Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Роль иммунной системы в формировании задержки внутриутробного развития плода

Диссертация: Роль иммунной системы в формировании задержки внутриутробного развития плода
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Материалы диссертации доложены и обсуждены на 2-м Национальном конгрессе РААКИ «Современные проблемы аллергологии, клинической иммунологии и иммунофармакологии» (Москва, 1998), 7 Международном конгрессе по иммунологии репродукции (Нью Дели, Индия, 1998), 3 международной конференции «Дни иммунологии в Санкт-Петербурге» (Санкт-Петербург, 1999), Европейском Съезде по иммунологии и репродукции (Рим… Читать ещё >

Содержание

  • Глава 1. ЛИТЕРАТУРНЫЙ ОБЗОР
    • 1. 1. Современные представления о механизмах формирования синл дрома задержки развития плода
    • 1. 2. Иммунные механизмы регуляции развития плода
  • Глава 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Организация работы и объем исследования
    • 2. 2. Характеристика групп наблюдения
    • 2. 3. Методы исследования
  • Глава 3. ФЕНОТИПИЧЕСКИЙ ПРОФИЛЬ И ФУНКЦИОНАЛЬНАЯ АКТИВНОСТЬ МОНОНУКЛЕАРНЫХ КЛЕТОК ПЕРИФЕРИЧЕСКОЙ КРОВИ И ДЕЦИДУАЛЬНОЙ ОБОЛОЧКИ ПЛАЦЕНТЫ ПРИ АСИММЕТРИЧНОЙ ФОРМЕ СИНДРОМА ЗАДЕРЖКИ РАЗВИТИЯ ПЛОДА
    • 3. 1. Фенотип и функциональная активность лейкоцитов периферической крови матери в ранние сроки гестации при развившимся впоследствии СЗРП
    • 3. 2. Динамика популяционного состава и изменение параметров активации периферических мононуклеарных клеток при СЗРП
    • 3. 3. Фенотип и параметры активации мононуклеарных клеток периферической крови женщин с СЗРП в поздние сроки гестации
    • 3. 4. Фенотип и параметры активации мононуклеарных клеток дециду-' альной оболочки плаценты при СЗРП
    • 3. 5. Влияние стимуляции на экспрессию активационных молекул лимфоцитами периферической крови небеременных доноров
  • Глава 4. СИСТЕМНАЯ И ЛОКАЛЬНАЯ ПРОДУКЦИЯ ЦИТОКИНОВ ПРИ АСИММЕТРИЧНОЙ ФОРМЕ СИНДРОМА ЗАДЕРЖКИ РАЗВИТИЯ ПЛОДА
    • 4. 1. Системная продукция цитокинов в ранние сроки гестации при развившимся впоследствии СЗРП
    • 4. 2. Динамика изменений в продукции цитокинов на системном уровне при СЗРП
    • 4. 3. Системная продукция цитокинов и факторов роста в поздние сроки гестации при СЗРП
    • 4. 4. Продукция цитокинов и факторов роста в зрелой плаценте при СЗРП
    • 4. 5. Стимулированные продукция и секреция цитокинов периферическими и децидуальными лимфоцитами и моноцитами/макрофагами при СЗРП
  • Глава 5. ХАРАКТЕРИСТИКА И РЕГУЛЯЦИЯ АПОПТОЗА ЛИМФОЦИТОВ И МОНОЦИТОВ/МАКРОФАГОВ В ПЕРИФЕРИЧЕСКОЙ КРОВИ И В ДЕЦИДУАЛЬНОЙ ОБОЛОЧКЕ ПЛАЦЕНТЫ ПРИ АСИММЕТРИЧНОЙ ФОРМЕ СИНДРОМА ЗАДЕРЖКИ РАЗВИТИЯ ПЛОДА
    • 5. 1. Параметры иммунного апоптоза в ранние сроки гестации при развившимся впоследствии СЗРП
    • 5. 2. Динамика изменений показателей иммунного апоптоза на системном уровне при СЗРП
    • 5. 3. Параметры иммунного апоптоза в периферической крови в 3 триместре беременности при СЗРП
    • 5. 4. Параметры иммунного апоптоза в децидуальной оболочке плаценты при СЗРП
    • 5. 5. Регуляция иммунного апоптоза при СЗРП
  • Глава 6. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
  • Выводы

Роль иммунной системы в формировании задержки внутриутробного развития плода (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность работы.

Синдром задержки развития плода (СЗРП) является одним из часто встречающихся патологических состояний во время беременности. По данным исследований, проведенных в различных странах, частота СЗРП варьирует от 3 до 8% и не имеет тенденцию к снижению, несмотря на успехи в разработке новых методов диагностики и профилактики заболевания (29, 48, 49, 290). СЗРП занимает важное место в структуре перинатальной смертности и оказывает неблагоприятное влияние на последующее развитие детей и подростков, определяя нарушения нервно-психического и соматического развития (1, 4, 29, 80, 96, 112, 173,194, 209, 265).

В настоящее время рассматриваются несколько теорий развития СЗРП: теория нарушения клеточного роста, теория нарушения плацентарной перфузии в результате ишемических повреждений, теория нарушения гемодинамики и гемостаза, теория дезинтеграции метаболизма плода, теория хронической плацентарной недостаточности, теория нарушения защиты трофобласта от апоптоза (8, 6, 16, 29, 48, 49, 32, 71, 93, 140, 143, 207, 208, 249, 287, 319, 392). Однако все они имеют ряд недостатков и в большинстве случаев не рассматривают триггерных механизмов наблюдаемых явлений.

Существуют две формы СЗРП: симметричная, при которой отмечается изменение всех фетометрических параметров плода, и асимметричная, характеризующаяся снижением массы тела за счет уменьшения массы паренхиматозных органов. В основе симметричной формы СЗРП чаще всего лежат генетические нарушения, недостаточное питание матери и воздействие факторов повышенной вредности (29, 48, 49). Патогенетические механизмы асимметричной формы СЗРП остаются мало изученными, однако, большинство авторов признает, что в их основе лежит нарушение функции фето-плацентарной системы.

Известно, что развитие беременности и формирование фето-плацентарного комплекса контролируются реакциями материнской иммунной системы на всем протяжении гестационного процесса (53, 65, 66, 122, 133, 191, 254, 278, 288, 350, 382, 409). В последнее время в работах ряда авторов появляются данные, позволяющие предположить, что в основе нарушений функции фето-плацентарной системы при СЗРП лежат изменения механизмов иммунорегуляции гестационного процесса (53, 61, 313, 395). Исследованиями различных авторов было показано, что при СЗРП в периферической крови матери и в децидуальной оболочке плаценты нарушается соотношение клеточных популяций лимфоцитов (41, 61, 387), изменяется характер экспрессии ряда активационных и адгезионных молекул (41, 61, 287), усиливается продукция иммуноглобулинов и аутоантител (31, 55, 35, 58), снижается содержание лимфоцитов, экспрессирующих молекулы Fas (41, 61), изменяется функциональная активность фагоцитарных клеток (61), нарушается синтез и продукция цитокинов (41, 61, 88, 95, 100, 187, 199, 216, 261, 313, 395,406). Экспериментальные исследования показали, что при СЗРП нарушается ответ децидуальных лимфоцитов на стимуляцию белками плодово-плацентарного происхождения (61, 53). Однако имеющиеся в литературе данные об изменении соотношения клеточных популяций и характере продукции цитокинов не позволяют сделать однозначных выводов о формировании того или иного типа иммунного ответа при СЗРП, так как в одних работах отмечается усиление Th2 иммунного ответа (31, 35, 55), в других — активация продукции Thl цитокинов (41, 313), а в некоторых случаях — одновременный рост влияния гуморальных и цитотоксических реакций (61). Все исследователи изучали изменения иммунологических параметров в группах женщин с СЗРП, формирующимся на фоне какой-либо акушерской патологии (угроза невынашивания, гестоз). Это не позволяет утверждать, что установленные авторами нарушения иммунных реакций определяются именно патологией развития плода. В работах большинства авторов не дифференцируется форма задержки развития плода, что, возможно, определяет противоречивость полученных результатов. Практически полностью отсутствуют данные о ранних нарушениях механизмов иммунорегуляции, способствующих развитию СЗРП.

Наиболее изученным аспектом участия иммунной системы в формировании СЗРП является исследование продукции факторов роста, регулирующих ангиогенез в плаценте и рост трофобласта (77, 399). Однако, результаты исследования содержания факторов роста при СЗРП как на системном, так и на локальном уровнях часто противоречат друг другу (41, 88, 95, 100, 135, 187, 195, 199, 216, 223, 240, 261, 313, 339, 373, 381, 395, 401, 406). Исследования характера продукции факторов роста проводятся на экспериментальных моделях СЗРП, различающихся по технологии, что может обусловливать различия в полученных данных.

В последнее время большое внимание уделяется изучению роли апоптоза в развитии СЗРП (71, 93, 140, 143, 207, 249), но все исследователи рассматривают апоптоз только с точки зрения ограничения роста плаценты и плода и не исследуют характер апоптоза мононуклеарных клеток периферической крови и лейкоцитарного инфильтрата плаценты.

Таким образом, изучение особенностей системных и локальных иммунных нарушений, сопровождающих развитие СЗРП, и ответа мононуклеарных клеток на активирующие стимулы позволит расширить наши представления об иммунных механизмах формирования СЗРП и позволит разработать ранние прогностические критерии патологии плода.

Цель работы.

На основании выявления закономерностей нарушения иммунорегуляции на системном и локальном уровнях создать патогенетически обоснованную концепцию участия иммунной системы в формировании асимметричной формы задержки внутриутробного развития плода и разработать новые подходы к прогнозированию и диагностике данной патологии.

Задачи исследования.

1. Выявить закономерности изменений фенотипа, активации и дифференцировки мононуклеарных клеток периферической крови, в динамике гестационного процесса, и лейкоцитарного инфильтрата децидуальной оболочки зрелой плаценты при асимметричной форме СЗРП.

2. Установить закономерности нарушений в работе цитокиновой сети на системном и локальном уровнях, и их значение в развитии асимметричной формы СЗРП.

3. Выявить закономерности изменений апоптоза и особенностей его регуляции эндогенными факторами в различных популяциях мононуклеарных клеток периферической крови в динамике гестационного процесса и лейкоцитарного инфильтрата децидуальной оболочки зрелой плаценты при асимметричной форме СЗРП.

4. Разработать концепцию участия иммунных механизмов в развитии асимметричной формы СЗРП.

5. Разработать ранние прогностические и диагностические критерии асимметричной формы СЗРП.

Научная новизна исследования.

Впервые установлено, что развитие асимметричной формы СЗРП сопровождается нарушением процессов межклеточного взаимодействия и иммунного ответа материнских мононуклеарных клеток на системном и локальном уровнях на всем протяжении гестационного процесса.

Показано, что в основе нарушений иммунорегуляторных процессов при асимметричной форме СЗРП лежит стимуляция материнской иммунной системы инфекционными антигенами и неадекватный ответ периферических и децидуальных мононуклеарных клеток на антигенную стимуляцию.

Показано, что на всем протяжении гестационного процесса формирование СЗРП сопровождается аутоиммунным процессом, поддерживаемым на системном и локальном уровнях усиленной продукцией IЬ-6, а также в ранние сроки гестации ростом пула В1 лимфоцитов и снижением уровня Тг на системном уровне, а в поздние сроки гестации на локальном уровне — снижением содержания Тг.

Впервые установлено, что развитие асимметричной формы СЗРП в ранние сроки гестации на системном уровне ассоциируется с низким уровнем активации периферических мононуклеарных клеток, активацией ТЫ и угнетением апоптоза периферических цитотоксических клеток и моноцитов.

Показано, что развитие асимметричной формы СЗРП в поздние сроки гестации ассоциируется с формированием процесса по типу хронического воспаления, определяемого ростом уровня коммитированных лимфоцитов и усилением продукции большинства провоспалительных цитокинов на системном и локальном уровнях, активацией всех популяций мононуклеарных клеток в периферической крови и нарушением апоптоза децидуальных мононуклеарных клеток.

Установлено что при асимметричной форме СЗРП нарушаются естественные механизмы противовоспалительных реакций, определяемые функциональной активностью Тг клеток, продукцией 1Ь-10 и 1Ь-4- развитие воспалительного процесса в ранние сроки беременности сдерживается высоким уровнем ТОР (32, а в поздние сроки гестации на системном уровнеусилением влияния Тг клеток и продукции 1Ь-10 лимфоцитами, на локальном уровне — усилением продукции Тврр2.

Показано, что развитие асимметричной формы СЗРП на всем протяжении гестации сопровождается нарушением продукции факторов ростав ранние сроки гестации снижается продукция основных факторов ангиогенеза, а в поздние сроки гестации снижается продукция факторов, регулирующих рост тканей мезенхимального происхождения, но усиливается секреция факторов активации эндотелия.

Практическая значимость работы.

Разработаны прогностические критерии развития асимметричной формы СЗРП, основанные на определении в ранние сроки гестации в периферической крови содержания VEGF и уровня HLA-DR+ моноцитов. Разработаны диагностические критерии СЗРП, основанные на определении в 32−40 недель гестации относительного содержания CD11Ь+ лимфоцитов.

Основные положения, выносимые на защиту.

Формирование асимметричной формы СЗРП, начиная с ранних сроков беременности и на протяжении всего периода гестации, связано с изменением механизмов иммунорегуляции гестационного процесса, проявляющимися нарушением активации и дифференцировки МНК, дисбалансом продукции факторов роста, развитием процессов по типу инфекционно-воспалительного и аутоиммунного низкой интенсивности, взаимно потенцирующих друг друга.

В ранние сроки гестации формирование асимметричной формы СЗРП на системном уровне связано с недостаточным активационным сигналом и/или неадекватным ответом материнской иммунной системы на факторы фето-плацентарного комплекса с усилением цитотоксических и аутоиммунных реакций и нарушением продукции факторов ангиогенеза. В поздние сроки гестации формирование асимметричной формы СЗРП сопровождается развитием извращенного вторичного иммунного ответа, проявляющегося на системном уровне нарушением активации МНК, на локальном уровне — угнетением активации децидуальных МНК и нарушением продукции факторов, регулирующих рост трофобласта.

Реализация результатов работы.

Результаты диссертационной работы внедрены в практику акушерской клиники и консультативно-диагностической поликлиники ФГУ «Ивановский НИИ материнства и детства им. В. Н. Городкова Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию», 9 ж. консультации г. Иваново.

Апробация работы.

Материалы диссертации доложены и обсуждены на 2-м Национальном конгрессе РААКИ «Современные проблемы аллергологии, клинической иммунологии и иммунофармакологии» (Москва, 1998), 7 Международном конгрессе по иммунологии репродукции (Нью Дели, Индия, 1998), 3 международной конференции «Дни иммунологии в Санкт-Петербурге» (Санкт-Петербург, 1999), Европейском Съезде по иммунологии и репродукции (Рим, Италия, 1999), 4 международной конференции «Дни иммунологии в Санкт-Петербурге» (Санкт-Петербург, 2000), 8 Международном конгрессе по иммунологии репродукции (Опатия, Хорватия, 2001), 6 конференции с международном участием «Дни иммунологии в Санкт-Петербурге» (Санкт-Петербург, 2002), 4 конгрессе Европейского общества по иммунологии репродукции и развития (Родос, Греция, 2003), Европейском конгрессе репродуктивной иммунологии (Плзень, Чехия, 2004), 9 форуме с международным участием «Дни иммунологии в Санкт-Петербурге» (Санкт-Петербург, 2005), Республиканской конференции «Иммунология репродукции» (Иваново, 2005).

Структура и объем диссертации

.

Материалы диссертации изложены на 283 страницах машинописного текста. Работа состоит из Введения, обзора литературы по теме диссертации, главы «Материалы и методы исследования», 3 глав собственного.

Выводы.

1. Асимметричная форма СЗРП формируется на фоне нарушения процессов межклеточного взаимодействия и характера иммунного ответа материнских мононуклеарных клеток, начиная с 5−10 недель беременности и на всем протяжении гестационного процесса, что способствует развитию хронического инфекционно-воспалительного и аутоиммунного процессов.

2. В ранние сроки беременности СЗРП формируется на фоне недостаточной активации материнских периферических мононуклеарных клеток, нарушенной функции Тг и ТЬ2, при усилении иммунного ответа В1 клеток, 1Ь-6+ моноцитов и ЕК-Т. В поздние сроки гестации СЗРП формируется на фоне дисбаланса активационных процессов, роста пула клеток памяти, В-лимфоцитов, ЕК и Тг, но при нарушении дифференцировки Т-хелперов и регуляторной функции моноцитов периферической крови.

3. На локальном уровне развитие СЗРП сопровождается нарушением презентации АГ, дифференцировки и активации Т-хелперов с увеличением пула СЭ4+1Ь-6+ клеток, ростом продукции аутоантител, усилением адгезионных свойств клеток, но уменьшением содержания ТСЯу5 лимфоцитов и Тг клеток, угнетением цитокинпродуцирующей функции ЕК и макрофагов.

4. В ранние сроки беременности СЗРП формируется на фоне усиления продукции цитокинов ТЫ типа (№N7 и 1Ь-12) и угнетения продукции 1Ь-4. В конце гестации развитие СЗРП на системном уровне сопровождается усилением продукции про- (1Ь-6, 1Ь-8) и противовоспалительных (1Ь-4, 1Ь-10) цитокинов, но снижением продукции цитокинов ТЫ типа (№N7 и ШРа) лимфоцитами, и угнетением продукции моноцитами 1Ь-1Р и 1Ь-10.

5. На локальном уровне при СЗРП угнетается синтез и секреция противовоспалительных (IL-10, IL-4) и провоспалительных (IL-ip, IFNy) цитокинов, усиливается секреция хемокинов (IL-8) и провоспалительных цитокинов с дифференцировочной активностью (IL-6, TNFa), но снижается секреция IL-2, отмечается дисбаланс между продукцией ряда провоспалительных цитокинов (IL-2, IL-6, IL-8, IL-12) и их содержанием в децидуальной ткани.

6. В ранние сроки беременности при СЗРП на системном уровне угнетается продукция факторов ангиогенеза, но возрастает уровень TGFP2. В конце гестации при СЗРП в крови и в плаценте снижается продукция факторов, регулирующих рост трофобласта (bFGF, TGF), но в децидуальной оболочке увеличивается содержание факторов, активирующих эндотелий (эндотелии и VEGF) и ингибирующих развитие иммунного ответа (TGFP2).

7. Периферические и децидуальные мононуклеарные клетки при СЗРП неадекватно реагируют на активационные сигналы. При СЗРП дополнительная стимуляция мононуклеарных клеток периферической крови определяет рост пула Т-хелперов и моноцитов, продуцирующих IL-6- плаценты — увеличение содержания Thl, синтез Thl цитокинов и TGFP2, но угнетение продукции провоспалительных цитокинов макрофагами.

8. В ранние сроки беременности при СЗРП отмечается угнетение апоптоза периферических цитотоксических клеток и моноцитов. В конце гестации СЗРП развивается на фоне усиления апоптоза периферических МНК в результате стимуляции его комплексом синтезируемых лимфоцитами цитокинов и активацией гена р53. В децидуальной оболочке при СЗРП отмечается дисбаланс между повышенной готовностью клеток к вступлению в апоптоз и реальным уровнем апоптирующих клеток, определяемый нарушением синтеза цитокинов децидуальными мононуклеарными клетками, экспрессии мРНК и продукции р53, и увеличением тканевого содержания БразЬ.

9. Ранними прогностическими критериями СЗРП являются снижение содержания в периферической крови матери уровня УЕвР (< 20 пг/мл) и уровня НЬА-?Ж+ моноцитов (<57,9%). В 32−40 недель гестации дополнительным критерием диагностики СЗРП является увеличение относительного содержания периферических СЭ11Ь+ лимфоцитов (>20%).

Практические рекомендации.

1. Для оценки состояния иммунной системы беременной женщины рекомендуется определять: на всем протяжении гестации — показатели активации и апоптоза периферических мононуклеарных клеток, уровень сывороточного 1Ь-4- в ранние сроки гестации — уровень периферических С04+1Ь-2+ и С04+1Ь-4+ Т-хелперов, В1 клеток, СБ16+СВЗ+ ЕК-Т клеток и 1Ь-6+ моноцитов, содержание в сыворотке периферической крови цитокинов ТЫ типа, Тврр2 и ростовых факторов, регулирующих ангиогенезв поздние сроки гестациисодержание в крови коммитированных Т-лимфоцитов, ТЫ и Тг клеток, экспрессию адгезионных молекул клетками, содержание в сыворотке крови ЬРСР, а также оценивать спонтанную продукцию и экспрессию мРНК 1Ь-6 лимфоцитами и моноцитами, спонтанную продукцию лимфоцитами и моноцитами 1Ь-10, уровень спонтанной секреции и экспрессии мРНК 1Ь-1|3 моноцитами.

2. Для прогнозирования асимметричной формы СЗРП рекомендуется определять в ранние сроки гестации в периферической крови показатели содержания УЕвР (диагностический параметр < 20 пг/мл) и НЬА-ВЯ+ моноцитов (диагностический параметр <57,9%).

Для диагностики асимметричной формы СЗРП в поздние сроки гестации рекомендуется определять содержание в периферической крови СБ11Ь+ лимфоцитов (диагностический параметр >20%).

Показать весь текст

Список литературы

  1. В.Г. Синдром задержки развития плода.- Н.: Новосибирский медицинский институт, 1996.-162с.
  2. О.Н., Кошелева Н. Г., Громыко Г. Л., Ковалёва Т. Г. Плацентарная недостаточность: Диагностика и лечение: Учебное пособие. Санкт-Петербург.: Н — Л, 2001.- 32с.
  3. Н.В. Особенности фенотипа и цитокинового профиля децидуальных лимфоидных клеток при гестозе // Автореф.дис. канд.мед.наук.-Москва, 2002.- 24с.
  4. Н.В., Игнатко И. В. Особенности неврологического и психологического статуса детей первых лет жизни, рождённых с синдромом задержки роста плода // Вопросы гинекологии, акушерства и перинатологии.-2003. Т.2, № 4.-С.15−19.
  5. Барышников АЛО., Шишкин Ю. В. Иммунологические проблемы апоптоза.-М.: Эдиториал УРСС, 2002.-320с.
  6. А.Л. НЬА и болезни.- Киров: 1999.-194с.
  7. А. Т. Задержка внутриутробного развития плода: Дисс. .докт. мед. наук. Москва, 1993.-305с.
  8. В.А., Зайдиева З. С., Тютюнник В. Л. Диагностическое значение определения фактора роста плаценты при плацентарной недостаточности // Материалы IV Российского форума «Мать и Дитя»: Тезисы докладов.- Москва.- 2002.- С.200 203.
  9. В.А., Павлович C.B. Ангиогенез и ангиогенные факторы роста в регуляции репродуктивной системы у женщин // Проблемы репродукции.-1999.- № 5.- С. 6 -14.
  10. Воспаление. Руководство для врачей/ Под ред. В. В. Серова, В. С. Паукова.-М.:Медицина, 1995.- 640с.
  11. Ю.В. Роль изменений активации клеток моноцитарно-макрофагального ряда, содержания плацентарного фактора роста и эндотелина в формировании синдрома задержки развития плода // Автореф.дис. канд.мед.наук.-Иваново, 2005.- 25с.
  12. В.Н. Особенности иммунного статуса при беременности у подростков и обоснование оптимального срока аборта в первом триместре//Автореф.дис. канд.мед.наук.-Иваново, 2004, — 20с.
  13. .И., Глуховец Н. Г. Патология последа.- СПб.: ГРААЛЬ, 2002.- 448 с.
  14. С.С. Клинико-функциональные, иммунологические особенности, эффективность, безопасность медикаментозного и хирургического прерывания беременности ранних сроков у подростков //Автореф.дис. канд.мед.наук.-Иваново, 2000.- 15с.
  15. В.В. Хроническая плацентарная недостаточность и гипотрофия плода— Саратов.: Издательство саратовского университета, 1999.- 150с.
  16. О.М., Шехтман М. М. Беременность диагностика и лечение болезней сердца, сосудов и почек.- Ростов на Дону.: Феникс, 1997.-639с.
  17. Ф.И. Система интерферона в норме и при патологии.-М.: Медицина, 1996.-240с.
  18. Иммунологические методы / Под ред. Г. Фримеля, пер. с нем. А. П. Тарасова.- М.: Медицина, 1987.- 472с.
  19. Иммунофизиология / Ред. Е. А. Корнева. Спб.: Наука, 1993. — 684с.
  20. П.А. Диагностика и дифференциальная коррекция синдрома диссеминированного внутрисосудистого свёртывания крови у беременных с плацентарной недостаточностью: Дисс. .докт. мед. наук. Москва, 1989.- 289с.
  21. JI.B., Ганковская JI.B., Хорева М. В., Соколова Е. В. Система цитокинов, вомплемента и современные методы иммунного анализа.-Москва: РГМУ, 2001.- 158с.
  22. А.И. Влияние локализации плаценты на внутриутробное развитие плода// Вопр. охр. мат. дет.-1981.-№ 9.- С.71−74.
  23. Э.Т., Радзинский В. Е., Иткес A.B., Старцева Н. М. Прогнозирование задержки развития плода и недонашивания по генотипам матери и плода // Материалы VI Российского форума «Мать и Дитя»: Тезисы докладов.- Москва.- 2004, — С. 129.
  24. М.В., Юдина Е. В. Задержка внутриутробного развития плода. М.-РАВУЗДПГ, 1998.-208с.
  25. С.С. Использование низкоинтенсивного инфракрасного излучения от аппарата «Хелпер» в комплексном лечении беременных женщин с хроническим пиелонефритом // Автореф.дис. канд.мед.наук.-Иваново, 2004.- 24 с.
  26. A.A., Добротина А. Ф., Немов В. В., Ивашкина С. Г. Аутоантитела к нативной ДНК при синдроме задержки развития плода // Материалы IV Российского форума «Мать и Дитя»: Тезисы докладов.- Москва.- 2002.- С.401 402.
  27. А.П. Патология системы мать-плацента-плод: Руководство для врачей.- М.:Медицина, 1999.-448с.
  28. A.B., Голофеевский В. Ю., Макаров П. П., Ботиева В. И., Осипова О. Н. Изучение иммунологической реактивности у лиц с различными степенями гипотрофии // Мед. Иммунол.-2004.-т.6, № 3−5.-с.319.
  29. A.B. Особенности патогенеза, клиники и реабилитации у новорождённых детей с ЗВРП: Автореф. дис.. канд. мед. наук.- Ашхабад, 1994. 32с.
  30. H.A., Антипенская Н. В., Об иммунологических аспектах синдрома задержки развития плода // Акуш. и гинек.-1992.-№ 2.-с.28−32.
  31. П.Г. Реактанты острой фазы воспаления.- СПб.: Наука, 2001.-423с.
  32. Е.К., Донников М. Ю., Олейник В. М. Система апоптоза Fas-FasL в онкогенезе // Иммунология. 2004. — Т.24, — № 4. — С. 251−255.
  33. М.А., Иванов A.A. Межклеточные взаимодействия. М.: Медицина, 1995.-224с.
  34. И.А., Крошкина Н. В., Посисеева JT.B., Сотникова Н. Ю. Особенности фенотипа иммунокомпетентных клеток на системном уровне у беременных с гестозом разной степени тяжести // Ж. ассоциации акушеров-гинекологов АГ-инфо.- № 3.-2002.-с.22.
  35. М.И. Роль клеток с цитотоксической активностью в патогенезе невынашивания беременности ранних сроков у женщин с урогенитальной инфекцией// Автореф.дис. канд.мед.наук.-Иваново, 2005.- 23с.
  36. Д. Наглядная иммунология: Пер. с англ.- М.: ГЭТАР. Медицина, 1988.-96с.
  37. C.B., Раковская И. В., Вульфович Ю. В. Медицинская микоплазмология.- М.: Медицина, 1995.- 288с.
  38. Е.В., Зимина С. И., Посисеева JT.B., Перетятко Л. П. Морфометрическая и доплерометрическая характеристика спиральных артерий при хронической плацентарной недостаточности // Архив патол.-2005.-т.67.-с.21 -25.
  39. Т.В., Теличкун C.B. Анализ иммунологической реактивности в периферическом и маточном кровотоке при ранней беременности // Тез. Докл. 4 Всесоюзн. Симп. «Иммунология репродукции», — 1990, Киев.- с. 194−195.
  40. Г. М., Федорова М. В., Клименко П. А., Сичинава Л. Г. Плацентарная недостаточность.- М.:Медицина, 1991.-276с.
  41. И.С., Макаров И. О. Фетоплацентарная недостаточность. Клинико диагностическиеаспекты. М.: Знание-М, 2000.-127с.
  42. И.Ю. Участие различных субпопуляций Т-хелперов, естественных киллеров и катепсина D в механизме развития гестоза // Автореф.дис. канд.мед.наук.-Иваново, 2004.- 23с.
  43. И.Ю. Иммунные аспекты беременности // Russ. J. Immunol.-2005.-Vol.9, Suppl.2.-P.79−64.
  44. И.Ю. Характеристика цитокинового каскада в динамике гестационного процесса // Ж. Цитокины и воспаление.-2002.-т.1.-№ 2,-С.154−155.
  45. Н.Ю., Анциферова Ю. С., Кудряшова A.B., Посисеева Л. В., Панова И. А., Малышкина А. И., Фетисова И. Н. Иммунологическая загадка беременности.- Иваново: Издательство МИК.-2005.-272с.
  46. Н.Ю., Анциферова Ю. С., Посисеева Л. В., Шор А.Л., Брагин Б. И. Особенности системного и локального иммунного ответа у женщин с различными формами эндометриоза // Ж. Иммунология, 2003.-№ 4.- с.242−245.
  47. Г. Т., Ванько Л. В., Кулаков В. И. Иммунитет и генитальный герпес. -Н.Новгород: Изд-во HTM А, 1997.-224с.
  48. Ю.С., Посисеева Л. В., Петрунин Д. Д. Специфический альфаг-микроглобулин (гликоделин) репродуктивной системы человека: 20 лет от фундаментальных исследований до внедрения в клиническую практику.-Иваново, МИК, 1998.-128с.
  49. В.А. Состояние гуморального иммунитета при синдроме задержки развития плода // «Иммунология репродукции» Тез. Докл. 4 Всесоюзного симп. С междунар. Участием.- 24−26 октября 1990, Киев.- с. 192.
  50. A.A., Фрейдлин И. С. Клетки иммунной системы.- СПб.: Наука, 2000.- Т. 1−2.- 231 с.
  51. A.A., Фрейдлин И. С. Клетки иммунной системы.- СПб.: Наука, 2000.- Т.3−5.- 390 с.
  52. Н.Ю. Участие плацентарных иммунологических и белковых факторов в патогенезе задержки внутриутробного развития плода у беременных с гестозом// Дис. канд.мед.наук.-Иваново, 2000.- 137 с.
  53. A.A., Степанов Ю. М., Липкин В. М., Кушлинский Н. Е. Участие системы Fas/Fas-лиганд в регуляции гомеостаза и функционировании клеток иммунной системы // Аллергология и иммунология.-2002.-Т.З.- № 1.-С.24−35.
  54. Ю.А. Функциональное состояние моноцитарного звена иммунной системы при физиологической беременности и гестозе // Дис. канд.мед.наук.-Москва, 1992.- 224 с.
  55. М.М. Руководство по экстрагенитальной патологии у беременных,— M.: Триада -X, 1999.- 816 с.
  56. C.B. Механизмы иммуноэндокринного контроля процессов репродукции: В 2-х т. Т.2.-Екатеринбург: УрО РАН, 2002, — 557с.
  57. К.В., Черешнев В. А. Иммунитет беременной женщины.- М.: Медицинская книга, Н. Новгород: Изд-во НГМА, 2003 .-226с.
  58. A.A. Основы иммунологии: Учебник.- М.: Медицина, 1999. -608с.
  59. A.A., Донецкова А. Д. Регуляторные Т-клетки, зависимые от фактора FOXp3, и перспективы их изучения при беременности // Russ.J. of Immunol.-2005.-V.9, suppl.2.-p.l49−152.
  60. H.E., Сенчук А. Я., Товстановская В. А. Иммунологические взаимоотношения в ситеме мать-плацента-плод при синдроме задержки развития плода // Тез. Докл. 9 съезда акушеров-гинекологов УССР.-Киев, 1991.-С.307−308.
  61. Abrahams V.M., Kim Y.M., Straszewski S.L., Romero R., Mor G. Macrophages and apoptotic cell clearance during pregnancy // Am. J. Reprod. Immunol.-2004.-Vol.51.- P.275−282.
  62. Abrahamsohn P. A., Zorn T. M. Implantation and decidualization in rodents // J. Exp. Zool.- 1993. Vol.266.- P.603−611.
  63. Adair L.S., Prentice A.M. A Critical Evaluation of the Fetal Origins Hypothesis and Its Implications for Developing Countries 1 // Am. Society for Nutritional Sciences J. Nutr.- 2004.-Vol.l34.-P.191−193.
  64. Ahmed A., Dunk C., Kniss D., Wilkes M. Role of VEGF receptor-1 (Flt-1) in mediating calcium-dependent nitric oxide release and limiting DNA synthesis in human trophoblast cells//Lab.Invest.-1997.-Vol.76.-P.779−791.
  65. Ahmed A., Li X.F., Dunk C., Whittle M.J., Rushton D.I., Rollason T. Colocalisation of vascular endothelial growth factor and its Flt-1 receptor in human placenta//Growth Factors.-1995.-Vol.l2.-P.235−243.
  66. Ahmed A., Perkins J. Angiogenesis and intrauterine growth restriction // Baillieres Best Pract. Res. Clin. Obstet. Gynaecol.-2000.-Vol.14.-P.981−998.
  67. Ain R., Trinh M.L., Soares M.J. Interleukin-11 signaling is required for the differentiation of natural killer cells at the maternal-fetal interface//Dev.Dyn.- 2004.-Vol.23.-P.700−708.
  68. Akisu M., Balim Z., Cetin H., Kosova B., Yalaz M., Topcuoglu N., Kultursay N. The role of angiotensin-converting enzyme and apolipoprotein
  69. E gene polymorphisms on lipid compositions in newborn infants with intrauterine growth restriction // Early Hum. Dev.-2004.-Vol.78.-P.95−103.
  70. Al-Lamke R.S. Skepper J.N., Loke Y.W., King A., Burton G.J. Apoptosis in the human placental bed and its discrimination from necrosis using the in-situ DNA ligation technique //Hum. Reprod.-1998.- Vol.12.- P.3511−3519.
  71. A1-Mufti R, Lees C., Albaiges G., Hambley H., Nicolaides K.H. Fetal cells in maternal blood of pregnancies with severe fetal growth restriction // Hum. Reprod.-2000.-Vol. 15.-P.218−221.
  72. Alsat E., Guibourdenche J., Luton D., Frankenne F., Evain-Brion D. Human placental growth hormone // Am. J. Obstet.Gynecol.-1997.-Vol.177.-P.1526−1534.
  73. Aoki K., Kurooka M., Chen J.J., Petyniak J., Nabel E.G., Nabel G.J. Extracellular matrix interacts with soluble CD95L: retention and enhancement of cytotoxicity // Nat.Immun.-200l.- Vol.2.- P.2333−2341.
  74. Arici A., Seli E., Senturk L.M., Gutierrez L.S., Oral E., Taylor H.S. Interleukin-8 in the human endometrium // J. Clin. Endocrinol. Metab. Vl998.-Vol.83.-P.l783-l787.
  75. Arslan M., Yazici G., Erdem A., Erdem M., Arslan E.O., Himmetoglu O. Endothelin l and leptin in the pathophysiology of intrauterine growth restriction // Int. J. Gynaecol. Obstet.-2004.-Vol.84.-P.l20-l26.
  76. Arsura M., Wu M., Sonenshein G.E. TGF01 inhibits nf-kb/Rel activity inducing apoptosis of B cells: Transcriptional activation of kB // Immunity. 1996.-Vol.5.-P.31−40.
  77. Asrankulova D.B., Rizopulu A.P., Kurbanov D.D. Immune status and proinflammatury cytokines in pregnant women with acute cytomegalovirus infection//Zh. Mikrobiol. Epidemiol. Immunobiol.-2004.-Vol.4.-P.84−86.
  78. Athanassakis I., Chaouat G., Wegmann T.G. The effects of anti-CD4 and anti CD8 antibody treatment on placental growth and function in allogeneic and syngeneic murine pregnancy // Cell.Immunol.-1990.-Vol.l29.-P.13−21.
  79. Athanassiades A., Hamilton G.S., Lala P.K. Vascular endothelial growth factor stimulates proliferation but not migration or invasiveness in human extravillous trophoblast//Biol Reprod.-1998.-Vol.59.-P.643−654.
  80. Austgulen R., Isaksen C.V., Chedwick L., Romundstat P., Vatten L., Craven C. Pre-elampsia: associated with increased syncytial apoptosis when the infant is small-for-gestational age // J.Reprod.Immunol.-2004.- Vol.61.-P.39−50.
  81. Bach E.A., Szabo S.J., Dighe A.S. e.a. Ligand-induced autoregulation of IFN-y receptor P-chain expression in T helper cell subsets // Science.-1995.-Vol.270.-P. 1215−1218.
  82. Baschat A.A., Hecher K. Fetal growth restriction due to placental disease // Semin. Perinatol.-2004.-Vol.28.-P.67−80.
  83. Baxter A.G. The cells that knew too much //J.Clin.Invest.-2000.-Vol.5-P. 1675−1677.
  84. Bersinger N.A., Odegard R.A. Second- and third-trimester serum levels of placental proteins in preeclampsia and small-for-gestational age pregnancies//Acta Obstet. Gynecol. Scand.-2004.-Vol.83.-P.37−45.
  85. Bhat N.M., Mithal A., Bieber M.M., Herzenberg L.A., Teng N.N. Human CD5+ B lymphocytes (B-l cells) decrease in peripheral blood during pregnancy//J. Reprod. Immunol.-1995.-Vol.28.-P.53−60.
  86. Billington W.D. The nature and possible functions of MHC antigens on the surface of human trophoblast. in Reproductive immunology.-Narosa Publishing House, New Delhi.-1999.-P.71−77.
  87. Bischof P., Haenggeli L., Capana A. Effect of leukemia inhibitory factor on human cytotrophoblast differentiation along the invasive pathway // Am.J.Reprod.Immunol.-1995.-Vol.34.-P.225−230.
  88. Bix M., Locksley R.M. Natural T cells cells that co-express NKRP-1 and TCR//J.Immunol.-1995.-Vol. 155.-P. 1020−1022.
  89. Bolis P.F., Soro V., Martinetti B.M., Belverde M. HLA disparity determines disease activity through pregnancy in women with HLA compatibility and human reproduction // Clin.Exp.Obstet.Gynecol.-1985.-Vol.12.-P.9−12.
  90. Borrego F., Kabat J., Kim D.-K., Lieto L., Maasho K., Pena J., Solana R., Coligan J.E. Structure and function of major histocompatibility complex
  91. MHC) class I specific receptors expressed on human natural killer (NK) cells I I Mol.Immunol.-2001.-Vol.38.-P.637−660.
  92. Boyson J.E., Rybalov B., Koopman L.A., Exley M., Balk S.P., Racke F.K. e.a. CDld and invariant NKT cells at the human maternal-fetal interface // PNAS.-2002.-Vol.99.-P.13 741−13 746.
  93. Boyum A. Isolation of mononuclear cells and granulocytes from human blood // Scand. J. Lab. Invest.-1968.-Vol.21.-P.77.
  94. Brazerol W. F., Grover S., Doonenfeld A. Unexplained elevated maternal serum alpha fetoprotein levels and perinatal outcome in an urban clinic population // Am J Obstet. Gynecol .- 1996.-Vol.145.-P.1030- 1035.
  95. Bredt D.S., Snyder S.H. Nitric oxide: a physiologic messender molecule//Annu. Rev. Biochem.- 1994.-Vol.63.-P. 175−200.
  96. Breit S., Steinhoff M., Blaser K. e.a. A strict requirement of interleukin-4 for interleukin-4 induction in antigen-stimulated human memory T cells // Eur. J. Immunol.- 1996.-Vol.26.-P.1860−1865.
  97. Brodszki J., Lanne T., Marsal K., Ley D. Impaired vascular growth in late adolescence after intrauterine growth restriction // Circulation.-2005.-Vol.l 11.- P.2623−2628.
  98. Brooke O.G., Anderson H.R., Bland J.M. Effects on birth weight of smoking, alcohol, caffeine, socioeconomic factors and psychosocial stress // Br. Med. J.-1989.-Vol.298.-P.795−801.
  99. Bulmer J.N., Lash G.E. Human uterine natural killer cells: a reappraisal //Mol.Immunol.-2005.-Vol.42.-P.511−521.
  100. Caniggia I., Grisaru-Gravnosky S., Kuliszewsky M., Post M., Lye S.J. Inhibition of TGF-133 restores the invasive capability of extravillous trophoblasts in preeclamptic pregnancies // J.Clin.Invest.-1999.-Vol.l03.-P.1641−1650.
  101. Carter A.M., Kingston M.J., Han K.K., Mazzuca D.M. e.a. Altered expression of IGFs and IGF-binding proteins during intrauterine growth restriction in guinea pigs // J. Endocrinol.-2005.-Vol.l8.-P.179−189.
  102. Cellini C., Xu J., Arriaga A., Buchmiller-Crair T.L. Effect of epidermal growth factor infusion on fetal rabbit intrauterine growth retardation and small intestinal development // Pediatr Surg.-2004.-Vol.39.-P.891−897.
  103. Cerwenka A., Kovar H., Majdic O., Holter W. Fas- and activation-induced apoptosis are reduced in human T cells preactivated in the presence of TGF-beta 1 // J. Immunol. 1996. — Vol.156. — P.459−464.
  104. Cetin I., Foidart J.M., Miozzo M., Raun T., Jansson T., Tsatsaris V., Reik W., Cross J., Hauguel-de-Mouzon S., Illsley N., Kingdom J., Huppertz B. Fetal growth restriction: a workshop report // Placenta.-2004.-Vol.25.-P.753−757.
  105. Chaouat G., Cayol V., Mairovitz V., Dubanchet S. Localisation of the Th2 cytokines IL-3, IL-4, IL-10 at the murine feto maternal interface during pregnancy. In Reproductive Immunology.-Narosa Publishing House, New Delhi.-1999.-P.61−70.
  106. Chaouat G., Ledee-Bataille N., Dubanchet S., Zourbas S., Sandra O., Martal J. TH1/TH2 paradigm in pregnancy: paradigm lost? Cytokines inpregnancy/early abortion: reexamining the TH1/TH2 paradigm//Int.Arch.Allergy.Immunol.-2004.-Vol.l34.-P.93−119.
  107. Chaouat G., Menu E., Clark D.A., Dy M., Minkowski M., Wegman T.G. Control of fetal survival in CBA x DBA/2 mice lymphokine therapy // J. Reprod. Fert.- 1990.-Vol.89.-P.447−458.
  108. Charnock J.D.S., Kaufmann P., Mayhew T.M. Aspects of human fetoplacental vasculogenesis and angiogenesis. I. Molecular recognition//Placenta.-2004.-Vol.25.-P. 103−113.
  109. Chen C.P., Yang Y. C, Su T.H., Chen C.Y., Aplin J.D. Hypoxia and transforming growth factor-beta 1 act independently to increase extracellular matrix production by placental fibroblasts // J.Clin.Endocrinol.Metab.-2005 .-Vol.90.-P. 1083−1090.
  110. Chernyshov V.P., Slukvin I.I., Bondarenko G.I. Phenotypic characterization of CD7+, CD3+, and CD8+ lymphocytes from first trimester human deciduas using two-color flow cytometry II Am. J. Reprod. Immunol.-1993.-Vol.29.-P.5-l 6.
  111. Chomarat P., Banchereau J. An update on interleukin-4 and its receptor//Eur. Cytokine Network.- 1997.-Vol.8.-P.333−341.
  112. Christ M., McCartney-Francis N.L., Kulkarni A.B., e.a. Immune dysregulation in TGF-|31 -deficient mice // J. Immunol.-1994.-Vol. 153-P.1936−1946.
  113. Chumbley G., King A., Robertson K., Holmes N., Loke Y.W. Resistance of HLA-G and HLA-A2 transfectants to lysis by decidual NK cells // Immunol.-1994.-Vol.l55.-P.312−322.
  114. Clark D.A. From trophoblast antigens and cells to cytokines: visions and realities In Reproductive Immunology, ed. S.K.Guypta.- Narosa Publishing House, New Deli. 1999-P. 121−131.
  115. Clark D.A., Vince G., Flanders K.C., Kivte H., Starkey P. CD56+ lymphocytic cells in human first trimester decidua as a source of novel TGF-P2-related immunosuppressive factors//Hum.Reprod.-1994.-Vol.9.-P.2270−2277.
  116. Clark D.E., Salving J.D., Smith S.K., Charnock-Jones D.S. Hepatocyte growth factor levels during normal and intra-uterine-growth-restricted pregnancies // Placenta.-1998.-Vol.19.-P.671−673.
  117. Cooper J.C., Sharkey A.M., McLaren J., Charnock J.D.S., Smith S.K. Localization of vascular endothelial growth factor and its receptor, fit, in human placenta and decidua by immunohistochemistry//J. Reprod. Fertil.-1995.-Vol. 105.-P.205−213.
  118. Cooper M.A., Fehnier T.A., Turner S.C., Chen K.S., Ghaheri B.A., Ghayur T., Carson W.E., Caligiuri M.A. Human natural killer cells: a unique innate immunoregulatory role for the CD56(bright) subset // Blood.-2001.-Vol.97.-P.3146−3151.
  119. Corbi A.L., e.a.Garcia-Aguillar J., Springer T.A. Genomic structure of an integrin alpha subunit the leukocyte pi50, 95 molecule // J. Biol. Chem.-1990.-Vol.265.-P. 12 750−12 752.
  120. Coulam C.B. Immunobiologic markers of successful and nonsuccessful pregnancies // Am. J. Reprod. Immunol.-1998.-Vol.40.-P.248.
  121. Dai S.Y., Kanenishi K., Ueno M., Sakamoto H., Hata T. Hypoxia-inducible factor-2alpha is involved in enhanced apoptosis in the placenta from pregnancies with fetal growth restriction // Pathol.Int.-2004.-Vol.54.-P843−849.
  122. Daniels K.A., Devora G., Lai W C., O’Donnell C.L., Bennett M., Welsh R.M. Murine cytomegalovirus is regulated by a discrete subset of natural killer cells reactive with monoclonal antibody to Ly49H //J.Exp.Med.-2001 .-Vol. 194.-P.29−44.
  123. Das C., Sanyal M. Immunomodulators in humantrophoblast-uterus cross talk: cytokines, growth factors and nitric oxide // Reproductive immunology / ed. Gupta S.K. Narosa Publishing Hause, 1999. — P.99−109.
  124. De Onis M., Blossner M., Villar J. Levels and patterns of intrauterine growth retardation in developing countries // EurJ.Clin.Nutr.-1998.-Vol.52, Suppl.l.-P.5−15.
  125. De Wall M.R., Abrams J., Bennett B. e.a. Interleukin 10 (IL-10) inhibits cytokine synthesis by human monocytes: an immunoregulatory role of IL-10 produced by monocytes // J. Exp.med.-1991.-Vol.174.-P.1209−1215.
  126. Delassus S., Couthino G., Saycier C., Darache S., Kourilsky P. Differential cytokine expression in maternal blood and placenta during murine gestation//J.Immunol.-1994.-Vol. 152.-P.2411 -2420.
  127. Delespesse G., Demeure C.E., Yang L.P. e.a. In vitro maturation of nai’ve human CD4+ T lymphocytes into Thl, Th2 effectors // Int. Arch. Allergy Immunol.-1997.-Vol. 113.-P. 157−159.
  128. Deniz G., Christmas S., Brew R., Johnson P. Phenotypiz and functional cellular differences between human CD3-decidual and peripheral blood leukocytes //J.Immunol.-1994.-Vol.152.-P.4255−4261.
  129. Dey S.K., Lim H., Das S.K., Reese J., Paria B.C., Daikoku T., Wang H. Molecular cues to implantation // Endocrine Reviews.-2004.-Vol.25.-P.341−373.
  130. Dunker N., Schmitta K., Krieglsteina K. TGF-0 is required for programmed cell death in interdigital webs of the developing mouse limb // Mech. Dev. 2002. — Vol.113. — P. l 11−120.
  131. El Ghmati S.M., van Hoeyveld E.M., van Strijp J.A.G. e.a. Identification of haptoglobin as an alternative ligand for CDllb/CD18 // J. Immunol.-1996.-Vol. 156.-P.2542−2552.
  132. Elenkov I.J. Glucocorticoids and the Thl/Th2 balance // Ann.N.Y.Acad.Sci.-2004.-Vol.l024.-P. 138−146.v
  133. Elson L.H., Nutman T.B., Metcalfe D.D., Prussin C. Flow cytometric analysis for cytokine production identifies T helper 1, T helper 2, and T helper 0 cells within the human CD4+CD27- lymphocyte subpopulation//J.Immunol.-1995.-Vol. 154.-P.4294−43 01.
  134. Errico M., Riccioni T., Iyer S., Pisano C., Acharya K.R., Persico M.G., De Falco S. Identification of Placenta Growth Factor Determinants for Binding and Activation of Flt-1 Receptor//! Biol. Chem.-2004.-Vol.279.-P.43 929−43 939.
  135. Falanga V., Qian S.W., Danielpour D., Katz M.H., Roberts A.B.,
  136. Sporn M.B. Hypoxia upregulates the synthesis of TGF-B1 by human dermal fibroblasts // J.Invest.Dermatol.-1991.-Vol.97.-P.634−637.
  137. Feinberg R.F., Kliman H.J., Wang C.L. Transforming growth factor-beta stimulates trophoblast oncofetal fibronectin synthesis in vitro: implications for trophoblast implantation in vivo // J.Clin.Endocrinol.Metab.-1994.-Vol.78.-P. 1241−1248.
  138. Ferrara N., Gerber H.P., LeCouter J. The biology of VEGF and its receptors//Nat. Med.-2003.-Vol.9.-P.669−676.
  139. Fiers W., Beyaert R., Boone E. et al. TNF-induced intracellular signaling leading to gene induction or to cytotoxicity by necrosis or byapoptosis // J. Inflamm.- 1996.- Vol. 47.- P. 67−75.
  140. Fiorentino D.F., Zlotnic A., Vieira P. e.a. IL-10 acts on the antigen presenting cell to inhibit cytokine production by Thl cells // J. Immunol.-1991.-Vol. 146.-P.3444−3449.
  141. Fisher S., Genbacev O., Maidji E., Pereira L. Human cytomegalovirus infection of placental cytotrophoblasts in vitro and in utero: implications for transmission and pathogenesis // J. Virol. 2000. — Vol.74. — P.6808−6820.
  142. Fortunato S.J., Menon R. IL-1 beta is a better inducer of apoptosis in human fetal membranes than IL-6 // Placenta. 2003. — Vol.24. — P.922−928.
  143. Fowden A.L., Forhead A.J. Endocrine mechanisms of intrauterine programming // Reproduction.-2004.-Vol.-P.515−526.
  144. Gala R.R., Shevach E.M. Influence of prolactin and growth hormone on the activation of dwarf mouse lymphocytes in vivo // Proc. Soc. Exp. Boil. Med.-1993.-Vol.204.-P.224−230.
  145. Galan A., O’Connor J.E., Valbuena D., Herrer R., Remohi J., Pampfer S., Pellicer A., Simon C. The human blastocyst regulates endometrial epithelial apoptosis in embryonic adhesion // Biol Reprod.- 2000.- Vol. 63.-P.430−439.
  146. Genbacev O., DiFederico E., McMaster M., Fisher S.J.Invasive cytotrophoblast apoptosis in pre-eclampsia // Hum.Reprod.-1999.- Vol. 14.-P.59−66.
  147. Genestier L., Kasibhatla S., Brunner T., Green D.R. Transforming growth factor pi inhibits Fas ligand expression and subsequent activation-induced cell death in T cells via downregulation of c-Myc // J. Exp. Med. -1999.-Vol.189.-P.231−239.
  148. Georgieva R., Belchev D., Minev M., Serafimov V., Kinkina S. Lymphocyte subsets in normal pregnancy, recurrent spontaneous abortions
  149. RSA) and during leucocyte immunotherapy// Abstr. Intern. Symp. «Immunology of reproduction».- 19−23 October, 1993.- Kiev, Ukraine.-P.48.
  150. Gherpell J. L. D., Ferreira F., Costa H. P. F. Neurological followup of the small gestational age infants. A study of risk factors related to prognosis at one year// Arg. Neuropsihiatr.-1993.-Vol.51,-P.50−58.
  151. Gigante B., Tarsitano M., Cimini V., De Falco S., Persico M.G. Placenta growth factor is not required for exercise-induced angiogenesis // Angiogenesis.-2004.-Vol.7.-P.277−284.
  152. Graham C.H., Lysiak J.J., McCrae K.R., Lala P.K. Localization of transforming growth factor-{3 at the human fetal-maternal interface: role in trophoblast growth and differentiation // Biol. Reprod.-1992.-Vol.46.-P.561−572.
  153. Grant K.S., Wira C.R., Hepatocyte growth factor regulation of uterine epithelial cell ter and TNFa release in culture // Am. J. Reprod, Immunol.-2004.-Vol.51.-P.415.
  154. Gregory M.S., Repp A.C., Hothbaum A.M., Saff R.R., Marshak-Rothstein A., Ksander B.R. Membrane Fas ligand activates innate immunity and terminates ocular immune priviledge // J.Immunol.-2002.- Vol.169.- P.2727−2735.
  155. Guimond M., Wang B., Croy B.A. Immune competence involving the natural killer cell lineage promotes placental groeth//Placenta.-1999.-Vol.20.-P.441−450.
  156. Guller S., Wozniak R., Lockwood C.J. Antagonism of transforming growth factor-fi-mediated effects on extracellular matrix protein expression in the human placenta by glucocorticoids // J.Clin.Endocrinol.Metab.-1995.-Vol.80.-P.3273−3278.
  157. Gupta P., Narang M., Banerjee B.D., Basu S. Oxidative stress in term small for gestational age neonates born to undernourished mothers: a case control study//BMC Pediatr.-2004.-Vol.4.-P.14.
  158. Ha C.T., Waterhouse R., Wessells J., Wu J.A., Dveksler G.S. Binding of pregnancy-specific glycoprotein 17 to CD9 on macrophages induces secretion of IL-10, IL-6, PGE2, and TGF-{beta}l//J.Leukoc.Biol.-2005.-Vol.77.-P.948−957.
  159. Hammer A., Blaschitz A., Daxoeck C., Walcher W., Dohr G. Fas and Fas ligand are expressed in the uteroplacental unit of first-trimeste pregnancy // Reprod.Immunol.-1999.- Vol.41.- P.41−51.
  160. Han V.K., Carter A.M. Spatial and temporal patterns of messenger RNA for insulin-like growth factors and their binding proteins in the placenta of man and laboratory animals // Placenta.-2000.-Vol.21.-P.289−305.
  161. Hanh-Zoric M., Hagberg H., Kjellmer I., Ellis J., Wennergren M., Hanson L. Aberration in placental cytokine mRNA related to intrauterine growth retardation // Pediatr. Res.-2002.-Vol.51.-P.201−206.
  162. Hart P., Bonder C., Balogh J., Dickensheets H., Donnelly R., Finlay-Jones J. Differential responses of human monocytes and macrophages to IL-4 and IL-13 //J. Leukos. Boil.-1999.-Vol.66.-P.575−578.
  163. Hayakawa S., Shiraishi H., Saito S., Satoh K. Decidua as a site of extrathymic V gamma I T-cell differentiation // Am. J. Reprod. Immunol.-1996.-Vol.35.-P.233−238.
  164. Hayano C., Koi H., Ogawa K., Nagata K., Matsumoto Y., Nakamura M., Aso T. Anovel serum protein for cytotoxicity increased at the end of pregnancy and is produced by cytotoxic lymphocytes in decidua // Am. J. Reprod. Immunol.-2001.-Vol.46.-P.52.
  165. Heikkinen J., Mottonen M., Alanen A., Lassila O. Phenotypic characterization of regulatory T cells in the human deciduas // Clin.Exp.Immunol.-2004.-Vol.l36.-P.373−378.
  166. Heikkinen J., Mottonen M., Pulkki K., Lassila 0., Alanen A. Cytokine levels in midtrimester amniotic fluid in normal pregnancy and in the prediction of pre-eclampsia// Scand.J.Immunol.-2001.-Vol.53.-P.310−314.
  167. Heinrich P.C., Graeve L., Rose-John S. e.a. Membrane-bound and soluble interleukine-6 receptor: studies on structure, regulation of expression, and signal transduction // Ann. N.Y. Acad. Sci.-1995.-Vol.762.-P.222−237.
  168. Hellstrom A., Dahlgren J., Maral K., Ley D. Abnormal Retinal vascular morphology in Young adults following intrauterine growth restriction // Pediatrics.- 2004.-Vol.l 13.-P.77−80.
  169. Helske S, Vuorela P, Carpen 0, Hornig C, Weich H, Halmesmaki E. Expression of vascular endothelial growth factor receptors 1, 2 and 3 in placentas from normal and complicated pregnancies // Mol.Hum.Reprod.2001.-Vol.7.-P.205−210.
  170. Hemmings D. G., Kilani R., Nykiforuk K., Preiksaitis J., Guilbert L.J. Permissive cytomegalovirus infection of primary villous term and first trimester trophoblasts // J. Virol.- 1998.- Vol.72.- P.4970−4979.
  171. Heyborne K.D., Cranfill R.L., Carding S.R. e.a. Characterization of y5 Tlymphocytes at the maternal-fetal interface // J. Immunol.-1992.-Vol.149.-P.2872−2880.
  172. Hill J.A., Polgar K., Anderson D.J. T-helper 1-type immunity to trophoblast in women with recurrent spontaneous abortion // JAMA.- 1995.-Vol.24.-P. 1933−1936.
  173. Holmes R.P., Holly J.M., Soothill P.W. Maternal insulin-like growth factor binding proteine-1, body mass index and fetal growth // Arch.Dis.Child, Fetal, Neonatal Ed.-2000.-Vol.82.-P.113.
  174. Huang S.T., Vo K.C., Lyell D.J., Faessen G.H., Tulac S., Tibshirani R., Giaccia A.J., Giudice L.C. Developmental response to hypoxia // FASEB J. -2004.-Vol.l8.-P.1348−1365.
  175. Hudicek-Martincic G., Kusan-Jukic M., Salihagic-Kadic A. Nitric oxide~an important signalling molecule in normal and pathological pregnancy // Lijec Vjesn.-2004.-Vol.l26.-P.80−85.
  176. Igarashi 0., Yamane H., Imajoh-Ohmi S., Nariuchi H. IL-12 receptor (IL-12R) expression and accumulation of IL-12R beta 1 and IL-12R beta 2 mRNAs in CD4+ T cells by costimulation with B7−2 molecules // J. Immunol.-1998.-Vol. 160.-P. 163 8−1646.
  177. Ikehara Y., Yasunami Y., Kodama S., Maki T., Nakano M., Nakayama T., Taniguchi M., Ikeda S. CD4+Val4 natural killer T cells are essential for acceptance of rat islet xenografts in mice//J.Clin.Invest.-2000.-Vol.105.-P. 1761−1767.
  178. Imakawa K., Helmer S.D., Nephew K.P., Meka C.S., Christenson R.K. A novel role for GM-CSF: enhancement of pregnancy specific interferon production, ovine trophoblast protein-1//Endocrinology.-1993,-Vol.l32.-P.1869−1871.
  179. Ishimoto H., Natori M., Tanaka M., Miyazaki T., Kobayashi T., Yoshimura Y. Role of oxygen-derived free radicals in fetal growth retardation induced by ischemia-reperfiision in rats// Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol.-1997.-Vol.272.-H701-H705.
  180. Jackson J.A., Wailoo M.P., Thompson J.R., Petersen S.A. Early physiological development of infants with intrauterine growth retardation // Arch. Disease in Child. Fet. and Neonat. Edit.-2004.-Vol.89.-F46.
  181. Jensen E.C., Gallaher B.W., Breier B.H., Harding J.E. The effect of chronic maternal Cortisol infusion on the late gestation fetal sheep // J. Endocrinology.-2002.-Vol.l74.-P.27−36.
  182. Jones J.I., Clemmons D.R. Insulin-like growth factors and their binding proteins: biological actions//End.Rev.-1995.-Vol.l6.-P.3−35.
  183. Jones R.L., Kelly R.W., Critchley O.D. Chemokine and cyelooxygenase-2 expression in human endometrium coincides with leukocyte accumulation//Hum.Reprod.- 1997.-Vol.12.-P. 1300−1306.
  184. Joswig A., Gabriel H.-D., Kibschull M., Winterhager E. Apoptosis in uterine epithelium and deciduas in response to implantation: evidence for two different pathways // Reprod.Biol.Endocrinol.- 2003.-Vol.l- p.44−52.
  185. Kajimura S., Aida K., Duan C. Insulin-like growth factor-binding protein-1 (IGFBP-1) mediates hypoxia-induced embryonic growth and developmental retardation // Proc.Natl.Acad.Sci.USA.-2005.-Vol. 102.-P. 1240−1245.
  186. Kane S., Kisiel J., Shih L., Hanauer S. HLA disparity determines disease activity through pregnancy in women with inflammatory bowel disease // Am.J.Gastroenterol.-2004.-Vol.99.-P. 1523−1526.
  187. Karowicz-Bilinska A. Leptin concentration in women with normal pregnancy and intrauterine growth retardation // Ginekol. Pol.-2004.-Vol.75.-P.10−14.
  188. Karowicz-Bilinska A. Lipid peroxides concentration in women with intrauterine growth restriction // Ginekol. Pol.-2004.-Vol.75.-P.6−9.
  189. Kauma S.W., Huff T.F., Hayes N., Nilkaeo A. Placental Fas ligand expression is a mechanism for maternal immune tolerance to the fetus // J.Clin.Tndocrinol.Metab.-1999.-Vol.84.-P.2188−2194.
  190. Kayisli U.A., Selam B., Guzeloglu- Kayisli O., Demir R., Arici A. Human chhorionic gonadotropin contributes to Maternal immunotolerance and endometrial apoptosis by regulating Fas-Fas ligand system // J. Immunol.-2003 .-Vol. 171 .-P.2305−2313.
  191. Keski-Oja J., Moses H.L. Growth inhibitory polypeptides in the regulation of cell proliferation // Med. Biol-1987 -Vol.65-P. 13−20.
  192. Keyt B.A., Berleau L.T., Nguyen H.V., Chen H., Heinsohn H., Vandlen R., Ferrara N. The carboxyl-terminal domain (111−165) ofvascular endothelial growth factor is critical for its mitogenic potency // J.Biol.Chem.-1996.-Vol.271 .-P.7788−7795.
  193. Khaliq A., Li X.F., Shams M., Sisi P., Acevedo C.A., Whittle M.J., Weich H., Ahmed A. Localization of placenta growth factor (P1GF) in human term placenta // Growth Fasctors.-1996.-Vol.l3.-P.243−250.
  194. Khaliq A., Patel B., Jarvis-Evans J., Moriarty P., McLeod D., Boulton M. Oxygen modulates production of bFGF and TGF-B by retinal cells in vitro. // Exp. Eye Res.-1995.-Vol.60.-P.415−423.
  195. Kindom J.C.P., Kaufmann P. Oxygne and placental villous development: Origins of fetal hypoxia//Placenta. 1997. — Vol.18. — P.613−621.
  196. King A. Uterine leukocytes and decidualization//Hum.Reprod.Update.-2000.-Vol.6.-P.28−36.
  197. Knight M., Redman C.W.G., Linton E.A., Sargent I.L. Syncytiotrophoblast microvilli are shed into the maternal circulation in increased amounts in pre-eclamptic pregnancy // Br.J.Obstet.Gynaecol.-1998.-Vol. 105.-P.632−640.
  198. Knox P.G., Milner A.E., Green N.K., Eliopoulos A.G., Young L.S. Inhibition of metalloproteinase cleavage tnhance the cytotoxicity of Fas ligand // J.Immunol.-2003.-Vol.l70.-P.677−683.
  199. Kubes P., Ibbotson G., Russell J., Wallace J.L., Granger D.N. Role of platelet activating factor in ischemia/reperfusion-induced leukocyte adherence//Am.J.Physiol.Gastrointest.Liver Physiol-1990-Vol.259-G300-G305.
  200. Kudo M., Yamashita M., Abe R., e.a. CD28 costimulation accelerates IL-4 receptor sensitivity and IL-4-mediated Th2 differentiation // J. Immunol.-1999,-Vol. 163 .-P.2434−2442.
  201. Kuhweide R., Damme J.V., Ceuppens J.L. Tumor necrosis factor-a and interleukin 6 synergistically induce T cell growth // Eur. J. Immunol.-1990.-Vol.20.-P. 1019−1025.
  202. Kumru S., Boztosun A., Godekmerdan A. Pregnancy-associated changes in peripheral blood lymphocyte subpopulations and serum cytokine concentration in healthy women//J.Reprod.Med.-2005.-Vol.50.-P.246−250.
  203. Kupfermic M.J., Peaceman A.M., Wigton T.R., Tamura R.K., e.a. Immunoreactive tumor necrosis factor-a is elevated in maternal plasma but undetected in amniotic fluid in the second trimester // Am. J. Obstet. Gynecol.-1994.-Vol. 171 .-P.976−979.
  204. Lacraz S., Isler P., Vey E. e.a. Direct contact between T lymphocytes and monocytes is a major pathway for induction of metalloproteinase expression // J.Biol.Chem.-1994.-Vol.269.-P.22 027−22 033.
  205. Lahat N., Miller A., Shtiller R., Touby E. Differential effects of prolactin upon activation and differentiation of human B lymphocytes // J. Neuroimmunol.-1993.-Vol.47.-P.35−40.
  206. Lala P.K., Zdravkovic M., Aboagye-Mathiese G., Guimond M.-J. Functional roles of HLA-G in the human placenta: facts and fancies. In: Reproductive immunology.-Narosa Publishing House, New Delhi.-1999.-P.233−241.
  207. Lanier L.L. Natural killer cells fertile with receptors for HLA-G?// Proc.Nat.Acad.Sci.USA.-1999.-Vol.96.-P.5343−5345.
  208. Lanier L.L. NK cell receptors // Annu.Rev.Immunol.-1998.-Vol. 16.-P.359−393.
  209. Lash G., MacPherson A., Liu D., Charnock-Jones S., Baker P. Abnormal fetal growth is not associated with altered chorionic villous expression of vascular endothelial growth factor mRNA // Mol. Hum. Reprod. 2001. — Vol.7. — P. 1093−1098.
  210. Lash G.E., Otun H.A., Innes B.A., Bulmer J.N., Searle R.F., Robson S.C. Inhibition of Trophoblast Cell Invasion by TGFB1, 2, and 3 Is Associated with a Decrease in Active Proteases // Biol.Reprod.-2005.-Vol.73. -P.374−381.
  211. Le Bouteiller P. HLA-G during gestation: where and what for? // Abstr. Eur. Meet of Immunology and Reproduction.- October 28−29, 1999.-Rome, Italy.-P.9.
  212. Le Bouteiller P., Barel M., Pizzato N., Wiertz E.J.H.J., Lenfant F. Human cytomegalovirus-host HLA-G interactions // Am.J.Reprod.Immunol.-2004.-Vol.51.-P.449.
  213. Le Bouteiller P., Mallet V. What could lead to selective expression of HLA-G? In: Reproductive immunology.-Narosa Publishing House, New Delhi.-1999.-P.224−232.
  214. Le Bouteiller P., Pizzato N., Barakonyi A., Solier C. HLA-G, preeclampsia, immunity and vascular events // J. Reprod. Immunol.-2003.-Vol.59.-P.219−234
  215. Lederer J.A., Perez V.L., DesRoches L., Kim S.M. e.a. Cytokine transcriptional events during helper T cell subset differentiation // J. Exp. med.-1996.-Vol.l84.-P.397−406.
  216. Lee M.-J., Ma Y., LaChapelle L., Kadner S.S., Guller S. Glucocorticoid tnhances transforming growth factor-13 effects on extracellular matrix protein expression in human placental mesenchymal cellsl //Biology ofreprod.-2004.-Vol.70.-P.l246−1252.
  217. Lee Y.-J., Han Y., Lu H.T. e.a. TGF-0 suppresses IFN-y induction of class II MHC gene expression by inhibiting class II trans-activator messeger RNA expression // J. Immunol.-1997.-Vol.l58.-P.2065−2072.
  218. Li D.K., Odouli R., Liu L., Vinson M., Trachtenberg E. Transmission of parentally shared human leukocyte antigen alleles and the risk of preterm delivery // Obstet.Gynecol.-2004.-Vol.l04.-P.594−600.
  219. Li J., Saunders J.C., Fowden A.L., Dauncey M.J., Gilmour R.S. Transcriptional regulation of the insulin-like growth factor-II gene expression by Cortisol in fetal sheep during late gestation // J. Biol. Chem.-1998.-Vol.273.-P. 10 586−10 593.
  220. Li X.F., Charnock-Jones D.S., Zhang E., Hiby S. e.a. Angiogenic growth factor messenger ribonucleic acids in uterine natural killer cells // J.Clin.Endocrinol.Metab.-2001.-Vol.86.-P. 1823−1834.
  221. Lim K.J. Molecular factors in human implantation: adhesion molecules, proteases and cytokines // Malays. Pathol.- 2003.- Vol.25.- P. l-13.
  222. Lin H., Mossman T.R., Guibert S., Tuntipopipat, Wegmann T.G. Synthesis of T helper-2 cytokines at the maternal fetal interface // I.Immunol.-1993.-Vol. 151.-P.4562.
  223. Lindqvist P., Grennert L., Marsal K. Epidermal growth factor in maternal urine A predictor of intrauterine growth restriction? // Early Hum. Dev.-1999.-Vol.56-P.143−150.
  224. Liu J.P., Baker J., Perkins A.S., Robertson E.J., Efstratiadis A. Mice carrying null mutations of the genes encoding insulin-like growth factor I (Igf-I) and type 1 IGF receptor (IGFlr) // Cell.-1993.-Vol.75.-P.59−72.
  225. Liu Z., Chen Y., Yang Y., Peng J.P. The effect on MHC class II expression and apoptosis in placenta by IFN gamma administration // Contraception.-2002.-Vol.65.-P. 177−184.
  226. Ljunggren H.G., Karre K. In search of the missing self: MHC molecules and NK cell recognition//Immunol.Today.-1990.-Vol.ll.-P.237−244.
  227. Lobo S.C., Huang S.T., Germeyer A., Dosiou C., Vo K.C., Tulac S., Nayak N.R., Giudice L.C. The immune environment in human endometrium during the window of implantation//Am.J.Reprod.Immunol.-2004.-Vol.52.-P.244−251.
  228. Lohler K.R., Rennick D., Rajewsky K., Muller W. Interleukin-10 deficient mice develop chronic enterocolitis // Cell.-1993.-Vol.75.-P.263−274.
  229. Lopes F.L., Desmarais J.A., Murphy B.D. Embryonic diapause and its regulation // Reproduction.-2004.-Vol.l28.-P.669−678.
  230. Lu Y., Yamagishi N., Yagi T., Takebe H. Mutated p21 (WAF1/CIPI/CDII) lacking CDK-inhibitory activity fails to prevent apoptosis in human colorectal carcinoma cells//Oncogene.-1998.-VoU6.-P.705−712.
  231. Lundgren E.M., Cnattingius S., Jonsson B., Tuvemo T. Intellectual and psychological performance in males born small for gestational age with and without catch-up growth // Pediatr. Res.-2001.-Vol.50.-P.91−96.
  232. Lysiak J.J., Hunt J., Pringle G.A., Lala P.K. Localisation of transforming growth factor-p and its natural inhibitor decorin in the humanplacenta and decidua throughout gestation // Placenta.-1995.-Vol.16.-P.221−231.
  233. Mach F., Schonbeck U., Bonnefoy J.Y. e.a. Activation of monocyte/macrophage functions related to acute atheroma complication byx ligation of CD40: induction of collagenase, stromelysin, and tissue factor //
  234. Circulation.-1997.-Vol.96.-P.396−405.
  235. Maejima M., Fujii T., Kazuma S., Okai T., Shibata Y., Taketani Y. Presence of HLA-G-expressing cells modulates the ability of peripheral blood mononuclear cells to release cytokines // Am.J.Reprod.Immunol.-1997.-Vol.38.-P.79−82.
  236. Maemura T., Shinichi K., Tanaka M., Hirakawa S. e.a. Augmentative expression of adhesion molecules in neutrophils isolated from preeclamptic pregnancy and IUGR // Acta Neonat. Jpn.-1999.-Vol.35.-P.487−491.
  237. Maidji E., Percivalle E., Gerna G., Fisher S., Pereira L. Transmission of human cytomegalovirus from infected uterine microvascular endothelialcells to differentiating/invasive placental cytotrophoblasts // Virology.2002.- Vol.304.-P.53−69.
  238. Makarevich A.V., Markkula M. Apoptosis and cell proliferation potential of bovine embryos stimulated with insulin-like growth factor 1 during in vitro maturation and culture // Biol.Reprod.-2002.-Vol.66.-P.386−392.
  239. Malik N., Greenfield B.W., Wahl A.F., Kiener P.A. Activation of human monocytes through CD40 induces matrix metalloproteinases // J.Immunol.-1996.-Vol.l56.-P.3952−3960.
  240. Manchini Y., Cavbonave A., Henemans Y. Immunological guantitation of antigens by single vadial diffusion // Immunochem.-1965.-Vol.2.-P.235−236.
  241. Mangulovsky V., Kookhanevich E., Sudoma I. e.a. Radiotion and congenital malformations and diseases of fetus// Abstr. ofEurop. Assoc. of gynaecol. and obstet. 6 th meeting.-Moscow, 1991.-P.49−50.
  242. Maruo T., Ishihara N., Samoto T. Murakoshi H., Laoag-Fernandez J.B., Matsuo H. Regulation of human trophoblast proliferation and apoptosis during pregnancy // Early pregnancy.-2001.-Vol.5.-P.65−66.
  243. Maruo T., Matsuo H., Murata K., Mochizuki M. Gestational age-dependent dual action of epidermal growth factor on human placenta early in gestation//J.Clin. Endocrin. Metab.-1992.-Vol.75.-P.1362−1367.
  244. Marzi M., Vigano A., Trabattoni D., Villa M.L., Salvaggio A., Clerici E., Clerici M. Characterization of type 1 and type 2 cytokine production profile in physiologic and pathologic human pregnancy // Clin. Exp. Immunol.-1996.-Vol.106.-P. 127−135.
  245. Massague J. The transforming growth factor-P family // Annu.Rev.Cell.Biol.- I990.-Vol.6.-P.597−641.
  246. Mathialagan N., Bixby J.A., Roberts R.M. Expression of interleukin-6 in porcine, ovine, and bovine preimplantation conceptuses//Mol.Reprod.Dev.-1992.-Vol.32.-P.324.
  247. McCormick J.A., Lyons V., Jacobson M.D., Noble J., e.a. 5'V
  248. Heterogeneity of glucocorticoid receptor messenger RNA is tissue specific: differential regulation of variant transcripts by early life events // Molec. End.-2000.-Vol. 14.-P.506−517
  249. McMaster M., Zhou Y., Shorter S., Kapasi K., Geraghty D., Lim K.H., Fisher S. HLA-G isoforms produced by placental cytotrophoblasts and found in amniotic fluid are due to unusual glycosilation // J.Immunol.-1998.-Vol.l60.-P.5922−5928.
  250. Meeusen E., Fox A., Brandon M., Lee C.S. Activation of uterine * intraepithelial y8 TCR-positive lymphocytes during pregnancy // Eur. J.1.munol.-1993 .-Vol.23.-P. 1112−1120.
  251. Mitchell E.J., O’Connor-McCourt M.D. A transforming growth factor beta (TGF-13) receptor from human placenta exhibits a greater affinity for TGF-B2 than for TGF-B1 // Biochemistry.-1991 .-Vol.30.-P.4350−4356.
  252. Miyakoshi K., Ishimoto H., Nishimura O., Tanigaki S. e.a. Role of leukocytes in uterine hypoperfusion and fetal growth retardation induced by ishemia-reperfusion // Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol.-2001.-Vol.280.-P.1215−1221.
  253. Moffett-King A. Narutal killer cells and pregnancy // Nature Reviews Immunology.-2002.-Vol.2.-P.656−663.
  254. Montani M.S., Tuosoto L., Giliberti R., Stefanini L., Cundari E., Piccolella E. Dexamethazone induces apoptosis in human T cell clones expressing low levels of Bcl-2 // Cell Death Differ.-1999.-Vol.6.-P.79−86.
  255. Moodley S.J. Intrauterine growth restriction (IUGR) // Essentials of Maternal Fetal Medicine / Ed. Ashmead G.G., Reed G.B. NY: International Thomson Publ, 1997.-P.81−93.
  256. Mor G., Gutierriz L.S., Eliza M., Kahyaoglu F., Arici A. Fas-Fas ligand system-induced apoptosis in human placenta and gestational trophoblastic disease // Am.J.Reprod.Immunol.-1998.-Vol.40.-P.89−94.
  257. Morales P.J., Pace J.L., Platt J.S., Phillips T.A., Morgan K. e.a. Placental cell expression of HLA-G2 isoforms is limited to the invasive trophoblast phenotype // J. Immunology.-2003.-Vol.l71.-P.6215−6224.
  258. Moretta L., Mingari M.C., Pende D., Bottino C., Biasonni R., Moretta A. The molecular basis of natural killer (NK) cell recognition and function//J.Clin.Immunol.- 1996.-Vol.l6.-P.243−253.
  259. Morpurgo P. S., Cetin I., Borgato S., Cortelazzi D. e.a. Circulating levels of inhibin A, inhibin B and activin A in normal and intrauterine growth restricted (IUGR) fetuses // Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol.-2004.-Vol. 117.-P.38−44.
  260. Muhlhauser J., Crescimanno C., Kaufmann P., Hofler H., Zaccheo D., Castellucci M. Differentiation and proliferation patterns in- human trophoblast revealed by c-erbB-2 oncogene product and EGF-R // J. Histochem. Cytochem.-1993.-Vol.41 .-P. 165−173.
  261. Mukhopadhyay D., Sundereshan S., Rao C., Karande A.A. Placental protein 14 induces apoptosis in T cells but not in monocytes // J. Biol.Chem.-2001.-Vol.276.-P.28 268−28 273.
  262. Murphy K.M. T lymphocyte differentiation in the periphery // Curr. Opin. Immunol.-1998.-Vol. 10.-P.226−232.
  263. Myatt L., Cui X. Oxidative stress in the placenta // Histochem. Cell Biol.-2004.-Vol.l22.-P.369−382.
  264. Nagaeva O. The role of the decidual y8T lymphocytes in the immunobiology oh human normal ptrgnancy//Departament of Clinical Immunology, Umea University.-Umea, 2002.-P.85.
  265. Nakagawa Y., Fujimoto J., Tamaya T. Placental growth by the estrogen-dependent angiogenic factors, vascular endothelial growth factor and basic fibroblast growth factor, throughout gestation // Gynecol. Endocrinol.-2004.-Vol.l9.-P.259−266.
  266. Nakamura O., Hondo E., Namba Y., Kiso Y. IGF-1 overexpression causes fetal loss during placentation in mice // J. Reprod. Devel.-2004.-Vol.50.-P.375−380.
  267. Nakamura T., Kamogawa Y., Bottomly K., Flavell R.A. Polarization of IL-4 and IFN-gamma-producing CD4+ T cells following activation of naiv CD4+ T cells // J. Immunol.-1997.-Vol.158.-P. 1085−1094.
  268. Nakazawa M., Sugi N., Kawaguchi H., Ishii N., Nakajima H., Minami M. Predominance of type 2 cytokine-producing CD4+ and CD8+ cells in patients with atopic dermatitis // J.Allergy.Clin.Immunol.-1997.-Vol.99.-P.673−682.
  269. Nishikawa K., Saito S., Morii T., Hamada K., e.a. Accumulation of CD16-CD56+ natural killer cells with high affinity interleukin 2 receptors in human early pregnancy deciduas // Internat. Immunol.-1991.-Vol.3.-P.743−750.
  270. O’Garra A. Cytokines induce the development of functionally heterogeneous T helper cell subsets // Immunity.-1998.-Vol.8.-P.275−283.
  271. Ober C. Current topic: HLA and reproduction: lessons from studied in the Hutterites // Placenta.-1995.-Vol.l6.-P.569−577.
  272. Ober C., Aldrich C., Rosinsky В., Robertson A., Walker M.A., Willadsen S., Verp M.S., Geraghty D.E., Hunt J.S. HLA-G1 protein expression is not essential for fetal survival // Placenta.-1998.-Vol. 19.-P.127−132.
  273. Ohshima K., Nakashima M., Sonoda K., Kikuchi M., Watanabe T. Expression of RCAS1 and FasL in human trophoblasts and uterine glands during pregnancy: the possible role in immune privilege // Clin.Exp.Immunol.-2001 .-Vol. 123 .-P.481 -46.
  274. Ohshima Y., Delespesse G. T cell-derived IL-4 and dendritic cell-derived IL-12 regulate the lymphokine-producing phenotype of alloantigen-primed na’ive human CD4 T cells // J. Immunol.-1997.-Vol.l58.-P.629−636.
  275. Omu A.E., Al-Azemi M.K., Al-Qattan F., Al-Yatama M. Connection between human leucocyte antigens D region and T helper cytokines in preeclampsia // Arch. Gynecol. Obstet.-2004.-Vol.269.-P.79−84.
  276. Openshaw P., Murphy E.E., Hosken N.A. e.a. Heterogeneity of intracellular cytokine synthesis at the single-cell level in polarized T helper 1 and T helper 2 populations // J.Exp.Med.-1995.-Vol.l82.-P.1357−1367.
  277. Orphanides C., Fine L.G., Norman J.T. Hypoxia stimulates proximal tubular cell matrix production via a TGF-131 -independent mechanism // Kidney Int.-1997.-Vol. 52.-P.637−647.
  278. Paludan S.R. Interleukin-4 and interferone-gamma: the quintessence of a mutual antagonistic relationship // Scan. J. Immunol.-1998.-Vol.48.-P.459−468.
  279. Penchalaneni J., Wimalawansa S.J., Yallampalli C. Adrenomodullin antagonist treatment during early gestation in rats causes fetoplacental growth restriction through apoptosis // Biol.Reprod.-2004.-Vol.71.-P. 14 751 483.
  280. Pereira L., Maidji E., McDonagh S., Genbacev O., Fisher S. Human cytomegalovirus transmission from the uterus to the placenta correlates with the presence of pathogenic bacteria and maternal immunity // J. Virol.-2003.-Vol.77.-P.13 301−13 314.
  281. Piccinni M.-P. Role of hormone-controlled T-cell cytokines secretion in pregnancy // AJRI.-2004.-Vol.51 .-P.456.
  282. Pijnenborg R., Vercruysse L., Verbist L., Van Assche F.A. Interaction of interstitial trophoblast with placental bed capillaries and venules of normotensive and pre-eclamptic pregnancies // Placenta.-1998.-Vol. 19-P.569−575.
  283. Polanczyk M.J., Carson B.D., Subramanian S., Afentoulis M., Vandenbark A.A., Ziegler S.F., Offner H. Cutting edge: estrogen drives expansion of the CD4+CD25+ regulatory T cell compartment // J. Immunol.-2004.-Vol.l73.-P.2227−2230.
  284. Pollard J.W., Hunt J.S., Wiktor-Jedrzejczak W., Stanley E.R. A pregnancy defect in the osteopetrotic (op/op) mouse demonstrates the requirement for CSF-1 in female fertility//Developmental Biology.-1991.-Vol.l48.-P.273−283.
  285. Prentice A. M. Intrauterine factors, adiposity, and hyperinsulinaemia // Br. Med. J.-2003.-Vol.327.-P.880−881.
  286. Prussin C., Metcalfe D.D. Detection of intracytoplasmic cytokine using flow cytometry and directly conjugated anti-cytokine antibodies//J.Immunol.Meth.-1995,-Vol. 188.-P. 117−128.
  287. Qiu Q., Yang M., Tsang B.K., Gruslin A. EGF-induced trophoblast secretion of MMP-9 and TIMP-1 involves activation of both PI3K and MAPK signalling pathways // Reproduction.-2004.-Vol.l28.-P.355−363.
  288. Raghupathy R. Pregnancy: success and failure within the Thl/Th2/Th3 paradigm // Semin.Immunol.-2001.-Vol.l3.-P.219−227.
  289. Rajagopalan S., Long E.O. A human histocompatability leukocyte antigen (HLA)-G-specific receptor expressed on all natural killer cells//J.Exp.Med.-1999.-Vol. 189.-P. 1093−1100.
  290. Rajashekhar G., Loganath A., Roy A.C., Wong Y.C. Over-expression and secretion of angiogenin in intrauterine growth retardation placenta // Mol. Reprod. and Developm.-2003.-Vol.64.-P.397−404.
  291. Ramani M., Khechai F., Ollivier V. e.a. Interleukine-10 and pentoxifylline inhibit C-reactive protein-induced tissue factor gene expression in peripheral human blood monocytes // FEBS Lett.-1994.-Vol.356.-P.86−88.
  292. Redman C.W.G., Sargent I.L. Placental debris, oxidative stress and preeclampsia//Placenta.-2000.-Vol.21.-P.597−602.
  293. Reese J., Brown N., Das S.K., Dey S.K. Expression: of neu differentiation factor during the periimplantation period in the mouse uterus//Biol.Reprod.-1998.-Vol.58.-P.719−727.
  294. Reid G.J., Flozak A.S., Simmons R.A. Placental expression of insulinlike growth factor receptor-1 and insulin receptor in the growth-restricted fetal rat //J. Soc. Gynecol. Investing.-2002.-Vol.9.-P.210−214.
  295. Reina M., Broccia M.L., Menegola E., Di Blasio A.M., Vigano P., Giavini E. Effects of interleukin-12 administration during the pre- and periimplantation period on mouse embryofetal development//Am.J.Reprod.Immunol.-2004.-Vol.51 .-P.345−351.
  296. Reuvekamp A., Velsing-Aarts F.V., Poulina I.E., Capello J.J. Duits A.J. Selective deficite of angiogenic growth factors characterizespregnancies complicated by pre-eclampsia//Br. J. Obstet. Gynecol.-1999-Vol.106.-P. 1019−1022.
  297. Rijhhsinghani A.G., Thompson K., Tygrette L., Bhatia S.K. Inhibition of interleukin-10 during pregnancy results in neonatal growth retardation // Am. J. Reprod. Immun.-1997.-Vol.37.-P.232−235.
  298. Ripperger J., Fritz S., Richter K. e.a. Isolation of two interleukin-6 response element binding proteins from acute phase rat lever // Ann. N.Y. Acad. Sci.-1995.-Vol.762.-P.252−261.
  299. Robertson S.A., Mau V.J., Hudson S.N., Tremellen K.P. Cytokine-leukocyte networks and the establishment of pregnancy // Am. J. Reprod Immunol. 1997. — Vol.37. — P.438−442.
  300. Roncarolo M.G., Bacchetta R., Bordignon C., Narula S., Levings M.K. Type 1 T regulatory cells // Immunol. Rev.-2001.-Vol.l82.-P.68−79.
  301. Ruiz C., Reyes-Botella C., Garcia-Martinez O., Montes MJ. Modulation of antigenic phenotype by IL-lbeta, IFNgamma and TGFbeta on cultured human decidual stromal cells//Biosci.Rep.-2004.-Vol.24.-P.55−62.
  302. Rukavina D., Laskarin G., Strbo N., Sotosek V., Podack E.R. Physiologic and path genetic significance of perforin pregnancy // Am. J. Reprod. Immunol.-l998.-Vol.40.-P.250.
  303. Runic R., Lockwood C. C.J., Ma Y., Dipasquale B., Guller S. Expression of Fas ligand by human cytotrophoblasts: implications in placentation and fetal survival// J.Clin. Endocrinol.Metab.-1996.-Vol.81.-P.3119−3122.
  304. Ryan J.C., Naper C., Hayashi S., Daws M.R. Physiologic functions of activating natural killer (NK) complex-encoded receptors on NK cells//Immunol.-2001 .-Vol.27.-P.660−665.
  305. Sacks D.A. Determinants of fetal growth // Curr. Diab. Rep.-2004.-Vol.4.-P.281−287.
  306. Sacks G., Sargent I., Redman C. An innate view of human pregnancy // Immunol. Today.- 1999.-Vol.20.-P.l 14−118.
  307. Sacks G.P., Redman C.W.G, Sargent I.L. Monocytes are primed to produce the Thl type cytokine IL-12 in normal human pregnancy: an intracellular flow cytometric analysis of peripheral blood mononuclear cells//Clin.Exp.Immunol.-2003.-Vol, 131.-P.490−497.
  308. Sacks G.P., Studena K., Sargent I.L., Redman C.W.G. Normal pregnancy and pre-eclampsia both produce inflammatory changes in peripheral blood leucocytes akin to sepsis//Am.J.Obstet.Gynecol.-1998.-Vol.l79.-P.80−86.
  309. Saito S. Cytokine network in the human placenta. In Reproductive Immunology.-Narosa Publishing House, New Delhi.-1999.-P.79−87.
  310. Saito S., Nishikawa K., Morii T., Enomoto M., Narita N., Motoyoshi K., Ichijo M. Cytokine production by CD16"CD56bri6ht natural killer cells in human early pregnancy deciduas // Int.Immunol.-1993.-Vol.5.-P.559−563.
  311. Saito S., Sasaki Y., Sakai M. CD4(+)CD25high regulatory T cells in human pregnancy // J. Reprod. Immunol.-2005.-Vol.65.-P.111−120.
  312. Salafia C.M., Pezzullo J.C., Minior V.K., Divon M.Y. Placental pathology of absent and reversed end-diastolic flow in growth-restricted fetuses // Obstet. Gynecol.- 1997.-Vol.90.-P.830−8369.
  313. Salamonsen L.A., Young R.J., Garcia S., Findlay J.K. Mitogenic actions of endothelin and other growth factor in ovin endometrium // J.Endocrinol.-1997.-Vol. 152.-P.283−290.
  314. Sallusto F., Lanzavecchia A., Mackay C.R. Chemokines and chemokine receptors in T-cell priming and Thl/Th2-mediated responses // Immunol. Today.-1998.-Vol. 19.-P.568−574.
  315. Sarah R., Skinner R.J., Roberts C.T. Protective role of interleukin-10 in placental inflammation and pregnancy loss // AJRI.-2004.-Vol.51.-P.455.
  316. Saren P., Welgus H.G., Kovanen P.T. TNF-a and IL-lp selectively induce expression of 92-kDa gelatinase by human macrophages // J.Immunol.-1996.-Vol.l57.-P.4159−4166.
  317. Sasaki Y., Sakai M., Miyazaki S., Higuma S., Shiozaki A., Saito S. Decidual and peripheral blood CD4+CD25+ regulatory T cells in early pregnancy subjects and spontaneous abortion cases // Mol. Hum. Reprod.-2004.-Vol.l0.-P.347−353.
  318. Schafer-Somi S. Cytokines during early pregnancy of mammals: a review//Anim.Reprod.Sci.-2003.-Vol.75.-P.73−94.
  319. Schailble U.E., Kaufmann S.H.E. CD1 and CD 1-restricted T cells in infections with intracellular bacteria//Trends.Microb.-2000.-Vol.8.-P.419−425.
  320. Schiff E., Eriedman S.A., Baumann P. e.a. Tumor necrosis factor-a in pregnancies assotiated with preeclampsia or small-for-gestation-age newborns//Am. J. Obstet. Gynecol.- 1994.-Vol.l70.-P.1224−1229.
  321. Schneider J.G., Moore M.A.S. TGF-(3 but not macrophage inflammatory protein-la (MlPla), abrogates IL-1 and ckit ligand (KL) induced proliferation of murine high proliferative potential (HPP) colonies // Blood.-1991 .-Vol.78. Suppl. 1 .-P.259.
  322. Sebire N.J., Jain V., Talbert D.G. Spiral artery associated restricted growth (SPAARG): a computer model of pathophysiology resulting from low intervillous pressure having fetal programming implications // Pathophysiology.-2004.-Vol. 11 .-P.87−94.
  323. Seder R.A. The role of IL-12 in the regulation of Thl and Th2 differentiation // Res. Immunol. -1995.-Vol. 146.-P.473−476.
  324. Sherwin J., Freeman T., Stephens R., Kimber S., Smith A., Chambers I., Smith S., Sharkey A. Identification of genes regulated by Leukaemia Inhibitory Factor in the mouse uterus at the time of implantation//Molecular Endocrin.-2004.-VoU 8.-P.2185−2195.
  325. Shevach E.M. CD4+CD25+ suppressor cells: more questions than answers//Nat.Rev.Immunol.-2002.-Vol.2.-P.389−400. '
  326. Shloma D.V., Hirnjak L.S. Interferon-production of pregnant women and the influence of interferone on T-cell system in human embrions // Abstr. Intern. Symp. «Immunology of reproduction».- 19−23 October, 1993.-Kiev, Ukraine.- c.76.
  327. Shore V.H., Wang T.H., Wang C.L., Tony R.J., Caudle M.R., Tony D.S. Vascular endothelial growth factor, placenta growth factor and their receptors in isolated human trophoblast//Placenta.-1997.-Vol.l8.-P.657−665.
  328. Simpson H., Robson S.C., Bulmer J.N., Barber A., Lyall F. Transforming growth factor 13 expression in human placenta and placental bed during early pregnancy // Placenta.-2002.-Vol.23.-P.44−58.
  329. Sjoblom C., Roberts C.T., Wikland M., Robertson S.A. Granulocyte-macrophage colony-stimulating factor alleviates adverse consequences of embryo culture on fetal growth trajectory and placental morphogenesis // Endocrinol.-2005.-Vol.l46.-P.2142−2153.
  330. Slotkin T.A., Zhang J., McCook E.C., Seidler F.J. Glucocorticoid administration alters nuclear transcription factors in fetal rat brain: implications for the use of antenatal steroids // Devel. Brain Res.-1998.-Vol.lll.-P.H-24.
  331. Smarason A.K., Gunnarsson A., Alfredsson J.H., Valdimarsson H. Monocytosis and monocytic infiltration of decidua in early pregnancy//J.Clin.Laboratoryimmunol.-1986.-Vol.21 .-P. 1−5.
  332. Smith S., Francis R., Guilbert L., Baker P.N. Growth factor rescue of cytokine mediated trophoblast apoptosis// Placenta.-2002.-Vol.23.-N.4.-P.322−330.
  333. Somerset D.A., Li X.F., Afford S., Strain A.J. e.a. Ontogeny of hepatocyte growth factor (HGF) and its receptor (c-met) in human placenta: reduced HGF expression in intrauterine growth restriction // Am. J. Pathol.-1998.-Vol.l53.-P.l 139−1147.
  334. Somerset D.A., Zheng Y., Kilby M.D., Sansom D.M., Drayson M.T. Normal human pregnancy is associated with an elevation in the immune suppressive CD4+CD25+ regulatory T-cell subset // Immunol.-2004.-Vol.ll2.-P.38−43.
  335. Sotnikova N. Yu., Antsiferova Yu.S., Kroshkina N.V., Kudryashova A.V., Astraukh N.V., Solovjeva T.A. Local immune response in the progress of normal gestation // Abstr. of Europian Meeting of Immunology and Reproduction, Rome.-1999.-?. 101.
  336. Sotnikova N., Kroshkina N., Astraukh N., Kudryashova A., Panova I., Tzarkova R. Immune events at maternal-fetal interface in normal and complicated by gestosis pregnancy // Am. J. Reprod. Immun.- 2001.-v.46.-№l.-p.94.
  337. Stall A.M., Wells S.M., Lam K.-P. B-l cells: unique origins and functions // Seminars in Immunol.-1996.-Vol.8.-P.45−59.
  338. Stallmach T, Hebisch G, Orban P, Lu X. Aberrant positioning of trophoblast and lymphocytes in the feto-maternal interface with preeclampsia //Virchows Arch. -1999.- Vol.434.-P.207−211.
  339. Szekeres-Bartho J. Immunosuppression by progesterone in pregnancy. Boca Raton, FL.: CRC Press, 1992.-P.13−40.
  340. Tafuri A., Alferink J., Moller P., Hammerling G.I., Arnold B. T cell awreness of paternal alloantigens during pregnancy // Science.-1995.-Vol.270.-P.630−633.
  341. Tanaka M., Natori M., Ishimoto H., Miyazaki T., Kobayashi T., Nozawa S. Experimental growth retardation produced by transient period of uteroplacental ischemia in pregnant Sprague-Dawley rats // Am. J.Obstet. Gynecol.-1994.-Vol. 171 .-P. 1231 -1234.
  342. Thaete L.G., Dewey E.R., Neerhof M.G. Endothelin and the regulation of uterine and placental perfusion in hypoxia-induced fetal growth restriction // J. Soc. Gynecol. Invest.- 2004.-Vol. 11 .-P. 16−21.
  343. Tjoa M.L., Oudejans C.B., van Vugt J.M., Blankenstein M.A., van Wijk IJ. Markers for presymptomatic prediction of preeclampsia and intrauterine growth restriction // Hypertens.Pregnancy.-2004.-Vol.23.-P.171−189.
  344. Toder V. TNF-a, apoptosis and embryo loss // J. Reprod. Immunol-2003.-Vol.58.-P.127.
  345. Todt J.C., Yang Y., Lei J. et al. Effects of tumor necrosis factor-alpha on human trophoblast cell adhesion and motility//Am.J.Reprod.Immunol.-1996.-Vol.36.-P.65−71.
  346. Torry D.S., Ahn H., Barnes E.L., Torry R.J. Placenta growth factor: potential role in pregnancy//Am.J.Reprod.Immunol.-1999.-Vol.41.-P.79−85.
  347. Torry D.S., Hinrichs M., Torry R.J. Determinants of placental vascularity//Am. J. Reprod. Immunol.-2004.-Vol.51.-P.257−268.
  348. Torry D.S., Wang H.S., Wang T.H., Caudle M.R., Tony R.J. Preeclampsia is associated with reduced serum level of placenta growth factor// Am. J. Obstet. Gynecol-1998-Vol.l79.-P.1539−1544.
  349. Tse J.Y., Lao T.T., Chan C.C., Chiu P.M., Cheung A.N. Expression of vascular endothelial growth factor in third-trimester placentas is not increased in growth-restricted fetuses // J. Soc. Gynecol. Investig. 2001. -Vol.8.-P.77−82.
  350. Tsushima R., Fujii T., Nakamura A., Okai T., Juji T., Taketani Y. Suppressed mixed lymphocyte reaction in couples with intrauterine growth retardation pregnancies // Int. J. Gynaecol. Obstet.-1995.-Vol.48.-P.37−42.
  351. Von Rango U. Classen-Linke I., Krusche C.A., Beier H.M. The receptive endometrium is characterized by apoptosis in the glands // Hum. Reprod.-1998.-Vol.l3.-P.3177−3186.
  352. Wegmann T.G. The cytokine basis for cross-talk between the maternal immune and reproductive systems//Curr. Opinion Immunol.-1990.- Vol.2.-P.765−769.
  353. Wegmann T.G., Lin H., Guilbert L., Mosmann T.R. Bidirectional cytokine interactions in the maternal-fetal relationship: is successful pregnancy a Th2 phenomenon?//Immunol. Today.-1993.-Vol.l4.-P.353−356.
  354. Weiner C.P., Robinson D. The sonographic diagnosis of intrauterine growth retardation using the postnatal ponderal index and the crown-heel length as standards of diagnosis // Am. J. PerinatoI.-1989.-VoI.6.-p.380−383.
  355. Woods K.A., Camacho-Hubner C., Savage M.O., Clark A.J. Intrauterine growth retardation and postnatal growth failure associated with deletion of the insulin-like growth factor I gene // N. Engl. J. Med.-1996.-Vol.335.-P.1363 -1367.
  356. Wordinger R.J., Smith K.J., Bell C., Chang I.F. The immunolocalization of basic fibroblast growth factor in the mouse uterus during the initial stages of embryo implantation // Growth Factors.-1994.-Vol. 11.-P. 175−186.
  357. Youinou P., Renaudineau Y. The antiphospholipid syndrome as a model for B cell-induced autoimmune diseases // Thromb. Res.-2004.-Vol.l 14.-P.363−369.
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?