Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Состояние модулирующих субсистем ЦНС крысы при трансплантации эмбриональных закладок голубого пятна и черной субстанции

Диссертация: Состояние модулирующих субсистем ЦНС крысы при трансплантации эмбриональных закладок голубого пятна и черной субстанции
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Трансплантация эмбриональной нервной ткани является одним из перспективных направлений в нейробиоло-гии и медицине. Среди реципиентных органов наибольший интерес представляет головной мозг (Сеченов И. М., 1952, Александрова М. А., Полежаев JI. В., 1982; Подачин В. П., 1992; Hoogendijk W. J. et al., 1995; Murata Y., Masuko S., 1996; Svanidze I. K. et al., 1997). Накопленный материал… Читать ещё >

Содержание

  • СОКРАЩЕНИЯ, ПРИМЕНЯЕМЫЕ В ТЕКСТЕ ДИССЕРТАЦИИ
  • Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. ТРАНСПЛАНТАЦИЯ ЭМБРИОНАЛЬНОЙ НЕРВНОЙ ТКАНИ В ГОЛОВНОЙ МОЗГ МЛЕКОПИТАЮЩИХ И ЧЕЛОВЕКА
    • 1. 2. НОР АДРЕНАЛИН- И ДОФАМИНЕРГИЧЕСКИЕ НЕЙРОННЫЕ СИСТЕМЫ И ИХ ЗНАЧЕНИЕ В РЕГУЛЯЦИИ СОМАТИЧЕСКИХ И ВЕГЕТАТИВНЫХ ФУНКЦИЙ
    • 1. 3. ФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ СВЯЗИ ЦЕНТРАЛЬНОЙ И ПЕРИФЕРИЧЕСКОЙ НОРАДРЕНЕРГИЧЕСКИХ СТРУКТУР НЕРВНОЙ СИСТЕМЫ
    • 1. 4. РЕЗЮМЕ
  • Глава 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • 2. 1. ОБЪЕКТ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 2. ТРАНСПЛАНТАЦИЯ НЕРВНОЙ ТКАНИ В ПОЛОСТЬ ТРЕТЬЕГО ЖЕЛУДОЧКА ГОЛОВНОГО МОЗГА КРЫС
    • 2. 3. МОРФОЛОГИЧЕСКИЙ И МОРФОМЕТРИЧЕСКИЙ АНАЛИЗЫ
    • 2. 4. РАДИОАВТОГРАФИЧЕСКИЙ МЕТОД ОЦЕНКИ ТРАНСКРИПЦИОННОЙ АКТИВНОСТИ ХРОМАТИНА
    • 2. 5. МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ ПОВЕДЕНИЯ ЖИВОТНЫХ
      • 2. 5. 1. МЕТОД «ОТКРЫТОЕ ПОЛЕ»
      • 2. 5. 2. АНАЛИЗ РЕПРОДУКТИВНОЙ СПОСОБНОСТИ ЖИВОТНЫХ
      • 2. 5. 3. АНАЛИЗ ПРОДОЛЖИТЕЛЬНОСТИ ЖИЗНИ ЖИВОТНЫХ
    • 2. 6. СТАТИСТИЧЕСКИЙ АНАЛИЗ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫХ ДАННЫХ
  • Глава 3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 3. 1. МОРФО-ФУНКЦИОНАЛЬНОЕ СОСТОЯНИЕ НЕЙРОНОВ ЭМБРИОНАЛЬНОЙ ТКАНИ, ПЕРЕСАЖЕННОЙ В ПОЛОСТЬ ТРЕТЬЕГО ЖЕЛУДОЧКА ГОЛОВНОГО МОЗГА КРЫС
      • 3. 1. 1. Оценка степени дифференцировки нейронов пересаженной ткани
      • 3. 1. 2. Особенности пространственной организации нейронов пересаженной ткани
    • 3. 2. ВЛИЯНИЕ ТРАНСПЛАНТАЦИИ НА СОСТОЯНИЕ НЕРВНЫХ КЛЕТОК ГОЛУБОГО ПЯТНА, ЧЕРНОЙ СУБСТАНЦИИ И КРАНИАЛЬНОГО ШЕЙНОГО СИМПАТИЧЕСКОГО ГАНГЛИЯ, МОРФОЛОГИЧЕСКАЯ И
  • МОРФОМЕТРИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКИ
    • 3. 3. ТРАНСКРИПЦИОННАЯ АКТИВНОСТЬ ХРОМАТИНА НЕВРОЦИТОВ ГОЛУБОГО ПЯТНА, СИМПАТИЧЕСКОГО ГАНГЛИЯ, ЧЕРНОЙ СУБСТАНЦИИ В НОРМЕ И В УСЛОВИЯХ ТРАНСПЛАНТАЦИИ

    3.3.1. Возрастная динамика транскрипционной активности хроматина невроцитов голубого пятна в норме и в условиях трансплантации. симпатического ганглия нормально развивавшихся и в условиях трансплантации крыс разного возраста.

    3.4. ВЛИЯНИЕ ТРАНСПЛАНТАЦИИ НА ПОВЕДЕНИЕ ЖИВОТНЫХ.

    3.4.1. Влияние трансплантации на динамическую, ориентировочную и исследовательскую активности животных.

    3.4.2. Влияние трансплантации на репродуктивную способность животных.

    3.4.3. Влияние трансплантации на продолжительность жизни животных.

    ГЛАВА 4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ.

    ВЫВОДЫ.

Состояние модулирующих субсистем ЦНС крысы при трансплантации эмбриональных закладок голубого пятна и черной субстанции (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Трансплантация эмбриональной нервной ткани является одним из перспективных направлений в нейробиоло-гии и медицине. Среди реципиентных органов наибольший интерес представляет головной мозг (Сеченов И. М., 1952, Александрова М. А., Полежаев JI. В., 1982; Подачин В. П., 1992; Hoogendijk W. J. et al., 1995; Murata Y., Masuko S., 1996; Svanidze I. K. et al., 1997). Накопленный материал свидетельствует о значительной роли центральных образований мозга в регуляции внутренней среды организма. При различных повреждениях мозга возникают дефекты и логичным способом компенсации утраченных либо нарушенных функций является трансплантация нервной ткани головного мозга. Эти обстоятельства явились основным мотивом данной работы, в которой проводится трансплантация эмбриональных закладок locus coeruleus (LC) и substantia nigra (SN) в интактный мозг крыс разного возраста и делается попытка рассмотреть влияние трансплантата на взаимоотношения центральных и периферических нора дренергических и дофаминергических структур нервной системы.

К настоящему времени получены данные, свидетельствующие о том, что locus coeruleus — голубое пятно — вегетативное ядро ствола мозга является самым крупным норадренергическим образованием, a substantia nigra — черное вещество одним из основных дофаминергических образований головного мозга. Нарушение функции в сим-патоадреналовой системе приводит к нарушению содержания дофамина в окончаниях аксонов допаминергиче-ских нейронов в черной субстанции и к нарушению двигательной функции. Недостаточность синтеза дофамина ведет к паркинсонизму с его характерными двигательным и вегетативным симптомокомплексом (Кандель Э. И., 1981). Синдром паркинсонизма выражается в нарушении двигательной функции: треморе, ригидности, трудности начать движение и др. В настоящее время считается, что синдром вызван недостаточностью секреции дофамина нейронами черной субстанции и подачи его к полосатому телутрадиционно лечат его, вводя больным L-ДОПА, который в мозге превращается в дофамин. Однако, это лечение далеко не радикально, так как патолого-анатомическое исследование мозга в таких случаях выявляет изменения в подкорковой области, затрагивающие базальные ядра, бледный шар и особенно черную субстанцию, в которой исчезает пигмент, а нервные клетки атрофируются. Таким образом, возможным методом компенсации недостатка дофамина могла бы стать трансплантация эмбриональной нервной ткани черной субстанции в мозг реципиента.

Locus coeruleus является основным компонентом центрального аппарата функциональной системы гомеостаза, что следует и определяется его функциональным единством с мезенцефалическим ядром тройничного нерва. ГП влияет на вегетативные функции: участвует в обеспечении потребностей организма необходимыми компонентами жизнедеятельности и в адаптивных реакциях. Отмечены сходные биохимические процессы и физиологические эффекты между норадренергической системой мозга и симпатическим отделом периферической нервной системы, что указывает на их тесную взаимосвязь (Белова Т. И., Го-лубева Е. Л., Судаков К. В., 1980; Abercrombie J., 1987; Jones G., 1987; Gimenez у Ribotta М. G. et al., 1996; Hudson J. L. et al., 1994; Orsal D. et al., 1997).

Одним из возможных экспериментальных подходов к проблеме компенсации нарушенных функций организма является модель трансплантации. В частности, обращение к трансплантации эмбриональных закладок locus coeruleus и substantia nigra в интактный мозг позволяет проследить как за морфо-функциональным состоянием нервно-клеточных элементов LC и SN, так и за функциональной взаимосвязью норадренергической и дофаминер-гической систем в условиях трансплантации.

Целью настоящего исследования явилось изучение динамики морфо-функционального состояния нейронов голубого пятна, краниального шейного симпатического ганглия, черной субстанции в условиях трансплантации эмбриональной нервной ткани и эффектов трансплантации на состояние центральной и периферической норадренергических, а также дофаминергической структур нервной системы.

В данной работе были поставлены следующие основные задачи:

1. Отработать методику трансплантации эмбриональной ткани locus coeruleus, substantia nigra в полость третьего желудочка головного мозга крыс;

2. Оценить развитие эмбриональной нервной ткани, взятой из разных отделов мозга (locus coeruleus, substantia nigra), при пересадке в одно и то же место (полость третьего желудочка головного мозга);

3. Провести морфологический и морфометрический анализ голубого пятна, краниального шейного симпатического ганглия, черной субстанции в условиях трансплантации;

4. Радиоавтографическим методом дать оценку транскрипционной активности хроматина ядер невроцитов ГП, КЫ1СГ, «ЧС в условиях трансплантации;

5. Определить состояние трансплантатов в поздние сроки опытов;

6. Изучить влияние трансплантации locus coeruleus, substantia nigra на общее состояние и поведение экспериментальных животных разного возраста и пола.

Научная новизна работы:

1. Впервые использована модель трансплантации эмбриональных locus coeruleus и substantia nigra в полость третьего желудочка головного мозга крыс для выяснения влияния трансплантации эмбриональной нервной ткани на состояние центральной и периферической норадренергических и дофаминергической структур нервной системы организма;

2. Впервые проведено комплексное исследование морфо-функционального развития нейронов голубого пятна, краниального шейного симпатического ганглия, черной субстанции в условиях трансплантации эмбриональной ткани LC и SN в полость третьего желудочка головного мозга крыс;

3. Показан эффект присутствия и развития трансплантата locus coeruleus и substantia nigra на невроциты ГП, КШСГ, ЧС.

Практическое значение работы.

Полученные результаты имеют значение для понимания закономерностей функционирования центральной и периферической норадренергической и дофаминергической структур нервной системы организма. Данные о структурных и метаболических изменениях в невроцитах голубого пятна, симпатического ганглия, черной субстанции в условиях трансплантации по-новому освещают и подтверждают предположение об определенной зависимости морфо-функциональных характеристик вышеперечисленных структур от наличия, степени развития и функционирования трансплантата. Полученные результаты могут быть использованы в нейробиологических и клинических исследованиях, а также в курсах биологии, гистологии, иммунологии и физиологии биологических факультетов университетов, медицинских академий и институтов.

Апробация работы.

Результаты исследований доложены на российско-шведском симпозиуме «Новое в нейробиологии» в г. Москве — 1996 г., Конгрессе Ассоциации морфологов (АГЭ) в г. Твери — 1996 г., российско-швейцарском симпозиуме «Гипоксия в медицине» в г. Москве — 1996 г. и на совместной научной конференции кафедры биологии и гистологии лечебного факультета российского государственного медицинского университета — 1998 г.

На защиту выносятся следующие основные положения работы:

1. При трансплантации эмбриональных закладок как ЬС, так и БЫ в полость третьего желудочка головного мозга крыс воспроизводится режим генерации нейронов, характерный для нормального онтогенеза. Клетки трансплантатов характеризуются высоким уровнем дифференцировки и приобретают характерные черты ЬС и БЫ соответственно.

2. В ходе специфической дифференцировки нейроны пересаженной эмбриональной ткани ЬС и вЫ «функционально» интегрируют в ткань мозга крыс-реципиентов.

3. Присутствие трансплантатов ЬС и БЫ в полости третьего желудочка головного мозга крыс оказывает различное влияние на функциональное состояние собственных ГП, ЧС и КШСГ.

4. Присутствие трансплантатов ЬС и 8Ы по-разному влияет на ответы в поведенческих тестах крыс-реципиентов.

Публикации.

По материалам диссертации опубликовано семь работ, список которых приводится в конце автореферата.

Структура диссертации.

ВЫВОДЫ.

1. При трансплантации эмбриональных закладок как голубого пятна (locus eoeruleus), так и черной субстанции (substantia nigra) в полость третьего желудочка головного мозга интактных крыс воспроизводится генерация нейронов, характерная для нормального онтогенеза. Клетки трансплантатов характеризуются высоким уровнем дифференцировки и приобретают характерные черты голубого пятна и черной субстанции соответственно своим эмбриональным закладкам. Эти факты указывают на ведущее значение генетического контроля для таких составляющих онтогенеза как пролиферация и дифференцировка клеток.

2. В ходе специфической дифференцировки нейроны пересаженной эмбриональной ткани голубого пятна и черной субстанции «функционально» интегрируют в ткань мозга крыс-реципиентов.

3. Трансплантация эмбриональной нервной ткани как голубого пятна, так и черной субстанции в полость третьего желудочка головного мозга интактных крыс не приводит к гибели нервно-клеточных элементов собственных ядер голубого пятна и черной субстанции, а также краниального шейного симпатического ганглия, что указывает на отсутствие прямого воздействия трансплантации на вышеперечисленные структуры.

4. Присутствие трансплантатов голубого пятна и черной субстанции в полости третьего желудочка головного мозга интактных крыс оказывает различное влияние на функциональное состояние собственных ядер голубого пятна, черной субстанции и краниального шейного симпатического ганглия.

5. Изменения в нейроцитах голубого пятна, черной субстанции и краниального шейного симпатического ганглия в условиях трансплантации регистрируются на уровне транскрипции и проявляются в изменении матричной активности хроматина ядер.

6. Присутствие трансплантатов голубого пятна и черной субстанции оказывает различное влияние на динамическую активность животных. Продолжительность жизни животных, способность к репродукции, численность потомства, распределение полов в пометах и их дальнейшее развитие не зависит от присутствия трансплантатов.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Проведенный в настоящей работе анализ организации некоторых дофамини норадреналинсодержагцих структур дал возможность выявить ряд общих структурных и функциональных черт, характерных для дофамини норадреналинергических нейронных систем организма, а также установить некоторые специфические особенности каждой из них. Полученные в результате этого выводы могут быть использованы для рассмотрения общих вопросов интеграции в центральной нервной системе и механизмов контроля двигательных и вегетативных функцийтакое рассмотрение можно проводить на основе общих принципов структурной организации нервной системы, важнейшими из которых являются: принцип обратной связи, предполагающий наличие замкнутых нейронных системпринцип иерархической организации, предполагающий соподчинение нейронных систем по функциональным и филогенетическим признакампринцип соматотопической организации, предполагающий наличие соответствия места локализации нейрона в одной части мозга и место его окончания в другой части мозга. Полученные положительные результаты определяют новые перспективы в исследовании как фундаментальных проблем биологии, таких, как факторы дифференцировки и механизмы развития нервной ткани мозга, так и вопросов практической медицины, прежде всего, проблем восстановления нарушенных функций ЦНС.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Г. Г. Медицинская морфометрия. — М. — Медицина.-1990.
  2. Ю. И. Психофизическое значение активностицентральных и периферических нейронов в поведении. — М. — Наука. 1989.
  3. М. А., Полежаев JI. В. Трансплантация нервной тканимозга в головной мозг крысы. // Докл. АН СССР. — 1982. — Т. 263, N 2. С. 460−463.
  4. М. А. Полежаев JI. В. Трансплантация эмбриональнойзамороженной ткани мозга в головной мозг взрослых крыс, интактных и после гипоксии. // Докл. АН СССР. 1983. -Т. 269, N 5.-С. 1206−1209.
  5. М. А., Полежаев Л. В. Возбудимые клетки в культуреткани. Пущино. 1984. — С. 97−108.
  6. И.П. Нейрохимическая характеристика специфическихпатологических синдромов, возникающих в условиях стрессовых состояний. // Вестник АМН СССР. 1975. — № 8. — С. 34−43.
  7. Т. И., Голубева Е. Л., Судаков К. В. Гомеостатическиефункции locus coeruleus (синего пятна). — М. — 1980.
  8. А. Ю. Моноаминергические стуктуры мозга. — М. — Наука.- 1976.
  9. Г. А., Пирогов А. А. Нейробиологические основы высшейнервной деятельности. — Л. — Наука. — 1991.
  10. О. С. Развитие нервной ткани млекопитающих притрансплантации в мозг и переднюю камеру глаза: проблемы и перспективы. // Онтогенез. 1984. — Т. 15. — N 3. — с. 229−251.
  11. П. П., Дукельская Н. М. Крыса. — М. — Советская наука. —1955.
  12. Р. Образование нервных связей. М. — Мир. — 1972.
  13. Ю. Я. Структурные и метаболические проявленияфункций нейрона. М. — Наука. — 1974.
  14. В. Я., Кременовская С. И. Получение обобщенных критериев для оценки поведения крыс в условиях открытого поля. // Физиол. журн. 1990. — Т. 76. — № 4. — С. 553−556.
  15. Н. Д. Авторадиографический анализ синтеза нуклеиновыхкислот нервной ткани. -Л. —Наука. —1968.
  16. Е. А., Семенова Т. П., Гасанов Г. Г., Исмайлова X. Ю. и др.
  17. Влияние 6—оксидофамина на поведение крыс с различной устойчивостью к стрессорным воздействиям. // Журн. высш. нерв. деят. 1990. — Т. 40. — № 2. — С. 301−309.
  18. Е. В. Вычислительные методы анализа и распознаванияпатологических процессов. — Л. — Медицина. —1978. —С. 296.
  19. Ф. Г., Байрамова Ф. М., Ибрагимов Р. Ш. К анализуструктур «нейродинамических программ». // Физиол. журн. — 1991. Т. 77. — № 5. — С. 97−103.
  20. Т. А. Объекты биологии развития. — М. — Наука. — 1975.
  21. А. П., Пучков В. Ф., Баранов В. С., Самошина М. А., Чеботарь
  22. Н. А. Лабораторные млекопитающие. — М. — Наука. —1975.
  23. О. И., Терских В. В., Захаров А. Ф. Радиоавтография. —1. М. Высшая школа. — 1977.
  24. И. В., Лосева Е. В., Гуляева Н. В. Поведенческие, морфологические и биохимические корреляты раннего влияния нейротрансплантата на поврежденный мозг взрослых крыс. // Журн. высш. нерв. деят. 1988. — Т. 38. — № 5. — С.
  25. И. В., Жулин В. В. Восстановление поведенческих функций после трансплантации эмбрионального стриатума в поведенческую амигдалу мозга крыс. / / Физиол. журн. — 1994. — Т. 80 N4. С. 113−115.
  26. Ю. М. Нормальная и патологическая морфологиянейрона. М. — 1965.
  27. Я. М. Практикум по эндокринологии. Основные методикиэкспериментально—эндокринологических исследований. — МГУ. — 1968.
  28. О. Г., Козловский В. Л. «Структура двигательного поведения» лабораторных животных — новые возможности «открытого поля»// Физиол. журн. — 1992. — Т. 78. — № 1. — С. 120−123.
  29. Н. Н., Никулина Э. М., Попова Н. К. Участие дофаминастриатума и прилежащего ядра в формировании агрессивного и подчиненного поведения у мышей. // Журн. высш. нерв. деят. — 1988. Т. 38. — № 6. — С. 1168−1170.
  30. М. М. Мозг животных. — М. — Наука. — 1981.
  31. . И., Плечкова Е. К. Нервная клетка и нервное волокно.
  32. В кн.: Руководство по неврологии. — М. — Медгиз. — Т. 1. — Кн. 1. 1955.
  33. Г. Ф. Биометрия. — М. — Высшая школа. — 1990.
  34. . Гены. М. — Мир, 1987.
  35. В. А. Структурная организация и интеграция нисходящихнейронных путей головного и спинного мозга. — Киев. — Наук. Думка. 1983.
  36. К. К. Структурно—функциональные механизмы патологии и компенсаторно—восстановительных реакций. // Омск. гос. мед. ин—т. Омск. — 1994. — С. 39−42.
  37. Ю. А., Геладзе М. Г, Концепция иммунного барьерамозга. // Журн. невропатология и психиатрия. — 1988. — Т. 138. — В. 2. С. 3−7.
  38. С. Я. Развитие нейросекреторных нейронов супраоптического и паравентрикулярного ядер крыс в онтогенезе и при трансплантации эмбриональных закладок гипоталамуса в мозг взрослых животных. // Автореф. канд. дис. — М. — 2 МОЛГМИ. 1986.
  39. М. С. Гормональная регуляция в онтогенезе животных. —1. М. Наука. — 1978.
  40. А. Г., Зозуля Ю. А., Цымбалюк В. И. Влияние трансплантации
  41. ЭНТ и суспензии клеток ЭНТ на морфофункциональное состояние головного мозга после тяжелой черепно-мозговой травмы. // Макро- и микроуровни организации мозга. Мат. симп. — РАМН НИИ мозга. — М. — 1992. — С. 112.
  42. С. Н. Развивающийся мозг. — М. — Наука. — 1978.
  43. С. Н. Конструкция мозга. — М. — Наука. — 1981.
  44. Л. А. Теория адаптационно—трофического влияния нервнойсистемы. // Изб. труды. М-Л. — Изд-во АН СССР. — 1948. — Т. 2.- С. 455.
  45. В. А. Вопросы структурно—медиаторной организациитрансплантации и регенерации нервной системы. // Сб. научн. трудов. Л. — 1985.
  46. В. А., Арушанян Э. Б. Нигрострионигральная система. — М.- Наука. 1989.
  47. В. А., Гилерович Е. Г., Усова И. П. Морфологическаяхарактеристика нейронов голубого пятна при селективном химическом повреждении катехоламинергической системы мозга. // Арх. анат., гист. и эмбр. 1984. — № 3. — С. 14−22.
  48. В. П. Рабочее совещание по проблеме восстановленияфункций после повреждения мозга. // Журнал высш. неврн. деят. 1992. — т. 42, вып. 2. — С. 400−410.
  49. Л. В. Трансплантация участков головного мозга у амфибий и млекопитающих// Успехи современной биологии. — 1981. -Т. 92 N 3(6) — С. 440−445.
  50. Л. В., Александрова М. А., Витвицкий В. Н., Черкасова Л.
  51. В., Ярыгин В. Н. Трансплантация ткани мозга в биологии и медицине. // 1993, М., Наука, 239с.
  52. Л. В., Александрова М. А. Аллотрансплантация эмбриональной ткани мозга в головной мозг взрослых млекопитающих при гипоксической гипоксии. // Журн. невропатологии и психиатрии. 1983. — Т. 83. — № 7. — С. 990−997.
  53. Л. В., Александрова М. А. Трансплантация ткани мозга внорме и патологии. — М. — 1986.
  54. Э. Авторадиография. М. — Атомиздат. — 1972.
  55. С. В. Трансплантация ткани эмбрионального головногомозга. // Арх. патол. 1992. — Т. 54. — № 11. — С. 43−46.
  56. И. Г. Механизмы динамической локализации и компенсации функций центральной нервной системы. — Ереван. — 1986.
  57. И. М. Рефлексы головного мозга. — 1952. — М. — Изд—во1. АМН СССР. 230с.
  58. Я. Е. Размеры ядер и функциональное состояние клеток. — М.- Медицина. 1967. -267с.
  59. Н. М., Лущекина Е. А., Курбатова М. Б., Гуляева Н. В.,
  60. А. Б. Можно ли компенсировать функцию удаленного миндалевидного комплекса мозга путем трансплантации эмбриональной нервной ткани?// Журн. высш. нерв. деят. — 1989.- Т. 39. № 5. — С. 869−876.
  61. Р. М. Авторадиография синтеза белка как метод оценкиморфофункциональных изменений в структурах мозга. // Бюлл. эксп. биол. и мед. 1991. — № 9. — С. 321−323.
  62. Н. И., Чумасов Е. И. Изо- и аллотрансплантация нейронов спинномозговых узлов// Арх. анат., гистол. и эмбриол. — 1981. Т. 80 — N 5. — С. 67- 73.
  63. Л. В. Внутримозговые трансплантаты эмбриональнойнервной ткани вызывают восстановление ультраструктуры дистрофированных после гипоксии нейронов взрослых крыс. // Онтогенез. 1992. — Т. 23. — № 5. — С. 534−541.
  64. В. Г., Ракицкая В. В. Роль центральных моноаминергических структур в регуляции эндокринных функций. //В кн.: Управление деятельностью висцеральных систем. — Л. — 1983.
  65. В. С. Эволюция функции симпатических ганглиев вонтогенезе. Л. — Наука. — 1977.
  66. М., Раттай М., Раттай Й., Венцел П., Ныуласси Ч. Результаты клинической нейротрансплантации эмбриональной ткани при болезни Паркинсона. // Вопр. нейрохирургии, 1993, № 1, С. 15−16.
  67. В. Н. Динамика компенсаторных процессов в популяциисимпатических нейронов. //В кн.: Цитологические механизмы гистогенезов. М. — 1979. — С. 186−196.
  68. В. Н. Популяционный подход в исследовании колическтвенного и качественного аспекта нейротканевых отношений. // В кн.: Труды 2-го МОЛГМИ. Сер. биол. — М. -1979. — т. 126. — Вып. 2. — С. 5−4.
  69. К. Н. Цитологический анализ популяции растущих симпатических невроцитов // Автореферат канд. дис. — М. 1974.
  70. Н. Е., Ярыгин В. Н. Патологические и приспособительныеизменения нейронов. — М. — Медицина. — 1973.
  71. Abercrombie E.D., Jacobs B.L. Single—unit response of freely movingcats. 1 Acutely presented stressful and nonstressful stimuli.// Neurosci. 1987a. — V.7. — N9. — P.2837−2843.
  72. Abercrombie E.D., Jacobs B.L. Single-unit response of freely movingcats. 2. Adaptation to chronically presented stressful stimuli.// Neurosci. 1987b. — V.7. — N9. — P.2844−2848.
  73. Abercrombie E.D., Jacobs B.L. Microinjected clonidine inhibits noradrenergic neurons of the Locus coeruleus in freely mooving cats.// Neurosci. 1987c. — V.76. — N2. — P.203−208.
  74. Abrous N., Choulli K., Stinus L., Simon H., Le Moal M., Herman Y. P.
  75. Behavioral consequences of dopaminergic grafts implanted in neonatal rats. // Restor. Neurol, and Neurosci., 1990, V. 1, N2, p. 154.
  76. Abrous N. Yuy Y., Vigny A., Calas A., LeMoal M., Herman Y. P.
  77. Development of intracerebral dopaminergic grafts: A combined immunohistochemical and autoradiographic study of it’s time course and environmental influences. // Y. Comp. Neurol., 1988, V. 273, N1, p. 26−41.
  78. Allen G. S., Burns R., Tulipan N. B., Parker R. A. Adrenal medullarytransplantation to the caudate nucleus in Parkinson’s disease. Initial clinical results in 18 patients. // Arch. Neurol., 1989, V. 46, N5, p. 487−491.
  79. Annett L. E. et al. Survival of nigral grafts within the striatum of marmosets with 6-OHDA lesions depends critically on donor embryo age. // Cell Transplant. 1997 Nov- 6(6): 557−569.
  80. Apostolides C. et al. Glial cell line-derived neurotrophic factor improves intrastriatal graft survival of stored dopaminergic cells. // Neuroscience. 1998 Mar- 83(2): 363−372.
  81. Barinaga M. Unusual cells may help treat Parkinson’s disease. //
  82. Science. 1998 Feb 27- 279(5355): 1301. No abstract available.
  83. Bengzon J., Kokaia Z., Lindvall O. Specific functions of grafted locuscoeruleus neurons in model of epilepsy. // Exp-Neurol. — 1993 Jul. -V. 122 No 1. p. 143−154.
  84. Bernstein J.J., Tang Y. Viability and function of fetal cortex implanted into degenerating peripheral nerve of adalt rat.//Abstr.E.K. Firnstrom Symp. Transplantation in the mamalian CNS. Lund. — 1984. P.5.
  85. Bernstein-Goral H. et al. Spinal cord transplants support the regeneration of axotomized neurons after spinal cord lesions at birth: a quantitative double-labeling study. // Exp. Neurol. 1993 Sep- 123(1): 118−132.
  86. Bernstein—Goral H. et al. Regenerating and sprouting axons differ intheir requirements for growth after injury. // Exp Neurol. 1997 Nov- 148(1): 51−72.
  87. Bjonklund A. Neural transplantation — an experimental tool with clinic possibilities. // Trends Neurosci., 1991, V. 14, N8, p. 319−322.
  88. Bjorklund A., Lindvall O., Isacson O., Brundin P., Wictorin K., Strecker
  89. R. E., Clarke D., Dunnett S. B. Mechanism of actions of intracerebral neural implants: studies on nigral and striatal grafts to the lesioned striatum. // Trends Neurosci., 1987, 10, p. 509−516.
  90. L. F. // Appl.Neurophysiol. 1988. — Vol. 51, N 6. — p. 265−277.
  91. Brandis A., Nikkhah G., Jodicke A., Knappe U., Schonmayr R., Samii
  92. M., Walter G. E. Allogenic neuronal transplantation in a rat model of experimental P’s disease: rejection pattern and MHC expression. // Clin Newropathol., 1992, V. 11, N5, p. 278−279.
  93. Brera B., Lopez-Lozano J. J. Implants of fetal rabbit ventral mesencephalic neurons into the striatum of immonosuppressed 6-ODHA lesioned rats. // Restor. Neurol, and Neurosci., 1990, V. 1, N2, p. 152.
  94. Brooks D. J. PET and SPECT studies in Parkinson’s disease. // Baillieres Clin Neurol. 1997 Apr- 6(1): 69−87. Review.
  95. Brown N. Y., Dunnett S. B. Comparison of adrenal and fetal nigral grafts on drug-induced rotation in rats with 6-OHDA lesions. // Restor. Neurol, and Neurosci., 1990, V. 1, N2, p. 154.
  96. Bystron I. et al. Development of human fetal substantia nigra grafts in the brain of non—immunosuppressed rats. // Folia Neuropathol. 1997- 35(2): 87−93.
  97. Capozzo A. et al. Transplantation of mesencephalic cell suspension in dopamine—denervated striatum of the rat. II. Effects on corticostri-atal transmission. // Exp. Neurol. 1997 Jul- 146(1): 142−150.
  98. Champlain U. de, Ameungen M.R. van. Adrenergic mecha-nisms and the the aetiology of the hypertension. In: Central action of drugs in the blood pressure regulation. — London, Tonbridge, Pimon Medical. 1975.-p. 68−93.
  99. Charpentier B. Current problems in organ transplantation. // Biomed. and Pharmacother., 1992, 46, N 2/3, p. 53−55.
  100. Cherksey B. D. et al. Adrenal chromaffin cells on microcarriers exhibit enhanced long—term functional effects when implanted into the mammalian brain. // Neuroscience. 1996 Nov- 75(2): 657−664.
  101. Clough R. W. et al. Effects of intraventricular locus coeruleus transplants on seizure severity in genetically epilepsy—prone rats following depletion of brain norepinephrine. //J. Neural Transplant Plast. 1994 Jan- 5(1): 65−79.
  102. Costantini L. C. et al. Co—transplantation of fetal lateral ganglionic eminence and ventral mesencephalon can augment function and development of intrastriatal transplants. // Exp Neurol. 1997 May- 145(1): 214−227.
  103. Das G. D. Transplantation of embryonic neural tissue in the mammalian brain. In: Growth and differentiation of neuroblasts from various regios of the embrionic brain in the cerebellum of neonate rats. // T.I.T.J. Life.Sci. 1974. — V. 4. — p. 93−124.
  104. Das G. D., Hallas B. H., Das K.G. Transplantation of neural tissues in the brains of laboratory mammals: tecnical details and comments. // Experientia. 1979. — V. 35. — p. 143−153.
  105. Deacon T. et al. Histological evidence of fetal pig neural cell survival after transplantation into a patient with Parkinson’s disease. // Nat Med. 1997 Mar- 3(3): 350−353.
  106. Doering L., Levesque M., Aguayo A. Rat CNS precursor cells cultured in vivo survive and differentiate when transplanted into peripheral nerves.// Abstr.E.K. Firnstrom Symp. Transplantation in the mamalian CNS. Lund. 1984. — P.5.
  107. Doering L. C., Tokive M. A. Adrenal medulla and substantia nigra co—grafts in peripheral nerve: chromaffin cells survive for long time periods and prevent degeneration of nigral neurons. Brain Res., 1991, V. 551, NN1 2, p. 267−278.
  108. Dreyfus C.F., Friedman W.J., Markey K.A., Black I.B. Depalarising stimuli increase tyrosine hydroxylase in the mouse Locus Coeruleus in culture.//Brain Res. 1986. — n379. — P.216−222.
  109. Dunn-Meynell A., Levin B. Regenerative sprouting of catecholamin-ergic fibers into fetal grafts after medial forebrain bundle lesions. / / Restor. Neurol, and Neurosci., 1990, V. 1, N2, p. 136.
  110. Dunnet S. B. et al. Basic neural transplantation techniques. I. Dissociated cell suspension grafts of embryonic ventral mesencephalon in the adult rat brain. // Brain Res Brain Res Protoc. 1997 Feb- 1(1): 91−99.
  111. Dunnett S. B., Rogers D. C., Richards S. J. Nigrostriatal reconstruction after 6—OHDA lesions in rats: combination of dopamine—rich nigral grafts and nigrostriatal bridge grafts. // Restor. Neurol, and Neurosci., 1990, V. 1, N2, p. 133.
  112. Ermakova I. V., Loseva E. V., Valoscova V., Bures J. The effect of embryonal amygdala grafts on the impairment of spatial working memory elicited in rats by kainate-induced amygdaloid damage. // Brain Res. 1974. — Vol. 77 N 3. — p. 507−512.
  113. Fisher L. J. et al. Novel therapeutic directions for Parkinson’s disease. // Mol. Med. Today. 1995. — Jul. — 1(4). — p. 181−187.
  114. Foote S. L., Bloom F. E., Aston-Jones G. Nucleus locus coeruleus: new evidence of anatomical and physiological specifity.//Physiol. Rev. -1983. V.63. — N3. — P.844−914.
  115. Gancher S. et al. The effect of nigral implantation on sensitization to dopamine agonists in 6—hydroxydopamine—lesioned rats. // Neuroscience. 1997 Aug- 79(4): 963−972.
  116. Garsia-Hernandes F.- Pacheco-Cano M. T.- Drucker—Colin R. Reduction of motor impaiment by adrenal medulla transplants in aged rats. // Physiol-Behalv. 1993 Sep. — V. 54 No 3. — p. 589−598.
  117. Gates M. A. et al. Region—specific migration of embryonic glia grafted to the neonatal brain. // Neuroscience. 1998 Jun- 84(4): 1013−1023.
  118. Gimenez y Ribotta M. G. et al. Transplantation of embryonic noradrenergic neurons in two models of adult rat spinal cord injury: ultrastructural immunocytochemical study. // Brain Res. — 1996. -Jan. 29. — 707(2). — p. 245−255.
  119. Goto S. et al. GAB A receptor agonist promotes reformation of the striatonigral pathway by transplant derived from fetal striatal pri-mordia in the lesioned striatum. // Exp Neurol. 1997 Oct- 147(2): 503−509.
  120. Granholm A. C. et al. Synapsin I in intraocular hippocampal transplants during maturation and aging: effects of brainstem cografts. // Cell Transplant. 1995 Jan- 4(1): 3−12.
  121. Grigorjeva A. V., Yarigin V. N. The cytochemical study of rat sympathetic nerve cell chromatin in early postnatal onto—genesis. // Z.microsk.—anat. Forsch. Leipzig. -1982. — V. 96, N 2. — p. 188−200.
  122. Grofova I. The identification of stiatal and pallidal neurons projecting to substantia nigra. An experimental study by means of retrograde axonal transport of horseradish peroxidase. // Brain Res. — 1975 Vol. 91, No 2. — p. 286−291.
  123. Hallas B.H. Transplantation into the mamalian adult spinal cord. //Experientia. 1982. — V.38. — N6. — P. 699−701.
  124. Hancock M. B., Fougerousse C. L. Spinal projections from the nucleus locus coeruleus and nucleus cubcoeruleus in the cat and monkey as demonstrated by the retrograde transport of horseradish peroxidase. // Brain Res. Bull. 1976 — Vol. 1. — p. 229−234.
  125. Haque N. S. et al. Differential dissection of the rat E16 ventral mesencephalon and survival and reinnervation of the 6-OHDA-lesioned striatum by a subset of aldehyde dehydroge-nase-positive TH neurons. // Cell Transplant. 1997 May- 6(3): 239−248.
  126. Hokfelt T. Neuronal chatecholamine storage vesicles. In: Frontiers in catecholamine research. N.Y. 1973. — p. 439−446.
  127. Hokfelt T., Fuxe K., Goldstein M., Johansson O. Immuno-histiehem-ical evidence for the essistence of the adrenaline neurons in the rat brain // Brain Res. 1974-V. 66, N 2. — p. 235−251.
  128. Hudson J. L. et al. Target and neurotransmitter specificity of fetal central nervous system transplants: importance for functional reinnervation. // J. Neurosci. 1994 Jan- 14(1): 283−290.
  129. Iarygin V. N. et al. Effect of embryonal nerve tissue transplantation on the morpho—functional characteristics of beurins in the locus coeruleus. // Bull. Eksp. Biol. Med. 1997 Jul- 124(7): 106−108. Russian. No abstract available.
  130. Johnston R. E. et al. Intranigral grafts of fetal ventral mesencephalic tissue in adult 6—hydroxydopamine—lesioned rats can induce behavioral recovery. // Cell Transplant. 1997 May- 6(3): 267−276.
  131. Jones S. L., Gebhart G. F. Spinal pathways mediating tonic, coeruleospinal and raphespinal descending ingibition in the rat. // J.Neurophysiology. 1987. — V. 58. — N1, July. — P. 138.
  132. Kordower J. H. et al. Dopaminergic transplants in patients with Parkinson’s disease: neuroanatomical correlates of clinical recovery. // Exp Neurol. 1997. — Mar. — 144. — 1. — p. 41−46.
  133. Kordower J. H. et al. Fetal nigral grafts survive and mediate clinical benefit in a patient with Parkinson’s disease. // Mov. Disord. — 1998. May. — 13. — 3. — p. 383−393.
  134. Kordower J. H. et al. Neuropathology of fetal nigral grafts in patients with Parkinson’s disease. // Mov Disord. — 1998. — 13 Suppl 1. — 88−95.
  135. Kromer L. F., Bjorklund A., Stenevi U. Intercephalic implants: a technique for studying neuronal interactions// Science. 1979. — V. 204. — p. 1117−1119.
  136. Kuypers H. G. J., Catsman-Berrevoets C. E., Padt R. E. Retrograde axonal transport of fluorescent substances in the rat’s forebrain. // Neuroscience Lett. 1977 — Vol. 6, N 3. — P127−135.
  137. Kuypers H. G. J., Maysky V. A. Retrograde axonal transport of horseradish peroxidase from spinal cord to brain stem cell groups in the cat. // Neuroscience Lett. 1975. — Vol. 1, N 1.
  138. Kuypers H. G. J., Maysky V. A. Funicular trajectories of descending brain stem pathway in the cat. // Brain Res. — 1977. — Vol. 136, N 1. p. 9−14.
  139. Le Moal M., Somon H. Dopamine and bahaviour. // Psychopharmacology, 1990, 101, Suppl., p. 33.
  140. Lew I. Y., Matsumoto Y., Pearson I. et al. Localization and characterization of phenylethenolamine N—metyl transferase in the brain of various mammalian species. // Brain Res. — 1977. — V. 119. p. 199−210.
  141. Lewis B. Time—course variations in tyrosine hydroxylase activity in the locus coeruleus after electrolytic destruction of the nucli raphe dorsalis or raphe centralis. // Brain Res. 1976 — V. 103, N 2. — p. 339−349.
  142. Lin F.-C., Graybiel Ann M., Dunnett S. B., Baughman R. W. Intrastriatal grafts derived from fetal striatal primordia. // Reconstruction of cholinergic and dopaminergic systems. Y. Comp. Neurol., 1990, V. 295, N1, p. 1−14.
  143. Lindvall O., Bjorklund A. The glyoxylic and fluorescence histochem-ical method: a detailed account of the methodology for the vizualiza-tion of the central catecholamine neurons // Histochemistry. -1974a. V. 39, N. 21. — p. 97−127.
  144. Lindvall O., Bjorklund A. Transplantation strategies in the treatment of Parkinson’s disease: Experimental asis and clinical trials. // Actaneurol. Scand., 1989, Suppl, V. 80, N126, p. 197−210.
  145. Lindvall O., Bjorklund. A. The organization of the as—cending catecholamine neuron systems in the rat brain as reve-aled by the glyoxylic acid fluorescence method. // Acta Physiol. Scand. — 1974b, suppl. 412, p. 1−48.
  146. Loscher W. et al. Seizure suppression in kindling epilepsy by grafts of fetal GABAergic neurons in rat substantia nigra. // J. Neurosci. Res. 1998 Jan 15- 51(2): 196−209.
  147. Martin G. F., Humbertson A. O., Laxon J. C., Panneton W. M. Dorsolateral pontospinal systems. Possible routs for catecho-lamine modulation of nociception. // Brain Res. — 1979. Vol. 163, N 2. — p. 333−338.
  148. Meloni K., Gale K. Evidence for pharmacological feedback regulation of dopamine metabolism in fetal substantia nigra transplants. // Restor. Neurol, and Neurosci., 1990, V. 1, N2, p. 153.
  149. Mendez I. et al. Reconstruction of the nigrostriatal pathway by simultaneous intrastriatal and intranigral dopaminergic transplants. //J Neurosci. 1996 Nov 15- 16(22): 7216−7227.
  150. Mendez I. et al. Reconstruction of the striato—nigro—striatal circuitry by simultaneous double dopaminergic grafts: a tracer study using fluorogold and horseradish peroxidase. // Brain Res. 1997. — Dec. — 5. — 778(1). — p. 194−205.
  151. Misra B. K. Trends in experimental neural transplantation. // Curr. Sci (india), 1992, V. 63, N4, p. 163−165.
  152. Molgard K., Lundberg J. J., Beeb B. K., Bjorklund A., Stenevi U. The intracerebrally cultured «microbrain»: a new tool in developmental neurobiology. // Neurosci.Lett. 1978. — V. 8, N 4. — p. 295−301.
  153. Montoya C. P., Dunnett S. B., Mayer E. The effects of substantia nigra or neostrial grafts in the restoration of skilled forelimb use in the rat. // Restor. Neurol, and Neurosci., 1990, V. 1, N2, p. 107.
  154. Moore G. P. M. RNA-Synthesis in fixed cells by endogenous RNA—polymerases. // Exp. Cell Res. 1978. — Vol. Ill — p. 317−326.
  155. Moore R. Y., Bhatnager R. K., Heller A. Anatomical studies of a nigro-neostriatal projection in the cat. // Brain Res., 1971, v30, N1, p. 119−135- V. 38, p. 725−743.
  156. Morilak D. A., Fornal C. A., Jacobs B. L. Effects of physiological manipulations on Locus Coeruleus neuronal activity in freely moving cats. 1. Termoregulatory challenge. // Brain Res. 1987a. — V. 422. — P. 17−23.
  157. Morilak D.A., Fornal C.A., Jacobs B.L. Effects of physiological manipulations on Locus Coeruleus neuronal activity in freely moving cats.2.Cardiovascular challenge. // Brain Res. 1987b. — V. 422. — P. 24−31.
  158. Morilak D.A., Fornal C.A., Jacobs B.L. Effects of physiological manipulations on Locus Coeruleus neuronal activity in freely moving cats 3. Glucoregulatory challengee. //Brain Res. 1987d. — V. 422. — P. 32−39.
  159. Morrisey T. K., Seiger A., Holets V. R. Effect of grafting order on innervation of spinal cord transplants by grafted locus coeruleus neurons in oculo. // Exp-Neurol. 1993 Jul. — V. 122 No 1. — p. 65−72.
  160. Murata Y., Masuko S. et al. Specific innervation of the rat thalamus by grafted noradrenergic locus coeruleus neurons. //J. Hirnf orsch. 1996- 37(1): 15−24.
  161. Nakamura S., Sakaguch T., Shirokow T. et al. Changes in the electrical-activity of Locus Coeruleus neurons in pregnant rats. // Neurosci. L. 1988. — V. 85. — N. 3. — P. 329−332.
  162. Nakao N. et al. Intrastriatal mesencephalic grafts affect neuronal activity in basal ganglia nuclei and their target structures in a rat model of Parkinson’s disease. //J. Neurosci. 1998 Mar 1- 18(5): 1806−1817.
  163. Nauta H. G. W., Pritz M. B., Lasek R. J. Afferents to the rat caudop-utamen studied with horseradish peroxidase. An eva—luation of a retrograde neuralanatomical research method. // Brains Res. 1974 — Vol. 67, N2. — p. 219−238.
  164. Nikkhah G., Bentlage C., Cunningham M. G., Bjorklund A. Intranigral fetal dopamine grafts induce behavioral compensation in the rat Parkinson model. // J.—Neurosci. — 1994 Jun. — V. 14 No 6. — p. 3449−3461.
  165. Nishino H., Hashitani T., Ishida J., Furuyama F., Isobe J., Kumazaki M., Satoh H. Transplantation of rat locus coeruleus (LC) noradrenergic (NAergic) neurons in dopamine denervated coudate. // Neurosci. Res., 1989, Suppl. N9, p. 48.
  166. Nishizuda M., Arai Y. Effects of nerve growth factor on development of dopamine neurons in culture or transplantation into the third or lateral ventricle. Neusci. Res., 1989, Suppl. N9, p. 55.
  167. Nornes H., Bjorklund A., Stenevi U. Reinnervation of the denervated adult spinal cord of rat by intraspinal transplants of embryonic brain stem neurons. //Cell and Tissue Res. 1983. — V. 230. — N1. — P. 15−35.
  168. Nornes H. O., Buchanan Y., Bjorklund A. Noradrenaline —containing transplants in the adult spinal cord of mammals. Transplant, into Mammal. // CNS., Amsterdam, 1988, p. 181−186.
  169. Nygren L.—G., Olson L. A new major projection from locus coeruleus: the main sourse of noradrenergic nerve terminals in the ventral and dorsal columns of the spinal cord. // Brain Res. 1977. — Vol. 132, N 1. — p. 85−93.
  170. Olson L., Seiger A. Early prenatal ontogeny of central aminoamine neurons in the rat: fluorescence histochemical ob—servations // Anat. Entwickl. Gesch. 1972. — Vol. 137, N 3. — p. 301−316.
  171. Olsson M. et al. Extensive migration and target innervation by striatal precursors after grafting into the neonatal striatum. // Neuroscience. 1997 Jul- 79(1): 57−78.
  172. Orsal D. et al. Can transplantation of neurons facilitate motor recovery in paraplegics? Study of an animal model// C. R. Seances. Soc. Biol. Fil. 1997. — 191(5−6). — p. .669−693.
  173. Pellegrino L. J., Pellegrino A. S., Cushman A. J. A Stereotaxic Atlas of the Rat Brain. — Plenum Press, N. Y., London, 1981.
  174. Perlow M. J., Freed M. J., Hoffer B. J., Seiger A., Olson L., Wyatt R. J. Brain grafts reduce motor abnormalities produced by destruction of nigrostriatal dopamine system. // Science. 1979. — V. 204, N 4393.- p. 643−647.
  175. Pickel V. M., Segal M., Bloom F. E. An autoradiographic study of the efferent pathways of the nucleous locus coeruleus. // J. Comp. Neurol. 1974. — Vol. 155, N 1. — p. 15−42.
  176. Reiner P. J., Perlow M. J., Guth L. Development of embryonic spinal cord transplants in the rat. //Develop. Brain Res. — 1983. — V. 10. — P. 201−219.
  177. Reiner P. S. Correlational analysis of central noradrenergic neuronal activity and sympathetic tone in behaving cats. // Brain Res. 1986.- N378. P. 86−96.
  178. Renner Y. Neglected aspects of exploratory and investigatory behavior. // Psychobiology, 1990, V. 18, N1, p. 16−22.
  179. Ridley R. M., Baker H. F. Can fetal neural transplants restore function in monkeys with lesion—induced behavioural deficits? Trends Neurosci, 1991, V. 14, N8, p. 366−370.
  180. Rinvik E. Demonstration of nigrothalamic connections in the cat by retrograde axonal transport of horseradish peroxidase. // Ibid. -1975 Vol. 90, N 2. — p. 313−318.
  181. Rogers D. C, Dunnett S. B. Relationship between the size and position of nigra grafts in the neonatal brain and protection from adult 6-OHDA lessons. // Restor. Neurol, and Neurosci., 1990, V. 1, N2, p. 154.
  182. Rosenblad C. et al. Glial cell line—derived neurotrophic factor increases survival, growth and function of intrastriatal fetal nigral dopaminergic grafts. // Neuroscience. 1996 Dec- 75(4): 979−985.
  183. Rosenstein J. M., Brightman M. W. Anomalous migration of central nervous tissue to transplated autonomic ganglia. // J. Neurocytol. — 1981. V. 10, N 3. — p. 387−409.
  184. Rosenstein J. M., Brightman M. W. Intact cerebral ventricle as a site for tissue transplantation. // Nature. 1978. — V. 276, N 5683. — p. 83−85.
  185. Rozas G. et al. Drug—free evaluation of rat models of parkinsonism and nigral grafts using a new automated rotarod test. / / Brain Res. 1997 Feb 28- 749(2): 188−199.
  186. Sable V. et al. Fetal dopaminergic neurons transplanted to the normal striatum of neonatal or adult rats and to the denervated striatum of adult rats. // J. Neural Transplant Plast. 1997 Mar- 6(2): 73−81.
  187. Sagen J., Wang H., Tresco P. A., Aebisher P. Transplants of immunologically isolated xenogeneic chromaffin cells provi—de a long—term sours of pain-reducing neuroactive substan-ces. // J—Neurosci. — 1993 Jun. V. 13 No 6. — p. 2415−2423.
  188. Sakai K., Touret M., Salvert D. et al. Afferent projec—tions to the cat locus coeruleus as visualized by the horsera—dish peroxidase technique// Brain Res. 1977, V. 118. — p. 21−41.
  189. Sanberg P. R. et al. Testis—derived Sertoli cells have a trophic effect on dopamine neurons and alleviate hemiparkinsonism in rats. / / Nat. Med. 1997 Oct- 3(10): 1129−1132.
  190. Schwarz S. C. et al. Effects of graft pooling of foetal rat and mouse tissue and immunosuppression in the 6-hydroxydopamine rat model of Parkinson’s disease. // Exp. Brain Res. 1997 Jun- 115(1): 71−82.
  191. Segal S., Seigal T, Altrag H. et al. Fetal bone grafts do not elicit allograft rejection because of protecting anti—la antibodies. // Transplantation. 1979. — V. 28. — N 1. — p. 57−60.
  192. Shetty A. K. et al. Development of fetal hippocampal grafts in intact and lesioned hippocampus. // Prog Neurobiol. 1996 Dec- 50(5~6): 597−653. Review.
  193. Shimizu N, Morikawa N. // Histochemical studu of monoa—mine oxidase in the develping rat brain. Nature. — 1959. — Vol. 184. — N 4686.-p. 650−651.
  194. Shinoda M. et al. Minor immunoreactivity in GDNF-, BDNF-, or NT-3-treated substantia nigra allografts. // J. Neural Transplant Plast. 1997 Mar- 6(2): 83−96.
  195. Sinclair S. R. et al. GDNF enhances dopaminergic cell survival and fibre outgrowth in embryonic nigral grafts. // Neuroreport. 1996 Nov 4- 7(15−17): 2547−2552.
  196. Soares H, Mcintosh T. Fetal CNS transplants following traumatic brain injury. // Restor. Neurol, and Neurosci., 1990, V. 1, N2, p. 139.
  197. Srivastava N. et al. Collateral sprouting of central noradrenergic neurons during aging: histochemical and neurochemical studies in intraocular triple transplants. // Exp. Neurol. 1997. — Jun. — 145 (2 Pt 1). — p. 524−535.
  198. Srivastava N. et al. Effects of ethanol on development of locus coeruleus brain stem transplants in oculo. // Exp. Neurol. 1998 Jan- 149(1): 139−150.
  199. Stoynev A. G., Penev P. D., Ikonomov O. S. A reliable tech—nique for middline stereotaxic cannulation of the third vent—ricle in the rat. / / Acta physiol. et pharmacol.bulg. 1991. — V. 17, N 2−3. — p. 135−138.
  200. Strecker R. E., Miao R., Loring Y. F. Survival and function of aggregate cultures of rat fetal dopamine neurons grafted in a rat model of Parkinson’s disease. // Exp. Brain Res., 1989, V. 76, N2, p. 315−322.
  201. Strecker R. E., Miao R., Spence M. S., Spector D. H., Boss B. D. Transplantation and function of proliferated fetal pig dopamine (DA) neurons in the parkinsonian rat model. / / Restor. Neurol, and Neurosci., 1990, V. 1, N2, p. 157.
  202. Stromberg I. et al. Re—initiated growth from mature ventral mesencephalon: an in oculo transplant study of nigrostriatal co—grafts. // Exp/ Brain Res. 1994- 101(1): 73−85.
  203. Svanidze I. K. et al. The differentiation of locus coeruleus neurons after their allotransplantation into the preliminarily denervated hippocampus of white rats. // Morfologiia. 1997. — 111. — 2. — p. 35−39.
  204. Sweeney Y. CNS transplantation: a treatment for P’s disease? // Cleveland Clin Y. Med., 1989, V. 56, N3, p. 287−289.
  205. Takeuchi Y., Sawada T., Blunts I. et al. // Brain Res. 1992-Vol. 592, N 1 — 2 -p. 129−134.
  206. Tandon P. N. Neural transplantation: pronuses and problems. // Proc. Indian Nat. Sci. Acad. B. 1992, V. 58, N1, p. 1−16.
  207. Thahau A. M., Jurd R.D. Maturation of transplantation an-tigens in Ambyostoma mexicanum. // Develop. Compar. Immunol. 1983. — V. 7, N 1. — p. 89−98.
  208. Tompson W. G. Succesful brain grafting. // N.Y. Med. J. 1890. — p. 701−702.
  209. Thrivikraman K.V., Carlson D.E., Gann D.S. Locus coeruleus monoaminergic activity and plasma corticotropin after hemorrhage in cats. //Amer.J.Physiol. 1988(a). — V. 254. — N2. — P. 289−295.
  210. Thrivikraman K.V., Carlson D.E., Gann D.S. Noradrenergic turnover increases in Locus coeruleus after hemorrage in cats.//Amer. J.Physiol. 1988(b). — V. 254. — N2. — P. 296−301.
  211. Turner D. A. Basic mechanisms and clinical applications of neural tissue transplants. // J. Clin. Neurosci. 1994. — V. 1 N 3. — p. 212.
  212. Ungerstedt U. Stereotaxic mapping of the monoamine path—ways in the rat brain. // Acta Physiol.scand. 1971, suppl. 367. — p. 1- 47.
  213. Van der Kooy D. The organization of the thalamic, nigral and raphe cells projecting to the medial vs lateral caudate-putamen in rat. A fluorescent retrograde double labelling study. // Brain Res. — 1979 — Vol. 169, N 2. p. 381−387.
  214. Veening J. G., Cornelissen F. M., Lieven P. I. J. M. The topical organization of the afferents to the caudatoputamen of the rat. A horseradish peroxidase study. // Neuroscience. 1980—Vol. 5, N 7. — p. 1253−1268.
  215. Widner H., Rehncrona S. Transplantation and surgical treatment of parkinsonian syndromes. // Curr.Opin.NeuroLNeuro—surg. — 1993. — Jun. V. 6 No 3. — p. 344−349.
  216. Yakenchi Y., Sawada T, Blunt S. Transplantation of embrionic mesencephalic and medullary raphe neurons to the neostriatum of rats with unilateral 6—hydroxydopamine lesions. // Brain Res., 1992, V. 592, N 1−2, p. 129−134.
  217. Yakovleff A. et al. Fictive motor activities in adult chronic spinal rats transplanted with embryonic brainstem neurons. // Exp. Brain Res. 1995- 106(1): 69−78.
  218. Yurek D. M. et al. Optimal effectiveness of BDNF for fetal nigral transplants coincides with the ontogenic appearance of BDNF in the striatum. // J. Neurosci. 1998 Aug 1- 18(15): 6040−6047.
  219. Yurek D. M. Intranigral transplants of fetal ventral mesencephalic tissue attenuate Dl—agonist—induced rotational behavior. // Exp Neurol. 1997 Jan- 143(1): 1−9.
  220. Zhou Feng C., Buchwald Nathanial. Connectivities of the striatal grafts in adult rat brain: a rich afference and scant striatonigral efference. // Brain Res, 1989, V. 504, N1, p. 15−30.
  221. Zimmer J., Lawrence J., Raisman C. Ultrastructural ana—lysis of the interface between host rat brain and implants of either enbrionic CNS tissue or adult superior cervical ganglia. // Neurosci. Lett. -1980. Suppl. 5. — p. 75.
  222. Zimmer J., Sunde N., Sorensen T., Moller A. Hippocampal transplants: intrinsic organization and the afferent and efferent connections with the host brain.//Abstr.E.K. Firnstrom Symp. Transplantation in the mamalian CNS. Lund. 1984. — P.6.
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?