Изучение регенерационной и трансформационной компетентности сахарной свеклы (Beta vulgaris L.) и создание трансгенных растений, устойчивых к гербициду Баста
Диссертация
Показано, что наиболее эффективным способом регенерации побегов in vitro для сахарной свеклы является прямой органогенез из многоклеточных эксплантов. При использовании данного способа, частота побегообразования составила 35−97% (в зависимости от генотипа и типа экспланта), в то время как при регенерации через каллус 10−17,1%. Предложена схема оптимизированного селекционного процесса… Читать ещё >
Содержание
- 1. СПИСОК ИЛЛЮСТРАЦИЙ
- 2. СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
- 3. ВВЕДЕНИЕ
- 4. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
- 4. 1. Биология и особенности селекции сахарной свеклы {Beta vulgaris L.)
- 4. 2. Основные этапы генетической трансформации и получения генетически модифицированного растения (ГМР)
- 4. 2. 1. Культура клеток и морфогенез растений in vitro
- 4. 2. 2. Влияние генотипа растения на компетентность к регенерации in vitro
- 4. 2. 3. Влияние типа и состояния экспланта на морфогенез in vitro
- 4. 2. 5. Влияние условий культивирования клеток и тканей на процессы морфогенеза
- 4. 3. Клональное микроразмножение растений
- 4. 4. Генетическая трансформация растительных клеток
- 4. 4. 1. Способы генетической трансформации растений
- 4. 4. 2. Молекулярные механизмы и факторы влияющие на агробактериальную трансформацию
- 4. 4. 3. Векторные системы на основе Ti-плазмид
- 4. 4. 4. Бактериальные штаммы
- 4. 4. 5. Гены, используемые для трансформации
- 4. 4. 6. Селекция как этап трансформации
- 4. 5. Сахарная свёкла как объект генно-инженерных манипуляций
- 5. 1. Растительный материал
- 5. 2. Методы культивирования сахарной свеклы in vitro
- 5. 2. 1. Состав сред и условия культивирования
- 5. 2. 2. Получение стерильного растительного материала
- 5. 2. 3. Изоляция сегментов гипокотиля и индукция образования каллуса
- 5. 2. 4. Регенерация побегов из морфогенного каллуса
- 5. 2. 5. Изоляция семядолей и индукция образования каллуса
- 5. 2. 6. Индукция образования побегов из семядольных узлов
- 5. 2. 7. Клональное микроразмножение
- 5. 2. 8. Индукция регенерации побегов из черешков листа
- 5. 2. 9. Укоренение побегов и адаптация растений к почвенным условиям
- 5. 3. Культура агробактерии
- 5. 3. 1. Бактериальные штаммы и плазмиды
- 5. 3. 2. Подготовка агробактериальной культуры к трансформации
- 5. 4. 1. Сокультивация эксплантатов с Agrobacterium tumefaciens
- 5. 4. 2. Определение оптимальной концентрации селективного агента
- 5. 5. Молекулярно-генетический анализ
- 5. 6. Определение GFP свечения
- 5. 7. GUS окрашивание
- 5. 8. Анализ устойчивости трансгенных линий к действию гербицида Баста
- 5. 9. Статистическая обработка данных
- 6. 1. Получение стерильного растительного материала
- 6. 2. Изучение влияния состава питательной среды, типа экспланта и генотипа на частоту регенерации побегов in vitro
- 6. 2. 1. Индукция образования каллуса
- 6. 2. 2. Индукция образования каллуса из семядолей
- 6. 2. 3. Регенерация побегов из морфогенного каллуса
- 6. 2. 4. Регенерация побегов из семядольного узла
- 6. 2. 5. Клональное микроразмножение побегов
- 6. 2. 6. Регенерация побегов из черешка листа
- 6. 3. Оптимизация параметров укоренения побегов in vitro и адаптация растений из культуры in vitro к условиям искусственного климата
- 6. 4. Определение оптимальных параметров агробактериальной трансформации на основе транзиентной экспрессии маркерных генов
- 6. 5. Определение оптимальной селективной концентрации фосфинотрицина in vitro
- 6. 6. Получение трансгенных растений сахарной свеклы с геном bar
- 6. 7. Оценка устойчивости трансгенных линий к действию гербицида Баста
- 6. 8. Разработка селекционного процесса с участием трансгенной составляющей
Список литературы
- D’Halluin К., Bossut М., Bonne Е., Mazur В., Leemans J. and Botterman J. Transformation of sugarbeet {Beta vulgaris L.) and evaluation of herbicide resistance in transgenic plants // Biotechnology. 1992. V. 10. P. 309−314.
- Mannerlof M., Tuvesson S., Steen P., Tenning P. Transgenic sugar beet tolerant to glyphosate // Euphytica 1997. V. 94. P. 83−91.
- Балков И .Я. В новых условиях новые решения // Сахарная свекла. 2004. № 4.
- Спичак В.В., Дудкин В. М., Сапронов Н. М. Свеклосахарный комплекс России в 2005 году: некоторые итоги // Сахарная свекла. 2006. № 2. С. 2−5.
- Апасов И. В., Парфенов A.M., Безлер Н. В. Сортовой состав сахарной свеклы и его влияние на эффективность свеклосахарного производства России // Сахарная свекла. 2004. № 1.
- Сурков Н.А., Турьянский А. В., Хмельницкий А. А., Кондратенко. Свеклопроизводство // Белгород. 2002.-160 с.
- Мазлумов A.M. Пути увеличения производства сахарной свеклы // Воронежское издательство. 1993.^46 с.
- Балков И. Я. Селекция сахарной свеклы на гетерозис//М.: Россельхозиздат. 1978.— 167 с
- Хмельницкий А.А., Жуковский А. С., Черный А. Г., Чурсин А. С. Практикум по свекловодству. Учебное пособие // Белгород, БГСХА. 2004. -82 с.
- Цыренов В.Ж. Основы биотехнологии: Культивирование изолированных клеток и тканей растений: Учебно-методическое пособие // Улан-Удэ: ВСГТУ, 2003. 58с.
- Егорова Т.А., Клунова С. М., Живухина Е. А. Основы биотехнологии//М.: Издательский центр «Академия». 2005. 208 с.
- Ежова Т.А. Генетический контроль тотипотентности растительных клеток в культуре in vitro II Онтогенез. 2003. том 34. № 4. с. 245−252.
- Stahl Y. and Simon R. Plant stem cell niches // Int. J. Dev. Biol. 2005. V. 49. P 479 489.
- Prem L., Bhalla Mohan B. Singh Molecular control of stem cell maintenance in shoot apical meristem // Plant Cell Rep. 2006. V. 25. P. 249−256.
- Kut S.A., Evans D.A., Plant regeneration from cultured leaf explants of eight wild tomato species and two related Slanum species // In vitro, 1982. v. l8. p. 583 589.
- Высоцкий В.А. Регенерационная способность изолированных меристематических верхушек черной смородины и вишни и методы получения из них целых растений // Л.: ВИР, 1978
- Green С. Е., Phillips R. L., Plant regeneration from tissue cultures of maize // Ibid., 1975. v.15. p.417−421.
- Sears R.G., Deckard E.L., Tissue culture variability in wheat: callus induction and plant regeneration // Crop Sci., 1982. v.22. p. 546 550.
- Paterson K.E., Shoot tip culture og Helianthus annuus flowering and development of adventitious and multiple shoots // Am. J. Bot., 1984. v. 71. p.925 931.
- Kaburu M’ribu, Veilleux K, Effect of genotype, explant, subculture interval and environmental conditions on regeneration of shoots from in vitro monoploids of a diploid potato species // Plant Cell Tissue Organ Culture, 1990. v.23. p. 171 173.
- Dovzhenko A. Koop HU. Sugarbeet (Beta vulgaris L.): shoot regeneration from callus and callus protoplasts//Planta, 2003. V.217. P. 374−381.
- Kut S.A., Evans D.A., Plant regeneration from cultured leaf explants of eight wild tomato species and two related Slanum species // In vitro. 1982. V. l 8. P. 583 589.
- Witrzens В., Scowcord W., Downes R., Larkin P.J., Tissue culture and regeneration from sunflower (H. annuus L.) and interspecific hybrids (H. tuberosus x H. annuus) // Plant Cell Tissue Organ Culture. 1988. V. 13. P. 61 76.
- Gurel E., Kazan K. Development of an efficient plant regeneration system in sunflower (H. annuus L.) // Tr. J. Botany. 1998. V. 22. P. 381−387.
- Paterson K.E., Douglas, The role of ethylene in the regeneration of H. annuus (sunflower) plants from callus // Physiol. Plant. 1987. V. 71 P. 151 156.
- Paterson K.E., Shoot tip culture og Helianthus annuus flowering and development of adventitious and multiple shoots // Am. J. Bot. 1984. V. 71. P. 925 931.
- Tetu T, Sangwan RS and Sangwan-Norreel BS Hormonal control of organogenesis and somatic embryogenesis in Beta vulgaris callus//J Exp Bot Vol 1987. V. 38 (188). P. 506−517.
- Алексеева JI. И. Оптимизация условий для морфогенеза картофеля в стерильной культуре В кн. Биология культивируемых клеток и биотехнология//Тез докл. Международной конференции, Новосибирск, 1988. с. 158- 159.
- Никитина Н.И., Федоренко Т. С. Бороков А.Ю. Кульура неоплодотворенных семяпочек подсолнечника // НТБ ВНИИМК. № 3 (106), 1989. С. 14 16.
- Антонова Т. С., Боровков А. Ю., Зезуль Т. Г., Краснянский С. Прямой соматический эмбриогенез из семядолей зрелых и незрелых зародышей подсолнечника// НТБ ВНИИМК, вып. 4 (103), 1988. С. 16 -21.
- Evans D.A.Sharp W.R., Flick С.Е. Growth and behavior of cell cultures. Embryogenesis and organogenesis // In: Plant Tissue Culture: Methods and Applications in Agriculture, Ed. Thorpe Т., Academic Press, New York. 1981. P.45 -113.
- Williams E. G., Maheswarwn G. Somatic embryogenesis: Factors influencing coordinated behavior of cells as an embryogenic group // Ann. Bot. 1986. V. 57. P. 443−462.
- Wernicke, W., Brettell, R., Somatic embryogenesis from Sorghum bicolor leaves//Nature. 1980. V. 287. P. 138−139.
- Gamburg O.L., Eveleigh D.E. Culture methods and defection of glucanases in cultures of wheat and barley // Canad. J. Biochem. 1968. v. 46. N 5. p. 417−421.
- Nitsch J.P., Nitsch C. Science. 1969. V. 163. P. 85−87.
- Murashige Т., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture // Physiol. Plant. 1962. V. 15. P.473−497.
- Gamborg O. The effects of amino acid and ammonium on the growth of plant cells in suspension cultures // Plant Physiol. 1970. V. 45. P. 372−375
- Медведев С.С. Физиология растений: Учебник. СПб.: Изд-во С.-Петерб. Унта. 2004.-336 с.
- Холодова В.П. Рост и метаболизм углеводов в культуре ткани растений. В кн: Культура клеток растений. М.: Наука, 1981.
- Физиология растений: Учебник для студ. вузов / Алехина Н. Д., Балнокин Ю. В., Гавриленко В. Ф. и др.- Под ред. Ермакова И. П. М.: Издательский центр «Академия», 2005. — 640 с.
- Чайлахян М.Х. Гормональная регуляция роста и развития высших растений // Успехи современной биологии. 1982. Т. 95. Вып. 1.
- Полевой В.В. Фитогормоны. JI.: Изд-во Ленингр. ун-та. 1982. с 248.
- Кулаева О.Н., Прокопцева О. С. Новейшие достижения в изучении механизма действия фитогормонов//Биохимия. 2004. № 69. С. 293−310.
- Дерфлинг К. Гормоны растений. Системный подход. М.: Мир, 1985. с. 304.
- Skoog F., Miller С.О. Chemical regulation of growth and organ formation in plant tissue cultured in vitro // Symp. Soc. Exp. Biol. 1957. V. II, P. l 18−131.
- Arnold S Von, Hakman I Regulation of somatic embryo development in Picea abies by abscisic acid (ABA) // J Plant Physiol. 1988. V. 132. P. 164−169
- Langhansova L., Konradova H., Vanek T. Polyethylene glycol and abscisic acid improve maturation and regeneration of Panax ginseng somatic embryos // Plant Cell Rep. 2004. V. 22. P. 725−730.
- Linossier L, Veisseire P, Cailloux F, Coudret A Effects of abscisic acid and high concentrations of PEG on Hevea brasiliensis somatic embryos development // Plant Sci. 1997. V. 124. P. 183−191
- Moghaddam B.E., Masbah M., Yavari N. The effect of in planta TIBA and proline treatment on somatic embryogenesis of sugar beet (Beta vulgaris L.) // Euphytica. 2000. V. 112. P. 151−156.
- Катаева H.B., Аветисов B.A. Клональное размножение растений в культуре ткани. В кн: Культура клеток растений. М.: Наука, 1981.-168 с.
- Атанасов А. Биотехнология в растениеводстве//Пер. с болг. Е. В. Дененко. Отв. Ред. Шумный В. К., Новосибирск, 1993. -241 с.
- Высоцкий В.А. Клональное микроразмножение растений // IV всесоюзная конференция «Культура клеток растений и биотехнология». Кишинев, 1983.
- Kamm, L. Liao, S. Kim, C. Hendrick, Z.-Y. Zhao, M. Dolan, F. Chumley, S. V. Tingey, J.-F. Tomb, M. P. Gordon, M. V. Olson, and E. W. Nester. The genome of the natural genetic engineer Agrobacterium tumefaciens C58//Science. 2001. V. 294. P.2317−2323.
- Potrikus I. Gene transfer to plants: assesment of published approaches and results // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1991. V. 42. P. 205−225.
- Lindsey K. Plant transformation systems // Transgenic plants: a production system for industrial and pharmaceutical proteins. Edited by M.R.L. Owen and J. Pen. 1996.
- Глик Б., Пастернак Дж. Молекулярная биотехнология. Принципы и применение. Пер. с англ. М.: Мир. 2002. — 589 с.
- Gelvin S.B. Agrobacterium and plant genes involved in T-DNA transfer and integration // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 2000. 51:223−56
- Gelvin S.B. Agrobacterium-Mediated Plant Transformation: the Biology behind the «Gene-Jockeying» Tool //Microbiology and molecular biology reviews. Mar. 2003. P. 16−37
- Tzfira Т. T. and Citovsky V. Agrobacterium-mediated -genetic transformation of plants: biology and biotechnology // Current Opinion in Biotechnologyology. 2006. 17:147−154
- McCullen C.A., Binns A.N. Agrobacterium tumefaciens and plant cell interactions and activities required for interkingdom macromolecular transfer // Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 2006. 22:101−27
- Чумаков М.И. Механизм агробактериальной трансформации растений. Саратов. Издательство «Слово». 2001. 256 с.
- Citovsky, V., Zupan J., Warnick D., and Zambryski P. Nuclear localization of Agrobacterium VirE2 protein in plant cells // Science. 1992. V. 256. P. 1802−1805.
- Dumas, F., M. Duckely, P. Pelczar, P. Van Gelder, and B. Hohn. An Agrobacterium VirE2 channel for transferred-DNA transport into plant cells // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2001. V. 98. P. 485−490.
- Escudero J., Hohn B, Transfer and integration of T-DNA without cell injury in the host plant //The Plant Cell. 1997. V. 9. P. 2135−2142
- Chumakov M.I., Kurbanova I.V. Localization of protein VirBl involved in contact formation during conjugation among Agrobacterium cells // FEMS Microbiol. Letters. 1998. V. 168. P.297−301.
- Graves A.C.F., Goldman S.L. The transformation of Zea mays seedlings with Agrobacterium tumefaciens П Plant Molec. Biol. 1986. V. 7. P. 43−50.
- Feldman K.A., Marks M.D. Agrobacterium-mediaXed transformation of germinating seeds of Arabidopsis thaliana: a non-tissue culture approach // Mol. Gen. Genet. 1987. V. 208. P. 1−9.
- Пухальский B.A., Смирнов С. П., Корыстылева T.B., Билинская Е. Н., Елисеева А. А. Генетическая трансформация пшеницы (Triticum aestivum L.) с помощью Agrobacterium tumefaciens II Генетика. 1996. Т. 32. № 11. С. 1596−1600.
- Гапоненко А.К. Способ получения трансгенных растений подсолнечника. Патент РФ № 2 179 187.2002.
- Bidney D., Scelonge С., Martich J., Burrus M., Sims L., Huffman G. Microprojectile bombardment of plant tissues increases transformation frequency by Agrobacterium tumefaciens // Plant Molecular Biology. 1992. V. 18. P. 301−313.
- Bechtold N., Ellis J., Pelletier G. C.R. // Acad. Sci. Paris Life Sci. 1993. V. 316. P. 1194−1199.
- Майсурян A.H., Овчинникова B.H., Долгих Ю. И., Степанова А. Ю., Терешонок Д. В., Мартиросян Ю. Ц., Харченко П. Н. Агробактериальная трансформация ячменя // Биотехнология. 2006. № 3. С. 56−61.
- Hellens R., Mullineaux P., Klee H. A guide to Agrobacterium binary Ti vectors October // Trends in Plant Science 2000. V. 5. №. 10.
- Jefferson R.A., Burgess S.M., Hirsh D. fi-glucuronidase from Escherichia coli as a genefiision marker // Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1986. V. 83. P. 8447−8451.
- Shimoura O., Johnson F.H., Saiga Y. Extraction, purification and proporties of Aequorin, a bioluminescent protein from the luminous hydromeduson, Aequorea // J. Cell Сотр. Physiol. 1962. V. 59. P. 223−239.
- Prasher D.C., Eckenrode V.K., Ward W.W., Prendergast F.G., Cormier M.J. Primary structure of the Aequorea victoria green-fluorescent protein // Gene. 1992. V. 111. P. 229−233.
- Chalfie M., Tu Y" Euskirchen G., Ward W.W., Prasher D.C. Green fluorescent protein as a marker for gene expression // Science 1994. V. 263. P. 802−805.
- Inouye S., Tsuji, F.I. Aequorea green fluorescent protein. Expression of the gene and fluorescence characteristics of the recombinant protein//FEB S Lett. 1994. V. 341. P. 277−280.
- Brasileiro A.C.M., Aragro F.J.L Marker Genes for In Vitro Selection of Transgenic Plants // J. Plant Biotechnology. 2001. V. 3 (3). P. 113−121.
- Joersbo M., Donaldson I., Kreiberg J., Petersen S. G, Brunstedt J., Okkels F. T Analysis of mannose selection used for transformation of sugar beet // Mol Breed. 1998. V.4.P. 111−117.
- Haldrup A., Petersen S.G., Okkels F.T. The xylose isomerase gene from Thermoanaerobacterium thermosulfurogenes allows effective selection of transgenic plant cells using D-xylose as the selection agent // Plant Mol Biol 1998. V. 37. P. 287−296.
- Bevan M.W., Flavell R.B., Chilton M.D. A chimaeric antibiotic resistance gene as a selectable marker for plant cell transformation //Nature. 1983. V. 304. P. 184−187.
- Herrera-Estrella L., De Block M., Messens E., Hernalsteens J.P., Van Montagu M, Schell J Chimeric genes as dominant selectable markers in plant cells // EMBO. 1993 V. 2. P. 987−995.
- Van Den Elzen P.J.M, Townsend J., Lee K.Y., Bedbrook J.R. A chimaeric hygromycin resistance gene as a selectable marker in plant cells // Plant Mol Biol. 1985. V. 5. P. 299−302.
- Vasil I.K. Molecular improvement of cereals//Plant Mol. Biol. 1994. V. 25. P. 925−937.
- Haughn G.W., Smith J., Mazur В., Somerville C. Transformation with a mutant Arabidopsis acetolactate syntase gene renders tobacco resistant to sulfonylurea herbicides//Mol Gen Genet 1988. V. 211. P. 266−271.
- Mourad G., Williams D., King J. A double mutant allele, crsl-4. of Arabidopsis thaliana encodes an acetolactase synthase with altered kinetics//Planta. 1995. V. 196. P. 64−68.
- Comai L., Facciotti D., Hiatt W.R., Thompson G., Rose R.E., Stalker D.M. Expression in plants of a mutant aroA gene from Salmonella typhimurium confers tolerance to glyphosate //Nature. 1985. V. 317. P. 741−744.
- Comai L., Sen L.C., Stalker D.M. An altered arok gene product confers resistance to the herbicide glyphosate // Science. 1983. V. 221 P. 370−371.
- Mazur B.J., Falco S.C. The development of herbicide resistant crops // Annu. Rev. Plant Physiol. 1989. V. 40. P. 441−470.
- Murakami Т., Anzai H., Imai S., Satoh A., Nagaoka K., Thompson C.J. The bialaphos biosynthetic genes of Streptomyces hygroscopicus: molecular cloning and characterization of the gene cluster // Mol. Gen. Genet. 1986. V. 205. P. 42−50.
- Lindsey K. Genetic manipulation of crop plants. J. Biotech. 1992. V. 26. P. 1−28.
- Bellinder, R.R., R.E. Lyons, S.E. Scheckler, and H.P. Wilson. Cellular alterations resulting from foliar applications of HOE-39 866. // Weed Sci., 1987. V.35. P.27−35.
- Ridley, S.M. McNally S.F.// Effects of phosphinothricin on the isozymes of glutamine synthetase isolated from plant species which exhibit varying degrees of susceptibility to the herbicide. // Plant Sci., 1985. V.39. P.31−36.
- Wanamarta G., Penner D. Foliar absorption of herbicides // Rev. Weed Sci. 1989. V.4. P. 215−231.
- Дрейпер Дж., Скотт P., Армитидж Ф., Уолден Р. Генная инженерия растений Лабораторное руководство // М.: «Мир». 1991 408 е., ил.
- Butenko R.G., Atanassov A.I., Urmantseva V.V. Some feature of sugarbeet tissue cultures // Phytomorphology. 1972. V. 22. P. 140−143.
- Welander T. Callus and root formation in explants of Beta vulgaris L. // Physiol Plant. 1974. V. 32. P. 305−307.
- Hooker M.P., Nabors M.W. Callus initiation, growth, and organogenesis in sugarbeet (Beta vulgaris L.) // Z Pflanzenphysiol. 1977. V. 84. P. 237−246.
- Bhat S.R., Ford-Lloyd B.V. and Callow J.A. Isolation and culture of mesophyll protoplasts of garden, fodder and sugarbeets using a nurse culture system: callus formation and organogenesis // J Plant Physiol. 1986. V. 124. P. 419−423.
- Колодяжная Я.С., Дейнеко E.B. Получение регенерантов сахарной свеклы// Онтогенез. 2002. Том. 33. № 3. С. 170−175.
- Банникова М.А., Головко А. Э., Хведынич О. А., Кучук Н. В. Регенерация растений сахарной свеклы (Beta vulgaris L.) в культуре in vitro. Гистологическое изучение процессов регенерации//Цитология и генетика. 1995. Т. 29. № 6. С. 14−21.
- Фирсов А.П., Пиголева С. В., Захарченко Н. С., Бурьянов Я. И. Регенерация побегов сахарной свеклы из листовых эксплантов // Биотехнология. 2004. № 1. С. 56−61.
- Богомолова Н.М. Разработка метода получения трансгенных растений сахарной свеклы, устойчивых к гербицидам // Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук. Рамонь 2002.
- Kulshreshtha S., Coutts R.H.A., Direct somatic embryogenesis and plant regeneration from mature sugarbeet (Beta vulgaris L.) zygotic cotyledons // Plant Growth Regulation. 1997. V. 22. P. 87−92.
- Lindsey K. and Gallois P. Transformation of sugarbeet (Beta vulgaris) by Agrobacterim tumefaciens IIJ Exp Bot. 1990. V. 41. P. 529−536.
- Grieve T.M., Gartland K.M.A., Elliott M.C. Micropropagation of commercially important sugar beet cultivars // Plant Growth Regulation. 1997. V. 21. P. 15−18
- Ivic, S., Saunders J.W. and Smigocki A. Leaf disc callus from sugarbeet breeding lines for biolistic transformation // Am. Soc. of Sugar Beet Technologist Proceedings. 2001. V. 31.P. 214−217.
- Ivic-Haymes S.D., Smigocki A.C. Biolistic transformation of highly regenerative sugar beet (Beta vulgaris L.) leaves // Plant Cell Rep. 2005. V. 23. P. 699−704.
- Jacq B, Tetu Т., Lesorbe O., Sangwan R.S., Sangwan-Norreel B.S. Factors influencing T-DNA transfer in Agrobacterium-mQdiated transformation of sugarbeet//Plant Cell Rep. 1993. V. 12. P. 621−624.
- Snyder G.W., Ingersoll J.C., Smigocki A.C., Owens L.D. Introduction of pathogen defense genes and a cytokinin biosynthesis gene into sugarbeet (Beta vulgaris L.)by Agrobacterium or particle bombardment // Plant Cell Rep. 1999. V. 18. P. 829— 834.
- Kifle S., Shao M., Jung C., Cai D. An improved transformation protocol for studying gene expression in hairy roots of sugar beet (Beta vulgaris L.) // Plant Cell Reports. 1999. V. 18. P. 514−519.
- Joersbo M., Donaldson I., Kreiberg J., Petersen S. G, Brunstedt J., Okkels F. T Analysis of mannose selection used for transformation of sugar beet // Mol Breed. 1998. V. 4. P. 111−117.
- Ingersoll JC, Huette TM and Owens LD Effect of promoter-leader sequences on transient expression of reporter gene chimeras biolistically transferred into sugarbeet (Beta vulgaris) suspension cells //Plant Cell Rep. 1996. V. 15. P. 836— 840.
- Krens FA, Trifonova A, Keizer LCP and Hall RD The effect of exogenously-applied phytohormones on gene transfer efficiency in sugarbeet (Beta vulgaris L.) //Plant Sci. 1996. V. 116. P. 97−106.
- Joersbo M., Mikkelsen J.D., Brunstedt J. Relationship between promoter strength and transformation frequencies using mannose selection for the production of transgenic sugar beet // Molecular Breeding. 2000. V. 6. P. 207−213.
- Freytag A.H., Anan S.C., Rao-Ardelli A.P., Owens L.D. An improved medium for adventious shoot formation and callus induction in Beta vulgaris L. in vitro II Plant Cell Rep. 1988. V. 7. P. 30−34
- Jacq B, Tetu Т., Sangwan R.S., Laat A.D. Sangwan-Norreel B.S. Plant regeneration from sugarbeet (Beta vulgaris L.) hypocotyls cultured in vitro and flow cytometric nuclear DNA analysis of regenerants // Plant Cell Rep. 1992. 11: 329−333.
- Rady M.R., Ali Z.A. Comparison of physiology and anatomy of seedlings and regenerants of sugar beet//Biologia Plantarium. 1999. V. 42 (1). P.39−48.
- Zhang C.L., Chen D.F., Elliott M.C., Slater A. Thidiazuron induced organogenesis and somatic embryogenesis in sugar beet (Beta vulgaris L.) // In Vitro Cell Div Biol Plant. 2001. V. 37. P. 302−310.
- Hood E.E., Gelvin S.B., Melchers L.S., Hoekema A. New Agrobacterium helper strains for gene transfer to plants // Transgenic Res. 1993. V. 2. P. 208−218.
- Becker D. Binary vectors which allow the exchange of plant selectable markers and reporter genes //Nucleic Acids. Res. 1990. V. 18. P. 203.
- Падегимас JI.C., Шульга О. А., Скрябин К. Г. Создание трансгенных растений Nicotiana tabacum и Solanum tuberosum, устойчивых к гербициду фосфинотрицину // Мол. Биол. 1993. Т. 27. № 4. С.947−951
- Грибова Т.Н., Камионская A.M., Монахос Г. Ф., Скрябин К. Г. Создание трансгенных растений капусты белокочанной Brassica oleracea var. capitata с новыми агротехническими свойствами // Биотехнология. 2005. Т. 6. С.12−19.
- Маниатис Т., Фрич Э., Сэмбрук Дж. Методы генетической инженерии. Молекулярное клонирование. Москва «Мир». 1984 480стр.
- Сайт Strategic Diagnostics Inc: www.sdix.com
- Sanger F., Nicklen S., Coulson A.R. DNA sequencing with chain-terminating inhibitors // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1977. V. 84. P. 63−67.
- Dellaorta S.L., Wood J., Hicks J.B. A plant DNA minipreparation: version II // Plant Mol. Biol. Rep. 1987. V. 1. P. 19−21.
- Southern E.M. Detection of specific sequences among DNA fragments separated by gel electrophoresis // J. Mol. Biol. 1975. V. 98. P. 3−17.
- Vitha S. Histochemical localization of b-glucuronidase (GUS) reporter activity in plant tissues. Microscopy and Imaging Center, Texas A & M University http://www.tamu.edu/mic
- Tetu T, Sangwan RS and Sangwan-Norreel BS Hormonal control of organogenesis and somatic embryogenesis in Beta vulgaris callus // J Exp Bot Vol. 1987. V. 38 № 188. P. 506−517.