Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Разработка набора реагентов для определения уровня антител к респираторно-синцитиальному вирусу крупного рогатого скота в иммуноферментном анализе

Диссертация: Разработка набора реагентов для определения уровня антител к респираторно-синцитиальному вирусу крупного рогатого скота в иммуноферментном анализе
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Материалы диссертации изложены на 143 страницах машинописного текста и состоят из следующих разделов: введение, обзор литературы, материалы и методы, результаты собственных исследований, обсуждение результатов, выводы и практические предложения, список литературы, содержащий 72 отечественных и 151 зарубежный источник, и приложение. В приложении представлены документы, подтверждающие результаты… Читать ещё >

Содержание

  • 1. Введение
  • 2. Обзор литературы
    • 2. 1. Общая характеристика парамиксовирусов
    • 2. 2. Респираторно-синцитиальный вирус крупного рогатого скота
    • 2. 2. Историческая справка
      • 2. 2. 2. Распространение болезни, клинические признаки и патологоанатомические изменения
      • 2. 2. 3. Классификация, морфология и физико-химические свойства РС-вируса
      • 2. 2. 4. Репликация РС-вируса
      • 2. 2. 5. Антигенные свойства РС-вируса
      • 2. 2. 6. Спектр патогенности возбудителя п экспериментальных условиях
    • 2. 3. Культуральные свойства PC — вируса
      • 2. 3. 1. Культивирование PC — вируса в различных клеточных системах
      • 2. 3. 2. Условия и методы культивирования. Питательные среды, сыворотки, добавки
      • 2. 3. 3. Цитопатический эффект РС-вируса
      • 2. 3. 4. Гемагглютинация и гемадсорбция РС-вируса
    • 2. 4. Лабораторная диагностика PC — инфекции крупного рогатого скота
      • 2. 4. 1. Выделение PC — вируса и его идентификация
      • 2. 4. 2. Серологическая диагностика PC — инфекции крупного рогатого скота

Разработка набора реагентов для определения уровня антител к респираторно-синцитиальному вирусу крупного рогатого скота в иммуноферментном анализе (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

1.1.

Актуальность темы

.

Одним из движущих факторов развития экономики н шей страны является научно-технический прогресс, способствующий ускорению развития народного хозяйства путем интенсификации науки и производства, внедрения новых технологий. Процесс интенсификации охватывает и биологию в самом широком смысле слова.

Перевод животноводства на промышленную основу наряду с большими техническими и экономическими преимуществами имеет ряд недостатков, ткаких как, создание благоприятной ситуации для массового распространения инфекционных заболеваний. В их числе и так называемые «малые» респираторные вирусные инфекции крупного рогатсл) скота [5]. Они вызываются как самостоятельно, так и в различных сочетаниях вирусами парагриппа-3 (ПГ-3), инфекционного ринотрахеита (ИРТ), вирусной диареи (В Д), аденовирусами, респираторно-синцитиальным вирусом (РСВ), нанося огромный экономический ущерб животноводству. Эти заболевания представляют значительную проблему в ветеринарии еще и потому, что протекают со сходными клиническими симптомами. По этой причине особенно велика роль лабораторной диагностики вирусных болезней крупного рогатого скота.

Одним из этиологических агентов, вызывающих вспынки острых респираторных заболеваний у крупного рогатого скота, овец и коз различного возраста является респиргторно-синцитиальный вирус (РСВ), представитель семейства парамиксовирусов, рода пневмовирусов.

Респираторно-синцитиальная инфекция крупного рогатого скота контагиозная болезнь клинически проявляющаяся повышением температуры, снижением аппетита, затрудненным дыханием, одышкой, истечением из носа, сильным кашлем с последующим развитием бронхопневмоний и интерстициальных эмфизем.

PC — инфекция не вызывает большого отхода животных, но тяжелое и длительное течение с осложнениями приводит к потере продуктивности, вынужденному убою крупного рогатого скота, нанося тем самым значительный экономический ущерб животноводству.

Однако, в отличие от других вирусных респираторнь: < инфекций, распространение и наносимый экономический ущерб этим заболеванием остаются изученными недостаточно, что связано со сложностью выделения и культивирования РС-вируса.

Это в свою очередь затрудняет получение в достаточном количестве и с необходимой инфекционной активностью вирусного сырья для диагностических препаратов и средств специфической профилактики.

Первоначально в 1957 г. Ghanock R.M. et. al. [91] выделили PC-вирус человека и только в 1970 г. Paccaud М.Р. et. al. [172] был выделен РС-вирус крупного рогатого скота антигенно-родственный р^спираторно-синцитиальному вирусу человека.

В настоящее время PC — инфекция крупного рогатого скота зарегистрирована во многих странах мира: Бельгии, Японии, Англии, США, Нидерландах, Венгрии, Чехии Словакии, Болгарии, в том числе и с 1975 года в России (Халенев Г. А., Гуненков В. В.).

Необходимо отметить, что в России и за рубежом проводятся широкие исследования и получены положительные результаты по изучению и диагностике PC-инфекции человека. 35, 36, 45,48].

Но изучением PC-инфекции крупного рогатого скота и ее возбудителя занимаются мало, что подтверждается относительно немногочисленными данными зарубежной литературы.

В нашей стране имеется единственное опубликованное сообщение о выделении PC-вируса крупного рогатого скота Мартыновым Ю. В., Орловым.

М.И. [37]. Но авторам не удалось культивировать вирус. (ообщений о выявлении антител к PC-вирусу в сыворотках крови крупного рогатого скота на территории страны несколько больше. Об этом свидетельствуют данные Метревелли Г. Д. [40], Грязина В. Н. [19], Погуляевой А. В. и др. [25], Муравьева В. Н. и др. [17], Васильева А. В. и др. [52].

С 1977 г. биологической промышленностью выпускается набор сухих диагностикумов для диагностики PC-инфекции крупного рогатого скота, разработчиками которого являются Гуненков В. В., Халенев Г. А. Набор применяют для обнаружения вирусного антигена в патматериале методом иммунофлуоресценции (ИФ), выявления вируса и его иден ификации в реакциях ИФ, связывания комплемента (РСК) и диффузной преципитации (РДП), а также для выявления специфических антител в сыворотке крови больных и переболевших животных в РДП. Однако его применение было очень ограничено, из-за трудностей интерпретации полученных данных. Ранее этот диагностический набор сыграл большую роль в диагностике РС-инфекции крупного рогатого скота в нашей стране, его применение позволило установить наличие инфекции.

Несмотря на то, что ветеринарная практика имеет в своем распоряжении большой набор диагностических сывороток и диалюстикумов, увеличение номенклатуры, улучшение качества и стандартизация диагностических препаратов для практических лабораторий по-прежнему остается важной задачей.

При диагностике вирусных и бактериальных инфекций в ветеринарии все более широкое применение находят такие современные и высокоточные методы, как молекулярная гибридизация и полимеразная цепная реакция (ПЦР). Однако ввиду их высокой стоимости, сложности в постановке и необходимости дорогостоящего оборудования и реактивов, метод определения антигенов и антител с помощью иммунофермент doro анализа (ИФА) при оптимальном соотношении себестоимость-чувствительность остается действенным инструментом в ветеринарной лабораторной практике. Высокая разрешающая способность этого метода обусловлена, главным образом, природой лиганда, степенью очистки компонентов и чувствительностью приборов, регистрирующих наблюдаемый эпфект. Таким образом, очистка и концентрирование вирусов является решающим условием при изготовлении диагностикумов и получении высокоактивных иммунных сывороток, используемых при создании компонентов, необходимых для проведения иммуноферментного анализа.

Быстрый и точный диагноз PC-инфекции крупного рогатого скота является решающим условием организации необходимых мер борьбы с этим заболеванием.

1.2. Цели и задачи исследования. ч".

В связи с вышеизложенным, целью настоящей работы являлась разработка набора на основе аффинно-очищенных и концентрированных, антигенов PC-вируса КРС, штамм «Ranaall», для использования их в качестве компонента набора при определении уровня антител в крови больных, переболевших и вакцинированных животных в иммуноферментном анализе.

Решались следующие задачи:

1.2.1. Сравнить условия репродукции PC-вируса, штамм «Randall», в первично-трипсинизированной культуре клеток почки (ПЭК), легкого (ЛЭК), трахеи (ТЭК), сердца (СЭК) эмбриона коровы и г гревиваемых линий ПТ-80 и Тауэр;

1.2.2. Разработать метод получения счищенного и концентрированного антигена PC-вируса, штамм «Randall», репродуцированного в культуре клеток.

1.2.3. Выделить IgG КРС, получить анти-IgG КРС антисыворотки на кроликах, выделить анти-IgG КРС антитела и синтезировать анти-IgG КРС иммунопероксидазный коньюгат.

1.2.4. Выделить поверхностные белки PC-вируса, штамм «Randall», иммобилизовать их в качестве лиганда на BrCN Сефарозу.

1.2.5. На полученном сорбенте выделить специфические к антигенам РС-вируса антитела и иммобилизовать их в качестве лиганда на BrCN Сефарозу.

1.2.6. Разработать компоненты набора для определения уровня антител к РС-вирусу крупного рогатого скота в иммуноферментноъ анализе на основе аффинно-очищеных антигенов РС-вируса.

1.2.7. Исследовать воспроизводимость результатов по определению уровня антител к PC-вирусу КРС, полученных с использованием разработанного иммуноферментного набора;

1.2.8. Провести сравнительную оценку чувствительности и специфичности РН, РИГА, РСК и разработанного иммуноферментного Набора при определении уровня анти-РСВ антител в крови больного, переболевшего и вакцинированного крупного рогатого скота.

1.3. Научная новизна.

— В результате проведенной работы разработан одноэтапный метод получения очищенных и концентрированных антигенов РС-вируса, репродуцированного в культуре клеток, с помощью препаративной аффинной хроматографии на анти-РСВ IgG Сефарозе.

— При изучении в электрофорезе белков PC-вируса, штамм «Randall», которые отщепляются при обработке Тритоном Х-100, выявлено 9 структурных гликопротеинов с молекулярной массой от 28 до 180 кД.

— По результатам иммуноблотинга показано, что 6 белко: РС-вируса, которые отщепляются при обработке Тритоном Х-100, индуцируют выработку анти-РСВ антител в организме восприимчивых животных.

— разработана технология изготовления иммуноферментного набора для определения уровня антител к PC-вирусу крупного рогатого скота на основе аффинно-очищеных антигенов PC-вируса, штамм «Randall».

1.4. Практическая значимость работы.

Результаты проведенных исследований позволили разработать временную инструкцию по изготовлению набора реагентов для определения уровня антител к респираторно-синцитиальному вирусу крупного рогатого скота в иммуноферментном анализе и проект нормативной документации. Набор предназначается для индикации и количественного определения анти-РСВ антител в сыворотках крови КРС.

Внедрение в практику ветеринарии иммуноферментного набора для определения уровня антител к респираторно-синцитиальь эму вирусу позволит решить проблему массового эпизоотологического обследования поголовья КРС, составляющего основу мероприятий по ликвидации и предупреждению распространения данного заболевания.

1.5. Апробация работы.

Материалы исследований доложены и обсуждены на заседаниях Ученого совета ВНИТИБП (2002 — 2004 г.г.), на международной научно-практической конференции молодых ученых «Научные основы производства ветеринарных биологических биопрепаратов, Щелково (2004 г).

По материалам диссертации опубликовано 3 работы.

1.6.

Структура и объем диссертации

Материалы диссертации изложены на 143 страницах машинописного текста и состоят из следующих разделов: введение, обзор литературы, материалы и методы, результаты собственных исследований, обсуждение результатов, выводы и практические предложения, список литературы, содержащий 72 отечественных и 151 зарубежный источник, и приложение. В приложении представлены документы, подтверждающие результаты отдельных этапов работы, их научную и практическую ценность. Диссертация иллюст жрована 15 таблицами, 22 рисунками и 1 схемой.

2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

6. Выводы.

6.1. При репродукции PC-вируса в культурах клеток наибольшее накопление вируса (до 6,0 lg ТЦД50/мл) было достигнуто при использовании первично-трипсинизированной культуры клеток легкого эмбриона коровы.

6.2. Разработана схема очистки и концентрирования PC-вируса, штамм «Randall», репродуцированного в культуре клеток ЛЭК, позволяющая получить препараты вируса очищенные на 99,6% в расчете на инфекционную дозу.

6.3. При изучении состава белков PC-вируса, штамп" «Randall», репродуцированного в культуре клеток ЛЭК, полученных при обработке вируссодержащей суспензии Тритоном Х-100 выявлено 9 структурных белков с ММ от 28 до 180 кД. По результатам иммуноблотинга 6 белков с ММ от 42 до 180 кД индуцируют выработку анти-РСВ антител в организме восприимчивых к PC-инфекции животных.

6.4. Показана возможность одноэтапной препаративной очистки антигенов PC-вируса из вируссодержащих суспензий с помощью препаративной аффинной хроматографии на анти-РСВ IgG Сефарозе 4 В.

6.5. При определении разброса результатов полученных с исг эльзованием, разработанного Набора, установлено, что среди лунок кэффицент вариации не превышает 6%, между отдельными планшетами — менее 4%.

6.6. При сравнительной оценке специфичности и чувствительности, разработанного Набора, с РН и РНГА, установлено, что 41 образец сывороток был отрицателен во всех трех реакциях, 6 образцов сывороток имели в ИФА титр 1:200 и были отрицательными в РН и РТГА, 189 исследуемых сывороток были позитивными во всех трех реакциях. Следовательно, можно считать позитивными сыворотки, титр которых в ИФА равен или превышает 1:400.

6.7. Разработана технология изготовления набора для определения уровня антител к PC-вирусу крупного рогатого скота в иммуноферментном анализе на основе аффинно-очищеных антигеноч PC-вируса, штамм «Randall».

7. Практические предложения.

На основе проведенной работы представлена нормативная документация:

Временная инструкция по изготовлению и контролю Набора реагентов для определения уровня антител к респираторно-синцитиальному вирусу крупного рогатого скота в иммуноферментном анализе" на основе аффинно очищенных антигенов респираторно-синцитиального вируса, штамм «Randall»" утверждена директором ВНИТИБП.

Проект технических условий на «Набор реагентов для определения уровня антител к респираторно-синцитиальному вирусу крупного рогатого скота в иммуноферментном анализе»,.

Проект «Временного наставления по применению «Набора реагентов для определения уровня антител к респираторно-синцитиальному вирусу крупного рогатого скота в иммуноферментном анализе».

Показать весь текст

Список литературы

  1. А.с.№ 1 116 576 А 61 К 39/12. Способ получения сухого эритроцитарного диагностикума респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота.// Г. Д. Метревели, 1Я. Чистова,
  2. B.В. Гуненков, О. И. Шарабрин. СССР.- 3 414 875/30−15- Заяв. 29.04.80- Опубл. 31.03.82.
  3. Л.Н., Брайнингер М. Г. Методы получения стандартных диагностических сывороток к респираторно-синцитиальному вирусу // Лаб. дело.-1975.-№ 12. С.730−732.
  4. Л.Н., Брайнингер М. Г. О методах иммунизации пригодных для серийного приготовления диагностических сывороток к PC-вирусу. //Вопр. Этиологии, эпидемиологии, патогенеза и диагностики вирусных заболеваний: Сб./Свердловск, 1976. С.3−9.
  5. К.С. Распространение вирусов парагриппа-3 и респираторно-синцитиальной инфекции среди телят на откорме в осенне-зимний период. //Бюлл. ВИЭВ. -1983.- Вып.50. С. 6−8.
  6. Биология вирусов животных. Феннер Ф., Мак-Ослен Б., Мисис С. Сэмбрук Дж., Уайт Д.- Под ред. В. И. Агола.: Мир. 1977. Т.1. СЛ 61 336.
  7. Ю.Ф., Кириллов Л. В. Инфекционные болезни животных: Справочник- Под ред. Д. Ф. Осидзе.-М.: Агропромиздат, 1987. С.77−78.
  8. Н.М. Сравнительное изучение методов идентификации риновирусов и диагностики вирусных инфекций: Автореф. Дис. Канд. Мед. Наук. -М.: 1972. С. 23.
  9. Р., Текерлеков М., Хараламбиев Х. Е. Доказване на респираторно-синцитиальната вирусна инфекция по телятата через реакция за свырзване на комплемента. //Вет. Мед. Науки.- София. 1984. -XXI.- № 9. С.45−50.
  10. Р., Митов Б., Хараламбиев Х. Е. Иммунофлуоресцентное доказательство респираторно-синцитиальной вирусной инфекции у телят. //Вет. Мед. Науки. -София, 1985. -XXII. -№ 9. С.20−26.
  11. Р. Чувствительност на клетъчните культури към говяждия респираторно-синцитиален вирус. //Вет. Мед. Науки. — София, 1986. -XXII. -№ 2. С.12−18
  12. Р. Культивирование и диагностика респираторно-синцитиального вируса крупного рогатого скота: Автореф. Дис. Канд. Биол. Наук. -София, 1987. С.27
  13. А.Г. Вирусология. -М.: Медицина, 1986. С.271−274.
  14. Вирусология: Под. Ред. Б. Филдса, Д. Найпа. -М.: Мир, 1989. -Т.2. С.41−42. .
  15. Вирусология: Под. Ред. Б. Филдса, Д. Найпа. -М.: Мир, 1989. -Т.2. С.473−480.
  16. О.В., Елецкий Ю. К. Основы гистологии с гистологической техникой. —М.: Медицина, 1971.201−205.
  17. Г. Энзоотии респираторных заболеваний телят с признаками респираторно-синцитиального вируса //.XXI Всемирный вет. Конгресс.-М., 1979.-Т.З. С. 101.
  18. В.Н. Этиология респираторных заболеваний телят и меры специфической профилактики в условиях спецхоза. //Научно-технический бюллетень Всесоюзной академии с-х. Наук им. В. И. Ленина Сибирское отделение. —1982. -№ 11. С. 19−22У
  19. В.В., Халенев Г. А., Сюрин В. Н. Респираторно-синцитиальная вирусная инфекция. //Животноводство и ветеринария. -М., 1975.Т.№ 8. С.70−76.
  20. И.В., Хорьков И. А., Токарик Э. Ф. Методические рекомендации по разработке режимов замораживания- высушивания биологических препаратов. М., 1981. С.ЗЗ.
  21. Изоляция респираторно-синцитиальния вирус от телят с респираторни заболевания/Харапамбиев Х.Е., Бостанджиева Р., Георгиев Г. К., Митов Б. // Вет. мед. науки.-София, 1984.-ХХ1. № 2-С. 3−7.
  22. Испытание сухого эритроцитарного диагностикумаС-инфекции крупного рогатого скота/ Метревели Г. Д., Борисович Ю. Ф., Чистова З.Я.и др.//Сб. науч. тр. ВГНКИ ветпрепаратов.1983.-С.57−60.
  23. А. П. Матковский B.C. Справочник по инфекционным болезням.-3-е изд. перераб. и доп.-М.: Медицина, 1986-С. 85−87.
  24. Комплексная диагностика вирусных респираторных заболеваний крупного рогатого скота /Погуляева JI.B., Иванов П. А., Пунская Н. И., Мунирова В. Ф. //Инфекционные болезни с-х животных. -1984. С. 102 105.
  25. Культура ткани в вирусологических исследованиях. /Анджапаридзе О.Г., Гаврилов В. И., Семенов В. Ф., Степанова Л. Г. //М.: Гос.изд.медлитер., 1962. С.57−146.
  26. Культивирование клеток и тканей животных: Учебно-методическое пособие /Дьяконов Л.П., Глухов В. Ф., Поздняков А. А., Денисенко Г. Ф., Калмыкова Т. П. -Ставрополь, 1986. С. 96.
  27. Лабораторная диагностика респираторно-синцитиальной инфекции: Методические рекомендации /ЛещинскаяН.П., Покровская Е. П., Юрлова Т. И. и др.: Под ред. Я.С. Шварцмана- НИИ эпидемиологии, микробиологии и инфекц. болезней. -Алма-Ата, 1985. С. 43.
  28. Г. Ф. Биометрия. -М.: Высшая школа. 1980. С. 294.
  29. Л.И., Авилов С. В. О некоторых биологических свойствах респираторно-синцитиального вируса. //Актуальные вопросы вет. вирусологии- Тез. докл. 5-й Всесоюзн. Науч. Конф.-Казань, 1980. С.83−84.
  30. Н.П., Юрлова Т. И. Эпидемиология гриппа и других ОРЗ: СБ.науч. тр. /ВНИИ МЗ СССР.-Л., 1983. С. 148−177.
  31. Н.П. Молекулярнаная биология и генетика вирусов гриппа: Сб.науч.тр. /ВНИИ МЗ СССР.-Л., 1983. С. 13−22.
  32. Н.П. Вакцинация против респираторно-синцитиальной инфекции //Вопр.вирусол. -1986. Т.31. № 5. С.517−527.
  33. Н.П., Камферин Л. Е. Респираторно-синцитиальная вирусная инфекция //Медицина и здравоохранение: Сер. Эпидемиология, вирусология и инфекционные заболевания. -М., 1986. С. 77.
  34. О.А., Плетнева Е. А. Респираторно-синцитиальная вирусная инфекция //МРЖ, 1989., № 3. РЗ. С.50−54.
  35. О.А. Клинико-иммунологические показатели и лечение больных респираторно-синцитиальными вирусными заболеваниями: Автореф.дис.канд.мед.наук. -М., 1989. С. 24.
  36. Ю.В., Орлов М. И. Выделение РСВ от телят с респираторным синдромом //Патогенез, лечение и грофилактика болезней жвачных животных в Западной Сибири. -Оме*, 1985. С.22i 24.
  37. Методические указания по применению перевиваемых клеточных культур для диагностики вирусных заболеваний сельскохозяйственных животных. -Госагропром СССР. М., 1988. С. 12.
  38. Методы лабораторной диагностики вирусных болезней животных: Справочник /Сюрин В.Н., Белоусова Р. В., Соловьев Б. В., Фомина Н. В. -М.: Агропромиздат, 1986. С. 351.
  39. Г. Д. Реакция непрямой гемагглютинации (РНГА) в диагностике респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота. //Сб.науч.тр. ВГНКИ ветпрепаратов. -М, 1983. С.99−100.
  40. Г. Д. Биологические свойства вируса и серологическая диагностика PC-инфекции крупного рогатого скота: Автореф.дис.канд.биол.наук. -М., 1989. С. 19.
  41. Г. Д., ГуненковВ.В. Современная диагностика — залог успешной борьбы с PC-инфекцией крупного рогатого скота //Тез. докл. Всесоюзн. науч. конф. по проблемам эпизоотологии. -Казань, 1983. С. 94.
  42. М. Культивирование в суспензии эксплантантов легких эмбриона крупного рогатого скота вируса парагриппа-3 и его некоторые биологические свойства: Дис.канд.биол.наук. -М., 1986. С.38−39.
  43. Особенности клинического течения респираторно-синцитиального вирусного заболевания у взрослых /Лопаткина О.А., Крылов В. Ф.,
  44. JI.А., Вихнович Э. М., Бакулина З. Е., Полякова Т. Г. //М., 1989. Деп. во ВНИИ МН МЗ СССР 28.02.89., № 17 217. С. 10.
  45. Патологоанатомическая диагностика вирусных болезней животных: Справочное издание /Архипов Н.И., Чевелев С. Ф., Брагин Г. И., Зеленцов В. А., Дымин Г. П., Ерохина Л.М.- Под ред. Н. И. Архипова. -М: Колос, 1984. С.76−78.
  46. Показатели циркулирующего интерферона при различи «ix вирусных заболеваниях /Лаврухина Л.А., Ершов Ф. И., Крылов Ь. Ф., Князева Л. Д., Белостоцкая О. А., Лопатина О. А. //Вопр.вирусологии. 1989. -№ 2 .С.244−247.
  47. К. Пневмовирусы //Вирусология. Методы: Пер. с англ.- Под ред. Б. Мейхи. М.: Мир. 1988. С. 131−159.
  48. Н.В., Соболев А. Д. Основы вариационной статистики: методические указания для аспирантов зооветеринарных специальностей. —2-е издание.-М.: МСЗ СССР Моск. вет. академия., 1983. С. 21.
  49. Разработка метода получения высокоактивного респираторно-синцитиального вирусного диагногностикума для непрямой реакции гемагглютинации/Денер Л., Дрейзен Р. С., Янкевич О. П, Дикман У., Кемниц Ш/Вопр. Вирусологии-1976. № 6 -с.73 9−745.
  50. РНГА в серодиагностике респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота/ВасильевА.В., ОсидзеН.Г., СюринВ.Н., АкбаеваЛ.М., СтрогановаИ.Я., БариноваЛ.И.//Ветеринария. -1988.-№ 10.-стр.32−34.
  51. В.А. Репродукция и выращивание вирусов животных.М., Колос.1976.-стр.302.
  52. В.А., Орлянкин Б. Г. Структура и биология вирусов животных. М. Колос, 1983 .-стр.252−267.
  53. Т.Б. Выделение из клеток и изучение свойства вируса герпеса индеек: Автореф.дисс. канд. Биол. Наук. М., 1987 -19с.
  54. А.А., РумельН.В. Получение комплементсвязывающего антигена PC в суспензионных клеточных культурах //Сб.тр./ВНИИ гриппа.- 1976.-№ 17.стр.116−120.
  55. Т.А. Донская Н.И., КастрикинаЛ.Н., Агафонова J1.B., Бардина Е.Е./Состояние и перспективы специфической профилактики гриппа и других ОРЗ//Вопр. Вирусологии.-1987г.№-4. Стр. 393.
  56. И.Я., Акбаева JI.M. Чувствительность первичных культур клеток к респираторно-синцитиальну вирусу крупного рогатого скота//Проблемы биологии и патологии с-х животн мх: Сб.науч. трудов./Моск. Вет. академия. 1987 г. стр-96−98.
  57. В. Н. Фомина Н.В. Частная ветеринарная вирусология: Справочная книга.-М.:Колос, 1979 г. стр257−262.
  58. В.Н., Белоусова Р. В., Фомина Н. В. Ветеринарная вирусология.М.:Колос, 1984г- стр-61 -63.
  59. М.Г., Быков И. Н., Семенова Н. С. Повышение чувствительности реакции пассивной геммаглютинации с эритроцитарным диагностикумом респираторно-синцитиального вируса//Вопр. Вирусологии.- 1985 г.-№-2.стр236−239.
  60. Г. А., Гуненков В. В. Комплексная диагностика респираторно-синцитиальной инфекции молодняка крупного рогатого скота в двух хозяйствах.//Проблемы молекулярной биологии и патологии: Сб. науч. тр./Моск. Вет. академия.-1975г.Т.80.стр193−199.
  61. Г. А. Разработка методов производства диагностикумов и усовершенствование лабораторной диагностики вирусной диареи и респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота: Дис. Канд. Вет.наук. -М.- 1976 г. стр-270.
  62. Г. А., Гуненков В. В. Респираторно-синцитиальная, реовирусная и риновирусная инфекция крупного рогатого скота //Лекция15-я/ Моск.вет. академия.-1977г.-стрЗ-9.
  63. Т.И., ЗощенкоН.Я., КарповаЛ.С. Изучение естественной популяционной изменчивости респираторно-синцитиальных вирусов по их интерферирующим и репродуктивным свойствам. Ас1а virol 1985 г. № 29 стр.279−284.
  64. Sttot E.J., Thomas L.H., Taylor G., Collins A.P.Jebbett J., Crouch S. A comparion of three vaccines against respiratory syncytial virus in calves // J. Hyg-1984.V-93 .p251−261.
  65. Andrews A.H., Grunsell G.S.C., Hill F.W.G. Respiratory disease in calves//The veterinarry annual Isseu.-1983.-v.23.-p.48−55.
  66. Antibodies to respiratory syncytial virus polypeptides and their aignificfnct in human infection/Ward K.A., Lambden P.R., Ogilvie M.M., Watt P.J.//J. gen. Virol-1983. V.64.-pl867−1876.
  67. Armstrong J.A., Pereira H.G., Valentine R.C. Morfphelogy and development of respiratory syncytial virus in cell cultures//Nature.-1962.-vl96.-pl 179−1181.
  68. A sero-epidemiological survey of infections with the bovine respiratory syncytial virus in firetsea aon gracieng calves /PloegerH.W., Boon J.H., Klaassen C.H.L., Florent G. van//J.Vet.Med.-1986.-v.33,№ 4-p311−318.
  69. Association of the chimpanzee corysa agent with acute respiratory disease in children /Baem M., Wright F.H., Hamre D., Egerer R., Cehme M. //New Eng. J. Med. -1960. -v. 263. P.523−530.
  70. A survey of virus infections of the respirators tract of cattle and their assotiation with disease /Stott R.J., Thomas L.H., Collins A.P., Crouch S., Jebbett J., Smith G.S., Luther PX»., Casvell R. //J. Hyg. -1980.- v.83. P.257−270.
  71. Bachi Т., Howe C. Moфhogenesis and ultrastructure of respiratory syncytial virus. //J. Virol. -1973. -v. 12. P. 1173−1180.
  72. Baker J.C., Ames T.R., Markham R.J.F. Serologie studies of bovine respiratory syncytial virus in Minnesota cattle. //Am. J. veter. Res. -1985. — v.46, N 4. P891−892.
  73. Baldridge P., Senterfit L.B. Peraistent infection of cells in culture by respiratory syncytial virus //Proc.Soc. Exp. Biol. Med. -1976. —v. 151. — P.684−688.
  74. Bartha A., Benco M., Vetisi F. Bovin respiratory syncytial virusfertozottseg es kovetkezmenyei nagyuzemi szarvasmarhaallamanyckban //Magyar allatov. Lapja. -1986. -v.41. N 8. P.451−454.
  75. Bennatt C.R., Hamre D. Growth and serological characteristics of respiratory syncytial virus //J. inf. Dis. -1962. -v.l 10. P.8−16.
  76. Berthiaume L., Joncas J., Pavilanis V. Comparative structura, morphogenesis and biological characteristics of the respiratory syncytial (RS) virus and the pneumonia virus of mice //Arch. Ges. Virusforach. — 1974. -v.45. P.39−51.
  77. Bloth В., Norrby E. Fractionation of respiratory syncytial virus components by centrifugation techniques //Arch. Ges. Virusforsch. -1966. -v.19. P.385−392.
  78. Bovine Respiratory syncytial Virus: Host Range in Laboratory Animals and Cell Cultures /Matumoto M., Inaba Y., Kurogi H., Sate K., Omori Т., Goto Y., Hirose O. //Arch. Ges. Virusforsch. -1974. -v.44. P.260−290.
  79. Bovine respiratory syncytial virus. Studies on an cutbreak in Japan 19 681 969 /Inaba V., Tanaka V., Sato K., Omori Т., MatumoO M. //Jap. J. Microbiol.-1972. V.16. P.373−383.
  80. Brenner S., Horns R.W. A negative Staining Method for high Resolution Electron Microscopy of virusas //Biochim. Et Biophs. Acta. -1959. -v.34. P.103−110.
  81. Cash P., Pringle C.R., Preston C.M. The polypeptidas of human respiratory syncytial virus: products of ctll-free protein synthesis and post-translational modifications //Virology. -1979. -v.92. P.375−384.
  82. Chalal Y.D., Elashary Y. The pathogenesis of bovine reapiratory suncytial virus infection in lung organ cultures //Abstrs 79 th Annu.Mott. Amer. Soc. Microbiol. -Los Angeles calif., -1979.
  83. Chanock R.M., Pinberg L. Reccvary from infans with respin. tory illness of a virus related to chimpanzee coiysa agent (CCA)/II. Epidemiologic asptcta of infection in infants and young Children //amer. J. Hyg. -1957. -v. 66. P.291−300.
  84. Chanock R.M., Parrott R.H. Acute respiratory disease in infoncy and childhood: present understanding and prospects for prevention //Pediat.1965.-v.36. P.21−39.
  85. Chanock R.M., Rolzman E., Myers R. Recovery from .n fants with respiratory illnasa of a virus related to chimpanzee coryza agent (CCA). J. Isolation properties and characterisation //Ammer. J. Hyg. -1957. -v.66. P.281−290.
  86. Churchill A.E., Biggs P.M. Agent of Marek s disease in tissue culture //Nature (London). -1967. -v.215. P.528−530.
  87. Churchill A.E., Chubb R.C., Baxendale W. The attenuation With loss of oncogenicity of the gerpestype virus of Marek s disease (strain HPRS-16) on passage in cell culture //J. Gen. Virol. -1969. -v.4. P.557−564.
  88. CostesH.V., Forsyth B.R., Chanock R.M. Biophysical studiesof respiratory syncytial virus.I.Bensity of respiratory syncytial virusand associated complement-fixing antigens in a caesium chloride density gradient//J.Bact.1966.-v.91.-PI 263−1269.
  89. Collins P.L., Huang Y.T., Wertz C.W.Identification of a tenthin RNA of respiratory syncytial virus and assignmeht of polipeptidesto the 10 viral genes//J.Virol.-1984.v.49.-P.572−578.
  90. Comparison of a newly developed ensymelinked immunosorbent assay of bovine respiratory syncytial virus infections/Watenbriak P., Brinkhof J.M.A., Straver P.J., Quak J., De Leeuw P.W.,//Res.Vet.Sci.-1985.-v,№ 3.-P334−340.
  91. Cooney M.K., Fox J.P., Xall C.E. The Seattle virus watch.VI. Observations of infections with and illness due to parainfluenza, mumps and respiratory syncytial viruses and Mycoplasmapneumaniace//Am.J.Epid.-1975.-v. 101.-P532−551.
  92. Gutlip Paul A. Questions and ans were about serening testa//Disiena Jorn J. AIDS Patent Care.-1987.-v.l.№l-P25−27.
  93. GutlipR.S., Lehmkuhl H.D.Leslong in lambe experimentakly infected with bovine respiratory syncytial virus//AM.J.Vet.Res.-1979.-v.40.-P.1479−1482.
  94. De Jong J.C., Harmaen M. Stimulated growth of respiratory syncytial virus the presence of actinomicin D. Antcnie van Leeuwenhoek//J.Microbiol.Serel.-1973.-v.39.P409−413.
  95. Defection of. rinderpest antigen by latex agglutination test/Banaal R.P., Joshi R.S., Chandra U., Sharma ВУ/Acta virol.-1988.-v.32,№ 3.-P275−277.
  96. Diagnosis of bovine respiratory syncytial virusinfections b / complement fixation test/Takahashi, Inaba Y., Kurogi H., Sato K., Goto Y., Omori T.//Nat.Lust. Anim. Health Quart.-l 975.-V. 15,№ 4.-P 179.185.
  97. Diagnosis of bovine respiratory syncytial virus infections improved by virus detection i lung lavage samples/Kimman T.G., Limmer G.M., Straver P.J., De Leeuw P.W.//Am.J.Veter.Res.-1986.-v.47.№l.-P.143−147.
  98. Doggett J.E., Taylor-Robinson D., Gallop R.G.C. A study of an inhibitor in bovine serum active against respiratory syncytial virus //Arch. Ges. Virusforsch. -1968. -v.23. P. 126−137.
  99. Dubovi E.J., Geratz J.D., Tidwell R.R. Inhibition of respiratory syncytial virus by BIS (5-amidino-2-bensimidazolyl) methane //Virology. -1980. — v. 103. P.502−504.
  100. Dubovi E.J., Geratz J.D., Tidwell R.R. Enhancement jf respiratory syncytial virus induced cytopathology by trypsin, trombin and plasmin //Infect. Immun. -1983. -v.40. P.315−358.
  101. Ilashaiy M.A.S.Y., Silim A., Mciin M. A natural cutbresk of bovine respiratory disease causend bu bovine respiratory syncytial virus //Cornell Vet. -1982. -v.72. N 3. P.325−333.
  102. Electron microscopic evidence for bridges between bovine respiratory syncytial virus particles /Belanger F., Bethiaume L., Alain R., Lussier G., Trudel M. //J. Gen. Virol. -1988. -v.69. N 6.P.1421−1424.
  103. Electron microscopic studies of respiratory syncytial virus temperature — senaitive mutants /Kalica A.R., Wright P.F., Hetrick F.M., Chanock R.M. //Arch. Ges. Virusforsch. -1973. -v.41. P.248−258.
  104. Epidemiology of respiratory syncytial virus infection in Washington, D.C.I. Importance of the virus in different respiratory tract disease syndromes and temporal distribution of infection /Kim H.W., Arrobic J.O., Brandt C.D.,
  105. B.C., Pyles G., Reid J.L., Chanock R.M., Parrott R.H. //Amer. J. Epid. -1973. -v.98. P.216−225.
  106. Evalution of a new latex agglutination method for detection of antibody to herpes simplex virus /De Girolami P.C., Dokos J., Eichelberger K., Bieno S. //J. Clin. Vicrobiol. -1988. -v.26. N 5. P. 1024−1025.
  107. Experimental pneumonia in gnotobiotic calves produced by respiratory syncytial virus /Thomas L.H., Stott E.J., Collins A.P., Jebbett J. //Br. J. Exp. Path.-1984. -v.65. P. 19−28.
  108. Experimental respiratory syncytial virus infection of abults /Mills J., Van Kirk J.E., Wright P.F., Chanock R.M. //J.Immunol. -1971. -v.107. P.123−130.
  109. Experimental respiratory syncytial virus infection of fo ir species of primates /Belshe R.B., Richardson L.S., London W.T., Sly D.L., Lerfeld J.H., Camargo E., Prevar D.A., Chanok R.M. //J. Med. Virol. -1977. -v.l. P. 157−162.
  110. Ffernil B.F., Gerin J.L. The stabilization and purification of respiratory syncytial virus using MgS04 //Virology. -1980. -v. 106. P. 141−144.
  111. Ffernil B.F., Ford E.C., Gerin J.L. The developmant of BALB/c cells persistent ly infected with respiratory syncytial virus: Presence of ribonucleoprotein on the call surfoco //Prog. Soc. Exp. Biol. Med. -1981. — v. l67. P.83−86.
  112. Forsyth B.R. Identification of respiratory syncytial virus antigens by agar gel diffusion and immuncelectrophoresis //Prog. Sog. Exp. Biol. Med.-1970. -v.133. P.568−572.
  113. Forsyth B.R., Coates R.V., Chanock R.M. Biophysical studies of respiratory syncytial virus. //Identification of two soluble complement — fuxing antigens of respiratory syncytial virus //J. Bact. -1966. -v.91. P. 1270−1276.
  114. Cabathuler K. Respiratorisches syncytialvirus in der Riderpraxis //Schweiz. Areh. Tierheilk. -1983. -H 125. S.149−153.
  115. Gillete K.G., Smith P.C. respiratory syncytial virus infection in transported calves //Am. J. Veter. Res. -1985. -v.46. N 12. P.2596.
  116. Graham D., Estes M.K. Pretecfitic enhancament of rotavirus infectivity: biologie mechanisms //Virokogy. -1980. -v.lOl.N 2. P.432−439.
  117. Grist N.R., Ross C.A.C., Stett E.J. Influensa respiratory syncytial virus and pneumonia in Glasgow 1962−1965 //Br. Med. J. -1967. -v.l. P.456−457.
  118. Hall C.B., Douglas R.G. Modes of transmission of respiratory syncytial virus //J.Pediat. -1981. -v.99. P. 100−103.
  119. Hall C.B., Douglas R.G., Geiman J.M. Respiratory syncytial virus infections in infants- quantitation and duration of shedding //J. Pediat. — 1976.-v.89. PI 1−15.
  120. Hall С.В., Douglas R.G., Geiman J.M. Possible transmission by fomitos of respiratory syncytial virus //J. Inf. Dis. -1980. -v. 141. P.98−102.
  121. Hambling M.H. Survial of respiratory syncytial virus during storage under various conlitions //Brit. J. exp. Pat’i. -1964. -v.45. P.647−655.
  122. Haralambiev H.E., Bostandjieva R.M., Georgiev G.K. Cultivation of bovine respiratory syncytial virus jn cell line FLK and other cell cultures of sheep origin //Comptes rendus de 1 Academie bulgare des Sciences. -1982. -V.35.N11.P.1611−1613.
  123. Holzhauer C., van Nieuwstadt A.P. De etiologischi rol van het bovine respiratory syncytial virus bij pinkangriop. Tijdschr //Diergenecskd. —1976. -v.l01. P. 1023−1031.
  124. Huang Y.T., Wertz G.W. The genome of respiratory sync} tial virus is a negative stranded RNA that codes for at least seven mRNA species //J.Virol. -1982. -v.43. P.150−157.
  125. Ivvunovirological studies on human respiratory syncytial virus structural protein /Trudel M., Nadon F., Sequin C., Ghoubril S., Paument P., Trepanier P. //Can. J. Microbiol. -1986. -v.32. N 1. P. 15−17.
  126. Improvement of respiratory syncytial virus replication inactively growing Hep-2 cells /Pona Marcal W., Lambert A.L., Lambert D.M., Rochovansky O.M. //J. Virol. Meth, -1983. -v.7. N 4. P.217−221.
  127. Infection of gnotobiotic calves with a bovine and human isolate of respiratory syncytial virus. Modification of the response by dexametasone /Thomas L.H., Stott E.J., Collins A.P., Crouch S., Jebbett J. //Arch. Virol. -1984. -v.79. P.67−77.
  128. Infectivity of respiratory syncytial virus by various routes of inoculation /Hall C.B., Douglas R.G., Schnabel K.C., Geiman J.M. //Infect. Immun. -1981. -v.33. P.779−783.
  129. Ingh F.S.G.A.M., Verhoeff I., Niewatadt A.F.K.M.I. Clinical and pathological observat ons an spontanecus bovine respiratory syncytial virus infections in calves //Res. In veter. Sc. -1982. -v.33. N 2. P. 152−158.
  130. Inhibition of respiratory syncytial, parainfluenza 3 and measles viruses bu 2 Deoxy-D-glucose. /Hobes D.S., Schnitzel T.J., Kalica A.R., Canargo E., Chanock R.M. //Virology. -1975. -v.63. P.201−208.
  131. Inhibition of respiratory syncytial virus — host cell interactions by monoand diamedines /Dubovi E.J., Gerats J.D., Shaver S.R., Tidvell R. R: //Antimicrob. Ag. Chtmother. -1981. -v. 19. P.649−656.
  132. Initiation and maintenance of persistent Inhibition by respiratory syncytial virus /Pringle C.R., Shirodorla P.V., Cash P., Choawell D.J., Malloy P. //J. Virol. -1978. -v.28. P. 199−211.
  133. Isolation from turkeus of a cell-assotiated herpesvirus antigenically related to Marek’s disease virus /Witter R.L., Nazerian K., Purchase H.G., Burgoyne G.H. //Am. J. Vet. Res. -1970. -v.31. P.525−538.
  134. In vitro methods for assay of turcey herpesvirus /Calnek B.W., Carrido C., Okazaki W., Patrascu I.V. //Avian. Dis. 1972. -v. 16. P.25−56.
  135. Joncas J., Berthiame L., Pavilanis V. The structure of respiratory syncytial virus //Virology -1969. -v.38. P.493−496.
  136. Jordan W.S. Growth characteristics of respiratory syncytial, virus //J. Immunol. -1962. -v.88. P.581−590.
  137. Kisch Q.L., Johnson K.M. A plaque assouy for respiratory syncytial virus //Prac. Soc. Exp.Biol. Med. -1963. -v.l 12. N 3. P.583−589.
  138. Koves В., Bartha A. Isolation of respiratory syncytial (RS) virus from coffle diseased with respiratory symptoms //Acta Vet. Acad. Sci hund. — 1975 (1976). v.25. N 4. P.357−362.
  139. Koves В., Bartha A. Respiratory syncytial (RS) virus isolatosa legzoszer vi tunetekkel meg betegibitt szarvasmarhakbol //Magy. Ellatorv. Lapja. — 1976. -v.31. N.2.P.99−102.
  140. Lambert D.M., Pons M.W. Respiratory syncytial virus glicoproteins //Virology. -1983. -v.130. P.204−214.
  141. Lehmkuhl H.D., Cough P.M., Reed D.E. Characterization and identification of a bovine respiratory syncytial virus isolated from Young Calves //Am. J. veter. Res. -1979. -v.40. N. 1 P. 124−126.
  142. Lehmkuhl H.D., Cutlip R.C. Ecsperimentally induced respiratory syncytial virus infection in lambe // Am. J. veter. Res. -1979. -v.40. P.512−514.
  143. Lehmkuhl H.D., Smith M.N., Cutlip R.C. Morphogenesis ai. d structure of caprine respiratory syncytial virus //Arch. Virol. —1980. -v.65. P.269−276.
  144. Levine S. Polypeptides of respiratory syncytial virus //J. virol. —1977. — v.21. P.427−431.
  145. Levine S., Buthala D., Hamilton R. Late stage synchronisation of respiratory syncytial virus replication //Virology. -1971. -v.45. P.390−400.
  146. Levine S., Hamilton R. Kinetica of respiratory syncytial virus growth cycle in HeLa cells //Arch. Ges. Virusforsch.-1969. -v.28. P.122-l.'-2.
  147. Levine S., Peebles M., Hamilton R. Effect of respiratory syncytial virus infection HeLa on cells macromolecular synthesis //J. Gen. Virol. -1977. — v.37. P 53−63.
  148. Linggi Т., Wyler R. Das bovine respirstorische synzytiabvirus als Erreger van Respirationstrakterkrankungen des epidemiologiche Untersuchung in der Schweis //Schweiz. Arch. Teirheilk. -1985. -Bd.127. H.10. S.651−659.
  149. Martin H.T. Indirect haemagglutination test for the detection and assay of antibody to bovine respiratory syncytial virus //Vet.Rec. -1983. -v.l 13. N. 3. P.290−293.
  150. Matthews R.E.F. Classification and nomenclature of viruses //Intervirology. -1982. -v. 17. P. l 04−105.
  151. Menulty M.S., Bruson D.G., Allan G.V. Ecsperimental respiratory syncytial virus pneumonia in young calves: Microbiologic and immunofluorescent findings //Am. J Vet. Res. -1983. -v.44. P.1656−1659.
  152. Mohanty S.B., Ingling A.L., Lillie M.G. Experimentally indyced respiratory syncytial viral infection in calves. //Am. J. Vet. Res. -1975. — v.36. N. 4. P.417−419.
  153. Monoclonal antibodies protect against respiratory syncytial virus infection in mice /Taulor G., Stott E.G., Bev M., Fernie B.F., Cote F.J., Collins A.P., Hughes M., Jebbett J. Immunol. -1984. -v.52. P.137−142.
  154. Morris J.A., Blount R.E., Savage R.E. Recovery of cytopathic agent from chimpanzees with coryza //Prog. Soc. Exp. Biol. Med. 1956. -v.92. P.544−549.
  155. Moyr A. Virus krankenheiten der Kelber //Reportasand Summaris. Repparts et resumes Referate und Zusammenfassungen. -1980. P.233−260.166,167.168.169 170,171.172,173 174 175 176 177 179 688 960
  156. Van Nieuwstadt A.P., Verhoeff J. Serology for diagnosis and epizootological studies of bovine respiratory syncytial virus infections //Research in Veterinary Science.-1983. -v.35. P.153−159.
  157. Norrby E., Enders-Ruchle G., Ter-Moulen V. Differences on the appearance of antibodies to structural components of measles virus after immunization with inactivated and live virus //Inf. Dis. -1975. —v.132. P.262−269.
  158. Nosocomial respiratory syncytial virus infections /Hall C.B., Douglas R.G., Geiman J.M., Messner M.K. //New. Eng. J. Med. -1975. -v.239. P.1343−1346.
  159. Nucleic acids of respiratory sync) tial virus /Lambert D.M., Pons M.W., Mbuy G.N., Dorach-Hasler K. //J. Virol. -1980. -v.36. P.837−846.
  160. Nunez A., Caatell S. Defecctien de anticuerpos contra el virus syncytial respiratoric bovine por seroneitralizacion //Rev. Salnd anim. -1987. -v.9. N 3. P.266−267.
  161. Odegard O.A., Krogerud J. A field outbreak by bovine respiratory syncytial virus//Acta vet. Scand.- 1977,-v. 18.-P429−431.
  162. Paccaud M.F., Jacquier A. A respiratory syncytial virus of bovine oxigin//Arch.des. Virusforch.-1970.-V.-30.-P327−342.
  163. Paramyxoviridae /Kingabury D.W., Bratt M.A., Choppin P.W., HansonR.P., Hosaka Y., ter Meulen V., NorrbiJ E., Plowright W., Rott R., Wunner W.H.//Intervirology.-197 8.-v. 10.-P 137−152.
  164. Parry J.E., Shirodaria P.V., Pringle C.R. Pneumoviruses: the cell surfoce of lytically and persistently infected ceIle//J.Gen.Virol.-1979.-v.44.-P479−491.
  165. Peacoch D., Clarke S.K.R. Respiratory syncytial virus in Britain//Laneet.-1961.-V.2.-P466.
  166. Peebles M., Levine S. Metobolic reguirements for the maturation of respiratory syncytial virus//J.gen.Virol.l980.-v.50.-P81−88.1. Netu.
  167. Pirie H.M., Petrie L., Pringle C.R. Acute fetal pneumonia in calves due to respiratory syncytial virus //Vet. Rec -1981. -v.108. P.411−416.
  168. Physicochemical proporties of bovine respiratory syncytial virus /Inaba Y., Tanaka Y., Cmori Т., Matumoto M. //Jap. J. Microbiol. -1973. -v. 17. P.211−216.
  169. Porter D.D., Mysk K.B., Prince G.A. The age dependence of respiratory syncytial virus growth in ferret lung can be shown in organ and monolayer cultures //Clin. Immund. Immunopath. -1980. -v.15. N 3. P.415−423.
  170. Pospisil L., Mensik J., Valicek L. Isolation and identification of a Bovine Respiratory syncytial virus in Czechoslovakia //Acta. Vet. Brno. -1978. — v.47. P.79−86.
  171. Potgieter L.N.D., Aldrida P.L. Use of the indirect fluorescent antebudy test in the detection of bovine respiratory syncytial virus antibodies in Bovine serum. //Amer. J. Vet. Res. -1977. -v.38. N 9. P.1341−1343.
  172. Prince G.A., Porter D.D. The pathogenesis of respiratory syncytial virus infection in infant ferrete //Am. J. Pathol. -1976. -v.82. P.339−350.
  173. Pringle C.R., Parry J.E. Location and quantitation of antigen of the surface of virus-infected cells by specific bacterial adherence and senbing electron microscopy //J. Viral. Meth. -1980. -v.l. P.61−75.
  174. Propagation of bovine respiratory syncytial virus in calftesticle microcarrier culture /Charlier G., Wellwmans G., Lale A., Strobbe R. //Arch. Exp. Veterinarmed. -1984. -v.38. N 6. P.894−899.
  175. Properties of a respiratory syncytial virus isolated from a sheep with rhinitis /Wermann J.F., Liggitt H.D., Parish S.M., Word A.C.S., Lea Master B.R. //J. Vet. Res. -1985. -v.46. N 4.
  176. Reed L.J., Muench H.A. A simple method of astimating 50 percent endpoints //Am. J. Hyg. -1938. -v.27. P.493−497.
  177. Reichstelner J. Thermal inactivation of respiratory syncytial virus in water and hypertonic solutions //J. gen. Virol. -1969. -v.5. P.397−403.
  178. Respiratory syncytial virus antibodies in non-human primates and domestic animals /Richardson-Wyatt L.S., Belshe R.B., London W.T., Sly D.L., Camargo E., Chanok R.M. //Lab. Anim. Sci. -1981. -v, 31. P.314−415.
  179. Respiratory syncytial virus. IV. Corelation of virus shedding, serologic response and illness in adult volunteers /Johnsom K.M., Chanok R.M. Rifhind D., Kravetz H.M., Knight V. //J. Amer. Med. Ass. -1961. -v.176. P.663−667.
  180. Respiratory syncytial virus. In: Evans A.S. (ed) /Chanock R.M., Kim H.W., Brandt C., Parrott R.H. //Viral infections of Humans. Epidemiology and Control: Plenum. -1976. P.365−382.
  181. Respiratory syncytial virus infections and its serologic epidemiology /Suto Т., Yano N., Ikeda M., Takai S., Jhigeta S., Himema Y., Ishida N.//Am. J. Epidem. -1965. -v.82. P.211 -224.
  182. Respiratory syncytial virus infections in indred mice /Prince G.A., Horswcod R.L., Beradt J., Suffin S.C., Chanock R.M. //Infect. Immun. -1979. -v.26. P.764−766.
  183. Respiratory syncytial virus infections in mice /Taylor G., Stott E., Hughes N., Collins A.P. //Infect. Immun. -1984. -v.43. P.649−655.
  184. Respiratory syncytial virus pneumonia in Friesian calves: physiological findings /Lekeuk P., Verhoeff J., Hajer R., Breukink H.J. /, Res. In veter. Sc.-1985.-v.39.N3.
  185. Respiratory syncytial virus pneumonia in young calves: Clinical and pathologic findings /Bryson D.G., NcNulty M.S., Logan E.F., Cush P.F. //Am. J. Vet. Res. 1983. -v.44. N 9. P. 1648−1655.
  186. Respiratory syncytial vims III. Production of illness and clinical jbservations in adult volunteers /Kravetz H.M., Knight V., Chanock R.M., Norris J.A., Johonson K.M., Rifkind D., Utz J.P. //Amer. Med. Ass. -1961. -v. 176. P.657−663.
  187. Respiratory syncytial virus ts mutants and nuclear immunofluorescence //J. Virol. -1976. -V.20. N 2. P.487−500.
  188. Respiratory syncytial virus vaccine, Merck and Ca. Inr. Пат.46 727. Ирландил.заявк. 19.4.78. N768/78. Опублик. 7.9.83. № 61к 39/12, С 127/08.
  189. Richman A.V., Tauraso N.M. Growth of respiratory syncytial virus in suspension cell culture //Appl. Microbiol. -1971. -v.22. P. 1123−1125.
  190. Rossi C.R., Kiasel G.K. Serological evidence for the associationof bovine respiratory syncytial virus with respiratory tract disease in Alabama cattle //Infect. Immun. -1974. -v. 10. P.293−298.
  191. Rossi C.R., Kiesel G.K. Bovine respiratory syncytial virus infection of bovine embryonic lung cultures: a kinetic study by the fluorescent antidodi techique //Amer. J. Vet. Res. -1977. -v.38. N 11. P. 1901 -1904.
  192. Rossi C.R., Kiesel G.K. Bovine respiratory syncytial viruj infection of bovine embryonic lung cultures: enhancement of infectiviey with diethylaminoethyl-dextran and virus-infected cells //Arch. Virol. -1978. — v.58. N 3. P.227−236.
  193. Schirrmier M. Zur morphologischen und immunhistologischen Diagnostik wirusbedingter respiratorischer Erkrankungen der Kelber //Mh. Vet.-Med. -1980. H 35. S.35−39.
  194. Senterfit L.B., Baldridge P.B. Separation and concentration of respiratory syncytial virus (RSV) antigens //J. Immunol. Meth. -1974. -v.4. P.349−357.
  195. Serological evidence of respiratory syncytial virus infection in sheep /Berthiaume L., Joncas J., Boulay G., Pavilanis V. //Vet. Rec. -1973. -v.93. P.337−338.
  196. Shahrabadi M.S., Lee Patrick W.K.Calcium reguirement for syncitium formation in Hep-2gells by respiratory syncytial virus//J.Clin. Microbiol.-1988.-v.26.№ 1 .P139−141.
  197. Smith M.H., Frey M.L.JDierks R.B.Isolation and characterisation of a bovine syncytial virus//Vet.Rec.-1974.-v.-94.-P599.
  198. Storch G.A., Reed C.A., Dalu L.A. Evaluation ofa latex agglutination test for herpes simplexvirus//J.Clin.Microbiol.-1988.v.-26.№ 4.-P'87−788.
  199. Structure of bovine respiratory syncytial virus/Ito Y., Tanaka Y., Inaba Y., Omori T.//Arch.ges.Virusforsch.-l973.-v40.-P 198−204.
  200. Stott E.J., Taylor G. Respiratory syncytial virus//Arch.Virol.-1985.-v.84.-Pl-52.
  201. The characterisation and uses of monoclonal to respiratory syncytial virus/ Stott E.J.JBew M.H. Taylor G., Jebbett J., Collins A.P.//Develop.Biol.Standart.-1984.
  202. The detection of respiratory syncytial virus in nasopharyngeal aspirates: assesament formulation, and eveluation of monoclonal antibodies as a diagnostic reagent/Freke A., Stott E.J., Roome A.P., Caul E.O.//J.Med. Virol.-1986,-v. 18,№ 2 .-P181 -191.
  203. The development of monoclonal antibodies to respiratory syncytial virus and their ugein liagnosis immunofluoreacence/Routledge E.G., Mcquillin J., Smason A.C.R., Toms G.L.//J. Med. Virol.-1985.-vl5.№ 3.-P305−320.
  204. The growth of respiratory syncytial virusin organ cultures of bovine foetal trachea/Thomas L.H., Stoff H.J., Jebbett J., Hemiltot S.//Arch.Virol.-1976.-v.-52.-P251−258.
  205. The pathogenesis of respiratory syncytial virus infection in cotton rats/Prince G.A., Jenson A.B., Horawood R.L., Camargo E., Chanock R.M.//Am.J.Pathol.-1978.v.93.-P771−784.
  206. TlorentG., DeMarneffe C., Boiler E. Bovines respiratorisches syncytial virus (BRSV) in der Sciwei: Eline serologische stutie//Schwauz.I.h.Tiasfeuk.-l 985 .-v. 10.-P 127.
  207. Trepanier P., Payment P., Trudel M. Concentration of human respiratory syncytial virus sulphatepolysthylene glycol or hollow firbe ultrafiltration//J.Virol.Meth.-1981 .-V.3.-P201 -211.
  208. Treuhaft M.W. A colorimetric assay for quanti fication of defective interfering particles of respiratory syncytial virus//J.gen. Virol.-1983.-V.64.P1301−1309.
  209. Trauhaft M.W., Beern M. O., Defective interfering Particles of respiratory syncytial virus infect //Immun.-1982.-v.37.P 439−444.
  210. Ueba O. Purification and polipeptides of respiratory syncytial virus//Microbiol.Immunol.-1980.-V.24-P.3 61 -364.
  211. Bovine respiratory syncytial virus infectioon in young dairycattle: clinical and haematologicalfindinys/verhoeff J., Van der VanM., Nieuwstadt A.P.K.M.I.//V et.Rec.-1984. v. 114, N: 1 .P9−12.
  212. Virus Gross-infection in paediatric wards/Gardner P. S., GourtS.D.M., Brocklebank J.T., Downham M.A.R.S., Weightman D.//Br. Med.J.-1973.v.2.-P571−575.
  213. Vires isolations from throans of children admitted to hospital with respiratory and other diseses, menchester, 1962−1964/Holzel A., Parker L., Patterson W.H., Cartmel D., White L.L.R., Purdy R., Thompson K.M., Tobin J.O.H.//Br.Med. J. 1965. v. 1 .P614−619.
  214. Welsh E.E., Hruska J. Monoclonal antibodies to respiratory: yncytial virus proteins: Identification of the fusion protein// J.Virol.-1983.v.47.P171−177.
  215. Waleh E.E., Schlesinger J.J., Brandriss M.W. Purification and characterisation of GP90, one of the en velope dlycjproteins of respiratory syncytial virus//J.gen.virol.-1984.v65 .P761 -767.
  216. Wellemans G., van Opdenboach E. Vaccination des bovins contre le respiratory syncytial virus (RSB) au moyen d’une souchs attenuee //Ann. Med. Vet.-1978.-v. 122. P.537−543.
  217. Winner W.H., Faulkner C.P., Pringle C.R. Respiratory syncytial virus some biological and biochemical properties. -New York: Academie Press. — 1975. P. 193−201.
  218. Winner W.H., Pringle C.R. Respiratory syncytial virus proteins //Virology. -1976.-v.73. P.228−243.
  219. Yrlova T.J., Zoshchenkova N.Ya., Karpova L.S. Natural variability of respiratory syncytial viruses, their interverance and reproduction characteristics //Acta Virol. -1985. -v.29. N 4. P.279−284.
  220. Zacstilskaya L.Ya., Almeida J.D., Bradstreet C.M.P. The morphological characterisation of respiratory syncytial virus by a simple electron microscope technique //Acta. Virol -1967. -v.l 1. P.420−423.
  221. Zrein N., Obert G., Regonortal M.H. van. Use of agg-yalk antibody for detection of respiratory syncytial virus in nase secretions by ELISA //Arch. Viro. -1986. -v.90. N3. P. 197−206.
  222. Zugraic N. Vaccination against RS virus: a five yaar experience with Rispoval //Proceedings of XII World Congresse on Diseases of Cattle. -1982. P.189−195.
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?