Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Прогнозирование и ранняя диагностика прогрессирования пролиферативной витреоретинопатии после успешного хирургического лечения регматогенной отслойки сетчатки

Диссертация: Прогнозирование и ранняя диагностика прогрессирования пролиферативной витреоретинопатии после успешного хирургического лечения регматогенной отслойки сетчатки
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

ОКТ рекомендуется проводить для ранней диагностики и мониторинга изменений сетчатки макулярной области после хирургии РОС, раннего выявления послеоперационного прогрессирования ПВР. Обнаружение эпиретинальной мембраны у пациентов через 7 дней после хирургического лечения является проявлением локальной ПВР, а также фактором риска развития диффузной ПВР (19%). При наличии резидуальной отслойки… Читать ещё >

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Эпидемиология, распространенность, факторы риска развития и прогрессирования пролиферативной витреоретинопатии после хирургии регматогенной отслойки сетчатки
    • 1. 2. Патогенез пролиферативной витреоретинопатии
    • 1. 3. Классификация пролиферативной витреоретинопатии
    • 1. АИспользование оптической когерентной томографии у пациентов с регматогенной отслойкой сетчатки
      • 1. 5. Использование флюоресцентной ангиографии у пациентов с регматогенной отслойкой сетчатки
      • 1. 6. Использование цветового допплеровского картирования и импульсной допплерографии у пациентов с регматогенной отслойкой сетчатки
      • 1. 7. Использование иммунологических тестов у пациентов с регматогенной отслойкой сетчатки
        • 1. 7. 1. PDGF. Структура, функции, место в механизме развития пролиферативной витреоретинопатии у пациентов с регматогенной отслойкой сетчатки
        • 1. 7. 2. VEGF. Структура, функции, место в механизме развития пролиферативной витреоретинопатии у пациентов с регматогенной отслойкой сетчатки
        • 1. 7. 3. PEDF. Структура, функции, место в механизме развития пролиферативной витреоретинопатии у пациентов с регматогенной отслойкой сетчатки
        • 1. 7. 4. IL-8. Структура, функции, место в механизме развития пролиферативной витреоретинопатии у пациентов с регматогенной отслойкой сетчатки
      • 1. 8. Профилактика и лечение пролиферативной витреоретинопатии
  • Глава 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Общая характеристика клинического материала
    • 2. 2. Методы обследования пациентов

    Глава 3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ КЛИНИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ, ОПТИЧЕСКОЙ КОГЕРЕНТНОЙ ТОМОГРАФИИ И ФЛЮОРЕСЦЕНТНОЙ АНГИОГРАФИИ У ПАЦИЕНТОВ, УСПЕШНО ПРООПЕРИРОВАННЫХ ПО ПОВОДУ ПЕРВИЧНОЙ РЕГМАТОГЕННОЙ ОТСЛОЙКИ СЕТЧАТКИ.

    3.1. Клиническая характеристика пациентов.

    3.2. Сравнительная клиническая характеристика групп пациентов с регматогенной отслойкой сетчатки.

    3.3. Результаты оптической когерентной томографии сетчатки и визометрии пациентов с регматогенной отслойкой сетчатки в зависимости от особенностей течения послеоперационного периода.

    3.4.Роль флюоресцентной ангиографии в прогнозировании течения послеоперационного периода у пациентов с регматогенной отслойкой сетчатки.

    Глава 4. РЕЗУЛЬТАТЫ УЛЬТРАЗВУКОВОГО ИССЛЕДОВАНИЯ СОСТОЯНИЯ КРОВОТОКА В СОСУДАХ ГЛАЗА И ОРБИТЫ У ПАЦИЕНТОВ, УСПЕШНО ПРООПЕРИРОВАННЫХ ПО ПОВОДУ ПЕРВИЧНОЙ РЕГМАТОГЕННОЙ ОТСЛОЙКИ СЕТЧАТКИ.

    Глава 5. ОСОБЕННОСТИ ЛОКАЛЬНОЙ И СИСТЕМНОЙ ПРОДУКЦИИ РОСТОВЫХ ФАКТОРОВ И ИНТЕРЛЕЙКИНА-8 У

    ПАЦИЕНТОВ, ПРООПЕРИРОВАННЫХ ПО ПОВОДУ РЕГМАТОГЕННОЙ ОТСЛОЙКИ СЕТЧАТКИ.

    5.1. Результаты исследования РБОР-АА у пациентов с регматогенной отслойкой сетчатки.

    5.2. Результаты исследования РБОР-АВ у пациентов с регматогенной отслойкой сетчатки.

    5.3. Результаты исследования РБОР-ВВ у пациентов с регматогенной отслойкой сетчатки.

    5.4. Результаты исследования УЕОБ у пациентов с регматогенной отслойкой сетчатки.

    5.5. Результаты исследования РЕОБ у пациентов с регматогенной отслойкой сетчатки.

    5.6. Результаты исследования 1Ь-8 у пациентов с регматогенной отслойкой сетчатки.

    5.7. Особенности цитокинового статуса в зависимости от тяжести исходной пролиферативной витреоретинопатии и характера течения послеоперационного периода.

    Глава 6. ПАТОГЕНЕТИЧЕСКИ ОРИЕНТИРОВАННЫЕ ПОДХОДЫ К

    ПРОФИЛАКТИКЕ ПОСЛЕОПЕРАЦИОННОГО ПРОГРЕССИРОВАНИЯ ПРОЛИФЕРАТИВНОЙ ВИТРЕОРЕТИНОПАТИИ (НА ОСНОВЕ ПОЛУЧЕННЫХ ДАННЫХ).

Прогнозирование и ранняя диагностика прогрессирования пролиферативной витреоретинопатии после успешного хирургического лечения регматогенной отслойки сетчатки (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Отслойка сетчатки остается в настоящее время значимой медико-социальной проблемой. Частота регматогенной отслойки сетчатки (РОС) в общей популяции достигает 6,1 — 17,9 случаев на 100 тыс. населения [31, 121, 160, 189, 190, 214, 324]. Большинство пациентов с данной патологией составляют люди трудоспособного возраста (84 — 89%) [1, 8], что объясняет социальную значимость данного заболевания.

В течение последних лет значительный прогресс хирургических технологий позволил уменьшить число осложнений и улучшить анатомические результаты операций при отслойке сетчатки. Однако, даже при использовании современных высокотехнологичных подходов, по данным различных авторов, процент успешных хирургических вмешательств составляет от 61,5 до 97,5 в зависимости от тяжести исходного состояния глаза [25, 52, 74, 112, 116, 128, 155, 158, 159, 242, 243, 253, 257, 258].

Одной из основных причин неудач хирургического лечения РОС является прогрессирование пролиферативной витреоретинопатии (ПВР) в послеоперационном периоде. По данным различных авторов развитие ПВР отмечается в 2,2 — 29,4% случаев [25, 53, 54, 88, 118, 153, 155, 158, 242, 243, 258], при этом частота рецидивов отслойки сетчатки составляет от 2,2 до 20,0% [102, 112, 155, 187, 243, 258], большинство рецидивов развивается в первые три месяца после операции. Кроме того, нередки локальные патологические пролиферативные процессы с формированием эпимакулярной мембраны, значительно ухудшающей функциональный результат операции [51, 52, 83].

На данный момент, благодаря серии ретроспективных исследований, выделены интраоперационные факторы, провоцирующие развитие послеоперационной ПВР [14, 110, 115, 196]. Четко обозначены принципы хирургии отслойки сетчатки, направленные на снижение риска прогрессирования ПВР [14].

В настоящее время диагностика ПВР основывается на обнаружении пролиферативных мембран на поверхности сетчатки, под сетчаткой и/или в витреальной полости. Возможности обычного офтальмологического обследования на начальной стадии формирования таких мембран весьма ограничены. Поэтому особую актуальность приобретает использование современных диагностических методик, таких как оптическая когерентная томография (ОКТ) и флюоресцентная ангиография (ФАГ), что расширит понимание начальных изменений при прогрессировании ПВР, повысит качество ранней диагностики и мониторинга процесса.

Интерес представляет изучение особенностей регионарного кровотока в глазной артерии (ГА), центральной артерии сетчатки (ЦАС), латеральных и медиальных задних коротких цилиарных артериях (ЗКЦА) с помощью методов цветового допплеровского картирования (ЦДК) и импульсной допплерографии (ИД), что позволит получить дополнительные сведения о причинах прогрессирования ПВР, и, возможно, прогнозировать развитие данного тяжелого осложнения.

На современном уровне понимания патогенеза ПВР особое значение отводится ростовым факторам. Именно им принадлежит ведущая роль в регуляции процессов пролиферации, ангиогенеза, хемотаксиса и воспаления. С точки зрения изучения витреоретинального пролиферативного процесса наибольший интерес представляют: тромбоцитарный фактор роста (PDGF) [65, 79, 166−168, 172, 225, 293], сосудистый эндотелиальный фактор роста (VEGF) [72, 75, 194, 216, 222, 223, 272, 273, 283, 318], фактор, выделенный из пигментного эпителия (PEDF) [21, 22, 85, 194, 207], а также хемокины, главным из которых является интерлейкин-8 (IL-8) [17, 30, 60, 90, 91, 93, 148, 216, 318].

Все вышесказанное определяет актуальность дальнейшего изучения проблемы прогрессирования ПВР после успешно проведенного хирургического вмешательства по поводу РОС, а также совершенствования подходов к профилактике данной тяжелой офтальмопатологии.

Цель работы. Выявить клинико-иммунологические критерии прогнозирования и ранней диагностики прогрессирования пролиферативной витреоретинопатии после успешного хирургического лечения регматогенной отслойки сетчатки, обосновать подходы к профилактике.

Задачи.

1. На основании комплексного клинического исследования, включающего ОКТ и ФАГ, изучить особенности течения послеоперационного периода при различной исходной клинической картине у больных, успешно прооперированных по поводу РОС, выявить ранние признаки и критерии прогноза прогрессирования ПВР.

2. С помощью ЦДК и ИД изучить в динамике особенности регионарного кровотока при различном течении послеоперационного периода у больных, успешно прооперированных по поводу РОС, выявить критерии прогноза прогрессирования ПВР.

3. Изучить особенности продукции ростовых факторов (РОвЕ-АА, РВОБ-АВ, РБОР-ВВ, УЕОБ, РЕББ) и хемокина (1Ь-8), участвующих в регуляции процессов пролиферации при различном характере течения дои послеоперационного периода у больных, успешно прооперированных по поводу РОСопределить их патогенетическую роль и прогностическую значимость в прогрессировании ПВР.

4. На основании полученных клинико-иммунологических данных обосновать подходы к профилактике прогрессирования ПВР после успешного хирургического лечения РОС.

Научная новизна исследования.

1. Впервые на основании комплексного клинического, томографического, ангиографического, допплерографического и иммунологического исследований изучены особенности течения послеоперационного периода при различной исходной клинической картине у больных, успешно прооперированных по поводу РОС, определены ранние признаки и критерии прогноза прогрессирования ПВР.

2. В результате детального анализа клинической картины у пациентов с РОС выявлено, что исходная ПВР С1-С2 является фактором риска прогрессирования послеоперационной ПВР, клапанный разрыв сетчатки ассоциируется с развитием локальной ПВР, множественные клапанные разрывы — диффузной ПВР.

3. Показана информативность ОКТ сетчатки для оценки структурных изменений нейроэпителия в макуле до и после хирургического лечения РОС, раннего выявления и мониторинга прогрессирования ПВР. Определены особенности нарушений структуры нейросенсорной сетчатки, витреоретинального и ретинохориоидального интерфейсов при различном течении послеоперационного периода. Впервые выявлена прямая зависимость длительности существования субретинального скопления остаточной жидкости от его высоты.

4. Впервые с помощью ФАГ выявлено, что развитие ПВР ассоциируется с активным экстравазальным выходом красителя из собственных сосудов в области ДЗН на ранних сроках послеоперационного периода. При прогрессировании диффузной ПВР нарушение гематоретинального барьера имеет стойкий характер.

5. Впервые с помощью ЦДК и ИД сосудов глаза и орбиты выделены нарушения регионарного кровотока при РОС, предрасполагающие к послеоперационному прогрессированию ПВР. Выявлен стойкий характер гемодинамических нарушений в ГА, ЦАС и ЗКЦА в динамике послеоперационного периода при прогрессировании ПВР.

6. Установлено, что патогенетически значимый дисбаланс ростовых факторов и хемокина 1Ь-8 при РОС проявляется преимущественно на локальном уровне (субретинальная (СРЖ) и слезная жидкости (СЖ)). Впервые показано, что прогрессирование послеоперационной ПВР ассоциируется с 9 гиперпродукцией ангиогенных ростовых факторов РОвИ-АА, РБОР-ВВ, УЕвР и хемокииа 1Ь-8 при недостаточной выработке защитного фактора РЕОБ.

7. На основании комплекса полученных данных определены патогенетически ориентированные подходы к профилактике прогрессирования ПВР после успешно проведенной операции по поводу первичной РОС.

Практическая значимость.

1. Выявлено, что прогрессирование послеоперационной ПВР чаще встречается у пациентов с исходными стадиями ПВР С1-С2, развитие эпиретинальной мембраны — при наличии клапанного разрыва, прогрессирование диффузной ПВР — множественных клапанных разрывов.

2. Обоснована целесообразность проведения ОКТ сетчатки у пациентов с РОС до и после операции с целью ранней диагностики и мониторинга возможных изменений макулярной области, в том числе послеоперационного прогрессирования ПВР. Оценка высоты резидуальной отслойки нейроэпителия через 7 дней после операции информативна для прогнозирования сроков ее резорбции.

3. Доказана значимость ФАГ у пациентов с РОС после хирургического лечения для прогнозирования прогрессирования ПВР. Активный экстравазальный выход красителя из собственных сосудов в области диска зрительного нерва (ДЗН) через 7 дней после операции ассоциируется с развитием локальной или диффузной ПВР, стойкий характер этих нарушений сопровождает прогрессирование диффузной ПВР.

4. Обоснована целесообразность оценки кровотока в сосудах глаза и орбиты с помощью ЦДК и ИД у пациентов с РОС с целью прогнозирования прогрессирования ПВР в послеоперационном периоде. Снижение гемодинамических показателей в ЦАС и ЗКЦА до хирургического лечения является фактором риска развития диффузной ПВР. Стойкий характер нарушений кровотока в ГА, ЦАС и ЗКЦА в динамике послеоперационного периода ассоциируется с прогрессированием ПВР.

5. Показана информативность исследования локальной продукции факторов роста PDGF-AA, PDGF-BB, VEGF, PEDF и хемокина IL-8 у пациентов с РОС с целью прогнозирования ПВР после операции. Фактором риска диффузной ПВР является повышение в СЖ до операции и в СРЖ концентрации проангиогенных цитокинов PDGF-AA, PDGF-BB, VEGF и IL-8 на фоне низкого уровня антиангиогенного фактора PEDF, а также резкое повышение VEGF в СЖ через 3 месяца наблюдения.

6. Обоснована целесообразность дальнейших научных исследований, направленных на поиск способов медикаментозной коррекции гемодинамических и иммунных нарушений у пациентов с РОС с целью профилактики послеоперационного прогрессирования ПВР.

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Исходная ПВР С1-С2 является фактором риска послеоперационного прогрессирования ПВР, клапанный разрыв сетчатки ассоциируется с развитием локальной ПВР, множественные клапанные разрывыдиффузной ПВР.

2. ОКТ информативна для ранней диагностики, прогнозирования и мониторинга возможных изменений макулярной области после хирургического лечения РОС, в том числе послеоперационного прогрессирования ПВР.

3. ФАГ в раннем послеоперационном периоде информативна для прогнозирования прогрессирования ПВР. Экстравазальный выход красителя из собственных сосудов в области ДЗН ассоциируется с развитием ПВР.

4. Исследование гемодинамики в ЦАС и ЗКЦА до операции с помощью ЦДК и ИД рекомендуется использовать для прогнозирования послеоперационной ПВР. Снижение показателей скорости регионарного кровотока у пациентов с РОС является фактором риска развития диффузной ПВР.

5. Иммунологическими факторами риска диффузной ПВР является исходная гиперсекреция в СЖ и СРЖ РОвЕ-АА, РОвЕ-ВВ, УЕвР, 1Ь-8 на фоне низкого уровня РЕББ, резкое повышение УЕОР в СЖ через 3 месяца после операции.

Апробация работы.

Основные положения диссертации доложены на Всероссийской научнопрактической конференции с международным участием «IV Российский общенациональный офтальмологический форум» (Москва, 2011), Всероссийской научно — практической конференции с международным участием «V Российский общенациональный офтальмологический форум» (Москва, 2012).

Публикации.

По материалам диссертации опубликовано 15 печатных работ, из них 6 — в центральных рецензируемых журналах из списка ВАК.

Внедрение.

Результаты исследований внедрены в клиническую практику отдела патологии сетчатки и зрительного нерва МНИИ глазных болезней им. Гельмгольца. Материалы диссертации включены в программы лекций на курсах повышения квалификации специалистов, сертификационных циклов последипломного образования для врачей офтальмологов, проводимых на базе Института.

Объем и структура диссертации.

Диссертация состоит из введения, обзора литературы, пяти глав собственных исследований, включающих описание материалов, методов и результатов, заключения, выводов, практических рекомендаций, списка литературы. Работа изложена на 191 странице машинописного текста, содержит 47 таблиц, 40 рисунков. Указатель литературы включает 324 источника, из них 20 отечественных и 304 зарубежных.

выводы.

1. На основании результатов комплексного клинического исследования показано, что исходная ПВР С1-С2 является фактором риска прогрессирования ПВР после успешного хирургического лечения РОС, клапанный разрыв сетчатки ассоциируется с развитием локальной ПВР, множественные клапанные разрывы — диффузной ПВР.

2. Показана высокая информативность ОКТ для ранней диагностики и мониторинга изменений сетчатки макулярной области после хирургии РОС, в том числе послеоперационного прогрессирования ПВР. Определены особенности нарушений структуры нейросенсорной сетчатки, витреоретинального и ретинохориоидального интерфейсов при различном характере течения послеоперационного периода. Выявлена прямая зависимость длительности существования субретинальной остаточной жидкости от ее высоты.

3. С помощью ФАГ установлены особенности нарушения гематоретинального барьера при прогрессировании ПВР после оперативного лечения РОС. Активный экстравазальный выход красителя из собственных сосудов в области ДЗН на ранних сроках послеоперационного периода ассоциируется с развитием локальной или диффузной ПВР, стойкий характер этих нарушений сопровождает прогрессирование диффузной ПВР.

4. На основании данных ультразвуковых допплерографических методов (ЦДК и ИД) выделен комплекс показателей, позволяющий прогнозировать послеоперационное прогрессирование диффузной ПВР: УсИаБ! в ЦАС менее 2,5 см/с и в ЗКЦА менее 4,5 см/с, Ушеап в ЦАС менее 4,5 см/с. Стойкий характер нарушений кровотока в ГА, ЦАС и ЗКЦА в динамике наблюдения ассоциируется с прогрессированием ПВР.

5. Доказана роль локального (СРЖ и СЖ) дисбаланса ростовых факторов и хемокина 1Ь-8 в патогенезе послеоперационной ПВР при РОС. Неблагоприятное значение имеет исходная гиперпродукция ангиогенных ростовых факторов РООР-АА, РБОР-ВВ, УЕОР и хемокина 1Ь-8 на фоне недостаточной продукции РЕБР. Фактором риска диффузной ПВР является гиперсекреция в СЖ до операции РБОР-АА>4000 пкг/мл, РБОР-ВВ>2500 пкг/мл, УЕСР>700 пкг/мл, 1Ь-8>400 пкг/млв СРЖ РБСР-АА>400 пкг/мл, РБСР-ВВ>3000 пкг/мл, УЕОР>300 пкг/мл, 1Ь-8>800 пкг/млв СЖ через 3 месяца наблюдения УЕОР>16(Ю пкг/мл.

6. На основании комплекса полученных данных определены патогенетически ориентированные подходы к профилактике прогрессирования ПВР после успешного хирургического лечения первичной РОС.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ.

1. С целью прогнозирования и ранней диагностики прогрессирования ПВР после успешного хирургического лечения РОС рекомендовано в комплекс обследования пациентов, помимо традиционных методов, включать ОКТ, ФАГ, ЦДК с ИД, иммунологические тесты (исследование СРЖ и СЖ). Оценка результатов этих исследований позволяет достаточно точно прогнозировать прогрессировать ПВР у пациентов с первичной РОС.

2. ОКТ рекомендуется проводить для ранней диагностики и мониторинга изменений сетчатки макулярной области после хирургии РОС, раннего выявления послеоперационного прогрессирования ПВР. Обнаружение эпиретинальной мембраны у пациентов через 7 дней после хирургического лечения является проявлением локальной ПВР, а также фактором риска развития диффузной ПВР (19%). При наличии резидуальной отслойки нейроэпителия оценка ее высоты через 7 дней после операции целесообразна для прогнозирования сроков резорбции: при высоте <100 мкм длительность резорбции составляет от нескольких дней до 6 месяцев, >100 мкм — от 6 до 12 месяцев.

3. ФАГ сосудов глазного дна рекомендовано проводить через 7 дней после операции с целью прогнозирования прогрессирования ПВР. Экстравазальный выход красителя из собственных сосудов в области ДЗН ассоциируется с локальной или диффузной ПВР. Стойкий характер этих нарушений сопровождает прогрессирование диффузной ПВР.

4. Исследование гемодинамики в ЦАС и ЗКЦА до операции с помощью ЦДК и ИД рекомендуется использовать для прогнозирования послеоперационной ПВР. Фактором риска развития диффузной ПВР является сочетание параметров: УсИав! в ЦАС менее 2,5 см/с и в ЗКЦА менее 4,5 см/с, Утеап в ЦАС менее 4,5 см/с. Стойкий характер нарушений кровотока в ГА, ЦАС и ЗКЦА в динамике послеоперационного наблюдения ассоциируется с прогрессированием ПВР.

С целью прогнозирования прогрессирования ПВР рекомендуется определение содержания в СЖ до хирургического лечения и/или СРЖ ангиогенных иммуномодуляторов РЭОР-АА, РОвР-ВВ, УЕвР, 1Ь-8. Критериями неблагоприятного прогноза могут служить уровни РООР-АА>4000 пкг/мл, РООР-ВВ>25(Ю пкг/мл, УЕСР>700 пкг/мл, 1Ь-8>400 пкг/мл в СЖ до операции, а также повышение уровня УЕСР>1600 пкг/мл в СЖ через 3 месяца наблюдения. При концентрациях РВОР-АА>400 пкг/мл, РВОР-ВВ>3000 пкг/мл, УЕСР>300 пкг/мл, 1Ь-8>800 пкг/мл в СРЖ риск развития диффузной ПВР значительно возрастает.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Н.Р. Комбинированные интравитреальные хирургические вмешательства при отслойке сетчатки, осложненной витреоретинальной тракцией: Дис. .канд. мед. наук. -М., 1993.
  2. В.Ю., Мовшович А. И., Саксонова Е. О., Ильницкий В. В. Динамика показателей местного кровообращения при хирургическом лечении отслойки сетчатки // Вестн. офтальмол. 1992. — № 4. — С. 19−21.
  3. В.Д., Игнатьев С. Г., Андронов А. П. Комплексное лечение отслойки сетчатки методом витрэктомии, пневморетинопексии и экстрасклерального балонирования // Офтальмохирургия. -1997.-№ 3.-С. 10−16.
  4. В.В. Временное и постоянное эписклеральное пломбирование в хирургии отслойки сетчатки, ее профилактика: Дис. .д-ра мед. наук. М., 1995.
  5. Т.А., Ярмак O.A. Применение оптической когерентной томографии для оценки результатов хирургического лечения регматогенной отслойки сетчатки // Офтальмохирургия. 2007. — № 4. — С. 47−52.
  6. Т.Н. Цветовое допплеровское картирование в офтальмологии // Вестн. офтальмол. 2001. — № 6. — С. 51−53.
  7. Т.Н., Лагутина Ю. М., Кравчук Е. А. Влияние Фезама на гемодинамику глаз больных возрастной макулярной дегенерацией // Вестн. офтальмол. 2005. — Т. 121. — № 4. — С. 26−28.
  8. О.Б., Запускалов И. В., Кривошеина О. И., Дашко И. А. Хирургия отслойки сетчатки: современное состояние проблемы // Вестн. офтальмол. -2010,-№ 6.-С. 46−49.
  9. С.Э., Лелюк В. Г. Ультразвуковая ангиология. М.: Реальное время, 2003.-С. 146−253.
  10. А.И., Евграфов В. Ю., Куперберг Б. Е., и др. Состояние кровотока в глазничной артерии у больных с отслойкой сетчатки // Вестн. офтальмол. 1993. — № 3. — С. 21−22.
  11. В.В., Захарова Г. Ю., Разик С. Склеропластические операции при отслойке сетчатки без разрывов // Современные возможности в диагностике и лечении витреоретинальной патологии: тез. докл. М., 2004. — С. 219−220.
  12. Ю.А., Чупров А. Д., Тарловский А. К. Анализ результатов допплерографии центральной артерии сетчатки в норме и при различной глазной патологии // Вестн. офтальмол. 1999. — № 5. — С. 17−19.
  13. Н.В., Родин С. С., Левицкая Г. В. Морфологические особенности макулярной области после хирургии регматогенной отслойки сетчатки // Офтальмологический журнал. 2008. — № 3. — С. 30−32.
  14. С. Профилактика прогрессирования пролиферативной витреоретинопатии после операций по поводу регматогенной отслойки сетчатки: Дис.. .канд. мед. наук. М., 2005.
  15. B.C., Солянникова О. В., Экгардт В. Ф., Катькова Е. А. Изменения кровотока в сосудах глаза и орбиты у больных с отслойкой сетчатки при ее оперативном лечении // Вестн. офтальмол. 2001. — № 5 — С. 25−27.
  16. C.B., Столяренко Г. Е. Роль задней гиалоидной мембраны в патогенезе и трансцилиарной хирургии пролиферативной диабетической ретинопатии // Вестн. офтальмол. 1999. — № 1. — С. 11−15.
  17. О.С., Захарова Г. Ю., Разик С. Прогнозирование рецидивов отслойки сетчатки после операции по поводу регматогенной отслойки сетчатки // Офтальмология. 2006. — Т. 3, № 1. — С. 16−19.
  18. О.В. Регматогенная отслойка сетчатки: клинико-инструментальные исследования и прогнозирование результатов лечения: Дис.. канд. мед. наук. Челябинск, 2001.
  19. Х.П., Гаврилова H.A., Ланевская Н. И. и др. Влияние фактора пигментного эпителия (PEDF) и Авастина на органотипические культуры сетчатки // Федоровские чтения 2009: тез. докл. — М., 2009. — С. 548−549.
  20. A.A. Иммунология. М., — 2010. — С. 117.
  21. Abdiu О., Olivestedt G., Berglin L., van Setten G. Detection of PEDF insubretinal fluid of retinal detachment: possible role in the prevention of subretinal159neovascularization, preliminary results // Ophthalmic Res. 2006. — Vol. 38, № 12.-P. 189−192.
  22. Abdiu O, Van Setten G. Antiangiogenic activity in tears: presence of pigment-epithelium-derived factor. New insights and preliminary results // Ophthalmic Res. -2008.-Vol. 40, № 1.- P. 16−18.
  23. Abouzeid H., Wolfensberger T.J. Macular recovery after retinal detachment // Acta. Ophthalmol. Scand. 2006. — Vol. 84, № 5. — P. 597−605.
  24. Abouzeid H., Becker K., Holz F.G., Wolfensberger T.J. Submacular fluid after encircling buckle surgery for inferior macula-off retinal detachment in young patients // Acta Ophthalmol. 2009. — Vol. 87, № 1. — P. 96−99.
  25. Aiello L.P., Northrup J.M., Keyt B.A. et al. Hypoxic regulation of vascular endothelial growth factor in retinal cells // Arch. Ophthalmol. 1995. — Vol. 113, № 12.-P. 1538−1544.
  26. Akiyama H., Kachi S., Silva R.L. et al. Intraocular injection of an aptamer that binds PDGF-B: a potential treatment for proliferative retinopathies // J. Cell Physiol. 2006. — Vol. 207, № 2. — P. 407−412.
  27. Aksiinger A., Or M., Okur H. et al. Role of interleukin 8 in the pathogenesis of proliferative vitreoretinopathy // Ophthalmologica. 1997. — Vol. 211, № 4. — P. 223−225.
  28. Algvere P.V., Jahnberg P., Textorius O. The Swedish Retinal Detachment Register, I: a database for epidemiological and clinical studies // Graefes. Arch. Clin. Exp. Ophthalmol. 1999. — Vol. 237. — P. 37−44.
  29. Anderson D.H., Stern W.H., Fisher S.K. et al. The onset of pigment epithelial proliferation after retinal detachment // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 1981. -Vol.21 (1 Pt 1).-P. 10−16.
  30. Anderson D.H., Stern W.H., Fisher S.K. et al. Retinal detachment in the cat: the pigment epithelial-photoreceptor interface // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. -1983. Vol. 24, № 7. — p. 906−926.
  31. Ando A., Ueda M., Uyama M. et al. Enhancement of dedifferentiation and myoid differentiation of retinal pigment epithelial cells by platelet derived growth factor // Br. J. Ophthalmol. 2000. — Vol. 84, № 11. — P. 1306−1311.
  32. Andrae J., Gallini R., Betsholtz C. Role of platelet-derived growth factors in physiology and medicine // Genes Dev. 2008. — Vol. 22, № 10. — P. 1276−1312.
  33. Andrews A., Balciunaite E., Leong F.L. et al. Platelet-derived growth factor plays a key role in proliferative vitreoretinopathy // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. -1999. Vol. 40, № 11. — P. 2683−2689.
  34. Apte R.S., Barreiro R.A., Duh E. et al. Stimulation of neovascularization by the anti-angiogenic factor PEDF // Invest. Ophthalmol. Vis Sci. 2004. — Vol. 45, № 12.-P. 4491−4497.
  35. Arroyo J.G., Yang L., Bula D., Chen D.F. Photoreceptor apoptosis in human retinal detachment // Am. J. Ophthalmol. 2005. — Vol. 139, № 4. — P. 605−610.
  36. Baba T., Hirose A., Moriyama M. et al. Tomographic image and visual recovery of acute macula-off rhegmatogenous retinal detachment // Graefes Arch. Clin. Exp. Ophthalmol. 2004. — Vol. 242, № 7. — P. 576−581.
  37. Bakunowicz-Lazarczyk A., Moniuszko T., Stankiewicz A., Mrugacz M.
  38. Concentration of selected cytokines in subretinal fluid in patients with retinal161detachment (IL-8, TNF-alpha, IFN-gamma) // Klin. Oczna. 1997. — Vol. 99, № 2.-P. 87−89.
  39. Balkwill F.R., Burke F. The cytokine network // Immunol. Today. 1989. -Vol. 10, № 9. -p. 299−304.
  40. Battegay E.J., Rupp J., Iruela-Arispe L. et al. PDGF-BB modulates endothelial proliferation and angiogenesis in vitro via PDGF beta-receptors // J. Cell Biol. -1994. Vol. 125, № 4. — P. 917−928.
  41. Baudouin C., Ettaiche M., Imbert F., et al. Inhibition of preretinal proliferation by free radical scavengers in an experimental model of tractional retinal detachment // Exp. Eye Res. 1994. — Vol. 59, № 6. — P. 697−706.
  42. Benson S.E., Grigoropoulos V., Schlottmann P.G., et al. Analysis of the macula with optical coherence tomography after successful surgery for proliferative vitreoretinopathy // Arch. Ophthalmol. 2005. — Vol. 123, № 12. — P. 1651−1656.
  43. Benson S.E., Schlottmann P.G., Bunce C. et al. Optical coherence tomography analysis of the macula after scleral buckle surgery for retinal detachment // Ophthalmology. 2007. — Vol. 114,№ i.p. 108−112.
  44. Benson S.E., Ratcliffe S., van Raders P. et al. A randomized comparison of Parecoxib/Valdecoxib and placebo for the prevention of cystoid macular edema after scleral buckling surgery // Retina. 2009. — Vol. 29, № 3. — P. 387−394.
  45. Berglin L., Algvere P.V., Seregard S. Photoreceptor decay over time and apoptosis in experimental retinal detachment // Graefes Arch. Clin. Exp. Ophthalmol. 1997.-Vol. 235, № 5.-P. 306−312.
  46. Bhandari B., Grandaliano G., Abboud H.E. Platelet-derived growth factor (PDGF) BB homodimer regulates PDGF A- and PDGF B-chain gene transcription in human mesangial cells // Biochem. J. 1994. — Vol. 297 (Pt 2). — P. 385−388.
  47. Bhisitkul R.B. Vascular endothelial growth factor biology: clinical implications for ocular treatments // Br. J. Ophthalmol. 2006. — Vol. 90, № 12. — P. 15 421 547.
  48. Bonnet M. Papillary hyperfluorescence caused by traction of the vitreous body //J. Fr. Ophtalmol.- 1991.-Vol. 14, № 10.-P. 529−536.
  49. Bonnet M., Payan X. Long-term prognosis of cystoid macular edema after microsurgery of rhegmatogenous retinal detachment // J. Fr. Ophtalmol. 1993. -Vol. 16, № 4.-P. 259−263.
  50. Bonnet M. Macular changes and fluorescein angiographic findings after repair of proliferative vitreoretinopathy // Retina. 1994. — Vol. 14, № 5. — P. 404−410.
  51. Bonnet M., Guenoun S. Surgical risk factors for severe postoperative proliferative vitreoretinopathy (PVR) in retinal detachment with grade B PVR // Graefes Arch. Clin. Exp. Ophthalmol. 1995. — Vol. 233, № 12. — P. 789−791.
  52. Bonnet M., Guenoun S., Yaniali A. et al. Le frequence de la PVR postoperatoire dans la decollement rhegmatogene de la retine a-t-elle diminue // J. Fr. ophthalmol. — 1996. — Vol. 19. — P. 696−704.
  53. Bouck N. PEDF: anti-angiogenic guardian of ocular function // Trends. Mol. Med. 2002. — Vol. 8, № 7. — P. 330−334.
  54. Boycott B.B., Kolb H. The connections between bipolar cells and photoreceptors in the retina of the domestic cat // J. Comp. Neurol. 1973. — Vol. 148, № l.-P. 91−114.
  55. Cai J., Wei R., Ma X. et al. Cytotoxic effects of antiproliferative agents on human retinal glial cells in vitro // Int. Ophthalmol. 2001. — Vol. 24, № 4. — P. 225−231.
  56. Campochiaro P.A., Bryan J.A., Conway B.P., Jaccoma E.H. Intravitreal chemotactic and mitogenic activity. Implication of blood-retinal barrier breakdown // Arch. Ophthalmol. 1986. — Vol. 104, № 11. — P. 1685−1687.
  57. Campochiaro P.A., Hackett S.F., Vinores S.A. et al. Platelet-derived growth factor is an autocrine growth stimulator in retinal pigmented epithelial cells // J. Cell Sei. 1994. — Vol. 107 (Pt 9). — P. 2459−2469.
  58. Cao W., Tombran-Tink J., Chen W. et al. Pigment epithelium-derived factor protects cultured retinal neurons against hydrogen peroxide-induced cell death // J. Neurosci. Res. 1999. — Vol. 57, № 6. — P. 789−800.
  59. Cao W., Tombran-Tink J., Elias R. et al. In vivo protection of photoreceptors from light damage by pigment epithelium-derived factor // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci.-2001.-Vol. 42, № 7.-P. 1646−1652.
  60. Capeans C., Pineiro A., Pardo M. et al. Role of inhibitors of isoprenylation in proliferation, phenotype and apoptosis of human retinal pigment epithelium // Graefes Arch. Clin. Exp. Ophthalmol. 2001. — Vol. 239, № 3. p. 188−198.
  61. Cardillo Piccolino F. Vascular changes in rhegmatogenous retinal detachment // Ophthalmologica. 1983. — Vol. 186, № 1. — P. 17−24.
  62. Cassidy L., Barry P., Shaw C. et al. Platelet derived growth factor and fibroblast growth factor basic levels in the vitreous of patients with vitreoretinal disorders // Br. J. Ophthalmol. 1998. — Vol. 82, № 2. — P. 181−185.
  63. Cavallini G.M., Masini C., Volante V. et al. Visual recovery after scleral buckling for macula-off retinal detachments: an optical coherence tomography study // Eur. J. Ophthalmol. 2007. — Vol. 17, № 5. — P. 790−796.
  64. Chang C.J., Lai W.W., Edward D.P., Tso M.O. Apoptotic photoreceptor cell death after traumatic retinal detachment in humans // Arch. Ophthalmol. 1995. -Vol. 113, № 7.-P. 880−886.
  65. Charles S. Proliferative vitreoretinopathy // Bull. Soc. Beige Ophthalmol. -1990.-Vol. 235.-P. 83−84.
  66. Charteris D.G., Hiscott P., Grierson I., Lightman S.L. Proliferative vitreoretinopathy. Lymphocytes in epiretinal membranes // Ophthalmology. -1992. Vol. 99, № 9. — P. 1364−1367.
  67. Charteris D.G., Hiscott P., Robey H.L. et al. Inflammatory cells in proliferative vitreoretinopathy subretinal membranes // Ophthalmology. 1993. — Vol. 100, № l.-P. 43−46.
  68. Cheema R.A., Peyman G.A., Fang T. et al. Triamcinolone acetonide as an adjuvant in the surgical treatment of retinal detachment with proliferative vitreoretinopathy // Ophthalmic. Surg. Lasers Imaging. 2007. — Vol. 38, № 5. -P. 365−370.
  69. Chen Y.S., Hackett S.F., Schoenfeld C.L. et al. Localisation of vascular endothelial growth factor and its receptors to cells of vascular and avascular epiretinal membranes // Br. J. Ophthalmol. 1997. — Vol. 81, № 10. — P. 919−926.
  70. Cho M., Witmer M.T., Favarone G. et al. Optical coherence tomography predicts visual outcome in macula-involving rhegmatogenous retinal detachment // Clin. Ophthalmol. 2012. — Vol. 6. — P. 91−96.
  71. Christensen U., Villumsen J. Prognosis of pseudophakic retinal detachment // J. Cataract. Refract. Surg. 2005. — Vol. 31, № 2. — P. 354−358.
  72. Citirik M., Kabatas E.U., Batman C. et al. Vitreous vascular endothelial growth factor concentrations in proliferative diabetic retinopathy versus proliferative vitreoretinopathy // Ophthalmic. Res. 2012. — Vol. 47, № 1. — P. 7−12.
  73. Coblentz F.E., Radeke M.J., Lewis G.P., Fisher S.K. Evidence that ganglion cells react to retinal detachment // Exp. Eye Res. 2003. — Vol. 76, № 3. — P. 333 342.
  74. Cook B., Lewis G.P., Fisher S.K., Adler R. Apoptotic photoreceptor degeneration in experimental retinal detachment // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. -1995. Vol. 36, № 6. — P. 990−996.
  75. Cubitt C.L., Tang Q., Monteiro C.A. et al. IL-8 gene expression in cultures of human corneal epithelial cells and keratocytes // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. -1993.-Vol. 34, № 11.-P. 3199−3206.
  76. Cui J.Z., Chiu A., Maberley D. et al. Stage specificity of novel growth factor expression during development of proliferative vitreoretinopathy // Eye (Lond). -2007. Vol. 21, № 2. — P. 200−208.
  77. Cui J., Lei H., Samad A. et al. PDGF receptors are activated in human epiretinal membranes // Exp. Eye Res. 2009. — Vol. 88, № 3. — P. 438−444.
  78. Daniel T.O., Gibbs V.C., Milfay D.F. et al. Thrombin stimulates c-sis gene expression in microvascular endothelial cells // J. Biol. Chem. 1986. — Vol. 261, № 21.-P. 9579−9582.
  79. Dawson D.W., Volpert O.V., Gillis P. et al. Pigment epithelium-derived factor: a potent inhibitor of angiogenesis // Science. 1999. — Vol. 285, № 5425. — P. 245 248.
  80. Delolme M.P., Dugas B., Nicot F. et al. Anatomical and functional macular changes after rhegmatogenous retinal detachment with macula off // Am. J. Ophthalmol.-2012.-Vol. 153, № l.p. 128−136.
  81. Desatnik H., Alhalel A., Treister G., Moisseiev J. Management of persistent loculated subretinal fluid after pneumatic retinopexy // Br. J. Ophthalmol. 2001. -Vol. 85, № 2.-P. 189−192.
  82. Dieudonne S.C., La Heij E.C., Diederen R.M. et al. Balance of vascular endothelial growth factor and pigment epithelial growth factor prior to development of proliferative vitreoretinopathy // Ophthalmic. Res. 2007. — Vol. 39, № 3.-P. 148−154.
  83. Dimitrova G., Kato S. Color Doppler imaging of retinal diseases // Surv. Ophthalmol. 2010. — Vol. 55, № 3. — P. 193−214.
  84. Duh E.J., Yang H.S., Suzuma I., et al. Pigment epithelium-derived factor suppresses ischemia-induced retinal neovascularization and VEGF-induced migration and growth // Invest. Ophthalmol. Vis. Sei. 2002. — Vol. 43, № 3. — P. 821−829.
  85. El-Ghrably I.A., Dua H.S., Orr G.M. et al. Detection of cytokine mRNA production in infiltrating cells in proliferative vitreoretinopathy using reverse transcription polymerase chain reaction // Br. J. Ophthalmol. 1999. — Vol. 83, № 11.-P. 1296−1299.
  86. El-Ghrably I.A., Dua H.S., Orr G.M. et al. Intravitreal invading cells contribute to vitreal cytokine milieu in proliferative vitreoretinopathy // Br. J. Ophthalmol. -2001.-Vol. 85, № 4.-P. 461−470.
  87. Ellison J.A., de Vellis J. Platelet-derived growth factor receptor is expressed by cells in the early oligodendrocyte lineage // J. Neurosci. Res. 1994. — Vol. 37, № l.-P. 116−128.
  88. Einer S.G., Einer V.M., Jaffe G.J. et al. Cytokines in proliferative diabetic retinopathy and proliferative vitreoretinopathy // Curr. Eye Res. 1995. — Vol. 14, № 11.-P. 1045−1053.
  89. Einer V.M., Burnstine M.A., Strieter R.M. et al. Cell-associated human retinal pigment epithelium and monocyte chemotactic protein-1: immunochemical and in-situ hybridization analyses // Exp. Eye Res. 1997. — Vol. 65, № 6. — P. 781−789.
  90. Enge M., Bjarnegard M., Gerhardt H. et al. Endothelium-specific platelet-derived growth factor-B ablation mimics diabetic retinopathy // EMBO J. 2002. — Vol. 21, № 16. — P. 4307−4316.
  91. Erickson P.A., Fisher S.K., Anderson D.H. et al. Retinal detachment in the cat: the outer nuclear and outer plexiform layers // Invest. Ophthalmol. Vis. Sei. -1983. Vol. 24, № 7. — P. 927−942.
  92. Finnemann S.C. Focal adhesion kinase signaling promotes phagocytosis of integrin-bound photoreceptors // EMBO J. 2003. — Vol. 22, № 16. — P. 41 434 154.
  93. Fisher S.K., Lewis G.P. Muller cell and neuronal remodeling in retinal detachment and reattachment and their potential consequences for visual recovery: a review and reconsideration of recent data // Vision Res. 2003. — Vol. 43, № 8. -P. 887−897.
  94. Fisher S.K., Lewis G.P., Linberg K.A., Verardo M.R. Cellular remodeling in mammalian retina: results from studies of experimental retinal detachment // Prog. Retin. Eye Res. 2005. — Vol. 24, № 3. — P. 395−431.
  95. Fleury J., Bonnet M. Retinal detachment and massive vitreoretinal proliferation: clinical study of 60 cases // Bull Soc. Ophtalmol. Fr. 1990. — Vol. 90, № 4.-P. 433−435.
  96. Forsberg-Nilsson K., Behar T.N., Afrakhte M. et al. Platelet-derived growth factor induces chemotaxis of neuroepithelial stem cells // J. Neurosci. Res. 1998. -Vol. 53, № 5.-P. 521−530.
  97. Foster R.E., Meyers S.M. Recurrent retinal detachment more than 1 year after reattachment // Ophthalmology. 2002. — Vol. 109, № 10. — P. 1821−1827.
  98. Francke M., Faude F., Pannicke T., et al. Glial cell-mediated spread of retinal degeneration during detachment: a hypothesis based upon studies in rabbits // Vision Res. 2005. — Vol. 45, № 17. — P. 2256−2267.
  99. Frank R.N., Amin R.H., Eliott D., et al. Basic fibroblast growth factor and vascular endothelial growth factor are present in epiretinal and choroidal neovascular membranes // Am. J. Ophthalmol. 1996. Sep. — Vol. 122, № 3. — P. 393−403.
  100. Fredriksson L., Li H., Eriksson U. The PDGF family: four gene products form five dimeric isoforms // Cytokine Growth Factor Rev. 2004. — Vol. 15, № 4. — P. 197−204.
  101. Freton A., Finger P.T. Spectral domain-optical coherence tomography analysis of choroidal osteoma // Br. J. Ophthalmol. 2012. — Vol. 96, № 2. — P. 224−228.
  102. Gharbiya M., Grandinetti F., Scavella V. et al. Correlation between spectral-domain optical coherence tomography findings and visual outcome after primary rhegmatogenous retinal detachment repair // Retina. 2012. — Vol. 32, № 1. — P. 43−53.
  103. Gibran S.K., Alwitry A., Cleary P.E. Foveal detachment after successful retinal reattachment for macula on rhegmatogeneous retinal detachment: an ocular coherence tomography evaluation // Eye (Lond). 2006. — Vol. 20, № 11. — P. 1284−1287.
  104. Girard P., Mimoun G., Karpouzas I., Montrfiore G. Clinical risk factors for proliferative vitreoretinipathy after retinal detachment surgery // Retina. 1994. -Vol. 14, № 5. -P. 417−424.
  105. Gnessi L., Basciani S., Mariani S. et al. Leydig cell loss and spermatogenic arrest in platelet-derived growth factor (PDGF)-A-deficient mice // J. Cell Biol. -2000. Vol. 149, № 5. — P. 1019−1026.
  106. Goezinne F., La Heij E.C., Berendschot T.T. et al. Incidence of redetachment 6 months after scleral buckling surgery // Acta Ophthalmol. 2010. — Vol. 88, № 2. -P. 199−206.
  107. Gogat K., Le Gat L., Van Den Berghe L. et al. VEGF and KDR gene expression during human embryonic and fetal eye development // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2004. — Vol. 45, № 1. — P. 7−14.
  108. Grizzard W.S., Hilton G.F., Hammer M.E., Taren D. A multivariate analysis of the anatomic success of retinal detachment treated with sclera buckling // Graefes. Arch. Clin. Exp. Ophthalmol. 1994. — Vol. 232. — P. 1−7.
  109. Grizzard W.S., Hilton G.F., Hammer M.E. et al. Pneumatic retinopexy failures. Cause, prevention, timing, and management // Ophthalmology. 1995. — Vol. 102, № 6. — P. 929−936.
  110. Grotendorst G.R. Alteration of the chemotactic response of NIH/3T3 cells to PDGF by growth factors, transformation, and tumor promoters // Cell. 1984. -Vol. 36, № 2.-P. 279−285.
  111. Hagimura N., Suto K., Iida T., Kishi S. Optical coherence tomography of the neurosensory retina in rhegmatogenous retinal detachment // Am. J. Ophthalmol. -2000. Vol. 129, № 2. — P. 186−190.
  112. Hagimura N., Iida T., Suto K., Kishi S. Persistent foveal retinal detachment after successful rhegmatogenous retinal detachment surgery // Am. J. Ophthalmol. -2002.-Vol. 133, № 4.-P. 516−520.
  113. Haimann M.H., Burton T.C., Brown C.K. Epidemiology of retinal detachment // Arch. Ophthalmol. 1982. — Vol. 100, № 2. — P. 289−292.
  114. Hall M.O., Prieto A.L., Obin M.S. et al. Outer segment phagocytosis by cultured retinal pigment epithelial cells requires Gas6 // Exp. Eye Res. 2001. -Vol. 73, № 4. — P. 509−520.
  115. Hall M.O., Obin M.S., Heeb M.J. et al. Both protein S and Gas6 stimulate outer segment phagocytosis by cultured rat retinal pigment epithelial cells // Exp. Eye Res. 2005. — Vol. 81, № 5. — P. 581−591.
  116. Hanioglu-Kargi S., Yazar Z., Ziraman I. et al. Effects of scleral buckling on the retrobulbar haemodynamic changes // Eye. 2000. — Vol. 14, № 2. — P. 165−171.
  117. Hart C.E., Bailey M., Curtis D.A. et al. Purification of PDGF-AB and PDGF-BB from human platelet extracts and identification of all three PDGF dimers in human platelets // Biochemistry. 1990. — Vol. 29, № 1. — P. 166−172.
  118. Hartnett M.E., Lappas A., Darland D. et al. Retinal pigment epithelium and endothelial cell interaction causes retinal pigment epithelial barrier dysfunction via a soluble VEGF-dependent mechanism // Exp. Eye Res. 2003. — Vol. 77, № 5. -P. 593−599.
  119. Heegaard S. Morphology of the vitreoretinal border region // Acta Ophthalmol. Scand. Suppl. 1997. — Vol. 222. — P. 1 -31.
  120. Heimann H., Zou X., Jandeck C. et al. Primary vitrectomy for rhegmatogenous retinal detachment: an analysis of 512 cases // Graefes Arch. Clin. Exp. Ophthalmol. 2006. — Vol. 244, № 1. — P. 69−78.
  121. Heldin C.H., Westermark B. Platelet-derived growth factor: mechanism of action and possible in vivo function // Cell Regul. 1990. — Vol. 1, № 8. — P. 555 566.
  122. Heldin C.H. Autocrine PDGF stimulation in malignancies // Ups. J. Med. Sci. -2012.-Vol. 117, № 2.-P. 83−91.
  123. Hisatomi T., Sakamoto T., Goto Y. et al. Critical role of photoreceptor apoptosis in functional damage after retinal detachment // Curr. Eye Res. 2002. -Vol. 24, № 3.-P. 161−172.
  124. Hui Y.N., Goodnight R., Sorgente N., Ryan S.J. Fibrovascular proliferation and retinal detachment after intravitreal injection of activated macrophages in the rabbit eye // Am. J. Ophthalmol. 1989. — Vol. 108, № 2. — P. 176−184.
  125. Immel J., Negi A., Marmor M.F. Acute changes in RPE apical morphology after retinal detachment in rabbit. A SEM study // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. -1986. Vol. 27, № 12. — P. 1770−1706.
  126. Immonen I., Konttinen Y.T., Sorsa T. et al. Proteinases in subretinal fluid // Graefes. Arch. Clin. Exp. Ophthalmol. 1996. — Vol. 234, № 2. — P. 105−109.
  127. Incandela L., Cesarone M.R., Belcaro G. et al. Treatment of vascular retinal disease with pentoxifylline: a controlled, randomized trial // Angiology. 2002. -Vol. 53.-P. 31−34.
  128. Ito Y., Sasoh M., Ido M. et al. Effects of scleral buckling without encircling procedures on retrobulbar hemodynamics as measured by color Doppler imaging // Arch. Ophthalmol. 2005. — Vol. 123, № 7. — P. 950−953.
  129. Jaffe G.J., Roberts W.L., Wong H.L. et al. Monocyte-induced cytokine expression interleukin-8 in cultured human retinal pigment epithelial cells // Exp. Eye Res. 1995. — Vol. 60, № 5. — P. 533−543.
  130. Jeong S.J., Koh W., Lee E.O. et al. Antiangiogenic phytochemicals and medicinal herbs // Phytother. Res. 2011. — Vol. 25, № 1. — p. 1−10.
  131. Jiang M., Bujo H., Zhu Y. et al. Pravastatin attenuates the PDGF-induced LR11/uPA receptor-mediated migration of smooth muscle cells // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2006. -Vol. 348, № 4. — P. 1367−1377.
  132. Jukic T., Katusic D., Cikara I. et al. Ocular blood flow parameters in patients with rhegmatogenous retinal detachment // Coll Antropol. 2005. — Vol. 29. — P. 75−79.
  133. Kang S.W., Kim J.H., Shin W.J., Kim J.I. Subretinal fluid bleb after successful scleral buckling and cryotherapy for retinal detachment // Am. J. Ophthalmol. -2008. Vol. 146, № 2. — P. 205−210.
  134. Karakousis P.C., John S.K., Behling K.C. et al. Localization of pigment epithelium derived factor (PEDF) in developing and adult human ocular tissues // Mol. Vis. 2001. — Vol. 7. — P. 154−163.
  135. Karlsson C., Paulsson Y. Age related induction of platelet-derived growth factor A-chain mRNA in normal human fibroblasts // J. Cell Physiol. 1994. -Vol. 158, № 2.-P. 256−262.
  136. Kauffmann D.J., van Meurs J.C., Mertens D.A. et al. Cytokines in vitreous humor: interleukin-6 is elevated in proliferative vitreoretinopathy // Invest. Ophthalmol. Vis. Sei. 1994. — Vol. 35, № 3. — P. 900−906.
  137. Kawahara S., Hata Y., Kita T. et al. Potent inhibition of cicatricial contraction in diseases by statins // Diabetes. 2008. -Vol. 57, № 10. — P. 2784−2793.
  138. Kimura I., Shinoda K., Eshita T. et al. Relaxation of encircling buckle improved choroidal blood flow in a patient with visual field defect following encircling procedure // Jpn. J. Ophthalmol. 2006. — Vol. 50, № 6. — P. 554−556.
  139. Kirchhof B., Kirchhof E., Ryan S.J., Sorgente N. Vitreous modulation of migration and proliferation of retinal pigment epithelial cells in vitro // Invest. Ophthalmol. Vis. Sei. 1989. — Vol. 30, № 9.-P. 1951−1957.
  140. Koch A.E., Polverini P.J., Kunkel S.L. et al. Interleukin-8 as a macrophage-derived mediator of angiogenesis // Science. 1992. — Vol. 258, № 5089. — P. 1798−1801.
  141. Kon C.H., Asaria R.H., Occleston N.L. et al. Risk factors for proliferative vitreoretinopathy after primary vitrectomy: a prospective study // Br. J. Ophthalmol. 2000. — Vol. 84, № 5. — P. 506−511.
  142. Kourembanas S., Morita T., Liu Y., Christou H. Mechanisms by which oxygen regulates gene expression and cell-cell interaction in the vasculature // Kidney Int. 1997.-Vol. 51, № 2.-P. 438−443.
  143. Kuo H.K., Chen Y.H., Wu P.C. et al. Attenuated glial reaction in experimental proliferative vitreoretinopathy treated with liposomal Doxorubicin // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2012. — Vol. 53, № 6. — P. 3167−3174.
  144. Kurtz R.M., Elner V.M., Bian Z.M. et al. Dexamethasone and cyclosporin A modulation of human retinal pigment epithelial cell monocyte chemotactic protein -1 and interleukin-8 // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 1997. — Vol. 38, № 2. — P. 436−445.
  145. La Heij E.C., Derhaag P.F., Hendrikse F. Results of scleral buckling operations in primary rhegmatogenous retinal detachment // Doc. Ophthalmol. 2000. — Vol. 100, № i.p. 17−25.
  146. La Heij E.C., Hendrikse F., Kessels A.G. Results and complications of temporary silicone oil tamponade in patients with complicated retinal detachments // Retina. 2001. — Vol. 21, № 2. — P. 107−114.
  147. Laatikainen L., Tolppanen E.M., Harju H. Epidemiology of rhegmatogenous retinal detachment in a Finnish population // Acta. Ophthalmol. (Copenh). 1985. -Vol. 63, № l.-P. 59−64.
  148. Larsen C.G., Anderson A.O., Oppenheim J.J., Matsushima K. Production of interleukin-8 by human dermal fibroblasts and keratinocytes in response to interleukin-1 or tumour necrosis factor // Immunology. 1989. — Vol. 68, № 1. -P. 31−36.
  149. Lean J.S. Origin of simple glial epiretinal membranes in an animal model //
  150. Graefes Arch. Clin. Exp. Ophthalmol. 1987. — Vol. 225, № 6. — P. 421−425.174
  151. Lecleire-Collet A., Muraine M., Menard J.F., Brasseur G. Evaluation of macular changes before and after successful retinal detachment surgery using stratus-optical coherence tomography // Am. J. Ophthalmol. 2006. — Vol. 142, № l.-P. 176−179.
  152. Lee S.Y., Joe S.G., Kim J.G. et al. Optical coherence tomography evaluation of detached macula from rhegmatogenous retinal detachment and central serous chorioretinopathy // Am. J. Ophthalmol. 2008. — Vol. 145, № 6. — P. 1071−1076.
  153. Lei H., Hovland P., Velez G. et al. A potential role for PDGF-C in experimental and clinical proliferative vitreoretinopathy // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2007. — Vol. 48, № 5. — P. 2335−2342.
  154. Lei H., Velez G., Hovland P. et al. Plasmin is the major protease responsible for processing PDGF-C in the vitreous of patients with proliferative vitreoretinopathy // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2008. — Vol. 49, № 1. — P. 4248.
  155. Lei H., Velez G., Hovland P. et al. Growth factors outside the PDGF family drive experimental PVR // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2009. — Vol. 50, № 7. -P. 3394−3403.
  156. Leveen P., Pekny M., Gebre-Medhin S. et al. Mice deficient for PDGF B show renal, cardiovascular, and hematological abnormalities // Genes Dev. 1994. -Vol. 8, № 16.-P. 1875−1887.
  157. Levy N.S., Chung S., Furneaux H., Levy A.P. Hypoxic stabilization of vascular endothelial growth factor mRNA by the RNA-binding protein HuR // J. Biol. Chem. 1998. — Vol. 273, № 11. — P. 6417−6423.
  158. Lewis G.P., Fisher S.K. Miiller cell outgrowth after retinal detachment: association with cone photoreceptors // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2000. -Vol. 41, № 6.-P. 1542−1545.
  159. Liang Y., Li X., Fan J. et al. The effect of platelet-derived growth factor on the formation of proliferative vitreoretinopathy // Zhonghua Yan Ke Za Zhi. 2002. -Vol. 38, № 3,-P. 144−147.
  160. Linberg K.A., Sakai T., Lewis G.P., Fisher S.K. Experimental retinal detachment in the cone-dominant ground squirrel retina: morphology and basic immunocytochemistry // Vis. Neurosci. 2002. — Vol. 19, № 5. — P. 603−619.
  161. Lindahl P., Hellstrom M., Kalen M. et al. Paracrine PDGF-B/PDGF-Rbeta signaling controls mesangial cell development in kidney glomeruli // Development. 1998. — Vol. 125, № 17. — P. 3313−3322.
  162. Lindblom P., Gerhardt H., Liebner S. et al. Endothelial PDGF-B retention is required for proper investment of pericytes in the microvessel wall // Genes. Dev. -2003.-Vol. 17, № 15.-P. 1835−1840.
  163. Lippert U., Artuc M., Griitzkau A. et al. Expression and functional activity of the IL-8 receptor type CXCR1 and CXCR2 on human mast cells // J. Immunol. -1998.-Vol. 161, № 5.-P. 2600−2608.
  164. Lotz M., Terkeltaub R., Villiger P.M. Cartilage and joint inflammation. Regulation of IL-8 expression by human articular chondrocytes // J. Immunol. -1992. Vol. 148, № 2. — P. 466−473.
  165. Machemer R. Experimental retinal detachment in the owl monkey. IV. The reattached retina // Am. J. Ophthalmol. 1968. — Vol. 66, № 6. — P. 1075−1091.
  166. Machemer R., Laqua H. Pigment epithelium proliferation in retinal detachment (massive periretinal proliferation) // Am. J. Ophthalmol. — 1975. — Vol. 80. — P. 1−23.
  167. Machemer R. Massive periretinal proliferation: a logical approach to therapy // Trans. Am. Ophthalmol. Soc. 1977. — Vol. 75. — P. 556−586.
  168. Magnussen A.L., Rennel E.S., Hua J. et al. VEGF-A165b is cytoprotective and antiangiogenic in the retina // Invest. Ophthalmol. Vis Sci. 2010. — Vol. 51, № 8. -P. 4273−4281.
  169. Marc R.E., Murry R.F., Fisher S.K. et al. Amino acid signatures in the detached cat retina // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 1998. — Vol. 39, № 9. — P. 1694−1702.
  170. Martin F., Pastor J.C., De La Rua E.R. et al. Proliferative vitreoretinopathy: cytologic findings in vitreous samples // Ophthalmic. Res. 2003. — Vol. 35, № 4. -P. 232−238.
  171. Maruko I., Iida T., Sekiryu T., Saito M. Morphologic changes in the outer layer of the detached retina in rhegmatogenous retinal detachment and central serous chorioretinopathy // Am. J. Ophthalmol. 2009. — Vol. 147, № 3. — P. 489−494.
  172. Medina F.J., Callen C.I., Rebolleda G. et al. Use of nonmydriatic spectral-domain optical coherence tomography for diagnosing diabetic macular edema // Am. J. Ophthalmol. 2012. — Vol. 153, № 3. — P. 536−543.
  173. Mervin K., Valter K., Maslim J. et al. Limiting photoreceptor death and deconstruction during experimental retinal detachment: the value of oxygen supplementation // Am. J. Ophthalmol. 1999. — Vol. 128, № 2. — P. 155−164.
  174. Miki D., Hida T., Hotta K. et al. Comparison of scleral buckling and vitrectomy for retinal detachment resulting from flap tears in superior quadrants // Jpn. J. Ophthalmol.-2001.-Vol. 45, № 2.-P. 187−191.
  175. Miller J.W., Adamis A.P., Aiello L.P. Vascular endothelial growth factor in ocular neovascularization and proliferative diabetic retinopathy // Diabetes. Metab. Rev. 1997. — Vol. 13, № 1. — P. 37−50.
  176. Mitry D., Charteris D.G., Fleck B.W. et al. The epidemiology of rhegmatogenous retinal detachment: geographical variation and clinical associations // Br. J. Ophthalmol. 2010. — Vol. 94, № 6. — P. 678−684.
  177. Mitry D., Charteris D.G., Yorston D. et al. The epidemiology and socioeconomic associations of retinal detachment in Scotland: a two-year prospective population-based study // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2010. — Vol. 51, № 10.-P. 4963−4968.
  178. Moretti S., Pinzi C., Spallanzani A. et al. Immunohistochemical evidence of cytokine networks during progression of human melanocytic lesions // Int. J. Cancer. 1999. — Vol. 84, № 2. — P. 160−168.
  179. Mori K., Duh E., Gehlbach P. et al. Pigment epithelium-derived factor inhibits retinal and choroidal neovascularization // J. Cell. Physiol. 2001. — Vol. 188, № 2.-P. 253−263.
  180. Mori K., Gehlbach P., Ando A. et al. Retina-specific expression of PDGF-B versus PDGF-A: vascular versus nonvascular proliferative retinopathy // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2002. — Vol. 43, № 6. — P. 2001−2006.
  181. Moromizato Y., Hayashi H., Kato H. et al. Concentration of vascular endothelial growth factor within the subretinal space and vitreous fluid in rhegmatogenous retinal detachment // Nihon. Ganka. Gakkai. Zasshi. 1997. -Vol. 101, № 6.-P. 498−502.
  182. Mudhar H.S., Pollock R.A., Wang C. et al. PDGF and its receptors in the developing rodent retina and optic nerve // Development. 1993. — Vol. 118, № 2. -P. 539−552.
  183. Nagasaki H., Shinagawa K., Mochizuki M. Risk factors for proliferative vitreoretinipathy // Prog. Retin. Eye Res. 1998. — Vol. 17, № 1. — P. 77−98.
  184. Nakanishi H., Hangai M., Unoki N. et al. Spectral-domain optical coherence tomography imaging of the detached macula in rhegmatogenous retinal detachment // Retina. 2009. — Vol. 29, № 2. — P. 232−242.
  185. Nam D.H., Oh J., Roh J.H., Huh K. Different expression of vascular endothelial growth factor and pigment epithelium-derived factor between diabetic and non-diabetic epiretinal membranes // Ophthalmologica. 2009. — Vol. 223, № 3.-P. 188−191.
  186. Nandrot E.F., Anand M., Sircar M., Finnemann S.C. Novel role for alphavbeta5-integrin in retinal adhesion and its diurnal peak // Am. J. Physiol. Cell Physiol. 2006. — Vol. 290, № 4. — P. 1256−1262.
  187. Nandrot E.F., Finnemann S.C. Altered rhythm of photoreceptor outer segment phagocytosis in beta5 integrin knockout mice // Adv. Exp. Med. Biol. 2006. -Vol. 572.-P. 119−123.
  188. Narayanan A.S., Page R.C. Biosynthesis and regulation of type V collagen in diploid human fibroblasts // J. Biol. Chem. 1983. — Vol. — 258, № 19. p. 11 694−11 699.
  189. Nilsson S.E., Sundelin S.P., Wihlmark U., Brunk U.T. Aging of cultured retinal pigment epithelial cells: oxidative reactions, lipofiiscin formation and blue light damage // Doc. Ophthalmol. 2003. — Vol. 106, № l. — p. 13−16.
  190. Nork T.M., Wallow I.H., Sramek S.J. et al. Immunocytochemical study of an eye with proliferative vitreoretinopathy and retinal tacks // Retina. 1990. — Vol. 10, № l.-P. 78−85.
  191. Ogata N., Tombran-Tink J., Nishikawa M. et al. Pigment epithelium-derived factor in the vitreous is low in diabetic retinopathy and high in rhegmatogenous retinal detachment // Am. J. Ophthalmol. 2001. — Vol. 132, № 3. — P. 378−382.
  192. Ogata N., Wada M., Otsuji T. et al. Expression of pigment epithelium-derived factor in normal adult rat eye and experimental choroidal neovascularization // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2002. — Vol. 43, № 4. — P. 1168−1175.
  193. Ogata N., Matsuoka M., Imaizumi M. et al. Decrease of pigment epithelium-derived factor in aqueous humor with increasing age // Am. J. Ophthalmol. 2004. -Vol. 137, № 5.-P. 935−936.
  194. Ogata N., Matsuoka M., Imaizumi M. et al. Decreased levels of pigment epithelium-derived factor in eyes with neuroretinal dystrophic diseases // Am. J. Ophthalmol. 2004. — Vol. 137, № 6. — P. 1129−1130.
  195. Ogata N., Imaizumi M., Miyashiro M. et al. Low levels of pigment epithelium-derived factor in highly myopic eyes with chorioretinal atrophy // Am. J. Ophthalmol. 2005. — Vol. 140, № 5. — P. 937−939.
  196. Ostman A., Heldin C.H. Involvement of platelet-derived growth factor in disease: development of specific antagonists // Adv. Cancer Res. 2001. — Vol. 80. -P. 1−38.
  197. Pang I.H., Zeng H., Fleenor D.L., Clark A.F. Pigment epithelium-derived factor protects retinal ganglion cells // BMC Neurosci. 2007. — Vol. 29, № 8. — P. 11.
  198. Park K., Jin J., Hu Y. et al. Overexpression of pigment epithelium-derived factor inhibits retinal inflammation and neovascularization // Am. J. Pathol. -2011.-Vol. 178, № 2.-P. 688−698.
  199. Polkinghorne P.J., Craig J.P. Northern New Zealand Rhegmatogenous Retinal Detachment Study: epidemiology and risk factors // Clin. Experiment. Ophthalmol. 2004. — Vol. 32, № 2. — P. 159−163.
  200. Raczynska K., Grabowska A., Zdybel E. et al. Vascular flow in patients with retinal detachment in the color Doppler’s ultrasonography // Klin. Oczna. 2003. -Vol. 105, № 1−2.-P. 24−26.
  201. Rasier R., Gormus U., Artunay O. et al. Vitreous levels of VEGF, IL-8, and TNF-alpha in retinal detachment // Curr. Eye Res. 2010. — Vol. 35, № 6. — P. 505−509.
  202. Regillo C.D., Sergott R.C., Brown G.C. Successful scleral buckling procedures decrease central retinal artery blood flow velocity // Ophthalmology. 1993. -Vol. 100, № 7. — P. 1044−1049.
  203. Reneker L.W., Overbeek P.A. Lens-specific expression of PDGF-A alters lens growth and development // Dev. Biol. 1996. — Vol. 180, № 2. — P. 554−565.
  204. Retina Society Terminology Committee. The classification of retinal detachment with proliferative vitreoretinopathy // Ophthalmology. 1983. — Vol. 90, № 2.-P. 121−125.
  205. Reuterdahl C., Sundberg C., Rubin K. et al. Tissue localization of beta receptors for platelet-derived growth factor and platelet-derived growth factor B chain during wound repair in humans // J. Clin. Invest. 1993. — Vol. 91, № 5. — P. 2065−2075.
  206. Rex T.S., Fariss R.N., Lewis G.P. et al. A survey of molecular expression by photoreceptors after experimental retinal detachment // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2002. — Vol. 43, № 4. — P. 1234−1247.
  207. Ricker L.J., Kijlstra A., Kessels A.G. et al. Interleukin and growth factor levels in subretinal fluid in rhegmatogenous retinal detachment: a case-control study // PLoS One. 2011. — Vol. 6, № 4. — P. 19 141.
  208. Risau W., Drexler H., Mironov V. et al. Platelet-derived growth factor is angiogenic in vivo // Growth Factors. 1992, Vol. 7, № 4. — P. 261−266.
  209. Robbins S.G., Mixon R.N., Wilson D.J. et al. Platelet-derived growth factor ligands and receptors immunolocalized in proliferative retinal diseases // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 1994. — Vol. 35, № 10. — P. 3649−3663.
  210. Robertson D.M. Delayed absorption of subretinal fluid after scleral buckling procedures: the significance of subretinal precipitates // Trans. Am. Ophthalmol. Soc. 1978. — Vol. 76. — P. 557−583.
  211. Robson M.C., Phillips L.G., Thomason A. et al. Platelet-derived growth factor BB for the treatment of chronic pressure ulcers // Lancet. 1992. — Vol. 339, № 8784.-P. 23−25.
  212. Rodt S.A., Ahlen K., Berg A. et al. A novel physiological function for platelet-derived growth factor-BB in rat dermis // J. Physiol. 1996. — Vol. 495. — P. 193.
  213. Roldan-Pallares M., Ossama I.A., Contreras E. et al. Ocular blood flow and characteristics of retinal detachment // Arch. Soc. Esp. Oftalmol. 2001. — Vol. 76, № 6.-P. 351−356.
  214. Roldan-Pallares M., Musa A.S., Hernandez-Montero J. et al. Retinal detachment and proliferative vitreoretinopathy: ophthalmic artery blood velocities, intraocular pressure, and endothelin-1 // Retina. 2008. — Vol. 28, № 1. — P. 111 124.
  215. Roldan-Pallares M., Bravo-Llatas C., Musa A.S. et al. Modelling postoperative visual acuity with and without proliferative vitreoretinopathy associated with primary rhegmatogenous retinal detachment // Eye (Lond). 2012.
  216. Ross R., Masuda J., Raines E.W. et al. Localization of PDGF-B protein in macrophages in all phases of atherogenesis // Science. 1990. — Vol. 248, № 4958. -P. 1009−1012.
  217. Ross W.H., Kozy D.W. Visual recovery in macula-off rhegmatogenous retinal detachments // Ophthalmology. 1998. — Vol. 105, № 11. — P. 2149−2153.
  218. Ross W.H., Stockl F.A. Visual recovery after retinal detachment // Curr. Opin. Ophthalmol. 2000. — Vol. 11, № 3. — P. 191 -194.
  219. Ross W.H. Visual recovery after macula-off retinal detachment // Eye. — 2002. — Vol. 16, № 4. — P. 440−446.
  220. Rydziel S., Shaikh S., Canalis E. Platelet-derived growth factor-AA and -BB (PDGF-AA and -BB) enhance the synthesis of PDGF-AA in bone cell cultures // Endocrinology. 1994. — Vol. 134, № 6. — P. 2541−2546.
  221. Ryeom S.W., Sparrow J.R., Silverstein R.L. CD36 participates in the phagocytosis of rod outer segments by retinal pigment epithelium // J. Cell Sci. -1996. Vol. 109, № 2. — P. 387−395.
  222. Sabates N.R., Sabates F.N., Sabates R. et al. Macular changes after retinal detachment surgery // Am. J. Ophthalmol. 1989. — Vol. 108, № 1. — P. 22−29.
  223. Saishin Y., Saishin Y., Takahashi K. et al. The kinase inhibitor PKC412 suppresses epiretinal membrane formation and retinal detachment in mice with proliferative retinopathies // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2003. — Vol. 44, № 8. -P. 3656−3662.
  224. Sakai T., Lewis G.P., Linberg K.A., Fisher S.K. The ability of hyperoxia to limit the effects of experimental detachment in cone-dominated retina // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2001. — Vol. 42, № 13. — P. 3264−3273.
  225. Salicone A., Smiddy W.E., Venkatraman A., Feuer W. Management of retinal detachment when no break is found // Ophthalmology. 2006. — Vol. 113, № 3. -P. 398−403.
  226. Santos L., Capeans C., Gonzalez F. et al. Ocular blood flow velocity reduction after buckling surgery // Graefes Arch. Clin. Exp. Ophthalmol. 1994. — Vol. 232, № ll.-P. 666−669.
  227. Sasahara M., Fries J.W., Raines E.W. et al. PDGF B-chain in neurons of the central nervous system, posterior pituitary, and in a transgenic model // Cell. -1991.-Vol. 64, № l.-p. 217−227.
  228. Sato N., Beitz J.G., Kato J. et al. Platelet-derived growth factor indirectly stimulates angiogenesis in vitro // Am. J. Pathol. 1993. — Vol. 142, № 4. — P. 1119−1130.
  229. Sawant S., Aparicio S., Tink A.R. et al. Regulation of factors controlling angiogenesis in liver development: a role for PEDF in the formation and maintenance of normal vasculature // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2004. -Vol. 325, № 2.-P. 408−413.
  230. Schepens C.L. Retinal Detachment and allied diseases // Philadelphia., W.B. Saunders Co., 1983.
  231. Schlingemann R.O., van Hinsbergh V.W. Role of vascular permeability factor/vascular endothelial growth factor in eye disease // Br. J. Ophthalmol. -1997.-Vol. 81, № 6.-P. 501−512.
  232. Schmitz-Valckenberg S., Holz F.G., Bird A.C., Spaide R.F. Fundus autofluorescence imaging: review and perspectives // Retina. 2008. — Vol. 28, № 3,-P. 385−409.
  233. Schneider L., Clement C.A., Teilmann S.C. et al. PDGFRalphaalpha signaling is regulated through the primary cilium in fibroblasts // Curr. Biol. 2005. — Vol. 15, № 20.-P. 1861−1866.
  234. Schocket L.S., Witkin A.J., Fujimoto J.G. et al. Ultrahigh-resolution optical coherence tomography in patients with decreased visual acuity after retinal detachment repair // Ophthalmology. 2006. — Vol. 113, № 4. — P. 666−672.
  235. Schwartz S.G., Kuhl D.P., McPherson A.R. et al. Twenty-year follow-up for scleral buckling // Arch. Ophthalmol. 2002. — Vol. 120, № 3. — P. 325−329.
  236. Seo J.H., Woo S.J., Park K.H. et al. Influence of persistent submacular fluid on visual outcome after successful scleral buckle surgery for macula-off retinal detachment // Am. J. Ophthalmol. 2008. — Vol. 145, № 5. — P. 915−922.
  237. Seo M.S., Okamoto N., Vinores M.A. et al. Photoreceptor-specific expression of platelet-derived growth factor-B results in traction retinal detachment // Am. J. Pathol. 2000. — Vol. 157, № 3. — P. 995−1005.
  238. Sethi C.S., Lewis G.P., Fisher S.K. et al. Glial remodeling and neural plasticity in human retinal detachment with proliferative vitreoretinopathy // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2005. — Vol. 46, № 1. — P. 329−342.
  239. Sharma T., Challa J.K., Ravishankar K.V., Murugesan R. Scleral buckling for retinal detachment. Predictors for anatomic failure // Retina. 1994. — Vol. 14, № 4.-P. 338−343.
  240. Sharma Y.R., Karunanithi S., Azad R.V. et al. Functional and anatomic outcome of scleral buckling versus primary vitrectomy in pseudophakic retinal detachment // Acta Ophthalmol. Scand. 2005. — Vol. 83, № 3. — P. 293−297.
  241. Shimoda Y., Sano M., Hashimoto H. et al. Restoration of photoreceptor outer segment after vitrectomy for retinal detachment // Am. J. Ophthalmol. 2010. -Vol. 149, № 2. — P. 284−290.
  242. Smith A.J., Telander D.G., Zawadzki R.J. et al. High-resolution Fourierdomain optical coherence tomography and microperimetric findings after macula-off retinal detachment repair // Ophthalmology. 2008. — Vol. 115, № 11. — P. 1923−1929.
  243. Sohn H.J., Han D.H., Kim I.T. et al. Changes in aqueous concentrations of various cytokines after intravitreal triamcinolone versus bevacizumab for diabetic macular edema // Am. J. Ophthalmol. 2011. — Vol. 152, № 4. p. 686−694.
  244. Spaide R.F., Fisher Y., Ober M., Stoller G. Surgical hypothesis: inner retinal fenestration as a treatment for optic disc pit maculopathy // Retina. 2006. — Vol. 26, № l.-P. 89−91.
  245. Spaide R.F., Noble K., Morgan A., Freund KB. Vitelliform macular dystrophy // Ophthalmology. 2006. — Vol. 113, № 8. — P. 1392−1400.
  246. Spaide R. Autofluorescence from the outer retina and subretinal space: hypothesis and review // Retina. 2008. — Vol. 28, № 1. — P. 5−35.
  247. Stahl J.H., Miller D.B., Conway B.P., Campochiaro P.A. Dexamethasone and indomethacin attenuate cryopexy. Induced breakdown of the blood-retinal barrier // Graefes Arch. Clin. Exp. Ophthalmol. 1987. — Vol. 225, № 6. — P. 418−420.
  248. Stavri G.T., Hong Y., Zachary I.C. et al. Hypoxia and platelet-derived growth factor-BB synergistically upregulate the expression of vascular endothelial growth factor in vascular smooth muscle cells // FEBS Lett. 1995. — Vol. 358, № 3. — P. 311−315.
  249. Stellmach V., Crawford S.E., Zhou W., Bouck N. Prevention of ischemia-induced retinopathy by the natural ocular antiangiogenic agent pigment epithelium-derived factor // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2001. — Vol. 98, № 5. — P. 2593.
  250. Stouffer G.A., Owens G.K. TGF-beta promotes proliferation of cultured SMC via both PDGF-AA-dependent and PDGF-AA-independent mechanisms // J. Clin. Invest. 1994. — Vol. 93, №> 5. — P. 2048−2055.
  251. Strieter R.M., Kunkel S.L., Elner V.M. et al. Interleukin-8. A corneal factor that induces neovascularization // Am. J. Pathol. 1992. — Vol. 141, № 6. — P. 1279−1284.
  252. Sugawara R., Nagaoka T., Kitaya N. et al. Choroidal blood flow in the foveal region in eyes with rhegmatogenous retinal detachment and scleral buckling procedures // Br. J. Ophthalmol. 2006. — Vol. 90, № 11. — P. 1363−1365.
  253. Sy C.Y., Chen M.T., Wu W.S., Wu W.C. Concentration of Vascular Endothelial Growth Factor in the Subretinal Fluid of Retinal Detachment. // J. Ocul. Pharmacol. Ther. 2000. — Vol. 16. № 5. — P. 463−469.
  254. Sydorova M., Lee M.S. Vascular endothelial growth factor levels in vitreous and serum of patients with either proliferative diabetic retinopathy or proliferative vitreoretinopathy // Ophthalmic. Res. 2005. — Vol. 37, № 4. — P. 188−190.
  255. Takahashi H., Shibuya M. The vascular endothelial growth factor (VEGF)/VEGF receptor system and its role under physiological and pathological conditions // Clin. Sci. (Lond). 2005. — Vol. 109, № 3. — P. 227−241.
  256. Takita H., Yoneya S., Gehlbach P.L. et al. Retinal neuroprotection against ischemic injury mediated by intraocular gene transfer of pigment epithelium-derived factor // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2003. — Vol. 44, № 10. — P. 4497.
  257. Tanimoto S., Kanamoto T., Mizukami M. et al. Pigment epithelium-derived factor promotes neurite outgrowth of retinal cells // Hiroshima J. Med. Sci. 2006. -Vol. 55, № 4.-P. 109−116.
  258. Theodossiadis P.G., Georgalas I.G., Emfietzoglou J. et al. Optical coherence tomography findings in the macula after treatment of rhegmatogenous retinal detachments with spared macula preoperatively // Retina. 2003. — Vol. 23, № 1. -P. 69−75.
  259. Tolentino F.I., Lapus J.V., Novalis G. et al. Fluorescein angiography of degenerative lesions of the peripheral fundus and rhegmatogenous retinaldetachment // Int. Ophthalmol. Clin. 1976. — Vol. 16, № 1. — P. 13−29.186
  260. Tombran-Tink J., Chader G.G., Johnson L.V. PEDF: a pigment epithelium-derived factor with potent neuronal differentiate activity // Exp. Eye Res. 1991. -Vol. 53, № 3,-P. 411−414.
  261. Tombran-Tink J., Barnstable C.J. PEDF: a multifaceted neurotrophic factor // Nat. Rev. Neurosci. 2003. — Vol. 4, № 8. — P. 628−636.
  262. Tombran-Tink J., Lara N., Apricio S.E. et al. Retinoic acid and dexamethasone regulate the expression of PEDF in retinal and endothelial cells // Exp. Eye Res. -2004. Vol. 78, № 5. — P. 945−955.
  263. Tsanou E., Ioachim E., Stefaniotou M. et al. Immunohistochemical study of angiogenesis and proliferative activity in epiretinal membranes // Int. J. Clin Pract. -2005.-Vol. 59, № 10.-P. 1157−1161.
  264. Turgut B., Uyar F., Ustundag B. et al. The impact of tacrolimus on growth factors in experimental proliferative vitreoretinopathy // Retina. 2012. — Vol. 32, № 2.-P. 232−241.
  265. Van Bockxmeer F.M., Martin C.E., Constable I.J. Models for assessing scar tissue inhibitors // Retina. 1985. — Vol. 5, № 1. — P. 47−60.
  266. Van Horn D.L., Aaberg T.M., Machemer R., Fenzl R. Glial cell proliferation in human retinal detachment with massive periretinal proliferation // Am. J. Ophthalmol. — 1977. Vol. 84, № 3. — P. 383−393.
  267. Vassbotn F.S., Havnen O.K., Heldin C.H., Holmsen H. Negative feedback regulation of human platelets via autocrine activation of the platelet-derived growth factor alpha-receptor // J. Biol. Chem. 1994. — Vol. 269, № 19. — P. 13 874−13 879.
  268. Veckeneer M., Derycke L., Lindstedt E.W. et al. Persistent subretinal fluid after surgery for rhegmatogenous retinal detachment: hypothesis and review //
  269. Graefes Arch. Clin. Exp. Ophthalmol. 2012.187
  270. Vinores S.A., Henderer J.D., Mahlow J. et all. Isoforms of platelet-derived growth factor and its receptors in epiretinal membranes: immunolocalization to retinal pigmented epithelial cells // Exp. Eye Res. 1995. — Vol. 60, № 6. — P. 607 619.
  271. Wakabayashi T., Oshima Y., Fujimoto H. et al. Foveal microstructure and visual acuity after retinal detachment repair: imaging analysis by Fourier-domain optical coherence tomography // Ophthalmology. 2009. — Vol. 116, № 3. — P. 519−528.
  272. Walshe R., Esser P., Wiedemann P., Heimann K. Proliferative retinal diseases: myofibroblasts cause chronic vitreoretinal traction // Br. J. Ophthalmol. 1992. -Vol. 76, № 9.-P. 550−552.
  273. Wang F., Xu X., Zhang X., Yan Y. Electron-immunostaining characteristics of platelet-derived growth factor, transforming growth factor betal and their receptors in epiretinal membranes // Zhonghua Yan. Ke. Za. Zhi. 2000. — Vol. 36, № 5. -P. 369−371.
  274. Wang X.Y., Shen L.P., Hu R.R., Xu W. Persistent subretinal fluid after successful scleral buckle surgery for macula-off retinal detachment // Chin. Med. J. 2011. — Vol. 124, № 23. — P. 4007−4011.
  275. Wang Y., Li S.Y., Zhu M. et al. Metamorphopsia after successful retinal detachment surgery: an optical coherence tomography study // Acta. Ophthalmol. Scand.- 2005. -Vol. 83, № 2.-P. 168−171.
  276. Warburton S., Southwick K., Hardman R.M. et al. Examining the proteins of functional retinal lipofuscin using proteomic analysis as a guide for understanding its origin//Mol. Vis.-2005.-Vol. 11. P. 1122−1134.
  277. Waterfield M.D., Scrace G.T., Whittle N. et al. Platelet-derived growth factor is structurally related to the putative transforming protein p28sis of simian sarcoma virus // Nature. 1983. — Vol. 304, № 5921. — P. 35−39.
  278. Weller M., Heimann K., Wiedemann P. The pathogenesis of vitreoretinal proliferation and traction: a working hypothesis // Med Hypotheses. 1990. — Vol.31, № 2.-P. 157−159.
  279. Weller M., Heimann K., Wiedemann P. Mononuclear phagocytes and their growth factors: pacemakers of proliferative vitreoretinopathy? // Klin. Monbl. Augenheilkd. 1990. — Vol. 196, № 3. — P. 121−127.
  280. Westermark B., Heldin C.H. Platelet-derived growth factor. Structure, function and implications in normal and malignant cell growth // Acta Oncol. 1993. — Vol.32, № 2.-P. 101−105.
  281. Wiedemann P., Hilgers R.D., Bauer P., Heimann K. Adjunctive daunorubicin in the treatment of proliferative vitreoretinopathy: results of a multicenter clinical trial. Daunomycin Study Group // Am. J. Ophthalmol. 1998. — Vol. 126, № 4. -P. 550−559.
  282. Wilkinson-Berka J.L., Babic S., De Gooyer T. et al. Inhibition of platelet-derived growth factor promotes pericyte loss and angiogenesis in ischemic retinopathy // Am. J. Pathol. 2004. — Vol. 164, № 4. — P. 1263−1273.
  283. Wolfensberger T.J., Gonvers M. Optical coherence tomography in the evaluation of incomplete visual acuity recovery after macula-off retinal detachments // Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol 2002. — Vol. 240, № 2.- P. 85.
  284. Woo S.J., Lee K.M., Chung H., Park K.H. Photoreceptor disruption related to persistent submacular fluid after successful scleral buckle surgery // Korean J. Ophthalmol. 2011. — Vol. 25, № 6. — P. 380−386.
  285. Wu J.S., Lin C.J., Hwang J.F., Chen S.N. Influence of systemic steroids on subretinal fluid after scleral buckle surgery for macula-off retinal detachment // Retina.-2011.-Vol. 31, № l.-P. 99−104.
  286. Wu L.L. Cystoid macular edema after rhegmatogenous retinal detachment surgery // Zhonghua Yan Ke Za Zhi. 1991. — Vol. 27, № 3. — P. 160−162.
  287. Yang L., Bula D., Arroyo J.G., Chen D.F. Preventing retinal detachment-associated photoreceptor cell loss in Bax-deficient mice // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2004. — Vol. 45, № 2. — P. 648−654.
  288. Yeh H.J., Ruit K.G., Wang Y.X. et al. PDGF A-chain gene is expressed by mammalian neurons during development and in maturity // Cell. 1991. — Vol. 64, № l.-P. 209−216.
  289. Yetik H., Guzel H., Ozkan S. Structural features of attached retina in rhegmatogenous retinal detachments // Retina. 2004. — Vol. 24, № l.-P. 63−68.
  290. Yorston D.B., Wood M.I., Gilbert C. Retinal detachment in East Africa // Ophthalmology. — 2002. — Vol. 108, № 12. P. 2279−2283.
  291. Yoshida A., Yoshida S., Khalil A.K. et al. Role of NF-kappaB-mediated interleukin-8 expression in intraocular neovascularization // Invest. Ophthalmol.
  292. Vis. Sci. 1998. — Vol. 39, № 7. p. 1097−1106.190
  293. Yoshida A., Einer S.G., Bian Z.M., Einer V.M. Induction of interleukin-8 in human retinal pigment epithelial cells after denuding injury // Br. J. Ophthalmol. -2001. Vol. 85, № 7. — P. 872−876.
  294. Yoshikawa M., Nakamura K., Nagase S. et al. Effects of combined treatment with angiotensin II type 1 receptor blocker and statin on stent restenosis // J. Cardiovasc. Pharmacol. 2009. — Vol. 53, № 2. — P. 179−186.
  295. Yoshimura T., Sonoda K.H., Sugahara M. et al. Comprehensive analysis of inflammatory immune mediators in vitreoretinal diseases // PLoS One. 2009. -Vol. 4, № 12.-P. 8158.
  296. Yourey P.A., Gohari S., Su J.L., Alderson R.F. Vascular endothelial cell growth factors promote the in vitro development of rat photoreceptor cells // J. Neurosci. 2000. — Vol. 20, № 18. — P. 6781−6788.
  297. Yu H.G., Chung H. Antiproliferative effect of mitomycin C on experimental proliferative vitreoretinopathy in rabbits // Korean. J. Ophthalmol. 1997. — Vol. 11, № 2.-P. 98−105.
  298. Zhang N., Townes-Anderson E. Regulation of structural plasticity by different channel types in rod and cone photoreceptors // J. Neurosci. 2002. — Vol. 22, № 16.-P. 7065−7079.
  299. Zhang X.G., Hui Y.N., Han Q.H. et al. Effects of mechanical stress on expressions of monocyte chemoattractant protein-1 and interleukin-8 of cultured human retinal pigment epithelial cells // Zhonghua Yi Xue Za Zhi. 2005. — Vol. 85, № 32.-P. 2264−2268.
  300. Zou H., Zhang X., Xu X. et al. Epidemiology survey of rhegmatogenous retinal detachment in Beixinjing District, Shanghai, China // Retina. 2002. — Vol. 22, № 3.-P. 294−299.191 1
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?