ΠŸΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒ Π² ΡƒΡ‡Ρ‘Π±Π΅, ΠΎΡ‡Π΅Π½ΡŒ быстро...
Π Π°Π±ΠΎΡ‚Π°Π΅ΠΌ вмСстС Π΄ΠΎ ΠΏΠΎΠ±Π΅Π΄Ρ‹

Π‘ΠΎΠ²Π΅Ρ€ΡˆΠ΅Π½ΡΡ‚Π²ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ элСктрофорСтичСского ΠΈ хроматографичСского опрСдСлСния Π²ΠΎΠ΄ΠΎ-ΠΈ Тирорастворимых Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ²

Π”ΠΈΡΡΠ΅Ρ€Ρ‚Π°Ρ†ΠΈΡΠŸΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒ Π² Π½Π°ΠΏΠΈΡΠ°Π½ΠΈΠΈΠ£Π·Π½Π°Ρ‚ΡŒ ΡΡ‚ΠΎΠΈΠΌΠΎΡΡ‚ΡŒΠΌΠΎΠ΅ΠΉ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹

УстановлСно, Ρ‡Ρ‚ΠΎ Π½Π°Π»ΠΈΡ‡ΠΈΠ΅ ΠΌΠΈΡ†Π΅Π»Π» Π΄ΠΎΠ΄Π΅Ρ†ΠΈΠ»ΡΡƒΠ»ΡŒΡ„Π°Ρ‚Π° натрия Π² ΡΠΎΡΡ‚Π°Π²Π΅ Π±ΡƒΡ„Π΅Ρ€Π½ΠΎΠ³ΠΎ элСктролита ΠΈΠ»ΠΈ ΠΏΠΎΠ΄Π²ΠΈΠΆΠ½ΠΎΠΉ являСтся Π΄ΠΎΠΌΠΈΠ½ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠΌ Ρ„Π°ΠΊΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠΌ, ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»ΡΡŽΡ‰ΠΈΠΌ ΡΠ΅Π»Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ элСктрофорСтичСского ΠΈ Ρ…роматографичСского раздСлСния водорастворимых Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² Π² Ρ€Π΅ΠΆΠΈΠΌΠ°Ρ… мицСллярной элСктрокинСтичСской Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΈ (МЭКΠ₯), высокоэффСктивной Тидкостной Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΈ (ОЀ Π’Π­Π–Π₯) ΠΈ Π²Ρ‹ΡΠΎΠΊΠΎΡΡ„Ρ„Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΠΉ тонкослойной… Π§ΠΈΡ‚Π°Ρ‚ΡŒ Π΅Ρ‰Ρ‘ >

Π‘ΠΎΠ΄Π΅Ρ€ΠΆΠ°Π½ΠΈΠ΅

  • ГЛАВА 1. ΠžΠ‘Π—ΠžΠ  Π›Π˜Π’Π•Π ΠΠ’Π£Π ΠΠ«Π₯ ДАННЫΠ₯
    • 1. 1. ΠžΠ±Ρ‰Π°Ρ характСристика Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ²
    • 1. 2. ΠœΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Ρ‹ опрСдСлСния Π²ΠΎΠ΄ΠΎ- ΠΈ ΠΆΠΈΡ€ΠΎΡ€Π°ΡΡ‚Π²ΠΎΡ€ΠΈΠΌΡ‹Ρ… Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ²
      • 1. 2. 1. ГазохроматографичСскоС ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ²
      • 1. 2. 2. ИспользованиС высокоэффСктивной Тидкостной Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΈ (Π’Π­Π–Π₯) ΠΏΡ€ΠΈ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠΈ Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ²
        • 1. 2. 2. 1. Π’Π­Π–Π₯ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ Тирорастворимых Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ²
        • 1. 2. 2. 2. Π’Π­Π–Π₯ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ водорастворимых Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ²
      • 1. 2. 3. ΠžΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ высокоэффСктивной тонкослойной Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΈ (Π’Π­Π’Π‘Π₯)
        • 1. 2. 3. 1. ΠœΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Ρ‹ дСтСктирования Π² Π²Ρ‹ΡΠΎΠΊΠΎΡΡ„Ρ„Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΠΉ тонкослойной Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΈ (Π’Π­Π’Π‘Π₯)
        • 1. 2. 3. 2. Π˜Π½ΡΡ‚Ρ€ΡƒΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ΅ ΠΎΡ„ΠΎΡ€ΠΌΠ»Π΅Π½ΠΈΠ΅ количСствСнного Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ·Π° Π² Π’Π­Π’Π‘Π₯
        • 1. 2. 3. 3. ΠŸΠ°Ρ€Π°ΠΌΠ΅Ρ‚Ρ€Ρ‹ удСрТивания Π² Π’Π‘Π₯, ΡΡ„Ρ„Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡŠ ΠΈ ΡΠ΅Π»Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ раздСлСния
        • 1. 2. 3. 4. ΠœΠΈΡ†Π΅Π»Π»ΡΡ€Π½Π°Ρ тонкослойная хроматография (МВБΠ₯)
        • 1. 2. 3. 5. ΠžΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ Тирорастворимых Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ тонкослойной Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΈ
        • 1. 2. 3. 6. ΠžΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ водорастворимых Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ тонкослойной Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΈ
        • 1. 2. 3. 7. ЭлСктроосмотичСская тонкослойная хроматография (ЭОВБΠ₯)
      • 1. 2. 4. ΠžΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² элСктрофорСтичСскими ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Π°ΠΌΠΈ
        • 1. 2. 4. 1. Бпособы концСнтрирования ΠΏΡ€ΠΈ Π²Π²ΠΎΠ΄Π΅ ΠΏΡ€ΠΎΠ± («ΡΡ‚экинг», «ΡΠ²ΠΈΠΏΠΈΠ½Π³») Π² ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Π°Ρ… капиллярного элСктрофорСза
        • 1. 2. 4. 2. Π­Ρ„Ρ„Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ, Ρ€Π°Π·Ρ€Π΅ΡˆΠ΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΈ ΡΠ΅Π»Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ раздСлСния Π² ΠœΠ­ΠšΠ₯
      • 1. 2. 5. ΠšΠ°ΠΏΠΈΠ»Π»ΡΡ€Π½Π°Ρ элСктрохроматография
    • 1. 3. ΠŸΡ€ΠΎΠ±ΠΎΠΏΠΎΠ΄Π³ΠΎΡ‚ΠΎΠ²ΠΊΠ° биологичСских ΠΎΠ±ΡŠΠ΅ΠΊΡ‚ΠΎΠ² ΠΏΡ€ΠΈ хроматографичСском ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠΈ Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ²
      • 1. 3. 1. ΠŸΡ€ΠΎΠ±ΠΎΠΏΠΎΠ΄Π³ΠΎΡ‚ΠΎΠ²ΠΊΠ° ΠΏΡ€ΠΈ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠΈ Тирорастворимых Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ²
      • 1. 3. 2. ΠŸΡ€ΠΎΠ±ΠΎΠΏΠΎΠ΄Π³ΠΎΡ‚ΠΎΠ²ΠΊΠ° ΠΏΡ€ΠΈ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠΈ водорастворимых Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ²
  • ГЛАВА 2. ΠžΠ‘Π©ΠΠ― Π₯ΠΠ ΠΠšΠ’Π•Π Π˜Π‘Π’Π˜ΠšΠ ΠžΠ‘ΠͺΠ•ΠšΠ’ΠžΠ’ И ΠœΠ•Π’ΠžΠ”ΠžΠ’ Π˜Π‘Π‘Π›Π•Π”ΠžΠ’ΠΠΠ˜Π―
    • 2. 1. Аппаратура
    • 2. 2. Π’ΡΠΏΠΎΠΌΠΎΠ³Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹Π΅ устройства ΠΈ ΠΌΠ°Ρ‚Π΅Ρ€ΠΈΠ°Π»Ρ‹
    • 2. 3. ΠŸΠΎΠ΄Π³ΠΎΡ‚ΠΎΠ²ΠΊΠ° стандартных растворов ΠΊ Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ·Ρƒ
    • 2. 4. ΠœΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Ρ‹ исслСдования
      • 2. 4. 1. ΠšΠ°ΠΏΠΈΠ»Π»ΡΡ€Π½Ρ‹ΠΉ элСктрофорСз с Π£Π€-Π΄Π΅Ρ‚Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°ΠΏΠΈΠ΅ΠΌ
      • 2. 4. 2. ВысокоэффСктивная Тидкостная хроматография с Π£Π€-Π΄Π΅Ρ‚Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ΠΌ
      • 2. 4. 3. ЭлСктроосмотичСская тонкослойная хроматография (ЭОВБΠ₯)
      • 2. 4. 4. ВысокоэффСктивная тонкослойная хроматография (Π’Π­Π’Π‘Π₯)
      • 2. 4. 5. ΠŸΡ€ΠΎΡ‚ΠΎΡ‡Π½Π°Ρ твСрдофазная микроэкстракция с ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠΌ газохроматографичСским Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ·ΠΎΠΌ
      • 2. 4. 6. ΠšΠ°ΠΏΠΈΠ»Π»ΡΡ€Π½Ρ‹ΠΉ элСктрофорСз ΠΈ ΠΊΠ°ΠΏΠΈΠ»Π»ΡΡ€Π½Π°Ρ элСктрохроматография Π½Π° ΠΌΠΈΠΊΡ€ΠΎΡ‡ΠΈΠΏΠ΅
        • 2. 4. 6. 1. ΠŸΡ€ΠΎΡ†Π΅Π΄ΡƒΡ€Π° изготовлСния ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π½ΠΎΠ³ΠΎ ΠΌΠΈΠΊΡ€ΠΎΡ‡ΠΈΠΏΠ°
        • 2. 4. 6. 2. Π˜Π·Π³ΠΎΡ‚ΠΎΠ²Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΊΠΎΠ»ΠΎΠ½ΠΎΠΊ для элСктрохроматографии ΠΏΠ° ΠΌΠΈΠΊΡ€ΠΎΡ‡ΠΈΠΏΠ΅
        • 2. 4. 6. 3. ΠŸΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΌΠΎΠ½ΠΎΠ»ΠΈΡ‚Π½Ρ‹Ρ… Π°ΠΊΡ€ΠΈΠ»Π°ΠΌΠΈΠ΄Π½Ρ‹Ρ… сорбСнтов Π² ΠΊΠ°Π½Π°Π»Π΅ ΠΌΠΈΠΊΡ€ΠΎΡ‡ΠΈΠΏΠ°
  • ГЛАВА 3. Π₯Π ΠžΠœΠΠ’ΠžΠ“Π ΠΠ€Π˜Π§Π•Π‘ΠšΠžΠ• И Π­Π›Π•ΠšΠ’Π ΠžΠ€ΠžΠ Π•Π’Π˜Π§Π•Π‘ΠšΠžΠ• ΠžΠŸΠ Π•Π”Π•Π›Π•ΠΠ˜Π• Π’ΠžΠ”ΠžΠ ΠΠ‘Π’Π’ΠžΠ Π˜ΠœΠ«Π₯ Π’Π˜Π’ΠΠœΠ˜ΠΠžΠ’
    • 3. 1. ΠžΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ водорастворимых Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ высокоэффСктивной тонкослойной Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΈ (Π’Π­Π’Π‘Π₯)
    • 3. 2. Π Π°Π·Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ водорастворимых Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² Π² Ρ€Π΅ΠΆΠΈΠΌΠ΅ элСктроосмотичСской тонкослойной Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΈ (ЭОВБΠ₯)
    • 3. 3. ΠžΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ водорастворимых Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ высокоэффСктивной Тидкостной Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΈ
    • 3. 4. ΠžΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ водорастворимых Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌΠΈ капиллярного Π·ΠΎΠ½Π½ΠΎΠ³ΠΎ элСктрофорСза ΠΈ ΠΌΠΈΡ†Π΅Π»Π»ΡΡ€Π½ΠΎΠΉ элСктрокинСтнчСской Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΈ
      • 3. 4. 1. On-line ΠΊΠΎΠ½Ρ†Π΅Π½Ρ‚Ρ€ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ водорастворимых Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² ΠΏΡ€ΠΈ ΠΈΡ… ΡΠ»Π΅ΠΊΡ‚рофорСтичСском ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠΈ
    • 3. 5. ΠžΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΡ„Π»Π°Π²ΠΈΠ½Π° ΠΈ Π΅Π³ΠΎ коэнзимов ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ капиллярного Π·ΠΎΠ½Π½ΠΎΠ³ΠΎ элСктрофорСза Π½Π° ΠΌΠ½ΠΊΡ€ΠΎΡ‡Π½ΠΏΠ΅ с Ρ„луорСсцСнтным Π΄Π΅Ρ‚Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ΠΌ
      • 3. 5. 1. Π‘ΠΎΡ€Π±Π΅Π½Ρ‚Ρ‹ для капиллярной элСктрохроматографии
      • 3. 5. 2. ΠšΠ°ΠΏΠΈΠ»Π»ΡΡ€Π½Π°Ρ элСктрохроматография Π½Π° ΠΌΠΈΠΊΡ€ΠΎΡ‡ΠΈΠΏΠ΅
    • 3. 6. ΠŸΡ€ΠΎΡ‚ΠΎΡ‡Π½Π°Ρ твСрдофазная микроэкстракция Π½ΠΈΠΊΠΎΡ‚Π½Π½Π°ΠΌΠΈΠ΄Π° ΠΈ Π½ΠΈΠΊΠΎΡ‚ΠΈΠ½ΠΎΠ²ΠΎΠΉ кислоты с ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠΌ газохроматографичСскнм Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ·ΠΎΠΌ
  • ГЛАВА 4. Π₯Π ΠžΠœΠΠ’ΠžΠ“Π ΠΠ€Π˜Π§Π•Π‘ΠšΠžΠ• И Π­Π›Π•ΠšΠ’Π ΠžΠ€ΠžΠ Π•Π’Π˜Π§Π•Π‘ΠšΠžΠ• ΠžΠŸΠ Π•Π”Π•Π›Π•ΠΠ˜Π• Π–Π˜Π ΠžΠ ΠΠ‘Π’Π’ΠžΠ Π˜ΠœΠ«Π₯ Π’Π˜Π’ΠΠœΠ˜ΠΠžΠ’
    • 4. 1. ΠžΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ Тирорастворимых Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ высокоэффСктивной тонкослойной Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΈ (Π’Π­Π’Π‘Π₯)
    • 4. 2. ΠžΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ Тирорастворимых Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ ΠΎΠ±Ρ€Π°Ρ‰Π΅Π½Π½ΠΎ-Ρ„Π°Π·ΠΎΠ²ΠΎΠΉ высокоэффСктивной Тидкостной Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΈ (ОЀ Π’Π­Π–Π₯)
    • 4. 3. ΠžΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ Тирорастворимых Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² мицСллярной элСктрокинСтнчСской (МЭКΠ₯) ΠΈ ΠΌΠΈΡ†Π΅Π»Π»ΡΡ€Π½ΠΎΠΉ ΠΌΠΈΠΊΡ€ΠΎΡΠΌΡƒΠ»ΡŒΡΠΈΠΎΠ½Π½ΠΎΠΉ Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠ΅ΠΉ (МЭЭКΠ₯)
    • 4. 4. ΠžΠ΄Π½ΠΎΠ²Ρ€Π΅ΠΌΠ΅Π½Π½ΠΎΠ΅ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ Π²ΠΎΠ΄ΠΎ- ΠΈ ΠΆΠΈΡ€ΠΎΡ€Π°ΡΡ‚Π²ΠΎΡ€ΠΈΠΌΡ‹Ρ… Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ Π’Π­Π–Π₯
    • 4. 5. Π‘Ρ€Π°Π²Π½ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΉ Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ· ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠ² ΠžΠ€ Π’Π­Π–Π₯, Π’Π­Π’Π‘Π₯ ΠΈ ΠœΠ­ΠšΠ₯ ΠΏΡ€ΠΈ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠΈ Π²ΠΎΠ΄ΠΎ- Π½ ΠΆΠΈΡ€ΠΎΡ€Π°ΡΡ‚Π²ΠΎΡ€ΠΈΠΌΡ‹Ρ… Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ²
  • ГЛАВА 5. ΠŸΠ ΠΠšΠ’Π˜Π§Π•Π‘ΠšΠ˜Π•
  • ΠŸΠ Π˜Π›ΠžΠ–Π•ΠΠ˜Π―
    • 5. 1. ΠšΠΎΠ»ΠΈΡ‡Π΅ΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½ΠΎΠ΅ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ водорастворимых Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² (Π’ (,
  • Π’2, Π’3, Π’6 ΠΈ Π‘) Π² Ρ„армацСвтичСских ΠΏΡ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ‚Π°Ρ… ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ Π’Π­Π’Π‘Π₯
    • 5. 2. ΠšΠΎΠ»ΠΈΡ‡Π΅ΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½ΠΎΠ΅ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ водорастворимых Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² (Bi,
  • Π’2, Π’3, Π’6 ΠΈ Π‘) Π² ΠΏΠΈΡ‰Π΅Π²Ρ‹Ρ… ΠΏΡ€ΠΎΠ΄ΡƒΠΊΡ‚Π°Ρ… ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ МЭКΠ₯
    • 5. 3. ΠšΠΎΠ»ΠΈΡ‡Π΅ΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½ΠΎΠ΅ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ Тирорастворимых Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² (А,
  • Π•, D3) Π² ΠΏΠΈΡ‰Π΅Π²Ρ‹Ρ… ΠΏΡ€ΠΎΠ΄ΡƒΠΊΡ‚Π°Ρ… ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ Π’Π­Π–Π₯
  • Π’Π«Π’ΠžΠ”Π«

Π‘ΠΎΠ²Π΅Ρ€ΡˆΠ΅Π½ΡΡ‚Π²ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ элСктрофорСтичСского ΠΈ хроматографичСского опрСдСлСния Π²ΠΎΠ΄ΠΎ-ΠΈ Тирорастворимых Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² (Ρ€Π΅Ρ„Π΅Ρ€Π°Ρ‚, курсовая, Π΄ΠΈΠΏΠ»ΠΎΠΌ, ΠΊΠΎΠ½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ»ΡŒΠ½Π°Ρ)

ΠšΠΎΠ½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ»ΡŒ содСрТания Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² Π² Ρ„армацСвтичСских ΠΏΡ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ‚Π°Ρ…, ΠΏΠΈΡ‰Π΅Π²Ρ‹Ρ… ΠΏΡ€ΠΎΠ΄ΡƒΠΊΡ‚Π°Ρ… ΠΈ Π±ΠΈΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΡ‡Π΅ΡΠΊΠΈΡ… Тидкостях ΠΊΡ€Π°ΠΉΠ½Π΅ Π²Π°ΠΆΠ΅Π½, Ρ‚.ΠΊ. Π½Π°Ρ€ΡƒΡˆΠ΅Π½ΠΈΡ рСгуляции процСссов ΠΎΠ±ΠΌΠ΅Π½Π° ΠΈ Ρ€Π°Π·Π²ΠΈΡ‚ΠΈΠ΅ Ρ€Π°Π·Π»ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… ΠΏΠ°Ρ‚ΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΠΉ (Π³ΠΈΠΏΠΎΠΈ Π³ΠΈΠΏΠ΅Ρ€Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ·Ρ‹) часто связаны с Π½Π΅Π΄ΠΎΡΡ‚Π°Ρ‚ΠΎΡ‡Π½Ρ‹ΠΌ ΠΈΠ»ΠΈ ΠΈΠ·Π±Ρ‹Ρ‚ΠΎΡ‡Π½Ρ‹ΠΌ ΠΈΡ… ΠΏΠΎΡΡ‚ΡƒΠΏΠ»Π΅Π½ΠΈΠ΅ΠΌ Π² ΠΎΡ€Π³Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌ.

Для обнаруТСния Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² наибольшСС распространСниС ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡ΠΈΠ»ΠΈ хроматографичСскиС, спСктроскопичСскиС ΠΈ ΠΈΠΌΠΌΡƒΠ½ΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΡ‡Π΅ΡΠΊΠΈΠ΅ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Ρ‹, Π° Π² ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄Π½ΠΈΠ΅ Π³ΠΎΠ΄Ρ‹ — ΠΈ ΡΠ»Π΅ΠΊΡ‚рофорСтичСскиС.

НСсмотря Π½Π° Π·Π½Π°Ρ‡ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ΅ количСство ΠΎΠΏΡƒΠ±Π»ΠΈΠΊΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚ Π² ΡΡ‚ΠΎΠΌ Π½Π°ΠΏΡ€Π°Π²Π»Π΅Π½ΠΈΠΈ, остаСтся Π½Π΅Ρ€Π΅ΡˆΠ΅Π½Π½Ρ‹ΠΌ ряд ΠΏΡ€ΠΎΠ±Π»Π΅ΠΌ:

β€’ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ Π²ΠΎΠ΄ΠΎΠΈ Тирорастворимых Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² ΠΈΠ· ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠΉ ΠΏΡ€ΠΎΠ±Ρ‹ Π² ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠΌ аналитичСском Ρ†ΠΈΠΊΠ»Π΅;

β€’ выяснСниС возмоТностСй капиллярного Π·ΠΎΠ½Π½ΠΎΠ³ΠΎ элСктрофорСза ΠΈ ΠΊΠ°ΠΏΠΈΠ»Π»ΡΡ€Π½ΠΎΠΉ элСктрохроматографии Π² Ρ‡ΠΈΠΏ-Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΠ°Ρ‚Π΅ для Ρ€Π΅ΡˆΠ΅Π½ΠΈΡ этой Π·Π°Π΄Π°Ρ‡ΠΈ;

β€’ поиск ΠΈ Ρ…арактСристика сорбСнтов для капиллярной элСктрохроматографии ΠΏΡ€ΠΈ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠΈ Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ²;

β€’ использованиС Ρ€Π°Π·Π»ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… ΠΏΡƒΡ‚Π΅ΠΉ on-line концСнтрирования ΠΏΡ€ΠΈ ΠΈΡ… ΡΠΎΠ²ΠΌΠ΅ΡΡ‚Π½ΠΎΠΌ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠΈ.

ΠžΡ‚Π²Π΅Ρ‚Ρ‹ Π½Π° ΡΡ‚ΠΈ вопросы ΠΏΠΎΠ·Π²ΠΎΠ»ΠΈΠ»ΠΈ Π±Ρ‹ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»ΠΈΡ‚ΡŒ ΡΡ‚Ρ€Π°Ρ‚Π΅Π³ΠΈΡŽ Π²Ρ‹Π±ΠΎΡ€Π° аналитичСского ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Π° ΠΏΡ€ΠΈ Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ·Π΅ Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² Π² ΠΏΡ€ΠΈΡ€ΠΎΠ΄Π½Ρ‹Ρ… ΠΎΠ±ΡŠΠ΅ΠΊΡ‚Π°Ρ… Π² Π·Π°Π²ΠΈΡΠΈΠΌΠΎΡΡ‚ΠΈ ΠΎΡ‚ ΠΊΠΎΠ½ΠΊΡ€Π΅Ρ‚Π½ΠΎ Ρ€Π΅ΡˆΠ°Π΅ΠΌΠΎΠΉ Π·Π°Π΄Π°Ρ‡ΠΈ. Π­Ρ‚ΠΎΠΌΡƒ ΠΈ ΠΏΠΎΡΠ²ΡΡ‰Π΅Π½ΠΎ диссСртационноС исслСдованиС.

Π Π°Π±ΠΎΡ‚Π° ΠΏΠΎΠ΄Π΄Π΅Ρ€ΠΆΠ°Π½Π° Π³Ρ€Π°Π½Ρ‚ΠΎΠΌ «Π Π°Π·Π²ΠΈΡ‚ΠΈΠ΅ Π½Π°ΡƒΡ‡Π½ΠΎΠ³ΠΎ ΠΏΠΎΡ‚Π΅Π½Ρ†ΠΈΠ°Π»Π° Π²Ρ‹ΡΡˆΠ΅ΠΉ ΡˆΠΊΠΎΠ»Ρ‹» (ΠΏΠΎΠ΄ΠΏΡ€ΠΎΠ³Ρ€Π°ΠΌΠΌΠ° «Π˜ΡΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ Π½ΠΎΠ²Ρ‹Ρ… сорбционных ΠΌΠ°Ρ‚Π΅Ρ€ΠΈΠ°Π»ΠΎΠ² для Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΈ ΠΈ ΡΠ»Π΅ΠΊΡ‚Ρ€ΠΎΡ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΈ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ Ρ‚Π²Π΅Ρ€Π΄ΠΎΡ„Π°Π·Π½ΠΎΠΉ микроэкстракции») ΠΈ Π³Ρ€Π°Π½Ρ‚Π° РЀЀИ № 07−03−1 001-Π°.

ЦСль Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹: ВыяснСниС возмоТностСй ΠΈ ΠΎΠ³Ρ€Π°Π½ΠΈΡ‡Π΅Π½ΠΈΠΉ хроматографичСского ΠΈ ΡΠ»Π΅ΠΊΡ‚рофорСтичСского опрСдСлСния Π²ΠΎΠ΄ΠΎΠΈ Тирорстворимых Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ².

Π’ ΡΠ²ΡΠ·ΠΈ с ΠΏΠΎΡΡ‚Π°Π²Π»Π΅Π½Π½ΠΎΠΉ Ρ†Π΅Π»ΡŒΡŽ Π½Π΅ΠΎΠ±Ρ…ΠΎΠ΄ΠΈΠΌΠΎ Π±Ρ‹Π»ΠΎ Ρ€Π΅ΡˆΠΈΡ‚ΡŒ ΡΠ»Π΅Π΄ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ Π·Π°Π΄Π°Ρ‡ΠΈ:

1. На ΠΌΠΎΠ΄Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… смСсях Π²ΠΎΠ΄ΠΎΠΈ Тирорастворимых Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² ΡƒΡΡ‚Π°Π½ΠΎΠ²ΠΈΡ‚ΡŒ закономСрности ΠΈΡ… Ρ€Π°Π·Π΄Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ³ΠΎ ΠΈ ΡΠΎΠ²ΠΌΠ΅ΡΡ‚Π½ΠΎΠ³ΠΎ хроматографичСского (ОЀ Π’Π­Π–Π₯, Π’Π­Π’Π‘Π₯, ЭОВБΠ₯) ΠΈ ΡΠ»Π΅ΠΊΡ‚рофорСтичСского (ΠšΠ—Π­, МЭКΠ₯ ΠΈ ΠœΠ­Π­ΠšΠ₯) опрСдСлСния.

2. Π’Ρ‹ΡΠ²ΠΈΡ‚ΡŒ влияниС ΠΌΠΈΡ†Π΅Π»Π» Π΄ΠΎΠ΄Π΅Ρ†ΠΈΠ»ΡΡƒΠ»ΡŒΡ„Π°Ρ‚Π° натрия (ДДБН) Π½Π° ΡΠ΅Π»Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ раздСлСния Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Π°ΠΌΠΈ мицСллярной элСктрокинСтичСской Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΈ (МЭКΠ₯), высокоэффСктивной тонкослойной Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΈ (Π’Π­Π’Π‘Π₯) ΠΈ ΠΎΠ±Ρ€Π°Ρ‰Π΅Π½Π½ΠΎ-Ρ„Π°Π·ΠΎΠ²ΠΎΠΉ Π’Π­Π–Π₯.

3. ΠžΡΡƒΡ‰Π΅ΡΡ‚Π²ΠΈΡ‚ΡŒ on-line ΠΊΠΎΠ½Ρ†Π΅Π½Ρ‚Ρ€ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ для сниТСния ΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»ΠΎΠ² обнаруТСния водорастворимых Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² ΠΏΡ€ΠΈ ΠΈΡ… Π³Ρ€ΡƒΠΏΠΏΠΎΠ²ΠΎΠΌ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠΈ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ МЭКΠ₯.

4. Π˜ΡΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚ΡŒ возмоТности капиллярного Π·ΠΎΠ½Π½ΠΎΠ³ΠΎ элСктрофорСза (ΠšΠ—Π­) ΠΈ ΠΊΠ°ΠΏΠΈΠ»Π»ΡΡ€Π½ΠΎΠΉ элСктрохроматографии (КЭΠ₯) Π½Π° ΠΌΠΈΠΊΡ€ΠΎΡ‡ΠΈΠΏΠ΅ с Ρ„луоримСтричСским Π΄Π΅Ρ‚Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ΠΌ для сСлСктивного опрСдСлСния Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΡ„Π»Π°Π²ΠΈΠ½Π° ΠΈ Π΅Π³ΠΎ ΠΏΡ€ΠΎΠΈΠ·Π²ΠΎΠ΄Π½Ρ‹Ρ….

5. ΠŸΠΎΠ»ΡƒΡ‡ΠΈΡ‚ΡŒ сорбционныС характСристики Π½Π΅ΠΏΠΎΠ΄Π²ΠΈΠΆΠ½Ρ‹Ρ… Ρ„Π°Π· для капиллярной элСктрохроматографии ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ Ρ‚Π²Π΅Ρ€Π΄ΠΎΡ„Π°Π·Π½ΠΎΠΉ микроэкстракции (ВЀМЭ).

6. ΠŸΡ€Π΅Π΄Π»ΠΎΠΆΠΈΡ‚ΡŒ схСмы хроматографичСского ΠΈ ΡΠ»Π΅ΠΊΡ‚рофорСтичСского опрСдСлСния Π²ΠΎΠ΄ΠΎΠΈ Тирорастворимых Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² Π² Ρ„армацСвтичСских ΠΏΡ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ‚Π°Ρ…, ΠΏΠΈΡ‰Π΅Π²Ρ‹Ρ… ΠΏΡ€ΠΎΠ΄ΡƒΠΊΡ‚Π°Ρ… (соки, ΠΏΠΈΠ²ΠΎ) ΠΈ Π±ΠΈΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΡ‡Π΅ΡΠΊΠΈΡ… ΠΎΠ±ΡŠΠ΅ΠΊΡ‚Π°Ρ… (ΠΌΠΎΡ‡Π°) ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Π°ΠΌΠΈ МЭКΠ₯, Π’Π­Π’Π‘Π₯ ΠΈ Π’Π­Π–Π₯.

Π’ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π΅ использовались ΡΠ»Π΅Π΄ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Ρ‹: газовая хроматография (Π“Π₯) ΠΈ ΠΎΠ±Ρ€Π°Ρ‰Π΅Π½Π½ΠΎ-фазовая Π’Π­Π–Π₯ (ОЀ Π’Π­Π–Π₯) — высокоэффСктивная ΠΈ ΡΠ»Π΅ΠΊΡ‚роосмотичСская тонкослойная хроматография (ЭОВБΠ₯), капиллярный Π·ΠΎΠ½Π½Ρ‹ΠΉ элСктрофорСз (ΠšΠ—Π­) ΠΈ ΠΊΠ°ΠΏΠΈΠ»Π»ΡΡ€Π½Π°Ρ элСктрохроматография (КЭΠ₯), Π² Ρ‚ΠΎΠΌ числС Π½Π° ΠΌΠΈΠΊΡ€ΠΎΡ‡ΠΈΠΏΠ΅, Π° Ρ‚Π°ΠΊΠΆΠ΅ мицСллярная (МЭКΠ₯) ΠΈ ΠΌΠΈΠΊΡ€ΠΎΡΠΌΡƒΠ»ΡŒΡΠΈΠΎΠ½Π½Π°Ρ элСктрокинСтичСская Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΈ (МЭЭКΠ₯).

На Π·Π°Ρ‰ΠΈΡ‚Ρƒ выносятся ΡΠ»Π΅Π΄ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ полоТСния:

1. Π Π΅Π·ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Π°Ρ‚Ρ‹ исслСдования влияния органичСских растворитСлСй (ΠΌΠ΅Ρ‚Π°Π½ΠΎΠ», Π°Ρ†Π΅Ρ‚ΠΎΠ½ΠΈΡ‚Ρ€ΠΈΠ») ΠΈ ΠΏΠΎΠ²Π΅Ρ€Ρ…ностно-Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΠ³ΠΎ вСщСства (Π΄ΠΎΠ΄Π΅Ρ†ΠΈΠ»ΡΡƒΠ»ΡŒΡ„Π°Ρ‚Π° натрия) Π² ΠΊΠ°Ρ‡Π΅ΡΡ‚Π²Π΅ ΡΠΎΡΡ‚Π°Π²Π»ΡΡŽΡ‰ΠΈΡ… Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‡Π΅Π³ΠΎ Π±ΡƒΡ„Π΅Ρ€Π° ΠΈ ΠΏΠΎΠ΄Π²ΠΈΠΆΠ½ΠΎΠΉ Ρ„Π°Π·Ρ‹ Π½Π° ΡΡ„Ρ„Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ ΠΈ ΡΠ΅Π»Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ элСктрофорСтичСского ΠΈ Ρ…роматографичСского раздСлСния Π²ΠΎΠ΄ΠΎΠΈ Тирорастворимых Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² Π² Ρ€Π΅ΠΆΠΈΠΌΠ°Ρ… мицСллярной элСктрокинСтичСской Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΈ (МЭКΠ₯), мицСллярной высокоэффСктивной Тидкостной Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΈ (ОЀ Π’Π­Π–Π₯) ΠΈ Π²Ρ‹ΡΠΎΠΊΠΎΡΡ„Ρ„Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΠΉ тонкослойной Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΈ (Π’Π­Π’Π‘Π₯).

2. Бпособы элСктрофорСтичСского ΠΈ Ρ…роматографичСского опрСдСлСния водорастворимых Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² Π² ΠΏΠΈΡ‰Π΅Π²Ρ‹Ρ… ΠΏΡ€ΠΎΠ΄ΡƒΠΊΡ‚Π°Ρ… ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Π°ΠΌΠΈ мицСллярной элСктрокинСтичСской Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΈ ΠΈ ΠžΠ€ Π’Π­Π–Π₯ с Π£Π€-Π΄Π΅Ρ‚Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ΠΌ.

3. ОбоснованиС возмоТностСй ΠΈ ΠΏΡ€Π΅ΠΈΠΌΡƒΡ‰Π΅ΡΡ‚Π² высокоэффСктивной тонкослойной Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΈ (Π’Π­Π’Π‘Π₯) ΠΈ ΠΌΠΈΡ†Π΅Π»Π»ΡΡ€Π½ΠΎΠΉ высокоэффСктивной тонкослойной Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΈ (ΠœΠ’Π­Π’Π‘Π₯) с ΠΈΡΠΏΠΎΠ»ΡŒΠ·ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ΠΌ Ρ„Ρ€Π°ΠΊΡ†ΠΈΠΎΠ½Π½ΠΎΠ³ΠΎ ΡΠ»ΡŽΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΡ для ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠ²Ρ€Π΅ΠΌΠ΅Π½Π½ΠΎΠ³ΠΎ опрСдСлСния Π²ΠΎΠ΄ΠΎΠΈ Тирорастворимых Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ².

4. ΠœΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΈΠΊΠ° сСлСктивного опрСдСлСния Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΡ„Π»Π°Π²ΠΈΠ½Π° ΠΈ Π΅Π³ΠΎ ΠΏΡ€ΠΎΠΈΠ·Π²ΠΎΠ΄Π½Ρ‹Ρ… Π² Ρ€Π΅ΠΆΠΈΠΌΠ΅ капиллярного Π·ΠΎΠ½Π½ΠΎΠ³ΠΎ элСктрофорСза ΠΈ ΠΊΠ°ΠΏΠΈΠ»Π»ΡΡ€Π½ΠΎΠΉ элСктрохроматографии Π½Π° ΠΌΠΈΠΊΡ€ΠΎΡ‡ΠΈΠΏΠ΅ с Ρ„луоримСтричСским Π΄Π΅Ρ‚Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ΠΌ.

5. ΠžΠ΄Π½ΠΎΠ²Ρ€Π΅ΠΌΠ΅Π½Π½ΠΎΠ΅ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ водорастворимых Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² Π² ΠΏΠΈΡ‰Π΅Π²Ρ‹Ρ… ΠΏΡ€ΠΎΠ΄ΡƒΠΊΡ‚Π°Ρ… ΠΈ ΠΌΠΎΡ‡Π΅ Π² Ρ€Π΅ΠΆΠΈΠΌΠ΅ мицСллярной элСктрокинСтичСской Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΈ с Ρ€Π°Π·Π»ΠΈΡ‡Π½Ρ‹ΠΌΠΈ Π²Π°Ρ€ΠΈΠ°Π½Ρ‚Π°ΠΌΠΈ on-line концСнтрирования (стэкинг с ΡƒΡΠΈΠ»Π΅Π½ΠΈΠ΅ΠΌ поля ΠΈ Ρ Π²Ρ‹ΡΠΎΠΊΠΎΠΏΡ€ΠΎΠ²ΠΎΠ΄ΡΡ‰Π΅ΠΉ ΠΌΠ°Ρ‚Ρ€ΠΈΡ†Π΅ΠΉ, использованиС «Π²ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠΉ ΠΏΡ€ΠΎΠ±ΠΊΠΈ» ΠΈ Π΄ΠΈΠ½Π°ΠΌΠΈΡ‡Π΅ΡΠΊΠΎΠ³ΠΎ скачка рН).

6. БтратСгия Π²Ρ‹Π±ΠΎΡ€Π° ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Π° ΠΏΡ€ΠΈ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠΈ Π²ΠΎΠ΄ΠΎΠΈ Тирорстворимых Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² Π² Ρ„армацСвтичСских ΠΏΡ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ‚Π°Ρ…, ΠΏΠΈΡ‰Π΅Π²Ρ‹Ρ… ΠΏΡ€ΠΎΠ΄ΡƒΠΊΡ‚Π°Ρ… ΠΈ Π±ΠΈΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΡ‡Π΅ΡΠΊΠΈΡ… Тидкостях, хроматографичСскими ΠΈ ΡΠ»Π΅ΠΊΡ‚рофорСтичСскими ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Π°ΠΌΠΈ.

Π²Ρ‹Π²ΠΎΠ΄Ρ‹.

1. Показана Π²ΠΎΠ·ΠΌΠΎΠΆΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒ совмСстного опрСдСлСния Π²ΠΎΠ΄ΠΎ- (Π’ΡŒ Π’2, Π’3, Π’6 ΠΈ Π‘) ΠΈ ΠΆΠΈΡ€ΠΎΡ€Π°ΡΡ‚Π²ΠΎΡ€ΠΈΠΌΡ‹Ρ… (А, Π•) ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ высокоэффСктивной тонкослойной Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΈ (Π’Π­Π’Π‘Π₯) Π² ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠΌ хроматографичСском Ρ†ΠΈΠΊΠ»Π΅ ΠΏΡ€ΠΈ использовании Ρ„Ρ€Π°ΠΊΡ†ΠΈΠΎΠ½Π½ΠΎΠ³ΠΎ ΡΠ»ΡŽΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΡ: пСрвая подвиТная фазахлороформвторая — Π²ΠΎΠ΄Π°/Π°Ρ†Π΅Ρ‚ΠΎΠ½ΠΈΡ‚Ρ€ΠΈΠ» с Π΄ΠΎΠ±Π°Π²ΠΊΠΎΠΉ 10 ΠΌΠœ ДДБН.

2. УстановлСно, Ρ‡Ρ‚ΠΎ Π½Π°Π»ΠΈΡ‡ΠΈΠ΅ ΠΌΠΈΡ†Π΅Π»Π» Π΄ΠΎΠ΄Π΅Ρ†ΠΈΠ»ΡΡƒΠ»ΡŒΡ„Π°Ρ‚Π° натрия Π² ΡΠΎΡΡ‚Π°Π²Π΅ Π±ΡƒΡ„Π΅Ρ€Π½ΠΎΠ³ΠΎ элСктролита ΠΈΠ»ΠΈ ΠΏΠΎΠ΄Π²ΠΈΠΆΠ½ΠΎΠΉ являСтся Π΄ΠΎΠΌΠΈΠ½ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠΌ Ρ„Π°ΠΊΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠΌ, ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»ΡΡŽΡ‰ΠΈΠΌ ΡΠ΅Π»Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ элСктрофорСтичСского ΠΈ Ρ…роматографичСского раздСлСния водорастворимых Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² Π² Ρ€Π΅ΠΆΠΈΠΌΠ°Ρ… мицСллярной элСктрокинСтичСской Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΈ (МЭКΠ₯), высокоэффСктивной Тидкостной Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΈ (ОЀ Π’Π­Π–Π₯) ΠΈ Π²Ρ‹ΡΠΎΠΊΠΎΡΡ„Ρ„Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΠΉ тонкослойной Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΈ (Π’Π­Π’Π‘Π₯).

3. На ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠΈ ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… характСристик ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ ВЀМЭ сорбционныС ΠΌΠ°Ρ‚Π΅Ρ€ΠΈΠ°Π»Ρ‹ Π½Π° ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π΅ Π‘Π±ΠΎ ΠΈ Π”Π‘-24-К-8 Π±Ρ‹Π»ΠΈ ΠΈΡΠΏΠΎΠ»ΡŒΠ·ΠΎΠ²Π°Π½Ρ‹ для концСнтрирования ΠΈ Π³Π°Π·ΠΎΡ…роматографичСского Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ·Π°, Π° ΡΠΈΠ»ΠΈΠΊΠ°Π³Π΅Π»ΡŒ, ΠΎΠ±Ρ€Π°Ρ‰Π΅Π½ΠΎ-Ρ„Π°Π·ΠΎΠ²Ρ‹ΠΉ сорбСнт ΠΈ Π°ΠΊΡ€ΠΈΠ»Π°ΠΌΠΈΠ΄Π½Ρ‹ΠΉ ΠΌΠΎΠ½ΠΎΠ»ΠΈΡ‚ — Π² ΠΊΠ°Ρ‡Π΅ΡΡ‚Π²Π΅ Π½Π΅ΠΏΠΎΠ΄Π²ΠΈΠΆΠ½Ρ‹Ρ… Ρ„Π°Π· для капиллярной элСктрохроматографии ΠΏΡ€ΠΈ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠΈ Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ².

4. ΠžΡ‚Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π°Π½Π° ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΈΠΊΠ° сСлСктивного опрСдСлСния Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΡ„Π»Π°Π²ΠΈΠ½Π° ΠΈ Π΅Π³ΠΎ ΠΏΡ€ΠΎΠΈΠ·Π²ΠΎΠ΄Π½Ρ‹Ρ… Π² Ρ€Π΅ΠΆΠΈΠΌΠ΅ капиллярного Π·ΠΎΠ½Π½ΠΎΠ³ΠΎ элСктрофорСза ΠΈ ΠΊΠ°ΠΏΠΈΠ»Π»ΡΡ€Π½ΠΎΠΉ элСктрохроматографии Π½Π° ΠΌΠΈΠΊΡ€ΠΎΡ‡ΠΈΠΏΠ΅ с Ρ„луоримСтричСским Π΄Π΅Ρ‚Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ΠΌ (ΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Ρ‹ обнаруТСния 12−21 Π½Π³/ΠΌΠ»).

5. Π’ ΡΠΎΠΎΡ‚вСтствии с ΡƒΡΡ‚Π°Π½ΠΎΠ²Π»Π΅Π½Π½Ρ‹ΠΌΠΈ закономСрностями ΠΏΡ€Π΅Π΄Π»ΠΎΠΆΠ΅Π½Ρ‹ схСмы:

β€’ экспрСсс-опрСдСлСния водорастворимых Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² (Π’], Π’2, Π’3, Π’Π± ΠΈ Π‘) Π² Ρ„армацСвтичСских ΠΏΡ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ‚Π°Ρ… ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ Π’Π­Π’Π‘Π₯.

β€’ элСктрофорСтичСского опрСдСлСния водорастворимых Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² Π² ΡΠΎΠΊΠ°Ρ… ΠΈ ΠΏΠΈΠ²Π΅ Π² Ρ€Π΅ΠΆΠΈΠΌΠ΅ мицСллярной элСктрокинСтичСской Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΈ с ΠΈΡΠΏΠΎΠ»ΡŒΠ·ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ΠΌ on-line концСнтрирования;

β€’ хроматографичСского опрСдСлСния Тирорастворимых Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² (А, Π• ΠΈ D3) Π² ΠΏΠΈΡ‰Π΅Π²ΠΎΠΌ ΠΌΠ°Ρ€Π³Π°Ρ€ΠΈΠ½Π΅ Π² Ρ€Π΅ΠΆΠΈΠΌΠ΅ ΠžΠ€ Π’Π­Π–Π₯ с Π£Π€-Π΄Π΅Ρ‚Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ΠΌ;

6. Π Π΅ΠΊΠΎΠΌΠ΅Π½Π΄ΠΎΠ²Π°Π½Π° стратСгия Π²Ρ‹Π±ΠΎΡ€Π° аналитичСского ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Π° ΠΏΡ€ΠΈ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠΈ Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² Ρ€Π°Π·Π»ΠΈΡ‡Π½ΠΎΠΉ ΠΏΡ€ΠΈΡ€ΠΎΠ΄Ρ‹ Π² Ρ„армацСвтичСских ΠΏΡ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ‚Π°Ρ…, ΠΏΠΈΡ‰Π΅Π²Ρ‹Ρ… ΠΏΡ€ΠΎΠ΄ΡƒΠΊΡ‚Π°Ρ… ΠΈ Π±ΠΈΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΡ‡Π΅ΡΠΊΠΈΡ… Тидкостях: для опрСдСлСния водорастворимых ΠΏΡ€Π΅Π΄ΠΏΠΎΡ‡Ρ‚ΠΈΡ‚Π΅Π»Π΅Π½ Π²Π°Ρ€ΠΈΠ°Π½Ρ‚ мицСллярной элСктрокинСтичСской Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΈ с on-line концСнтрированиСТирорастворимых — ОЀ Π’Π­Π–Π₯для совмСстного опрСдСлСния — градиСнтная ΠžΠ€ Π’Π­Π–Π₯ ΠΈ Π’Π­Π’Π‘Π₯ с Ρ„Ρ€Π°ΠΊΡ†ΠΈΠΎΠ½Π½Ρ‹ΠΌ ΡΠ»ΡŽΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ΠΌ.

ΠŸΠΎΠΊΠ°Π·Π°Ρ‚ΡŒ вСсь тСкст

Бписок Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Ρ‹

  1. , Π’. Π‘. Π’ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½Ρ‹ ВСкст.: ΠšΡ€Π°Ρ‚ΠΊΠΎΠ΅ руководство для Π²Ρ€Π°Ρ‡Π΅ΠΉ ΠΈ ΡΡ‚ΡƒΠ΄Π΅Π½Ρ‚ΠΎΠ² мСдСдицинских, фармацСфтичСских ΠΈ Π±ΠΈΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΡ‡Π΅ΡΠΊΠΈΡ… ΡΠΏΠ΅Ρ†ΠΈΠ°Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚Π΅ΠΉ / Π’. Π‘. ΠœΠΎΡ€ΠΎΠ·ΠΊΠΈΠ½Π°, А. Π“. ΠœΠΎΠΉΡΠ΅Ρ‘Π½ΠΎΠΊ. Мн.: ООО «ΠΡΠ°Ρ€», 2002. — 112 с.
  2. , Π’.М. Π₯имия Π²ΠΈΡ‚Π°ΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ² ВСкст. / Π’. М. БСрСзовский. М: «ΠŸΠΈΡ‰Π΅Π²Π°Ρ ΠΏΡ€ΠΎΠΌΡ‹ΡˆΠ»Π΅Π½Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ», 1973. — 634 с.
  3. Eitenmiller, R. R. Vitamin analysis for the health and food sciences Text. / R. R. Eitenmiller, W. O. Landen. New York: CRC Press LLC, 1999. — p.
  4. De Leenheer, A. P. Modern Chromatographic Anaylsis of the Vitamins Text. / A. P. De Leenheer, W. E. Lambert, M. G. M. DeRuyter. New York: Marcel Dekker, 1985.-p.
  5. Davidek, J. Gas-liquid chromatography of vitamins in foods: the fat-soluble vitamins Text. / J. Davidek, J. Velisek. // J. Micronutr. Anal. 1986. — V. 2. -P. 81.
  6. Smidt, C. R. Gas chromatography of retinol and a-tocopherol without derivatization Text. / C. R. Smidt, A. D. Jones, A. J. Clifford. // J. Chromatogr. 1988. — V. 434. — P. 21.
  7. Ulberth, F. Simultaneous determination of vitamin E isomers and cholesterol by GLC Text. / F. Ulberth / /J. High Res. Chromatogr. 1991. — V. 14. — P. 343.
  8. Liebler, D. C. Gas chromatography-mass spectrometry analysis of vitamin E and its oxidation products Text. / D. C. Liebler, J. Aburr, J. L. H. Amy. // Meth. Enzymol. 1999. — V. 299. — P. 309−318.
  9. Silva, F. O. Total ascorbic acid determination in fresh squeezed orange juice by gas chromatography Text. / F. O. Silva // Food Control. 2005. -V. 16. -I. l.-P. 55−58.
  10. Indyk, H. E. Simplified saponification procedure for the routine determination of total vitamin E in dairy products, foods, and tissues by highperformance liquid chromatography Text. / H. E. Indyk. // Analyst. 1988. -V. 113.-P. 1217.
  11. Brinkmann, E. Separation of geometrical retinol isomers in food samples by using narrow bore-high-performance liquid chromatography Text. / E. Brinkmann, L. Dehne, H. B. Oei, R. Tiebach, W. J. Baiters. // Chromatogr. A.- 1995. V. 693.-P. 271.
  12. Wyss, R. Use of direct injection precolumn techniques for the high-performance liquid chromatographic determination of the retinoids, acitretin and 13-cw-acitretin in plasma Text. / R. Wyss, F. Bucheli. // J. Chromatogr.- 1992. V. 593.-P. 55.
  13. Altria, K. D. Analysis of Pharmaceuticals by Capillary Electroforesis Text. / K. D. Altria. Weisbaden: Vieweg Press, 1998. — p.
  14. Hagen, J. J. Determination of retinoids by reversed-phase capillary liquid chromatography with amperometric electrochemical detection Text. / J. J. Hagen, K. A. Washco, C. A. Monnig. // J. Chromatogr. B. 1996. — V. 677. -P. 225.
  15. , R. Π’. H. Determination of carotenoids in Chinese vegetables Text. / R. Π’. H. Wills, A. Rangga. // Food Chem. 1996. — V. 56. — P. 451.
  16. Konings, E. J. M. Evaluation and validation of an LC method for the analysis of carotenoids in vegetables and fruits Text. / E. J. M. Konings, H. H. S. Roomans. // Food Chem. 1997. — V. 59. — P. 599.
  17. Khachik, F. Identification, quantification and relative concentrations of carotenoids and their metabolites in human milk Text. / F. Khachik, C. J. Spangler, J. C. Smith, Jr. // Anal. Chem. 1997. — V. 69. — P. 1873.
  18. Piironen, V. Stability of tocopherols and tocotrienols during storage of foods Text. / V. Piironen, P. Varo, P. Koivistoinen. // J. Food Π‘ΠΎΡ‚Ρ€. Anal. 1988.-V. l.P. 124.
  19. Sarzanini, Π‘. Determination of plasma tocopherols by high-performance liquid chromatography with coulometric detection Text. / C. Sarzanini, E. Mentasti, M. Vincenti, M. Nerva, F. Gaido // J. Chromatogr. 1993. — V. 620.-P. 268.
  20. Arnaud, J. Simultaneous determination of retinol, a-tocopherol and (3-carotene in serum by isocratic high performance liquid chromatography Text. / J. Arnaud, I. Fortis, S. Blachier, D. Kia, A. Favier. // J. Chromatogr. -1991.-V. 572.-P. 103.
  21. Mattila, P. Cholecalciferol and 25-hydroxycholecalciferol contents in fish and fish products Text. / P. Mattila, V. Piironen, E. Uusi-Rauva, P. Koivistoinen. // J. Food Π‘ΠΎΡ‚Ρ€. Anal. 1995. — V. 8. — P.232.
  22. Aksnes, L. A simplified high-performance liquid chromatographic method for determination of vitamin D3, 25-hydroxyvitamin D2 and 25-hydroxyvitamin D3 in human serum Text. / L. Aksnes // Scand. J. Clin. Lab. Invest.- 1992.-V. 52.-P. 177.
  23. McCarthy, P. T. Assay of phylloquinone in plasma by high performance liquid chromatography with electrochemical detection Text. / P. T. McCarthy, D. J. Harrington, M. J. Shearer. // Meth. Enzymol. 1997. — V. 282.-P. 421.
  24. Ivanovic, D. Reversed-phase ion-pair HPLC determination of some water-soluble vitamins in pharmaceuticals Text. / D. Ivanovic, A. Popovic, D. Radulovic, M. Medenica. // J. Pharm. Biomed. Anal. 1999. — V. 18. — I. 6. —1. P. 999−1004.
  25. Chen, P. LC/UV/MS-MRM for the simultaneous determination of water-soluble vitamins in multi-vitamin dietary supplements Text. / P. Chen, W. R. Wolf. // Anal. Bioanal. Chem. 2007. — V. 387. -1. 7. — P. 2441−2448.
  26. Ollilainen, V. The HPLC determination of total thiamin (vitamin Bl) in foods Text. / V. Ollilainen, V. Vahteristo, L. A. Uusi-Rauva, P. Varo, P. Koivistoinen, J. Huttunen. // J. Food Π‘ΠΎΡ‚Ρ€. Anal. 1993. — V. 6. — P. 152.
  27. Blanco, D. A paired ion liquid chromatographic method for thiamine determination in selected foods Text. / D. Blanco, M. B. Llaneza, M. D. Gutierrez. // J. Liq. Chrom. Rel. Technol. 1996. — V. 19. — P. 2155.
  28. Herve, P. Comparison of erythrocyte transketolase activity with thiamine and thiamine phosphate ester levels in chronic alcoholic patients Text. / P. Herve, P. Beyne, Ph. Lettiron, E. Delacoux. // Clin. Chim. Acta. 1995. — V. 234. -P. 91.
  29. Ollilainen, V. The HPLC determination of total riboflavin in foods Text. / V. Ollilainen, P. Matilla, P. Vara, P. Koivistoinen, J. Huttunen. // J. Micronutr. Anal. 1990. — V. 8. — P. 199.
  30. Vidal-Valverde, C. Reliable system for the analysis of riboflavin in foods by high performance liquid chromatography and UV detection Text. / A. Vidal-Valverde, A. Reche. // J. Liq. Chromatogr. 1990. — V. 13. — P. 2089.
  31. Barna, E. Determination of thiamine (vitamin Bl) and riboflavin (vitamin B2) in meat and liver by high-performance liquid chromatography Text. / E. Barna, E. Dworschak. // J. Chromatogr. A. 1994. — V. 668. — P. 359.
  32. Chase, G. W. Method modification for liquid chromatographic determination of thiamine, riboflavin and pyridoxine in medical foods Text. / G. W. Chase, W. O. Landen, Jr., A. G. M. Soliman, R. R. Eitenmiller. // J. AOAC Int. -1993.-V. 767.-P. 1276.
  33. Hewavitharna, A. K. Method for the extraction of riboflavin for high performance liquid chromatography and application to casein Text. / A. K. Hewavitharna. // Analyst. 1996. — V. 121. — P. 1671.
  34. Batey, D. W. Identification of FAD, FMN, and riboflavin in the retina by microextraction and high-performance liquid chromatography Text. / D. W. Batey, C. D. Eckhart. // Anal. Biochem. 1990. — V. 188. — P. 164.
  35. Ang, C. Y. Determination of thiamin and riboflavin in meat and meatproducts by high pressure liquid chromatography Text. / C. Y. Ang, F. A. Moseley. // J. Agric. Food Chem. 1980. — V. 28. — P. 483.
  36. Hamano, T. Simultaneous determination of niacin and niacinamide in meats by high-performance liquid chromatography Text. / T. Hamano, Y. Mitsuhashi, N. Aoki, S. Yamamoto, Y. Oji. // J. Chromatogr. 1988. — V. 457.-P. 403.
  37. Hirayama, S. Determination of a small amount of niacin in foodstuffs by highperformance liquid chromatography Text. / S. Hirayama, M. Maruyama. //J. Chromatogr.-1991.-V. 588.-P. 171.
  38. Chase, G. W. Jr. Liquid chromatographic analysis of niacin in fortified food products Text. / G. W. Chase, Jr., W. O. Landen, Jr., A. M. Soliman, R. R. Eitenmiller. // J. AOAC Int. 1993. — V. 76. — P. 390.
  39. Balschukat, D. Use of column switching for the determination of niacinamide in compound feed Text. / D. Balschukat, E. Kress // J. Chromatogr. 1990. — V. 502. — P. 79.
  40. Tsuge, H. Determination of vitamin B-6 vitamers and metabolites in a biological sample Text. / H.Tsuge. // Meth. Enzymol. 1997. — V. 280. — P. 3.
  41. Ubbink, J. B. Vitamin B-12, vitamin B-6 and folate nutritional status in men with hyperhomocysteinemia Text. / J. B. Ubbink, W. J. H. Vermaak, A. van der Merwe, P. J. Becker. // Am. J. Clin. Nutr. 1993. — V. 57. — P. 47.
  42. Dalbacke, J. Determination of vitamin B12 in multivitamin-multimineral tablets by high performance liquid chromatography after solid-phase extraction Text. / J. Dalbacke, I. Dahlquist. J. Chromatogr. 1991. — V. 541. -P. 382.
  43. Wang, S. Determination of plasma ascorbic acid by HPLC: method and stability studies Text. / S. Wang, I. M. Schram, R, B. Sund. // Eur. J. Pharm. Sci. 1995. -V. 3. — P. 231.
  44. Behrens, W. A. Ascorbic and dehydroascorbic acid contents of canned food and frozen concentrated orange juice Text. / W. A. Behrens, R.Madere. // J. Food Π‘ΠΎΡ‚Ρ€. Anal. 1990. — V. 3. — P. 3.
  45. Margolis, S. A. Liquid chromatographic measurement of L-ascorbic acid and D-ascorbic acid in biological samples Text. / S. A. Margolis, R. M. Schapira. // J. Chromatogr. B. 1997. — V. 690. — P. 25.
  46. Leubolt, R. Determination of sulphite and ascorbic acid by high-performanceliquid chromatography with electrochemical detection Text. / R. Leubolt, H. Klein. // J. Chromatogr. 1993. — V. 640. — P. 271.
  47. Vanderslice, J. T. Quantitative determination of ascorbic, dehydroascorbic, isoascorbic, and dehydroisoascorbic acid by HPLC in foods and other matrices Text. / J. T. Vanderslice, D. J. Higgs. // J. Nutr. Biochem. 1993. -V. 4.-P. 184.
  48. Vinci, G. Ascorbic acid in exotic fruits: a liquid chromatographic investigation Text. / G. Vinci, F. Botre, G. Mele, G. Ruggieri. // Food Chem. 1995. — V. 53.-P. 211,
  49. Holler, U. Quantification of biotin in feed, food, tablets, and premixes using HPLC-MS/MS Text. / U. Holler, F. Wachter, C. Wehrli, C. Fizet. // J. Chromatogr. B.-2006.-V. 831.-I. 1−2.-P. 8−16.
  50. Zempleni, J. Identification of biotin sulfone, bisnorbiotin methyl ketone and tetranorbiotin-l-sulfoxide in human urine Text. / J. Zempleni, D. B. McCormick, D. M. Mock. // Am. J. Clin. Nutr. 1997. — V. 65. — P. 508.
  51. Vahteristo, L. Application of an HPLC assay for the determination of folate derivatives in some vegetables, fruits and berries consumed in Finland Text. / L. Vahteristo, K. Lehikoinen, V. Ollilainen, P. Varo. // Food Chem. 1997. -V. 59.-P. 589.
  52. Pfeiffer, Π‘. M. Determination of folate in cereal-grain food products using trienzyme extraction and combined affinity and reversed-phase liquid chromatography Text. / Π‘. M. Pfeiffer, L. M. Rogers, J. F. Gregory. // J.
  53. Agric. Food Chem. 1997. — V. 45. — P. 407.
  54. Jacoby, Π’. T. Liquid chromatographic determination of folic acid in infant formula and adult medical nutritionals Text. / Π’. T. Jacoby, F. T. Henry. // J. AOAC Int. 1992. -V. 75. — P. 891.
  55. Shimoda, M. Simultaneous determination of tetrahydrofolate and N5-methyltetrahydrofolate in pig plasma by high-performance liquid chromatography with electrochemical detection Text. / M. Shimoda. // J. Vet. Med. Sci. 1992. — V. 54. — P. 249.
  56. Iwase, H. Determination of pantothenic acid in an elemental diet by column-switching highperformance liquid chromatography with ultraviolet detection Text. / H. Iwase. Ill Anal. Sci. 1993. — V. 9. P. — 149.
  57. Romera, J. M. Determination of pantothenic acid in infant milk formulas by high performance liquid chromatography Text. / J. M. Romera, M. Ramirez, A. Gil. // J. Dairy Sci. 1996. — V. 79. — P. 523.
  58. Moreno, P. Determination of eight water- and fat-soluble vitamins in multivitamin pharmaceutical formulations by high-performance liquid chromatography Text. / P. Moreno, V. Salvado. // J. of Chromatogr. A. -2000.-V. 870.-P. 207−215.
  59. Li, H. B. Simultaneous determination of twelve water- and fat-soluble vitamins by high-performance liquid chromatography with diode array detection Text. / H. B. Li, F. Chen // Chromatographia 2001. — V. 54. — I. 3−4.-P. 270−273.
  60. Π’.Π”. БоврСмСнная планарная хроматография ВСкст. / ΠšΡ€Π°ΡΠΈΠΊΠΎΠ² Π’. Π”. // Π–ΡƒΡ€Π½. Аналит. Π₯ΠΈΠΌ. 2003. — Π’. 58. — β„–. 8. — Π‘. 792 807.
  61. , О. Π“. Руководство ΠΏΠΎ ΡΠΎΠ²Ρ€Π΅ΠΌΠ΅Π½Π½ΠΎΠΉ тонкослойной Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΈ ВСкст. / О. Π“. Π›Π°Ρ€ΠΈΠΎΠ½ΠΎΠ². М. — 1994. — 312 с.
  62. , А. ВысокоэффСктивная тонкослойная хроматография ВСкст. / А. Златкис, Π . ΠšΠ°ΠΉΠ·Π΅Ρ€. М.: «ΠœΠΈΡ€», 1979. — 245 с.
  63. Pelizzetti, Π•. Analytical applications of organazed molecular assemblies. Text. / E. Pelizzetti, E.Pramauro. // Analytica Chimica Acta. 1985. — V. 169. -P. 1−29.
  64. Weinberger, R. Liquid chromatographic phosphorescence detection with micellar chromatography and postcolomn reaction modes Text. / R. Weinberger, P. Yarmchuk, L.J.Cline // Analit. Chem. 1982. — V.54. -P.1552−1558.
  65. , Π•.Π“. ΠŸΠΎΠ²Π΅Ρ€Ρ…Π½ΠΎΡΡ‚Π½ΠΎ-Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Π΅ вСщСства Π² Ρ‚онкослойной Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΈ ВСкст. / Π•. Π“. Π‘ΡƒΠΌΠΈΠ½Π°, Π‘. Н. Π¨Ρ‚Ρ‹ΠΊΠΎΠ², Н. Π’. Π’ΡŽΡ€ΠΈΠ½Π° // Π–ΡƒΡ€Π½. Аналит. Π₯ΠΈΠΌ. 2003. — Π’. 58.
  66. , Π•.Π“. ΠŸΡ€ΠΈΠΌΠ΅Π½Π΅Π½ΠΈΠ΅ мицСллярных ΠΏΠΎΠ΄Π²ΠΈΠΆΠ½Ρ‹Ρ… Ρ„Π°Π· для раздСлСния ΠΏΡ€ΠΎΠΈΠ·Π²ΠΎΠ΄Π½Ρ‹Ρ… флуорСсцСина ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ Π’Π‘Π₯ ВСкст. / Π•. Π“. Π¨Ρ‚Ρ‹ΠΊΠΎΠ², Π•. Π“. Π‘ΡƒΠΌΠΈΠ½Π°, Π•. Π’. ΠŸΠ°Ρ€ΡˆΠΈΠ½Π°, Π‘. Π‘. Π›ΠΎΠΏΡƒΡ…ΠΎΠ²Π° // Π–ΡƒΡ€Π½. Аналит. Π₯ΠΈΠΌ. 1995. — Π’. 50. — β„–. 7. — Π‘. 747−751.
  67. Armstrong, D.W. Thin layer chromatographic separation of pesticides, decachlorobihenil and nucleosides with micellar solutions. Text. / D.W.Armstrong, R.Q.Terrill. // Anal. Chem. 1979. — V. 51. — I. 13. — P. 2160−2162.
  68. , Π•.Π“. ΠŸΡ€ΠΈΠΌΠ΅Π½Π΅Π½ΠΈΠ΅ повСрхностно-Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Ρ… вСщСств для ΠΌΠΎΠ΄ΠΈΡ„ΠΈΠΊΠ°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΏΠΎΠ΄Π²ΠΈΠΆΠ½Ρ‹Ρ… ΠΈ Π½Π΅ΠΏΠΎΠ΄Π²ΠΈΠΆΠ½Ρ‹Ρ… Ρ„Π°Π· ΠΏΡ€ΠΈ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠΈ ΠΏΠΈΡ‰Π΅Π²Ρ‹Ρ… краситСлСй ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ Π’Π‘Π₯ ВСкст. / Π•. Π“. Π‘ΡƒΠΌΠΈΠ½Π°, Π•.Π’.
  69. , Н.Π’. Π’ΡŽΡ€ΠΈΠ½Π°, Π‘.Н. Π¨Ρ‚Ρ‹ΠΊΠΎΠ² // «Π—аводская лаборатория. Диагностика ΠΌΠ°Ρ‚Π΅Ρ€ΠΈΠ°Π»ΠΎΠ²». 2001. — Π’. 67. — β„–. 5. — Π‘. 5−8.
  70. Armstrong, D.W. Selectivity in pseudophase liquid chromatography. Text. / D.W.Armstrong, G.Y.Stine. // Anal. Chem. 1983. — V.55. — P. 2317−2320.
  71. Peteghem, C. Ion-pair extraction and ion-pair chromatography for rapid identification of ionic food dyes. Text. / C. Van Peteghem and J.Bijl. // J. of Chromatogr. 1981. — V.210. — P .113−120.
  72. Wilson, I.D. Ion-pair reversed-phase thin-layer chromatography of organic asid. Text. / I.D.Wilson. // J. of Chromatogr. 1986. — V.354. — P.99−106.
  73. Szepesi, G. Optimization of reversed-phase ion-pair chromatography by over-pressured thin-layer chromatography. Text. / G. Szepesi, Z. Vegh, Zs. Gyulay and M.Gazdag. // J. of Chromatog. 1984. — V.290. — P. 127−134.
  74. Kocjan, B. Chromatographic and spectroscopic comparison of the hydrophobicity of vitamins D2. and D[3] [Text] / B. Kocjan, J. Sliwiok // J. Planar Chromatogr. Mod. TLC. 1994. — V. 7. — P. 327−328.
  75. Sliwiok, J. Text. / J. Sliwiok, B. Kocjan. // Fat. Sci. Technol. 1992. — V. 94.-P. 157−159.
  76. Strohecker, R. Vitamin Assay, Tested Methods Text. / R. Strohecker, H. M. Henning. Weinheim: Verlag Chemie, 1966.
  77. Ranny, M. Thin-Layer Chromatography with Flame Ionization Detection
  78. Text. / M. Ranny. Prague, 1987.
  79. Linnell, J.C. Hydrophilic vitamins Text. / J.C. Linnell // Handbook of Thin-Layer Chromatography- eds. J. Sherma, B. Fried. Chromatographic Science Series V. 55. — New York: Marcel Dekker. — 1991. — P. 1048−1054.
  80. Ziporin, Z.Z. Thin-layer chromatography for the separation of thiamine, N'-methylnicotinamide, and related compounds. Text. / Z.Z. Ziporin, P.P. Waring // Methods Enzymol. 1970. -1. 18A. — P. 86−87.
  81. Funk, W. Characterization and quantitative HPTLC determination of vitamin B1 (thiamine hydrochloride) in a pharmaceutical product. Text. / W. Funk, P. Derr // J. Planar Chromatogr. 1990. — V. 3. — P. 149−152.
  82. Diaz, A. Thin-layer chromatography and fibre-optic fluorimetric quantitation of thiamine, riboflavin and niacin Text. / A. Diaz, A. Paniagua, F. Sanchez. // J. Chromatogr. A. 1993. — V. 655. — P. 39−43.
  83. Bhushan, R. Text. / R. Bhushan, I. Ali. // Arch. Pharm. 1987. — V. 320. -P. 1186−1187.
  84. Gliszczynska, A. Chromatographic determination of flavin derivatives in baker’s yeast Text. / A. Gliszczynska, A. Koziolowa. // J. Chromatogr. A.1998.-V. 822.-P. 59−66.
  85. Gliszczynska-Swiglo, A. Chromatographic determination of riboflavin and its derivatives in food Text. / A. Gliszczynska-Swiglo, A. Koziolowa. // J. Chromatogr. A.-2000.-V. 881.-P. 285−297.
  86. Gliszcznska, A. Chromatographic identification of a new flavin derivative in plain yogurt Text. / A. Gliszcznska, A. Koziolowa. // J. Agric. Food Chem.1999.-V. 47.-P. 3197−3201.
  87. Matyska, M. Chromatographic analysis of water-soluble vitamins by thin-layer chromatography in sandwich-type chambers Text. / M. Matyska, E.
  88. Soczewinski. I I Farm. PoL. 1985. — V. 41. — P. 386−389.
  89. Bhushan, R. Text. / R. Bhushan, I. Ali. // Arch. Pharm. 1987. — V. 320. -P. 1186−1187.
  90. Nag, S. Identification and quantitation of panthenol and pantothenic acid in pharmaceutical preparations by thin- layer chromatograpgy and desitometry Text. / S. Nag, S. Das. // J. AOACInt. 1992. — V. 75. — P. 898−901.
  91. Ahrens, H. Pyridoxine chemistry: XXI. Thin-layer chromatography and thin-layer electrophoresis of compounds in the vitamin B6 group Text. / H. Ahrens, W. Korytnyk. // Anal. Biochem. 1969. — V. 30. — P. 41320.
  92. Yin, P. Text. / P. Yin, H. Li, C. Yan. // Chin. J. Chromatogr. 1994. — V. 12. -P 35.
  93. Frappier, F. Biotin Text. / F. Frappier, M. Gaudry. // Modern chromatographic analysis of the vitamins- eds. A. DeLeenheer, W. Lambert, G. DeRuyter. New York: Marcel Dekker, 1985. — 477. p.
  94. Shimada, K. Polymorphism of d-biotin Text. / K. Shimada, Y. Nagase, U. Matsumoto. // Yakugaku Zasshi. 1969. — V. 899. — P. 436.
  95. Krzek, J. Densitometric determination of impurities in drugs: Part IV. Determination of N-(4-aminobenzoyl)-L-glutamic acid in preparations of folic acid Text. / J. Krzek, A. Kwiecien. // J. Pharm. Biomed. Anal. 1999. -V. 21. -P. 451−457.
  96. Beljaars, P. R. Assay of L (+)-ascorbic acid in buttermilk by densitometric transmittance measurement of the dehydroascorbic acid Text. / P. R. Beljaars, W. V. S. Horrock, Π’. M. M. Rondags. // J. Assoc. Off. Anal. Chem. 1974. — V. 57.-P. 65−69.
  97. Linnell, J.. Chromatographic and bioautographic estimation of plasmacobalamins in various disturbances of vitamin Π’12 metabolism Text. / J. C. Linnell, A. Hoffbrand, T. J. Peters, D. M. Matthews // Clin. Sci. 1971. — V. 40.-P. 1−16.
  98. Okamura, M. Distribution of ascorbic acid analogs and associated glycorides in mushrooms Text. / M. Okamura. // J. Nutr. Sci. Vitaminol. 1994. — V. 40.-P. 81−94.
  99. Roomi, M.W. Thin-layer chromatographic separation of isomers of ascorbic acid and dehydroascorbic acid as sodium borate complexes on silica gel and cellulose plates Text. / M. W. Roomi, C. S. Tsao. // J. Agric. Food Chem. -1998.-V. 46.-P. 1406−1409.
  100. Aburjai, T. Second derivative ultraviolet spectrophotometry and HPTLC for the simultaneous determination of vitamin Π‘ and dipyrone. Text. / T. Aburjai, Π’. I. Amro, K. Aiedeh, M. Abuirjeie, S. Al-Khalil. // Pharmazie. -2000.-V. 55.-P. 751−754.
  101. Di Mattio, J. A comparative study of ascorbic acid entry into aqueous and vitreous tumors of the rat and guinea pig Text. / J. Di Mattio. // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 1989. -V. 30. — P. 2320−2331.
  102. Diaz, A.N. Thin-layer chromatography and fibre-optic fluorimetric quantitation of thiamine, riboflavin and niacin Text. / A. N. Diaz, A. G. Paniaqua, F. G. Sanchez. // J. Chromatogr. A. 1993. — V. 655. — P. 393.
  103. Bhushan, R. Improved separation of vitamin Π’ complex and folic acid using some new solvent systems and impregnated TLC Text. / R. Bhushan, V. Parshad. // J. Liq. Chromatogr. Relat. Technol. 1999. — V. 22. — P. 16 071 623.
  104. Bauer-Petrovska, B. Mineral and water soluble vitamin content in the Kombucha drink Text. / B. Bauer-Petrovska, L. Petrushevska-Tozi. // Int. J. Food Sci. Technol. 2000. — V. 35. P. 201−205.
  105. Postaire, E. Simultaneous determination of water-soluble vitamins by overpressure layer chromatography and photodensitometric detection Text. / E. Postaire, M. Cisse, M.D. Le Hoang, D. Pradeau. // J. Pharm. Sci. 1991. — V.80.-P. 368−370.
  106. Nurok, D. Planar electrochromatography Text. / D. Nurok. // J. Chromatogr. A. 2004. — V. 1044. -1. 1−2. — P. 83−96.
  107. Pretorius, V. Electroosmosis: A new concept for high-speed liquid chromatography Text. / V. Pretorius, B. J. Hopkins, J. D. Schieke. // J. Chromatogr. 1974. V. 99. — P. 23−30.
  108. Pukl, M. Planar electrochromatography Part 1. Planar electrochromatography on non-wetted thin-layers Text. / M. Pukl, M. Prosek, R. E. Kaiser. // Chromatographia. 1994. — V. 38. — P. 83−87.
  109. Malinowska, I. Planar Electrochromatography on Nonwetted Layers with Binary Mobile Phases Text. / I. Malinowska. // J. Planar Chromatogr. -2000.-V. 13.-P. 307−313.
  110. Malinowska, I. The effect of electric fields on solute migration and mixture separation in TLC Text. / I. Malinowska, J. K. Rozylo, A. Krason. // J. Planar Chromatogr. 2002. — V. 15. — P. 418−424.
  111. Howard, A. G. Electroosmotically driven thin-layer electrochromatography on silica media Text. / A. G. Howard, T. Shafik, F. Moffatt, I. D. Wilson. // J. Chromatogr. A. 1999. — V. 844. — P. 333−340.
  112. Nurok, D. Role of buffer concentration and applied voltage in obtaining a good separation in planar electrochromatography Text. / D. Nurok, J. M. Koers, M. A. Carmichael. // J. Chromatogr. A. 2003. — V. 983. — P. 247 253.
  113. Dzido, Π’. H. Application of a horizontal DS chamber to planar electrochromatography Text. / Π’. H. Dzido, R. Majewski, B. Polak, W. Golkiewicz, E. Soczewinski. // J. Planar Chromatogr. 2003. — V. 16. — P. 176−182.
  114. Nurok, D. The performance of planar chromatography using electroosmotic flow Text. / D. Nurok, M. C. Frost, C. L. Pritchard, D. M. Chenoweth. // J. Planar Chromatogr. 1998. — V. 11. — P. 244−246.
  115. Nurok, D. Separation using planar chromatography with electroosmotic flow
  116. Text. / D. Nurok, M. C. Frost, D. M. Chenoweth. // J. Chromatogr. A. -2000.-V. 903.-P. 211−218.
  117. Nurok, D. Variables that affect performance in planar chromatography with electroosmotic flow Text. / D. Nurok, J. M. Koers, D. A. Nyman, W.- M. Liao. //J. Planar Chromatogr. -2001. -V. 14. P. 409−414.
  118. Nurok, D. The performance of planar electrochromatography in a horizontal chamber Text. / D. Nurok, J. M. Koers, M. A. Carmichael, T. A. Dzido. // J. Planar Chromatogr. 2002. — V. 15. — P. 320−323.
  119. Morzunova, T. G. Capillary electrophpresis in pharmaceutical analysis (a review) Text. / T. G. Morzunova. // J. Pharm. Chem. 2006. — V. 40. -1. 3. -P. 158−170.
  120. Руководство ΠΏΠΎ ΠΊΠ°ΠΏΠΈΠ»Π»ΡΡ€Π½ΠΎΠΌΡƒ элСктрофорСзу ВСкст. / Под Ρ€Π΅Π΄. A.M. Π’ΠΎΠ»ΠΎΡ‰ΡƒΠΊΠ°. М. — 1996. — 112.
  121. Новый справочник Ρ…ΠΈΠΌΠΈΠΊΠ° ΠΈ Ρ‚Π΅Ρ…Π½ΠΎΠ»ΠΎΠ³Π°. АналитичСская химия. ВСкст. Π’ 3 Ρ‡. Π§. 1. / БПб: ΠœΠΈΡ€ ΠΈ ΡΠ΅ΠΌΡŒΡ, 2002. 964 с.
  122. Altria, K. D. Analysis of Pharmaceuticals by Capillary Electroforesis Text. / K. D. Altria. // Weisbaden: Vieweg Press, 1998.-285 p.
  123. Ward, Π‘. M. The application of capillary electrophoresis to the determination of total niacin in concentrated yeast spreads Text. / Π‘. M. Ward, V. C. Trenerry, I.Pant.//FoodChem.- 1997.-V. 58.-I. l.-P. 185−192.
  124. Schiewe, J. Application and optimization of capillary zone electrophoresis invitamin analysis Text. / J. Schiewe, Y. Mrestani, R. H. Neubert. // J. Chromatogr. A. 1995. — V. 717. -1. 1−2. — P. 255−259.
  125. Fotsing, L. Determination of six water-soluble vitamins in a pharmaceutical formulation by capillary electrophoresis Text. / L. Fotsing, M. Fillet, I. Bechet, P. Hubert, J. Crommen. // J. Pharm. Biomed. Anal. 1997. — V. 15. -I. 8.-P. 1113−1123.
  126. Mrestani, Y. Thiamine analysis in biological media by capillary zone electrophoresis with a high-sensitivity cell Text. / Y. Mrestani, R. H. Neubert. // J. Chromatogr. A. 2000. — V. 871. -1. 1−2. — P. 351−356.
  127. Le, Π’. H. Application of micellar electrokinetic chromatography for the separation of retinoids Text. / Π’. H. Le, J. C. Kraak, W. Π’. Kok. // J. Pharm. Biomed. Anal. 2000. — V. 22. -1. 5. — P. 879−885.
  128. Profumo, A. Micellar electrokinetic capillary chromatography of three natural vitamin A derivatives Text. / A. Profumo, V. Profumo, G. Vidali. // Electrophoresis.- 1996.-V. 17.-I. 10.-P. 1617−1621.
  129. Hsieh, Y. Z. Separation of retinoids by micellar electrokinetic capillary chromatography Text. / Y. Z. Hsieh, K. L. Kuo. // J. Chromatogr. A. 1997. -V. 761.-1.1−2.-P. 307−313.
  130. Fujivvara, S. Analysis of water-soluble vitamins by micellar electrokinetic capillary chromatography Text. / S. Fujiwara, S. Iwase, S. Honda. // J. Chromatogr. 1988. — V. 447. — P. 133−140.
  131. Blanco Gomis, D. Micellar electrokinetic capillary chromatography analysis of water-soluble vitamins Text. / D. Blanco Gomis, L. L. Gonzalez, D. G. Alvarez. // Anal. Chim. Acta. 1999. — V. 396. -1. 1. — P. 55−60.
  132. Tjornelund, J. Separation of neutral substances by non-aqueous capillary electrophoresis through interactions with cationic additives Text. / J. Tjornelund, S. Honore Hansen. // J. Chromatogr. A. 1997. — V. 792. — P. 475−482.
  133. Boso, R.L. Microemulsion electrokinetic chromatography with different organic modifiers: separation of water- and lipid-soluble vitamins Text. / R.L. Boso, M. S. Bellini, I. Miksik, Z. Deyl. // J. Chromatogr. A. 1995. — V. 709.-I. l.-P. 11−19.
  134. Altria, K.D. Application of microemulsion electrokinetic chromatography to the analysis of a wide range of pharmaceuticals and excipients Text. / K.D. Altria. // J. Chromatogr. A. 1999. — V. 844. -1. 1−2. — P. 371−386.
  135. Hempel. G. Strategies to improve the sensitivity in capillary electrophoresis for the analysis of drugs in biological fluids Text. / G. Hempel. // Electroforesis. 2000. — V. 21. — P. 691−698
  136. Wu, Ch. -H. Determination of aminopyrine and metabolite by capillary electrophoresis-electrochemical detection Text. / Ch. -H. Wu, M.-Ch. Chen, A.-K. Su, P.-Y. Shu, Sh.-H. Chou, Ch. -H. Lin. // J. Chromatogr. B. 2003. -V. 785.-P. 317−325
  137. Quirino, P. Exceeding 5000-fold concentration of analytes in micellar electrokinetic chromatography Text. / P. Quirino, S. Terabe. // Science. -1998. -V. 282 (5388). P. 465−468
  138. Osbourn, D. M. On-line preconcentration methods for capillary electrophoresis Text. / D. M. Osbourn, D. J. Weiss, Π‘. E. Lunte. // Electrophoresis. 2000. — V. 21. — P. 2768 — 2779
  139. McGrath, G. Large-volume sample stacking of selected drugs of forensic significance by capillary electrophoresis Text. / G. McGrath, W.F. Smyth. // J. Chromatogr. B. 1996. — V. 681. — P. 125−131
  140. Britz-McKibbin, P. On-line preconcentration strategies for trace analysis of metabolites by capillary electrophoresis Text. / P. Britz-McKibbin, S. Terabe. // J. Chromatogr. A. 2003. — V. 1000. — P. 917−934
  141. Quirino, J. P. On-line concentration of neutral analites for micellar electrokinetic chromatography. 3. Stacking with reverse migrating micelles Text. / J. P. Quirino, S. Terabe. // Anal. Chem. 1998. — V. 70. — P. 149 -157
  142. Britz-McKibbin, P. Velocity difference induced focusing of nucleotides in capillary electrophoresis with a dynamic pH-junction Text. / P. Britz-McKibbin, G. M. Bebault., D. D. Y. Chen. // Analytical Chemistry. 2000. -V. 72.-№ 8.-P. 1729−1735.
  143. Pretorius, V. Electroosmosis: A new concept for high-speed liquid chromatography Text. / V. Pretorius, B.J. Hopkins, J.D. Schieke. // J. Chromatogr. 1974. — V. 99. — P. 23−30.
  144. Euerby, M. R. Capillary electrochromatography in the pharmaceutical industry. Practical reality or fantasy? Text. / M. R. Euerby, Π‘. M. Johnson, K. D. Bartle, P. Myers, S. C. P. Roulin. // Anal. Commun. 1996. — V. 33. -P. 403−405.
  145. Simal-Gandara, J. The Place of Capillary Electrochromatography Among Separation Techniques-A Review Text. / J. Simal-Gandara. // Crit. Rev. Anal. Chem. 2004. — V. 34. — P. 85−94.
  146. Tang, Q. Column technology for capillary electrochromatography Text. / Q. Tang, M. L. Lee. // Trends Anal. Chem. 2000. V. 19. β„–. 11. P. 648−663.
  147. Colon, L. A. Packing columns for capillary electrochromatography Text. / L. A. Colon, T. D. Maloney, A. M. Fermier. // J. of Chromatogr. A. 2000. -V. 887-№ 1−2.-P. 43−53.
  148. Jinno, K. Recent trends in open-tubular capillary electrochromatography Text. / K. Jinno, H. Sawada. // Trends Anal. Chem. 2000. — V. 19. — № 11. -P. 664−675.
  149. Svec, F. Design of the monolithic polymers used in capillaryelectrochromatography columns Text. / F. Svec, E. C. Peters, D. Sykora, J. M. J. Frechet. // J. Chromatogr. A. 2000. — V. 887. — № 1−2. — P. 3−29.
  150. Colon, L. A. Packing columns for capillary electrochromatography Text. / L. A. Colon, T. D. Maloney, A. M. Fermier // J. of Chromatogr. A. 2000. -V. 887.-№ 1−2.-P. 43−53.
  151. Robson, M. M. Capillary electrochromatography using columns packed with a supercritical-fluid carrier Text. / M. M. Robson, S. Roulin, S. M. Shariff et al. //Chromatographia. 1996. -V. 43. -№ 5−6. — P. 313−321.
  152. Yan, C. Electrokinetic packing of capillary columns C. Yan. // U.S. Patent. 5 453 163.- 1993.
  153. Maloney, T. D. A drying step in the protocol to pack capillary columns by centripetal forces for capillary electrochromatography Text. / T. D. Maloney, L. A. Colon. // Electrophoresis. 1999. V. 20. — № 12. — P. 2360−2365.
  154. Jiskra, J. Stationary and mobile phases in capillary electrochromatography Text. / J. Jiskra, H. A. Claessens, C. A. Cramers. // J. Sep. Sci. 2003. — V. 26.-P. 1305−1330.
  155. Li, Y. Capillary electrochromatography of peptides and proteins Text. / Y. Li, R. Xiang, J. A. Wilkins, C. Horvath // Electrophoresis. 2004. — V. 25. -P. 2242−2256.
  156. Zhang, S. Rapid separation of peptides and proteins by isocratic capillary electrochromatography at elevated temperature Text. / S. Zhang, J. Zhang, Cs. Horvath. // J. Chromatogr. A. 2001. — V. 914. — P. 189−200.
  157. Yu, C. Fabrication of porous polymer monoliths covalently attached to the walls of channels in plastic microdevices Text. / C. Yu, F. Svec, J. M. J. Frechet. // Electrophoresis. 2000. — V. 21. — P. 120−127.
  158. Jia, L. Pressurized capillary electrochromatographic analysis of water-solublevitamins by combining with on-line concentration technique Text. / L. Jia, Y. Liu, Y. Du, D. Xing. // J. Chromatogr. A. 2007. — V. 1154. — P. 416−422.
  159. Fanali, S. Separation of 8-, y- and a-tocopherols by CEC Text. / S. Fanali, P. Catarcini, M. G. Quaglia, E. Camera, M. Rinaldi, M. Picardo // J. Pharm. Biomed. Anal. 2002. — V. 29. — P. 973−979
  160. De Vries, E. J. Dried skimmed milk determination of vitamin A -colorimetric and liquid chromatographic methods Text. / E. J. de Vries, Ch. C. J. Oiling, U. Manz, E. Tagliaferri. // Int. Dairy Fed. — 1993. — V. 285. — P. 53.
  161. Blott, A. D. Rapid determination of a-tocopheryl acetate in animal feeds by high performance liquid chromatography Text. / A. D. Blott, D. C. Woollard. // J. Micronutr. Anal. 1986. — V. 2. — P. 259.
  162. McGeachin, R. B. Determination of carotenoid pigments, retinol, and a-tocopherol in feeds, tissues, and blood serum by normal phase high performance liquid chromatography Text. / R. B. McGeachin, C. A. Bailey // Poultry Sci. 1995. — V. 74. — P. 407.
  163. Got, L. Simultaneous determination of retinyl esters and retinol in human livers by reversed-phase high-performance liquid chromatography Text. / L. Got, T. Gousson, E. Delacoux. // J. Chromatogr. B. 1995. — V. 668. — P. 233.
  164. Shimada, K. Quantitative determination of 25-hydroxy-vitamin D3 3-sulphate in human plasma using high performance liquid chromatography
  165. Text. / К. Shimada, К. Mitamura, N. Kitama. // Biomed. Chromatogr. -1995.-V. 9.-P. 229.
  166. Fox, J. B. Fluorometric determination of thiamin vitamers in chicken Text. / J. B. Fox, S. A. Ackerman, D. W. Thayer. // J. AOAC Int. 1992. — V. 75. -P. 346.
  167. Vanderslice, J. T. Liquid chromatographic analysis of thiamin and its phosphates in food products using amprolium as an internal standard Text. / J. T. Vanderslice, M. H. A. Huang. // J. Micronutr. Anal. 1986. — V. 2. — P. 189.
  168. Gerrits, J. Determination of thiamin and thiamin phosphates in whole blood by reversed-phase liquid chromatography with precolumn derivatization Text. / J. Gerrits, H. Eidhof, J. W. I. Brunnekreeft, J. Hessels. // Meth. Enzymol. 1987. -V. 279. P. 74.
  169. Cann-Moisan, C. Determination of flavin adenine dinucleotide in biological tissues by high-performance liquid chromatography with electrochemical detection Text. / C. Cann-Moisan, J. Caroff, F. Girin. // J. Chromatogr. -1988.-V. 442.-P. 441.
  170. Tyler, T. A. Liquid chromatographic determination of total niacin in beef, semolina and cottage cheese Text. / T. A. Tyler, J. A. Genzale. // J. Assoc. Off. Anal. Chem. 1990. -V. 73. — P. 467.
  171. Vidal-Valverde, C. Determination of available niacin in legumes and meat by high performance liquid chromatography Text. / C. Vidal-Valverde, A. Reche. // J. Agric. Food Chem. 1991. — V. 39. — P. 116.
  172. Stein, J. High-performance liquid chromatographic determination of nicotinic acid and nicotinamide in biological samples applying post-column derivatization resulting in bathmochrome absorption shifts Text. / J. Stein,
  173. A. Hahn, G. Rehner. // J. Chromatogr. B. 1995. — V. 665. — P. 71.
  174. Reynolds, Π’. M. A simple internally-standardised isocratic HPLC assay for vitamin B-6 in human serum Text. / Π’. M. Reynolds, A. Brain. // J. Liq. Chromatogr. 1992. — V. 15. — P. 897.
  175. Vanderslice, J. T. Quantitative determination of ascorbic, dehydroascorbic, isoascorbic, and dehydroisoascorbic acid by HPLC in foods and other matrices Text. / J. T. Vanderslice, D. J. Higgs // J. Nutr. Biochem. 1993. -V. 4.-P. 184.
  176. Stachowiak, Π’.Π’. Chip electrochromatography Text. / Π’.Π’. Stachowiak, F. Svec, J.M.J. Frechet // J. Chromatogr. A. 2004. — V. 1044. — P. 97−111.
  177. Berezkin, V.G. Electroosmotic thin-layer chromatography Text. / V.G. Berezkin, E.F. Litvin., A.O. Balushkin, J.K. Rozylo, I. Mainovska. // Chem. Anal. (Warsaw). 2005. — V. 50. — P. 359.
  178. De Fatima Alpendurada, M. Solid-phase microextraction: a promising technique for sample preparation in environmental analysis Text. / M. De Fatima Alpendurada. // J. Chromatogr. A. 2000. — V. 889. — № 1−2. — P. 314.
  179. Lord, H. Evolution of solid-phase microextraction technology Text. / H. Lord, J. Pawliszyn. // J. Chromatogr. A. 2000. — V. 885. — № 1−2. — P. 153 193.
Π—Π°ΠΏΠΎΠ»Π½ΠΈΡ‚ΡŒ Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΡƒ Ρ‚Π΅ΠΊΡƒΡ‰Π΅ΠΉ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚ΠΎΠΉ