Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Психротолерантные актиномицеты в наземных экосистемах различных климатических зон

Диссертация: Психротолерантные актиномицеты в наземных экосистемах различных климатических зон
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Численность психротолерантных актиномицетов составляет в почвах и растительных субстратах тысячи и сотни тысяч КОЕ/г субстрата, достигая наиболее высоких значений в местообитаниях с высоким содержанием органического вещества и постоянно низкой температурой. Количество психротолерантных актиномицетов достоверно снижается в почвах южных климатических зон по сравнению с северными. Доля… Читать ещё >

Содержание

  • Глава 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Понятие о психрофильных и психротолерантных микроорганизмах
    • 1. 2. Физиолого-биохимические механизмы адаптации микроорганизмов к низким температурам
    • 1. 3. Распространение психрофильных актиномицетов в природных экосистемах
    • 1. 4. Микробные комплексы почв северных территорий
    • 1. 5. Прогнозы изменений активности микробных сообществ и углеродного баланса северных почв в условиях глобального потепления
  • Глава 2. Объекты и методы
    • 2. 1. Объекты исследования
    • 2. 2. Методы исследования
  • Глава 3. Результаты исследования
    • 3. 1. Численность и таксономическая структура психротолерантных и мезофильных актиномицетных комплексов в почвах разных климатических зон
    • 3. 2. Численность и таксономическая структура психротолерантных актиномицетных комплексов в исследованных растительных субстратах экосистем различных климатических зон
    • 3. 3. Динамика длины мицелия психротолерантных актиномицетов в ходе сукцессии, инициированной увлажнением почв, контрастных по температурным режимам

    3.4. Исследование прокариотных микробных сообществ почв и растительных субстратов методом гибридизации in situ с помощью 16S rRNA специфичных олигонуклеотидных зондов, определяющих представителей филогенетической группы Actinobacteria.

    3.5. Исследование таксономической структуры психротолерантного прокариотного микробного сообщества криозема палево-метаморфизированого.

    3.6. Зависимость радиальной скорости роста колоний актиномицетов, выделенных из почв и растительных субстратов наземных экосистем разных климатических зон.

    3.7. Экофизиологические свойства психротолерантных актиномицетов, выделенных из почв разных климатических зон.

    Глава 4. Обсуждение результатов.

    Выводы.

Психротолерантные актиномицеты в наземных экосистемах различных климатических зон (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность темы

.

Исследование закономерностей действия температурного фактора на активность жизнедеятельности микробных популяций является актуальной современной задачей. Адаптации к температуре влияют на интенсивность микробного дыхания, в ходе которого выделяется двуокись углерода, являющаяся одним из «парниковых газов». Изменение концентрации этих газов приводит к общему изменению климата. Поэтому актуальна проблема зависимости от температуры функциональной активности микроорганизмов, в частности активности мицелиальных актинобактерий — актиномицетов (Звягинцев и др., 2011).

Традиционно считалось, что актиномицеты с трудом адаптируются к низким температурам, и среди них очень мало представителей, способных жить в холодных местах обитания. В последнее время в литературе появились работы, посвященные выделению психротолерантных мицелиальных актинобактерий из холодных мест обитания (Xu, Jiang, 1996). Существуют лишь разрозненные сведения об обнаружении психротолерантных актиномицетов в почвах (Wang et al., 2004). Так отмечалось, что в почвенных образцах, собранных в альпийских луговых экосистемах, обнаружены психротолерантные актиномицеты, принадлежащие к родам Streptomyces, Micromonospora, Nocardia, Promicromonospora. Исследование ферментативной активности выделенных штаммов показало, что стрептомицеты более активны по сравнению с представителями других родов (Xu, Jiang, 1996). Авторы показали, что в условиях холодного климата в Китае среди почвенных актиномицетов преобладают представители рода Streptomyces. Среди психротолерантных актиномицетов, выделенных из лесных и луговых почв юго-восточного Тибета, обнаружены представители рода Actinosynnema (Не et al., 2004). Однако до сих пор остается невыясненным вопрос о том, насколько значимо участие психротолерантных актиномицетов в процессах формирования микробных комплексов наземных экосистем разных климатических зон, и каков потенциал продукции биологически активных веществ почвенными психротолерантными актиномицетами.

Цель работы.

Определение закономерностей распространения и функционирования психротолерантных актиномицетов в наземных экосистемах различных климатических зон.

Задачи исследования:

1. Определение численности психротолерантных и мезофильных актиномицетов в почвах и растительных субстратах наземных экосистем разных почвенно-климатических зон.

2. Исследование динамики роста мицелия психротолерантных актиномицетов в почве.

3. Определение доли метаболически активных психротолерантных представителей филума Actinobacteria от метаболитически активных психротолерантных представителей домена Bacteria в прокариотных микробных сообществах почв и растительных субстратов наземных экосистем.

4. Экофизиологическая характеристика культур психротолерантных актиномицетов, выделенных из экосистем различных климатических зон.

5. Определение температурного диапазона и диапазона влажности роста выделенных культур психротолерантных актиномицетов.

Научная новизна.

Впервые установлено, что в северных почвах с низкими температурами, не превышающими 10 °C даже в поверхностных слоях в летнее время года, психротолерантные актиномицеты активно растут и развиваются, образуют мицелий и составляют неотъемлемую часть гидролитического микробного блока, принимающего участие в деградации растительных остатков.

Численность психротолерантных актиномицетов составляет в почвах и растительных субстратах тысячи и сотни тысяч КОЕ/г субстрата, достигая наиболее высоких значений в местообитаниях с высоким содержанием органического вещества и постоянно низкой температурой. Количество психротолерантных актиномицетов достоверно снижается в почвах южных климатических зон по сравнению с северными. Доля психротолерантных метаболитически активных представителей филума Actinobacteria составляет от 4 до 33% от психротолерантных метаболитически активных представителей домена Bacteria, в прокариотных микробных сообществах почв и растительных субстратов изученных наземных экосистем. Биомасса психротолерантных метаболитически активных мицелиальных актинобактерий, как правило, превышает биомассу психротолерантных метаболитически активных одноклеточных актинобактерий. Исследование экофизиологических свойств почвенных психротолерантных актиномицетов показало, что при уменьшении температуры культивирования от 20 °C до 5 °C повышается содержание ненасыщенных жирных кислот в липидах клеточных мембран стрептомицетов. Экониши психротолерантных и мезофильных актиномицетов различаются не только по фактору температуры, но и по спектру потребляемых субстратов. Экспериментально показано, что психротолерантный актиномицет Streptomyces griseus Н.5.6 FR837628 является ксеротолерантным.

Практическая значимость.

Исследования актиномицетов, адаптированных к существованию в холодных почвах, позволяют не только расширить пределы наших представлений об экологических нишах, занимаемых мицелиальными актинобактериями, но и выявить среди холодостойких видов продуценты новых биологически активных веществ. Знание закономерностей распространения и функционирования психротолерантных актиномицетов в экосистемах различных климатических зон будет способствовать созданию схем управления микробными популяциями в исследованных районах.

Материалы исследований могут быть использованы в лекционных курсах по биологии почв и экологии актиномицетов.

Апробация работы.

Основные положения работы доложены на международных конференциях студентов, аспирантов и молодых ученых «Ломоносов» (20 092 013), Всероссийском симпозиуме с международным участием «Современные проблемы физиологии, экологии и биотехнологии микроорганизмов — 2009» и на VI Всероссийском съезде Общества почвоведов им. В. В. Докучаева — 2013.

Публикации.

По результатам работы опубликовано 16 печатных работ, из них 7 статей в реферируемых журналах, входящих в список журналов, рекомендуемых ВАК Минобрнауки РФ для опубликования результатов диссертационных работ.

Автор выражает глубокую признательность и благодарность заведующему кафедры биологии почв факультета почвоведения, член-корр. РАН, проф., д.б.н. И. Ю. Чернову, своему научному руководителю профессору, д.б.н. Г. М. Зеновой, сотрудникам кафедры биологии почв факультета почвоведения МГУ, особенно профессору, д.б.н. Д. Г. Звягинцеву, д.б.н. П. А. Кожевину, д.б.н. H.A. Манучаровой, к.б.н. Т. А. Грачевой, к.б.н. A.B. Якушеву. Благодарю аспирантов факультета почвоведения МГУ Е. П. Макарову и М. Н. Маслова за предоставление образцов почв для исследования.

Выводы.

1. Исследование широкого спектра почв и растительных субстратов экосистем разных климатических зон дало возможность показать, что численность психротолерантных актиномицетов составляет в почвах и растительных субстратах разных климатических зон от тысяч до сотен тысяч КОЕ/г субстрата, достоверно снижается в почвах южных климатических зон по сравнению с северными и достигает значительных величин в местообитаниях с высоким содержанием органического вещества и постоянно низкой температурой.

2. В опыте с микрокосмами в ходе сукцессии, инициированной увлажнением и инкубированием почвы при разных температурах, показано, что мезофильные и психротолерантные актиномицеты в почвах растут, развиваются, образуют мицелий, который увеличивается в длину.

3. Впервые показано, что доля психротолерантных метаболически активных представителей филума Actinobacteria составляет от 4 до 33% от биомассы метаболически активных представителей домена Bacteria в прокариотных микробных сообществах почв и растительных субстратов. Биомасса мицелиальных психротолерантных метаболически активных актинобактерий, как правило, превышает биомассу одноклеточных актинобактерий. Исключение составляет криозем палево-метаморфизированный, образцы которого отобраны на территории архипелага Земли Франца-Иосифа, где доминируют психротолерантные метаболически активные одноклеточные актинобактерии.

4. Исследование некоторых экофизиологических свойств психротолерантных актиномицетов позволило экспериментально показать, что при уменьшении температуры культивирования от 20 °C до 5 °C повышается содержание ненасыщенных жирных кислот в липидах клеточных мембран стрептомицетов.

С использованием метода МРТ впервые показано, что экониши психротолерантных и мезофильных актиномицетов различаются не только по фактору температуры, но и по спектру потребляемых субстратов. Экспериментально показано, что психротолерантный Streptomyces griseus H.5.6.FR837632, выделенный из промерзающей почвы, проявляет ксеротолерантность.

Показать весь текст

Список литературы

  1. С.С., Филиппова С. Н., Кузнецов В Д. Nocardiopsis antarcticus -новый вид актиномицета, выделенный из толщи ледника Центральной Антарктики // Изв. АН СССР. Сер. биол. 1983. № 4. С. 559−569
  2. JI.B. Адаптация организмов к условиям Крайнего Севера. Тезисы докладов Всесоюзного совещания, Таллин, 27−30 ноября, 1984. Таллин, 1984. 13−14
  3. Ю.Ю., Васильева Л. В., Полякова A.B., Дедыш С. Н., Заварзин Г. А. Экология и биоразнообразие микробных сообществ природных и техногенных регионов и пути их решения// Материалы Международной конференции. Апатиты, 2004.С.7−8
  4. Л.Г. О некоторых географических закономерностях формирования подстилок в лесных экосистемах // География и природные ресурсы. № 4. 1990. С. 91−98.
  5. В.Д. Почвообразование в тундрах Средней Сибири. М.: Наука. 1980. С. 53−57
  6. Е.П. Некоторые свойства лесных и огородных почв Большого Соловецкого острова. Дипломная работа. М., МГУ. 2010
  7. Г. Ф., Преображенская Т. П., Свешникова М. А., Терехова Л. П., Максимова Т. С. Определитель актиномицетов. М., «Наука». 1983. С. 244
  8. A.B., Тихонова Е. Ю., Звягинцев Д. Г. Численность, биомасса, структура, и активность микробных комплексов низинных и верховых торфяников // Микробиология. 2007. Том 76. № 5. С. 711−719
  9. М.В., Кожевин П. А. Мультисубстратное тестирование природных микробных сообществ // М.: МАКС Пресс, 2005. 88 с.
  10. C.B., Семиколенных A.A. Почвенный покров Пинежского заповедника // Структура и динамика природных компонентов Пинежского заповедника (северная тайга ЕТР, Архангельская область).
  11. Биоразнообразие и георазнообразие в карстовых областях. Архангельск, 2000. С. 56−6711 .Димо В. Н. Тепловой режим почв СССР. М.: Космос. 1972. 360 с
  12. Г. В., Урусевская И. С., Розов H.H. Карта почвенно-географического районирования СССР для высших учебных заведений. М 1:8 ООО ООО. М.: ГУГК, 1983.
  13. Е.В. Молекулярные аспекты адаптации прокариот. СПб: Изд-во С.-Петербургского университета. 2007.
  14. Г. А. Лекции по природоведческой микробиологии. М.: Наука. 2003.
  15. Г. А., Кудеяров В. Н. Почва как главный источник углекислоты и резервуар органического углерода на территории России // Вестник РАН. 2006. № 76(1). С. 14−29.
  16. Д.Г., Зенова Г. М., Судницын И. И., Дорошенко Е. А. Способность почвенных актиномицетов развиваться при экстремально низкой влажности // Доклады Академии Наук. 2005. Т. 405. № 5. С. 702−704
  17. Г. М., Звягинцев Д. Г. Экологический статус актиномицетов рода Micromonospora II Почвоведение. 1997. № 3. С. 376−383
  18. Г. М., Грядунова A.A., Дорошенко Е. А., Лихачева Т. Н., Початкова Т. Н., Судницын H.H., Звягинцев Д. Г. Влияние влажности на жизнедеятельность актиномицетов в низинной торфяной почве // Почвоведенье. 2007. № 5. С. 616−621
  19. Г. М., Дуброва М. С., Звягинцев Д. Г. Структурно-функциональные особенности комплексов почвенных психротолерантных актиномицетов // Почвоведение. 2010. Т. 43. № 4. С. 482−487
  20. Г. М., Лысенко A.M., Манучарова H.A., Курапова А. И., Дуброва М. С. Таксономическая и функциональная структура психротолерантных и термотолерантных комплексов почвенных актиномицетов // Теоретическая и прикладная экология. 2008. № 3. С. 66−72
  21. Л.В., Агре Н. С. Развитие актиномицетов. М.: Наука. 1977. 286 с103
  22. Классификация и диагностика почв России. М.: Ойкумена. 2004. 314 с.
  23. Н.Г., Поздняков А. И., Мусекаев Д. А., Позднякова JI.A. Торф, торфяные почвы, удобрения. М.: Изд-во ВНИИМЗ. 1998. 239 с.
  24. П.А. Микробные популяции в природе. М.: Изд-во МГУ. 1989. 170 с.
  25. И. С., Белова С. Э., Кевбрин В. В., Дедыш С. Н., Заварзин Г. А. Анализ бактериального сообщества, развивающегося при разложении сфагнума // Микробиология М. 2007. Том 76. № 5. С. 702−710
  26. О. С. Структура бактериальных сообществ криогенных почв Ямала. Дипломная работа. М., МГУ. 2007. С. 56
  27. JI.B., Добровольская Т. Г., Скворцова И. Н. Методы оценки бактериального разнообразия почв и идентификации почвенных бактерий. М.: Изд-во Московского Университета. 2003. С. 130
  28. H.A. Молекулярно-биологические аспекты исследований в экологии и микробиологии. М.: Изд-во «Университет и школа». 2010. 47 с.
  29. С.А., Панкратов Т. А., Горленко М. В., Кожевин П. А. Мультисубстратное тестирование природных микробных сообществ в почве // Вестник Моск. Ун-та. Сер. 17. Почвоведение. 2005. № 2. С. 44−48
  30. М.Н., Макаров М. И. Органическое вещество почв горной тундры северной Фенноскандии // Вестник Моск. Ун-та. Сер. 17. Почвоведение. 2013. № 3. С. 3−7
  31. Методы почвенной микробиологии и биохимии. Под ред. Д. Г. Звягинцева. МГУ. 1991
  32. Определитель бактерий Берджи. Под ред. Дж. Хоулта, Н. Крига, П. Снита, Дж. Стейли, С. Уилимса. Москва. Мир. 1997
  33. Т.А., Белова С. Э., Дедыш С. Н. Оценка филогенетического разнообразия прокариотных микроорганизмов в сфагновых болотах с использованием метода FISH // Микробиология. 2005. Т.74. № 6. С. 831−837
  34. Т.А., Дедыш С. Н., Заварзин Г. А. Ведущая роль Actinobacteria в процессах аэробной деструкции целлюлозы в сфагновых болотах // Докл. РАН. 2006. Т. 410. С. 546−567
  35. О.М. Микрофлора почв подзоны арктических тундр Таймыра // Почвоведение. 1984. № 9. С. 61−69
  36. О.М. Микрофлора тундровых почв. Ленинград: Наука. 1989. 159 с.
  37. Я.М., Головченко A.B., Звягинцев Д. Г. Микробная биомасса в почвах // Доклады Академии Наук. 1995. Т. 344. № 6. С. 846−848
  38. И.Н. Почвенные процессы в торфяных окультуренных почвах. М.: Изд. Академии наук СССР. 1961. 228 с.
  39. Современная микробиология. Прокариоты. Под ред. Й. Ленгера, Г. Древса и Г. Шлегеля. М.: Мир. 2005. Т1. С. 258
  40. А.Л., Лысак Л. В. Методы газовой хроматографии в почвенной микробиологии. М.: МАКС Пресс, 2002. 86 с.
  41. A.B. Структура, состояние и динамика почвенно-растительного покрова Чугского заказника и его трансформация в результате антропогенной деятельности. Дипломная работа. М., МГУ. 2010. 70 с.
  42. Andersson A.M., Mweiss N., Rainog F., Salking a Salonen M.S. Dust borm bacteria in animal sheds, shools and children’s day care centres // J. Appl. Microb. 1999. V. 86. № 4. P. 622−634.
  43. Amann R.I., Krunholz L., Stahl D.A. Fluorescent-oligonucleotide probing of whole cells for determinative, phylogenetic and environmental studies in microbiology // J. Bacterid., 1990. V. 172. P. 762−770.
  44. Amann R.I., Ludwig W., Schleifer K.-H. Phylogenetic identification and in situ detection of individual microbial cells without cultivation // Microbiol. Rev. 1995. V. 59. P. 143−169.
  45. Bouwman A.F. Exchange of greenhouse gases between terrestrial ecosystems and the atmosphere // Soils and the greenhouse effect. John Wiley and Sons Ltd. Chichester. 1990.
  46. Cao Y., Jiang Y., Xu L. Diversity and bioactivity ananlysis of actinomycetes isolated from grand Shangri-la soil I I Wei Sheng Wu Xue Bao. 2009. 49 № 1. 105−109
  47. Clocksin K.M., Jung D.O., Madigan M.T. Cold-active chemoorganotrophic bacteria from permanently ice-covered lake Hoare, McMurdo dry Valleys, Antarctica // Applied and Environmental Microbiology. 2007. P. 3077−3083
  48. DAmico S., Collins T., Marx J.-C. et al. Psycrophilic microorganism: challenges for life // EMBO reports. 2006. Vol. 7. P. 385−389
  49. Davidson E.A., Janssens I.A. Temperature sensitivity of soil carbon decomposition and feedbacks to climate change // Nature. 2006. № 440. P. 165 173
  50. Deming J. W. Psychrophiles and polar regions // Curr. Opin. Microbiol. 2002. Vol. 5. P. 301−309
  51. Dorrepaal E., Toet S., Logtestijn R.S.P., Swart E., van de Weg M.J., Callaghan T.V., Aerts R. Carbon respiration from subsurface peat accelerated by climate warming in the subarctic // Nature. 2009. № 460. P. 616−620
  52. Edwards U., Rogall T., Bloeker H., Ende M.D., Boeettge E.C. Isolation and direct complete nucleotide determination of entire genes, characterization of gene coding for 16S ribosomal RNA // Nucl. Acids Res. 1989. Vol. 17. P. 78 437 853
  53. Ermolenko D.N., Makhatadze G.I. Bacterial cold-shock proteins // Cell Mol. Life Sc. 2002. Vol. 59. P. 293−1913
  54. Fang, C. Smith P., Smith J.U. Is resistant soil organic matter more sensitive to temperature then the labile organic matter? // Biogeosci. Discuss. 2005. № 2. P. 725−735
  55. Fang, C., Smith, P., Moncrieff, J. B., Smith, J. U. Similar response of labile and resistant soil organic matter pools to changes in temperature // Nature. 2005. № 433. P. 57−59
  56. Feller G., Gerday C. Psychrophilic enzymes: hot topics in cold adaptation// Nat.
  57. Rev. Microbiol. 2003. Vol. 1. P. 200−208
  58. Gershenson A., Bader N.E., Cheng W. Effects of substrate availability on the temperature sensitivity of soil organic matter decomposition // Global Change Biology. 2009. № 15. P. 176−183
  59. Gesheva V. Distribution of psychrophilic microorganisms in soils of Terra Nova ^ Bay and Edmonson Point, Victoria Land and their biosynthetic capabilities //
  60. Polar Biol. 2009. Vol. 32. P. 1287−1291
  61. Gonzales I., Ayuso-Sacido A., Anderson A., Genilloud O. Actinomycetes isolated from lichens: Evaluation of their diversity and detection of biosynthetic gene sequences // FEMS Microbiology Ecology. 2005. Vol. 54. P. 401−415
  62. Gounot A.-M. Psychrophilic and psychrotrophic microorganisms//Experientia. 1986. V 42(1−12). P 1192−1197
  63. Gow IA., Mills F. l Pragmatic criteria to distinguish psychrophiles and psychrotrophs in ecological systems // Appl. and Environmental Microbiology. 1984. NQ1. Vol. 47. P.213−215
  64. Graumann P., Marahiel M.A. Some like it cold: response of microorganisms to cold shok // Arch. Microbiol. 1996. Vol. 166. P. 293−300
  65. Groenigen K.J., Osenberg C. W., Hungate B.A. Increased soil emissions of potent greenhouse gases under increased atmospheric CO2 11 Nature. 2011. № 475. P. 214−218
  66. Groth I., Saiz-Jimenez C. Actinomycetes in Hypogean Environments // Geomicrobiology Journal. 1999. № 16. P. 1−8
  67. Hakvag S., Fjervik E., Josefsen K.D., Ian E., Ellingsen T.E., Zotchev S.B. Characterization of Streptomyces spp. isolated from the sea surface microlayer in the Trondheim Fjord, Norway// Mar Drugs. 2008. Vol. 6(4). P. 620−635
  68. He J.Q., Wu Y. F., Zhang G. J. Activity and ecological distribution of actinomyces from soil in the southeastern of Tibet // Wei Sheng Wu Xue Bao. 2006. Vol. 46(5). P. 773−780
  69. Helmke E., Weyland H. Psychrophilic versus psychrotolerant bacteria -occurrence and significance in polar and temperate marine habitats // Cell. Mol. Biol. 2004. Vol. 50. P. 553−561
  70. A. Holland E.A., Neff J.C., Townsend A.R., McKeown B. Uncertainties in the temperature sensitivity of decomposition in tropical and subtropical ecosystems: Implications for models // Glob. Biogeochem. Cycles. 2000. № 14. P. 1137−1151
  71. Jiang C., Xu L. Actinomycete diversity in unusual habitats // Actinomycetes. 1993. Vol. 4(2). P. 47−54
  72. Jiang C.L., Xu L.H. Diversity of aquatic Actinomycetes in lakes of in Middle platen, Yunnan, China // Appl. Environ. Microbiol. 1996. Vol. 62. Yss. 1. P. 249−253
  73. Jin X., Xu L. H, Mao P.H., Hseu T.H., Jiang C.L. Description of Saccharomonospora xijiangenesis sp. nov. based on chemical and molecular classification//Intern. J. Syst. Bacterial. 1998. Vol. 48. P. 1095−1099
  74. Knorr W., Prentice I.C., House J.I., Holland E.A. Long-term sensitivity of soil carbon turnover to warming // Nature. 2005. № 433. P. 298−301
  75. Li W-J, Zhang L-P., Xu P., CuiX-L., Lu Z-T., Xu L-H., Jiang C-L. Streptomyces beijiangensis sp. nov., a psychrotolerant actinomycete isolated from soil in China // I.J. of systematic and evolutionary microbiology. 2002. Vol. 52. P. 1695−1699
  76. Lipson D.A., Schmidt S.K. Seasonal changes in an Alpine soil bacterial community in the Colorado Rocky // Mountainsl I Appl. and Environ. Microbiol. 2004. Vol. 70(5). P. 2867−2879
  77. Luo Y., Wan S., Hui D., Wallace L.L. Acclimatization of soil respiration to warming in a tall grass prairie // Nature. 2001. № 622. P. 622−625
  78. Lonhienne T., Gerday C., Feller G. Psychrophilic enzymes: revisting the thermodynamic parameters of activation may explain local flexibility // Biochim. Biophys. Acta. 2000. Vol. 1543. P. 1−10
  79. Mannisto M.K., Hagblom MM Characterization of psychrotolerant heterotrophic bacteria from Finnish Lapland // J. Syst. Appl. Microbiol. 2006. Vol. 29(3). P. 229−272
  80. Meier H., Amann R., Ludwig W., Schleifer K.-H. Specific oligonucleotide probes for in situ detection of a major group of gram-positive bacteria with low DNA G+C content // Syst. Appl. Microbiol. 1999. Vol. 22. P. 186−196
  81. Melillo J.M., Steudler P.A., Aber J.D., Newkirk K., Lux H" Bowles F.P., Catricala C., Magill A., Ahrens T., Morrisseaul S. Soil warming and carbon-cycle feedbacks to the climate system // Science. 2002. № 298. P. 2173−2175
  82. Mevs U., Stackebrant E., Sc human P., Galliowski C. A., Hirsch P.
  83. Modestobacter multisepatus gen. nov., sp. novoo, a budding actinomycete from soil of the Asgard Range (Transantarctic Mountains) // I Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2000. Vol. 50. Pt 1. P. 337−373
  84. Morita R. Y. Psychrophilic bacteria // Bacteriol. Rev. 1975. Vol. 39. P. 144−167
  85. Moyer C.L., Morita R.Y. Psychrophiles and psychrotrophs // Encyclopedia of life sciecnes. 2007. John Wiley & Sons. Ltd. www.els.net
  86. Neef A., Amann R., Schlesner H., Schleifer K.-H. Monitoring a widespread bacterial group: in situ detection of Planctomycetes with 16S rRNA-targeted probes // Microbiology. 1998. Vol. 144. P. 3257−3266
  87. Pascal Drouin, Danielle Prevost, Hani Antoun Physiological adaptation to low temperatures of strains of Rhizobium leguminosarum bv. viciae associated with Lathyrus spp. IIFEMS Microbiology Ecology. 2000. Vol. 32(2). P. 111−120
  88. Phadtare S., Alsina J., Inouye M. Cold-shock response and cold-shock proteins // Current opinion in microbiology. 1999. Vol. 2(2). P. 175−180
  89. Prabahar V. Pseudonacardia antarctica sp. novo an Actinomycetes from McMurdo Dry Valleys//Antarctical Syst. Appl. Microbiol. 2004. Vol. 27. P. 66−71
  90. Priscu J. C., Adams E. E., Lions W. B., Voytek M. A., Mogk D. W, Brown R. L., McKay C. D., Welch K A., Wolf C. F., Kirshtein J. D., Avci R. Geomicrobiology of subglacial ice above Lake Vostok // Antarcticall Science. 2000. Vol. 286. P. 2141−2144
  91. Ravenschlag K, Sahm K, Amann R. Quantitative molecular analysis of the microbial community in marine arctic sediments (Svalbard) // Appl. Environ. Microbiol. 2001. № 67. P. 387−395
  92. Roller C., Wagner M., Amann R., Ludwig W, Schleifer K-H. In situ probing of Gram-positive bacteria with high DNA G+C content using 23 S rRNA targeted oligonucleotides // Microbiology. 1994. Vol. 140. P. 2849−2858
  93. Roth N.H., Wheaton R.B. Continuity of psychrophilic and mesophilic growth characteristics in the genius Arthrobacter // J. Bacteriology. 1962. Vol. 83 P. 551−555
  94. Rothschild L.J., Manchinetti R.Z. Life in extreme environments // Nature. 2001. Vol.409. P. 1092−1104
  95. Russel N.J. Molecular fdaptations in psychrophilic Bacteria: Potential for biotechnological applications // Advances Biochemical Engineering. 1998. Vol. 6. P. 84−93
  96. Russel N.J. Toward a molecular understanding of cold activity of enzymes from psychrophiles // Extremophiles. 2000. Vol. 4. P. 83−90
  97. Selbmann L., Zucconi L., Ruisi S., Grube M., Cardinale M., Onofri S. Culturable bacteria associated with Antarctic lichens: affiliation and psychrotolerance // Polar Biol. 2010. Vol. 33. P. 71−83
  98. Sheridan P.P., Loveland-Curtze J., Miteva V.l., Brenchley J.E. Rhodoglobus vestalii gen. nov., sp. nov., a novel psychrophilic organism isolated from an Antarctic Dry Valley lake // Inter. J. System. Evol. Microbiol. 2003. Vol. 53. P. 985−994
  99. Shindell D.T., Walter B.P., Faluvegi G. Impacts of climate change on methane ^ emissions from wetlands // Geophysical research letters. 2004. Vol. 31. L21202
  100. Shmidt S.K., Lipson D.A. Microbial growth under the snow: Implications for nutrient and allelochemical availability in temperate soils // Plant And Soil. 2004. Vol. 259 (1−2). P. 1−7
  101. Smalas A.O., Leiros H.K., Os V., Willassen N.P. Cold adapted enzymes// Biotechnol. Annu. Rev. 2000. Vol. 6. PI-57
  102. Sullivan L.A., Weightman A.J., Fry J.C. New degenerate Cytophaga
  103. Flexibacter-Bacteroides-sipecific 16S ribosomal DNA-targeted oligonucleotide112probes reveal high bacterial diversity in river taff epilithon// Appl. Environ. Microbiol, 2001. V. 68. P. 201−210
  104. Thieringer H.A., Jones P.G., Inouye M. Cold shock and adaptation // Bioessays. 1998. Vol. 20. P. 49−57
  105. Wang Q.L., Cao G.M., Jiang W.B., Zhang Y.S. Stady on actinomyces population of alpine meadow soil in Qinghai // Wei Sheng Wu Xue Bao. 2004. № 44(6). P. 733−736
  106. Williams S.T., Lanning S., Wellington E.M.H. Evcology of actynomyces // The Biology of the Actinomycetes. M. Goodfellar, M. Mordarski, S.T. Williams (eds) Academik Press. London 1986. P. 481−528
  107. Williams S.T., Vickers T.C. Actinomycetes in environment / Biology of Actynomycetes, Okami Y. et al. (eds). Tokyo. 1988. P. 265−270
  108. Wintrode P.L., Arnold F.H. Temperature adaptation of enzymes: lessons from laboratory evolution // Adv. Protein Chem. 2000. Vol. 55. P. 161−225
  109. Wouters J.A., Rombouts F.M., Kuipers O P. de Vos W.M., Abee T. The role of cold-shok proteins in low-temperature adaptation of food-related bacteria// System. Appl. Microbiol. 2000. Vol. 23. P. 165−173
  110. Xu L., Li Q., Jiang C. Diversity of Soil Actinomyces in Yunnan// Chinal I Appl. Environ. Microiol. 1996. V. 62(1). P. 244−248
  111. Рис. 1. Почвенный разрез криозема № 1−10 а) общий план разреза б) трещина.
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?