Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Развитие кровоснабжения скелетных мышц в эмбриональном и постэмбриональном периодах

Диссертация: Развитие кровоснабжения скелетных мышц в эмбриональном и постэмбриональном периодах
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Материалы диссертации были доложены и обсуждались на III — VI Сибирских физиологических съездах (Новосибирск, 1997, 2002; Томск, 2005; Барнаул, 2008), на международной конференции «Физиология мышечной деятельности» (Москва, 2000), на XVIII съезде физиологического общества имени И. П. Павлова (Казань, 2001), на конференции «Гистологическая наука России XXI века: итоги, задачи, перспективы… Читать ещё >

Содержание

  • Условные обозначения и размерности
  • ГЛАВА 1. ЛИТЕРАТУРНЫЙ ОБЗОР
    • 1. 1. Происхождение и развитие сердца и магистральных сосудов
    • 1. 2. Происхождение и развитие органного русла
    • 1. 3. Участие биохимических факторов в развитии сердца и сосудов
    • 1. 4. Участие механических факторов в развитии сердечно — сосудистой системы в онтогенезе
    • 1. 5. Развитие системной гемодинамики и органного кровотока
    • 1. 6. Реактивность сердечно-сосудистой системы в онтогенезе
    • 1. 7. Пути поступления кислорода в эмбрион
    • 1. 8. Связь структурно-функциональных параметров системы органного кровоснабжения в онтогенезе
  • Резюме
  • ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • 2. 1. Объект исследования
    • 2. 2. Морфометрия сосудов
  • Внеорганные магистральные артерии
  • Кровеносные капилляры
    • 2. 3. Скорость кровотока
    • 2. 4. Биохимические методы
  • Определение концентрации белка и нуклеиновых кислот
  • Определение активности матриксных металлопротеиназ
    • 2. 5. Тканевое парциальное давление кислорода
    • 2. 6. Математическая обработка
  • ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 3. 1. Микроанатомия внеорганных сосудов и капилляров
  • Внеорганные магистральные артерии
  • Кровеносные капилляры
  • Резюме
    • 3. 2. Кровоток и сосудистая реактивность в скелетных мышцах эмбрионов кур
  • Объемная и линейная скорости кровотока
  • Реактивность внутримышечных сосудов
  • Резюме
    • 3. 3. Белок, нуклеиновые кислоты и матриксные металлопротеиназы в эмбриогенезе кур
  • Концентрация белка и нуклеиновых кислот
  • Активность магриксных металлопротеиназ
  • Резюме
    • 3. 4. Парциальное давление кислорода в скелетных мышцах куриных эмбрионов
  • Резюме
    • 3. 5. Связь параметров структуры кровеносного русла и органного кровотока в постнатальном онтогенезе
  • Резюме
  • ГЛАВА 4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
  • ВЫВОДЫ

Развитие кровоснабжения скелетных мышц в эмбриональном и постэмбриональном периодах (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность. Среди заболеваний человека в современном обществе наибольшее распространение получили болезни сердечнососудистой системы, а одной из основных причин его смертинарушения функций жизненно важных органов — сердца и мозговых центров, которые обусловлены, как правило, структурными изменениями сосудистого русла в этих органах или в органах, регулирующих их функции. Многочисленные исследования показывают, что в патогенезе заболеваний этой системы участвуют многие факторы среды обитания человека, но одновременно зреет убеждение, что склонность взрослого человека к патологическим изменениям структуры и функции сердечно-сосудистой системы возникает в период ее онтогенетического становления (Власов, 1985; Daemen, DeMay, 1995; Zicha, Kunes, 1999; Редина и др., 2003; Owens et al., 2004; Никитин и др., 2005; Szolnoki et al., 2005), причем на ранних стадиях эмбриогенеза (Cines et al., 1998; Fclmeden et al., 2003). Поэтому, неслучайно, по мере развития методических возможностей, растет интерес исследователей к очередности формирования с первых часов и суток эмбриогенеза как структуры сердца, центральных сосудов и внутриорганного русла, так и динамики проявления в них функциональной активности (сокращение сердца, кровоток в сосудах, их реактивность на нервно — гуморальные факторы), и зреет убеждение, что этот процесс происходит под влиянием факторов, повременное образование которых диктуется генетической программой (Topouzis, Majesky, 1996; LeNoble et al., 2004; Ferguson et al., 2005). При этом особое внимание обращается на своеобразие проявлений генетической программы ангиогеиеза в различных участках тела или органа (обзоры: Турина, 1992; Daemen, DeMay, 1995; Cines et al., 1998).

В настоящее врехмя имеется довольно много фактов, позволяющих описать закономерности онтогенетического развития сердца и, в меньшей степени, артериальных и венозных магистралей, связанных с ним (Карлсон, 1983; Coffin, Poole, 1988; Martinsen, 2005). Отмечается высокий интерес к определяющей роли потоков крови на формирование сердца, внутриорганных артерий и вен, механическому взаимодействию гемо динамических сил (в частности, пристеночному напряжению сдвига) с функциями сосудистого эндотелия (Hove et al., 2003; Reneman et al., 2006; LeNoble et al., 2004, 2008).

К сожалению, очень мало сведений, позволяющих воссоздать картину формирования внутриорганного русла. Есть лишь отдельные данные, описывающие форму, редко — размеры первичных кровеносных микросетей в периферических тканях эмбрионов (Baumann, Meuer, 1992; Murray, Wilson, 1997; LaRue et al., 2003; Ruberte et al., 2003; Owens et al., 2004). Как и когда эти сети превращаются в зрелое органное русло, остается неизвестным. В то же время, очевидно, что форма и деятельность зрелого русла у разных позвоночных в одних и тех же органах, как правило, похожа, специализирована для обеспечения присущей органу функции, и меняется она лишь количественно (Шошенко и др., 1982), в том числе и в период постэмбрионального роста. Это касается и скелетных мышц крыс (Шошенко и др., 2004) и кур (Беличенко и др., 1995). Добавим, что отсутствуют данные о количественной онтогенетической связи размеров вну гриорганных русел с просветом внеорганных артерий, имеющих разное происхождение — из дуги аорты и ее дорзальной части (Waldo et al., 1994; Topouzis, Majesky, 1996; Bergwerff et al., 1998; Berk, 2001; Etchevers et al., 2001). Последнее обстоятельство представляется важным в связи с широко используемой в наше время лечебной ангиопластикой. Недостаточность знаний в этой области и побудила нас провести настоящие исследования.

Цель исследования.

Выявить закономерности развития кровоснабжения и роль гемодинамических факторов в формировании кровеносного русла скелетных мышц в онтогенезе.

Задачи исследования.

На двух скелетных мышцах кур (белой грудной гликолитической с низким кислородным запросом и красной икроножной оксидативной с высоким кислородным запросом) во второй половине эмбриогенеза:

1 — провести посмертную морфометрию капиллярного русла, оценив в нем плотность капилляров и их суммарный просвет;

2 — измерить удельную и общую объемную скорость кровотока и определить расчетным путем линейную скорость кровотока и пристеночное напряжение сдвига в капиллярах;

3 — исследовать реактивность внутриорганных микрососудов (по изменению в мышцах объемной скорости кровотока) на воздействие вазоактивных веществ (норадреналин и нитропруссид натрия);

4 — измерить тканевое парциальное давление кислорода;

5 — определить активность матриксных металлопротеиназ, концентрации нуклеиновых кислот и белкав эмбриональный и постэмбриональный периоды:

6 — провести количественный анализ изменения геометрии артерий, обеспечивающих кровоснабжение грудной и икроножной мышц, и отходящих от дуги аорты и дорзальной части еев постэмбриональный период:

7 — провести аллометрический анализ количественных изменений структурно-функциональных параметров кровоснабжения грудной и икроножной мышц кур и почечных клубочков крыс.

Научная новизна.

Впервые показано, что кровеносное русло в скелетных мышцах проходит три этапа в своем онтогенетическом развитии: от первичной формы с трехмерной сетью широких и длинных протокапилляров к зрелой форме (к концу эмбриогенеза), обладающей реакгивностью и содержащей узкие и короткие капиллярыизменение этой формы в постэмбриональный период носит адаптивный количественный характер. Последовательность такого развития не зависит от уровня окислительного метаболизма мышц (белая гликолитическая и красная оксидативная) и локализации источника их кровоснабжения (от дуги и от дистальных отделов дорзальной аорты).

Впервые на скелетных мышцах, получены количественные данные, характеризующие микроанатомию, скорость кровотока и реакции микрососудов на вазоактивные вещества внутриорганпого русла у эмбрионов теплокровных в эти периоды.

Впервые показаны условия превращения первичного эмбрионального русла в зрелую форму: скорость кровотока и пристеночное напряжение сдвига в капиллярах, тканевое парциальное давление кислорода, активность матриксных металлопротеиназ, концентрация белков и нуклеиновых кислот.

Впервые на скелетных мышцах кур и почек крыс дано количественное описание структурно-функциональных взаимосвязей в кровеносном русле в период его постэмбрионального роста.

Впервые дано количественное описание закономерностей анатомического роста внеорганных артерий и показано различие его в артериях, образованных от дуги аорты и дорзальных отделов ее. Теоретическое и практическое значение.

Полученные данные способствуют пониманию закономерностей онтогенетического развития сердечно-сосудистой системы, в частности: внутриорганного русла — характера изменения в нем скорости кровотока, сосудистой реактивности, тканевого парциального давления кислорода, геометрии внеорганных артерий, механизмов их связи с внутри органным руслом. Они могут представлять интерес для разработок прикладного значения, связанных с ангиопластикой, лечением наследственных патологий сердечно-сосудистой системы, трансплантацией органов. Материалы диссертации могут быть использованы при чтении курса лекций по кровообращению в медицииских институтах и на биологических факультетах университетов.

Положения, выносимые на защиту.

Формирование органного кровоснабжения в скелетных мышцах в онтогенезе проходит три этапа: I — соединение органного русла с центральными сосудами и сердцем (условия — одинаковая удельная скорость кровотока в мышцах, расположенных в передней и задней частях тела) — II — переход во второй половине эмбриогенеза первичной формы русла к зрелой (условия — сохранение удельной скорости мышечного кровотока и линейной скорости кровотока в капиллярах, резкое увеличение пристеночного напряжения сдвига в капиллярах и появление реактивности в русле) — III — количественные изменения русла в постэмбриональном периоде, носящие адаптивные характер (условияизменения функциональной активности органа).

Апробация работы.

Материалы диссертации были доложены и обсуждались на III — VI Сибирских физиологических съездах (Новосибирск, 1997, 2002; Томск, 2005; Барнаул, 2008), на международной конференции «Физиология мышечной деятельности» (Москва, 2000), на XVIII съезде физиологического общества имени И. П. Павлова (Казань, 2001), на конференции «Гистологическая наука России XXI века: итоги, задачи, перспективы» (Москва, 2003), на III Всероссийской конференции с международным участием «Механизмы функционирования висцеральных систем» (Санкт-Петербург, 2003), на конференции «Фундаментальные и прикладные проблемы гистологии» (Санкт-Петербург, 2004), на IV Всероссийской конференция с международным участием, посвященной 80-летию Института физиологии им. И. П, Павлова РАН «Механизмы функционирования висцеральных систем» (Санкт-Петербург, 2005), на XIII Международном совещании и VI Школе по эволюционной физиологии (Санкт-Петербург, 2006), на X Всероссийской школе — семинаре «Экспериментальная и клиническая физиология дыхания» (Санкт-Петербург, 2007), на XX Съезде физиологического общества имени И. П. Павлова (Москва, 2007), на международной научно-практической конференции «Современные проблемы экологической физиологии» (Алматы, 2008).

выводы.

1. Онтогенетическое развитие кровоснабжения грудной и икроножной мышц кур (разных по кислородному запросу и удаленности от сердца) проходит три этапа, для которых характерны: I — образование внутримышечного первичного русла с трехмерной сетью широких длинных капилляров и соединение его к середине эмбриогенеза с центральными сосудами и сердцем при равной для мышц скорости кровотока — объемной в ткани и линейной в капиллярахII — превращение этого русла к концу эмбриогенеза в зрелую форму с тонкими короткими капиллярами и способностью изменять свой просвет при воздействии вазоактивных веществтакой метаморфоз русла происходит с сохранением неизменными скоростей кровотока — объемной в мышцах и линейной в капиллярах, но с резким увеличением пристеночного напряжения сдвига в капиллярахIII — в постэмбриональный период количественные адаптивные изменения кровоснабжения в этих мышцах и почечных клубочках крыс, обусловленные возрастными изменениями функциональной активности органа.

2. Метаморфоз внутриорганного русла в мышцах, происходящий во второй половине эмбриогенеза, не обусловлен изменениями в этот период тканевого парциального давления кислорода и скорости дыхания мышечных волоконон сопровождается повышением активности матриксных металлопротеиназ в мышечной ткани.

3. Парциальное тканевое давление кислорода в мышцах во второй половине эмбриогенеза и через неделю после вылупления в икроножной мышце сохраняется в пределах около 50 мм рт.ст., несколько повышаясь на 15-е суткив грудной мышце оно значительно снижается к моменту вылупления (до 19 мм рт.ст.), после чего растет до уровня 50 мм рт.ст.

4. Тканевая гипоксия в грудной мышце, развивающаяся в последней четверти эмбриогенеза, сопровождается замедлением ее роста при одновременном увеличении в мышце концентрации нуклеиновых кислот и активности матриксных металлопротеиназ. Эти явления могут свидетельствовать об активации в мышце ангиогенеза, приводящего к избыточной васкуляризации ее, которая наблюдается после вылупления.

5. Постэмбриональные изменения кровоснабжения икроножной и грудной мышц выражаются в разной скорости изменения диаметра волокон, потребности их в кислороде, суммарной поверхности митохондриальных мембран в волокне, его проницаемости к кислороду, длины капилляра, плотности капилляров вокруг волокна и в самих мышцах, объемной скорости мышечного кровотока.

6. Постнатальные изменения почечных клубочков у крыс — их размер, плотность, просветы афферентных и эфферентных артериол и величина объемной скорости кровотока — количественно взаимосвязаны, показывают разные скорости возрастной динамики, отражающей масштаб функционирования почки.

7. В период роста кур, начиная со второй половины эмбриогенеза, просвет артерий, отходящих от аорты (безымянной, общих сонных, подключичных, бедренных и ягодичных), увеличивается с разной скоростью, что хорошо описывают аллометрические уравнения (быстрее растут просветы подключичных и бедренных артерий) — при этом в толстостенных ветвях дуги аорты заметно уменьшается толщина стенки (особенно в подключичных и общих сонных), а в тонкостенных ветвях дорзальной аорты увеличивается наружный и внутренний диаметры, больше — первый, и толщина стенки растет, особенно в ягодичных.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Р.И. Онтогенез водно-солевого обмена и функций почек. Новосибирск, НГПУ, 1990. 48 с.
  2. И.А. Физиология кровообращения во внутриутробном периоде. М., Медгиз, 1960. 336 с.
  3. В.И. Оценка параметров транспорта кислорода в изолированных мышечных волокнах // Методы исследования массопереноса в системе микроциркуляции. Новосибирск. Наука, 1991. С. 174−179.
  4. В.И., Беличенко В. М., Новосельцев С. В. Потребление кислорода изолированным хориоаллантоисом на поздних стадиях куриного эмбриона // Росс, физиол. журн. им. И. М. Сеченова, 2002. Т. 88. (2). С. 272−275.
  5. В.И., Беличенко В. М., Шошенко К. А. Коэффициент диффузии кислорода в изолированных скелетных волокнах // Физиол. журн. СССР им. И. М. Сеченова, 1991. Т. 77. (7). С. 29 34.
  6. В. М. Баранов В.И., Шошенко К. А. О кровоснабжении скелетных мышц кур в онтогенезе // Физиол. журн. им. И. М. Сеченова, 1995. Т. 81. (6). С. 130 140.
  7. В.М., Григорьева Т. А., Коростышевская И. М., Шошенко К. А. Новые материалы к пониманию механизмов онтогенеза кровеносной системы теплокровных // Бюл. СО РАМН, 2004. № 2. С. 114 117.
  8. В.М., Григорьева Т. А., Шошенко К. А. Скорость мышечного кровотока у крыс в онтогенезе, измеренная игольчатым зондом лазерного допплеровского флоуметра «ЛАКК-01″ // Росс, физиол. журн. им. И. М. Сеченова, 2007. Т. 93. (6). С. 655 660.t
  9. В.М., Коростышевская И. М., Шошенко К. А. К механизму изменения межорганиого распределения кровотока у кур в онтогенезе//Росс, физиол. журн. им. И. М. Сеченова, 2003. Т. 89. (12). С. 1551 1559.
  10. В.М., Шошенко К. А., Дударев А. Н., Часовских М. И. Мертвецов Н.П. О содержании белка и нуклеиновых кислот в органах куриных эмбрионов разного возраста // Ж. эвол. биох. физиол., 2006. Т. 42. (3). С. 214−217.
  11. Бляхер J1. Я. История эмбриологии в России (с середины XVIII века, до середины XIX века).— М., Издательство Академии наук СССР, 1955.-376 с.
  12. Бэр К. М. История равития животных. Наблюдения и размышления. Т.1−2., М., Издательство Академии наук СССР, 1950−53. -466 с. и 625 с.
  13. .Я. Динамика изменений активности систем клубочковой фильтрации и канальцевой секреции в раннем постнатальном онтогенезе у собак // Онтогенез почки. Новосибирск, НГПИ, 1984. С. 34−45.
  14. Ю.А. Онтогенез кровообращения человека. Новосибирск. Наука, 1985. 266 с.
  15. О.Ю. Сравнительно гистологическое и онтогенетическое исследование сосудистого эндотелия // Морфология, 1992. Т. 102. (3). С. 76−79.
  16. В.И., Ливчак Г. Б., Филииченко Р. Е., Шошеико К. А. Физиологическое и гистохимическое исследование скелетных мышц белых крыс в процессе холодовой адаптации // Физиологические адаптации к теплу и холоду. Ленинград. Наука, 1969. С. 186 193.
  17. В.Р. Ресурсы энергии и времени у птиц в природе. СПб., Наука, 1995.-360 с.
  18. Р., Эллиот Д., Эллиот У., Джонс К. Методы определения белка // Справочник биохимика. М., 1991. С. 464 467.
  19. Ю.М. Чувствительность клеток к кислороду и продукция эритропоэтина // Росс, физиол. журн. им И. М. Сеченова, 2005. Т. 91 (9). С. 993 1004.
  20. К.П. (отв. ред.) Физиология терморегуляции. Л., Наука, 1984.-470 с.
  21. С.Ф. Морфологические и диффузионные параметры капилляров в мышцах с различной функцией и величиной выполняемой нагрузки // Архив анатомии, гистол. и эмбриол., 1973. Т. 64. (3). С. 1827.
  22. Л.И. Эволюция системы крови // Экологическая физиология. Ч. 2., Л., Наука, 1983. С. 262 301.
  23. Л.А. Напряжение кислорода in vivo в различных мышцах мелких животных // Физиол. журн. СССР им. И. М. Сеченова, 1966. Т. 52. (6). С. 771 775.
  24. . Основы эмбриогенеза по Пэттену. Т.1 и 2. М., Мир, 1983.-360 с. и 390 с.
  25. А.Г. Краткий очерк эмбриологии человека. С элементами сравнительной экспериментальной и патологической эмбриологии. Л., Медицина, 1967. 268 с.
  26. В.И., Мач Э.С., Сидоров В. В. Инструкция по применению лазерного анализатора капиллярного кровотока „JIAKK-01″. М., 2002.-39 с.
  27. Г. П. Регуляция сосудистого тонуса. JL, Наука, 1973.328 с.
  28. И.М., Максимов В. Ф., Баранов В. И. Многофункциональная морфология хориоаллантоисной оболочки куриного эмбриона // Росс, физиол. журн. им. И. М. Сеченова, 2006. Т. 92. (7). С. 889 902.
  29. Т., Фрич Э., Сэмбрук Дж. Выделение, очистка и анализ мРНК прокариотических клеток. 2. Методы разрушения клеток с одновременной инактивацией нуклеаз // Молекулярное клонирование. Методы генетической инженерии. М., 1984. 480 с.
  30. Н.П., Стефанович JI.E. Ангиогенин и механизм ангиогенеза. Новосибирск. Наука, 1997, 62 с.
  31. Ю.П., Воевода М. И., Максимов В. Н. Артериальная гипертензия, и ее связь с наследственной отягощенностью в мужской популяции Новосибирска (программа ВОЗ MONIKA) // Кардиология, 2005. № 8. С. 44 45.
  32. М.Г. Адаптация к физическим нагрузкам. // В кн.: Физиология адаптационных процессов. (Руководство по физиологии). -М.: Наука, 1986. С. 124−222.
  33. О.Е., Хворостова Ю. В., Дымшиц Г. М., Маркель A.JI. Исследование генетических локусов ответственных за эмоциональную стресс-индуцированную артериальную гипертензию у ISIAH крыс // Генетика, 2003. Т. 39. (6). С. 813 818.
  34. Рид Р., Праусниц Д., Шервуд Т. Свойство газов и жидкостей: справочное пособие. JI. Химия, 1982. 592 с.
  35. В.В. Биология эмбрионального развития птиц. JL, Наука, 1968.-425 с.
  36. Я.В. Кровоснабжение скелетных мышц // Физиология кровообращения. Физиология сосудистой системы. Д., Наука, 1984. С. 419 -445.
  37. А.А. Нервный гребень и его нейральные производные // Соросовский образовательный журнал, 1999. № 5. С. 14−21.
  38. А.А. Оксид азота как межклеточный посредник // Соросовский образовательный журнал, 2000. Т. 6. (12). С. 27 34.
  39. Е.Я. О сократительном и несократительном термогенезе в селетных мышцах // Физиол. журн. СССР, 1968. Т. 54. С. 1475 1480.
  40. .И., Левтов В. А. Сравнительная характеристика реакции органных сосудов // Физиология кровообращения. Физиология сосудистой системы. Л., Наука, 1984. С. 576 599.
  41. .П. Общая эмбриология. М., Высшая школа, 1977.512 с.
  42. С.С. Что такое спеклы // Соросовский образовательный журнал, 1999. № 5. С. 112−116.
  43. С.С. Динамика спеклов и эффект Доплера // Соросовский образовательный журнал, 2001. Т. 7. № 10. С. 109 114.
  44. К. Морфогенез и генетика. М., Мир, 1964. 260 с.
  45. В.И., Журавлев И. В., Айдинян Т. Г. Эмбриональное развитие птицы. М., Агропромиздат, 1990. 240 с.
  46. ., Нил Э. Кровообращение. М., Медицина, 1976.464 с.
  47. И.И. Основы сравнительной анатомии. Л., Биомедгиз., 1935. 924 с.
  48. Шмидт-Ниельсен К. Размеры животных: почему они так важны? М., Мир, 1987. 259 с.
  49. К. А. Кровеносные капилляры. Новосибирск, Наука, 1975.-374 с.
  50. К.А. Сердечный выброс и его поорганное распределение у млекопитающих // Ж. эвол. биохим. и физиол., 2004. Т. 40. (4). С. 285 289.
  51. К.А. Критическое напряжение кислорода в клетках и тканях и капиллярный кровоток. // Вопросы экспериментальной и клинической физиологии дыхания. Тверь. 2007. С. 257 267.
  52. К.А., Голубь А. С., Брод В. И., Барбашина Н. Е., Иванова С. Ф., Кривошапкин А. Л., Осипов В. В. Архитектоника кровеносного русла. Новосибирск. Наука., 1982. 184 с.
  53. К. А., Носова М. Н., Коростышевская И. М. Кровеносное русло в скелетной мышце растущих крыс // Росс, физиол. журн. им. И. М. Сеченова, 2004. Т. 90. (12). С. 1542 1554.
  54. У.В., Беличенко В. М., Шошенко К. А., Айзман Р. И. // Клубочковый аппарат и кровоток в почках крыс в постнатальном онтогенезе // Росс, физиол. журн. им. И. М. Сеченова, 2008а. Т. 94. (4). С. 456 464.
  55. У.В., Беличенко В. М., Шошенко К. А., Айзман Р. И. Характеристика клубочков и величина почечного кровотока в покое и после водной нагрузки у крыс в постнатальном онтогенезе // Нефрология и диализ, 20 086. Т. 10. (1). С. 55−61.
  56. Aberle E.D., Stewart T.S. Growth of fiber types and apparent fiber number in skeletal muscle of broiler-and layer-type chickens // Growth, 1983. V. 47. P. 135 144.
  57. Abman S.H., Chatfield B.A., Hall S.L., and McMurtry I.F. Role of endothelium-derived relaxing factor during transition of pulmonary circulation at birth // Am. J. Physiol., 1990. V. 259. P. HI921 H1927.
  58. Adair Т.Н. Growth regulation of the vascular system: an emerging role for adenosine //Am. J. Physiol., 2005. V. 289. P. R283 R296.
  59. Alon Т., Hemo I., It in A., Peer J., Keshet S. Vascular endothelial growth factor acts as a survival factor for newly formed retinal vessels and has implications for retinopathy of prematurity // Nature Med., 1995. V. 1. P. 1024 1028.
  60. Altimiras J., Crossley II D.A. Control of blood pressure mediated by baroreflex changes of heart rate in the chicken embryo (Gallus gallus) // Am. J. Physiol., 2000. V. 278. P. R980 R986.
  61. Andrae J., Gallini R., Betsholtz C. Role of platelet-derived growth factors in physiology and medicine // Genes Dev., 2008. V. 22. P. 1276 -1312.
  62. Antonelli-Orlidge A., Saunders K.B., Smith S.R., D’Amore P.A. An activated form of transforming growth factor P is produced by cocultures of endothelial cells and pericytes //Proc. Nat. Acad. Sci. USA, 1989. V. 86. P. 4544. 4548.
  63. Aperia A., Herin P. Development of glomerular perfusion rate and nephron filtration rate in rats 17−60 days old // Am. J. Physiol., 1975. V. 228. P. 1319- 1325.
  64. Aquin L., Banchero N. The cytoarchitecture and capillary supply in skeletal muscle of growing dogs // J. Anat., 1981. V. 132. P. 341 356.
  65. Ar A., Girard H., Dejours P. Oxygen consumption of the chick embryo’s respiratory organ, the chorioallantoic membrane // Respir. Physiol., 1987. V. 68. P. 377−388.
  66. Asahara Т., Kawamoto A. Endothelial progenitor cells for postnatal vasculogenesis // Am. J. Physiol., 2004. V. 287. P. C572 C579.
  67. Ashinberg L.S., Goldsmith D.I., Olbing H., Spitzer A., Edelman C.M., Blaufox M.D. Neonatal changes in renal blood flow distribution in puppies //Am. J. Physiol., 1975. V. 228. P. 1453 1461.
  68. Auerbach R., Lewis R., Shinners В., Kubai L., Aklitar N. Angiogenesis assays: a critical overview // Clin. Chem., 2003. V.49 (1). P. 32 -40.
  69. Autiero M., De Smet F., Claes F., Carmeliet P. Review. Role of neural guidance signals in blood vessel navigation // Cardiovasc. Res., 2005. V. 65. P. 629- 638.
  70. Baffert F., Le Т., Sennino В., Thurston G., Kuo C.J., Hu-Lowe D., McDonald D. Cellular changes in normal blood capillaries undergoing regression after inhibition of VEGF signaling // Am. J. Physiol., 2006. V.290. P. H547 H559.
  71. Baranov V.I., Belichenko V.M., Shoshenko K.A. Oxygen diffusion coefficient in isolated chicken red and white skeletal muscle fibers in ontogenesis // Microvasc. Res., 2000. V. 60. P. 168 176.
  72. Battcgay E.J., Raines E.W., Seifert R.A., Bowen-Pope D.F., Ross R. TGF-p induces bimodal proliferation of connective tissue cells via complex control of an autocrine PDGF loop // Cell, 1991. V. 63. P. 515 524.
  73. Baumann R., Padeken S., Haller E.A. Functional properties of embryonic chicken hemoglobins // J. Appl. Physiol., 1982. V. 53. P. 1439 -1448.
  74. Baumann R., Padeken S., Haller E.A., Brilmayer T. Effects of hypoxia on oxygen affinity, hemoglobin pattern, and blood volume of early chicken embryos // Am. J. Physiol., 1983. V. 244. P. R733 R741.
  75. Baumann R., Fischer J. Oxygen binding properties of early definitive red cells from normoxic and hypoxic chick embryos // Adv. Exp. Med. Biol., 1985. V. 191. P. 485 494.
  76. Baumann R., Meuer H.-Y. Blood oxygen transport in the early avian embryo // Physiol. Rev., 1992. V. 72. P. 941 965.
  77. Beck L., D’Amore P.A. Vascular development: cellular and molecular regulation//FASEB J., 1997. V. 11. P. 365 373.
  78. Beckman J.S., Koppenol W.H. Nitric oxide, superoxide, and peroxynitrite: the good, the bad, and ugly // Am. J. Physiol., 1996. V. 271. P. С1424 C1437.
  79. Bein K., Odell-Fiddler E.T., Drinane M. Role of TGF-1 and JNK signaling in capillary tube patterning // Am. J. Physiol., 2004. V. 287. P. C1012 C1022.
  80. Belichenko V.M., Korostishevskaya I.M., Maximov V.F., Shoshenko C.A. Mitochondria and blood supply of chicken skeletal muscle fibers in ontogenesis // Microvasc. Res, 2004. V. 68. P. 265 272.
  81. Belik J. Myogenic response in large pulmonary arteries and its ontogenesis // Pediatr. Res., 1994. V. 36. P. 34 40.
  82. Bergwerff M., Verbeme M.E., DeRuiter M.C., Poelmann R.E., Gittenberger-de-Groot A.C. Neural crest contribution to the developing circulatory system: implications for vascular morphology? // Circ. Res., 1998. V. 82. (2). P. 221 -231.
  83. Berk B.C. Vascular smooth muscle growth: autocrine growth mechanisms // Physiol. Rev., 2001. V. 81. P. 999 1030.
  84. Black J.L., Burggren W.W. Acclimation to hypothermic incubation in developing chicken embryos (Gallus domesticus) II. Hematology and blood 02 transport //J. Exp. Biol., 2004. V. 207. P. 1553 1561.
  85. Boels P.J., Deutsch J., Gao В., and Haworth S.G. Maturation of the response to bradykinin in resistance and conduit pulmonary arteries // Cardiovasc. Res., 1999. V. 44. P. 416 428.
  86. Brody S. Bioenergetics and growth. N.Y., 1945. 1023 p.
  87. Brooks P.C., Stromblad S., Sanders, L.C., VonSchalscha T.L., Aimes R.T., Stetler-Stevenson W.G., Quigley J.P., Cheresh D.A. // Cell, 1996. V. 85. P. 683 693.
  88. Bruns G.H.O., Ingram V.M. The erythroid cell and hemoglobins of the chick embryo // Philos. Trans. R. Soc. L., 1973. V. 266. P. 255 305.
  89. Burggren W., Khorrami Sh., Pinder A., Sun T. Body, eye, and chorioallantoic vessel growth are not dependent on cardiac output level in day 3−4 chicken embryos // Am. J. Physiol., 2004. V. 287. P. R1399 R1406.
  90. Burggren W.W., Warburton S.J., Slivkoff M.D. Interruption of cardiac output does not affect short-term growth and metabolic rate in day 3 and 4 chick embiyos // J. Exp. Biol., 2000. V. 203. P. 3831 3838.
  91. Bumstock G. Purinergic signaling and vascular cell proliferation and death // Arterioscler. Thromb. Vase. Biol., 2002. V. 22. P. 364 373.
  92. Childs S., Chen J.-N., Garrity D.M., Fishman M.C. Patterning of angiogenesis in the zebrafish embryo // Development, 2002. V. 129. P. 973 -982.
  93. Choe Y.S., Lee K.H. Targeted In vivo imaging of angiogenesis: present status and perspectives // Cur. Pharmaceut. Des., 2007. V. 13. P. 17 -31.
  94. Clark A.N., Youkey R., Liu X., Jia L., Blatt R., Day Y.-J., Sullivan G.W., Linden J., Tucker A.L. Al Adenosine receptor activation promotesangiogenesis and release of VEGF from monocytes // Circ. Res., 2007. V. 101.P. 1130- 1138.
  95. Clark E.B., Hu N. Developmental hemodynamic changes in the chick embryo from stage 18 to 27 // Circ. Res., 1982. V. 51. P. 810 815.
  96. Clark E.B., Hu N. Dummett J.L., Vandekieft G.K., Olson C., Tomanek R. Ventricular function and morphology in chick embryo from stages 18 to 29 //Am. J. Physiol, 1986. V. 250. P. H407 H413.
  97. Cock A.G. Genetical aspects of metrical growth and form in animals // Quarterly Rev. Biol., 1966. V. 41. P. 131 190.
  98. Coffin J.D., Pool T.J. Embryonic vascular development: immunohistochemical identification of the origin and subsequent morphogenesis of the major vessel primordial in quail embryos // Development, 1988. V. 102. P. 735 748.
  99. Cohen D.M., R. Webb C., Bohr D.F. Nitroprusside-induced vascular relaxation in DOCA hypertensive rats // Hypertension, 1982. V. 4. P. 13−19.
  100. Conway E.M., Collen D., Carmeliet P. Molecular mechanisms of blood vessel growth // Cardiovasc. Res., 2001. V. 49. P. 507 521.
  101. Corey H.E., Spitzer A. Renal blood flow and glomerular filtration rate during development // Pediatric kidney disease. V. 1 The kidney and urinary tract: Development, morphology, and physiology in health and disease. Boston, 1992. P. 49 77.
  102. Crossley D.A. II, Altimiras J. Ontogeny of cholinergic and adrenergic cardiovascular regulation in the domestic chicken (Gallus gallus) // Am. J. Physiol., 2000. V. 279. P. R1091 R1098.
  103. Crossley D.A. II, Burggren W.W., Altimiras J. Cardiovascular regulation during hypoxia in embiyos of the domestic chicken Gallus gallus // Am. J. Physiol., 2003. V. 284. P. R219 R226.
  104. Curtis S.E., Walker T.A., Bradley W.E., Cain S.M. Raising P50 increases tissue P02 in canine skeletal muscle but does not affect critical O2 extraction ratio // J. Appl. Physiol., 1997. V. 83. (5). P. 1681 -1689.
  105. Czirok A., Rupp P.A., Rongish B.J., and Little C.D. Multi-field 3D scanning light microscopy of early embryogenesis // J. Microsc., 2002. V. 206. P. 209−217.
  106. Daemen M.J.AP., DeMay JYR. Regional heterogeneity of arterial structural changes // Hypertension, 1995. V. 25. P. 464 473.
  107. D’Amore P.A., Smith S.R. Growth factor effects on cells of the vascular wall: a survey // Growth Factors, 1993. V. 8. P. 61 75.
  108. Davies P.F., Tripathi S.C. Mechanical stress mechanisms and the cell. An endothelial paradigm // Circ. Res., 1993. V. 72. P. 239 245.
  109. Davies P.F. Flow-mediated endothelial mechanotransduction // Physiol. Rev., 1995. V. 75. P. 519 560.
  110. Davis G.E., Bayless K.J., Mavila A. Molecular basis of endothelial cell morphogenesis in three-dimensional extracellular matrices // Anat. Rec., 2002. V. 268. P. 252 275.
  111. Davis M.J., Hill M.A. Signaling mechanisms underlying the vascular myogenic response // Physiol. Rev., 1999. V. 79. P. 387 423.
  112. Dawes G.S., Mott J.C., Widdicombe J.G. The foetal circulation in the lamb // J. Physiol. (L)., 1954. V. 136. P. 563 587.
  113. Delp M.D., Evans M.V., Duan C. Effects of aging on cardiac output, regional flow, and body composition in Fischer-344 rats // J. Appl. Physiol, 1998. V. 85. (5). P. 1813 1822.
  114. DeMarco C.S., Caniggia I. Mechanisms of oxygen sensing in human trophoblast cells // Placenta, 2002. V. 23. Suppl. A, Trophoblast Res. (16). P. S58 S68.
  115. Dirks A., Leeuwenburgh C. Apoptosis in skeletal muscle with aging // Am. J. Physiol., 2002. V. 282. P. R519 R527.
  116. Djonov V., Schmid M., Tschanz S.A., Burri P.H. Intussusceptive angiogenesis. Its role in embryonic vascular network formation // Circ. Res., 2000. V. 86. P. 286 292.
  117. Djonov V., Baum O., Bum P.H. // Vascular remodeling by intussusceptive angiogenesis // Cell Tissue Res., 2003. V. 314. P. 107 -117.
  118. Docherty C., MacLean M.R. Development of endothelin receptors in perinatal rabbit pulmonary resistance arteries // Br. J. Pharmacol., 1998. V. 124. P. 1165 1174.
  119. Dor Y., Porat R., Keshet E. Vascular endothelial growth factor and vascular adjustments to perturbations in oxygen homeostasis // Am. J. Physiol., 2001. V. 280. P. C1367 C1374.
  120. Dragon S., Baumann R. Hypoxia, hormones, and red blood cell function in chick embryos //News Physiol. Sci., 2003. V. 18. P. 77 82.
  121. Dumont D.J., Fong G.H., Puri M.C., Gradwohl G., Alitalo K., Breitman M.L. Vascularization of the embryo: a study of flk-1, tek, tie and vascular endothelial growth factor expression during development // Dev. Dyn., 1995. V. 203. P. 80−92.
  122. Dunn J.A., Lorch V., and Sinha S.N. Responses of small intrapulmonary arteries to vasoactive compounds in the fetal and neonatal lamb: norepinephrine, epinephrine, serotonin, and potassium chloride // Pediatr. Res., 1989. V. 25. P. 360 363.
  123. Edman A.Ch., Lexell J., Sjostrom M., Squire J.M. Structural diversity in muscle fibres of chicken breast // Cell and Tissue Res., 1988. V.251. (2). P. 281 -289.
  124. Eichmann A., Yuan L., Moyon D., LeNoble F., Pardanaud L., Breant Ch. Vascular development: from precursor cells to branched arterial and venous networks // Int. J. Dev. Biol., 2005. V. 49. P. 259 267.
  125. Else P.L., Brand M. D, Turner N., Hulbert A.J. Respiration rate of hepatocytes varies with body mass in birds // J. Exp. Biol., 2004. V. 207. P. 2305 -2311.
  126. Esser S., Wolburg K., Wolburg H., Breier G., Kurzchalia Т., Risau W. Vascular endothelial growth factor induces endothelial fenestrations in vitro // J. Cell Biol., 1998. V. 140. P. 947 959.
  127. Etchevers H.C., Vincent Ch., LeDouarin N.M., Couly G.F. // The cephalic neural crest provides pericytes and smooth muscle cells to all blood vessels of the face and forebrain // Development, 2001. V. 128. P. 1059 -1068.
  128. Evans H.M. On the development of the aortae, cardinal and umbilical veins, and other blood vessels of vertebrate embryos from capillaries // Anat. Rec., 1909. V. 3. P. 498 518.
  129. Felmeden D.C., Blann A.D. Lip G.Y.H. Angiogenesis: basic pathophysiology and implications for disease // Eur. Heart J., 2003. V. 24. P. 586−603.
  130. Ferguson III J.E., Kelley R.W., Patterson C. Mechanism of endothelial differentiation in embryonic vasculogenesis // Arteriorscler. Thromb. Vase. Biol., 2005. V. 25. P. 2246 2254.
  131. Ferrara N. Role of vascular endothelial growth factor in regulation of physiological angiogenesis // Am. J. Physiol., 2001. V. 280. P. C1358-C1366.
  132. Ferrara N., Carver-Moore K., Chen H., Dowd M., Lu L., O’Shea K., Powell-Braxton L., Hillan K.J., Moore M.W. Heterozygous embryonic lethality induced by targeted inactivation of the VEGF gene // Nature (L), 1996. V. 380. P. 439 442.
  133. Fisher S.A., Langille B.L., Srivastava D. Apoptosis during cardiovascular development // Circ. Res., 2000. V. 87. P. 856 864.
  134. Fong G.Ii., Rossant J., Gertsenstein M., Breitman M.L. Role of the flt-1 receptor tyrosine kinase in regulating the assembly of vascular endothelium //Nature (L), 1995. V. 376. P. 66 70.
  135. Fritsche R. Schwerte Т., Pelster B. Nitric oxide and vascular reactivity in developing zebrafish, Danio rerio // Am.J.Physiol. (Regulatory Integrative Сотр. Physiol.)., 2000. V. 279. P. R2200 R2207.
  136. Fujii S., Hirota A., Kamino K. Optical indication of pace-maker potential and rhytm generation in early chick heart // J. Physiol. (L), 1981. V. 312. P. 253 -263.
  137. Geissinger H.D., Bhatnagar M.K., Friesen D.L. Comparison of mitochondria between adult and neonate rabbit muscle: a scanning andtransmission electron microscopic study // Trans. Am. Microsc. Soc., 1984. V. 103. P. 275−283.
  138. Girard H. Adrenergic sensitivity of circulation in the chick embryo //Am. J. Physiol., 1973. V. 224. P. 461 469.
  139. Gleeson M., Brackenbury J.H. Effects of body temperature on ventilation, blood gases and acid-base balance in exercising fowl // Q. J. Exp. Physiol, 1984. V. 69. P. 61 -72.
  140. Gould S.J. Allometry in primates, with emphasis on scaling and the evolution of the brain // Contribut. Primatol., 1975. V. 5. P. 244 292.
  141. Grubb B.R. Allomrtric relation of cardiovascular function in birds //Am. J. Physiol., 1983. V. 245. P. H567-H572.
  142. Guimaraes S., Moura D. Vascular adrenoceptors: an update // Pharmacol. Rev., 2001. V. 53. P. 319 356.
  143. Haas T.L., Milkiewicz M., Davis S.J., Zhou A.L., Egginton S., Brown M.D., Madri J.A., Hudlicka O. Matrix metalloproteinase activity is required for activity induced angiogenesis in rat skeletal muscle // Am. J. Physiol., 2000. V. 279. P. H1540 H1547.
  144. Heimark R.L., Twardzik D.R., Schwartz S.M. Inhibition of endothelial regeneration by type-beta transforming growth factor from platelets // Science, 1986. V. 233. P. 1078 1080.
  145. Helm C.L.E., Fleury M.E., Zisch A.H., Boschetti F., Swartz M.A. Synergy between interstitial flow and VEGF directs capillary morphogenesis in vitro through a gradient amplification mechanism // PNAS, 2005. V. 102. (44). P. 15 779- 15 784.
  146. Helmke B.P., Davies P.F. The cytoskeleton under external fluid mechanical forces: hemodynamic forces acting on the endothelium // Ann. Biomed. Eng., 2002. V. 30. P. 284 296.
  147. Hillegass J. M, Villano C.M., Cooper K.R., and White L.A. Glucocorticoids alter craniofacial development and increase expression and activity of matrix metalloproteinases in developing zebrafish (Danio rerio) // Toxicol. Sci., 2008. V. 102. P. 413 424.
  148. Hirakow R., Hiruma T. Scanning electron microscopic study on the development of primitive blood vessels in chick embryos at the early somite-stage // Anat. Embryol. (B), 1981. V. 163. P. 299 306.
  149. Hoagland V. Determination of protein concentration // Chemistry. Sonoma State University, 2001. V. 441. P. 1 6.
  150. Hobbhahn J., Conzen P.F.M.t, Goetz Al, Seidl G., Gonschior P., Brendel W., PETER K. Myocardial surface p02 an indicator of myocardial tissue oxygenation? // Cardiovasc. Res., 1989. V. 23. P. 529 — 540.
  151. Hochel J, Akiyama R., Masuko Т., Pearson J.Т., Nichelmann M, Tazawa H. Development of heart rate irregularities in chick embryos // Am. J. Physiol., 1998. V. 275. P. H527 H533.
  152. Hofmann J.J., Iruela-Arispe M.L. Notch signaling in blood vessels. Who is talking to whom about what? // Circ. Res., 2007. V. 100. P. 1556 -1568.
  153. Hogers В., DeRuiter M.C., Baasten A.M.J., Gittenberger-de-Groot A.C., Poelman R.E. Intracardiak blood flow patterns to the yolk sac circulation of the chick embryo // Circ. Res., 1995. V. 76. P. 871 877.
  154. Hogers В., DeRuiter M.C., Gittenberger-deGroot A. C, Poelmann R. E Unilateral vitelline vein ligation alters intracardiac blood flow patterns and morphogeneis in the chick embryo // Circ. Res., 1997. V. 80. P. 473 481.
  155. Horster M., Lewy J.E. Filtration fraction and extraction of PAH during neonatal period in the rat // Am. J. Physiol., 1975. V. 219. P. 1061 -1065.
  156. Hove J.R., Koster R.W., Forouhar A.S., Acevedo-Bolton G., Fraser S.E., Gharib M. Intracardiac fluid forces are an essential epigenetic factor for embryonic cardiogenesis //Nature, 2003. V. 421. P. 172 177.
  157. Hu N., Clark E.B. Hemodynamics of the stage 12 to stage 29 chick embryo // Circ. Res., 1989. V. 65. P. 1665 1670.
  158. Hulbert A.J. Life, death and membrane bilayers // J. Exp. Biol., 2003. V. 206. P. 2303−2311.
  159. Hulbert A.J. and Else P.L. Review. Membranes and the setting of energy demand // J. Exp. Biol., 2005. V. 208. P. 1593 1599.
  160. Hulbert A.J., Faulks S., Buttemer W.A., Else P.L. Acyl composition of muscle membranes varies with body size in birds // J. Exp. Biol., 2002. V. 205. P. 3561 -3569.
  161. Hungerford J.E., Little C.D. Developmental biology of the vascular smooth muscle cell: building a multilayered vessel wall // J. Vase. Res., 1999. V. 36. P. 2−27.
  162. Huxley, J. S. Constant differential growth-ratios and their significance//Nature, 1924. V. 114. P. 895 896.
  163. Huxley J.S., and Teissier G. Terminology of relative growth // Nature, 1936. V. 137. P. 780 781.
  164. Isogai S., Iloriguchi M., and Weinstcin B.M. The vascular anatomy of the developing zebrafish: an atlas of embryonic and early larval development //Dev. Biol., 2001. V. 230. P. 278 301.
  165. Isogai S., Lawson N.D., Torrealday S., Horiguchi M., Weinstein B.M. Angiogenic network formation in the developing vertebrate trunk // Development, 2003. V. 130. P. 5281 5290.
  166. Jaffee O.C. Rheological aspects of development of blood flow patterns in the chick embryo heart// Biorheology, 1966. V. 3. P. 59 62.
  167. Johnston S.D., Orgeig S., Lopatko O.V., and Daniels C.B. Development of the pulmonary surfactant system in two oviparous vertebrates // Am. J. Physiol., 2000. V. 278. P. R486-R493.
  168. Jones E.A.V., Baron M.H., Fraser S.E., Dickinson M.E. Measuring hemodynamic changes during mammalian development // Am. J. Physiol., 2004. V. 287. P. H1561 H1569.
  169. Jones E.A.V., LeNoble F., Eichmann A. What Determines Blood Vessel Structure? Genetic Prespecification vs. Hemodynamics // Physiology, 2006. V. 21. P. 388 395.
  170. Jussila L., Alitalo K. Vascular growth factors and lymphangiogenesis // Physiol. Rev., 2002. V. 82. P. 673 700.
  171. Keyt B.A., Berleau L.T., Nguyen H.V., Chen H., Heinsohn H., Vandlen R., Ferrara N. The carboxyl-terminal domain (111−165) of vascular endothelial growth factor is critical for its mitogenic potency // J. Biol. Chem., 1996. V. 271. P. 7788−7795.
  172. Khorrami S., Tazawa H., Burggren W. Blood-doping effects on hematocrit regulation and oxygen consumption in latestage chicken embryos (Gallus gallus) // J. Exp. Biol., 2008. V. 211. P. 883 889.
  173. Kingsley D.M. The TGF-P superfamily: New members, new receptors, and newgenetic tests of function in different organisms // Genes and Dev., 1994. V. 8. P. 133 146.
  174. Klagsbrun M. and D’Amore P.A. Vascular endothelial growth factor and its receptors // Cytocinc and Growth Factor Rev., 1996. V. 7. P. 259 270.
  175. Klingenberg Ch.P. Heterochrony and allometry: the analysis of evolutionary change in ontogeny // Biol. Rev. Camb. Philos. Soc., 1998. V. 73.(1). P. 79- 123.
  176. Korff Т., Augustin II.G. Tensional forces in fibrillar extracellular matrices control directional capillary sprouting // J. Cell Sci., 1999. V. 112. P. 3249 3258.
  177. Korhonen J., Polvi A., Partanen J., Alitalo K. The mouse tie receptor tyrosin kinase gene: expression during embryonic angiogenesis // Oncogene, 1994. V. 9. P. 395 403.
  178. Kurjiaka D.T., Segal S.S. Autoregulation during pressor response elevates wall shear rate in arterioles // J. Appl. Physiol., 1996. V. 80. P. 598 -604.
  179. Kurz H., Burri P.H., Djonov V.G. Angiogenesis and vascular remodeling by intussusception: from form to function // News Physiol. Sci., 2003. V. 18. P. 65−70.
  180. Kuzuya M., Iguchi A. Role of matrix metalloproteinases in vascular remodeling // J. Atheroscler. Tromb., 2003. V. 10. P. 275 282.
  181. Lasiewski R.C., Calder W.A. A preliminary allometric analysis of respiration variables in resting birds // Resp. Physiol., 1971. V. 11. (2). P. 152 166.
  182. LaRue A.C., Mironov V.A., Argraves W.S., CziroDk A., Fleming P.A., Drake Ch.J. Patterning of embryonic blood vessels // Dev. Dyn., 2003. V. 228. P. 21 -29.
  183. LeDouarin N.M., Creuzet S., Couly G., Dupin E. Neural crest cell plasticity and its limits // Development, 2004. V. 131. P. 4637 4650.
  184. LeGrande M.C., Paff G.H., Boucek R.J. Initiation of vagal control of heart rate in the embryonic chick// Anat. Rec., 1966. V. 155. P. 163 166.
  185. LeNoble F., Fleury V., Pries A., Corvol P. Eichmann A., Reneman R.S. Control of arterial branching morphogenesis in embryogenesis: go with the flow // Cardiovasc. Res., 2005. V. 65. P. 619 628.
  186. LeNoble F., Klein Ch., Tintu A., Pries A., Buschmann I. Neural guidance molecules, tip cells, and mechanical factors in vascular development // Cardiovasc. Res., 2008. V. 78. P. 232 241.
  187. LeNoble F., Moyon D., Pardanaud L., Yuan L., Djonov V., Matthijsen R., Breant Ch., Fleury V., Eichmann A. Flow regulates arterial-venous differentiation in the chick embryo yolk sac // Development, 2004. V. 131. P. 361 -375.
  188. LeNoble F.A., Ruijtenbeek K., Gommers S., deMey J.G., Blanco C.E. Contractile and relaxing reactivity in carotid and femoral arteries of chicken embryos // Am. J. Physiol., 2000. V. 278. P. HI261 HI268.
  189. Levy M., Souil E“ Sabry S., Favatier F., Vaugelade P., Mercier J.C., DalPAva-Santucci J., Dinh-Xuan A.T. Maturational changes of endothelial vasoactive factors and pulmonary vascular tone at birth // Eur. Respir. J., 2000. V. 15. P. 158 165.
  190. Lilja C. A comparative study of postnatal growth and organ development in some species of birds // Growth, 1983. V. 47. P. 317 339.
  191. Lipowsky H.H., Kovalcheck S., Zweifach B.W. The distribution of blood rheological parameters in the microvasculature of cat mesentery // Circulat. Res., 1978. V. 43. (5). P. 738 749.
  192. Lipowsky H.H., Zweifach B.W. Network analysis of microcirculation of cat mesentery // Microvasc. Res., 1974. V. 7. (1). P. 73 -83.
  193. Liu S.F., Hislop A.A., Haworth S.G., Barnes P.J. Developmental changes in endothelium-dependent pulmonary vasodilatation in pigs // Br. J. Pharmacol., 1992. V. 106. P. 324 330.
  194. Lopez M.L.S., Chernavvsky D.R., Nomasa Т., Wall L., Yanagisawa M., Gomez R.A. The embryo makes red blood cell progenitors in every tissue simultaneously with blood vessel morphogenesis // Am. J. Physiol., 2003. V. 284. P. R1126- R1137.
  195. Lucitti J.L., Tobita K., Keller B.B. Arterial hemodynamics and mechanical properties after circulatory intervention in the chick embryo // J. Exp. Biol., 2005. V. 208. P. 1877 1885.
  196. Lucitti J.L., Jones E.A.V., Huang Ch., Chen J., Fraser S.E., Dickinson M.E. Vascular remodeling of the mouse yolk sac requires hemodynamic force// Development, 2007. V. 134. P. 3317 3326.
  197. Majesky M.W. Developmental basis of vascular smooth muscle diversity //Arterioscler. Thromb. Vase. Biol., 2007. V. 27. P. 1248 1258.
  198. Makanya A.N., Hlushchuk R, Baum O., Velinov N., Ochs M., Djonov V. Microvascular endowment in the developing chicken embryo lung // Am. J. Physiol., 2007. V. 292. P. LI 136 LI 146.
  199. Makarieva A.N., Gorshkov V.G., Li B.L., Chown S.N., Reich P.B., Gavrilov V.M. Mean mass-specific metabolic rates are strikingly similar across life’s major domains: Evidence for life’s metabolic optimum // PNAS, 2008. V. 105. (44). P. 16 994 16 999.
  200. Manner J. Ontogenetic development of the helical heart: concepts and facts // Eur. J. Cardiothorac. Surg., 2006. V. 29. P. 69 74.
  201. Martinsen B.J. Reference guide to the stages of chick heart embryology // Dev. Dyn., 2005. V. 233. P. 1217 1237.
  202. Mathieu-Costello O. Comparative aspects of muscle capillary supply // Annu. Rev. Physiol., 1993. V. 55. P. 503 525.
  203. Mattot V., Moons L, Lupu F., Chernavvsky D, Gomez R. A, Collen D, Carmeliet P. Loss of the VEGF164 and VEGFi88 isoforms impairs postnatal glomerular angiogenesis and renal arteriogenesis in mice // J. Am. Soc. Nephrol, 2002. V. 13. P. 1548 1560.
  204. McCarty L. P, Lee W. C, Shideman F.E. Measurement of the inotropic effects of drugs on the innervated and noninnervated embryonic chick heart//J. Pharmacol. Exp. Ther, 1960. V. 129. P. 315 321.
  205. McCurdy M. R, Colleran P. N, Muller-Delp J, Delp M.D. Selected Contribution: Effects of fiber composition and hindlimb unloading on the vasodilator properties of skeletal muscle arterioles // J. Appl. Physiol, 2000. V. 89. P. 398−405.
  206. Medina C, Radomski M.W. Role of matrix metalloproteinases in intestinal inflammation // J. Pharmacol. Exp. Therap, 2006. V. 318. P. 933 -938.
  207. Meuer H.J. Erythrocyte velocity and total blood flow in the extraembryonic circulation of early chick embiyos determined by digital video technique // Microvasc. Res, 1992. V. 44. (3). P. 286−294.
  208. Meuer H. J, Baumann R. Oxygen supply of early chick embryo in normoxia and hypoxia // J. Exp. Zool. Suppl, 1987. V. 1. P. 203 207.
  209. Meuer H. J, Baumann R. Oxygen pressure in intra and extraembryonic blood vessels of early chick embryo // Respir. Physiol, 1988. V. 71. P. 331 -342.
  210. Meuer H.J., Bertram С. RBC transit time in capillaiy mesh networks of early embryonic respiratory organ // Int. J. Microcirc. Clin. Exp., 1989. V. 8. Suppl. l.P. S53.
  211. Meuer H.J., Hartmann V., Jopp S. Tissue p02 and growth rate in early chick embryos // Respir. Physiol., 1992. V. 90. (2). P. 227−237.
  212. Millauer В., Wizigmann-Voos S., Schnurch H., Martinez R., Moler N.P.H., Rissau W., Ullrich A. High affinity VEGF binding and developmental expression suggest Flk-1 as major regulator of vasculogenesis and angiogenesis // Cell, 1993. V. 72. P. 835 846.
  213. Miller C.E., Wong C.L., Sedmera D. Pressure overload alters stress-strain properties of the developing chick heart // Am. J. Physiol., 2003. V. 285. P. H1849 H1856.
  214. Miquel J., Fleming J. Theoretical and experimental support for an „oxygen radical mitochondrial injury“ hypothesis of cell aging // Free radicals, aging, and degenerative diseases. N.Y.: Liss., 1986. P. 51 — 74.
  215. Moon J.J., Matsumoto M., Patel S., Lee L., Guan J.L., Li S. Role of cell surface heparan sulfate proteoglycans in endothelial cell migration and mechanotransduction // J. Cell Physiol., 2005. V. 203. P. 166 176.
  216. Moorman A.F.M., Christoffels V.M. Cardiac chamber formation: development, genes, and evolution // Physiol. Rev. 2003. V. 83. P. 1223 -1267.
  217. Moorman A.F.M., Schalekamp M.P.A., Deboer P.A.J., Geerts W.J.C., Lamers W.H., Charles R. Immunohistochemical analysis of the distribution of histone H5 and hemoglobin during chicken development // Differentiation, 1987. V. 34. P. 161 167.
  218. Morecroft I., MacLean M.R. Developmental changes in endothelium-dependent vasodilation and the influence of superoxide anions inperinatal rabbit pulmonary arteries // Br. J. Pharmacol., 1998. V. 125. P. 1585 1593.
  219. Moroianu J., Riordan J.F. Nuclear translocation of angiogenin in proliferating endothelial cells is essential to its angiogenic activity // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1994. V. 91. P. 1677 1681.
  220. Moyes C.D., LeMoine C. Control of musclc bioenergetic gene expression: implications for allometric scaling relationships of glycolytic and oxidative enzymes // J. Exp. Biol., 2005. V. 208. P. 1601 1610.
  221. Moyon D., Pardanaud L., Yuan L., Breant Ch, Eichmann A. Plasticity of endothelial cells during arterial-venous differentiation in the avian embryo // Development, 2001. V. 128. P. 3359 3370.
  222. Mulder A.L.M., Van Golde J.C., Prinzen F.W. and Blanco C.E. Cardiac output distribution in response to hypoxia in the chick embryo in the second half of the incubation time // J. Physiol., 1998. V. 508. P. 281 287.
  223. Mulder A.L., Golde J.M., Goor A.A., Giussani D.A., and Blanco C.E. Developmental changes in plasma catecholamine concentrations during normoxia and acute hypoxia in the chick embryo // J. Physiol., 2000. V. 527. P. 593 599.
  224. Mulder A.L.M.,, Miedema A., DeMey J.G.R., Giussani D.A., Blanco C.E. Sympathetic control of the cardiovascular response to acute hypoxemia in the chick embryo // Am. J. Physiol., 2002. V. 282. P. R1156 -R1163.
  225. Mulder A.L.M., VanGoor C.A., Giussani D.A., Blanco C.E. a -Adrenergic contribution to the cardiovascular response to acute hypoxemaia in the chick embryo // Am. J. Physiol., 2001. V. 281. P. R2004 R2010.
  226. Muller-Delp J., Spier S.A., Ramsey M.W., Lesniewski L.A., Papadopoulos A., Humphrey J. D., Delp M.D. Effects of aging onvasoconstrictor and mechanical properties of rat skeletal muscle arterioles // Am. J. Physiol., 2001. V. 282. P. HI 843 HI 854.
  227. Murray В., Wilson D.J. Muscle patterning, differentiation and vascularisation in the chick wing bud // J. Anat., 1997. V. 190. P. 261 273.
  228. Nagase H., Fields C.G., Fields G.B. Design and characterization of fluorogenic substrate selectively hydrolyzed by stromelysin 1 (Matrix Metalloproteinase-3) // J. Biol. Chem., 1994. V. 269. (33). P. 20 952 20 957.
  229. Nagase H., Woessner J.F. Matrix metalloproteinases // J. Biol. Chem., 1999. V. 274. P. 21 491 21 494.
  230. Nicosia R.F., Villaschi S. Rat aortic smooth muscle cells become pericytes during angiogenesis in vitro // Lab. Invest., 1995. V. 73. P. 658 -666.
  231. Nielsen N.W. Microangiography in explanted chick embryos // Microvasc. Res., 1981. V. 22. P. 156 170.
  232. Niessen K., Karsan A. Notch signaling in the developing cardiovascular system // Am. J. Physiol., 2007. V. 293. P. CI CI 1.
  233. Nyengaard J.R. Number and dimensions of rat glomerular capillaries in normal development and after nephrectomy // Kidney Int., 1993. V. 43. (5). P. 1049 1057.
  234. Ogata N. Morphological and cytochemical features of fiber types in vertebrate skeletal muscle // Crit. Rev. Anat. Cell Biol., 1988. V. 1. P. 229 -275.
  235. Olbing H., Blaufox M.D., Ashinberg L.C. Postnatal changes in renal glomerular blood flow distribution on in puppies // J. Clin. Invest., 1973. V. 52. P. 2885 -2895.
  236. Orlidge A., D’Amore P.A. Inhibition of capillary endothelial cell growth by pericytes and smooth muscle cells // J. Cell Biol., 1987. V. 105. P. 1455 1462.
  237. Owens G.K., Kumar M.S., Wamhoff B.R. Molecular regulation of vascular smooth muscle cell differentiation in development and disease // Physiol. Rev., 2004. V. 84. P. 767 801.
  238. Pappano A.J. and Loffelholz K. Ontogenesis of adrenergic and cholinergic neuroeffector transmission in chick embryo heart // J. Pharmacol. Exp. Ther., 1974. V. 191. P. 468 478.
  239. Pardanaud L., Altman C., Kross P., Dieterlen-Lievre F., Buck C.A. Vasculogenesis in the early quail blastodisc as studied with a monoclonal antibody recognizing endothelial cells // Development, 1987. V. 100. P. 339 -349.
  240. Parera M.C., van Dooren M., van Kempen M., de Krijger R, Grosveld F., Tibboel D., Rottier R. Distal angiogenesis: a new concept for lung vascular morphogenesis // Am. J. Physiol., 2005. V. 288. P. L141 L149.
  241. Poole T.J., Coffin J.D. Developmental angiogenesis: quail embryonic vasculature // Scanning Microsc., 1988. V. 2. P. 443 448.
  242. Pries A.R., Secomb T.W., Gaehtgens P. Structural adaptation and stability of microvascular networks: theory and simulations //Am. J. Physiol., 1998. V. 275. P. H349-H360.
  243. Puri M.C., Rossant J., Alitalo K., Bernstein A., Partanen J. The receptor tyrosine kinase TIE is required for integrity and survival of vascular endothelial cells // EMBO J., 1995. V. 14. P. 5884 5891.
  244. Reagen F.P., Vascularization phenomena in fragments of embryonic bodies completely isolated from yolk-sak blastoderm // Anat. Rec., 1915.V. 9. P. 329 341.
  245. Reckova M., Rosengarten C., deAlmeida A., Stanley C.P., Wessels A., Gourdie R.G., Thompson R.P., Sedmera D. Hemodynamics is a key epigenetic factor in development of the cardiac conduction system // Circ. Res., 2003. V. 93. P. 77−85.
  246. Reneman R.S., Arts Th., Hoeks A.P.G. Wall shear stress an important determinant of endothelial cell function and structure — in the arterial system in vivo // J. Vase. Res., 2006. V. 43. P. 251 — 269.
  247. Rengasamy A., Johns R.A. Characterization of endothelium-derived relaxing factor/nitric oxide synthase from bovine cerebellum and mechanism of modulation by high and low oxygen tensions // J. Pharmacol. Exp. Ther., 1991. V. 259. P. 310 316.
  248. Resnick N., Gimbrone M.A.Jr. Hemodynamic forces are complex regulators of endothelial gene expression // FASEB J., 1995. V. 9. P. 874 -882.
  249. Roca C., Adams R.H. Regulation of vascular morphogenesis by Notch signaling // Genes Dev., 2007. V. 21. P. 2511 2524.
  250. Rohovsky S.A., Hirschi K.K., D’Amore P.A. Growth factor effects on a model of vessel formation // Surg. Forum, 1996. V. 47. P. 390 -391.
  251. Ruijtenbeek K., DeMey J.G.R., Blanco C.E. Ehmke H. The chicken embryo in developmental physiology of the cardiovascular system: a traditional model with new possibilities // Am. J. Physiol., 2002. V. 283. P. R549-R551.
  252. Ruberte J, Carretero A, Navarro M, Marcucio R. Noden D. Morphogenesis of blood vessels in the head muscles of avian embryo: spatial, temporal, and VEGF expression analyses // Dev. Dyn, 2003. V. 227. P. 470 -483.
  253. Rupert H, Horn N, Selg M, Wendler O, Pausch F, Sorokin L.M. Expression and function of laminins in the embryonic and mature vasculature // Physiol. Rev, 2005. V. 85. P. 979 1000.
  254. Rychter Z. Experimental morphology of the aortic arches and heart loop in chick embryos.//Adv. Morphologen, 1962. V. 2. P. 333 371.
  255. Sarelius I. H, Damon D. N, Duling B.R. Microvascular adaptation during maturation of striated muscle// Am. J. Physiol, 1981. V. 241. P. 11 317 H324.
  256. Sato Y, Riflcin D.B. Inhibition of endothelial cell movement by pericytes and smooth muscle cell: activation of latent transforming growth factor-beta 1-like molecule by plasmin during co-culture // J. Cell Biol, 1989. V. 109. P. 309 315.
  257. Sato T. N, Qin Y, Kozak C, Audus K.L. Tie-1 and Tie-2 define another class of putative receptor tyrosine kinase genes expressed in early embryonic vascular system // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1993. V. 90. P. 9355 9358.
  258. Sato T, Tozawa Y, Deutsch U, Wolburg-Buchholz K, Fujiwara Y, Gendron-Maguire M, Gridley T, Wolbutg H, Rissau W, Qin Y. Distinct roles of the receptor tyrosine kinases Tie-1 and Tie-2 in blood vessel formation//Nature (L), 1995. V. 376. P. 70.
  259. Schatteman G. C, Motley S. T, Effmann EX., Bowen-Pope D.F. Platelet-derived growth factor receptor alpha subunit deleted patch mouse exhibits severe cardiovascular dysmorphogenesis // Teratology, 1995. V. 51. P. 351 -366.
  260. Schmelter M., Ateghang В., Helmig S., Wartenberg M., Sauer H. Embryonic stem cells utilize reactive oxygen species as transducers of mechanical strain-induced cardiovascular differentiation // FASEB J., 2006. V. 20. P. 1182 1184 and P. E294 — E306.
  261. Schmidt A., Brixius K., Bloch W. Endothelial precursor cell migration during vasculogenesis // Circ. Res., 2007. V. 101. P. 125 136.
  262. Seymour R.S., Runciman S., Baudinette R.V., Pearson J.T. Developmental allometry of pulmonary structure and function in the altricial Australian pelican Pelecanus conspicillatus // J. Exp. Biol., 2004. V. 207. P. 2663 2669.
  263. Seymour R.S., Visschedijk A.H.J. Efects of variation in total and regional shell conductance on air cell gas tensions and regional gas exchange in chicken eggs // J. Сотр. Physiol., B, 1988. V. 158. P. 229 236.
  264. Shalaby F., Rossant J., Yamaguchi T.P., Gertsenstein M» Wu X,-F., Breitman M.L., Schuh A.C. Failure of blood-asland formation and vasculogenesis in Flk-1 deficient mice. //Nature (L), 1995. V. 376. P. 62 66.
  265. Shaul P.W., Farrar M.A., Zellers T.M. Oxygen modulates endothelium-derived relaxing factor production in fetal pulmonary arteries // Am. J. Physiol., 1992. V. 262. P. H355 H364.
  266. Shaul P.W., Wells L.B. Oxygen modulates nitric oxide production selectively in fetal pulmonary endothelial cells // Am. J. Physiol., 1994. V. 11. P. 432 -438.
  267. Sillau A.H., Banchero N. Effect of maturation on capillary density, fiber size and composition in rat skeletal muscle // Proc. Soc. Exp. Biol. Med., 1977. V. 154. P. 461 -466.
  268. Simons J.R. The blood vascular system // Biology and comparative physiology of birds. Academic Press N.-Y. L. 1 (Ch.9), 1960. P.345 — 363.
  269. Smith M.L., Long D.S., Damiano E.R., Ley K. Near-wall micro-PIV reveals a hydrodynamically relevant endothelial surface layer in venules in vivo // Biophys. J., 2003. V. 85. P. 637 645.
  270. Stamler J.S., Meissner G. Physiology of nitric oxide in skeletal muscle // Physiol. Rev., 2001. V. 81. P. 209 237.
  271. Sthal W.R. Similarity and dimensional methods in biology // Science, 1962. V. 137. P. 205 212.
  272. Sthal W.R. Scaling of respiratory variables in mammals // J. Appl. Physiol., 1967. V .22. (3). P. 453 460.
  273. Stone J., Itin A., Alon Т., Peer J., Gnessin H., Chan-Ling Т., Keshet E. Development of retinal vasculature is mediated by hypoxia-induced vascular endothelial growth factor (VEGF) expression by neuroglia // J. Neurosci., 1995. V. 15. P. 4738 4747.
  274. Suri C., Jones P.F., Patan S., Bartunkova S., Maisonpierre P.C., Davis S., Sato T.N., Yancopoulos G.D. Recquisite role of angiopoietin-1, a ligand for the TIE-2 receptor, during embryonic angiogenesis // Cell, 1996. V. 87. P. 1171 -1180.
  275. Sutendra G., Michelakis E.D. The chicken embryo as a model for ductus arteriosus developmental biology: cracking into new territory // Am. J. Physiol., 2007. V. 292. P. R481 R484.
  276. Suzuki J., Gao M., Xie Z., Koyama T. Effects of the p2-adrenergic agonist clebutcrol on capillary geometry in cardiac and skeletal muscles in young and middle-aged rats // Acta Physiol. Scand., 1997. V. 161. P. 317 -326.
  277. Szolnoki Z., Havasi V., Bene J., Komlosi K. Endothelial nitric oxide synthase gene interactions and the risk of ischaemic stroke // Acta Neurol. Scand., 2005. V. 111. (1) P. 29−33.
  278. Taylor C.R., Weibcl E.R. Design of mammalian respiratory system I. Problem and strategy // Resp. Physiol., 1981. V. 44. P. 1 10.
  279. Taylor C.R., Weibel E.R., Weber J.-M., Vock R., Hoppeler H., Roberts T.J., Brichon G. Design of the oxygen and substrate pathways I. Model and strategy to test symmorphosis in a network structure // J. Exp. Biol., 1996. V. 199. V. 1643 1649.
  280. Tazawa H. Measurement of respiratory parameters in blood of chick embryo // J. Appl. Physiol., 1971a. V.30. (1). P. 17 20.
  281. Tazawa H. Respiratory properties of chicken embiyonic blood during development // Respir. Physiol., 1971b. V. 13. P. 160 170.
  282. Tazawa H. Effect of O2 and CO2 in N2, He, and SF6 on chick embryo pressure and heart rate // J. Appl. Physiol., 1981a. V. 51. P. 1017 -1022.
  283. Tazawa Ii. Measurement of blood pressure of chick embryo with an implated needle catheter // J. Appl. Physiol., 1981b. V. 51. P. 1023 1026.
  284. Tazawa H., Nakagawa S. Response of egg temperature, heart rate and blood pressure in the chick embryo to hypothermal stress // J. Сотр. Physiol. В., 1985. V. 155. P. 195 200.
  285. Tazawa H., Pearson J.T., Komoro T. and Ar A. Allometric relationships between embryonic heart rate and fresh egg mass in birds // J. Exp. Biol., 2001. V. 204. (1). P. 165 174.
  286. Troy S., Rosenberg R., Aird W., Quertermous Т., Johnson F.L., Garcia J.G.N., Hebbel R.P., Tuder R.M., Garfinkel S. NHLBI workshop report: endothelial cell phenotypes in heart, lung, and blood diseases // Am. J. Physiol, 2001. V. 281. P. C1422 C1433.
  287. Tsai A.G., Johnson P.C., Intaglietta M. Oxygen gradients in the microcirculation. //Physiol. Rev., 2003. V. 83. P. 933 963.
  288. Turner N., Else P.L., Hulbert A.J. An allometric comparison of microsomal membrane lipid composition and sodium pump molecular activity in the brain of mammals and birds // J. Exp. Biol., 2005. V. 208. P. 371 381.
  289. VanGolde J.M.C.G., Mulder T.A.L.M., Scheve E., Prinzen F.W., Blanco C.E. Hyperoxia and local organ blood flow in the developing chick embryo // J. Physiol., 1999. V. 515.1. P. 243−248.
  290. VanHinsbergh V.W.M., Engelse M.A., Quax P.H.A. Pericellular proteases in angiogenesis and vasculogenesis // Arterioscler. Thromb. Vase. Biol., 2006. V. 26. P. 716 728.
  291. VanHinsbergh V.W.M., Koolwijk P. Endothelial sprouting and angiogenesis: matrix metalloproteinases in the lead // Cardiovasc. Res., 2008. V. 78. P. 203 -212.
  292. Villamor E., Ruijtenbeek K., Pulgar V., DeMey Jo G. R, Blanco C.E. Vascular reactivity in intrapulmonary arteries of chicken embryos during transition to ex ovo life. // Am. J. Physiol., 2002. V. 282. P. R917 R927.
  293. Vink H., Duling B.R. Identification of distinct luminal domains for macromolecules, erythrocytes, and leukocytes within mammalian capillaries // Circ. Res., 1996. V. 79. P. 581 589.
  294. Visse R., Nagase H. Matrix metalloproteinases and tissue inhibitors of metalloproteinases: structure, function and biochemistry // Circ. Res., 2003. V. 92. P. 827 839.
  295. Wagnan A.J., Hu N., Clark E.B. Effect of changes in circulatingiblood volume on cardiac output and arterial and ventricular blood pressure in the stage 18, 24, and 29 chick embryo // Circ. Res., 1990. V. 67. P. 187 192.
  296. Waldo K.L., Kumiski D.H., Kriby M.L. Association of the cardiac neural crest with development of the coronary arteries in the chick embryo // Anat. Rec., 1994. V. 239. P. 315 331.
  297. Wangensteen O.D., Rahn H. Respiratory gas exchange by the avian embryo // Respir. Physiol., 1970/1971. V. 11. P. 31 45.
  298. Warburg O., Christian W. Isolierung und Kristallisation des Garungsferments Enolase//Biochem. Z., 1941. Bd. 310. S. 384 421.
  299. Weibcl E.R., Hoppeler H. Exercise-induced maximal metabolic rate scales with muscle aerobic capacity // J. Exp. Biol., 2005. V. 208. (9). P. 1635 1644.
  300. West G.B., Brown J.H. The origin of allometric scaling laws in biology from genomes to ecosystems: towards a quantitative unifying theory of biological structure and organization // J. Exp. Biol., 2005. V. 208. P. 1575 1592.
  301. White P.T. Experimental studies on the circulatory system of the late chick embryo //Exp. Biol, 1974. V. 61. P. 571 592.
  302. Wikenheiser J, Doughman Y.-Q, Fisher S. A, Watanabe M. Differential levels of tissue hypoxia in the developing chicken heart // Dev. Dyn, 2006. V. 235. P. 115 123.
  303. Wilting J, Brand-Saberi B, Kurz H, Christ B. Development of the embryonic vascular system // Cell. Mol. Biol. Res, 1995. V. 41. P. 219 -232.
  304. Windle W. F, Barcroft J. Some factors governing initiation of respiration in the chick // Am. J. Pysiol, 1938. V. 121. P. 684 691.
  305. Yoshigi M, Ettel J. M, Keller B.B. Developmental changes in flow-wave propagation velocity in embryonic chick vascular system // Am. J. Physiol, 1997. V. 273. P. HI 523 HI 529.
  306. Zahka K. G, Hu N. Brin K. P, Yin F.C.P, Clark E.B. Aortic impedance and hydraulic power in the chick embryo from stages 18 to 29 // Circ. Res, 1989. V. 64. P. 1091 1095.
  307. Zakrzewicz A, Secomb T. W, Pries A.R. Angioadaptation: keeping the vascular system in shape // News Physiol. Sci, 2002. V. 17. P. 197−201.
  308. Zicha J, Kunes J. Ontogenetic aspects of hypertension development: analysis in the rat // Physiol. Rev, 1999. V. 79. P. 1227 1282.
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?