Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Неинвазивный метод (конденсат выдыхаемого воздуха) в диагностических и лечебных программах при заболеваниях органов дыхания

Диссертация: Неинвазивный метод (конденсат выдыхаемого воздуха) в диагностических и лечебных программах при заболеваниях органов дыхания
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Основные положения диссертации доложены и обсуждены на 12, 14 и 15 Национальных конгрессах по болезням органов дыхания (Москва, 2002, 2004, 2005) — 13 Национальном конгрессе по болезням органов дыхания (Санкт-Петербург, 2003) — на 12, 13, 14 и 15 конгрессах Европейского Респираторного общества (Стокгольм, 2002; Вена, 2003; Глазго,' 2004; Копенгаген, 2005) — на 45, 46 и 47 конгрессах Германского… Читать ещё >

Содержание

  • Список принятых сокращений
  • Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Сбор КВВ
    • 1. 2. Легочное влаговыделение
    • 1. 3. Соединения, присутствующие в КВВ
    • 1. 4. рН КВВ
    • 1. 5. Электролиты в КВВ
    • 1. 6. Пероксид водорода в КВВ
    • 1. 7. Другие вещества, присутствующие в КВВ
    • 1. 8. Протеолитическая активность КВВ

Неинвазивный метод (конденсат выдыхаемого воздуха) в диагностических и лечебных программах при заболеваниях органов дыхания (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы.

Болезни органов дыхания занимают 1-е место в структуре общей заболеваемости и 4-е место в структуре смертности населения Российской Федерации, что определяет их высокое социальное бремя [86]. Среди детей и подростков наблюдается непрерывный рост показателей распространенности болезней лёгких, что в ближайшие годы может привести к увеличению числа взрослых больных хронической лёгочной патологией. Согласно прогнозу ВОЗ, до 2020 года ожидается дальнейший рост числа больных хронической обструктивной болезнью лёгких (ХОБЛ) и бронхиальной астмой [88, 281]. Недостаток доступных неинвазивных методов исследования приводит к запоздалой диагностике, несвоевременному лечению и развитию осложнений у пациентов с заболеваниями органов дыхания.

Традиционными методами изучения степени воспаления в трахеоброихиальной системе являются оценка обычной и индуцированной мокроты, бронхоальвеолярного лаважа (БАЛ) и бронхобиопий [240, 333]. Однако получение БАЛ и бронхобиоптатов являются инвазивными травматичными методами, вследствие чего не могут проводиться повторно через короткий промежуток времени, а также у тяжёлых больных, детей и в амбулаторной практике. Индуцирование мокроты ингаляциями гипертонического раствора хлорида натрия может влиять на состав получаемых образцов и вызывать бронхоконстрикцию [108, 286].

Этим можно объяснить растущий интерес к анализу конденсата выдыхаемого воздуха (КВВ) — простому неинвазивному методу оценки степени воспаления дыхательных путей, способствующему дифференциальной диагностике заболеваний органов дыхания и оценке эффективности проводимого лечения. В настоящее время исследование КВВ является одним из наиболее перспективных направлений в респираторной медицине и активно внедряется в клиническую практику.

Ведущим патогенетическим механизмом развития и прогрессирования значительного числа болезней лёгких является воспаление дыхательных путей, которое сопровождается дисбалансом в системах оксиданты-антиоксиданты и протеолиз-антипротеолиз, а также высвобождением различных биомаркеров [124, 331]. При этом изменяется состав гликокаликса эпителия бронхов, содержащего в своем составе более 200 летучих и нелетучих биологически активных веществ [282]. Большая часть этих соединений может быть использована в качестве биомаркеров различных воспалительных заболеваний органов дыхания. Качественные и количественные характеристики этих соединений отражают состояние эпителия дыхательных путей.

В настоящее время наиболее часто используемыми показателями активности воспалительного процесса в бронхиальном дереве при болезнях лёгких являются уровень рН и концентрация пероксида водорода в КВВ [219, 271]. Методы определения пероксида водорода постоянно совершенствуются, что связано с внедрением в практику более селективных и чувствительных методов, в частности с использованием биосенсоров [126]. Исследованию электролитного состава КВВ при различных заболеваниях органов дыхания посвящено значительно меньше работ, и полученные результаты носят несистемный характер и во многом противоречивы [28, 35, 204, 364]. В доступной нам литературе отсутствуют публикации, посвященные исследованию протеолитической активности КВВ. Это связано с очень низким содержанием протеолитических ферментов в выдыхаемом конденсате и отсутствием высокочувствительных методов определения их концентрации.

Цель исследования:

Провести комплексное изучение КВВ у пациентов с заболеваниями органов дыхания, разработать критерии дифференциальной диагностики острого и хронического воспаления дыхательных путей, и оценить эффективность проводимого лечения.

Задачи исследования:

1. Оценить влаговыделительную функцию лёгких при исследовании КВВ у здоровых субъектов и пациентов с заболеваниями органов дыхания в зависимости от фазы течения заболевания и проводимого лечения.

2. Определить уровень рН КВВ в норме и при патологии лёгких и его взаимосвязь с клинико-функциональными параметрами и другими показателями конденсата при остром и хроническом воспалении дыхательных путей.

3. Определить концентрацию пероксида водорода в КВВ для оценки активности воспаления при бронхиальной астме, ХОБЛ, бронхоэктазах и пневмонии.

4. Исследовать содержание натрия, калия и кальция в КВВ, изучить взаимосвязь их концентрации с клинико-функциональными показателями для оценки метаболической функции лёгких и участия электролитов в патогенезе различных болезней органов дыхания.

5. Определить содержание нейтрофильных протеолитических ферментов в КВВ у здоровых добровольцев, курильщиков без патологии лёгких и пациентов с различными заболеваниями органов дыхания, и оценить их роль в патогенезе лёгочной патологии.

6. На основании анализа КВВ разработать дифференциально-диагностические критерии бронхиальной астмы и ХОБЛ.

7. Изучить метаболическую и влаговыделительную функцию лёгких у здоровых добровольцев при условиях моделирования невесомости методом антиортостатической гипокинезии.

Научная новизна: Впервые:

— Проведена комплексная многосторонняя оценка количественного и качественного состава КВВ в норме и при различных заболеваниях лёгких.

— При помощи исследования КВВ показано, что острое воспаление в лёгких характеризуется повышением влаговыделительной и метаболической функции легких по сравнению с хроническими воспалительными заболеваниями органов дыхания.

— Использование электрохимического датчика на основе берлинской лазури в проточно-инжекционной системе позволяет проводить селективный, высокочувствительный анализ пероксида водорода в КВВ по сравнению с другими существующими электрохимическими и фотометрическими методами.

— Исследовано содержание натрия, калия и кальция в КВВ при хронических воспалительных заболеваниях органов дыхания и при раке легкого, и установлена взаимосвязь их концентрации с уровнем рН КВВ, позволившая разработать способ прогнозирования течения этих заболеваний.

— Показано, что активность нейтрофильной эластазы, протеиназы 3 и катепсина G в КВВ у здоровых некурящих людей выше, чем при эмфизематозном типе ХОБЛ, муковисцидозе и идиопатическом фиброзирующем альвеолите (ИФА), и ниже, чем у курильщиков и при бронхитическом типе ХОБЛ. Это позволяет проведение ранней диагностики эмфиземы лёгких у курильщиков и ХОБЛ, а также дифференциальной диагностики бронхиальной астмы и различных вариантов ХОБЛ.

— Показано, что уровень рН, концентрация пероксида водорода, содержание основных электролитов организма и активность нейтрофильных протеолитических ферментов в КВВ различаются при острой и хронической патологии органов дыхания, а также при различных вариантах ХОБЛ, что служит критерием дифференциальной диагностики болезней лёгких.

— При исследовании КВВ показано, что влаговыделительная и метаболическая функции лёгких, а также углеводный обмен у здоровых добровольцев в условиях моделирования космического полета не нарушаются, что свидетельствует о сохранении адаптивных способностей лёгких в условиях невесомости.

Практическая значимость:

Определение уровня рН КВВ — простой неинвазивный метод оценки степени выраженности воспаления в дыхательных путях при ¦ острой и хронической патологии органов дыхания, который также может использоваться при оценке эффективности проводимой терапии.

Определение концентрации пероксида водорода в КВВ селективным высокочувствительным сенсорным методом с помощью отечественного прибора с использованием берлинской лазури может быть использовано при оценке активности воспаления дыхательных путей и эффективности противовоспалительного лечения.

Исследование электролитного состава КВВ с одновременной оценкой уровня рН конденсата дает возможность прогноза течения хронических обструктивных заболеваний лёгких и рака легкого.

Количественное и качественное определение протеолитических ферментов в КВВ следует использовать при ранней диагностике эмфиземы легких у курильщиков, а также для дифференциальной диагностики бронхиальной астмы и различных вариантов ХОБЛ.

Комплексное исследование КВВ можно использовать для дифференциальной диагностики бронхиальной астмы и ХОБЛ. Бронхиальная астма характеризуется сочетанием низкого уровня рН с высокой концентрацией пероксида водорода, а бронхитический тип ХОБЛсочетанием выраженных электролитных расстройств с повышением протеолитической активности КВВ.

Исследование состава и объёма КВВ необходимо при комплексном обследовании будущих космонавтов для оценки состояния дыхательной системы, а также для контроля компенсации углеводного обмена с целью предотвращения возможных патологических влияний на их организм в условиях профессиональной деятельности.

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Уровень рН и концентрация пероксида водорода в КВВ являются маркерами активности воспалительного процесса и нарушения кислотно-щёлочного равновесия при пневмонии, обострении бронхиальной астмы и ХОБЛ, а также при ИФА. Эти маркеры используются для оценки тяжести течения этих заболеваний и эффективности проводимого лечения.

2. Лёгочное влаговыделение при болезнях органов дыхания повышается, но не связано с клиническим течением и проводимой терапией этих заболеваний.'Взаимосвязь между объёмом, уровнем рН и содержанием электролитов в КВВ уточняет отдельные звенья патогенеза болезней органов дыхания.

3. У здоровых субъектов протеолитическая активность в КВВ отражает защитные механизмы дыхательных путей при воздействии факторов окружающей среды.

4. Высокая активность нейтрофильных протеолитических ферментов в КВВ у больных с бронхитическим типомХОБЛ и у молодых курильщиков подтверждает определяющую роль нейтрофилов в патогенезе ХОБЛ и при прогрессировании болезней лёгких, связанных с табакокурением. С.

Апробация работы и внедрение результатов исследований:

Основные положения диссертации доложены и обсуждены на 12, 14 и 15 Национальных конгрессах по болезням органов дыхания (Москва, 2002, 2004, 2005) — 13 Национальном конгрессе по болезням органов дыхания (Санкт-Петербург, 2003) — на 12, 13, 14 и 15 конгрессах Европейского Респираторного общества (Стокгольм, 2002; Вена, 2003; Глазго,' 2004; Копенгаген, 2005) — на 45, 46 и 47 конгрессах Германского общества пульмонологов (Мюнхен, 2003; Франкфурт-на-Майне, 2004; Берлин, 2005) — на 3 Всероссийской научно-практической конференции «Функциональная морфология биологических жидкостей» (Москва, 2004) — на совместных научных конференциях ФГУ НИИ пульмонологии Росздрава и МГУ им. М. В. Ломоносова (Москва, 2004, 2005) — совместном заседании Ученого совета ФГУ НИИ пульмонологии Росздрава и кафедры госпитальной терапии педиатрического факультета ГОУ ВПО РГМУ Росздрава (Москва, 2005).

Исследование КВВ внедрено и используется в клинической практике пульмонологического и аллергологического отделений городской клинической больницы № 57 Москвы, терапевтического отделения № 2 стационара ФГУ Больница с поликлиникой Управления делами Президента РФ.

Материалы исследования включены в лекционный курс на кафедре пульмонологии ФУВ ГОУ ВПО РГМУ Росздрава.

Подана заявка на получение патента РФ на изобретение «Способ прогнозирования течения бронхолегочных заболеваний и рака легкого», с приоритетом от 13.07.2005., № 2 005 121 996. (Соавт.: Григорьев А. И., Баранов В. М., Чучалин А. Г., Ничипорук И.А.). Получено положительное решение формальной экспертизы от 23.08.2005.

Публикации:

По теме диссертации опубликовано 27 печатных работ.

179 ВЫВОДЫ.

1. Комплексное исследование КВВ — неинвазивный метод, позволяющий оценить состояние респираторной системы при воспалительных заболеваниях легких.

2. Уровень рН КВВ у курильщиков и больных с различными заболеваниями легких ниже, чем у здоровых людей, и коррелирует с клиническим течением пневмонии, ИФА, бронхиальной астмы. При внебольничной пневмонии и обострении бронхиальной астмы рН КВВ имеет существенно низкие значения, при лечении его уровень достоверно увеличивается, что указывает на уменьшение активности воспаления в дыхательных путях, однако к моменту клинико-рентгснологического выздоровления пациентов не достигает значений в группе здорового контроля.

3. Объем КВВ, собранный за 10 минут, у пациентов с воспалительными заболеваниями органов дыхания больше, чем у здоровых субъектов, что указывает на повышение влаговыделительной функции при патологии легких. Не обнаружено зависимости объема КВВ от фазы течения болезней органов дыхания и проводимого лечения.

4. Электролитный дисбаланс в виде повышенного выделения легкими натрия и калия, и пониженного выделения кальция, а также наличие корреляционной зависимости между концентрациями этих элементов в КВВ отражает нарушение функции эпителия, участвующего в продукции секрета. Отсутствие достоверных различий в концентрациях электролитов в КВВ у больных муковисцидозом является следствием блокирования эпителия бронхов большим объемом вязкой мокроты в дыхательных путях.

5. Концентрация пероксида водорода в КВВ при бронхиальной астме, ХОБЛ, пневмонии и бронхоэктзах достоверно повышена по сравнению со здоровыми некурящими и курильщиками, что указывает на высокую степень активности воспаления и повышение оксидативных процессов в дыхательных путях.

6. Высокая активность нейтрофильной эластазы, протеиназы 3 и катепсина G в КВВ выявлена у молодых курильщиков и пациентов с бронхитическим типом ХОБЛ, что свидетельствует о выраженности местного воспаления в бронхиальном дереве.

7. Изменения уровня рН, электролитного состава и пероксида водорода в КВВ отражают степень выраженности воспаления дыхательных путей, являясь одновременно дифференциально-диагностическими признаками при разных видах патологии легких.

8. Дифференциально-диагностические признаки между бронхиальной астмой и ХОБЛ при исследовании КВВ заключаются в том, что при ХОБЛ возникают грубые изменения электролитного баланса и имеет место высокая активность протеиназ (особенно при бронхитическом варианте), в то время как при бронхиальной астме выявлено сочетание низкого уровня рИ с высокой концентрацией пероксида водорода.

9. Изучение уровня рН, объема и ионного состава КВВ при моделировании факторов космического полета подтвердило, что четких признаков нарушения метаболической и влаговыделительной функции легких, углеводного обмена, а также признаков сердечно-сосудистой недостаточности у здоровых добровольцев в эксперименте не выявлено.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ.

1. Определение уровня рН и концентрации пероксида водорода в КВВ высокочувствительным сенсорным методом с помощью отечественного прибора с использованием Берлинской лазури может быть использовано для оценки выраженности воспаления дыхательных путей и эффективности проводимого лечения различных заболеваний органов дыхания.

2. Исследование электролитного состава КВВ с одновременной оценкой уровня рН конденсата позволяет прогнозировать" течение хронических обструктивных легочных заболеваний и рака легкого.

3. Количественное и качественное определение протеолитических ферментов в КВВ может быть использовано при ранней диагностике эмфиземы легких у курильщиков, а также для дифференциальной диагностики бронхиальной астмы и различных вариантов ХОБЛ.

4. Комплексное исследование КВВ можно использовать для дифференциальной диагностики бронхиальной астмы и ХОБЛ, так как бронхиальная астма характеризуется сочетанием низкого уровня рН и высокой концентрации пероксида водорода, а бронхитический тип ХОБЛ выраженными электролитными расстройствами и повышением протеолитической активности.

5. Исследование состава и объема КВВ следует использовать при комплексном обследовании будущих космонавтов для оценки состояния дыхательной системы, а также для контроля компенсации углеводного обмена с целью предотвращения возможных патологических влияний на их организм в условиях невесомости.

Показать весь текст

Список литературы

  1. А. Лабораторная диагностика воспаления дыхательных путей у больных бронхиальной астмой: Дис.. канд. биол. наук. -Санкт-Петербург, 2000. 121с.
  2. С.Н., Анаев Э. Х., Чучалин А. Г. Применение метода индуцированной мокроты для оценки интенсивности воспаления дыхательных путей. I/Пульмонология. 1998- 2: с.81−86.
  3. Александров О. В, Добрынина О. В., Севрунова О. А. и др. Метод определения легочного сурфактанта в конденсате паров выдыхаемого воздуха. ПТер арх. 1992- 64(10): с.105−7.
  4. А., Эйзен С. Статистический анализ: Подход с использованием ЭВМ. Пер. с англ. М.: 1982. 486с.
  5. В.А., Горчаков В. Ю., Богомолец Е. О. Респираторная влагопотеря и возможные пути ее регуляции. ПФизиол журн. 1989- 35(4): с. 19−23.
  6. С.В. Биохимическое исследование нереспираторной функции легких по конденсату паров выдыхаемого воздуха у здоровых лиц, у больных с заболеваниями легких и при сердечно-сосудистой патологии: Метод, рекомендации. Минск, 1985. — 17с.
  7. С.В. Физико-химическое и биохимическое исследование конденсата паров выдыхаемого воздуха: Метод, рекомендации. — Минск, 1983. 19с.
  8. Н.Н., Белов Г. В. Эффект альпийской климатотерапии на поверхностную активность выдыхаемого конденсата у больных бронхиальной астмой. ПВопр Курортол Физиотер Леч Физ Культ. 1989- 1: с.61−3.
  9. Ю.Брюзгина Т. С., Хоменко В. Е., Яценко В. П. Методика исследования ЖК липидов у детей с рецидивирующим бронхитом. IIКлин лаб диагн. 1996- 4: с.16−17.
  10. П.Бюль Э. В., Фомич Л. Г., Серебровская И. А. Нерсспираторные функции лёгких. Л., 1988. с.73−74.
  11. Н.Ф. Диагностическое значение биохимического тестирования конденсата паров выдыхаемого воздуха и жидкости бронхоальвеолярного лаважа при неспецифических заболеваниях легких: Автореф. дис.. канд. мед. наук. Владивосток, 1995.
  12. Л.Л., Князев Ю. А., Сергеева Н. А. и др. Клиническое значение определения фруктозамина и альбумина сыворотки крови при сахарном диабете у детей. //Проблемы эндокринологии. 1989- 35(1): с.22−25.
  13. М.Величковский Б. Т. Молекулярные и клеточные основы экологической пульмонологии. И Пульмонология. 2000- 10 (3): с. 10−18.
  14. .И., Кривенко JI.E., Невзорова В. А., Лукьянов П. А. Респираторное влаговыделение и значение его исследования в пульмонологии. ПТер арх. 2000- 72(3): с.46−50.
  15. .И., Петешова Е. Е., Кочеткова Е. А., Елисеева Е. В. Определения метаболитов оксида азота в конденсате выдыхаемого воздуха как способ оценки NO-реактивности дыхательных путей у больных бронхиальной астмой. ПТер арх. 2003- 75- 10: с.91−94.
  16. .И., Хасина М. А., Собина А. И. Взаимосвязь между липидным составом экспирата и лёгочной функцией у больных с острой пневмонией. ПТер арх. 1990- 62(12): с.20−24.
  17. С. Медико-биологическая статистика. /Пер. с англ. М.: Практика, 1998.-459с.
  18. Глобальная стратегия диагностики, лечения и профилактики хронической обструктивной болезни легких. Пересмотр 2003 г. /Пер. с англ. Под ред. Чучалина А. Г. М.: Атмосфера, 2003. — 96с.
  19. В.А. Содержание биологически активных веществ в конденсате выдыхаемого воздуха у больных предастмой бронхиальной. IIСов мед. 1989- 5: с.22−24.
  20. В. А., Мамедов Д. Т., Доценко Е. К. Содержание биологически активных веществ в выдыхаемом воздухе у больных с предастмой и бронхиальной астмой. //Сов Мед. 1989- 5: с.22−4.
  21. Д.П., Ткаченко Б. И. Гемодинамика в легких. М.: Медицина, 1987. 288с.
  22. Д.М., Кулькибаев Д. А., Салимбаева Б. М. Показатели окислительного метаболизма, нейрогуморальной и гормональной регуляции в конденсате выдыхаемого воздуха при ранних стадиях антракосиликоза. IIМед Тр Пром Экол. 1999- 8: с.13−16.
  23. В.В., Эмануэль B.JI. и др. Лабораторная диагностика нарушений водно-электролитного обмена. М., РМАПО, 1997. — 56с.
  24. А.В., Краснощекова О. И., Абулимити А. и др. Использование пероксида водорода выдыхаемого воздуха для оценки эффективности терапии бронхиальной астмы. //Пульмонология 2003- 13(2): с.73−76.
  25. А.В., Петрова М. А., Лаврова О. В. и др. Нарушение минерального обмена на различных стадиях развития бронхиальной астмы И Тер арх. 1995- 67 (8): с.45−47.
  26. А.В., Щербак И. Г., Абулимити А. и др. Перекись водорода как маркер воспаления дыхательных путей у больных бронхиальной астмой. //Тер арх. 2000- 12: с.27−30.
  27. Г. Л., Волчегорский И. А., Волкова Э. Г. и др. Состояние процесса перекисного окисления липидов при хроническом бронхите. //Тер арх. 1998- 70 (3): с.36−37.
  28. Н.И., Каширская Н. Ю., Симонова О. И. и др. Муковисцидоз (Современные достижения и проблемы). //Методические рекомендации, издание второе, дополненное. М., 1997. 62с.
  29. А.А., Уласова Е. А., Вагин М. Ю., Карякина Е. Е. Биосенсоры: устройство, классификация и функциональные характеристики. //Сенсор. 2002- 1: с. 16−24.
  30. А.И., Долгодворов А. Ф., Леонтьев В. Г. и др. Концентрации химических элементов в разных биологических средах человека. И Клип лаб диагн. 2001- 3: с. 16−20.
  31. Р.Ф., Лаврушин А. А., Котегов Ю. М., Тер-Погасян П.А. Инструкция по применению формул и таблиц должных величин основных спирографических показателей. Л., 1986. — 79с.
  32. А.Г., Доценко Е. К., Гончарова В. А., Жданов В. Ф. Экскреция легкими гистамина у больных бронхиальной астмой. //Материалы 11-го Национального конгресса по болезням органов дыхания. Пульмонология. 2001- с. 35.
  33. С.И., Коробейникова Е. Н., Евдокимова Е. В. Липиды конденсата выдыхаемого воздуха у больных с пневмонией. И Клип лаб диагн. 1996- 6: с.24−27.
  34. В.К., Клемент Р. Ф., Котегов Ю. М. и др. Критерии оценки нарушений механических свойств аппарата вентиляций на основе исследования отношений поток-объем и состояния объемов легких: Методические рекомендации. Л., 1988. — 32с.
  35. М.В., Ролик М. В., Пархоменко Н. В. и др. Физические свойства конденсата выдыхаемого воздуха у больных хроническим бронхитом. //Врач Дело 1987- 1: с.37−39.
  36. .В., Гельцер Б. И., Корявченкова И. В. и др. Местный уровень al-кислого гликопротеина (al-КГП) при острых повреждениях легких. //Материалы 11-го Национального конгресса по болезням органов дыхания. Пульмонология. 2001. с. 13.
  37. Е.В., Майстровская Ю. В., Майстровский К. В., Шуматова Т. А. Исследование оксида азота и перекиси водорода в конденсате паров выдыхаемого воздуха для мониторинга респираторного дистресс-синдрома взрослых. //Иммунопатология. 2000- 3: с.22−27.
  38. Микроэлементозы человека: этиология, классификация, органопатология. /Авцын А.П., Жаворонков А. А., Риш М. А., Строчкова Л. С. М.: Медицина, 1991. — 496с.
  39. Е.Н., Гембицкая Т. Е., Желенина Л. А. и др. Биоэлектрические свойства эпителия дыхательных путей у больных муковисцидозом. //Пульмонология. 2001- 11(3): с.24−26.
  40. А.Ф., Травянко Т. Д., Яковлев А. А. и др. Состав метаболитов арахидоиовой кислоты в крови и слюне детей с бронхиальной астмой. ПУкр биохгт ж. 1997- 69: с. 162−168.
  41. А.Ф., Яковлев А. А., Смирнова Е. А. Содержание эйкозаноидов разных групп в конденсате выдыхаемого воздуха у детей с хроническими неспецифическими заболеваниями легких. ПУкр мед журнал. 1999- 10(2): с. 150−2.
  42. С.А., Вересова Е. А. Взаимосвязь кальциевого обмена и нарушений ритма сердца у детей с бронхиальной астмой. ИВестник РГМУ. 2003- 28 (2): с. 129.
  43. В.А., Гельцер Б. И. Окись азота и гемоциркуляция легких. IIПульмонология. 1997- 7(2): с.80−85.
  44. В.А., Майстровская Ю. В., Чкаловец И В. и др. Исследование содержания метаболитов оксида азота, а 1-кислого гликопротеина и его гликоформ в конденсате выдыхаемого воздуха у больных бронхиальной астмой. //Пульмонология. 2003- 6: с.46−51.
  45. В.А., Просекова Е. В., Гельцер Б. И. и др. Динамика биохимических маркеров воспаления в оценке эффективности базисной фармакотерапии при бронхиальной астме. ПТер арх. 2001- 73(3): с.24−27.
  46. С.Н., Баранова И. А., Чучалин А. Г. Внутриклеточные механизмы сигнализации и патологии легких. Транспорт ионов в клетках эпителия дыхательных путей. ППульмонология. 1999- 1: с.77−84.
  47. В. Аналитическая атомно-абсорбционная спектроскопия: Пер. с англ. М.: Мир, 1976. — 354с.
  48. М.Н., Брюзгина Т. С., Уманец Т. Р. и др. Применение неинвазивных биологических сред в оценке липидов у детей. //Клин лаб диагн. 1998- 7: с. 13−15.
  49. Р.Г., Брюзгина Т. С., Пикас О. Б. Изучение показателей липидов в экспирате у лиц, подвергшихся воздействию ионизирующего излучения. //Врач Дело 1995- 56: с.7−8.
  50. О.Ю. Статистический анализ медицинских данных. Применение пакета прикладных программ STATISTICA. М.: МедиаСфера, 2002- 312с.
  51. Т.Г., Рыбкин А. И., Ларюшкина P.M. Ионный состав конденсата выдыхаемого воздуха при рецидивирующем бронхите у детей. //Пульмонология. Материалы 6-го Национального конгресса по болезням органов дыхания. Новосибирск, 1996. А.0257.
  52. Т.Г., Рыбкин А. И., Побединская Н. С. и др. Особенности минерального гомеостаза у детей с бронхиальной астмой. //Микроэлементы в медицине. 2001- 2(4): с.47−49.
  53. Т.Г., Рыбкин А. И., Светлова С. Г. Изменения электролитного состава конденсата выдыхаемого воздуха и эритроцитов и их коррекция при рецидивирующем бронхите у детей. ИВестник Ивановской медицинской академии. 1998- 3(3): с.46−48.
  54. Г. И., Зборовский Э. И., Левина Д. И. Поверхностно-активные свойства конденсата выдыхаемого воздуха (новый метод для изучения легочной функции). ПТер арх. 1980- 52: с.65−68.
  55. Т.Г. Физиология дыхания. СПб., 1994.-е.139−158.
  56. О.В., Казаков В. Н., Фаерман А. А. и др. Физико-химические свойства конденсата выдыхаемого воздуха у здоровых людей. //Клин лаб диагн. 2003- 11: с.23−4, 33−5.
  57. Стандартизация тестов исследования легочной функции. ППульмонология. 1993. Приложение. 92с.
  58. Н.В. Нереспираторные функции лёгких. Л., 1988. с.4−8.
  59. Н.В. Сурфактанты лёгкого в норме и патологии. М., 1983- с.38−44.
  60. Н.В., Гончарова В. А., Котенко Т. В. Метаболическая активность лёгких. Л.: 1987. — 167с.
  61. А.Д. Исследование сурфактантной системы лёгких с помощью биохимических методов. IIПульмонология. 1996- 1: с.45−50.
  62. Э., Карубе И., Уилсон Д. Биосенсоры: основы и приложения. М.: Мир, 1992.-614с.
  63. С.П. Выделение легкими жидкости и электролитов у больных с хронической сердечной недостаточностью. //Сборник научных трудов 3-й Научно-практической конференции «Актуальные вопросы военной и практической медицины». Оренбург, 2002 г.
  64. Г. Б. Механизмы обструкции бронхов. СПб.: Международное информационное агентство. 1995- с. 123−125.
  65. Г. Б., Емельянов А. В., Манаускас К. К. и др. Использование конденсата выдыхаемого воздуха для биохимического исследованиябронхиального содержимого у больных с бронхиальной астмой. IIКлин мед. 1992- 70- 3−4: с.27−28.
  66. Физиология дыхания. //Отв. ред. И. С. Бреслав, Г. Г. Исаев.- СПб: Наука, 1994- 680с.
  67. С.А., Барнс П.Дж., Чучалин А. Г. Окись азота (NO) в выдыхаемом воздухе: новый тест в пульмонологии. //Пульмонология. 1997- 3: с.7−12.
  68. М.А., Васькова Н. А., Соболева И. В., Соломянникова Т. Ф. Информативность бронхоальвеолярного смыва и конденсата паров выдыхаемого воздуха в диагностике острой пневмонии. НПробл Туберк. 2001- 5: с.25−7.
  69. М.А., Двинская С. А., Бслоглазова С. И. и др. Конденсат паров выдыхаемого воздуха в оценке степени нарушения метаболизма бронхолегочной системы при неспецифических заболеваниях легких. IIКлин лаб диагн. 2004- 5: с. 15−17.
  70. М.Ю. Минеральный обмен лёгких в условиях нормы и острого воспаления: Автореферат дисс.. канд. мед. наук. Владивосток, 2004- 25с.
  71. М.Ю., Киселев В. И., Артюкова О. А. Исследование элементного состава конденсата влаги выдыхаемого воздуха (КВВВ). //Материалы 12-го Национального конгресса по болезням органов дыхания. Пульмонология. 2002. с. 384.
  72. .С., Иванов В. Н., Соловьева Н. В., Жиц М.З. Показатели иерекисного окисления липидов в конденсате паров выдыхаемого воздуха простой и объективный метод оценки повреждения сурфактантной системы лёгких. ПЛаб дело. 1990- 5: с. 18−22.
  73. .С., Хышиктуева Н. А., Иванов В. Н. Методы определения продуктов перекисного окисления липидов в конденсате выдыхаемого воздуха и их клиническое значение. //Клин лаб диагн. 1996- 3: с. 13−15.
  74. .С., Хышиктуева Н. А., Иванов В. Н. и др. Диагностическое значение исследования конденсата выдыхаемого воздуха при раке легкого. НВопр онкол. 1994- 40(4−6): с. 161−4.
  75. А.Г. Белая книга. Пульмонология. //Пульмонология. 2004- 1: с.7−34.
  76. А.Г. Бронхоэктазы: клинические проявления и диагностические программы. //Пульмонология. 2005- 1: с.5−10.
  77. А.Г., Аверьянов А. В., Антонова Н. В., Черняев A.JI. Концепция развития пульмонологической помощи населению Российской Федерации (2004−2008 гг.). //Пульмонология. 2004- 1: с.34−37.
  78. B.C., Чучалин А. Г., Костромина Е. Ю. и др. Электрическая импедансная томография в пульмонологии. //Тер арх. 1997- 4: с.48−51.
  79. В.Л. Трахеобронхиальное содержимое и новые возможности его лабораторного исследования. ИКлинлаб диагн. 1997- 12: с.25−32.
  80. Энциклопедия клинических лабораторных тестов. /Под ред. Н. У. Тица. М.: Лабинформ- 1997. — 942с.
  81. О.А. Диагностический потенциал исследования конденсата выдыхаемого воздуха. НТер арх. 1990- 62(3): с. 102−7.
  82. О.А., Кучук А. П., Баяк НЛО., Зубко Е. В. Значение конденсата выдыхаемого воздуха в оценке влаговыделительной функции лёгких. IIВрач Дело. 1987- 10: с.91−2.
  83. О.А., Тертышная Е. В. Эффект эндогенных факторов и физической нагрузки в формировании влаговыделения и детоксикации лёгкими. НТер арх. 1991- 63(12): с.11−14.
  84. В.П., Брюзгина Т. С., Хоменко В. Е., Рева С. Н. Анализ липидов в конденсате выдыхаемого воздуха у детей с бронхолёгочными заболеваниями с помощью газовой хроматографии. //Клин лаб диагн. 1997- 4: с.16−7.
  85. А.П. Респираторные и метаболические функции легких при моделировании факторов космического полета: Автореферат дисс.. канд. мед. наук. Москва, 1993- 26с.
  86. Adler К., Wooten О., Philippoff W. et al. Physical properties of sputum: 3. Reologic variability and intrinsic relationships. //Am Rev Respir Dis. 1972- 106: 86−96.
  87. Adnot S., Raffestin В., Eddahibi S. NO in the lung. //Respir Physiol. 1995- 101(2): 109−20.
  88. Agostoni P., Arena V., Doria E., Susini G. Inspired gas relative humidity affects systemic to pulmonary bronchial blood flow in humans. 11 Chest. 1990- 97: 1377−80.
  89. Aikens J.E., Mayes R. Elevated glycosylated albumin in NIDDM is a function of recent everyday environmental stress. 11 Diabetes Care. 1997- 20(7): 1111−3.
  90. Allegra L., Fabbri L.M., Picotti G., Mattoli S. Bronchial epithelium and asthma. HEur Respir J. 1989- 2, Suppl.6: 460s-468s.
  91. Almonacid C., Izquierdo J.L., Perez J. et al. Inflammatory markers in exhaled breath condensate of two COPD phenotypes. HEur Respir J. 2005- 26(Suppl.49): A1767.
  92. Alving K., Marteus H., Schedin U. Oral origin of ammonia in exhaled breath condensate and influence on рН. 11 Am J Respir Crit Care Med. 2005- 2: A380.
  93. Anand K., Ziebuhr J., Wadhwani P. et al. Coronavirus main proteinase (3CLpro) structure: basis for design of anti-SARS drugs. HScience. 2003- 300(5626): 1763−7.
  94. Antczak A. Increased hydrogen peroxide and thiobarbituric acid-reactive products in expired breath condensate of asthmatic patients. IIEur RespirJ. 1997- 10(6): 1235−41.
  95. Antczak A., Gorski P. Markers of pulmonary diseases in exhaled breath condensate. Hint J Occup Med Environ Health. 2002- 15(4): 317−23.
  96. Antczak A., Kharitonov S.A., Montuschi P. et al. Inflammatory response to sputum induction measured by exhaled markers. 11 Respiration. 2005.
  97. Antczak A., Kurmanowska Z., Kasielski M., Nowak D. Inhaled glucocorticosteroids decrease hydrogen peroxide level in expired air condensate in asthmatic patients. IIRespir Med. 2000- 94(5): 416−21.
  98. Antczak A., Montuschi P., Kharitonov S. et al. Increased exhaled cysteinyl-leukotrienes and 8-isoprostane in aspirin-induced asthma. IIAm J Respir Crit Care Med. 2002- 166(3): 301−6.
  99. Antczak A., Nowak D., Bialasiewicz P., Kasielski M. Hydrogen peroxide in expired air condensate correlates positively with early steps of peripheral neutrophil activation in asthmatic patients. HArch Immunol Ther Exp (Warsz). 1999- 47(2): 119−26.
  100. Antczak A., Nowak D., Shariati B. et al. Increased hydrogen peroxide and thiobarbituric acid-reactive products in expired breath condensate of asthmatic patients. //Eur Respir J. 1997- 10(6): 1235−41.
  101. Atkinson J.J., Senior R.M. Matrix metalloproteinase-9 in lung remodeling. IIAm J Respir Cell Mol Biol. 2003- 28(1): 12−24.
  102. Attucci S., Korkmaz В., Juliano L. et al. Measurement of free and membrane-bound cathepsin G in human neutrophils using new sensitive fluorogenic substrates. IIBiochem J. 2002- 366:965−70.
  103. Baile E.M., Dahlby R.W., Wiggs B.R., Pare P.D. Role of tracheal and bronchial circulation in respiratory heat exchange. IIJ Appl Physiol. 1985- 58:217−22.
  104. Baldwin S.R., Simon R.H., Grum C.M. et al. Oxidant activity in expired breath of patients with adult respiratory distress syndrome. IILancet. 1986- 1:11−14.
  105. Balint B, Donnelly L.E., Hanazawa T. et al. Increased nitric oxide metabolites in exhaled breath condensate after exposure to tobacco smoke. //Thorax. 2001- 56(6): 456−61.
  106. Balint В., Kharitonov S.A., Hanazawa Т., Donnelly L.E., Shah P.L., Hodson M.E., Barnes P.J. Increased nitrotyrosine in exhaled breath condensate in cystic fibrosis. IIEur Respir J. 2001- 17: 1201−07.
  107. Balint В., Kharitonov S.A., Kazuhiro I. et al. Increased IL-8 in exhaled breath condensate in cystic fibrosis during acute exacerbation. 11 Eur Respir J. 2001- Vol.18 (Suppl.33): A3596.
  108. Balint В., Kharitonov S.A., Kemp M. et al. Ionic composition of exhaled breath condensate in cystic fibrosis. IIEur Respir J. 2001- Vol.18 (Suppl.33): A158.
  109. Baraldi E., Carraro S., Alinovi R. et al. Cysteinyl leukotrienes and 8-isoprostane in exhaled breath condensate of children with asthma exacerbations. HThorax. 2003- 58(6): 505−9.
  110. Baraldi E., Ghiro L., Piovan P. et al. Safety and success of exhaled breath condensate collection in asthma. 11 Arch Dis Child. 2003- 88(4): 35 860.
  111. Barker A.F. Bronchiectasis. UN Engl J Med. 2002- 346(18): 1383−93.
  112. Barnes P.J. Chronic obstructive pulmonary disease. UN Engl J Med. 2000- 343(4): 269−280.
  113. Becher G., Decker M., Rothe M., Strohner P. Nicht-invasive Diagnostik von Entziindungsmarkern bei chronischen Atemwegserkrankungen. IILabowelt. 2005- 6: 26−29.
  114. Becher G., Timm-Labsch В., Skrahina E. et al. Monitoring of exacerbated COPD with Н2С>2 in exhaled breath condensate (EBC). //Am J Respir Crit Care Med. 2005- 2: P.820, A330.
  115. Becher G., Winsel K., Beck E., Neubauer G., Stresemann E. Breath condensate as a method of noninvasive assessment of inflammation mediators from the lower airways. HPneumologie. 1997- 51, Suppl.2: 4569. German.
  116. Becher G., Winsel K., Beck E., Stresemann E. Leukotriene B4 in breathing condensate of patients with bronchopulmonary diseases und of normal patients. IIAppl Cardiopulmon Patophysiol. 1995- 5:215−19.
  117. Biernacki W.A., Kharitonov S.A., Barnes P.J. Increased leukotriene B4 and 8-isoprostane in exhaled breath condensate of patients with exacerbations of COPD. //Thorax. 2003- 58(4): 294−8.
  118. Blankenburg Т., Schaedlich S., Schuette W. Exhaled breath condensate as a sensitive diagnostic aid in asthma bronchiale. IIEur Respir J. 2000- Vol.16 (Suppl.31): A1907.
  119. Blue M.L., Janoff A. Possible mechanisms of emphysema in cigarette smokers: release of elastase from human polymorphonuclear leukocytes by cigarette smoke condensate in vitro. 11 Am Rev Respir Dis. 1978- 117: 317 325.
  120. Borrill Z., Starkey C., Vestbo J., Singh D. Reproducibility of exhaled breath condensate pH in chronic obstructive pulmonary disease. 11 Eur Respir J. 2005- 25(2): 269−74.
  121. Boucher R.C. Human airway ion transport. Part IT. IIAm J Respir Grit Care Med. 1994- 150: 581−593.
  122. Boucher R.C., Van Scott M.R., Willumsen N., Scutts M.J. Mechanisms and cell biology of airway epithelial injury. I I Am Rev Respir Dis. 1988- 138(6 Pt2):S41−44.
  123. Bruhn A., Liberona L., Lisboa C., Borzone G. Limitations of the technique to determine hydrogen peroxide levels in exhaled breath condensate from patients with adult respiratory distress syndrome. //Arch Bronconeumol. 2005- 41(10): 542−546.
  124. Brunetti L., Tesse R., Fiore F. et al. Effects of inhaled corticosteroids on breath condensate inflammatory markers in childhood asthma. HEur Respir J. 2005- 26, Suppl.49: A380.
  125. Bucchioni E., Kharitonov S.A., Allegra R., Barnes P.J. High levels of interleukin-6 in the exhaled breath condensate of patients with COPD. HRespirMed. 2003- 97(12): 1299−302.
  126. Bucchioni E., Kharitonov S.A., Csoma S, Barnes P.J. Exhaled breath histamine is reduced following methacholine challenge in patients with mild asthma. HEur Respir J. 2001- Vol. l 8 (Suppl.33): Al 111.
  127. Carpagnano G.E., Barnes P.J., Francis J., Wilson N., Bush A., Kharitonov S.A. Breath condensate pH in children with cystic fibrosis and asthma: a new noninvasive marker of airway inflammation? HChest. 2004- 125(6): 2005−10.
  128. Carpagnano G.E., Barnes P.J., Geddes D.M. et al. Increased leukotriene B4 and interleukin-6 in exhaled breath condensate in cystic fibrosis. IIAm J Respir Crit Care Med. 2003- 167(8): 1109−12.
  129. Carpagnano G.E., Foschino Barbara M.P., Resta O. et al. Endothelin-1 is increased in the breath condensate of patients with non-small-cell lung cancer. //Oncology. 2004- 66(3): 180−4.
  130. Carpagnano G.E., Foschino Barbara M.P., Resta O., Barnes P.J. Increased airway leptin in patients with obstructive sleep apnea. HAm J Respir Crit Care Med. 2005- 2: A330.
  131. Carpagnano G.E., Foschino Barbara M.P., Resta O. et al. Exhaled markers in the monitoring of airways inflammation and its response to steroid’s treatment in mild persistent asthma. IIEur J Pharmacol. 2005- 519(1−2): 175−81.
  132. Carpagnano G.E., Kharitonov S.A., Foschino-Barbaro M.P. et al. Increased inflammatory markers in the exhaled breath condensate of cigarette smokers. IIEur Respir J. 2003- 21(4): 589−93.
  133. Carpagnano G.E., Kharitonov S.A., Wells A.U. et al. Increased vitronectin and endothelin-1 in the breath condensate of patients with fibrosing lung disease. 11 Respiration. 2003- 70(2): 154−60.
  134. Carpagnano G.E., Resta O., Cagnazzo M.G. et al. Use of the exhaled breath condensate in the study of airway inflammation after hypertonic saline challenge. IIEur Respir J. 2005- 26, Suppl.49: A1464.
  135. Carpagnano G.E., Resta O., Foschino-Barbaro M.P. et al. Exhaled Interleukine-6 and 8-isoprostane in chronic obstructive pulmonary disease: effect of carbocysteine lysine salt monohydrate (SCMC-Lys). IIEur J Pharmacol. 2004- 505(1−3): 169−75.
  136. Carpagnano G.E., Resta О., Foschino-Barbaro M.P. et al. Interleukin-6 is increased in breath condensate of patients with non-small cell lung cancer J IInt J Biol Markers. 2002- 17(2): 141−5.
  137. Carpenter C.T., Price P.V., Christman B.W. Exhaled breath condensate isoprostanes are elevated in patients with acute lung injury or ARDS. I I Chest. 1998- 114(6): 1653−59.
  138. Carraro S., Corradi M., Zanconato S. et al. Exhaled breath condensate cysteinyl leukotrienes are increased in children with exercise-induced bronchoconstriction. IIJ Allergy Clin Immunol. 2005- 115(4): 764−70.
  139. Carraro S., Folesani G., Corradi M. et al. Acid-base equilibrium in exhaled breath condensate of allergic asthmatic children. IIAllergy. 2005- 60(4): 476−81.
  140. Chughtai В., O’Riordan T.G. Potential role of inhibitors of neutrophil elastase in treating diseases of the airway. И J Aerosol Med. 2004- 17(4): 289−98.
  141. Community-acquired pneumonia in adults. Bloomington (MN): Institute for Clinical Systems Improvement (ICSI) — 2003. 42 p.
  142. Corradi M., Folesani G., Andreoli L. et al. Aldehydes and glutathione in exhaled breath condensate of children with asthma exacerbation. IIAm J Respir Crit Care Med. 2003- 167(3): 395−9.
  143. Corradi M., Montuschi P., Donnelly L.E. et al. Increased nitrosothiols in exhaled breath condensate in inflammatory airway diseases. I I Am J Respir Crit Care Med. 2001- 163(4): 854−8.
  144. Corradi M., Pignatti P., Manini P. et al. Comparison between exhaled and sputum oxidative stress biomarkers in chronic airway inflammation. IIEur Respir J. 2004- 24(6): 1011−7.
  145. Corradi M., Rubinstein I., Andreoli R. et al. Aldehydes in exhaled breath condensate of patients with chronic obstructive pulmonary disease. IIAm J Respir Crit Care Med. 2003- 167(10): 1380−6.
  146. Cowley E.A., Govindaraju K., Lloyd D.K., Eidelman D.H. Airway surface fluid composition in the rat determined by capillary electrophoresis. IIAm J Physiol 1997- 273(4 Pt 1): L895−9.
  147. Csoma Z., Huszar E., Vizi E. et al. Adenosine level in exhaled breath increases during exercise-induced bronchoconstriction. 11 Eur Respir J. 2005- 25(5): 873−8.
  148. Csoma Z., Kharitonov S.A., Balint B. et al. Increased leukotrienes in exhaled breath condensate in childhood asthma. IIAm J Respir Crit Care Med. 2002- 166(10): 1345−9.
  149. Culpitt S.V., Russell R.E. The measurement of hydrogen peroxide in airway disease. IIEur Respir Rev. 1999- 68: 246−248.
  150. Cunningham S., McColm J.R., Ho L.P. et al. Measurement of inflammatory markers in the breath condensate of children with cystic fibrosis. IIEur Respir J. 2000- 15: 955−57.
  151. Davis P.B., Drumm M., Konstan M. Cystic fibrosis. IIAm J Respir Crit Care Med. 1996- 154: 1229−1256.
  152. De Benedetto F., Aceto A., Dragani B. et al. Long-term oral n-acetylcysteine reduces exhaled hydrogen peroxide in stable COPD. UPulm Pharmacol Ther. 2005- 18(1): 41−7.
  153. De Benedetto F., Aceto A., Dragani B. et al. Validation of a new technique to assess exhaled hydrogen peroxide: results from normals and COPD patients. //Monaldi Arch Chest Dis. 2000- 55(3): 185−8.
  154. Dekhuijzen P.N., Aben K.K., Dekker I. et al. Increased exhalation of hydrogen peroxide in patients with stable and unstable chronic obstructive pulmonary disease. IIAm JRespir Crit Care Med. 1996- 154: 813−16.
  155. Dohlman A.W., Black H.R., Royall J.A. Expired breath hydrogen peroxide is a marker of acute airway inflammation in pediatric patients with asthma. IIAm Rev Respir Dis. 1993- 148: 955−60.
  156. Doniec Z., Nowak D., Tomalak W. et al. Passive smoking does not increase hydrogen peroxide (H202) levels in exhaled breath condensate in 9-year-old healthy children. HPediatr Pulmonol. 2005- 39(1): 41−5.
  157. Dwyer T.M. Cigarette smoke-induced airway inflammation as sampled by the expired breath condensate. IIAm J Med Sci. 2003- 326(4): 174−8.
  158. Dwyer T.M. Sampling airway surface liquid: non-volatiles in the exhaled breath condensate. 11 Lung. 2004- 182(4): 241−50.
  159. Effros R.M. Do low exhaled condensate NH4+ concentrations in asthma reflect reduced pulmonary production? 11 Am J Respir Crit Care Med. 2003- 167:91−92.
  160. Effros R.M. Endogenous airway acidification: implications for asthma pathology. И Am J Respir Crit Care Med. 2001- 163(1): 293−4.
  161. Effros R.M. Exhaled breath condensate acidification in acute lung injury. //Respir Med. 2004- 98(7): 682.
  162. Effros R.M. Saving the breath condensate approach. //Am J Respir Crit Care Med. 2003- 168(9): 1129−32.
  163. Effros R.M., Biller J., Foss B. et al. A simple method for estimating respiratory solute dilution in exhaled breath condensates. //Am J Respir Crit Care Med. 2003- 168(12): 1500−5.
  164. Effros R.M., Dunning M.B., Biller J., Shaker R. The promise and perils of exhaled breath condensates. //Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2004- 287(6): LI073−80.
  165. Effros R.M., Hoagland K.W., Bosbous M. et al. Dilution of respiratory solutes in exhaled condensates. //Am J Respir Crit Care Med. 2002- 165(5): 663−9.
  166. Effros R.M., Su J., Casaburi R. et al. Utility of exhaled breath condensates in chronic obstructive pulmonary disease: a critical review. I/Curr Opin Pulm Med. 2005- 11: 135−139.
  167. Emelyanov A., Fedoseev G., Abulimity A. et al. Elevated concentrations of exhaled hydrogen peroxide in asthmatic patients. //Chest. 2001- 120(4): 1136−9.
  168. Fahy J.V., Wong H., Liu J., Boushey H.A. Cellular and biochemical analysis of induced sputum from asthmatic and from healthy subjects. IIAm Rev Respir Dis. 1993- 147(5): 1126−31.
  169. Fairchild C.I., Stampfer J.E. Particle concentration in exhaled breath. I I Am Ind Hyg Assoc J. 1987- 48: 948−9.
  170. Ferreira I.M., Hazari M.S., Gutierrez C. et al. Exhaled nitric oxide and hydrogen peroxide in patients with chronic obstructive pulmonary disease: effects of inhaled beclomethasone. 11 Am J Respir Crit Care Med. 2001- 164(6): 1012−5.
  171. Formanek W., Inci D., Lauener R.P. et al. Elevated nitrite in breath condensates of children with respiratory disease. HEur Respir J. 2002- 19(3): 487−91.
  172. Freeman B.A., Crapo J.D. Biology of disease: free radicals and tissue injury. I I Lab Invest. 1982- 47: 412−426.
  173. Frizzell R.A. Role of absorptive and secretory processes in hydration of the airway surface. I I Am Rev Respir Dis. 1988- 138(6 Pt 2): S3−6.
  174. Fukuda N., Jayr C., Lazrak A. et al. Mechanisms of TNF-alpha stimulation of amiloride-sensitive sodium transport across alveolar epithelium. I I Am J Physiol Lang Cell Mol Physiol. 2001- 280(6): LI 258−65.
  175. Ganas К., Loukides S., Papatheodorou G. et al. Total nitrite/nitrate in expired breath condensate of patients with asthma. 11 Respir Med. 2001- 95(8): 649−54.
  176. Garey K.W., Neuhauser M.M., Robbins R.A. et al. Markers of inflammation in exhaled breath condensate of young healthy smokers. //Chest. 2004- 125(1): 22−6.
  177. Gaston В., Drazen J.M., Loscalzo J., Stamler J.S. The biology of nitrogen oxides in the airways. //Am J Respir Crit Care Med. 1994- 149: 538−51.
  178. Gerritsen W.B., Asin J., Zanen P. et al. Markers of inflammation and oxidative stress in exacerbated chronic obstructive pulmonary disease patients. //Respir Med. 2005- 99(1): 84−90.
  179. Gerritsen W.B., Zanen P., Bauwens A.A. Validation of a new method to measure hydrogen peroxide in exhaled breath condensate. //Respir Med. 2005- 99(9): 1132−7.
  180. Gessner C., Hammerschmidt S., Kuhn H. et al. Exhaled breath condensate acidification in acute lung injury. //Respir Med. 2003- 97(11): 1188−94.
  181. Gessner C., Hammerschmidt S., Kuhn H. et al. Exhaled breath condensate nitrite and its relation to tidal volume in acute lung injury. //Chest. 2003- 124(3): 1046−52.
  182. Gessner С., Hammerschmidt S., Kuhn H., Wirtz H. Expired diagnosis? the potential of exhaled breath analysis. HPneumologie. 2004- 58(4): 230−7. German.
  183. Gessner C., Kuhn H., Seyfarth H.J. et al. Factors influencing breath condensate volume. HPneumologie. 2001- 55(9): 414−9.
  184. Gessner C., Kuhn H., Toepfer K. et al. Detection of p53 gene mutations in exhaled breath condensate of non-small cell lung cancer patients. HLung Cancer. 2004- 43(2): 215−22.
  185. Gessner C., Scheibe R., Wotzel M. et al. Exhaled breath condensate cytokine patterns in chronic obstructive pulmonary disease. //Respir Med. 2005- 99(10): 1229−40.
  186. Gibson P.G., Henry R.L., Thomas P. Noninvasive assessment of airway inflammation induced sputum, exhaled nitric oxide, and breath. //Eur Respir J. 2000- 16(5): 1008−15.
  187. Godwin J.E., Heffner J.E. Platelet prevention of oxidant lung oedema is not mediated through scavenging of hydrogen peroxide. //Blood Coagul Fibrinolysis. 1992- 3: 531−539.
  188. Griese M. Exhaled breath condensate. HPediatr Pulmonol Suppl. 2004- 26:14−5.
  189. Griese M., Latzin P., Beck J. Measurement of airway inflammation in asthma. HCurr Opin Pulm Med. 2002- 8(1): 25−32.
  190. Griese M., Noss J., Schramel P. Elemental and ion composition of exhaled air condensate in cystic fibrosis. HJ Cyst Fibros. 2003- 2(3): 136−42.
  191. Griese M., Noss J., von Bredow C. Protein pattern of exhaled breath condensate and saliva. UProteomics. 2002- 2(6) — 690−6.
  192. Guatura S.B., Martinez J.A., Santos M.L. Increased exhalation of hydrogen peroxide in healthy subjects following cigarette consumption. //Sao Paulo MedJ. 2000- 118(4): 93−8.
  193. Hanazawa Т., Kharitonov S.A., Barnes P.J. Increased nitrotyrosine in exhaled breath condensate of patients with asthma. //Am J Respir Crit Care Med. 2000- 162 (4 Pt 1): 1273−6.
  194. Heard S.O., Longtine K., Toth I. et al. The influence of liposome-encapsulated prostaglandin El on hydrogen peroxide concentrations in the exhaled breath of patients with the acutc respiratory distress syndrome. HAnesth Analg. 1999- 89(2): 353−7.
  195. Heffner J.E., Repine J.E. Pulmonary strategies of antioxidant defense. //Am Rev Respir Dis. 1989- 140: 531−554.
  196. Ho L.P., Faccenda J., Innes J.A., Greening A.P. Expired hydrogen peroxide in breath condensate of cystic fibrosis patients. //Eur Respir J. 1999- 13: 103−106.
  197. Ho L.P., Innes J.A., Greening A.P. Nitrite levels in breath condensate of patients with cystic fibrosis is elevated in contrast to exhaled nitric oxide. //Thorax. 1998- 53(8): 680−4.
  198. Holz O., Jorres R.A. Non-invasive methods for monitoring airway inflammation: a comparison of expenditures, gain and clinical value. HPneumologie. 2004- 58(7): 510−5. German.
  199. Horn S., Smith A., Bunyan D. et al. Identification of laryngopharyngeal reflux and acid aspiration using exhaled breath condensate pH. IIEur Respir J, 2005- 26(Suppl.49): A3156.
  200. Horvath I., Donnelly L.E., Kiss A. et al. Combined use of exhaled hydrogen peroxide and nitric oxide in monitoring asthma. 11 Am J Respir Crit Care Med. 1998- 158: 1042−46.
  201. Horvath I., Hunt J., Barnes P.J., on behalf of the ATS/ERS Task Force on Exhaled Breath Condensate. Exhaled breath condensate: methodological recommendations and unresolved questions. IIEur Respir J. 2005- 26(8): 523−548.
  202. Horvath I., MacNee W., Kelly F.J. et al. «Haemoxygcnase-1 induction and exhaled markers of oxidative stress in lung diseases», summary of the ERS Research Seminar in Budapest, Hungary, September, 1999. IIEur Respir J. 2001- 18(2): 420−30.
  203. Hiils G., Bittner-Dersch P., Briistle A. et al. Natrium-Konzentration im Atemkondensat bei gesunden Probanden und CF-Patienten. IIMonatsschr Kinderheilkd. 2002- 150: 410 (PI8).
  204. Hunt J., Byrns R.E., Ignarro L.J., Gaston B. Condensed expirate nitrite as a home marker for acute asthma. IILancet. 1995- 346: 1235−6.
  205. Hunt J.F., Erwin E., Palmer L. et al. Expression and activity of pH-regulatory glutaminase in the human airway epithelium. 11 Am J Respir Crit Care Med. 2002- 165(1): 101−7.
  206. Hunt J.F., Fang К., Malik R. et al. Endogenous airway acidification. Implications for asthma pathophysiology. IIAm J Respir Crit Care Med. 2000- 161:694−9.
  207. Huszar E., Vass G., Vizi E. et al. Adenosine in exhaled breath condensate in healthy volunteers and in patients with asthma. IIEur Respir J. 2002- 20(6): 1393−8.
  208. Isola N., Csoma Z., Kharitonov S.A. et al. Exhaled 8-isoprostane, a marker of oxidative stress, is increased in patients with bronchiectasis. IIEur Respir J. 2001. Vol.18 (Suppl.33): A1697.
  209. Ivashkevich D.L., Makarevich A.E. Early detection of patients with asthma or chronic bronchitis by investigation on exhaled air condensate. IIEur Respir J. 2002- Vol.20 (Suppl.38): A1757. 275s.
  210. Jatakanon A., Lim S., Kharitonov S. et al. Correlation between exhaled nitric oxide, sputum eosinophils, and methacholine responsiveness in patients with mild asthma. IIThorax. 1998, 53(2): 91−95.
  211. Jatakanon A., Uasuf C.G., Maziak W. et al. Neutrophilic inflammation in severe persistent asthma. I I Am J Respir Crit Care Med. 1999- 160: 15 321 539.
  212. Jobsis Q., Raatgeep H.C., Hermans P.W., de Jongste J.C. Hydrogen peroxide in exhaled air is increased in stable asthmatic children. IIEur Respir J. 1997- 10(3): 519−21.
  213. Jobsis Q., Raatgeep H.C., Schellekens S.L. et al. Hydrogen peroxide and nitric oxide in exhaled air of children with cystic fibrosis during antibiotic treatment. IIEur Respir J. 2000- 16: 95−100.
  214. Jobsis Q., Raatgeep H.C., Schellekens S.L. et al. Hydrogen peroxide in exhaled air of healthy children: reference values. IIEur Respir J. 1998- 12(2): 483−5.
  215. Joris L., Dab I., Quinton P.M. Elemental composition of human airway surface fluid in healthy and diseased airways. IIAm Rev Respir Dis. 1993- 148(6 Pt 1): 1633−7.
  216. Kanazawa H., Shoji S., Yamada M. et al. Increased levels of nitric oxide derivatives in induced sputum in patients with asthma. IIJAllergy Clin Immunol. 1997- 99: 624−29.
  217. Karyakin A.A., Karyakina E.E., Gorton L. On the mechanism of H202 reduction at prussian blue modified electrodes. 11 Electrochemistry Communications. 1999- 1: 78−82.
  218. Karyakin A.A., Puganova E.A., Budashov I.A. et al. Prussian blue based nanoelectrode arrays for H (2)0(2) detection. 11 Anal Chem. 2004- 76(2): 474−8.
  219. Kasielski M., Nowak D. Long-term administration of N-acetylcysteine decreases hydrogen peroxide exhalation in subjects with chronic obstructive pulmonary disease. //Respir Med. 2001- 95(6): 448−56.
  220. Kazani S., Sadeh J., Szabo G. et al. Hypertonic saline induced bronchoconstriction is not associated with decline in exhaled breath condensate (ЕВС) рН. IIAm J Respir Crit Care Med. 2005- 2: A844.
  221. Kazerooni E.A., Martinez F.J., Flint A. et al. Thin section CT obtained at 10 mm increments versus three-level thin-section CT for idiopathic pulmonary fibrosis: correlation with pathologic scoring. //Am J Roentgenol. 1997−169:977−983.
  222. Kharitonov S.A. Exhaled markers of inflammatory lung diseases: ready for routine monitoring? //Swiss Med Wkly. 2004- 134(13−14): 175−92.
  223. Kharitonov S.A., Barnes P.J. Biomarkers of some pulmonary diseases in exhaled breath. //Biomarkers. 2002- 7(1): 1−32.
  224. Kharitonov S.A., Barnes P.J. Effects of corticosteroids on noninvasive biomarkers of inflammation in asthma and chronic obstructive pulmonary disease. HProc Am Thorac Soc. 2004- 1:191−199.
  225. Kharitonov S.A., Barnes P.J. Exhaled markers of pulmonary disease. //Am J Respir Crit Care Med. 2001- 163: 1693−1722.
  226. Kietzmann D., Kahl R., Muller M. et al. Hydrogen peroxide in expired breath condensate of patients with acute respiratory failure and with ARDS. HIntensive Care Med. 1993- 19:78−81.
  227. Ко F.W., Diba С., Roth М. et al. A comparison of airway and serum matrix metalloproteinase-9 activity among normal subjects, asthmatic patients, and patients with asthmatic mucus hypersecretion. I I Chest, 2005- 127(6): 1919−27.
  228. Korkmaz В., Attucci S., Hazouard E. et al. Discriminating between the activities of human neutrophil elastase and proteinase 3 using serpinderived fluorogenic substrates. И J Biol Chem. 2002- 277: 39 074−81.
  229. Korkmaz В., Attucci S., Moreau T. et al. Design and use of highly specific substrates of neutrophil elastase and proteinase 3. IIAm J Respir Cell Mol Biol 2004- 30: 801−807.
  230. Kostikas K., Gaga M., Papatheodorou G. et al. Leukotriene B4 in exhaled breath condensate and sputum supernatant in patients with COPD and asthma. //Chest. 2005- 127(5): 1553−9.
  231. Kostikas K., Papatheodorou G., Ganas K. et al. pH in expired breath condensate of patients with inflammatory airway diseases. IIAm J Respir Crit Care Med. 2002- 165(10): 1364−70.
  232. Kostikas K., Papatheodorou G., Psathakis K. et al. Oxidative stress in expired breath condensate of patients with COPD. 11 Chest. 2003- 124(4): 1373−80.
  233. Kostikas K., Papatheodorou G., Psathakis K. et al. Prostaglandin E2 in the expired breath condensate of patients with asthma. IIEur Respir J. 2003- 22(5): 743−7.
  234. Kwiatkowska S., Luczynska M., Grzelewska-Rzymowska I. et al. Comparison of oxidative stress markers in exhaled breath condensate and in serum of patients with tuberculosis and sarcoidosis. HPol Merkuriusz Lek. 2005- 19(109): 37−40.
  235. Larstad M., Ljungkvist G., Olin A.C., Toren K. Determination of malondialdehyde in breath condensate by high-performance liquid chromatography with fluorescence detection. IIJ Chromatogr В Analyt Technol Biomed Life Sci. 2002- 766(1): 107−14.
  236. Larstad M., Soderling A.S., Caidahl K., Olin A.C. Selective quantification of free 3-nitrotyrosine in exhaled breath condensate in asthma using gas chromatography/tandem mass spectrometry. 11 Nitric Oxide. 2005- 13(2): 134−44.
  237. Lases E.C., Duurkens V.A., Gerritsen W.B., Haas F.J. Oxidative stress after lung resection therapy: A pilot study. 11 Chest. 2000- 117(4): 999−1003.
  238. Latzin P., Griese M. Exhaled hydrogen peroxide, nitrite and nitric oxide in healthy children: decrease of hydrogen peroxide by atmospheric nitric oxide. IIEur J Med Res. 2002- 7(8): 353−8.
  239. Lee W.L., Downey G.P. Leukocyte elastase: physiological functions and role in acute lung injury. И Am J Respir Crit Care Med. 2001- 164(5): 896−904.
  240. Lehmann C., Rothe M., Becher G. Breathing pattern and exhaled breath condensate sampling. IIAm J Respir Crit Care Med. 2003- 167 (9): A50.
  241. Leung Т., Wong G.W.K., Ко F.W.S. et al. Analysis of growth factors and inflammatory cytokines in exhaled breath condensate from asthmatic children. Hint Arch Allergy Immunol. 2005- 137:66−72.
  242. Leung Т., Wong G.W.K., Ко F.W.S. et al. Increased macrophage-derived chemokine in exhaled breath condensate and plasma from children with asthma. 11 Clin Exp Allergy. 2004- 34(5): 786−91.
  243. Liu J., Thomas P. S. Exhaled breath condensate as a method of sampling airway nitric oxide and other markers of inflammation. IIMed Sci Monit. 2005- 11(8): 53−62.
  244. Loukides S., Bouros D., Papatheodorou G. et al. Exhaled H (2)0(2) in steady-state bronchiectasis: relationship with cellular composition in induced sputum, spirometry, and extent and severity of disease. IIChest. 2002- 121 (1): 81−87.
  245. Loukides S., Bouros D., Papatheodorou G. et al. The relationships among hydrogen peroxide in expired breath condensate, airway inflammation, and asthma severity. HChest. 2002- 121(2): 338−46.
  246. Loukides S., Horvath I., Wodehouse T. et al. Elevated levels of expired breath hydrogen peroxide in bronchiectasis. 11 Am J Respir Crit Care Med. 1998- 158(3): 991−94.
  247. Luczynska M., Szkudlarek U., Dziantkowska-Bartkowiak P. et al. Elevated exhalation of hydrogen peroxide in patients with systemic sclerosis. IIEurJClin Invest. 2003- 33(3): 274−9.
  248. MacGregor G., Ellis S., Andrews J. et al. Breath condensate ammonium is lower in children with chronic asthma. //Eur Respir J. 2005- 26(2): 271−6.
  249. Majewska E., Kasielski M., Luczynski R. et al. Elevated exhalation of hydrogen peroxide and thiobarbituric acid reactive substances in patients with community acquired pneumonia. //Respir Med. 2004- 98(7): 669−76.
  250. Manney S., Ayres J.G., Baker J. Does airflow obstruction or inhalation of salbutamol increase the volume of exhaled breath condensate collected in stable COPD and asthma? //Thorax. 2002- 57: Ш48-Ш94, P31.
  251. Manolis A. The diagnostic potential of breath analysis. //Clin Chem. 1983- 29: 5−15.
  252. McCafferty J.B., Bradshaw T.A., Tate S. et al. Effccts of breathing pattern and inspired air conditions on breath condensate volume, pH, nitrite, and protein concentrations. //Thorax. 2004- 59: 694−698.
  253. McFadden E.R.Jr. Respiratory heat and water exchange: physiological and clinical implications. //JApp/ Physiol. 1983- 54: 331−36.
  254. McRae K., De Perrot M., Fischer S. et al. Detection of IL-10 in the exhaled breath condensate, plasma and tissue during ischemia-reperfusion injury in experimental lung transplantation. HJ Heart Lung Transplant. 2001- 20(2): 184.
  255. Metheny N.A., Stewart B.J., Smith L. et al. pH and concentration of bilirubin in feeding tube aspirates as predictors of tube placement. UNurs Res. 1999- 48: 189−97.
  256. Montuschi P. Exhaled breath condensate analysis in patients with COPD. I I Clin Chim Acta. 2005- 356(1−2): 22−34.
  257. Montuschi P., Barnes P.J. Exhaled leukotrienes and prostaglandins in asthma. HJAllergy Clin Immunol. 2002- 109(4): 615−20.
  258. Montuschi P., Ciabattoni G., Paredi P. et al. 8-isoprostane as a biomarker of oxidative stress in interstitial lung diseases. IIAm J Respir Crit Care Med. 1998- 158: 1524−27.
  259. Montuschi P., Collins J.V., Ciabattoni G. et al. Exhaled 8-isoprostane as an in vivo biomarker of lung oxidative stress in patients with COPD and healthy smokers. IIAm J Respir Crit Care Med. 2000- 162(3 Pt 1): 1175−77.
  260. Montuschi P., Corradi M., Ciabattoni G. et al. Increased 8-isoprostane, a marker of oxidative stress, in exhaled condensate of asthma patients. IIAm J Respir Crit Care Med. 1999- 160(1): 216−20.
  261. Montuschi P., Kharitonov S.A., Ciabattoni G., Barnes P.J. Exhaled leukotrienes and prostaglandins in COPD. //Thorax. 2003- 58(7): 585−8.
  262. Montuschi P., Kharitonov S.A., Ciabattoni G. et al. Exhaled 8-isoprostane as a new non-invasive biomarker of oxidative stress in cystic fibrosis. IIThorax. 2000- 55(3): 205−9.
  263. Montuschi P., Ragazzoni E., Valente S. et al. Validation of 8-isoprostane and prostaglandin E (2) measurements in exhaled breath condensate. Illnflamm Res. 2003- 52(12): 502−7.
  264. Moore K., Roberts L.J. Measurement of lipid peroxidation. //Free RadicRes. 1998−28:659−71.
  265. Moyer P. The pH of exhaled breath condensate (EBC): a non invasivetbtool for evaluation of asthma in childhood. 60 Annual Meeting of American Academy of Allergy, Asthma, and Immunology’s. IIMedicus Amicus. 2004- 4: A.959.
  266. Murray C.J., Lopez A.D. Evidence-based health policy lessons from the Global Burden of Disease Study. //Science. 1996- 274(5288): 740−3.
  267. Mutlu G.M., Garey K.W., Robbins R.A. et al. Collection and analysis of exhaled breath condensate in humans. //Am J Respir Crit Care Med. 2001- 164(5): 731−37.
  268. Nadel J.A. Role of neutrophil elastase in hypersecretion during COPD exacerbations, and proposed therapies. //Chest. 2000- 117(5 Suppl 2): 386S-9S.
  269. Nadel J.A. Some epithelial metabolic factors affecting airway smooth muscle. //Am Rev Respir Dis. 1988- 138(6 Pt 2): S22−3.
  270. Nayeri F., Millinger E., Nillson I. et al. Exhaled breath condensate and serum levels of hepatocyte growth factor in pneumonia. HRespir Med. 2002- 96(2): 115−9.
  271. Nightingale J.A., Rogers D.F., Barnes P.J. Effect of repeated sputum induction on cell counts in normal volunteers. //Thorax. 1998- 53: 87−90.
  272. Niimi A., Nguyen L.T., Usmani O. et al. Reduced pH and chloride levels in exhaled breath condensate of patients with chronic cough. //Thorax. 2004- 59(7): 608−12.
  273. Norwood D.M., Wainman Т., Lioy P.J., Waldman J.M. Breath ammonia depletion and its relevance to acidic aerosol exposure studies. IIArch Environ Health. 1992- 47:309−313.
  274. Nowak D., Antczak A., Krol M. et al. Increased content of hydrogen peroxide in the expired breath of cigarette smokers. HEur Respir J. 1996- 9: 652−57.
  275. Nowak D., Kalucka S., Bialasiewicz P., Krol M. Exhalation of H202 and thiobarbituric acid reactive substances (TBARs) by healthy subjects. I/Free Radic Biol Med. 2001- 30(2): 178−86.
  276. Nowak D., Kasielski M., Pietras T. et al. Cigarette smoking does not increase hydrogen peroxide levels in expired breath condensate of patients with stable COPD. IIMonaldi Arch Chest Dis. 1998- 53(3): 268−73.
  277. Ohnishi K., Takagi M., Kurokawa Y. et al. Matrix metalloproteinase-mediated extracellular matrix protein degradation in human pulmonary emphysema. //Lab Invest. 1998. 78: 1077−87.
  278. Ojoo J.C., Kastelik J.A., Mulrennan S.A. et al. Exhaled breath condensate pH and exhaled nitric oxide in cystic fibrosis. //Am J Respir Crit Care Med. 2003- 167 (9): A915.
  279. Ojoo J.C., Mulrennan S.A., Kastelik J.A. et al. Exhaled breath condensate pH and exhaled nitric oxide in allergic asthma and in cystic fibrosis. //Thorax. 2005- 60(1): 22−6.
  280. Ordonez C.L., Henig N.R., Mayer-Hamblett N. et al. Inflammatory and microbiologic markers in induced sputum after intravenous antibiotics in cystic fibrosis. HAm J Respir Crit Care Med. 2003- 168: 1471−1475.
  281. Owen C.A., Campbell E.J. The cell biology of leukocyte-mediated proteolysis. HJLeukoc Biol. 1999- 65(2): 137−50.
  282. Paget-Brown A., Smith A., Bunyan D. et al. Normative values for exhaled breath condensate pH. HEur Respir J. 2005- 26 (Suppl.49): A1462.
  283. Palaiologou A., Loukides S., Papatheodorou G. et al. pH in expired breath condensate of patients with asthma. HEur Respir J. 2000- 16 (Suppl.31): A428.
  284. Panagou P., Papatheodorou G., Mermigis H. et al. Evaluation of expired air condensate (hydrogen peroxide) in mild asthma. HEur Respir J. 1998- 12 (Suppl.28): 365s.
  285. Papineni R.S., Rosenthal F.S. The size distribution of droplets in the exhaled breath of healthy human subjects. HJ Aerosol Med. 1997- 10: 105— 116.
  286. Paredi P., Kharitonov S.A., Barnes P.J. Analysis of expired air for oxidation products. HAmJ Respir Crit Care Med. 2002- 166(12 Pt 2): S31−7. Review.
  287. Pin I., Gibson P.G., Kolendovicz R. et al. Use of induced sputum cell counts to investigate airway inflammation in asthma. //Thorax. 1992- 47(1): 25−9.
  288. Prince P., Boulay M.E., Boulet L.P. A new, rapid, simple and inexpensive method of exhaled breath condensate collection. //Am J Respir Crit Care Med. 2005- 2: A380.
  289. Psathakis K., Papatheodorou G., Plataki M. et al. 8-Isoprostane, a marker of oxidative stress, is increased in the expired breath condensate of patients with pulmonary sarcoidosis. HChest. 2004- 125(3): 1005−11.
  290. Psathakis K., Papatheodorou G., Plataki M. et al. Oxidative stress in expired breath condensate of patients with sarcoidosis. //Eur Respir J. 2001- Vol.18 (Suppl.33): A2364.
  291. Quanjer Ph.H., Dalhuijsen A., Van Zomeren B.C. Summary equations of reference values. //Bull Eur Physiopathol Respir. 1983- 19 (Suppl.5): 4551.
  292. Rahman I. The role of oxidative stress in the pathogenesis of COPD: implications for therapy. //Treat Respir Med. 2005- 4(3): 175−200.
  293. Rahman I., Biswas S.K. Non-invasive biomarkers of oxidative stress: reproducibility and methodological issues. HRedox Rep. 2004- 9(3): 125−43.
  294. Ramsey B.W. Management of pulmonary disease in patients with cystic fibrosis. UN Engl J Med. 1996- 335: 179−88.
  295. Razola S.S., Ruiz B.L., Diez N.M. et al. Hydrogen peroxide sensitive amperometric biosensor based on horseradish peroxidase entrapped in a polypyrrole electrode. UBiosens Bioelectron. 2002- 17: 921−928.
  296. Ranieri V.M., Suter P.M., Tortorella G. et al. Effect of mechanical ventilation on inflammatory mediators in patients with acute respiratory distress syndrome: a randomized controlled trials. 11 JAMA. 1999- 282: 5461.
  297. Reinhold P., Langenberg A., Becher G., Rothe M. Breath condensate--a medium obtained by a noninvasive method for the detection of inflammation mediators of the lung., IIBerl Munch Tierarztl Wochenschr. 1999- 112(6−7): 254−9. Gennan.
  298. Ricciardolo F.L. Multiple roles of nitric oxide in the airways. //Thorax. 2003- 58: 175−182.
  299. Rivera M.P., Detterbeck F., Mehta A.C. Diagnosis of lung cancer: the guidelines. //Chest. 2003- 123(1 Suppl): 129S-36S.
  300. Roberts L.J., Morrow J.D. The isoprostanes: novel markers of lipid peroxidation and potential mediators of injury. HAdv Prostaglandin Thromboxane Leukot Res. 1995- 23: 219−23.
  301. Robroeks C., Jobsis R., Hendriks H. et al. Exhaled nitric oxide (eNO) and acidity of exhaled breath condensate (EBC pH) of children with asthma, cystic fibrosis (CF) and healthy controls. //Eur Respir J. 2005- 26, Suppl.49: A383.
  302. Rosias P.P., Dompeling E., Dentener M.A. et al. Childhood asthma: exhaled markers of airway inflammation, asthma control score, and lung function tests. HPediatr Pulmonol. 2004- 38(2): 107−14.
  303. Rosias P.P., Dompeling E., Hendriks H.J. et al. Exhaled breath condensate in children: pearls and pitfalls. HPediatr Allergy Immunol. 2004- 15(1): 4−19.
  304. Rothe M., Becher G., Kragl U. et al. Bestimmung von Tyrosin und Nitrotyrosin im Atemkondensat von CF-Patienten. HPneumologie. 2003- 57: S52 (Abstract).
  305. Rowe B.H., Bretzlaff J.A., Bourdon C. et al. Magnesium sulfate for treating exacerbations of acute asthma in the emergency department. 11 Cochrane Database Syst Rev. 2000- 8.
  306. Ruef C., Jefferson D.M., Schegel-Haueter S.E., Suter S. Regulation of cytokine secretion by cystic fibrosis airway epithelial cells. IIEur Respir J. 1993- 6:1429−36,
  307. Rysz J., Kasielski M., Apanasiewicz J. et al. Increased hydrogen peroxide in the exhaled breath of uraemic patients unaffected by haemodialysis. //Nephrol Dial Transplant. 2004- 19(1): 158−63.
  308. Ryu J.H., Myers J.L., Swensen S.J. Bronchiolar disorders. IIAm J Respir Crit Care Med. 2003- 168: 1277−1292.
  309. Sagel S.D., Kapsner R., Osberg I. et al. Airway inflammation in children with cystic fibrosis and healthy children assessed by sputum induction. IIAm J Respir Crit Care Med. 2001- 164(8 Pt 1): 1425−31.
  310. Sandrini A., Ferreira I.M., Gutierrez C. et al. Effect of montelukast on exhaled nitric oxide and nonvolatile markers of inflammation in mild asthma .I/Chest. 2003- 124(4): 1334−40.
  311. Scheideler L., Manke H.G., Schwulera U. et al. Detection of nonvolatile macromolecules in breath. A possible diagnostic tool? IIAm Rev Respir Dis. 1993- 148(3): 778−84.
  312. Schleiss M.B., Holz O., Behnke M. et al. The concentration of hydrogen peroxide in exhaled air depends on expiratory flow rate. IIEur Respir J. 2000- 16(6): 1115−18.
  313. Shahid S.K., Kharitonov S.A., Wilson N.M. et al. Increased interleukin-4 and decreased interferon-gamma in exhaled breath condensate of children with asthma. IIAm J Respir Crit Care Med. 2002- 165(9): 12 903.
  314. Shapiro S.D. Proteinases in chronic obstructive pulmonary disease. HBiochem Soc Trans. 2002- 30(2): 98−102.
  315. Spicuzza L., Di Maria G.U., Polosa R. Adenosine levels in the exhaled breath condensate: a potential surrogate marker of airway inflammation. IIEur Respir J. 2003- 22(2): 392−3.
  316. Sterk P.J. Non-invasive monitoring of bronchial inflammation in asthma. //Schweiz Med Wochenschr. 1997- 127(41): 1686−92.
  317. Stockley R.A. Neutrophils and the pathogenesis of COPD. //Chest. 2002- 121(5 Suppl): 151S-155S.
  318. Stockley R.A. Neutrophils and protease/antiprotease imbalance. //Am J Respir Crit Care Med. 1999- 160(5 Pt 2): S49−52.
  319. Suki В., Kenneth R., Lutchen K.R., Ingenito E.P. On the progressive nature of emphysema: roles of proteases, inflammation, and mechanical forces. //Am J Respir Crit Care Med. 2003- 168(5): 516−21.
  320. Sutherland E.R., Chu H.W., Stevens A.D. et al. Detection of Mycoplasma pneumoniae in exhaled breath condensate. //Am J Respir Crit Care Med. 2005- 2: A585.
  321. Svensson S., Olin A.C., Larstad M. et al. Determination of hydrogen peroxide in exhaled breath condensate by flow injection analysis with fluorescence detection. HJ Chromatogr В Analyt Technol Biomed Life Sci. 2004- 809(2): 199−203.
  322. Szkudlarek U., Maria L., Kasielski M. et al. Exhaled hydrogen peroxide correlates with the release of reactive oxygen species by blood phagocytes in healthy subjects. I I Respir Med. 2003- 97(6): 718−25.
  323. Szkudlarek U., Zdziechowski A., Witkowski K. et al. Effect of inhaled N-acetylcysteine on hydrogen peroxide exhalation in healthy subjects. HPulm Pharmacol Ther. 2004- 17(3): 155−62.
  324. Sznajder J.I., Fraiman A., Hall J.B. et al. Increased hydrogen peroxide in the expired breath of patients with acute hypoxemic respiratory failure. ПChest. 1989- 96:606−12.
  325. Tate S., MacGregor G., Davis M. et al. Airways in cystic fibrosis are acidified: detection by exhaled breath condensate. //Thorax. 2002- 57(11): 926−9.
  326. Tate S., McCafferty J., Innes J.A., Greening A.P. Effect of varying respiratory pattern on exhaled breath condensate collection. //Thorax. 2002- 57: iii48-iii94, P33.
  327. Tateosian N., Wilson C.K., Maffia P.C. et al. Myeloperoxidase in exhaled breath condensate reflects the status of lung parenchyma during the exacerbation of chronic obstructive pulmonary disease. HEur Respir J. 2005- 26, Suppl.49: A452.
  328. Tesse R., Francavilla R., Fiermonte P. et al. Endogenous airway acidification in children with asthma, allergic rhinitis and atopic dermatitis. HAm J Respir Crit Care Med. 2005- 2: A845.
  329. Torrego A., Cimbollek S., Hew M., Chung K.F. No effect of omeprazole on pH of exhaled breath condensate in cough associated with gastro-oesophageal reflux. HCough. 2005- 1: 10: 1−4.
  330. Van Beurden W.J., Dekhuijzen P.N., Harff G.A., Smeenk F.W. Variability of exhaled hydrogen peroxide in stable COPD patients and matched healthy controls. I I Respiration. 2002- 69(3): 211−6.
  331. Van Beurden W.J., Harff G.A., Dekhuijzen P.N. et al. An efficient and reproducible method for measuring hydrogen peroxide in exhaled breath condensate. I I Respir Med. 2002- 96(3): 197−203.
  332. Van Beurden W.J., Harff G.A., Dekhuijzen P.N. et al. .Effects of inhaled corticosteroids with different lung deposition on exhaled hydrogen peroxide in stable COPD patients. 11 Respiration. 2003- 70(3): 242−8.
  333. Van Beurden W.J., Smeenk F.W., Harff G.A., Dekhuijzen P.N. Markers of inflammation and oxidative stress during lower respiratory tract infections in COPD patients. IIMonaldi Arch Chest Dis. 2003- 59(4): 27 380.
  334. Van Beurden W.J., van den Bosch M.J., Janssen W.C. et al. Fluorimetric analysis of hydrogen peroxide with automated measurement. I I Clin Lab. 2003- 49(11−12): 637−43.
  335. Van Hoydonck P.G., Wuyts W.A., Vanaudenaerde B.M. et al. Quantitative analysis of 8-isoprostane and hydrogen peroxide in exhaled breath condensate. IIEur Respir J. 2004- 23(2): 189−92.
  336. Vass G., Huszar E., Barat E. et al. Comparison of nasal and oral inhalation during exhaled breath condensate collection. //Am J Respir Crit Care Med. 2003- 167(6): 850−5.
  337. Vaughan J., Ngamtrakulpanit L., Pajewski T.N. et al. Exhaled breath condensate pi I is a robust and reproducible assay of airway acidity. IIEur Respir J. 2003- 22(6): 889−94.
  338. Vignola A.M., Bonanno A., Mirabella A. et al. Increased levels of elastase and alpha 1-antitrypsin in sputum of asthmatic patients. IIAm J Respir Crit Care Med. 1998, 157(2): 505−11.
  339. Vignola A.M., Rennar S.I., Hargreave F.E. et al. Standardised methodology of sputum induction and processing. Future directions. IIEur Respir J. 2002- 37: 51s-55s.
  340. Vogelberg C., Hirsch Т., Rosen-Wolff A. et al. Pseudomonas aeruginosa and Burkholderia cepacia cannot be detected by PCR in the breath condensate of patients with cystic fibrosis. HPediatr Pulmonol. 2003- 36(4): 348−52.
  341. Wang X.F., Tsang L.L., So S.C., Chan H.C. Suppression of ATP-induced Cl (-) secretion by enhanced expression of epithelial Na (+) channels in mouse endometrial epithelium. 11 Cell Biol Int. 2001- 25(10): 1017−20.
  342. Wilson W.C., Swetland J.F., Benumof J.L. et al. General anesthesia and exhaled breath hydrogen peroxide. //Anesthesiology. 1992- 76(5): 70 310.
  343. Wood L.G., Gibson P.G., Garg M.L. Biomarkers of lipid peroxidation, airway inflammation and asthma. IIEur Respir J. 2003- 21(1): 177−86.
  344. Yamanouchi H., Fujita J., Hojo S. et al. Neutrophil elastase: alpha-1-proteinase inhibitor complex in serum and bronchoalveolar lavage fluid in patients with pulmonary fibrosis. I I Ear Respir J 1998- 11:120−25.
  345. Yaropolov A. I., Malovik V., Varfolomeev S. D., Berezin I.V. Electroreduction of hydrogen peroxide on an electrode with immobilized peroxidase. UDokl AkadNauk SSSR. 1979- 249: 1399−1401.
  346. Zacharasiewicz A., Wilson N., Lex C. et al. Repeatability of sodium and chloride in exhaled breath condensates. UPediatr Pulmonol. 2004- 37(3): 273−5.
  347. Zanconato S., Carraro S., Corradi M. et al. Leukotrienes and 8-isoprostane in exhaled breath condensate of children with stable and unstable asthma. IIJ Allergy Clin Immunol. 2004- 113(2): 257−63.
  348. Zappacosta В., Persichilli S., Mormile F. et al. A fast chemiluminescent method for H (2)0(2) measurement in exhaled breath condensate. I/Clin Chim Acta. 2001- 310(2): 187−91.
  349. Zayasu K., Sckizawa K., Okinaga S. et al. Increased carbon monoxide in exhaled air of asthmatic patients. IIAm J Respir Crit Care Med. 1997- 156: 1140−43.
  350. Zervas E., Loukides S., Papatheodorou G. et al. Magnesium levels in plasma and erythrocytes before and after histamine challenge. IIEur Respir J. 2000- 16:621−625.
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?