Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Сохранение семени быка при температуре тела в капсулах

Диссертация: Сохранение семени быка при температуре тела в капсулах
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Ученые центра тропического животноводства в Австралии приступили к практическому исполнению идеи по разработке метода хранения семени при 37 °C и получили первые результаты по использованию инкапсулированного семени быка в искусственном осеменении (D'Occhio М., 1993). В нашей стране с 60-х годов этому вопросу не уделяли должного внимания, глубокое замораживание захватило умы исследователей… Читать ещё >

Содержание

  • 1. ВВЕДЕНИЕ. ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ
  • 2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 2. 1. Сохранение семени при плюсовых температурах
    • 2. 2. Микрокапсулирование семени быка
    • 2. 3. Факторы, влияющие на оплодотворяющую способность спермы после осеменения
  • 3. МЕТОДЫ И МАТЕРИАЛЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 3. 1. Разработка синтетической среды. ф
    • 3. 2. Определение нуклеазной активности семени быка в предложенной синтетической среде
    • 3. 3. Анаэробное хранение семени в предложенной синтетической среде
    • 3. 4. Микроинкапсулирование семени быка
    • 3. 5. Определение механических свойств микрокапсул
    • 3. 6. Определение времени высвобождения спермиев из алгинат-кальций-хитозановых микрокапсул и активности спермиев после инкапсулирования {in vitro тест)
    • 3. 7. Изучение оплодотворяющей способности семени инкапсулированного в предложенной среде в алгинат-кальций -хитозановые микрокапсулы
  • 4. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 4. 1. Среда для сохранения семени быка при температуре 35−37°С
    • 4. 2. Механические свойства алгинат-хитозановых микрокапсул
    • 4. 3. Проверка оплодотворяющей способности микроинкапсулированного семени
  • 5. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
  • 6. ВЫВОДЫ
  • 7. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

Сохранение семени быка при температуре тела в капсулах (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность темы

.

На современном этапе развития искусственного осеменения, когда сперму хранят неограниченное время при температуре жидкого азота (при -196° С), ставить такой вопрос как хранение спермы при температуре тела, по крайней мере, несколько странно. Дело в том, что после оттаивания при температуре тела период живучести семени резко сокращается. Следовательно, для достижения положительного результата необходимо наладить мониторинг состояния полового цикла коров, определение сроков овуляции и оптимального срока осеменения, что практически невозможно выполнить в мясном скотоводстве. Однако, прогресс в генетическом улучшении скота в этой области крайне необходим.

Идеально, было бы добиться хранения спермы в половом тракте коровы в специальных капсулах, которые бы открывались в период овуляции и выделяли порцию семени для оплодотворения яйцеклетки. Такой метод хранения семени в половом тракте самки получил в литературе название «инкапсулирование спермы» (Nebel R.L. et al., 1985, 1993, 1996).

Ученые центра тропического животноводства в Австралии приступили к практическому исполнению идеи по разработке метода хранения семени при 37 °C и получили первые результаты по использованию инкапсулированного семени быка в искусственном осеменении (D'Occhio М., 1993). В нашей стране с 60-х годов этому вопросу не уделяли должного внимания, глубокое замораживание захватило умы исследователей.

Особый интерес микроинкапсулирование спермы представляет для двух областей метода искусственного осемененияэто программы суперовуляция у коров-доноров и синхронизация охоты у самок сельскохозяйственных животных. В указанных ситуациях овуляция наступает в течение более длительного периода времени, и микрокапсулы могут быть доступны в течение всего периода. Таким образом, благодаря микроинкапсулированию снижается важность определения оптимального срока осеменения.

Известный ученый США Вольфганг Иохле, который 40 лет своей жизни посвятил разработке методов синхронизации охоты у самок сельскохозяйственных животных, считает, что способность использовать микроинкапсулированную сперму с долгим сроком жизни предпочтительнее инъекций простагландина F2. При этом отпадет необходимость учитывать время охоты и овуляции, что позволит методу искусственного осеменения утвердиться в мясном скотоводстве (Jochle W., 1993).

Определение оптимального времени осеменения в искусственном осеменении крупного рогатого скота это критическая точка в указанном методе, потому что существует вариабельность времени овуляции относительно установленной охоты и трудность в установлении точного времени прихода коровы в охоту, особенно в мясном скотоводстве (Foote R. et al., 1993).

Вышеизложенное позволяет заключить, что исследования, посвященные разработке способа хранения семени быка при температуре тела в капсулах, является актуальным не только в практическом, но и в теоретическом плане.

Цель работы и задачи исследований.

Целью настоящей работы являлось разработка среды для хранения семени быка при температуре 35−37°С и моделирование капсулы с самовытекающим семенем. В связи с этим решали следующие задачи:

1. Разработать новую синтетическую среду для хранения семени быка при 35−37°С с содержанием уже ранее вводимых в разные среды комплексонатов, витаминов, Сахаров, электролитов и органических кислот.

2. Смоделировать in vitro условия придатка семенника за счет насыщения разбавленного средой семени углекислым газом, добавления кислотных инактиваторов (янтарная и сорбиновая кислоты), понижения температуры хранения семени.

3. Смоделировать капсулу, которая обеспечит медленное вытекание семени под влиянием изменений условий среды в шейке матки (38°C39°C, 5.3<рН>7.8).

4. Исследовать свойства полученных микрокапсул и их влияние на находящихся в них живчиков быка.

5. Провести экспериментальные исследования проверки результативности осеменения коров инкапсулированным семенем быка с введением его в шейку матки.

Научная новизна исследований состоит в том, что разработана среда для кратковременного хранения семени быка при температуре 35−37°С. Впервые применен высокомолекулярный полимер хитозан в животноводстве для инкапсулирования живчиков. Семя быка инкапсулировано в алгинат-кальций-хитозановые микрокапсулы. Проведена проверка результативности осеменения коров живчиками, инкапсулированными в капсулы.

Практическая ценность работы. Предложена среда для сохранения семени быка в микрокапсулах.

Основные положения, выносимые на защиту: среда для кратковременного хранения семени быка при температуре 35.

37°Сбиологическое обоснование и применение высокомолекулярного полимера хитозана для инкапсулированиябиологическое обоснование микроинкапсулирования семени быка в животноводствеэкспериментальные данные по инкапсулированию семени быка в алгинат-кальций-хитозановые микрокапсулы и проверке результативности осеменения коров живчиками, инкапсулированными в эти капсулы.

Апробация работы. Материалы проведенных исследований были доложены, обсуждены и получили положительную оценку: на ежегодных конференциях аспирантов и молодых ученых «Достижения молодых ученых» (2001, 2002 гг. ВИЖ);

• на ежегодных международных научно-практических конференциях.

Повышение конкурентноспособности животноводства и задачи кадрового обеспечения" (2001, 2002 гг., ФГОУ РАМЖ) — на второй Международной научной конференции «Современные достижения и проблемы биотехнологии сельскохозяйственных животных» (19−20 ноября 2002 г., ВИЖ, Дубровицы) — на научной конференции отдела биологии воспроизведения и отдела.

I сертификации и эколого-генетических исследований в животноводстве ВИЖа.

14 мая 2003 г.);

Ф Основные результаты, изложенные в диссертации, получены в отделе биологии воспроизведения сельскохозяйственных животных Всероссийского государственного научно-исследовательского института животноводства (ВИЖ).

2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

6. ВЫВОДЫ.

1. Разработаны и теоретически обоснованы условия хранения семени быка при температуре тела и модель микрокапсулы, обеспечивающей медленное вытекание семени под влиянием условий среды в шейке матки коров, что позволяет однократное осеменение коров в период охоты.

2. Разработана синтетическая среда для инкапсулирования семени быка, в которой подвижность спермиев в условиях температур близких к температуре тела, при 35−37°С, сохраняется в течение 72 часов.

3. Наиболее благоприятными кислотными инактиваторами семени быка при хранении его при температуре тела являются янтарная и сорбиновая кислоты, добавление которых в среду удлиняют срок живучести спермиев до 3 суток.

4.

Введение

трилона Б в синтетическую среду снижает нуклеазную активность желтка куриного яйца и способствует лучшей сохранности биологической полноценности спермиев, за счет взаимодействия со свободными радикалами образующимися при хранении семени быка при плюсовых температурах.

5. Применение Сахаров для хранения семени быка при плюсовых температурах сокращает живучесть спермиев. Из неэлектролитных компонентов оптимальной является аминоуксусная кислотагликокол.

6. Насыщение семени быка, разбавленного средой, 5% углекислым газом удлиняет срок переживаемости спермиев при температуре тела на 12 часов.

7. Среда, состоящая из гликокола, лимоннокислого натрия 3-х замещенного пятиводного, трилона Б, янтарной и сорбиновой кислот, витамина Е и желтка куриного яйца, для хранения семени быка при температуре тела обеспечивает переживаемость спермиев при комнатных температурах 18−20°С, сохраняя их подвижность до 7 суток.

8. Использование высокомолекулярного полимера хитозана (кислоторастворимый, ММ 20 кДа) в комплексе с алгинатом является совместимым структурным материалом для микроинкапсулирования семени быка.

9. Применение трехкомпонентной системы алгинат-кальций-хитозан для формирования мембраны микрокапсулы обеспечивает ее растворение и медленное вытекание из нее семени под влиянием изменений условий в половых путях коровы (38°С 39 °C, 5.3<рН>7.8) и доступ полноценных для оплодотворения ооцита живчиков в течение более длительного времени.

10. Изменение температуры инкубирования семени, инкапсулированного в алгинат-кальций-хитозановые микрокапсулы позволяет регулировать время, необходимое для растворения ее мембраны.

11. Проверка результативности осеменения коров семенем быка микроинкапсулированным в алгинат-кальций-хитозановые капсулы показала перспективность поиска в создании новой техники и технологии искусственного осеменения коров.

7. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

1. Разработана и предлагается для практики искусственного осеменения среда для мирооинкапсулирования семени быка.

Рецепт среды на 1000 мл дистиллированной воды:

Лимонно-кислый натрий 3-х замещенный пятиводный 20 г.

Гликокол 7 г.

Трилон Б 2 г.

Янтарная кислота 0,65 мл.

Сорбиновая кислота 0,7мл.

Витамин Е (а-токоферол ацетат 10% раствора в масле) 10 мл.

Желток куриного яйца 50 мл.

Способ приготовления среды: отвешивают навески гликокола, цитрата натрия и трилона Б, растворяют их в 1000 мл заранее прокипяченной дистиллированной воды, затем добавляю положенное количество янтарной кислоты и тщательно взбалтывают, сорбиновой кислоты и тщательно взбалтывают, витамина Е и тщательно взбалтывают. После этого вводят желток.

Семя разбавляют данной средой в пределах 1:20. Расфасованное семя в пенициллиновые флаконы помещают в термостат и хранят в нем при температуре 35−37°С.

Предлагается в практике искусственного осеменения применять хранение семени быка в данной среде при 35 037 °C до 3 суток, при 18−20°С до 7 суток.

2. Для микроинкапсулирования семени быка в практических условиях необходимы следующие реактивы: алгинат натрия (ч.д.а., вязкость 2% раствора при 25 °C 3500 сП, Sigma), кислоторастворимый хитозан (ММ 20 Кд, степень дезацитилирования 0,84, ЗАО «Биопрогресс» ВНИТИБП г. Щелково,.

Московская обл.), хлорид кальция о.с.ч. (РЕАХИМ, Россия), хлорид натрия (РЕАХИМ, Россия), натриевая соль ЭДТА, о.с.ч. (Ангарский завод хим. реактивов, Россия).

3. Технология микроинкапсулирования семени быка: 2.5 мл семени, разбавленного в отношении 1:20 данной средой, смешивают с 2.5 мл 4%-ного раствора алгината натрия, приготовленного на физиологическом растворе (0.9%-ный NaCl). Для получения сферических Са-алгинатных гранул смесь по каплям добавляют в 0.5%-ный раствор СаС12 при помощи инсулинового шприца для инъекций. Полученные гранулы промывают в физрастворе, переносят в 40 мл 1%-ного раствора хитозана и инкубируют в нем 8−10 мин. 1%-ный раствор хитозана получают при смешивании 1 г хитозана с 100 мл 0.2%-ного раствора HCl. Затем добавляют по каплям 2 М NaOH и доводили pH полимерного раствора до pH 6,0. Гранулы три раза промывают физраствором, а затем помещают на 10 мин в 40 мл 50 мМ-ного раствора натриевой соли ЭДТА для удаления ионов кальция из «алгинатного ядра». Полученные гранулы промывают физраствором, затем средой для инкубирования без живчиков (предложенная среда для хранения семени быка при 35−37°С). После этого помещают эти микрокапсулы с иммобилизованными спермиями внутри в среду для инкубирования и хранят при 18−20°С и при 35−37°С.

Все эксперименты по формированию микрокапсул рекомендуется проводить при комнатной температуре.

В заключение автор выражает глубокую признательность и сердечную благодарность научному руководителю Николаю Захаровичу Жильцову за помощь, оказанную в проведении и оформлении данной работы, за плодотворные дискуссии и постоянный интерес к данной работе.

Автор выражает глубокую признательность профессору Юрию Павловичу Фомичеву за помощь, оказанную при проведении экспериментов и оформлении диссертации, и за поддержку данной работы.

Часть работы выполнялась при участии сотрудника отдела биологии воспроизведения сельскохозяйственных животных ВИЖа Алексея Валентиновича Чичилова, которому автор выражает благодарность за помощь в проведении исследований. Автор выражает также признательность остальным сотрудникам отдела биологии воспроизведения сельскохозяйственных животных ВИЖа за постоянный интерес к данной работе.

Автор выражает признательность директору Центральной станции искусственного осеменения сельскохозяйственных животных Ескину Г. В., ведущему технологу станции Федоровой Е. В. за помощь при проведении экспериментов.

Автор выражает большую благодарность директору ОПХ «Дубровицы» Федоровой Р. П. и ветеринарному врачу хозяйства Некрасовой Н. А. за предоставленную мне возможность провести научно-производственный опыт и помощь при проведении работы.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Н.Г., Силаева М. В. Новая среда для сохранения спермы хряков./ Труды Всесоюзного института экспериментальной ветеринарии. -1970. т. 37.- С.97−101-
  2. Н., Смирнов В., Евсюков М., Манько Ю., Нарижный А., Зыкунов Н., Мишин В., Перехожих В. Новая среда ГХЦСН-РУ1.// Свиноводство,-1987.-№ 6.-С.39−40-
  3. Л.С. Хитин и хитозан: строение, свойства, применение. -2001.-Химия-
  4. Н.З. Влияние окислительно-восстановительного режима на сохранение семени быка и получаемое потомство. Диссертация на соискание ученой степени кандидат биологических наук. -1967. Москва-
  5. Н.З. Методические указания по использованию синтетической среды ГЛКап для сохранения смени быка при плюсовых температурах. -1971. -К.: Курская правда.-8 е.-
  6. JI.C., Ерохин A.C., Селиверстова И. А., Ларкин С. Н. Замораживание спермы быков в средах с комплексонатами металлов./ Доклады ВАСХНИЛ. -1985.-№ 1.~с.33−34-
  7. Н.З. Опыты по осеменению свиней спермой хряков центра по искусственному осеменению Master Breeders (UK), проведенные в Белорусии и Украине в 1994—1995 гг. (неопублекованные данные) —
  8. Н.З. Новое в биологии воспроизведения сельскохозяйственных животных.// Зоотехния. -1999.-№ 11. -С.31-
  9. Н.З., Субботин А. Д., Голубь B.C., Чичилов A.B. Усовершенствование технологии глубокого замораживания семени быка./ Межведомственный тематический научный сборник «Разведение и генетика животных». -2001. -Вып.34. -С.10−17-
  10. П.Жильцов Н. З., Субботин А. Д., Голубь B.C., Чичилов A.B., Паньшин С. С. Усовершенствование технологии глубокого замораживания семени быка.// Наше племенное дело. -2002. -№ 2. -С. 10−12-
  11. A.A. Хранение семени быка при температуре выше 0° С. Племенное дело и искусственное осеменение сельскохозяйственных животных./ Сборник статей. -1964. -М.: Колос. -С.185−191-
  12. И.В., Кузнецов A.B., Сигаева В. А., Шит И.Ю. Использование сперматозоидов кролика в качестве вектора для чужеродной ДНК.// Биотехнология. -1993. -№ 11−12. -С.2−5-
  13. Э.С. Синтетические среды для хранения семени барана. Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук. -1970. -Дубровицы, Московская обл.-
  14. В.К., Соколовская И. И. Синтетические среды для разбавления семени хряка и методы его сохранения Л Животноводство. -1957. -№ 2-
  15. В.К. Биология воспроизведения и искусственное осеменение животных. Биолого-зоотехническая монография. -1962. -М.: Сельхозиздат.-696 е.-
  16. В.К., Жильцов Н. З. Концентрация кислорода в канале эпидидимиса кролика./ Доклады ВАСХНИЛ. -1970. -№ 5. -С. 34−36-
  17. В.К., Жильцова J1.C. Комплексонаты металлов в средах для семени сельскохозяйственных животных.// Вестник с.-х. науки. -1982. -№ 2-
  18. Р., Бойд Р. Органическая химия./ Под редакцией проф. И. К. Коробицыной. -1974. -М.:"Мир". -1132 е.-
  19. А.Г. и др. Значение ионов Ca44″, Zn44″, Си44″ в воспроизводительной функции самок./ Бюлл. ВНИИРГЖ. -1983. -Вып. 65-
  20. В.А. Сульфатная среда для хранения спермы быка при плюсовых температурах.// Ветеринария. -1968. -№ 6. -С.81−82-
  21. В.А. Стрептомицин и неомицин в средах для разбавления спермы.// Ветеринария. -1973. -№ 7. -С.78−79-
  22. И.И., Жильцов Н. З., Субботин А. Д., Голубь B.C., Голышев Н. А., Чичилов А. В. Биология воспроизведения и искусственное осеменение животных -достижения и перспективы.// Зоотехния. -1999. -№ 8:С. 14−17-
  23. Химическая энциклопедия./ Под редакцией Н. С. Зефирова. «Большая российская энциклопедия». -1995. -М. -т. 1−2,4−5-
  24. Д. Влияние добавления в среду каталазы и кратковременной оксигенации на переживаемость семени, оплодотворение и жизнеспособность приплода./ Доклады ВАСХНИЛ. -1965. -№ 7. -С.26−30-
  25. Abe Н., Sendai Y., Satoh Т., Hoshi Н. (1995). Secretory products of bovine oviductal epithelial cells support the viability and motility of bovine spermatozoa in culture in vitro. J. Exp. Zoo I., 272(1):54−61-
  26. Abe H., Sendai Y., Satoh Т., Hoshi H. (1995). Bovine oviduct-spesific glycoprotein: a protein factor for maintenance of viability and motility of bovine spermatozoa in vitro. Mol. Reprod. Dev., 42(2):226−232-
  27. Aitken R.N.C. (1971). The oviduct. In «Physiology and biochemistry of the domestic fowl». (Eds. D.J. Bell and B.M. Freeman.) pp. 1237−1289. (Academic press: New York) —
  28. R.J., Clarcson J.S. (1988). Significance of reactive oxygen species and antioxidants in defining the efficiency of sperm preparation techniques. J. Androl., 9:367−376-
  29. J.G., Storey B.T. (1983). Taurine, hypotaurine, epinephrine and albumin inhibit lipid peroxidation in rabbit spermatozoa and protect against loss of motility. Biol Reprod., 29: 548−555-
  30. J.G., Storey B.T. (1985). Spontaneous lipid peroxidation in rabbit and mouse epididymal spermatozoa: dependence of rate on temperature and oxygen concentration. Biol. Reprod., 32:342−351-
  31. Amann R.P., Hammerstedt R.H., Veeramachanent D.N.R. (1993). The epididymis and sperm maturation: a perspective. Reprod. Fertil. Dev., 5:361−381-
  32. S.H., Killian G.J. (1994). Effect of macromolecules from oviductal conditioned medium on bovine sperm motion and capacitation.. Biol. Reprod., 51:795 799-
  33. H.A., Check J.h., Peymer N., Bollendorf A. (1994). Effect of natural antioxidants tocopherol and ascorbic acids in maintenance of sperm activity during freeze-thaw process. Arch. Androl., 33(1): 11−15. Abstract-
  34. H.W., Brindle J., Irvine D.S., Aitken R.J. (1996). Protective effect of antioxidants on the important of sperm motility by activated polymorphonuclear leukocytes. Fertil. Steril., 65(2): 411−419. Abstract-
  35. M.R. (1993). Oviducal sperm storage in poultry: a review. Reprod. Fertil. Dev., 5:595−599-
  36. A., Hunkeler D. (1999). New microcapsules based on oligoeletrolyte complexation. Ann. N.Y. Acad. Sci., 875:36−45-
  37. A., Canaple L., Ceausoglu I., Nurdin N., Renken A., Rindisbacher L., Wandrey Ch., Desvergne B., Hunkeler D. (1999). New multicomponent capsules for immunoisolation. Ann. N.Y. Acad. Sci., 875:135−145-
  38. A. (2001). Optimal conditions of transplantable binary polyelectrolyte microcapsules. Ann. N.Y. Acad. Sci., 944:120−134-
  39. A., Hunkeler D. (2001). Carrageenan -oligochitosan microcapsules: optimization of the formation process (1). Colloids Surf. B. Biointerfaces, 21(4):285−298-
  40. M.T., Affranchino M.A., Schang L.M., Beorlegui N.B. (1991). Influence of antioxidants on SOD activity in bovine sperm. Biochem. Int., 23(3):545−553. Abstract-
  41. G., Voigt A., Dautzenberg H., Donath E., Mohwald H. (2002). Polyelectrolyte complexes and layer-by-layer capsules from chitosan/chitosan sulfate. Biomacromolecules, 3(3):579−590-
  42. M., Hampton J., Buhi W.C., Thatcher W.W. (1999). Persistent dominant follicle alters pattern of oviductal secretory proteins from cows at estrus. Biol. Reprod., 61:127−134-
  43. A.H., Sefton M.V. (1987). Microencapsulation of human fibroblasts in a water-insoluble polyacrylate. Boitechnol. Bioeng., 29:954−996-
  44. Boilard M., Bailey J., Collin S., Dufour M" Sirard M.-A. (2002). Effect of bovine oviduct epithelial cell apical plasma membranes on sperm function assessed by a noval flow cytometric approach. Biol. Reprod., 67:1125−1132-
  45. Bongso A., Ho J, Fong CY, Ng SC, Ratnam S. (1993). Human sperm function after coculture with human fallopian tubal epithelial cell monolayers: in vitro model for studying cell interaction in early human conception. Arch. Androl., 31 (3): 183−190-
  46. A.C., Smith J.F., Briggs R.M., Duganzich D.M., Summers P.M. (1999). Effects of bovine oviductal proteins on bull spermatozoa function. Theriogenology, 51(3):583−595-
  47. Bosch P, de Avila JM, Ellington JE, Wright RW Jr. (2001). Heparin and Ca2±free medium can enhance release of bull sperm attached to oviductal epithelial cell monolayers. Theriogenology, 56(2):247−260-
  48. K., Besch W., Jahr H., Loth F., Dautzenberg H., Hahn H.J. (1985). The encapsulation of pancreatic islets. Investigation of insulin secretion and content in vitro. Biomed. Biochim. Acta, 44(1): 143−147-
  49. H., Wehbie R., Lardy H.A. (1990). Calcium transport in bovine sperm mitochondria: effect of substrates and phosphate. Biochim. Biophys. Acta, 1026:57−63-
  50. Brezezinska-Slebodzinska E., Slebodzinski A.B., Pietras B., Wieczorek G. (1995). Antioxidant effect of vitamin E and glutathione on lipid peroxidation in boar semen plasma. Biol. Trace Elem. Res., 47(l-3):69−74. Abstract-
  51. Bureau M., Bailey J. L, Sirard M.A. (2002). Binding regulation of porcine spermatozoa to oviductal vesicles in vitro. J. Androl, 23(2):188−193-
  52. Calamera J.C., Doncel G.F., Brugo-Olmedo S., Sayago A., Acosta A.A. (2002). Male antisperm antibodies: association with a modified sperm stress test and lipid peroxidation. Andrologia, 34:63−68-
  53. S., Maldjian A., Surai P., Noble R. (2000). Viability, susceptibility to peroxidation and fatty acid composition of boar semen during liquid storage. Anim. Reprod. Sci., 58(1−2):99-l 11. Abstract-
  54. Chang T.M.S. (1964). Semipermeable microcapsules. Science, 146:524−525-
  55. Chang T.M.S. (1966). Semipermeable aqueous microcapsules, «artificial cells»: with emphasis on experiments in an extracorporeal shunt system. Trans. Am. Soc. Artif. Intern. Organs, 12:13−19-
  56. Chang T.M.S. (1967). Microcapsules as artificial cells. Science, 3:63−70-
  57. Chang, T.M.S. (1969). Lipid-coated spherical ultrathin membranes of polymer or cross-linked protein as possible cell membrane models. Fed. Proc. 28,461.Abstr.
  58. Chang T.M.S. (2000). Artificial cell biotechnology for medical application -a review. Blood Purif, 18:91−96-
  59. R.C., Lapointe S., Sirard M.A. (1995). Capacitation in vitro of bovine spermatozoa by oviduct epithelial cell monolayer conditioned medium. Mol. Reprod. Dev., 42(3):318−324-
  60. R.C., Sirard M.A. (1995). Fertilization ability of bovine spermatozoa cocultured with oviduct epithelial cells. Biol. Reprod., 52:156−162-
  61. N.L. (1998). Role of cholesterol in sperm capacitation. Biol. Reprod., 59:7−11-
  62. G.C., Cetica P.D., Beconi M.T. (1998). Effect of alpha-tocopherol and ascorbic acid on bovine in vitro fertilization. Theriogenology, 49(3):619−627. Abstract-
  63. M.M., Keown R., Knorr D.W. (1989). Chitosan alginate capsules. US Patent no. 4,808,707-
  64. H., Loth F., Fechner K., Mehlis B., Pommerening K. (1985). Preparation and performance of symplex capsules. Makromol. Chem. Suppl., 9:211−217-
  65. H., Holzapfel G., Lukanoff B. (1993). Methods for a comprehensive characterisation of microcapsules based on polyelectrolyte complex formation. Biomater. Artif. Cells, Artif. Cells & Immob. Biotechnoi, 21:399−405-
  66. R.P., Suarez S.S. (1992). Hyperactivated sperm progress in the mouse oviduct. Biol. Reprod., 46:779−785-
  67. DeMott R.P., Lefebvre R., Suarez S.S. (1995). Carbohydrates mediate the adherence of hamster sperm to oviductal epithelium. Biol. Reprod., 52:1395−1403-
  68. De Vos P, De Haan B., Pater J, Van Schilfgaarde R. (1996). Association between capsule diameter, adequacy of encapsulation and survival of microcapsulated rat islet allografts. Transplantation, 62(7):893−899-
  69. De Vos P, De Haan B, Van Schilfgaarde R. (1997). Effect of the alginate composition on the biocompatibility of alginate-polylysine mocrocapsules. Biomaterials, 18(3):273−278-
  70. De Vos P, Hoogmoed CG, Busscher HJ (2002). Chemistry and biocompatibility of alginate-PLL capsules for immunoprotection of mammalian cells. J. Biomed. Mater. Res., 60(2):252−259-
  71. De Vos P, Hoogmoed CG, van Zanten J, Netter S, Strubbe JH, Busscher HJ. (2003). Long-term biocompatibility, chemistry and function of microencapsulated pancreatic islets. Biomaterials, 24(2):305−312-
  72. Donnelly E.T., McClure N., Lewis S.E. (1999). The effect of ascorbate and alpha-tocopherol supplementation in vitro on DNA integrity and hydrogen peroxide-induced DNA damage in human spermatozoa. Mutagenesis, 14(5):505−512. Abstract-
  73. Donnelly E.T., McClure N., Lewis S.E. (1999). Antioxidant supplementation in vitro does not improve human sperm motility. Fertil. Steril., 72(3):484−495. Abstract-
  74. A.M., Donoghue D.J. (1997). Effects of water- and lipid-soluble antioxidants on turkey sperm viability, membrane integrity, and motility during liquid storage. Poult. Sci., 76(10): 1440−1445. Abstract-
  75. Dott H. M, Foster GC. (1975). Preservation of differential staining by formal citrate. J. Reprod. Fertil., 45:57−60-
  76. H.M., Moor R.M., Polge C. (1976). Artificial insemination with spermatozoa in formaldehyde. J. Reprod. Fertil., 46:277. Abstract-
  77. E., Parks J.E., Foote R.H. (1988a). Cholesterol efflux from bovine sperm. I. Induction of the acrosome reaction with lysophosphatidyl-choline after reducing sperm cholesterol. Gamete Res., 20:145−157-
  78. E., Parks J.E., Foote R.H. (1988b). Cholesterol efflux from bovine sperm. II. Effect of reducing sperm cholesterol on penetration of zona-free hamster and in vitro matured bovine ova. Gamete Res., 20:413−420-
  79. Ehrenwald E., Foote R. H, Parks J.E. (1990). Bovine oviductal fluid components and their potential role in sperm cholesterol efflux. Mol. Reprod. Dev., 25:195−204-
  80. JE. (1991). The bovine oviduct and its role in reproduction: a review of the literature. Cornell. Vet., 81(3):313−328-
  81. Ellington JE, Ignotz GC, Varner DD., Marcucio RS, Mathison P, Ball BA. (1993) in vitro interaction between oviduct epithelial and equine sperm. Arch. Androl., 31 (2):79−86-
  82. A., Duncan A.E., Watson P.F., Holt W.V. (1999). Sperm-oviduct interaction: indication of capacitation and preferential binding of uncapacitated spermatozoa to oviductal epithelial cells in porcine species. Biol. Reprod., 60−879−886-
  83. M., Sefiton M.V. (2000). Hydroxyethyl methacrylate-methyl methacrylate (HEMA-MMA) copolymers for cell microencapsulation: effect of HEMA purity. J. Biomater. Sci., 11:537−545-
  84. R.H., Bratton R.W. (1960). Survival of bovine spermatozoa stored at 5 and 25 °C in extenders containing varying levels of egg yolk, glucose, glycine, glycerol, citrate and other salts. J. Dairy Sci., 43:1322−1329-
  85. R.H., Parks J.E. (1993). Factors affecting preservation and fertility of bull sperm: a brief review. Reprod. Fertil. Dev., 5:665−673-
  86. V., Leclerc P., Cormier N., Bailey J.L. (2003). Implication of calmodulin-dependent phosphodiesterase Type 1 during bovine sperm capacitatiopn. J. Androl., 24(1):104−112-
  87. Gaserod O, Smidsrod O, Skjak-Break G. (1998). Microcapsules of alginate-chitosan. -I. A quantitative study of the interaction between alginate and chitosan. Biomaterials, 19(20): 1815−1825-
  88. Gaserod O, Skjak-Break G. (1999). Microcapsules of alginate-chitosan. II. A study of capsules stability and permeability. Biomaterials, 20(8):773−783-
  89. Goldman EE, Ellington JE, Foote RH. (1998). Reaction of fresh and frozen bull spermatozoa incubated with fresh and frozen bovine oviduct epithelial cells. Reprod. Nutr. Dev., 38(3):281−288-
  90. Good N.E., Winget G.D., Winter W., Connolly T.N., Izawa S" Singh R.M.M. (1966). Hydrogen ion buffers for biological research. Biochemistry, 5:467−477-
  91. Gotze M., Torner H., Kauffold P., Konig I., Dautzenberg H" Loth F. (1986). The release of immobilized substances from Symplex capsules. Pharmazie. 41(4):250−253, Abstract-
  92. J.K., Hammerstedt R.H. (1992). Differential effects of butylated hydroxytoluene analogs on bull sperm subjected to cold-induced membrane stress. Cryobiology, 29:106−117-
  93. Grippo A.A., Way A.L., Killian G.J. (1995). Effect of bovine ampullary and isthmic oviductal fluid on motility, acrosome reaction and fertility of bull spermatozoa J. Reprod. Fer til., 105(l):57−64-
  94. R., Talevi R. (2000). In vitro-cultured bovine oviductal cells bind acrosome-intact sperm and retain this ability upon sperm release. Biol. Reprod., 62:1754−1762-
  95. I.H. (1965). The preservation of ram semen by reversible inactivation of spermatozoa. Ovtsevodstvo, 11 (8): 9−11. In Russian-
  96. Hammerstedt R. H, Graham J.K., Nolan J.P. (1990). Cryopreservation of mammalian sperm: what we ask them to serve. J. Androl., 11:73−88-
  97. Hammerstedt R. H, Keith A. D, Amman RP. (1991). Noningestible separation barrier with plugged pores. US Patent 5 026 342-
  98. R.H. (1993). Maintenance of bioenergetic balance in sperm and prevention of lipid peroxsidation: a review of the effect on design of storage preservation system. Reprod. Fertil. Dev., 5:675−690-
  99. Harper M.J.K. (1973). Stimulation of sperm movement from the isthmus to the site of fertilization in the rabbit oviduct. Biol. Reprod., 8:369−377-
  100. J. (1999). Production of high-value compounds: carotenoids and vitamin E. Current Opinion in Biotechnology, 10:186−191-
  101. M.K., Alvarez J.G., Storey B.T. (1982). Production of superoxide and activity of superoxide dismutase in rabbit epididymal sperm. Biol. Reprod., 27:11 091 118-
  102. Hunter RHF., Nichol R. (1983). Transport of spermatozoa in the sheep oviduct: preovulatory sequestering of cells in the caudal isthmus. J. Exp. Zool., 228:121−128-
  103. Hunter RHF., Wilmut I. (1984). Sperm transport in the cow: Peri-ovulatory redistribution of viable cells within the oviduct. Reprod. Nutr. Dev., 24:597−608-
  104. Hunter RHF. (1984). Pre-ovulatory arrest and peri-ovulatory redistribution of competent spermatozoa in the isthmus of pig oviduct. J. Reprod. Fertil., 72:203−211 —
  105. R.H. (1988). Transport of gametes, selection of spermatozoa and gamete lifespans in the female tracts. In: Hunter RHF (ed.), The fallopian tubes. NY: Springer-Verlag, 53−80-
  106. R.H., Flechon B., Flechon J.E. (1991). Distribution, morphology and epithelial interactions of bovine spermatozoa in the oviduct before and after ovulation: a scanning electron microscope study. Tissue Cell, 23(5):641−656-
  107. R.H. (1994). Ovarian regulation of sperm progression in the fallopian tubes. Zygote, 2(4):363−366-
  108. W. (1993). Forty years of control of the oestrous cycle in ruminants: progress made, unresolved problems and the potential impact of sperm encapsulation technology. Reprod. Fertil. Dev., 5:587−594-
  109. R.C., Foote R.H. (1972). Effect of osmolality and phosphate, 'Tris', 'Tes 'Mes', and 'HEPES' hydrogen ion buffers on the motility of bull spermatozoa stored at 37 or 5 °C. Aust. J. Biol. Sci., 25:1047−1055-
  110. A., Lambert R.D., Sirard M.A. (1994). In vitro-cultured bovine granulosa and oviductal cells secrete sperm motility-maintaining factor (s). Mol. Reprod. Dev., 37(l):54−60-
  111. n., Hunter A.G. (1995). Effect of various capacitation systems on bovine sperm motion characterictics, acrosome integrity and induction of hyperactivation. J. Dairy Sci., 78(1):91−102-
  112. Kawakami E, Kashiwagi C., Hori T., Tsutsu T. (2001). Effects of canine oviduct epithelial cells on movement and capacitation of homologous spermatozoa in vitro. Anim. Reprod. Sci., 68(1−2): 121−131-
  113. Khurana N. K, Niemann H. (2000). Energy metabolism in preimplantation bovine embryos derived in vitro or in vivo. Biol. Reprod., 62:847−856-
  114. Lane M.-E., Therien I., Moreau R., Manjunath P. (1999). Heparin and high-density lipoprotein mediate bovine sperm capacitation by different mechanisms. Biol. Reprod., 60:169−175-
  115. B., Larsson K. (1986). Sperm localization in the oviducts of artificially inseminated dairy cattle. Acta Vet. Scand., 27:303−312-
  116. Lefebvre R., Chenoweth P.J., Drost M., LeClear C.T. MacCubbin M., Dutton J.T. Suarez S.S. (1995). Characterization of the oviductal sperm reservoir in cattle. Biol. Reprod., 53:1066−1074-
  117. Lefebvre R., DeMott R.P., Suarez S.S., Samper J.C. (1995). Specific inhibition of equine sperm binding to oviductal epithelium. In: Sharp D.C., Bazer F.W. (eds.), Equine Reproduction VI. Madison, WI: Society for the Study of Reproduction, 689 696-
  118. R., Suarez S.S. (1996). Effect of capacitation on bull sperm binding to homologous oviductal epithelium. Biol. Reprod., 54: 575−582-
  119. Lefebvre R, Lo M.C., Suarez S.S. (1997). Bovine sperm binding to oviductal epithelium involves fucose recognition. Biol. Reprod., 56:1198−1204-
  120. Lenz S., Lindenberg S., Sundberg K., Andersen A. N., Horness P., Starup J., Andersen C.Y., Jensen S.S., Hay-Schmidt A. (1991). Intrauterine fertilization capsules -a clinical trial. J. In Vitro Fert. Embryo Transf, 8(5):272−275-
  121. S., Lindenberg S., Sundberg K., Hamberger L., Sjogren A. (1991). Intrauterine capsules for incubation of gametes and subsequent release of embryos. J. In Vitro Fert. Embryo Transf., 8(5):265−271-
  122. Lim F., Sun A.M. (1980). Microencapsulated islets as bioartificial endocrine pancreas. Science, 210:908−910-
  123. Lim F., Moss R.D. (1981). Microencapsulated of living cells and tissue. J. Pharm. Sei., 70:351−354-
  124. Lim F. (1984). Microencapsulation of living cells and tissues. 1983 review and update. Appl. Biochem. Biotechnol, 10:81−85-
  125. C.B., Kanous K. (1991). The cyclic nitroxide free radical, 4-hydroxy-2,2,6,6,-tetramethylpiperidine-l-oxyl (TEMPOL), is effective in prolonging the motility of bull sperm in vitro. Biol. Reprod., 44 (Suppl.l), 117. Abstract-
  126. Loeser C.R., Tulsiani D.R.P. (1999). The role of carbohydrates in the induction of the aero some reaction in mouse spermatozoa. Biol. Reprod., 60:94−101-
  127. A.I., Rabocev V.K. (1968). The optimum time to use preserved semen. Ovtsevodstvo, 14(7):20−22 (in Russian.) —
  128. J.W., Fiser P. S., Reinhart B.S. (1977). The effect of caproic acid, handling technique and storage times on the fertility of fowl spermatozoa. Poult. Sei., 56(4): 1334−1336-
  129. Mann T., Lutwak-Mann C. (1981). Male reproductive function and semen, p. 212 (Springer -Verlag: Berlin.) —
  130. J., Forster M., Schellenberger A., Dautzenberg H. (1991). Immobilization of invertase by encapsulation in polyelectrolyte complexes. Enzyme Microb. Technol., 13(3):240−244-
  131. Martin I.C.A., Richardson B.A. (1976). Factors affecting the fertility of diluted ram semen. In «Sheep breeding». (Eds. G.I. Tomes, D.E. Robertson, R.J. Lightfoot) pp. 467−474-
  132. W.M., Salamon S. (1993). Liquid storage of ram semen: a review. Reprod. Fertil. Dev., 5:613−638-
  133. McNutt T.L., Olds-Clarke P., Way A.L., Suarez S.S., Killian G.J. (1994). Effect of follicular or oviductal fluids on movement characteristics of bovine sperm during capacitation in vitro. J. Androl, 15(4):328−336-
  134. Merten O.-W., Dautzenberg H., Palfi G.E. (1991). A new method for the encapsulation of mammalian cells. Cytotechnology, 7:121−130-
  135. Minami S, Okamoto y, Hamada k, Fukumoto Y, Shigemasa Y. (1999). Veterenary practice with chitin and chitosan. EXP, 87:265−277-
  136. Mueller, P., Rudin, D.O. (1968). Resting and action potentials in experimental biomolecular lipid membranes. J. Theor. Biol. 18,222−258-
  137. T.W., Nebel R.L., Saacke R.G. (1992). Accessory sperm numbers for cattle inseminated with protamine sulfate microcapsules. J. Dairy Sei., 75(3):725−731-
  138. Nass-Arden L., Breitbart J. (1990). Modulation of mammalian sperm motility by quercetin. Molec. Reprod. Develop., 25: 369−379-
  139. Nebel R.L., Barne J.H., Saacke R.G., Lim F. (1985). Microencapsulation of bovine spermatozoa. J. Anim. Sei., 60:1631−1639-
  140. Nebel R.L., Vishwanath R., McMillan W.H., Saacke R.G. (1993). Microencapsulation of bovine spermatozoa for use in artificial insemination. Reprod. Fertil. Dev., 5:701−712-
  141. Nebel R.L., Vishwanath R., McMillan W.H., Pitt C.J. (1996). Microencapsulation of bovine spermatozoa: effect of capsule membrane thickness on spermatozoal viability and fertility. Anim. Reprod. Sei, 44(2):79−89-
  142. R.L., Saacke R.G. (1996). Spermatozoa microcapsulation and capsule behavior in the female tract. Reprod. Dom. Anim., 31:75−85-
  143. G. (1964). Further studies on the preservation of mammalian spermatozoa at variable temperatures. Proc. 5th Int. Congr. Anim. Reprod. Artif. Insemin. Trento, 4:269−275-
  144. O’Flaherty C., Beconi M., Beorlegui N. (1997). Effect of natural antioxidants, superoxide dismutase and hydrogen peroxide on capacitation of frozen-thawed bull spermatozoa. Andrologia, 29(5):269−275-
  145. Okamoto Y, Tomita T., Minaxni S, Matsuhashi A, Kumazawa NH, Tanioka S, Shigemasa Y. (1995). Effects of chitosan on experimental abscess with staphylococcus aureus in dogs. J. Vet. Med. Sci., 57(4):765−767-
  146. P.A., Ortiz M.E., Croxatto H.B. (1999). Sperm migration into and through the oviduct following artificial ins-emination at different stages of the estrus cycle in the rat. Biol. Reprod., 60:908−913-
  147. Orive G., Hernandez R.M., Gascon A.R., Calafiore R., Chang T.M.S., De Vos P., Hortelano G., Hunkeler D., Lacik I., Shapiro A.M.J., Pedraz J.L. (2003). Cell encapsulation: promise and progress. Nature Medicine, 9(1):104−107-
  148. J.W., Cooper G.W., Katz D.F. (1978). Sperm transport in the reproductive tract of the female rabbit: II. The sustained phase of transport. Biol. Reprod., 19:115−132-
  149. Pagano, R., Thompson, T.E. (1968). Spherical lipid bilayer membranes: electrical and isotopic studies of ion permeability. J. Mol. Biol. 38,41−58-
  150. J.E., Hammerstedt R.H. (1985). Developmental changes occurring in the lipids of ram epididymal spermatozoa plasma membrane. Biol. Reprod., 32:653−680-
  151. J.E., Arion J.W., Foote R.H. (1987). Lipids from plasma membrane and outer acrosomal membrane of bovine spermatozoa. Biol. Reprod., 37:1249−1258-
  152. J.E., Ehrenwald E. (1990). Cholesterol efflux from mammalian sperm and its potential role in capacitation. In 'Fertilization in mammals'. (Eds. Bavister B., Cummins J., Roldan E.) pp 155−168. (Serono Symposia: Norwell, MA.) —
  153. J.E., Hough S., Elrod C. (1990). Platelet activating factor activity in the phospholipids of bovine spermatozoa. Biol. Reprod., 43:806−811-
  154. J.E., Graham J.K. (1992). Effects of cryopreservation procedure on sperm membranes. Theriogenology, 38:209−222-
  155. J.E. Lynch D.V. (1992). Lipid composition and thermotropic phase bahavior of boar, bull, stallion and rooster sperm membranes. Cryobiology, 29:255−266-
  156. Parrish J.J., Susko-Parrish J.L., Handrow R.R., Sims M.M., First N.L. (1989). Capacitation of bovine spermatozoa by oviduct fluid.. Biol. Reprod., 40:1020−1025-
  157. Peirone M, Ross CJ, Hortelano G, Brash JL, Chang PL. (1998). Encapsulation of various recombinant mammalian cell types in different alginate microcapsules. J. Biomed. Mater. Res., 42(4):587−596-
  158. J.W., Plante C., King W.A., Hansen P.J., Betteridge K.J., Suarez S.S. (1991). Fertilization capacity of bovine sperm may be maintained by binding to oviductal epithelia cell. Biol. Reprod., 44:102−107-
  159. K., Ristau O., Rein H., Dautzenberg H., Loth F. (1983). Immobilization of proteins and cell fragments using a new method of microencapsulation. Biomed. Biochim. Acta, 42(7−8):813−823-
  160. Prokop A., Hunkeler D., Dimari S., et al. (1998). Water soluble polymers for immunoisolation I: complex coacervation and cytotoxicity. Adv. Polimer Science, 136:1−51-
  161. P.J. (1989). Principles of membrane stability and phase behavior under extreme conditions. J. Boienerg. Biomembr., 21:3−19-
  162. P.A. (1979). The prolonged storage and survival of spermatozoa in Chiroptera. J. Reprod. Fertil., 56:391 -402-
  163. I., Gadella B.M., Flesch F.M., Colenbrander B., Suarez S.S. (2000). Physiological state of bull sperm affects fucose- and mannose-binding properties. Biol. Reprod., 62:1010−1015-
  164. A.K., Mukherjee D.P. (1961). Effects of egg-yolk phosphate, milk and egg-yolk boric acid-sodium bicarbonate dilutors on the morphology of ram spermatozoa. Indian Vet. J., 38:383−390-
  165. Rha C. et al (1984). Biotechnology of marine polysaccharides, R.R. Colwell, E.R.Pariser, A.J.Sinkey, eds. Washington: Hempshire Publishing Corp.283-
  166. Rha C. (1985). Process for encapsulation and encapsulated active material system. European Patent Application no. O 152 898-
  167. Rha C. (1988). Encapsulated active material system. US Patent 4,749,620-
  168. Rokstad A.M., Kulseng B., Strand B.L., et al. (2001). Transplantation of alginate microcapsules with proliferating cells in mice. Capsular overgrowth and survival of encapsulated cells of mice and human origin. Ann. N. Y. Acad. Sci., 944:216−225-
  169. Rokstad AM, Holtan S., Strand B, Steinkjer B, Ryan L, Kulseng B, Skjak-Break G. (2002). Microencapsulation of cells producing therapeutic proteins: optimizing cell growth and secretion. Cell Transplant., 11(4):313−324-
  170. Ross CJ, Bastedo L, Maier SA, Sands MS, Chang PL. (2000). Treatment of a lysosomal storage disease, mucopolysaccharidosis VII, with microcapsulated recombinant cells. Hum. Gene Ther., 11(15):2117−2127-
  171. Ross CJ, Chang PL. (2002). Development of small alginate microcapsules for recombinant gene product delivery to the rodent brain. J. Biomater. Sci. Polym. Ed., 19(8):953−962-
  172. P., Molnar A., Kokai M., Gabor G., Ratky J. (2002). Comparative evaluation of the effect of antioxidants in the conservation of ram semen. Acta Vet. Hung., 50(2):235−245. Abstract-
  173. Schneider C.S., Ellington J.E., Wright R.W. Jr. (1999). Relationship between bull field fertility and in vitro embryo production using sperm preparation methods with and without somatic cell co-culture. Theriogenology, 51(6):1085−1098-
  174. M.Y. (1989). Blood, guts and chemical engineering. Can. J. Chem. Eng., 67:705−712-
  175. Sefton M.V., Stevenson W.T.K. (1993). Microencapsulation of live animal cells using polyacrylates. Adv. Polym. Sci., 107:145−198-
  176. P.L. (1993). Site of semen deposition and its effect on fertility and sperm retention: a review. Reprod. Fertil. Dev., 5:659−663-
  177. Setchell B.P., Sanchez-Partida L.G., Chairussyuhur A. (1993). Epididymal constituents and related substances in the storage of spermatozoa: a review. Reprod. Fertil. Dev., 5:601−612-
  178. D.P., Soffer Y., Lewin L.M. (1986). Investigations on the motility of human spermatozoa in a defined medium in the presence of metabolic inhibitors and/or carnitine. Andrologia, 18:368−375-
  179. P., Curson B. (1965). Contribution of seminal plasma, sperm numbers and gas phase to dilution effects of bovine spermatozoa. J. Dairy Sci., 48:1357−1361-
  180. P., Curson B. (1983). Effect of egg yolk levels on the fertility of diluted bovine sperm stored at ambient temperatures. N.Z. J. Agrie. Res., 26:187−190-
  181. P., Curson B., Rhodes A.P. (1984). Relationship between total spermatozoa per insemination and fertility of bovine semen stored in Caprogen at ambient temperature. N.Z. J. Agric. Res., 27:35−41-
  182. Shigemasa Y, Sashiwa H, Tanioka S, Saimito H, Tanigawa T, Tanaka Y. (1992). Behavior of the mouse macrophage cell line and mouse fibroblast on copolymer containing cellulose triacetate. Int. J. Biol. Macromol., 14(5):274−278-
  183. M., Lukanoff B., Burmester G.R., Dautzenberg H. (1996). Encapsulation of artificial tissues in polyelectrolyte complexes: preliminary studies. Biomaterials, 17(10): 1049−1051-
  184. T.t., Koyanagi F., Yanagimachi R. (1987). Distribution and number of spermatozoa in the oviduct of the golden hamster after natural mating and artificial insemination. Biol. Reprod., 37:225−234-
  185. T.T., Yanagimachi R. (1990). The viability of hamster spermatozoa stored in the isthmus of the oviduct: The importance of sperm-epithelial contact for sperm survival. Biol. Reprod., 42:450−457-
  186. T.T., Yanagimachi R. (1991). Attachment and release of spermatozoa from the caudal isthmus of the hamster oviduct. J. Reprod. Fertii, 91:567−573-
  187. L. (1991). ATP content and sperm motility of extended bovine semen under different storage conditions. Acta Vet. Scand., 32:511−518-
  188. Strand BL, Ryan TL, In’t Veld P., Kulseng B, Rokstad AM., Skjak-Break G., Espervik t. (2001). Poly-L-lysine induces fibrosis on alginate microcapsules via the induction of cytokines. Cell Transplant10(3):263−275-
  189. Strand BL, Gaserod O, Kulseng B, Espervik T" Skjak-Break G. (2002). Alginate-polylysine-alginate microcapsules: effect of size reduction on capsule properties. J. Microencapsul., 19(5):615−630-
  190. Strand BL, Morch YA, Espevik T, Skjak-Break G. (2003). Visualization of alginate-poly-L-lysine-alginate microcapsules by confocal laser scanning microscopy. Biotechnol. Bioeng., 82(4):386−394-
  191. Strand BL, Morch YA, Syvertsen KR, Espevik T, Skjak-Break G. (2003). Microcapsules made by enzymatically tailored alginate. J. Biomed. Mater. Res., 64A (3):540−550-
  192. S.S. (1987). Sperm transport and motility in the mouse oviduct: observation in situ. Biol. Reprod., 36:203−210-
  193. Suarez S.S., Revah I., Lo M., Kolle S. (1998). Bull sperm binding to oviductal epithelium is mediated by a Ca2+ -dependent lectinon sperm that recognizes Lewis-a trisaccharide. Biol Reprod., 59:39−44-
  194. H., Foote R.H. (1995). Bovine oviductal epithelial cells (BOEC) and oviducts: I. For embryo culture. II. Using SEM for studying interactions with spermatozoa. Microscopy Research and Technique, 31:519−530-
  195. R., Guiltieri R. (2001). Sulfated glycoconjugates are powerful modulators of bovine sperm adhesion and release from the oviductal epithelium in vitro. Biol Reprod., 64:491−498-
  196. J.S., Mann T. (1973). Adenosine 3', 5'-cyclic monophosphate in relation to motility and senescence of spermatozoa. Proc. R. Soc. Lond. Biol., 184:109−114-
  197. A.J., Sonawane S.A., Sane C.R. (1988). Feasibility of using hard gelatin capsules for the packaging and deep-freezing of bull sperm. Theriogenology, 29:921 929-
  198. Thu B, Bruheim P, Espevik T, Smidsrod O, Soon-Shiong P, Skjak-Break G. (1996a). Alginate polycation microcapsules. I. Interaction between alginate and polycation. Biomaterials, 17(10). 1031−1040-
  199. Thu B, Bruheim P, Espevik T, Smidsrod O, Soon-Shiong P, Skjak-Break G. (1996b). Alginate polycation microcapsules. II. Some functional properties. Biomaterials, 17(11):1069−1079-
  200. M.L., Maggi L., Giunchedi P., Conte U., Vigo D., Maffeo G. (1998). Calcium alginate beads containing an hydrophilic polymer for the encapsulation of swine spermatozoa. S.T.P. Pharma Sci., 8:233−236-
  201. M.L., Maggi L., Vigo D., Galli A., Bornaghi V., Maffeo G., Conte U. (2000). Controlled release of swine semen encapsulated in calcium alginate beads. Biomaterials, 21:1493−1498-
  202. M., Faustini M., Norberti R., Maggi L., Maffeo G., Conte U., Vigo D. (2002). Barium alginate cell-delivery systems: correlation between technological parameters. Int. J. Pharm., 242 (l-2):389-
  203. K. (1998). Maturation of mammalian spermatozoa: modifications of the acrosome and plasma membrane leading to fertilization. Cell Tissue Res., 293:177−187-
  204. Uludag H, De Vos P, Tresco PA. (2000). Technology of mammalian cell encapsulation. Adv. DrugDeliv. Rev., 42(l-2):29−64-
  205. G.C., Oliver J., Munday R., Smith J.F. (1991). Development of a ram semen dilluent (RSD-1) for maintaining spermatozoal motility. Proc. Aust. Soc. Reprod. Biol., 23rd Ann. Conf. p. 129. Abstract-
  206. G.C., Jensen K., Oliver J.E., Duganzich D.M., Munday R., Smith J.F. (1997). Motility of ram spermatozoa during storage in a chemically-defined diluent containing antioxidants. Anim. Reprod. Sci., 48(2−4):269−278. Abstract-
  207. Van Blerkom J. (1989). Encapsulation of sperm for artificial insemination. US Patent 4 840 891-
  208. Ch., Vidal D.S. (2001). Purification of polymeric biomaterials. Ann. N.Y. Acad. Sci., 944:187−198-
  209. P.F. (1979). The preservation of semen. Oxford Rev. Reprod. Biol, 1:289 350, Abstract-
  210. P.F. (1993). The potential impact of sperm encapsulation technology on the importance of timing of artificial insemination: a perspective in the light of published work. Reprod. Fertil. Dev., 5:691−699-
  211. P.F. (2000). The causes of reduced fertility with cryopreserved semen. Anim. Reprod. Sci., 60−61:481−492. Abstract-
  212. Way AL, Griel LC, Killian G.J. (2000). Effects of accessory sex gland fluid on viability, capacitation and the acrosome reaction of caudal epididymal bull spermatozoa. J. Androl, 21 (2):213−219-
  213. I.G. (1993). Lipid and calcium uptake of sperm in relation to cold shock and preservation: a review. Reprod. Fertil Dev., 5:639−658-
  214. W.L., Foley C.W. (1971). Effects of benzimidazoles as inhibitors of metabolism of washed porcine spermatozoa. J. Anim. Sci., 32:287−291-
  215. R. (1994). Mammalian fertilization. In: Knobil E., Neill J.D. (eds.), The physiology of reproduction, 2nd ed. NY: Raven Press, Ltd.: 189−317-
  216. Yao K. et al (1995). Microcapsules and microspheres related to chitosan. J.M.S.-Rev.macromol. chem. Phys., C35(l):155−180-
  217. M.I., Abdallah G.A., Kamel K.I. (2003). Effect of ascorbic acid and vitamin E supplementation on semen quality and biochemical parameters of male rabbits. Anim. Reprod. Set, 76(l-2):99-l 11. Abstract-
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?