Влияние растительных олигосахаридов на формирование придаточных корней
Диссертация
Актуальность исследования. По современным представлениям растительная клеточная стенка (КС) является сложноорганизованной, многофункциональной и динамичной системой, где пектины выполняют разнообразные функции: служат распознающими молекулами при взаимодействии с симбионтами и патогенами, участвуют в клеточной адгезии и структруной интеграции тканей, обеспечивают пористость клеточной стенки… Читать ещё >
Содержание
- ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
- 1. 1. Структура и функции полисахаридов клеточной стенки высших растений
- 1. 1. 1. Химический состав и взаимодействие полисахаридов клеточной стенки
- 1. 1. 2. Биологическая роль полисахаридов и процессы, связанные с их изменением
- 1. 2. Олигосахарины
- 1. 2. 1. Олигосахарины, полученные из клеточной стенки грибов
- 1. 2. 2. Активные олигосахариды гемицеллюлозной природы
- 1. 2. 3. Пектиновые олигосахарины
- 1. 2. 4. Олигосахарины, существующие в активной форме in vivo
- 1. 3. Современные представления о контроле формирования придаточных корней
- 1. 1. Структура и функции полисахаридов клеточной стенки высших растений
- ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДО ИССЛЕДОВАНИЯ
- 2. 1. Выделение и очистка олигосахаридов из пектинов побегов гороха
- 2. 2. Тестирование на физиологическую активность
- 2. 2. 1. Наблюдения за ризогенезом эксплантов гречихи
- 2. 2. 2. Приготовление постоянных препаратов из срезов эксплантов гипокотилей {речихи
- 2. 2. 3. Определение митотического индекса и сырой биомассы суспензионной культуры озимой пшеницы
- 2. 2. 4. Определение митотического индекса в клетках корневой меристемы гороха
- 2. 2. 5. Тестирование на сегментах стеблей гороха
- 2. 2. 6. Реакция бласттрансформации лимфоцитов (РБТЛ)
- 3. 1. Получение нейтральных олигосахаридных фрагментов из пектинов клеточной стенки проростков гороха
- 3. 2. Скрининг олигосахаридов на биологическую активность
- 3. 3. Изучение влияния активных олигосахаридов на корнеобразование
- 3. 4. Гистологический анализ формирования корней в эксплантах
- 3. 5. Развитие суспензионной культуры Triticum timopheevii Zhuk при действии пектиновых олигосахаридов
- 3. 6. Влияние активных в ризогенезе олигосахаридов на ростовые процессы в растении
- 3. 7. Определение состава биологически активных фракций
- 4. 1. Выделение высокоочищенных фракций нейтральных олигосахаридов из пектинов проростков гороха
- 4. 2. Уровень чистоты активных олигосахаридных фракций
- 4. 3. Влияние олигосахаридов на формирование придаточных корней эксплантов гречихи
- 4. 3. 1. Стимуляция ризогенеза олигосахаридной фракцией
- 4. 3. 2. Ингибирование ризогенеза эксплантов олигосахаридной фракцией
- 4. 4. Происхождение активных олигосахаридных фракций
Список литературы
- Анулов О.В., Смирнова Н. И. Распространение запасных Д-галакто-Д-маннанов семян среди бобовых умеренного пояса северной Евразии //IV съезд общества физиологов растений России. Москва. 1999. С. 520.
- Аюпова Д.А. Участие эндогенных олигосахаридов в адаптации проростков озимой пшеницы к низким положительным температурам : Автореф. Дис. .канд. биол. наук. Казань. 2000. 140 с.
- Бартон Д., Оллис У. Д. Общая органическая химия. Под редакцией Е. Хас-лама. М.: Химия. 1986. 736 с.
- Барышева Т.С., Кожевников А. Ю., Заботин А. И. Исследование механизма каллозообразования ответной реакции растительной клетки на стресс // Тезисы докладов, представленных 11(Х) съезду Русского ботанического общества. Санкт-Петербург. 1998. Т.1. С. 9.
- Берштейн И. Я., Каминский Ю. П. Спектрофотометрический анализ в органической химии. JL: Наука. 1975. 230 с.
- Валиева А.И., Румянцева Н. И., Лозовая В. В. Динамика полисахаридного состава клеточных стенок каллусов татарской гречихи с различным морфо-генным потенциалом в процессе роста и морфогенеза // Цитология. 1999. Т.41. С.598−604.
- Гамбург К.З. Взаимосвязи инактивации и действия фитогормонов. В кн. Метаболизм и механизм действия гормонов. Иркутск: Академия наук СССР. 1979. С.84−96.124
- Гамбург К.З., Рекославская Н. Н., Швецов С. Г. Ауксины в культурах тканей и клеток растений. Новосибирск: Наука. 1990. 241 с.
- Ю.Гинзбург О., Завгородний В., Зубрицкий Л., Павлова Л., Ралль К., Севбо Д., Стадничук М. Практикум по органической химии. Синтез и идентификация органических соединений. Под. ред. Гинзбурга О. и Петрова А. М.: Высшая школа. 1989. С. 214.
- П.Горшкова Т. А. Метаболизм полисахаридов растительной клеточной стенки. Дис. д-ра биол. наук. Москва. 1997. 248 с.
- Губер Ф. и Шмайсер. В кн. Руководство по неорганическому синтезу. Под ред. Брауэр Г. М.:Мир. 1985. Т.2. С.355−356.
- Гудков И.Н. Стабильность продолжительности фазы синтеза ДНК и митоза в клеточном цикле // Регуляция физиологических функций растений. Киев: Наукова думка. 1986. С.18−30.
- Гудков И.Н. Кинетика клеточного цикла на начальных фазах развития растений // Клеточный цикл растений в онтогенезе. Киев: Наукова думка. 1988. С.5−16.
- Гудков И.Н., Гродзинский Д. М. К вопросу о радиочувствительности фаз митотического цикла меристем растений // Радиобиология. 1972. Т. 12. С. 260.
- Гудков И.Н., Гродзинский Д. М., Групина С. А. Метод авторадиографии в изучении клеточных циклов меристем высших растений при гамма-облучении // Физиология и биохимия культурных растений. 1971. Т.З. С.115−121.
- Гурьянов О.П. Влияние эндогенных олигосахаридов из проростков гороха на процессы роста и корнеобразования : Автореф. дис.. канд. биол. наук. Казань. 1997. 23с.
- Досон Р., Эллиот Д., Эллиот У., Джонс К. Справочник биохимика. М.:Мир. 1991.544 с.125
- Иванов В.Б. Клеточные основы роста растений. Отв. Редактор И. В. Обреи-мов. М.: Наука. 1974. 222 с.
- Иванова А.Б., Анцыгина Л. Л., Ярин А. Ю., Гречкин А. Н. Влияние метил-жасмоната на ростовые процессы у гороха (Pisum sativum L.) // Докл. АН. 2000. Т.374. С.133−135.
- Иванова А.Б., Ярин А. Ю., Анцыгина Л. Л., Гречкин А. Н., Тарчевский И. А. // Цитология. 2001. Т.43. С.166−171.
- Каулинг Г. Нуклеиновая кислота. В кн. Хроматография. Практическое приложение метода. Под. ред. Хефтмана Э. М.:Мир. 1986. Ч. 2. С. 168.126
- Кефели В.И., Коф Э.М., Власов П. В., Кислин Е. Н. Природный ингибитор роста абсцизовая кислота. Л.:Наука. 1989. С. 15.
- Кефели В. Природные ингибиторы роста // Физиология растений. 1997. Т.44. С.471−480.
- Кривцов Т.Г., Лоскутова Н. А., Конюхова Н. С., Хорьков Е. И., Кононенко Н. В., Ванюшин Б. Ф. Действие хитозановых элиситоров на растение пшеницы // Изв. РАН. 1996. № 1. С.23−29.
- Лакин Г. Ф. Биометрия. М.: Высш. школа, 1980. 293с.
- Лозовая В.В., Сальников В. В., Юмашев Н. В. Формирование клеточных стенок в тканях стебля растений льна-долгунца. Научн. Редактор Тарчев-ский И.А., Казань. 1990. 171 с.
- Лозовая В.В., Заботина О. А., Румянцева Н. И., Маликов Р. Г., Жихарева М. В. Стимуляция образования корней на тонкослойных эксплантах гречихи фрагментами пектинов из клеточной стенки стебля гороха // Докл. АН СССР. 1993. Т.328. С.126−128.
- Маргна У.В. О взаимосвязи между первичным и вторичным метаболизмом растений на примере фенольных соединений // Тез. Докл. Биохим. съезда. Киев. 1986. С. 285.
- Мачс Э.М., Гриф В. Г. Структура клеточного цикла и ритм деления клеток в меристемах растений//Цитология. 1996. Т.38. С.842−853.
- Микеш О., Шебеста К., Штамберг Я., Гейтманек М. Ионообменная хроматография. В кн: Лабораторное руководство по хроматографии и смежным методам. Под ред. Микеша О. М.: Мир. 1982. Ч. 1. С. 270−272.
- Мэзия Д. Митоз и физиология клеточного деления. Ред. Л. Н. Жинкин. М.: ИЛ. 1963. С. 109.
- Несмеянов А.Н., Несмеянов Н. А. Начало органической химии. Химия. 1974. Т.2. С. 103.127
- Никифорова В.Ю., Миляева Э. Л., Родионова Н. А. Влияние олигогалакту-роновых кислот на переход растений от вегетативного морфогенеза к репродуктивному // Докл. РАН. 1999. Т.343. С.831−833.
- Паушева З.П. Практикум по цитологии растений. М.: Агропромиздат, 1988. С, 56−95.
- Переход Е.А., Чаленко Г. И., Герасимова Н. Г., Васюкова Н. И., Озерецков-ская О.А., Ильина А. В., Татаринова Н. Ю., Анисимова М. В., Варламов В. П. Хитозан регулятор фитофторустойчивости картофеля // Докл. АН. 1997. Т.355. С.120−122.
- Полевой В., Саламатова Т. Физиология роста и развития растений. Л.: Ленинградский университет, 1991. 238с.
- Резников В. М., Матусевич Л. Г., Селиверстова Т. С. Сравнение кальций -пектатного и спектрофотометрического методов анализа пектиновых веществ // Химия древесины. 1982. Т. 2. С. 108−113.128
- Реймерс Ф.Э., Илли И. Э. Прорастание семян и температура. Новосибирск: Наука. 1978. С.104−115.
- Рекославская Н.И. Роль коньюгирования в метаболизме и действии фитогормонов. В кн. Метаболизм и механизм действия гормонов. Иркутск: Академия наук СССР. 1979. С.97−103.
- Северин С. Е., Соловьев Г. А. Практикум по биохимии. М.: МГУ, 1989. С. 23−24.
- Тарчевский И.А., Марченко Г. Н. Биосинтез и структура целлюлозы. М.: Наука, 1985. 280 с.
- Томашек В. Гель хроматография. В кн: Лабораторное руководство по хроматографии и смежным методам. Под ред. Микеша О. М.: Мир. 1982. 4.1. С.339−1982.
- Турецкая Р., Гуськов А., Блайс В., Коф Э., Кефели В., Кутачек М. Возможная роль фенольных соединений в росте и ризогенезе черенков // Физиология растений. 1976. Т.23. С.760−768.
- Турков В., Гужов Ю., Шелепина Г., Кишмария Я., Кометиани Д. Хромосомные исследования растений в проблемах селекции клеточной инженерии и генетическом мониторинге. М.: Университет Дружбы народов. 1988. С.60−63.
- Усов А.И. Олигосахарины новый класс сигнальных молекул в растениях // Успехи химии. 1993. Т.62. С.1119−1144.
- Усов А.И., Яроцкий С. В. Раздельное определение гексоз, пентоз при помощи о-толуидинового реагента // Изв. АН СССР. 1974. № 4. С. 877−880.
- Фримель Г. Иммунологические методы. М.: Медицина. 1987. 472 с.129
- Эзау К. Анатомия семенных растений. М.: Мир. 1980. Т. 1. 218 с.
- Элберсгейм П., Дарвилл А. Г. Олигосахарины // В мире науки. 1985. N11. С.16−23.
- Эсау К. Анатомия растений. Ред. Кудряшов Л. В. М.: Мир. 1969. 564 с.
- Abenavoli М., Muscolo A. Physiologycal Changes induced by coumarin in leaf explants of petunia hybrida // Plant physiol. Biochem. Special issue. 10th FESPP congress. Italy. 1996. P.310.
- Albersheim P., Darvill A.G., Augur C., Cheong J.J., Eberhard S., Hahn M.G., Marfa V., O’Neill M.A., Spiro M.D., York W.S. Oligosaccharins130oligosaccharide regulatory molecules 7/ Accounts Chemical Research. 1992. V.25. P.77−83.
- Albersheim P., Darvill A., Roberts K. Do the structures of cell wall polysaccharides define their mode synthesis // Plant Physiol. 1997. V. l 13. P. 1−3.
- Aldington S., McDougall G., Fry S.C. Structure-activity relationships of biologically active oligosaccharides // Plant Cell and Environment. 1991. V. l4. P.625−630.
- Aldington S., Fry S.C. Oligosaccharins // Adv. in Bot. Res. 1993. V.19. P. 1−100.
- Alison R.W., Shannon D.G., Candace H.H. A secreted factor induces cell expansion and formation of metaxylem-like trachery elements in xylogenic suspension cultures of Zinnia II Plant Physiol. 1997. V. l 15. P.683−692.
- Altamure M.M., Zaghi D., Salvi G., De Lorenzo G., Bellincampi D/ Oligogalacturonides stimulate pericycle cell wall thickening and cell divisions leading to stoma formation in tobacco leaf explants // Planta. 1998. V.204. P.429−436.
- Anderson J.D., Mattoo A.K., Lieberman M. Induction of ethylene biosynthesis in tobacco leaf disks by cell wall digesting enzymes // Biochem. and Byophys. Res. Commun. 1982. V.107. P.588−596.
- Aspinal G.O., Hunt K., Morrison I.M. Polysaccharides of soubeans. Part V. Acidic polysaccharides from the hulls // J. Chem. Soc. 1967. P. 1080−1086.
- Aspinall G.O., Craig J.W.T., Whyte J.L. Lemon peel pectin. Part I. Fractionation and partial hydrolysis of water-soluble pectin // Carbohydr. Res. 1968. V.7. P.442−452.
- Augur C., Yu L., Sakai K., Ogawa Т., Sinay P., Darvill A., Albersheim P. Further studies of the ability of xyloglucan oligosaccharides to inhibit auxin -stimulated growth // Plant Physiol. 1992. V. 99. P. 180−185.
- Augur C., Benhamou N., Darvill A., Albersheim P. Purification, characterization and cell wall localization of an a-fucosidase that inactivates a xyloglucan oligosaccharin // The Plant J. 1993. V.3. P.415−426.131
- Auxtova О., Liskova D., Kakoniova D., Kubakova M., Karacsonyi S., Biliscs L. Effect of galactoglucomannan-derived oligosaccharides on elongation growth of pea and spruce stem segments stimulated by auxin // Planta. 1995. V.196. P.420−424.
- Bacic A., Harris P.J., Stone B.A. // Structure and function of plant cell walls // Biochem. of Plants. New York. 1988. V.14. P.297−371.
- Barlow P.W., Pilet P. The effect of abscisic acid on cell growth, cell division and DNA synthesis in the maize root meristem // Physiol. Plant. 1984. Y.62. P. 125 132.
- Barret A.J., Northcote D.H. Apple fruit pectic substances // Biochemical J. 1965. Y.94. P.617−627.
- Bastin M. Root initiation auxin level and biosynthesis of phenolic compounds // Photochem. and Photobiol. 1966. V.5. P.423−429.
- Basu R., Roy В., Bose T. Interction of abscisic acid and auxins in rooting of cuttings // Plant and Cell Physiology. 1970. V. l 1. P.681−684.
- Batten D., Goodwin P. Phytohormones and the induction of adventitious roots. In Phytohormones and related compounds. Ed. D Letham, P. Goodwin, T. Higgips. Amsterdam. 1978. V.ll. P.137−173.
- Bellincampi D., Salvi G., De Lorenzo G., Cervone F., Marfa V., Eberhard S., Darvill A., Albersheim P. Oligogalacturonides inhibit the formation of roots on tobacco explants // Plant J. 1993. V.4. P.207−213.
- Bishop P.D., Makus D.J., Pearce G., Ryan C.A. Proteinase inhibitor-inducing activity in tomato leaves resides in oligosaccharides enzymically released from cell wall // Proc. Natl. Sci. USA. 1981. V.78. P.3536−3540.
- Blakesley D., Hall J.F., Weston G.D., Elliot M.C. Endogenous plant growth substances and the rooting Phaseolus aurus cuttings. In: Biology of Adventitious root formation. Ed. By T. D/ Davis and B.E. Haissig. Plenum Press. New York. 1994. P. 145.
- Blumenkrantz N., Asboe-Hansen G. New method for quantitative determination of uronic acids // Anal. Biochem. V.54. P.484−489.
- Bouveng И.О. Polysaccharides in pollen II. The xylogalacturonan from mountain pine (Pinus mugo Turra) II Acta Chem. Scand. 1965. V.19. P.953−963.
- Brady C.J. Fruit ripening // Annu.Rev.Plant Physiol. 1987. V.38. P. 155−178.
- Branca C., DeLorenzo G., Cervone F. Competitive inhibition of the auxin induced elongation by a-D-oligogalacturonides in pea stem segments // Physiol. Plantarum. 1988. V.72. P.499−504.
- Brian P., Radley M. A physiological comparison of gibberellic acid with some auxins // Physiol. Plantarum. 1955. V.8. P.899−912.
- Brian P., Hemming H., Lowe D. Inhibition of rooting of cuttivgs by gibberellic acid // Annals of Botany. 1960. V.24. P.407−419.
- Broekaert W.F., Peumans W.S. Pectic polysaccharides elicit chitinase accumulation in tobacco // Physiol. Plant. V.74. P.740−744.
- ЮЗ.Вгисе R., West C. Elicitation of lignin biosynthesis and isoperoxidase activity by pectic fragments in suspension cultures of castor beans // Plant Physiol. 1989. V.91. P.889−897.133
- Campbell A., Labavitch J. Induction and regulation of ethylene biosynthesis by pectic oligomers in cultured pear cells // Plant Physiol. 1991(a). V.1997. P. 699 705.
- Campbell., Labavitch J. Induction and regulation of ethylene biosynthesis and ripening by pectic oligomers in tomato pericarp discs // Plant Physiol. 1991(b). V. 97. P.706−713.
- Carbera J.C., Jgartuburu J.M., Iglesias R., Gonzales S., Diosdado E., Hormaza J., Gutiirres A., Paz-lago D. // Abstr. 8th Intern. Cell Wall Meeting. Norwich. UK. 1998. P.8.41.
- Carpita N.C. Hemicellulosic polymers of cell walls of Zea coleoptiles // Plant Physiol. 1983. V.72. P.515−521.
- Carpita N.C. Cell wall development in maize coleoptiles // Plant Physiol. 1984a. V.76. P.205−212.
- Carpita N., McCann M., Griffmg L.R. The plant extracellular matrix: news from the cells frontier // Plant Cell. 1996. V.8.N. P. 1451−1463.
- Carpita N.C., Gibeaut D.M. Structural models of primary cell walls in flowering plants: consistency of the walls during growth // The Plant J. 1993. V.3.P.1−30.
- Chaplin M.F., Kennedy J.F. Carbohydrate analysis: a practical approach. IPL Press. 1998. P.38.
- Chin Т., Myer M., Beever S. Abscisic acid stimulated rooting of stem cuttings // Planta. 1969. V.88. P.192−196.
- Cline K., Wade M" Albersheim P. Host pathogen interactions 15. Fungal glucans which elicit phytoalexin accumulation in soybean also elicit the134accumulation of phytoalexins in other plants // Plant Physiol. 1978. V.62. P. 918 921.
- Coleman W.K., Greyson R.I. Analysis of root formation in leaf discs of Lycopersicon esculentum Miell. Cultured in vitro // Ann. Bot. 1977. V.41. P.307−321.
- Conboy J., Henion J. High-performance anion-exchange chromatography coupled with mass spectrometry for the determination of carbohydrates // Biological Mass Spectrometry. 1992. V.21. P.397−407.
- Cooper W. Hormonos in relation to root formation on stem cuttings // Plant Physiol. 1935. V.10. P.789−794.
- Cosgrove D.J. Relaxation in a high-stress environment: The molecular bases of extensible cell walls and cell enlargement // Plant Cell. 1997. V.9. P. 1031−1041.
- Cutillas-Iturralde A., Lorences E.P. Effect of xyloglucan oligosaccharides on growth, viscoelastic properties and long-term extension of pea shoots // Plant Physiol. 1997. V.113. P.103−109.
- Darvill A.G., Smith C.J., All M.A. Cell wall structure and elongation growth in Zea mays coleoptile tissues // New Phytol. 1978. V.80. P.503−516.
- Darvill A., McNeil M., Albersheim P.A., Delmer D.P. The primary cell walls of flowering plants // The biochemistry of plants. N.Y.: Acad. Press. 1980. V.l. P.91−162.
- Davis K.R., Hahlbrock K. Induction of defence responses in cultured parsley cells by plant cell wall fragments // Plant Physiol. 1987. V.85. P. 1286−1290.
- Davis T.D. and Haissig B.E. Biology of adventitious root formation. Plenum Press. New York. 1994. P.117.
- Dawson M.C., Elliot D.C., Elliot W.H., Jones K.M. Data for biochemical research. Oxford: Claredon press. 1986. P.464−467.
- Dean V.F.D., Gross K.C., Anderson J.D. Ethylene biosynthesis including xylanase. III. Product characterization // Plant Physiol. 1991. V.96. P.571−576.
- Delmer D., Amor Y. Celulose Biosynthesis // The Plant Cell. 1995. V.7. P. 987−1000.
- Dinand E., Gerard E., Lienart Y., Vignon M.R. Two rhamnogalacturonide tetrasaccharides isolated from semi-retted flax fibers are signaling moleculs in Rubus fruticosus L cells // Plant Physiol. 1997. V. l 15. P.793−801.
- Dixon R.A., Jennings A.C., Davies L.A., Gerrish C., Murphy D.L. Elicitor-active components from french bean hypocotyls // Physiol. Mol. Plant Pathol. 1989. V.34. P.99−115.
- Dusterhoft E.M. Characterisation and ensymic degradation of non starch polysaccharides in lignocellulosic by — products. A stady on sunflower meal and palm — kernel meal. Wageningen. 1993. P.37.
- Eberhard S., Doubrava N., Marfa V., Mohnen D., Southwick A., Darvill A., Albersheim P. Pectic cell wall fragments regulate tobacco thin-cell-layer explant morphogenesis // Plant Cell. 1989. V.l. P.747−755.
- Englyst J.H., Cummings Simplified method for the measurement of total non starch polysaccharides by gas-liquid chromatography of constituent sugars as alditil acetatos // Analyst. 1984. V. l09. P.937−942.136
- Emmerling M., Seitz H. Influence of a specific xyloglucan nonasaccharide derived from cell walls of suspention — cultured cells of Daucus carota L. on regenerating carrot protoplasts // Planta. 1990. V.182. P. 174−180.
- Eriksen E. Root formation in pea cuttings. Effect of decapitation and disbudding at different developmental stages // Physiol. Plantarum. 1973. V.28. P.503−506.
- Eriksen E. Root formation in pea cuttings. 111. The influence of cytokinins at different developmental stages //Physiol. Plantarum. 1974. V.30. P.163−167.
- Eriksen E., Mohammed S. Root formation in pea cuttings. 11. The influence of indole-3-acetic acid at different developmental stages // Physiol. Plantarum. 1974. V.30. P.158−162.
- MO.Fabijan D., Yeung E., Mukheijee I., Reid D. Adventitious rooting in hypocotyls of sunflover (.Helianthus annus) 1. Correlative influence, and developmental sequence // Physiol. Plantarum. 1981. V.53. P.578−588.
- Farmer E., Moloshok Т., Saxton M., Ryan C. Oligosaccharide signaling in plants. Specificity of oligouronide enhanced plasma membrane protein phosphorylation // The J. Biol. Chem. 1991. V.266. P.3140−3145.
- Ferkas V., Maclachlan G. Stimulation of pea 1,4-p-glucanase activity by oligosaccharides derived from xyloglucan // Carbohyd. Res. 1988. V.184. P.213−219.
- Fincher G.B. Molecular and cellular biology associated with endosperm mobilization in germinating cereal grains // Ann. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1989. V.40. P.305−436.
- Fischer R.L., Bennett A.B. Role of cell wall hydrolases in fruit ripening // Annu.Rev.Plant.Physiol. Plant Mol. Biol. 1991. V.42. P.675−703.
- Fry S.C. Prymary cell wall metabolism // Oxford Surveys of plant molecular and cell biology. 1985. V.2. P. 1−42.
- Fry S.C. In vivo formation of xyloglucan nonasaccharide: a possible biologically-active cell-wall fragment // Planta. 1986. V.169. P.443−453.137
- Fry S.C. The growing plant cell wall: chemical and metabolic analysis. Longman Scientific and Technical. 1988. 333 p.
- Fry S.C. Polysaccharide-modifying enzymes in the plant cell wall // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1995. V.46. P.497−520.
- Fry S.C. Cross-linking of matrix polysaccharides in the growing cell walls of angiosperms // Ann. Rew. Plant Physiol. 1986. V.37. P. 165−186.
- Fuchs Y., Saxena A., Gamble H.R., Anderson J.D. Ethylene biosynthesis -inducing protein from cellulysin is an endoxylanase // Plant Physiol. 1989. V.89. P.138−143.
- Gamborg O.L., Miller R.A., Ojima R. Nutrient requirements of suspension cultures of soybean root cells // Exp. Cell Res. 1968. V.50. P.151−158.
- Garcia-Romera I., Fry S.C. The longevity of biologically active oligosaccharide in rose cell cultures: degradation by exopolygalacturonase // J.Exp.Bot. 1995. Y.46. P.1853−1867.
- Gaspar Т., Kevers C., Penel C., Greppin H., Reid D, Thorpe T. Plant gormones and plant growth regulators in plant tissue culture // Society for In vitro Biologi. 1996. P.272−289.
- Geneve R., Heuser C. The relationship between ethephon and auxin on adventitious root initiation in cuttivgs of Vigna radiataiL) // R. Wilez. J. of the Amerikan Society for horticultural Science. 1983. V.108. P.330−333.
- Gibeaut D.M. and Carpita N.C. Tracing cell wall biogenesis in intact cells and plants. Selective turnover and alteration of soluble and cell wall polysaccharides in grasses // Plant Physiol. 1991. V.97. P.551−561.138
- Gilkes N.R. and Hall M.A. The hormonal control of cell wall turnover Pisum satvum L. // New Physiologist. 1977. V.78. P. l-15.
- Gonzalez A., Rodriguez R., Tames R. Rooting in relation to ethylene, peroxidase and polyphenol oxidases in hazelput shoots // Plant Physiol Biochem. 1993. V.31.P.411−420.
- Gordon J., McDougall and Fry S.C. Inhibition of auxin-stimulated growth of pea stem segments by a specific nonasaccharide of xyloglucan // Planta. 1988. V.175. P.412−416.
- Gould S.E.B., Rees D.A., Richardson N.G., Steele I.W. Pectic polysaccharides in the growth of plant cells: molecular factors and their role in the germination of mustard //Nature. 1965. V.208. P.876−878.
- Gross K.C. Promotion of ethylene evolution and ripening tomato fruit by galactose // Plant Physiol. 1985. V.79. P.306−307.
- Gross K.C. and Wallner SJ. Degradation of cell wall polysaccharides during tomato fruit ripening // Plant Physiol. 1979. V.63. P. 117−120.
- Gross K.C., Watada A.E., Kang M.S., Kim S.D., Lee S.W. Biochemical changes associated with the ripeninng og hot pepper fruit // Physiol. Plant. 1986. V.66. P.32−36.
- Gudkov I.N., Grodsinsky D.M. Cell radiosensitivity varuation in synnchronously- dividing rootmeristems of Zea mays and Pisum sativum L. during the mitotic cycle // J. Radiat. Biol. 1982. V.4. P.401−409.
- Hahn M.G., Darvill A.G., Albersheim P. Host-pathogen interactions. XIX. The endogenous elicitor, a fragment of a plant cell wall polysaccharide that elicits phytoalexins accumulation in soybeans // Plant Physiol. 1981. V.68. P. 11 611 169.
- Haissig B. Influences of auxins and auxin synergist on adventitious root primordium initiation and development // New Zealand J. of Forestry Science. 1974. V.2. P.31−323.139
- Haissig В. Meristematic activity during adventitious root primordium development // Plant Physiol. 1972. V.49. P.886−892.
- Hansen J. Light dependent promotion and inhibition of adventitious root formation by gibberelic acid // Planta. 1975. V.123. P.203−205.
- Hansen J. Adventitious root formation induced by gibberelic acid and regulated by the irradiance to the stock plants // Physiol. Plantar. 1976. V.36. P.77−81.
- Hargreaves J.A., Bailey J.A. Phytoalexin production by hypocotyls of Phaseolus vulgarism response to constitutive metabolites released by damaged bean cells // Plant Physiol. 1978. Y.13. P.89−100.
- Hartung W., Ohl В., Kummer V. Abscisic acid and the rooting of runner bean cuttings // Zeitschrift for Pflanzen physiologie. 1980. V.98. P.95−103.
- Hosson S.C. Polysaccharide-modifying enzymes in the plant cell wall // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol.Biol. 1995. V.46. P.497−520.
- Jackson M., Harney P. Rooting cofactors indoleacetic acid and adventitious root initiation in mung bean cuttings, (Phaseolus aureus) II Canad. J. of Botany. 1970. V.48. P.943−946.
- Jarvis M.C. Structure and properties of pectin gels in plant cell walls // Plant Cell Environ. 1984. V.l. P. 153−164.
- Jarvis B. Endogenous control of adventitious rooting in non-woody cuttings. In: New root formation in plants and cuttings. Jackson M., Martinus N. 1986. P. 191−222.140
- Kato Y, Nevins D. Structure of a pectic polysaccharide fraction from zea shoots // Plant. Physiol. 1989. V. 89. P.792−797.
- Katsumi M, Chiba Y, Fukuyma M. The roles of the cotyledons and auxin in the adventitious root formation of gypocotyl cuttings of light grown cucumber seedlings // Physiol. Plantarum. 1969. V.22. P.993−1000.
- Kauss H. Some aspects of calcium-dependent regulation in plant metabolism // Ann. Rev. Plant Physiol. 1987. V.38. P.47−72.
- Kawase M, Matsue H. Role of auxin in root primordium formation in etiolated red kidney bean stems // J. of the Amerikan Society for horticultural Science. 1980. V.105. P.898−902.
- Keegstra K, Talmadge K, Bauer W, Albersheim P. The structure of plant cell wall // Plant Physiol. 1973. V. 51. P.188−196.
- Kikuchi T, Sugimoto H. Studies on polysaccharides from sousauce. Part v. Detailed structure of an acidic polysaccharide in saysauce confirmed by the use of two kinds of purtified pectinases // Agr. Biol. Chem. 1976. V.40. P.87−92.
- Knox J.P. Emerging patterns of organization at the plant cell surface // J. Cell Sci. 1990. V.96. P.557−561.141
- Krishnamoorthy H. Promotion of rooting in mung bean hypocotyl cuttings with ethrel an ethylene releasing compound // Plant and Cell Physiol. 1970. V.ll. P.979−982.
- Kuhn R., Baer H.H. and Gauhe A. 2-cc-L-Fucopyranosyl-D-Galactose and 2-oc-L- Fucopyranosyl-D-Talose. Zur Einwirkund von alkali ans oligosaccharide // Chemische Berichte. 1958. V.611. P.242−249.
- Labavitch J., Ray P. Turnover of cell wall polysaccharides in elongating pea stem segments // Plant Physiol. 1974. V. 53. P. 669−673.
- Lau J.M., McNeil M., Darvill A.G., Albersheim P. Structure of the backbone of rhamnogalacturonan I, a pectic polysaccharide in the primary walls of plants // Carbohydr. Res. 1985. V.137. P. ll-125.
- Liu Y.K., Luh B.S.J. В кн, Хроматография. Ред. Э. Хэфтман. 1986. Т.2. С. 26.
- Liskova О., Auxtova О., Kakoniova D., Kubakova М., Karacsonyi S., Bilisics L. Biological activity of galactoglucomannan-derived oligosaccharides // Planta. 1995. V. l96. P.425−429.
- Loescher W. and Nevins D.J. Auxin-induced changes in Avena colepotiles cell wall composition // Plant Physiol. 1972. V.20. P.556−563.142
- Lorences E. and Fry S. Xyloglucan oligosaccharides with at least two a-D-xylose residues act as acceptor substrates for xyloglucan endotransglycosylase and promote the depolymerization of xyloglucan // Physiol. Plantarum. 1993. V.88. P.105−112.
- Lorences P.E., McDougall G.J., Fry S.C. Xyloglucan and cello-oligosaccharides: antogonists of the growth-promoting effect of H+ // Physiol. Plantarum. 1990. V.80. P. 109−113.
- Lozovaya V. V, Zabotina O.A., Rumyantseva N. I, Malikov R.G., Znixareva M.V. Stimulation of root development on buckweat thin cell-layer explants by pectic fragments from pea stem cell walls // Plant Cell Reports. 1993. V.12. P.530−533.
- Lotan T. and Fluhr R. Xylanase, a novel elicitor of pathogenesis-regulated proteins in tobacco, uses a non-ethylene pathway for induction // Plant Physiol. 1990. V.93.P.811−817.
- Loughman B.C., East A. K., Maynard J.C., Southon Т.Е. Metabolism of phenoxyacetic acid herbicides in plants // Conjugated plant hormones, structure, methabolism and function. Berlin. VEB Deutscher Verlag der Wissenschaften. DDR. 1987. P.376−383.
- Mathieu Y., Kurkdijan A., Xia H., Guern J., Koller A., Spiro M.D., O’Neil M., Albersheim P., Darvill A. Membrane responses induced by oligogalacturonides in suspension-cultured tobacco cells // Plant J. 1991. V.l. P.333−343.
- Marfa V., Gollin D.J., Eberhard S., Mohnen D., Darvill A., Albersheim P. Oligogalacturonides are able to induce flowers to form on tobacco explants // Plant J. 1991. V.l. P.217−225.
- McCann M.C., Roberts K. Plant cell wall architecture: role of pectins // Abstr. and Program of Int Symp. «Pectin and Pectinases». Wageningen. The Netherlands. 1995. C. 13.143
- McCann M.C., Wells В., Roberts К. Complexity in the spatial localization and length distribution of plant cell wall matrix polysaccharides // Journal of Microscopy. 1992. V.166. P.123−136.
- McCann M.C., Wells B. And Roberts K. Direct visualization of gross-links in the primary plant cell wall // Cell Sci. 1990. V.96. P.323−334.
- McDougall G.J., Fry S.C. Inhibition of auxin-stimulated growth of pea stem segments by a specific nonasaccharide of xyloglucan // Planta. 1988. V.175. P.412−416.
- McDougall G.J., Fry S.C. Structure-activity relationships for xyloglucan oligosaccharides with antiauxin activity // Plant Physiol. 1989. V.189. P.883−887.
- McDougall G. J, Fry C.S. Xyloglucan oligosaccharides promote growth and activate cellulase: evidence for a role of cellulase in cell expansion // Plant Physiol. 1990. V.93. P.1042−1048.
- McNeil M., Darvill A., Albersheim P. Structure of plant cell walls 10. Rhamnogalacturonan 1, a pectic polysaccharide in the cell wall of suspension -cultured sycamore cells // Plant Physiol. 1980. V.66. P. 1128−1134.
- McNeil M., Darvill A.G. Albersheim P. Structure of plant cell walls. 12. Identification of seven differently linked glycosil residues of rhamnogalacturonan-1 // Plant Physiol. 1982. V.70. P. l586−1591.
- McNeil M., Darvill A., Fry S., Albersheim P. Structure and function of the primary cell walls of plants // Annu. Rev. Biochem. 1984. V.53. P. 625−663.
- McNeil M., Albersheim P., Darvill A. The pectic polysaccharides of primary cell walls // In: Methods in Plant Biochemistry. 1998. V.l. P. l-47.
- McNeil M., Darvill A.G., Fry S.C., Albersheim P. Structure and function of the primary cell walls of plants // Ann. Rev. Biochem. 1994. V.53. P. 625−663.144
- Meier H., Buchs L., Buchala A., Homewood Т. (l-«3) -13 d — glucan (callose) is a probable intermediate in biosinthesis of cellulose of catton fibres // Nature. 1981. V.289. P.821−822.
- Melotto E., Greve C., Labavitch J. Cell wall metabolism in ripening fruit. 7. Biologically active pectin oligomers in ripening Tomato (Lycopersicon exculentum Mill.) fruits // Plant Physiol. 1994. V.106. P.575−581.
- Melotto E. Greve C., Labavitch J. Biologically active pectin oligomers in ripening tomato fruits // Progr. and Abstr. of Int. Symp. «Pectin and Pectinases». Wageningen, The Netherlands. 1995. P.24.
- Messiaen J., Read N.D., Van Cutsem P., Trewavas A.D. Cell wall oligosaccharides increase cytosolic free calcium in carrot protoplasts // J. Of Cell Science. 1992. V.104. P.365−371.
- Messiaen J., Van Cutsem P. Pectic signal transduction in carrot cells: membrane, cytosolic and nuclear responses induced by oligogalacturonides // Plant Cell Physiol. 1994. V.35. P.677−689.
- Millane R.P., Narasaiah T.V. The molecular structure, of tamatinol seed polysaccharide. In: Gums and stabilizers for the food industry 6 (Phillips G.O., Williams P. S. and Wedlock D.J. eds.) Oxford: IRL Press. 1992. P.535−539.
- Mohammed S., Eriksen E. Root formation in pea cuttings. IV. Further studies on the influence of indole-3-acetic acid at different developmental stages // Physiologia Plantarum. 1974. V.32. P.94−96.
- Moloshok Т., Pearce G., Ryan C.A. Oligouronide signaling of proteinase-inhibitor genes in plants-structure-activity-relationships of digalacturonic and trigalacturonic acids and their derivatives // Arch. Biochem. Biophys. 1992. V.294. P.731−734.
- Mumma R.O., Davidonis G. Plant tissue culture and pesticeide metabolism // Pogr. Pestic. Biochem. Toxicol. Chichester e.a. 1983. V.3. P.255−278.
- Murashige Т., Scoog F. A Revised medium for rapid grouth and bioassays with tobacco tissue culture // Phisiol. Plantarum. 1962. V.15. P.473−497.145
- Naran R., Kato Y. Extraction of the apple cell wall polysaccharide components with carboxylesterase- evidence for the existance of ester linkage between apple cell wall rhamnogolacturonanes and hemicelluloses // Plant. Physiol. 1997. V.114. P.83.
- Natsume M., Kamo Y., Hirayama M., Adachi T. Isolation and characterization of alginate-derived oligosaccharides with root growth-promoting activities // Cabohydr. Res. 1994. V.258. P.187−197.
- Nishitani K., Nevins D.J. Glucuronxylan xylanohydrolase: a unique xylanase with the requirement for appendant glucuronosyl units. J. Of Biolog. Chenistry. 1991. V.266. P.6539−6543.
- O’Neill M.A., Albersheim P., Darvill A.G. The pectic polysaccharides of primary cell walls // Biochem. of Plants. 1990. V.2. P.415−441.
- Parker M.L. Cell wall storage polysaccharides in cotyledons of Lupinus lan-gustifolius L. II. Mobilization during germination and seedling development // Protoplasma. 1984. V.120. P.233−241.
- Pavlova Z., Ash O., Vnuckova V., Babakov A, Torgov V., Nechaev O., Usov A., Shibaev V. Biological activity of a synthetic pentasaccharide fragment of xyloglucan//Plant Sci. 1992. V.85. P.131−134.146
- Pilnik W, Voragen A.J.G. Pectic substances and other uronides // The Biochemistry of Fruits and Their Products. Ed. A.C. Hulme. London: Academic. 1970. V.l.P.53−87.
- Qouta L. A, Waldron K. W, Baydoun E.A.-H, Brett C.T. Changes in seed reserves and cell wall composition of component organs during germination of cabbage Brassica oleracea seeds // J. Plant Physiol. 1991. V.138. P.700−707.
- Rasmussen S, Andersen A. Water stress and root formation in pea cuttings. Effect of abscisic acid treatment of cuttings from stock plants grown under two levels of irradiance // Physiologia Plantarum. 1980. V.48. P. 150−154.
- Ryan C. A, Farmer E.E. Oligosaccharide signals in plants, a current Assement // Annu Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1991. V.42. P.651−674.
- Ryan C.A. The search for the proteinase inhibitor-inducing factor // Plant Mol. Biol. 1992. V.19. P.123−133.147
- Sandford P. and Conrad H. The structure of the Aerobacter aerogenes A3 (SI) polysaccharide. 1. A reexamination using improved procedures for methylation analysis // Biochem. 1966. V.5. P. 1508−1517.
- Schlepphorst R., Barz W. Metabolism of aromatic acids in plant cell suspension cultures // Planta Med. 1979. V. 36. P.333−342.
- Schols H.A., Voragen A.G.J. Complex pectins: Structure elucidation using ensymes // Proceedings of the international symposium «Pectin and pectinases». The Netherlands. 1994. P.3−21.
- Schols H.A., Vierhuis E., Baks E.J., Voragen A.G.J. Different populations of pectic hairy regions occur in apple cell walls // Carbohydr. Res. 1995a. V.275. P.343−360.
- Schols H.A., Voragen A.G.J., Baks E.J., Shipper D. A Xylogalacturonan subunit present in the modified hairy regions of apple pectin // Carbohydr. Res. 1995b. V.279. P.265−279.
- Schroder R., Knoop B. An oligosaccharide growth factor in plant suspension cultures: a proposed structure // Plant Physiol. 1995. V.146. P.139−147.
- Selvendran R., O’Neill M. Methods of Biochemical analysis. 1987. V.32. P.54−57.
- Shenk R.U., Hilderbrandt A., Medium and techniques for induction and growth of monocotyledonous and dicotyledonous plant cell cultures // Canad. J. Bot. 1972. V.50. P. 199.
- Shibaoka H. Effects of indole-acetic acid, p-chlorophenoxyisobutyric acid and 2−4-6trichlorophenoxyacetic acids on three phases of rooting Azukia cuttings // Plant and Cell Physiology. 1971. V. 12. P. 193−200.
- Shibuya N., Yamada A., Kaku H., Kuchitsu K., Kodama O., Akatsuka Т., Hong N., Ogawa T. Recognition of oligosacchride-elicitors by suspension-cultured rice cells // Abstr. Of 15th Int. Bot. Congr.Yokogama. 1993. P.395.
- Showalter A. Structure and function of plant cell wall proteins // The Plant Cell. 1993. V.5. P.5−23.148
- Singleton V., Rossi J. Colorimetry of total phenols with phosphomolybdic-phosphotungstic acid reagent // Amer. J.Enol. Voticult. 1965. V.16. P.144−157.
- Subikova V., Slovacova L., Farcas V. Inhibition of tobacco necrosis virus infection by xyloglucan fragments // J. Plant Diseases and Protection. 1994. У.101. P. l28−131.
- Sweet D., Shapiro R., Albersheim P. Quantitative analysis by varions GLC responsefactor theories for partially methylated and partially ethylated alditol acetates // Carbohydr. Res. 1975. V. 40. P.217−225.
- Tahimoto E., Huber D.J. Effect of GA3 on the molecular mass of polyuronides in the cell walls of Alaska pea roots // Plant and Cell Physiol. 1997. V.97. P.25−35.
- Talbott L.D., Pickard B.G. Differential changes in size distribution of xyloglucan in the cell walls of gravitropically responding Pisum sativum epicotyls // Plant Physiol. 1994. V.106. P.755−761.
- Taylor I.E.P., Atkins E.D.T. X-ray diffraction studies on the xyloglucan from tamarind Tamarindus indica seed//FEBS Lett. 1975. V.181. P.300−3002.
- Thain J. F., Gubb J.K., Wildon D.C. Depolarization of tomato leaf cells by oligogalacturonide elicitors // Plant Cell and Environment. 1995. V.18. P.211−214.
- Thomas J. R., Darvill A. G., Albersheim P. Isolation and structural characterization of the pectic polysaccaride rhamnogalcturonan-2 from walls of suspension cultured Rice cells // Carbohydr. Res. 1989. V.185. P.261−277.
- Thompson J.E., Fry S.C. Evidence for covalent linkage between xyloglucan and acidic pectins in suspension-cultired rose cells // Planta. 2000. V.211. P.275−286.
- Togami D., Poulsen В., Batalao C., Rolls W. Separation of carbohydrates and carbohydrate derivatives by HPLC with cation-exchange columns at high pH // BioTechniques. 1991. V.10. P.650−655.
- Tong C., Labavitch J., Yang S. The induction of ethylene production from pear cell culture by cell wall fragments // Plant Physiol. 1986. V.81. P. 929−930.149
- Tong C.B.S., Gross K.C. Glycpsyl-linkage composition of tomato fruit cell wall hemicellulosic fractions during ripening 11 Physiol. Plant. 1988. V.74. P.365−370.
- Tran Than Van K., Toubart P., Cousson A., Manipulation of the morphogenetic pathways of tobacco explants by oligosaccharins // Nature. 1985. V.314. P.615−617.
- Van Cutsem P. and Messiaem J. Pectins from immunochemical characterization to biological activity // Programme Abstracts Pectins and Pectinases. International symposium. The Netherlands. Wageningen. 1995. P. 7.
- Van’t Hof J. Studies on the relatinships between cell population and growth kinetics of root meristems // Exper. Cell Res. 1967. V.46. P.335.
- Vendrig J., Buffei K. Growth-stimulating activity of trans- caffeic acid isolated from Coleus rhenaltianus 11 Nature. 1961. V. l 92. P.276−277.
- Verma D.P.S., Maclachlan G.A., Byrne H., Ewings D. Regulation and in vitro translocation of messenger ribonucleic acid for cellulase from auxin treated pea epicotyls // J. of Biological Chemistry. 1975. V.250. P. 1019−1026.
- Vreeland V., Morse S.R., Robichaux R.H., Miller K.L., Hua S.-St., Laetsch W.M. Pectate distribution and esterification in Dubautia leaves and soybean nodules studied with a fluorescent hybridization probe // Planta. 1989. V. l77. P.435−446.
- Weigel U., Horn W., Hock B. Endogenous auxin levels in terminal stem cuttings of Chrisanthemum morifolium during adventitious rooting // Physiol. Plantar. 1984. V.61. P.422−428.150
- Weightman R.M., Renard C.M.G.C., Thibault J.F. Structure and properties of the polysaccharides from pea hulls. 1. Chemical extraction and fractionation of the polysaccharides // Carbohydr. Polym. 1994. V.24. P. 139−148.
- Wiesman Z., Lavee S. Enhancement of IBA stymulatory effect on rooting of olive cultivar stem cuttings // Sci-hort (Neth). 1995. V.62. P. 189−198.
- Woo H.H. Molecular analisis of phase variation in Hedera helix L.// Ph.D. Thesis Univ. of Minn. St. Paul. 1992.
- Woodward J. and Fincher J. Substrate specificities and kinetic proporties of two (l-«3), (l-«4) P — d — glucan endo — hydrolases from germinating larley Hordenm vulgare П Carbohydr. Res. 1982. V.106. P. 111−122.
- York W.S., Darvill A.G., Albersheim P. Inhibition of 2,4-dichlorophenoxyacetic acid-stimulated elongation of pea stem segments by a xyloglucan oligosaccharide // Plant Physiol. 1984. V.75. P.295−297.
- York W.S., Oates J.E., Van Halbeck H., Albersheim P, Tiller P.R., Dell A. Location of O-acetyl substituents on a nonasaccharide repeating unit of sycamore extracellular xyloglucan // Carbohydr. Res. 1988. V. l73. P. 113−132.
- Zablackis E., York W.S., Pauly M., Hantus S., Reiter W.D., Chappie C.C.S., Albersheim P., Darvill A. Substitution of L-fucose by L-galactose in cell walls of Arabidopsis mum /I Science. 1996. V.272. P. 1808−1810.151
- Zabotin A.I., Barisheva T.S., Zabotina O.A., Larskaya I.A., Lozovaya V.V., Beldman G., Voragen A. G J. Alterations in cell walls of winter roots during low temperature acclimation // J. Plant Physiol. 1998. V.152. P.473−479.