Хроматографическое и электрофоретическое определение стероидов и биогенных аминов в биологических объектах
Диссертация
Наибольшее число публикаций по определению стероидов экзои эндогенного происхождения посвящено использованию ОФ ВЭЖХ в градиентном режиме. При этом для биологических объектов возникает проблема воспроизводимости факторов удерживания. Изократический режим вследствие резко различающейся гидрофобности стероидов приводит к значительному увеличению времени анализа с одновременным снижением… Читать ещё >
Содержание
- ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРНЫХ ДАННЫХ
- 1. 1. Общие сведения о стероидных гормонах и их классификация
- 1. 2. Биосинтез и метаболизм кортнкостероидов. Биологические формы и действие кортнкостероидов в организме
- 1. 3. Физико-химические методы исследования стероидных гормонов
- 1. 3. 1. Иммунологические методы
- 1. 3. 2. Хроматографические методы анализа стероидных гормонов
- 1. 3. 2. 1. Определение стероидов методом тонкослойной хроматографии
- 1. 3. 2. 2. Газовая хроматография (ГХ) и хромато-масс-спектрометрия (ГХ-МС) при определении стероидов
- 1. 3. 2. 3. Определение стероидных гормонов методом высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ)
- 1. 3. 2. 3. 1. Использование циклодекстринов (ЦД) в хроматографии стероидов
- 1. 3. 2. 3. 2.Методы детектирования стероидных гормонов
- 1. 3. 2. 4. Мицеллярная жидкостная хроматография
- 1. 3. 3. Определение кортнкостероидов методом мицеллярной электрокинетической хроматографии (МЭКХ)
- 1. 3. 3. 1. Поверхностно-активные вещества, используемые в МЭКХ для разделения стероидных гормонов
- 1. 3. 3. 2. Буферные системы, используемые в МЭКХ стероидов
- 1. 3. 3. 3. Влияние модификаторов в составе ведущего электролита на разделение кортикостероидов методом МЭКХ
- 1. 4. Подготовка биологических объектов к анализу
- 1. 4. 1. Гидролиз коньюгатов стероидов
- 1. 4. 2. Методы экстракции стероидных гормонов
- 1. 5. Биосинтез и метаболизм катехоламинов
- 1. 6. Физико-химические методы исследования катехоламинов
- 1. 6. 1. Иммунологические методы определения катехоламинов
- 1. 6. 2. Газовая хроматография для определения катехоламинов
- 1. 6. 3. Высокоэффективная жидкостная хроматография (ВЭЖХ) катехоламинов
- 1. 6. 4. Использование метода капиллярного электрофореза (КЭ) для определения катехоламинов (КА)
- 1. 6. 5. Детектирование катехоламинов в ВЭЖХ и КЭ
- 1. 6. 6. Сравнительный анализ физико-химических методов определения катехоламинов
- 1. 6. 7. Пробоподготовка реальных объектов к анализу катехоламинов
- 2. 1. Аппаратура
- 2. 2. Реактивы и материалы
- 2. 2. 1. Подготовка рабочих растворов
- 2. 2. 2. Отбор пробы
- 2. 3. Методы исследования
- 2. 3. 1. Высокоэффективная жидкостная хроматография при определении стероидов и катехоламинов
- 2. 3. 2. Капиллярный электрофорез
- 2. 4. Подготовка биологических объектов к анализу
- 2. 4. 1. Подготовка биологических объектов к анализу смесей стероидных гормонов
- 2. 4. 1. 1. Жидкостная экстракция
- 2. 4. 1. 2. Твердофазная экстракция
- 2. 4. 1. 3. Определение стероидных гормонов методом ТСХ
- 2. 4. 2. Оптимизация пробоподготовки при определении катехоламинов
- 2. 4. 2. 1. Подготовка сорбента для экстракции катехоламинов
- 2. 4. 2. 2. Твердофазная экстракция катехоламинов
- 2. 4. 1. Подготовка биологических объектов к анализу смесей стероидных гормонов
- 3. 1. Факторы, влияющие на разделение стероидов в режиме ОФ
- 3. 2. Влияние добавки Р-циклодекстрина на разделение стероидных гормонов в изократическом режиме ОФ ВЭЖХ
- 3. 3. Расчет констант устойчивости, образующихся комплексов между |3~циклодекстрином и стероидами
- 3. 4. Сравнительная оценка жидкостной и твердофазной экстракции при определении кортикостероидов в сыворотке крови и в моче
- 3. 5. Факторы, влияющие на разделение кортикостероидов методом мицеллярной электрокинетической хроматографии
- 3. 6. Методы on-line концентрирования в МЭКХ при определении стероидных гормонов в биологических жидкостях
- 3. 7. Определение стероидов в биологических объектах методом
- 3. 8. Сопоставление полученных результатов в режиме мицеллярной электрокинетической хроматографии с методом ОФ ВЭЖХ
- 4. 1. Факторы, влияющие на разделение катехоламинов в капиллярном зонном электрофорезе
- 4. 2. Факторы, влияющие на стабильность электрораспыления и чувствительность ESI-MS-детектирования
- 4. 3. Определение катехоламинов в реальных объектах методом КЭ-МС
- 4. 4. Сопоставление методов КЭ-МС и ОФ ВЭЖХ при определении катехоламинов
- 5. 1. Закономерности изменения стероидных профилей при различных дисфункциях коры надпочечников
- 5. 1. 1. Подготовка пробы к анализу
- 5. 1. 2. Характеристические стероидные профили при различных дисфункциях коры надпочечников методом ОФ-ВЭЖХ
Список литературы
- РозенВ.Б. Основы эндокринологии. М.: Мир, 1972.С. 384.
- Под ред. М. С. Бирюковой. Эндокринные заболевания и синдромы. Вирилизм. «Знание-М» М., «Знание» Запорожье, 1999. С. 310.
- Герег Ш. Количественный анализ стероидов. М.: Мир, 1985.
- Pirkko Volin. High-performance liquid chromatographic analysis of corticosteroids.//J. Chromatogr. B. 1995. V. 671. P. 319−340.
- Nozaki O. Steroid analysis for medical diagnosis. Review. // J. Chromatogr. A. 2001. V: 935. P. 267−278.
- Энциклопедия клинических лабораторных тестов. Под редакцией Тица Н.У.// Изд. «Лабинформ» М. 1997.С. 350.
- Hartmann S., Steinhart Н. Simultaneous determination of anabolic and catabolic steroid hormones in meat by GC-MS.// J. Chromatogr. B: Biomed. Sci. Appl. 1997. V. 704 (1+2). P. 105−117.
- Honour J.W. Steroid profiling.// Ann. Clin. Biochem. 1997. V. 34. N. 1. P. 3244.
- Орлов E.H., Антипов E.M., Николаев H.H. Некоторые аспекты получения стероидных профилей мочи. // Вопросы медицинской химии. 1993. № 5. С. 79.
- Wudy S. A., Harmatin М., Homoki J. Hormonal diagnosis of 21-hydrolxylase deficiency in plasma and urine of neonates using benchtop gas chromatography -mass spestrometry. //Journ. ofEndocrin. 2000. V. 165. P. 679−683.
- Jap В. K., Johnston G.A.R., Kazlauskas R. Routine screening and quantitation of urinary corticosteroids using bench-top gas chromatography mass-selective detection.//J. Chromatogr. B. 1992. V. 573. P. 183−190.
- Shibasaki H., Arai I., Furuta T. and Kasuya Y. Simultaneous determination of serum Cortisol and cortisone in humane plasma by stable-isotope dilution mass-spectrometry.// J. Chromatogr. B. 1992. V. 576. N. 1. P. 47−52.
- Fallon A., Booth R.F.G., Bell L.D. Applications of HPLC in biochemistry. Elsevier Science Publishers B.V. 1987. P. 410.
- Pirkko Volin. Simultaneous determination of serum Cortisol and cortisone by reversed-phase liquid chromatography with ultraviolet detection.// J. Chromatogr. B. 1992. V. 584. P. 147−155.
- Amin M., Harrington K., Wandruszka von R. Determination of steroids in urine by micellar HPLC with detection by sensitized terbium fluorescence.// Anal. Chem. 1993. V. 65. P. 2346−2351.
- Carpene G., Vettoretti A., Pedini F., Rocco S., Mantero F., Opocher G. Hypertensiv congenital adrenal enzymatic defects detected by high-performance liquid-chromatography of corticosteroids.// J. Chromatogr. B. 1991. V. 553. P. 201−204.
- C. Lejeune-Lenain, S. Kina, D. Bosson. Preparative HPLC for analysis of mineralocorticoids in human plasma/// Chromatographia. 1987. V. 24. P. 333 336.
- Hariharan M., Naga S., VanNoord Т., Kindt E.K. Simultaneous assay of corticosterone and Cortisol in plasma by reversed-phase liquid chromatography.// Clin. Chem. 1992. V. 38. N. 3. P. 346−352.
- Turnell D.C., Cooper J.D.H., Green В., Hughes G., Wright D.J. Tottally automated liquid-chromato graphic assay for Cortisol and associated glucocorticoids in serum, with use of ASTEM sample preparation. // Clin. Chem. 1988. V. 34. N. 9. P. 1816−1820.
- Hariharan M., Naga S., VanNoord Т., Kindt E.K. Assey of human plasma cortison by LC, normal plasma concentrations (between sand 10 a.m.) of cortisone and corticosterone.// J. Chromatogr. 1993. V. 613. P. 195−201.
- T. Yoshitake, S. Нага, M. Yamaguch, Y. Ohkura, S. Gorog. Measurement of 21-hydroxy corticosteroids in human and rat sera by high-performance liquid chromatography with fluorimetric detection.// J. Chromatogr. 1989 V. 489. N. 2. P.364−369.
- Королева E.M., Гампер H.JI., Великанова Л. И. Определение кортикостероидов плазмы крови методом микроколоночной жидкостной хроматографией.//Журнал аналитической химии. 1996. Т. 29. С. 16−24.
- Mc Whinney B.C., Ward G., Hickman P.E. Improved HPLC method for simultaneous analysis of Cortisol, 11-deoxycortisol, prednisolone, methylprednisolone, dexamethasone in serum and urine.// Clin. Chem. 1996. V. 42. N. 6. P. 979−981.
- Kuronen P., Volin P., Laitalainen T. Reversed-phase HPLC screening method for serum steroid using retention index and diod-array detection. // J. Chromatogr. B: Biomed. Appl. 1998. V. 718. N. 2. P. 211−224.
- А. Хеншен, К.-П. Хуле, Ф. Лотшпайх, В. Вельтер. Высокоэффективная жидкостная хроматография в биохимии. М. Мир. 1988. С. 580.
- L.R.Snyder, J.L. Glajch, J.J.Kirkland. Practical HPLC method development. US 1988. P. 320.
- Shoneshofer M., Weber В., Dulche H.J. Estimation of free urinary aldosteroneand 18-hydrocorticisterone by a combination of automatic high-performance liquid chromatography and radioimmunoassay.// J. Chromatogr. 1982. V. 227. P. 492 496.
- Nozaki O., Ohata Т., Ohaba J., Moriyama H., Kato J. Determination of serum Cortisol by reversed-phase liquid chromatography using precolumn sulphuric acid-ethanol fluorescence derivation and column switching.// J. Chromatogr. 1991. V. 570. P. 1−7.
- Ji~qing W., Xian-teng Z., Ji-lu W. Simultaneous measurement of eight corticosteroids by liquid chromatography and application of the procedure to diagnosis of congenital adrenal hyperplasia. // Clin. Chem. 1987. V. 33. N. 8. P. 1354−1359.
- Stoner E., Loche S., Mirth A.M., New M.I. Clinical utility of adrenal steroid measurement by high-performance liquid chromatography in pediatric endocrinology. //J. Chromatogr. 1986. V. 374. P. 358−362.
- Stolker A.A.M., Schwillens P.L.W.J., van Ginkel L.A., Brinkman U.A.Th. Comparison of different liquid chromatography methods for the determination of corticosteroids in biological matrices. // J. Chromatogr. A. 2000 V. 893. P. 55−67.
- Морозова М.Г., Гампер Н. Л., Дубинина Ю. Л., Нуллер Ю. Л., Лебедев А. В. Высокоэффективная жидкостная хроматография кортикостероидов у больных с депрессией и деперсонализацией. // Клиническая лабораторная диагностика. 2000. № 4. С. 14−16.
- Steffen Steffenrud and George Maylin. Termospray liquid chromatography -mass spectrometry of corticosteroids.// J. Chromatogr. B. 1992. V. 577. P. 221 227.
- Ohno M., Yamaguchi I., Saiki M., Yamamoto I., Azuma J. Specific determination of urinary 6(3-liydroxycortisol and Cortisol LC-MS. // J. Chromatogr. B. 2000. V. 746. P. 95−101.
- Miksik I., Vylitova M., Pach J., Deyl Z. Separation and identification of corticosterone metabolites by liquid chromatography electrospray mass spectrometry. // J. Chromatogr. B. 1999. V. 726. P. 59−69.
- Marwah A., Marwah P., Lardy H. Liguid chromatography electrospray ionization mass spectrometric analysis of corticosterone in rat plasma using selected ion monitoring. // J. Chromatogr. B. 2001. V. 757. P. 333−342.
- Csehati Т., Forgacs T. Effect of {3-cyclodextrin derivatives on the retention of steroidal drugs.//J. Chromatogr. B: Biomed. Appl. 1996. V. 681. N. 1 P. 205 211.
- NurekD., Kleyle R.M., Mc Cain C.L., Risley D.S., Ruterbories K.J. Statistical method for quantifying mobile phase selectivity in one- and two- dimensional over pressured layer chromatography.// Anal. Chem. 1997. V. 69. N. 7. P. 1398 -1405.
- Feuske M., Schonheiter H. Thin-lair chromatography on silica coated aluminum sheet as an adjunct to radioimmunoassay of steroid.// J. Chromatogr. 1991. V. 563. N. 1. P.178−183.
- Резников А.Г. Методы определения гормонов. // Киев. 1980. С. 266−267.
- Сергеев П.В. Стероидные гормоны. //М. Наука. 1984. 239 С.
- Shibasaki Н., Furuta Т., Kasuya J. Quantification of corticosteroids in human plasma by liquid chromatography termospray mass spectrometry using stable isotope dilution.// J. Chromatogr. B. 1997. V. 692. N. 1. P. 7−14.
- Masatoki Katayata. Determination of corticosteroids in plasma by HPLC after pre-column derivatization with 2-(4-carboxyphenyl)-5,6-dimethylbenzimidazole.// J. Chromatogr. B. 1993. V. 612. P. 33−39.
- Taylor M.R., Teale P., Westwood S.A., Perrett D. Analysis of corticosteroids in biofluids by capillary electrochromatography with gradient elution.// Anal. Chem. 1997. V. 69. N.13. P. 2554−2558.
- Oka K., Noghi M., Kitamura Т., Shima S. Liquid chromatography and radioimmunoassay compared for determination of Cortisol and corticosterone in plasma after a dexamethasone suppression test. // Clin. Chem. 1987. V. 33. N. 9. P. 1639−1642.
- Stoner E., Loche S., Mirth A.M., New M.I. Clinical utility of adrenal steroid measurement by high-performance liquid chromatography in pediatric endocrinology.// J. Chromatogr. 1986. V. 374. P. 358−362.
- Flood K.G., Reynolds E.R., Snow N.H. Characterization of inclusion complexes of dexamethasone related steroids with cyclodextrins using high-performance liquid chromatography. //J. Chromatogr. A. 2000. V. 903. P. 49−65.
- Hughes G., Green В. Urinary excretion rates of 15 free steroids, potential utility in defferential diagnosis of Cushing’s syndrome.// Clin Chem 1986. V. 32. N.l.P. 93−96.
- Карцова JI.А. Макроциклы как компоненты хроматографических фаз. // Докторская диссертация. 2002. СПб. СПбГУ. 320 С.
- Forgacs Т., Csehati Т. Interaction of some steroid drugs with p-cyclodextrin polymer. // J. Chromatogr. A. 1999. V. 845. P. 447−453.
- Shneiderman E., Stalcup A.M. Review. Cyclodextrins: a versatile tool in separation science. // J. Chromatogr. B. 2000. V. 745. P.83−102.
- Connors K.A. The stability of cyclodextrin complexes in solution.// Chem. Rev. 1997. V. 97. P. 1325−1357.
- Gunasingham H., Tay B.T., Ang K.P. Determination of estriol in pregnancy urine by normal-phase high-performance liquid chromatography with electrochemical detection.//J. Chromatogr. 1985. V. 341. P. 271−276.
- Appelblad P., Irgum K. Review. Separation and detection of neuroactive steroids from biological matrices.// J. Chromatogr. A. 2002. V. 955. P. 151−182.
- Столяров В.В., Савинов И. М., Виттенберг А. Г., Карцова Л.А.и др. Практическая газовая и жидкостная хроматография. Изд. СПбГУ. 1998. 610 С.
- Стыскин ЕЛ, Ициксон Л. Б., Брауде Е. В. Практическая ВЭЖХ. М. «Химия». 1986. 256 С.
- Rao L.V., Petersen J.R., Bissell G., Okorodudu A.O., Mohammad A.A. Development of a urinary free Cortisol assay using solid-phase extraction -capillary electrophoresis. // J. Chromatogr. A. 1999. V. 730. P. 123−128.
- Palmer J., Munro N.J., Landers J.P. A universal concept for stacking neutral analytes in micellar capillary electrophoresis. // Anal. Chem. 1999. V.71. 16 791 687.
- Liu Y., Pietzyk J. Capillary-electrochromatographic separations with copolymeric reversed-stationary phase and ion-exchanger-packed columns. // J. Chromatogr. A. 2001. V. 920. P. 367−375.
- Bumgarner J.G., Khaledi M.G. Mixed micelles of short chain alkyl surfactants and bile salts in electrokinetic chromatography: enhanced separation of corticosteroids. // J. Chromatogr. A. 1996. V. 738. P. 275−283.
- Nishi H., Fukuyama Т., Matsuo M., Terabe S. Separation and determination of lipophilic corticosteroids and benzothiazepin analogues by micellar electrokinetic chromatography using bile salts. // J. Chromatogr. A. 1990. V. 513. P. 279−295.
- Quirino J.P., Terabe S. On-line concentration of neutral analytes for micellar electrokinetic chromatography. 5. Field-enhanced sample injection with reverse migrating micelles. // Anal. Chem. 1998.V. 70. P. 1893−1901.
- Vomastova L., Miksik I., Deyl Z. Microemulsion and micellar electrokinetic chromatography of steroids. // J. Chromatogr. B. 1996. V. 681. P. 107−113.
- Mohammand A.A., Peterson J.R., Bissell M.G. Micellar electrokinetic capillary chromatographic separation of steroids in urine by trioctylphosphine oxide and cationic surfactant. // J. Chromatogr. B. 1995. V. 674. P. 31−38.
- Palmer J., Burgi D.S., Landers J.P. Electrokinetic stacking of neutral analytes under continuous conductivity conditions. // Anal. Chem. 2002. V. 74. P. 632 638.
- Mohammand A.A., Bissell M.G., Peterson J.R. Micellar electrokinetic capillary chromatography to separate steroids that are increased in congenital adrenal hyperplasia. // Clinical chemistry 1995. V. 41. N. 9. P. 1369−1370.
- Jumppanen J.H., Wiedmer S.K., Siren H., Rekkola M.-L., Haario H. Optimized separation of seven corticosteroids by micellar electrokinetic chromatography. //Electrophoresis. 1994. V. 15. P. 1267−1272.
- Wu C.-H., Chen M.-C., Su A.-K., Shu P.-J., Chou S.-H., Lin C.-H. Determination of corticosterone in mouse plasma by a sweeping technique using micellar electrokinetic chromatography. // J. Chromatogr. B. 2003. V. 785. P. 317−325.
- Kim J.-B., Otsuka K., Terabe S. On-line sample concentration in micellar electrokinetic chromatography with cationic micelles in a coated capillary. // J. Chromatogr. A. 2001. V. 912. P. 343−352.
- Palmer J., Burgi D. S., Munro N.J., Landers J.P. Electrokinetic injection for stacking neutral analytes in capillary and microchip electrophoresis. // Anal. Chem. 2001. V. 73. P. 725−731.
- Steard D.A., Reid R.G., Taylor R.B. Capillary electrochromatography of steroids. Increased sensitivity by on-line concentration and comparison with high-performance liquid chromatography. // J. Chromatogr. A. 1998. V.798. P. 259−267.
- Terabe S., Otsuka K., Ichikawa K., Tsuchiya A., Ando T. Electrokinetic separations with micellar solutions and open-tubular capillaries. // Anal. Chem. 1984. V. 56. P. 111−113.
- Lin C.-E., Huang H.-C., Chen H.-W. A capillary electrophoresis study on the influence of p-cyclodextrin on the critical micelle concentration of sodium dodecyl sulfate. // J. Chromatogr. A. 2001. V 917. P. 297−310.
- Ahuja E.S., Preston B.P., Foley J.P. Anionic-zwitterionic mixed micelles in micellar electrokinetic chromatography: sodium dodecyl sulfate N-dodecyl-N, N-dimethylammonium-3-propane-1-sulfonic acid. // J. Chromatogr. B. 1994. V.657. P. 271−284.
- Palmer J., Atkinson S., Yoshida W.Y., Stalcup A.M., Landers J.P. Charged chelate capillary electrophoresis of endogenous corticosteroids. // Electrophoresis. 1998. V. 19. P. 3045−3051.
- Katzuta S., Saitoh K.J.Control of separation selectivity in micellar electrokinetic chromatography by modification of the micellar phase with solubilized organic compounds (Review). // J. Chromatogr. A. 1997. V. 780. P. 165−178.
- Quirino J.P., Terabe S. On-line concentration of analytes for micellar electrokinetic chromatography. I. Normal stacking mode. // J. Chromatogr. A. 1997: V. 781. P. 119−128.
- Quirino J.P., Terabe S. On-line concentration of neutral analytes for micellar electrokinetic chromatography. II. Reversed electrode polarity stacking mode. // J. Chromatogr. A. 1997. V. 791. P. 255−267.
- Quirino J.P., Terabe S. On-line concentration of neutral analytes for micellar electrokinetic chromatograph. 3. Stacking with reverse migrating micelles. // Anal. Chem. 1998. V.70. P. 149−157.
- Quirino J.P., Terabe S. Sweeping of analyte zones in electrokinetic chromatography.// Anal. Chem. 1999. V. 71. P. 1638−1644.
- Quirino J.P., Terabe S. Electrokinetic chromatography. // J. Chromatogr. A. 1999. V. 856. P. 465−482.
- Kim J.B., Otsuka K, Terabe S. Anion selective exhaustive injection sweep -micellar electrokinetic chromatography.// J. Chromatogr. A. 2001. V. 932. P. 129−137.
- Березов Т.Т., Коровкин Б. Ф. Биологическая химия. // М. 1990. 410 С.
- В.Т. Hofreiter, А.С. Mizera, J.P. Allen, A.M. Masi, W.C. Hicok. Solid-state extraction of Cortisol from plasma or serum for liquid chromatography.// Clin Chem. 1983 V. 29. N. 10. P. 1808−1809.
- Kagedal В., Goldstein D. Catecholamines and their metabolites. Review. // J.
- Chromatogr. B. 1988. V. 429. P. 177−233.
- Paquette D.M., Sing R., Banks P.R., Waldron K.C. Capillary electrophoresis withlaser-induced native fluorescence detection for profiling body fluids. // J.
- Chromatogr. B. 1998. V. 714. P. 47−57.
- Rosano T.G., Swift T. A, Hayes L.W. Advances in catecholamine and metabolitemeasurements for diagnosis of pheochromocytoma. // Clin. Chem. 1991. V. 37. N.10. P. 1854−1867.
- Westermami J., Hubl W., Kaiser N., Salewski L. Simple, rapid and sensitive determination of epinephrine and norepinephrine in urine and plasma by noncompetitive enzyme immunoassay, compared with HPLC method. // Clin. Lab. 2002. V. 48. N. 1−2. P. 61−71.
- Lovelady H.G., Foster L.L. Quantitative determination of epinephrine and norepinephrine in the picogram range by flame ionization gas-liquid chromatography. //J. Chromatogr. 1975. V. 108. N. 1. P. 43−52.
- Wang M.-T., Imai K., Yoshioka M., Tamura Z. Gas-liquid chromatographic and mass-fragmentographic determination of catecholamines in human plasma. // Clin. Chim. Acta. 1975. V. 63. P. 13−9.
- Ehrhart J.-D., Schwartz J. A gas chromatography mass spectrometry assay of human plasma catercolamines. // Clin. Chim. Acta. 1978. V. 88. P. 71−9.
- Jacob K., Vogt W., Knedel M. Schwerfeger G. Quantitation of adrenaline and noradrenaline from human plasma by combined gas chromatography high-resolution mass fragmentography. // J. Chromatogr. 1978. V. 146. P. 221−6.
- Karoum F., Cattabeni, Costa E., Rutherven C.R.J., Sandler M. Gas chromatographic assay of picomole concentrations of biogenic amines. // Anal. Biochem. 1972. V. 47. P. 550−61.
- Volin P. Determination of free urinary catecholamines by high-performance liquid chromatography with electrochemical detection. // J. Chromatogr. B. 1994. V. 655. P. 121−126.
- Ohkura Y., Kai M., Nohta H. Fluorigenic reactions for biomedical chromatography. // J. Chromatogr. B. 1994. V. 659. P. 85−107.
- Chan E.C.Y., Wee P. Y, Ho O.Y. HPLC assay for catecholamines and metanephrines using fluorimetric detection with pre-column 9-fluorenylmethyloxy-carbonyl chloride derivatization // J. Chromatogr. B. 2000. V. 749. P. 179−189.
- Riggin R. M., Kissinger P. T. Determination of catecholamines in urine by reverse-phase liquid chromatography with electrochemical detection. // Anal. Chem. 1977. V.49.N. 13. P. 2109−2111.
- Honda S., Takahashi M., Araki Y., Kakehi K. Postcolumn derivatization of catecholamines with 2-cyanoacetamide for fluorimetric monitoring in high-performance liquid chromatography. // J. Chromatogr. B. 1983. V. 274. P. 45−52.
- Mitsui A., Mohta H., Ohkura Y. High- performance liquid chromatography of plasma catecholamines using 1,2-diphenylethylenediamine as precolumn fluorescence derivatization reagent. // J. Chromatogr. B. 1985. V. 344. P. 61−70.
- Todoriki H., Hayashi Т., Naruse H., Hirakawa A. Y. Sensitive high-performance liquid chromatographic determination of catecholamines in rat brain using a laser fluorimetric detection system. // J. Chromatogr. B. 1983. V. 276. P. 45−54.
- Yamaguchi M., Ishida J., Yoshimura M. Simultaneous determination of urinary catecholamines and 5-hydroxyindoleamines by high-performance liquidchromatography with fluorescence detection. // Analyst. 1998. V. 123. N. 2. P. 307−11.
- Higashidate S., Imai K. Determination of femtomole concentrations of catecholamines by high-performance liquid chromatography with peroxyoxalate chemiluminescence detection. // Analyst. 1992. V. 117. N. 12. P. 1863−68.
- Mitsui A., Nohta H., Ohkura Y. High-performance liquid chromatography of plasma catecholamines using 1,2-diphenylethylenediamine as precolumn fluorescence derivatizationreagent. // J. Chromatogr. 1985. V. 344. P. 61−70.
- Gerlo E.A., Sevens C. Urinary and plasma catecholamines and urinary catecholamine metabolites in pheochromocytoma: diagnostic value in 19 cases. // Clin. Chem. 1994. У. 40. N. 2. P. 250−6.
- Soga Т., Inoue Y. Determination of catecholamines in urine and plasma by online sample pretreatment using an internal surface boronic acid gel. // J. Chromatogr. 1993. V. 620. N. 2. P. 175−81.
- Weicker H., Feraudi M., Hagele H., Pluto R. Electrochemical detection of catecholamines in urine and plasma after separation with HPLC. // Clin. Chim. Acta. 1984. V. 141. N. l.P. 17−25.
- Moleman P, van Dijk J. Determination of urinary norepinephrine and epinephrine by liquid chromatography with fluorescence detection and pre-column derivatization. // Clin. Chem. 1990. V. 36. N. 5. P. 732−726.192
- Wu A.H., Gornet T.G. Preparation of urine samples for liquid-chromatographic determination of catecholamines: bonded-phase phenylboronic acid, cation-exchange resin, and alumina adsorbents compared. // Clin. Chem. 1985. V. 31. N. 2. P. 298−302
- Tsuchiya H., Hayashi T. High-performance liquid chromatographic analysis of catecholamines in biological samples by liquid/liquid extraction prepurification. // Journ. of Pharmacol. Methods. 1990. V. 23. N. 1. P. 21−30.
- Ganhao M.F., Hattingh J., Hurwitz M.L., Pitts N.I. Evaluation of a simple plasma catecholamine extraction procedure prior to high-performance liquid chromatography and electrochemical detection. // J. Chromatogr. 1991. V. 564. N. 1. P. 55−66.
- Rentel C., Gfrorer P., Bayer E. Coupling of capillary electrochromatography to coordination ion spray mass spectrometry, a novel detection method. // Electrophoresis 1999. Y. 20. N. 12. P. 2329.
- Chen D.-C., Zhan D.-Z., Cheng C.-W., Liu A.-C., Chen C.-h. Determination of urine catecholamines by capillary electrophoresis with dual-electrode amperometric detection. // J. Chromatogr. B. 2001. Y. 750. P. 33−39.
- Durgbanshi A., Kok W.Th. Capillary electrophoresis and electrochemical detection with a conventional detector cell.// J. Chromatogr. A. 1998. V. 798. P. 289−296.
- Wallingford R.A. and Ewing A.G. Amperometric detection of catechols in capillary zone electrophoresis with normal and micellar solutions. // Anal. Chem. 1988. V. 60. P. 258−263.
- Vuorensola K., Kokkonen J., Siren H., Ketola R.A. Optimization of capillary-electrophoretic-electrospray ionization-mass spectrometric analysis of catecholamines. //Electrophoresis. 2001. V. 22. P. 4347−4354.
- Choudhary G., Apffel A., Yin H., Hancock W. Use of on-line mass spestometric detection in capillary electrochromatography. // J. Chromatogr. A. 2000. V. 887. P. 85−101.
- Britz-McKibbin P., Chen D.D.Y. Selective focusing of catecholamines and weakly acidic compounds by capillary electrophoresis using a dynamic pH junction. // Anal. Chem. 2000. V. 72. P. 1242−1252.193
- Kirby D. P., Thorne J. M., Gotzinger W. K., Karger B. L. A CE/ESI-MS interface for stable, low-flow operation // Anal. Chem. 1996. V. 68. P. 44 514 457.
- Zhu R., Kok W.Th. Determination of catecholamines and related compounds by capillary electrophoresis with post column terbium complexation and sensitized luminescence detection // Anal. Chem. 1997. V. 69. P. 4010−4016.
- Swanek F.D., Chen G., Ewing A.G. Identification of multiple components of dopamine in a single cell by CE with scanning electrochemical detection. // Anal. Chem. 1996. V. 68. P. 3912−3916.
- Britz-McKibbin P., Wong J., Chen D.D.Y. Analysis of noradrenaline from 15 different dental anestetic formulations by capillary electrophoresis. // J. Chromatogr. A. 1999. V. 853. P. 535−540.
- Chang H.-T., Jeung E. S. Determination of catecholamines in single adrenal medullary cells by capillary electrophoresis and laser-induced native fluorescence. // Anal. Chem. 1995. V. 67. P. 1079−1083.
- Siren H., Karjalainen U. Study of catecholamines in patient urine samples by capillary electrophoresis. // J. Chromatogr. A. 1999. V.853. P. 527−533
- Zhu R., Kok W.Th. Determination of catecholamines and related compounds by CE with postcolumn terbium complexation and sensitized luminescence detection. // Anal. Chem. 1997. V. 67. P. 4010 4016.
- Imai K., Wang M.-T., Yoshiue S., Tamura Z. Determination of catecholamines in the plasma of patients with essential hypertension and of normal persons. // Clin. Chim. Acta 1973. V. 43. P. 145−9.
- Pestoris A., Cerutti L., Sacco R., Vecchi L. De, Sbaffi A. Automated analysis of urinary catecholamines by high-performance liquid chromatography and on-line sample pretreatment. // J. Chromatogr. B. 1995. V. 664. P. 287−293.
- Raggi M.A., Sabbioni C., Casamenti G., Gerra G., Calonghi M., Masotti L. Determination of catecholamines in human plasma by high-performance liquid chromatography with electrochemical detection. // J. Chromatogr. B. 1999. V. 730. P. 201−211.
- Москвин JI.H., Царицын Л. Г. Методы разделения и концентрирования в аналитической химии. // Л. Химия. 1991. 256 С.
- Bovingdon М.Е., Webster R.A. Derivatization reactions for neurotransmitters and their automation. // J. Chromatogr. B. 1994. V. 659. P. 157−183.
- Vuorensola K., Siren H. Determination of urinary catecholamines with capillary electrophoresis after solid-phase extraction // J. Chromatogr. A. 2000. V. 895. P. 317−327.
- Bardelmeijer H.A., Waterval J.C.M., Lingeman H., van’t Hof R., Bult A., Underberg W.J.M. Pre-, on- and post-column derivatization in capillary electrophoresis. //Electrophoresis. 1997. V. 18. P. 2214−2227.
- Kushnir M.M., Urry P.M., Frank E.L., Roberts W.L., Shushan B. Analysis of catecholamines in urine by positive-ion electrospray tendem mass spectrometry.// Clinical Chem. 2002. V. 48. N. 2. P. 323−331.
- Kushnir M.M., Urry F.M., Frank E.L., Roberts W.L., Shushan B. Analysis of catecholamines in urine by positive-ion electrospray tandem mass spectrometry. // Clin. Chem. 2002. V. 48. N. 2. P. 323−31.
- Nomura S., Fujitaka M., Sakuka N., Ueda K. Circadian rhythms in plasma cortisone and Cortisol and the cortisone/cortisol ratio.// Clinica Chemica Acta. 1997. V. 266. P. 83−91.1. ПРИНЯТЫЕ СОКРАЩЕНИЯ.
- Сокращение Полное название Английский эквивалент
- КЭ капиллярный электрофорез СЕ, НРСЕ (Capillary Electrophoresis, High Performance Capillary Electrophoresis) кзэ капиллярный зонный электрофорез CZE (Capillary Electrophresis)
- МЭКХ мицеллярная электрокинетическая хроматография MEKC (Micellar Electrokinetic Chromato graphy)
- НМ-МЭКХ вариант МЭКХ с нормальной миграцией NM-MEKC (Normal Migration Electrokinetic Chromatography)
- МС масс-спектрометрия MS (Mass-Spectrometry)
- ВЭЖХ высокоэффективная жидкостная хроматография HPLC (High Performance Liquid Chr omato graphy)
- ОФ-ВЭЖХ обращено-фазовая высокоэффективная жидкостная хроматография RF HPLC (Reversed Phase High Performance Liquid Chromato graphy)
- ГХ газовая хроматография GC (Gas Chromato graphy) эоп электроосмотический поток EOF (Electroosmotic Flow)
- ПАВ поверхностно-активное вещество Surfactant
- ДДСН додецилсульфат натрия SDS (Sodium Dodecylsulfate) осн октилсульфонат натрия SOS (sodium octylsulfonate)
- ДТАБ додецилтриметил аммоний бромид DTABбиологически-активные ПАВ: Bile salts:
- XII холат натрия SC (Sodium Cholate) тхн таурохолат натрия STC (Sodium Taurocholate)
- ДХН дезоксихолат натрия SDC (Sodium Desoxycholate)
- ДГХН дегидрохолат натрия SDHC (Sodium Dehydrocholate)
- Ы-додецил-ЬТД- диметил-3 -амино-1 -пропансульфонат SB3−12од Циклодекстрин CD (Cyclodextrin)ср-ВД сульфированный р-циклодекстрин sp-CD (cP- Cyclodextrin) ккм критическая концентрация мицеллообразования CMC (Critical Micelle Concentration)
- ЭДТА этилендиаминтетрауксусная кислота EDTA (Ethylene Diaminotetraacetic Acid)
- МЭС 2-(К-морфолино)-этансульфоновая кислота, MES (2-(N-Morpholinoethanesulfonic Acid)
- ЦАПС 3 -(циклогексиламино) пропансульфоновая кислота CAPS (3-(Cyclo-hexylamino) Propanesulfonic Acid)
- ТОФО триоксифосфоний оксид TOPO
- ТФЭ твердофазная экстракция SFE (Solid Phase Extraction) жжэ жидкостно-жидкостная экстракция LLE (Liquid-Liquid Extraction)1. F кортизол F (Cortisol)1. Е кортизон E (Cortison)
- А 11-дегидрокортикостерон A (11-Dehydrocorticosterone)
- В кортикостерон В (Corticosterone)
- DOC 11-дезоксикортикостерон DOC (11-Dezoxycorticosteron)
- Т тестостерон T (Testosterone)
- ОНРг 17-гидроксипрогестерон 17-OHPr (17-Hydroxyprogesterone)
- And андростендион And (Androstendion)
- S 11-дезоксикортизол S (11-DeoxyCortisol)
- Рг прогестерон Pr (Progesterone)
- КА катехоламины CA (Catecholamine)
- А (Е) адреналин (эпинефрин) A (E) (Adrenaline (Epinephrine))
- NA (NE) норадреналин (норэпинефрин) NA or NE (Noradrenaline or Norepinephrine)1. ДА дофамин DA (Dopamine)
- Сер серотонин Ser (Serotonine)
- ДОРА дигидроксифенилаланин ДОФА1. Dihydroxyphenylalanine) тн тирозин гидроксилаза ТН (Tyro sinehydroxylase)
- DC декарбоксилаза DC (Dehydroxylase)
- DBH дофамин р гидроксилаза DBH (Dopamine (3-Hydroxylase)
- PNMT фенилэтаноламин N -метилтрансфераз PNMT
- ПТФЭ политетрафторэтилен PTFE (Polytetrafluorethylene)
- ОФА opmo-фталевый альдегид OPA (o-Phthalialdehyde)
- MXK монохлоруксусная кислота MCA (Monochloracetic Acid)