ
3.4. Изучение эффектов последействия АБК на структурное состояние и стабильность тубулиновых компонентов цитоскелета в клетках разных зон корней с использованием метода непрямой иммунофлуоресцентной микроскопии
3.4.1. Структурная организация МТ-скелета.
3.4.2. Стабильность МТ-скелета.
3.5. Индуцированные модификаторами цитоскелета изменения физиологических и биофизических показателей водного обмена растений разных сортов озимой пшеницы при действии низких температур и АБК
3.5.1. Влияние цитохалазина Б и колхицина на ВС листьев проростков, выращенных в нормальных условиях (без закаливания).
3.5.2. Эффект пипольфена и осмотического стресса на ВС листьев, обработанных колхицином и цитохалазином Б.
3.5.3. Действие разных концентраций СаСЬ на ВС листьев, обработанных колхицином и цитохалазином Б.
3.5.4. Влияние колхицина и ДМСО на ВС листьев незакалённых и холодозакалённых проростков.
3.5.5. Эффект оризалина на водный обмен незакалённых, закалённых к холоду и обработанных АБК проростков
3.5.5.1. Водоудерживающая способность и времена спин-спиновой релаксации (Т2) проростков, закалённых к холоду в течение 3 суток.
3.5.5.1.1. ВС листьев.
3.5.5.1.2. ВС корней.
3.5.5.1.3. Т2 листьев и корней.
3.5.5.2. ВС листьев и биофизические показатели водного обмена проростков, закалённых к холоду в течение 7 суток
3.5.5.2.1. ВС листьев.
3.5.5.2.2. Времена спин-спиновой релаксации (Т2) и эффективный коэффициент саммодиффузии воды (ДЭфф) листьев.
3.5.6. Действие ингибиторов цитоскелета на ВС листьев проростков в условиях криостресса разной силы.
3.6. Вызываемые оризалином изменения проницаемости плазматических мембран клеток незакалённых, закалённых к холоду и обработанных АБК растений
3.6.1. Проницаемость мембран клеток листьев и корней при закаливании растений к холоду в течение 3 суток.
3.6.2. Проницаемость мембран клеток листьев при закаливании растений к холоду в течение 7 суток.
3.7. Оценка морозоустойчивости листьев и корней закалённых к холоду и обработанных АБК проростков.
Список литературы
- Аксёнов С.И. Метод ЯМР-релаксации // Новые физические методы в биологических исследованиях.- М.: Наука, 1987. С.147−163.
- Аксёнова Л.А., Зак Е.А., Куликова А. Л., Клячко H.JI. 40 кД белок из листьев Vicia faba: актин или родственный актину белок // Физиология растений. 1998. Т. 45, № 2. С. 218−226.
- Албертс Б., Брей Д. Молекулярная биология клетки.- М.: Мир, 1987. Т.З. 296с.
- Алексеев A.M. Водный режим клеток растения в связи с обменом веществ и структурированностью цитоплазмы. 28-е Тимирязевское чтение.- М.: Наука, 1969. 35 с.
- Аллен Р.Д. Микротрубочки- внутриклеточный мотор // В мире науки. 1985, № 12. С. 56−62.
- Анисимов A.B., Самуилов И. Ф., Гусев H.A. Межклеточный диффузионный перенос воды после действия пониженных температур. Исследования импульсным методом ЯМР // Биофизика. 1982. Т.92, № 1. С. 51−58.
- Аршавский И. А., Калевич А. Б., Кефели В. И. К анализу роли цитоскелета зародышей растительных организмов в эволюции процессов роста и развития // Биофизика. 1992. Т. 37, № 5. С. 983−992.
- Блюм Я.Б., Страшнюк Н. М. Получение мутантов по генам белков микротрубочек // Цитология и генетика. 1993. Т. 27, № 6. С. 79−95.
- Браун А.Д., Моженок Т. П. Неспецифический адаптационный синдром клеточной системы.- Ленинград: Наука, 1987. 230 с.
- Васильев А.Е. Сравнительная структурно-функциональная характеристика цитоскелета животных и высших растений // Ж. общей биологии. 1996. Т. 57. С. 293−325.
- П.Вебер К., Осборн М. Молекулы клеточного матрикса // В мире науки. 1985, № 12. С. 62−64.215
- Великанов Г. А., Гордон JI.X., Волков В. Я., Барышева Т. С. Изучение проницаемости клеточных мембран для воды методом ЯМР // Физиология и биохимия культурных растений. 1977. Т.9, № 2. С. 197−201.
- Войников В.К., Корытов М. В. Синтез стрессовых белков в проростках озимой пшеницы при закаливании к холоду // Физиология растений. 1991. Т.38, вып.5. С. 960−969.
- Волков В.Я., Баширов Ф. И., Даутов Р. К. и др. Изучение пространственно- ограниченной самодиффузии молекул импульсным методом ЯМР // Некоторые вопросы физики жидкостей. 1976. Вып. 6. С. 65−88.
- Гордон JI.X., Муравьёва A.C., Бичурина А. А., Алексеева В. Я. К вопросу о влиянии кальция на проницаемость клеток корня для воды // Докл. АН СССР. 1973. Т.21, № 6. С. 1466- 1468.
- Гудвин Т., Мерсер Э. Введение в биохимию растений.- М.: Мир, 1986. Т. 1.275 с.
- Гусев H.A. Некоторые методы исследования водного режима растений.-М.: Изд. АН СССР, 1960. 60 с.
- Гусев Н.Г., Киваева JI.C. О физиологическом значении и современных методах исследования водообмена и состояния воды растений // Физиология и биохимия культурных растений. 1978. Т.10, № 1. С. 3−17.
- Гусев H.A., Самуилов Ф. Д., Пахомова Г. И., Жолкевич В. Н. Состояние воды в растении // Водный обмен растений.- М.: Наука, 1989. С.21−44.
- Дорогова Н.В., Шамина Н. В. Особенности цитокинеза в клетках высших растений//Цитология. 1994. Т.36, № 9/10. С. 899−914.
- Жолкевич В.Н., Чугунова Т. В. Об участии паренхимных клеток в насасывающей деятельности корня // Докл. АН СССР. 1987. Т.297, № 3. С. 758 761.
- Жолкевич В.Н., Чугунова Т. В. О взаимодействии белков цитоскелета, биомедиаторов и фитогормонов при регуляции транспорта воды в растении//Докл. АН СССР. 1995. Т.341, № 1. С. 122−125.216
- Ильящук Е.М., Лихолат Д. А. Влияние низкой температуры на содержание абсцизовой и индолилуксусной кислот в растениях озимой и яровой пшеницы на ранних фазах развития // Физиология и биохимия культурных растений. 1989. Т.21, № 3. С. 286.
- Исабеков Б.Н., Красавцев O.A. Осмотические свойства морозостойких протопластов // Физиология растений. 1989. Т. 36, вып. 2. С. 372−381.
- Каппуччинелли П. Подвижность живых клеток.- М.: Мир, 1982. 125с.
- Каримова Ф.Г., Жуков С. Н. Влияние цАМФ на фосфорилирование белков листьев гороха при низкой положительной температуре // Докл. АН СССР. 1991. Т. 316, № 5. С. 1277−1279.
- Кефели В.И., Коф Э.М., Власов П. В., Кислин E.H. Природный ингибитор роста- абсцизовая кислота.- М.: Наука, 1989. 184с.
- Красавцев O.A. Физиология закаливания растений отрицательными температурами: Автореф. диссерт. док. биол. наук. Москва: ИФР РАН, 1974. 44с.
- Красавцев O.A. Свойства плазмалеммы морозостойких растительных клеток // Успехи современной биологии. 1988. Т. 106, вып. 1, № 4. С. 143 158.
- Клячко Н.Л. Белоксинтезирующий аппарат и цитоскелет // Физиология растений. 1998. Т. 45, № 2. С. 208−217.
- Колесниченко A.B., Побежимова Т. П., Войников В. К. Характеристика белков низкотемпературного стресса растений // Физиология растений. 2000. Т. 47, № 4. С. 624−630.
- Ларская И.А. Ответные реакции клетки на действие закаливающей температуры: Автореф. диссерт. канд. биол. наук. Казань: КИБ КНЦ РАН, 1996. 24с.
- Медведев С.С., Маркова И. В. Цитоскелет и полярность растений // Физиология растений. 1998. Т. 45, № 2. С. 185−197.217
- Можаева Л.В., Пилыцикова Н. В. О природе нагнетания воды корнями растений // Известия ТСХА. 1972. Вып. 3. С. 3−15.
- Можаева JI.B., Пилыцикова Н. В. О неосмотическом поступлении воды в сосуды корня // Известия ТСХА. 1976. Вып. 6. С. 3−11.
- Муромцев Г. С., Чкаников Д. И., Кулаева О., Гамбург К. З. Основы химической регуляции роста и продуктивности растений. М.: Агропромиздат, 1987.384 с.
- Парфёнова Е.А. Интегральные переходные ионные токи через мембраны изолированных вакуолей и протопластов из клеток высших растений: Ав-тореф. дис. канд. биол. наук.- Казань: КИБ КНЦ РАН, 1994. 25 с.
- Першина В.П., Пинаев Г. П., Гончарова Е. И. Взаимодействие актина с фракцией плазматических мембран клеток суспензионной сублинии мышиных фибробластов // Цитология. 1990. Т. 32, № 12. С. 1198−1204.
- Полевой В.В. Физиология растений.- М.: Высшая школа, 1989. 463с.
- Пустовойтова Т.Н. Абсцизовая кислота и засухоустойчивость растений // Водный режим сельскохозяйственных растений (Материалы 1 Респ. симп. физиологов и биохимиков).- Кишинёв, 1989. С. 37−41.
- Пустовойтова Т.Н., Жолкевич В. И. Основные направления в изучении влияния засухи на физиологические процессы у растения // Физиология и биохимия культурных растений. 1992. Т. 24, № 1. С. 14−18.
- Рощина В.В. Биомедиаторы в растениях. Ацетилхолин и биогенные амины.-Пущино, 1991. 192с.
- Снигиревская Е.С. Изменения ультраструктуры клеток вазопрессин-чувствительных эпителиев при стимуляции транспорта воды // Цитология. 1990. Т.32, № 8. С. 766−794.
- Соколов О.И., Грингауз O.K., Рихтер Т. Я. Идентификация F- актина растений фаллоидин-коллоидным золотом // Биохимические препараты. 1998. Т. 45, № 2. С. 227−234.218
- Сопина Н.Ф., Карасёв Т. С., Трунова Т. И. АБК как фактор закаливания суспензионной культуры пшеницы к морозу // Физиология растений. 1994. Т.41, № 4. С.546−551.
- Таланова В.В., Титов А. Ф., Боева Н. П. Изменение уровня эндогенной абсцизовой кислоты в листьях растений под влиянием холодовой и тепловой закалки // Физиология растений. 1991. Т.38, № 5. С. 991−997.
- Туманов М.М. Физиология закаливания и морозостойкость растений.-М.: Наука, 1979.350с.
- Туркина М.В., Куликова JI.A. и др. Актин и термостабильные актин-связывающие белки в культуре клеток пшеницы // Физиология растений. 1985. Т. 42, № 3. С. 348−355.
- Фултон А. Цитоскелет. Архитектура и хореография клетки.- М.: Мир, 1987. 115с.
- Хохлова Л.П., Олиневич О. В., Панкратова О. В. Изменение водоудерживающей способности тканей озимой пшеницы под влиянием структурных модификаторов цитоскелета // Физиология растений. 1997а. Т.44, № 3. С.379−384.
- Хохлова Л.П., Палих Э., Олиневич О. В., Тараканова Н. Ю. Влияние ингибиторов цитоскелета на водный обмен растений в связи с закаливанием к холоду и разными условиями замораживания- оттаивания // Цитология. 19 976. Т.39, № 4/5. С.294−304.
- Четверикова Е.П. Роль абсцизовой кислоты в морозоустойчивости растений и криоконсервация культур in vitro II Физиология растений. 1999. Т. 46, № 5. С. 823−829.
- Шарманкин С.В., Мережинский Ю. Г. Выделение белков микротрубочек из растений // Физиология и биохимия культурных растений. 1991. Т. 23, № 5. С. 513−515.
- Ягушева М.Р. Влияние абсцизовой кислоты на функционирование кальциевой и аденилатциклазной сигнальной систем.- Автореф. дис. канд. биол. наук. Казань: КИББ КНЦ РАН, 2000. 24с.
- Abe S., Ito., Davies Е. Association of cytoskeletal protein in the membrane-bound polysome fraction from peas using conventional polysome isolation buffers // Plant Physiol. Biochem. 1994. V. 32. P. 547−554.
- Abromeit M., Dorffling K. ABA and frost tolerance in winter wheat // Crop Adaptation to Cool Climates / Ed. Dorffling K., Brettschneider В., Tantau H., Pithan K. Germany: Acad. Press, 1994. P. 223−229.
- Aderem A. Signal transduction and the actin cytoskeleton: the roles of MARCKS and profilin // TIBS. 1992. V.17. P. 438−443.
- Akashi Т., Kawasaki S., Shibaoka H. Stabilization of cortical microtubules by the cell wall in cultured tobacco cells: effects of extensin on the cold- stability of cortical microtubules // Planta. 1990. V. 182. P. 363−369.
- Akashi Т., Shibaoka H. Involvement of transmembrane proteins in the association of cortical microtubules with the plasma membrane in tobacco BY-2 cells // J. Cell Science. 1991. V. 98. P. 169−174.
- Amos L.A. Structure of microtubules // Microtubules / Ed. Roberts K., Hyams J.S. London: Academic Press, 1979. 64 p.220
- Anthony R. G., Hussey P.J. Dinitroaniline herbicide resistance and the microtubule cytoskeleton // Trends in Plant Science. 1999. V. 4. P. 112−116.
- Asada T., Sonobe S., Shibaoka H. Microtubule translocation in the cytokinetic apparatus of cultured tobacco cells // Nature. 1991. V. 350. P. 238−241.
- Assmann S. Signal transduction in guard cells // Annu. Rev. Cell Biol. 1993. V.9. P. 345−375.
- Astrom H., Virtanen I., Raudaskoski M. Cold-stability in the pollen tube cytoskeleton // Protoplasma. 1991. V.160. P.99−107.
- Astrom H. Acetylated a-tubulin in the pollen tube microtubules // Cell Biology Inter. Reports. 1992.V.16. P. 871−881.
- Astrom H. The structure and function of tobacco pollen tube cytoskeleton. -Academic dissertation: Helsinki, 1997. 263 p.
- Aszalos A., Yang G., Gottesman M. Depolymerization of microtubules increases the motional freedom of molecular probes in cellular plasma membranes //J. of Cell Biol. 1985. V. 100. P. 1357−1362.
- Baluska F., Parker J.S., Barlow P.W. Specific patterns of cortical and endoplasmic microtubules associated with cell growth and tissue differentiation in roots of maize {Zea mays L.) // J. Cell Sci. 1992. V. 103. P. 191−200.
- Baluska F., Parker J.S., Barlow P.W. The microtubular cytoskeleton in cells of cold-treated roots of maize {Zea mays L.) shows tissue-specific responses // Protoplasma. 1993. V.172. P. 84−96.
- Baluska F., Barlow P.W., Lichtscheidl I.K., Volkmann D. The plant body: a cytoskeletal tool for cellular development and morphogenesis // Protoplasma.1998. V. 202. P. 1−10.221
- Bartolo M.E., Carter J.V. Microtubules in mesophyll cells of nonacclimated and cold-acclimated spinach // Plant Physiol. 1991. V.97. P. 175−181.
- Baskin T.I., Bivens N.J. Stimulation of radial expansion in arabidopsis roots by inhibitors of actomyosin and vesicle secretion but not by various inhibitors of metabolism // Planta. 1995. V. 197. P. 514−521.
- Baskin T.I., Wilson J.E. Inhibitors of protein kinases and phosphatases alter root morphology and disorganize cortical microtubules // Plant Physiol. 1997. V. 113. P. 493−502.
- Beall P.T. Water- macromolecular interactions during the cell cycle // Nuclear cytoplasmic interactions in the cell cycle.- New York: Academic Press, 1980. P. 223−270.
- Bergeron D., Beauseigle D., Bellemare G. Sequence and expression of a gene encoding a protein with RNA-binding and glycine-rich domains in Brassica Yicipus II Biochimica et Biophysica Acta. 1993. V. 1216. P. 123−125.
- Beven A., Guan Y., Peart J., Cooper C., Shaw P. Monoclonal antibodies to plant nuclear matrix reveal intermediate filament-related components within the nucleus // J. Cell Sci. 1991. V. 98. P. 293−302.
- Bhattacharyya B., Sackett D.L., Wolff J. Tubulin, hybrid dimers, and tubulin S. Stepwise charge reduction and polymerization // J. of Biol. Chemistry. 1985. V. 260. P. 10 280−10 216.
- Bissell M.J., Hall H.G., Parry G. How does the extracellular matrix direct gene expression? // J. Theor. Biol. 1982. V. 99. P. 31−68.
- Blumenfeld A., Bukovak M.J. Cuticular penetration of ABA // Planta. 1972. V. 107. P. 261−268.
- Bohn M., Dorffling K. Changes of phospholipid contents in wheat seedling induced by cold hardening and abscisic acid // New Biological Approach to Understand and Improve Winter Survival of Plants. Arhus, Denmark: Acad. Press, 1996. P. 11−13.222
- Bradford M. A. Rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding // Biochem. 1976. V. 72. P. 248−254.
- Bulinski J.C., Gundersen G.G. Stabilization and post-translational modification of microtubules during cellular morphogenesis // BioEssays. 1991. V.13. P.285−293.
- Capell B., Dorffling K. Low temperature- induced changes of abscisic acid contents in barley and cucumber leaves in relation to their water status // J. Plant Physiol. 1989. V. 135. P. 571−575.
- Carr H.Y., Parcell E.M. Effect of diffusion on free precession in nuclear magnetic resonance experiments // Phys. Rev. 1954. V. 94. P. 630−638.
- Carter J.V., Wick S. Irreversible microtubule depolymerization associated with freezing injury in Allium sera root tip cells // Cryo. Lett. 1984. V. 5. P. 373−382.
- Chan J., Rutten T., Lloyd C. Isolation of microtubule- associated proteins from carrot cytoskeletons: a 120 kDa map decorates all four microtubule arrays and the nucleus // The Plant Journal. 1996. V. 10. P. 251−259.
- Chen T.H., Li P.H., Brenner M.L. Involvement of abscisic acid in potato cold acclimation // Plant Physiol. 1983. V. 71. P. 362−365.
- Chanson A., Pilet P.E. Transport and metabolism of (2−14C) abscisic acid in maize root // Planta. 1982. V. 154. P. 556−561.
- Cho S.O., Wick S.M. Distribution and function of actin in the developing sto-matal complex of winter rye {Secale cereale cv. Puma) II Protoplasma. 1990. V. 157. P. 254−264.
- Chu B., Xin Z., Li P.H., Carter J.V. Depolymerization of cortical microtubules is not a primary cause of chilling injury in corn {Zea mays L. cv. black mexicansweet) suspension culture cells // Plant, Cell and Environment. 1992. V.15. P. 307−312.
- Chu B., Snustad D. P., Carter J.V. Alteration of p-tubulin gene expression during low-temperature exposure in leaves of Arabidopsis thaliana // Plant Physiol. 1993. V.103. P. 371−377.
- Cleary A.L., Gunning B.E., Wasteneys G.O., Hepler P.K. Microtubule and F-actin dynamics at the division site in living Tradescantia stamen hair cells // J. Cell Sci. 1992. V. 103. P. 977−988.
- Clegg J.S. Intracellular water and the cytomatrix: some methods of study and current views // J. Cell Biol. 1984. V. 99. P. 167−171.
- Cleveland D.W. Autoregulated instability of tubulin mRNAs: a novel eukary-otic regulatory mechanism // TIBS. 1988. V. 13. P. 339−343.
- Close T.J., Fenton R.D., Moonan F. A view of plant dehydrins using antibodies specific to the carboxy terminal peptid // Plant Mol. Biol. 1993. V. 23. P. 279−286.
- Collings D.A., Asada T., Allen N.S., Shibaoka H. Plasma membrane-associated actin in Bright Yellow 2 tobacco cells. Evidence for interactions with microtubules // Plant Physiol. 1998. V. 118. P. 917−928.
- Cooper R.L., Chang D.B., Joung A.C. et al. Restricted diffusion in biological systems //Biophys. 1974. V. 4. P. 161−177.
- Cramer G.R., Jones R.L. Osmotic stress and abscisic acid reduce cytosolic calcium activities in roots of Arabidopsis thaliana // Plant Cell and Envir. 1996. V. 19. P. 1291−1298.224
- Crossin K.L., Carney D.H. Evidence that microtubule depolymerization erly in the cell cycle is sufficient to initiate DNA synthesis // Cell. 1981. V. 21. P. 61−71.
- Cyr RJ. Calcium/calmodulin affects microtubule stability in lysed protoplasts //J. of Cell Sci. 1991.V. 100. P. 311−317.
- Cyr R. J. Microtubules in plant morphogenesis: role of the cortical array // Annu. Rev. Cell Biol. 1994. V. 10. P. 153−180.
- Cyr R.J., Palevitz B.A. Organization of cortical microtubules in plant cells // Curr. Opin. Cell Biol. 1995. V.7. P. 65−71.
- Dallaire S., Houde M., Gagne Y., Saini H.S., Boileau S., Chevrier N., Sarhan F. ABA and low temperature induce freezing tolerance via distinct regulatory pathways in wheat // Plant Cell Physiol. 1994. V. 35. P. 1−9.
- Danyluk J., Carpentier E., Sahan F. Identification and characterization of a low temperature regulated gene encoding an actin- binding protein from wheat // FEBS Letters. 1996. V. 389. P. 324−327.
- Dawson P.J., Hulme J.S., Lloyd C.W. Monoclonal antibody to intermediate filament antigen cross- reacts with higher plant cells // J. Cell Biol. 1985. V. 100. P. 1793- 1798.
- Dawson P. J., Lloyd C.W. Comparative biochemistry of plant and animal tubulin // The Biochemistry of Plants / Ed. Davies D.D. New York: Academic Press, 1987. P. 3−47.
- Derksen J., Emons A.M. Microtubules in tip growth systems // Tip Growth in Plant and Fungal Cells / Ed. Heath I.B. San Diego, California: Academic Press, 1990. P. 147−181.
- Dexter S.T. Effect of several environmental factors on the hardening of plants //PlantPhysiol. 1933. V. 8. P. 123−139.
- Ding B., Kwon M., Warnberg L. Evidence that actin filaments are involved in controlling the permeability of plasmodesmata in tobacco mesophyll // The Plant J. 1996. V. 10. P. 157−164.
- Ding A., Turgeon R., Parthasarathy M.V. Microfilament organization and distribution in freeze-substituted tobacco plant tissues // Protoplasma. 1991. V.165.P. 96−105.
- Ducket C.M., Lloyd C. Gibberellic acid-induced microtubule reorientation in dwarf peas is accompanied by rapid modification of an a-tubulin isotype // Plant J. 1994. V. 5. P. 363−372.
- Dugas C.M., Li Q., Khan I.A., Nothnagel E. A. Lateral diffusion in the plasma membrane of maize protoplast with implications for cell culture // Planta. 1989. V. 179. P. 387−396.
- Dure L. Structural motifs in LEA proteins of higher plants // Response of Plants to Cellular Dehydration During Environmental Stress / Ed. Close T.J., Bray E.A. Rockvill: MD. ISBN 0−943 088−26−7, 1993. P. 91−103.
- Durica D. S., Schlass J.A., Grain W.R. Organization of actin gene seguences in the sea urchin molecular cloning of a intron-containing DNA sequence coding for a cytoplasmic actin // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1980. V. 77. P. 56 835 687.
- Egly J.M., Miyamoto N., Moncollin V., Chambon P. Is actin a transcription factor for RNA polymerase B? // EMBO J. 1984. V. 3. P. 2363−2371.
- Erickson H.P., O’Brien E.T. Microtubule dynamic instability and GTP hydrolysis // Ann. Rev. Biophys. 1992. V. 21. P. 145−166.226
- Eim S., Lee Y. Actin filaments of guard cell are reorganized in response to light and abscisic acid // Plant Physiol. 1997. V. 115. P. 1491- 1498.
- Farkas T., Singh B., Nemecz G. Abscisic acid-related changes in composition and physical state of membranes in bean leaves // Plant Phisiol. 1985. V. 118. P. 373−379.
- Ferrua B., Manie S., Doglio A., Shaw A., Sonthonnax S., Limouse M., Schaf-far L. Stimulation of human interleukin 1 production and specific mRNA expression by microtubule disrupting drugs // Cell Immunol. 1990. V. 131. P. 391−397.
- Finkelstein A. Water movement through lipid bilayer, pores, and plasma membranes, theory and reality.- New York: Wiley, 1987. 214p.
- Firtel R. A. Multigene families encoding actin and tubulin // Cell. 1981. V. 24. P. 6−7.
- Fisher D., Gilroy S., Cyr R. Evidence for opposing effects of calmodulin on cortical microtubules//Plant Physiol. 1996. V. 112. P. 1079- 1087.
- Flores-Nimedez A., Vergara B.S., Dorffling K. Effect of synthetic phytohor-mone analog on leaf water potential during chilling // IRRN. 1990. V. 15. P. 218.
- Foissner I., Wasteneys G.O. Taxol stabilizes microtubules in characean internodal cells but does not prevent their disassembly at wound sites // Cell Biol. Inter. 1997. V. 21. P. 866−867.
- Fosket D. Cytoskeletal proteins and their genes in higher plants // Biochemistry of Plants. Molecular Biology / Ed. Stumpf P., Conn E.E. New York: Academic Press, 1989. V.15. P. 393−454.
- Fosket D.E., Morejohn L.C. Structural and functional organization of tubulin // Annu. Rev. Plant Physiol. 1992. V. 43. P. 201−240.
- Fukuda H. Tracheary element differentiation // Plant Cell. 1997. V. 9. P. 1147−1156.227
- Galiba G., Tuberosa R., Kocsy G., Sutka J. Involvement of chromosomes 5A and 5D in cold-induced abscisic acid accumulation and frost tolerance of wheat calli // Plant Breeding. 1993. V. 110. P. 237−242.
- Gao Y. P., Young L., Bonham-Smith P., Gusta L.V. Characterization and expression of plasma and tonoplast membrane aquaporins in primed seed of Bras-sica napus during germination under stress conditions // Plant Molec. Biol. 1999. V. 40. P. 635−644.
- Giani S., Qin X., Faoro F., Breviario D. In rice, oryzalin and abscisic acid differentially affect tubulin mPNA and protein levels // Planta. 1998. V. 205 .P. 334- 341.
- Glinka Z. Abscisic acid promotes both volume flow and ion release to the xylem in sunflower roots // Plant Physiol. 1980. V. 65. P. 537−540.
- Goddard R.H., Wick S.M., Silflow C.D., Snustad D.P. Microtubule components of plant cell cytoskeleton // Plant Physiol. 1994. V. 104. P. 1−6.
- Godoy J.A., Lunar R., Torres-Schumann S., Moreno J., Rodrigo R.M., Pintor-Toro J.A. Expression tissue distribution and subcellular localization of dehydrin TAS14 in salt-stressed tomato plants // Plant Mol. Biol. 1994. V. 26. P. 19 211 934.
- Gusta L.V., Fowler D.B., Chen P. A nuclear magnetic resonance study of water in cold-acclimating cereals // Plant Physiol. 1979. V. 63. P. 627−634.
- Gusta L.V., Wilen R.W., Fu P. Low-temperature stress tolerance: The role of abscisic acid, sugars, and heat-stable proteins //HortScience. 1996. V.31. P. 3946.228
- Guy C.L. Cold acclimation and freezing stress tolerance: Role of protein metabolism // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1990. V. 41. P. 187−223.
- Guy C.L., Haskell D. Induction of freezing tolerance in spinach is associated with the synthesis of cold acclimation induced proteins // Plant Physiol. 1987. V. 84. P. 872.
- Hahne G., Hoffman G. Dimethyl sulfoxide can initiate cell divisions of arrested callus protoplast by promoting cortical microtubule assembly // Proc. Natl.
- Acad. Sci. USA. 1984. V. 81. P. 5449−5453.
- Hardham A.R., Gunning B.E.S. Structure of cortical microtubule arrays in plant cells // J. Cell Biol. 1978. V. 77. P. 14−34.
- Hasezawa S., Sano T., Nagata T. The role of microfilaments in the organization and orientation of microtubules during the cell cycle transition from M phase to G1 phase in tobacco BY- 2 cells // Protoplasma. 1998. V. 202. P. 105 114.
- Himes R.H., Burton P.R., Gaito J.M. Dimethyl sulfoxide induced self-assembly of tubulin lacking associated proteins // J. Biol. Chem. 1977. V. 252. P. 6222−6228.
- Hogetsu T. Re-formation of microtubules in Closterium ehrenbergii Me-neghini after cold- induced depolymerization // Planta. 1986. V. 167. P. 437 443.
- Holappa I., Walker-Simmons M.K. The wheat abscisic acid responsive protein kinase mRNA, PKABA1, is up-regulated by dehydration, cold temperature, and osmotic stress // Plant Physiol. 1995. V. 108. P. 1203−1210.
- Hong S.W., Jon J.H., Kwak J.M., Nam H.G. Identification of a receptor-like protein kinase gene rapidly induced by abscisic acid, dehydration, high salt, and229cold treatments in Arabidopsis thaliana II Plant Physiol. 1997.V.113. P. 12 031 212.
- Houde M., Claude D., Lachapelle M., Allard F., Laliberte S., Sarhan F. Im-munolocalization of freezing-tolerance-associated proteins in the cytoplasm and nucleoplasm of wheat crown tissues // The Plant J. 1995. V. 8. P. 583- 593.
- Hughahl J.D., Bokros C.L., Hanesworth V.R., Aalund G.R., Morejohn L.C. Unique functional characteristics of the polymerization and MAP binding regulatory domains of plant tubulin // The Plant Cell. 1993. V. 5. P. 1063−1080.
- Hughes M., Dunn M. The molecular biology of plant acclimation to low temperature // J. Exper. Bot. 1996. V.47. P.291−305.
- Hunter T., Karin M. The regulation of transcription by phosphorylation // Cell. 1992. V. 70. P. 375−387.
- Hush J. M., Overall R.L. Cortical microtubule reorientation in higher plants: dynamics and regulation//J. of Microscopy. 1996. V. 181. P. 129−139.
- Hwang I.W., Goodman H.M. An Arabidopsis thaliana root specific kinase homolog is induced by dehydration, ABA and NaCl // Plant J. 1995. V. 8. P. 3743.
- Ilker R., Breidenbach R.W., Lyons J.M. Sequence of ultrastructural changes in tomato cotyledons during short periods of chilling // Low Temperature Stress in Crop Plants / Ed. Lyons J.M., Graham D., Raison J.K. London: Academic Press, 1979. P. 97−113.
- Ingber D.E. The riddle of morphogenesis: a question of solution chemistry or molecular cell engineering? // Cell. 1993. V. 75. P. 1249−1252.
- Janowiak F., Dorffling K. Chilling of maize seedlings: changes in water status and abscisic acid content in ten genotypes differing in chilling tolerance // J. Plant Physiol. 1996. V. 147. P. 582−588.
- Jian L.C., Sun L.H., Lin Z.P. Studies on microtubule cold stability in relation to plant cold hardiness//Acta Bot. Sin. 1989. V. 31. P. 737−741.230
- Jiang C.J., Nakajima N., Kondo N. Disruption of microtubules by abscisic acid in guard cells of Vicia faba L. II Plant and Cell Physiol. 1996. V. 37. P. 697−701.t>
- Jiang C.J., Sonobe S. Identification and preliminary characterization of 65 kDa higher- plant microtubule- associated protein // J. Cell Sci. 1993. V. 105. P. 891−901.
- Johansson I., Karlsson M., Shukla V.K., Chrispeels M.J., Larsson C., Kjell-bom P. Water transport activity of the plasma membrane aquaporin PM28A is regulated by phosphorylation // The Plant Cell. 1998. V. 10. P. 451−459.
- Joshi H.C., Cleveland D.W. Diversity among tubulin subunits: toward what functional end? // Cell Motil Cytoskeleton. 1990. V. 16. P. 159−163.
- Joshi H.C., Palevitz B.A. y-Tubulin and microtubule organization in plants // Trends Cell Biol. 1996. V. 6. P. 41 -44.
- Joyce C.M., Villemur R., Snustad D.P., Silflow C.D. Tubulin gene expression in maize {Zea mays L.) change in isotype expression along the developmental axis of seedling root // J. Mol. Biol. 1992. V. 227. P.97−107.
- Kaldenhoff R., Kolling A. Richter G. Regulation of the Arabidopsis thaliana aquaporin gene ATHH2 (PIPIB) // J. of Photochem. and Photobiol. B-Biology. 1996. V. 36. P. 351−354.
- Kerr G. P, Carter J.V. Relationship between freezing tolerance of root-tip cells and cold stability of microtubules in rye {Secale cereale L. cv Prima) // Plant Physiol. 1990a.V.93. P. 77−82.
- Kerr G.P., Carter J.V. Tubulin isotypes in rye roots are altered during cold acclimation // Plant Physiol. 19 906. V. 93. P. 83−88.231
- Kim S.R., Kim Y., An G., Molecular cloning and characterization of anther-preferential cDNA encoding a putative actin-depolymerizing factor // Plant Mol. Biol. 1993. V. 21. P. 39−45.
- Kjellbom P., Larsson C., Johansson I., Kalsson M., Johanson U. Aquaporins and water homeostasis in plants // Trends in Plant Science. 1999. V. 4. P. 308 314.
- Knight M.R., Campbell A.K., Smith S.M., Trewavas A.J. Transgenic plant aequorin reports the effects of touch and cold-shock and elicitors on cytoplasmic calcium //Nature. 1991. V. 352. P. 524−526.
- Kobayashi H., Fukuda H., Shibaoka H. Interrelation between the spatial disposition of actin filaments and microtubules during the differentiation of tra-cheary elements in cultured Zinnia cells // Protoplasma. 1988. V. 143. P. 29−37.
- Koike M., Takezawa D., Arakawa K., Yoshida S. Accumulation of 19-kDa plasma membrane polypeptide during induction of freezing tolerance in wheat suspension-cultured cells by abscisic acid // Plant and Cell Physiol. 1997. V. 38. P. 707−716.
- Komatsu S., Kato A. Varietal differences in protein phosphorylation during cold treatment of rice leaves // Phytochemistry. 1997. V. 45. P. 1329−1335.232
- Kopczak S.D., Haas N.A., Hussey P.J., Silflow C.D., Snustad D.P. The small genome of Arabidopsis contains at least six expressed a-tubulin genes // Plant Cell. 1992. V.4. P. 539−547.
- Kuiper P.J.C. Water transport across membranes // Ann. Rev. Plant Physiol. 1972. V. 23. P. 157−172.
- Lalk I., Dorffling K. Hardening, abscisic acid, proline and freezing resistance in two winter wheat varieties // Physiol. Plant. 1985. V. 63. P. 287−292.
- Lamport D.T.A., Catt J.W. Glycoproteins and enzymes of the cell wall // Encyclopedia of Plant Physiology / Ed. Tanner W., Loewus F.A. Berlin: Acad. Press, 1981. P. 133−165.
- Lang V., Palva E.T. The expression of rab-related gene, rab 18, is induced by abscisic acid during the cold acclimation process of Arabidopsis thaliana (L.) Heynh//Plant Mol. Biol. 1992. V. 20. P. 951−962.
- Langford G.M. Actin- and microtubule- dependent organelle motors: interrelationships between the two motility systems // Curr. Opin. Cell Biol. 1995. V. 7. P. 82−88.
- Lambert A.M. Microtubule- organizing centers in higher plants: Evolving concepts // Bot. Acta. 1995. V. 108. P. 535−537.
- Laporte K., Rossignol M., Traas J.A. Interaction of tubulin with the plasma membrane- tubulin is present in purified plasmalemma and behaves as an integral membrane protein // Planta. 1993. V. 191. P. 413−416.
- Lee S.P., Chen T.H., Fuchigami L.H. Changes in the translatable RNA population during abscisic acid induced freezing tolerance in bromegraass suspension culture // Plant Cell Physiol. 1991. V. 32. P. 45−49.
- Lee J.C., Timasheff Z. In vitro reconstruction of cell brain microtubules: effects of solution variables // Biochem. 1971. V. 16. P. 1754−1764.
- Levitt J. Chilling, freezing, and high temperature stresses.- New York: Academic Press, 1980. V. 1. 497 p.
- Litauer U.Z., Giveon D., Thierauf M" Ginzburg I., Ponstingl H. Common and distinct binding sites for microtubule- associated proteins // Proceedings of the National Academy of Sci. USA. 1986. V. 83. P. 7162−7166.
- Lloyd C.W. Toward a dynamic helical model for the influence of microtubules on wail patterns in plants // Int. Rev. Cytol. 1984. V. 86. P. 1−51.
- Lloyd C.W. The plant cytoskeleton: the impact of fluorescence microscopy // Ann. Rev. Plant Physiol. 1987. V. 38. P. 119−139.
- Lubit B., Schwartz H. An antiactin antibody that distinguishes between cytoplasmic and skeletal muscle actins // J. Cell Biol. 1980. Y, 86. P. 891−997.
- Ludevid M.D., Freire M.A., Gomez J., Burd C.G., Albemcio F., Giralt E., Dreyfuss G., Pages M. RNA binding characteristics of a 16 kDa glycine-rich protein from maize // The Plant Journal. 1992. V. 2. P. 999−1003.
- Luduena R.F. Are tubulin isotypes functionally significant // Molecular Biol, of the Cell. 1993. V. 4. P. 445−457.
- Mantula E. Freezing tolerance and accumulation of low-temperature-induced proteins in Arabidopsis thaliana // Plant Physiol. 1995. V. 107. P. 140−148.
- Marc J., Sharkley D.E., Durso N.A., Zhang M., Cyr R.J. Isolation of a 90-kD microtubule-associated protein from tobacco membranes // Plant Cell. 1996. V. 8. P. 2127−2138.234
- Marc J., Grander C., Brincat. J., Fisher D., Kao T., McCubbin A. Cyr R. A GFP-MAP4 reporter gene for visualizing cortical microtubule rearrangements in living epidermal cell // The Plant Cell. 1998. V. 10. P. 1927- 1939
- Masters C.J. Interaction between glycolytic enzymes and components of the cytomatrix // Cell Biol. 1984. V. 99. P. 222−225.
- McDowell J. M., Huang S., McKinney A.C., An Y.Q., Meagher R.B. Structure and evolution of the actin gene family in Arabidopsis thaliana II Genetics. 1996. V.142. P.587−602.
- McNally F. Modulation of microtubule dynamics during the cell cycle // Curr. Op. Cell Biol. 1996. V. 8. P. 23−29.
- McNulty A.K., Saunders M.J. Purification and immunological detection of pea nuclear intermediate filaments: evidence for plant nuclear lamins // J. Cell Sci. 1992. V. 103. P. 407−414.
- Meiboom S., Gill D. Modified spin-echo method for measuring nuclear relaxation times//Rev. Sci. 1958. V. 61. P. 688−691.
- Mizuno K. Induction of cold stability of microtubules in cultured tobacco cells // Plant Physiol. 1992. V.100. P.740−748.
- Mizuno K. A cytoskeletal 50 kDa protein in higher plants that forms intermediate-sized filaments and stabilizes microtubules // Protoplasma. 1995. V. 186. P. 99−112.
- Mizuta S., Kaneko M., Tsurumi S. Assembly of cortical microtubules during cold treatment of the coenocytic green alga, Chaetomorpha moniligera II Planta. 1995. V. 196. P.190−192.235
- Monroy A.F., Castonguay Y., Laberge S., Sarhan F., Vezina L.P., Dhindsa R.R. A new cold- induced alfalfa gene is associated with enhanced hardening at subzero temperature //Plant Physiol. 1993. V. 102. P. 873−879.
- Monroy A.F., Dhindsa R.S. Low temperature perception in plants // Plant Cell. 1995. V.7.P. 321−331.
- Monroy A.F., Labbe E., Dhindsa R.S. Low temperature perception in plants: effects of cold on protein phosphorylation in cell free extracts // FEBS Letters. 1997. V. 410. P. 206−209.
- Morejohn L.C., Bureau T.E., Tocchi L.P., Fosket D.E. Tubulins from different higher plant species are immunologically nonidentical and bind colchicine differentially//Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1984. V. 81. P. 1440−1444.
- Morejohn L.C. The molecular pharmacology of plant tubulin and microtubules // The cytoskeletal basis of plant growth and form / Ed. Lloyd C.W. L.: Acad. Press, 1991. P. 29−43.
- Muller S., Kazchadorian W., DiScala V.A. Evidence that ADM-stimulated intramembrane particle aggregates are transferred from cytoplasmic to luminal membranes in toad bladder epithelial cells // Cell Biol. 1980. V. 85. P. 83−95.
- Nagai R. Regulation of intracellular movements in plant cells by environment stimuli // Internat. Rev. Cytol. 1993. V. 145. P. 251−310.
- Nick P. Signaling to the microtubular cytoskeleton in plants // Inter. Review of Cytology. 1998. V. 184. P. 33−79.
- Nick P. Signals, motors, morphogenesis the cytoskeleton in plant development//Plant Biol. 1999. V. l.P. 169−179.
- Nordin K., Vahala T., Palva E.T. Differential expression of two related low temperature-induced genes in Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. // Plant Mol. Biol. 1993. V. 21. P. 641−653.
- Okamura S., Kakiuchi M., Sano A., Kawajiri M. Loss of tubulin during cold treatment of cultured carrot cells // Physiol. Plantarum. 1993. V. 88. P. 93−98.236
- Olinevich O. V., Khokhlova L.P., Raudaskoski M. Effects of abscisic acid and cold acclimation on the cytoskeletal and phosphorylated proteins in different cultivars of Triticum aestivum L. II Cell Biology International. 2000. V. 24. P. 365−373.
- Pantieris E., Galatis B., Apostolakos P. Patterns of cortical and perinuclear microtubule organization in meristematic root cells of Adiantum capillus-venerisll Protoplasma. 1991. V. 165. P. 173−188.
- Parke J.M., Miller C.J., Cowell I., Dodson A., Dowding A., Downess M., Duckett J.G., Anderton B.J. Monoclonal antibodies against plant proteins recognize animal intermediate filaments // Cell Mobil Cytoskeleton. 1987. V.8. P. 312−323.
- Pearce R.S., Willison J.H.M. A freezeatch study of cellular membranes of wheat//Planta. 1985. V. 163. P. 304−316.
- Picquot P., Vantard M., Amiri I., Fausser L., Lambert A.M. Amino acid composition and proteolytic generated domains of higher plant tubulin // Biochem. Biophys. 1988. V. 156. P. 304−311.
- Pihakaski-Maunsbach K., Puhakainen T. Effect of cold exposure on cortical microtubules of rye (Secale cereale) as observed by immunocytochemistry // Physiol. Plantarum. 1995. V. 93. P.563−571.
- Plana M., Martinez M.C. Phosphorylation of maize RAB-17 protein by casein kinase 2 // J. Biol. Chem. 1991. V. 266. P. 22 510−22 514.
- Pollard T.D., Selden S.C., Moupin P. Interaction of actin filaments with microtubules // Cell Biol. 1984. V. 99. P. 335−375.237
- Pope D.G., Thorpe J.R., Al-Azzawi M.J., Hall J.L. The effect of cytochalasin B on the rate of growth and ultrastructure of wheat coleoptiles and maize roots // Planta. 1979. V. 144. P. 373−383.
- Porter K.R., Beskerle M., McNiven M. The cytoplasmic matrix // Cell Biol. 1993. V. 2. P. 259−302.
- Quader H., Hofmann A., Schnebf E. Reorganization of the endoplasmic reticulum in epidermal cells of onion bulb scales after cold stress: Involvement of cytoskeletal elements // Planta. 1989. V. 177. P. 273−280.
- Quader H. Cytoskeleton: microtubules // Progress in Botany. 1998. V. 59. P. 374−395.
- Quintero J.M., Fournier J.M., Ramos, J., Berlloch M. K+ status and ABA affect both exudation rate and hydraulic conductivity in sunflower roots // Physiol. Plantarum. 1998. V. 102. P. 279- 284.
- Reynolds T.L. Effects of calcium on embryogenic induction and the accumulation of abscisic acid, and an early cysteine-labeled metallothionein gene in androgenic microspores of Triticum aestivum II Plant Science. 2000. V. 150. P. 201−207.
- Rikin A., Atsmon D., Gitler C. Quantitation of chill-induced release of a-tubulin-like factor and its prevention by abscisic acid in Cossypium hirsutum L. II Plant Physiol. 1983. V.71. P.747−748.
- Rintamaki E. Salonen M., Carlberg I., Andersson B., Aro E. Phosphorylation of light-harvesting complex 2 and photosystem 2 core proteins shows different irradiance- dependent regulation in vivo // The J. of Biol. Chemistry. 1997. V. 272. P. 35−40.
- Robinson D.G., Quader H. The microtubule-microfibril syndrome // The cytoskeleton in plant growth and development. London: Academic Press, 1982. P.109−126.238
- Rosette C., Karin M. Cytoskeletal control of gene expression: depolymeriza-tion of microtubules activates NF-AB II The J. of Cell Biol. 1995. V. 128. P. 1111−1119.
- Ryu J.H., Takagi S., Nagai R. Stationary organization of the actin cytoskele-ton in Vallisneria: the role of stable microfilaments at the end walls // J. Cell Sci. 1995. V. 108. P. 1531−1539.
- Sabala I., Egertsdotter U., Vonfircks H., Vonarnold S. Abscisic acid- induced secretion of an antifreeze-like protein in embryogenic cell lines of picea abies // J. of Plant Physiol. 1996. V. 149. P. 163−170.
- Sackett D., Wolf J. Proteolysis of tubulin and the substructure of the tubulin dimer// J. of Bio. Chemistry. 1986. V. 261. P. 9070−9076.
- Sakiyama M., Shibaoka H. Effects of abscisic acid on the orientation and cold stability of cortical microtubules in epicotyl cells of the dwarf pea // Protoplasma. 1990. V.157. P. 165−171.
- Sasaki S., Tilles S., Condeolis S. Electronmicroscopic study of the apical region of the toab bladder epithelial cell // Physiol. 1984. V. 247. P. 268−281.
- Satio T., Sugawara Y. Freezing tolerance and freezing injury in wheat cells cultured with ABA // Plant Cell Physiol. 1994. V. 35. P. 164−167.
- Schaffner A.R. Aquaporin function, structure and expression: are there more surprises to surface in water relations? // Planta. 1998. V. 204. P. 131- 139 .252.
- Schliva M. The cytoskeleton.- Wien, New York: Springer. Varlag, 1986. 326p.
- Schliva M., Euteneuer V., Bulinski J.C., Izant J.G. Calcium lability of cytoplasmic microtubules and its modulation by microtubule-associated proteins // Cell Biol. 1981. V. 78. P. 1037−1041.
- Schonbohm E.S., Sens M.W. Actin polymerization as an essential process in light- and dark- controled chloroplast anchorage // Biochem. and Physiol. Plants. 1989. V. 185. P. 337−342.239
- Seagull R.W. The effects of microtubules and microfilament disrupting agents on cytoskeletal arrays and wall deposition in developing cotton fibers // Protoplasma. 1990. V. 159. P. 44−59.
- Sheen J. Mutational analysis of a protein phosphatase 2C involved in abscisic acid signal transduction in higher plants // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1998. V. 95. P. 975- 980.
- Sheer V., Hinssen H., Franke W.W., Jockusch B.M. Microinjection of actin-binding proteins and actin antibodies demonstrates involvement of nuclear actin in transcription of lamp brush chromosomes // Cell. 1984. V. 39. P. 111−122.
- Shibaoka N., Nagai R. The plant cytoskeleton // Cur. Opinion in Cell Biol. 1994. V. 6. P. 10−15.
- Shindy W.W., Asmundson C.M., Smith O.E. Kumamoto J. Absorption and distribution of high specific radioactivity 2-C14-abscisic acid in cotton seedlings // Plant Physiol. 1973. V. 52. P. 443−447.
- Shinozaki K., Yamaguchi- Shinozaki K. Molecular responses to drought and cold stress // Current Opinion in Biotechnology. 1996. V. 7. P. 161−167.
- Silflow C.D., Oppenheimer D.G., Kopczak S.D., Ploense S.E., Ludwig S.R. Plant tubulin genes: structure and differential expression during development // Dev. Genet. 1987. V. 8. P. 435−460.
- Singh S., Gupta P.D. Intermediate filaments- heterogenous expression pattern and modulation: can their role in structure and function of the cell be ascertained? // Biol. Cell. 1994. V. 82. P. 1−10.
- Smertenko A., Blume Y., Viklicky V., Opatrny Z., Draber P. Post-translational modifications and multiple tubulin isoforms in Nicotiana tabacum /. cells // Planta. 1997. V. 201. P. 349−358.
- Snustad D.P., Hass N.A., Kopczak S.D., Silflow C.D. The small genome of Arabidopsis contains at least nine expressed (3-tubulin genes // The Plant Cell. 1992. V. 4. P. 549−556.240
- Sonobe S., Shibaoka H. Cortical fine actin filaments in higher plant cell visualized by rhodamine-phalloidin after pretreatment with m-maleimidobenzoyl N-hydroxysuccinimide ester//Protoplasma. 1989. V. 148. P. 80−86.
- Sonobe S., Takahashi S. Association of microtubules with the plasma membrane of tobacco BY-2 cells in vitro // Plant Cell Physiol. 1994. V. 35. P. 451 460.
- Staiger C.J., Lloyd C.W. The plant cytoskeleton // Curr. Opinions Cell Biol. 1991. V.3.P. 33−42.
- Steinert P., Zackroff R., Aynardi-Whitman M., Doldman R.D. Isolation and characterization of intermediate filaments // Methods Cell Biol. 1982. V. 24. P. 399−419.
- Stephens R.E. Membrane tubulin II Biol. Cell. 1986. V. 57. P. 95−110.
- Stephens R.E., Edds K.T. Microtubules: structure, chemistry and function // Physiol. Rev. 1976. V. 56. P. 709−777.
- Takesue K., Shibaoka H. The cyclic reorientation of cortical microtubules in epidermal cells of azuki bean epicotyls: the role of actin filaments in the progression of the cycle // Planta. 1998. V. 205. P. 539−546.
- Tewenkeland M., Kruse S., Quader U., Volkmann D., Sievers A. Visualization of actin filament pattern in plant cells without pre-fixation. A comparison of differently modified phallotoxins// Protoplasma. 1989. V. 149. P. 178−182.
- Thimann K.V., Reese K., Nachmias V.T. Actin and the elongation of plant cell. Protoplasma. 1992. V. 171. P. 153−166.
- Thomas D.S., Lager N.M., Manavathu E.K. Cytochalasin B: effects on root morphogenesis in Allium sera II Can. J. Bot. 1973. V. 51. P. 2269−2273−241
- Tominaga M., Morita K., Yokota E., Shimmen T. Microtubules regulate the organization of actin filaments at the cortical region in root hair cells of Hydro-charis II Protoplasma. 1997. V. 199. P. 83- 92.
- Torres A., Delgado P. Effect of cold and nocodazole treatments on the mi-crotubular systems of Paramecium in interphase // J. Protozool. 1989. V. 36. P. 113−119.
- Traas J.A., Burgain R., Dumas de Vaulx R. The organization of the cyto-skeleton during meiosis in eggplant (Solarium melongena L.): microtubules and F-actin are both necessary for coordinated meiotic division // J. Cell Sci. 1989. V. 92. P. 541−550.
- Traas J.A. The plasma membrane-associated cytoskeleton // The Plasma Membrane / Eds Larsson C., Moller I.M. Berlin: Springer-Verlag, 1990. P. 270−292.
- Valenta R., Duchene M., Ebner C., Valent P., Sillaber C., Deviller P., Ferreira F., Tejkl M., Edelman H., Kraft D., Scheiner O. Profilins constitute a novel family of functional plant pan-allergens // J. Exp. Med. 1992. V. 175. P. 377 385.
- Vandekerckhove J., Weber K. At least six different actins are expressed in a higher mammal: an analysis based on the amino acid sequence of the amino terminal tryptic peptide // J. Mol. Biol. 1978. V. 126. P. 783−802.
- Veisz O., Galiba G., Sutka J. Effect of abscisic acid on the cold hardiness of wheat seedlings // J. Plant Physiol. 1996. V.149. P.439−443.
- Villemur R., Joyce C.M., Haas N.A., Goddard R.H., Kopczak S.D., Hussey P.J., Snustad D.P., Silflow C.D. a-Tubulin gene family of maize (Zea mays L.): Evidence for two ancient a-tubulin genes in plants // J. of Mol. Biol. 1992. V. 227. P. 81−96.
- Volkmann D., Baluska F. Actin cytoskeleton in plants: from transport networks to signaling networks // Microscopy Research and Technique. 1999. V. 47. P. 135−154.242
- Wang H., Cutler A.J., Saleem M., Fowke L.C. Microtubules in maize protoplasts derived from cell suspension cultures: effect of calcium and magnesium iones // Eur. J. Cell Biol. 1989. V. 49. P. 80−86.
- Wang C. Xing L., Zhai Z. Intermediate filaments in higher plant cells and their assembly in a cell-free system // Protoplasma. 1992. V. 171. P. 44−54.
- Wayne R., Tazawa M. The actin cytoskeleton and polar water permeability in Characean cell//Protoplasma. 1988. Supp 1.2. P. 116−130.
- Webster D.R., Borisy G.G. Microtubules are acetylated in domains that turn over slowly // J. Cell Sci. 1989. V. 92. P. 57−65.
- Welbaum G.E., Bian D., Hill D.R., Grayson R.L., Gunatilaka M.K. Freezing tolerance, protein composition, and content of pea epicotyl, shoot, and root tissue in response to temperature and water stress // J. Exper. Bot. 1997. V.48. P. 643−654.
- Williamson R.E. Calcium and the plant cytoskeleton // Plant Cell Environ. 1987. V. 7. P. 431−440.
- Williamson R.E. Organelle movements // Ann. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1993. V. 44. P. 181−202.
- Wymer C., Loyd C. Dynamic microtubules: implications for cell wall patterns // Trends Plant Sci. 1996. V. 1. P. 222−228.
- Zhang C.L., Li P.H., Brenner M.L. Relationship between mefluidide treatment and abscisic acid metabolism in chilled corn leaves // Plant Physiol. 1986. V. 81. P. 699−701.
- Zhang W.H., Jones G.P. Water permeability in wheat root protoplasts determined from nuclear magnetic resonance relaxation times // Plant Science. 1996. V. 118. P. 97−106.