Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Оценка биологической полноценности ооцитов свиней на основе маркеров ядерно-цитоплазматического созревания

Диссертация: Оценка биологической полноценности ооцитов свиней на основе маркеров ядерно-цитоплазматического созревания
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Объем и структура диссертации. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследований, результатов исследований, их обсуждения, выводов, предложений, списка использованной при написании диссертации литературы, включающего 230 источников, в том числе 216 на иностранном языке. Диссертация изложена на 121 странице, включает 10 таблиц, 27 рисунков (в том числе… Читать ещё >

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Фолликулогенез свиней
      • 1. 1. 1. Механизмы, регулирующие фолликуло- и оогенез свиней, в зависимости от степени половой и физиологической зрелости
    • 1. 2. Фундаментальные основы мейотического созревания ооцитов млекопитающих
      • 1. 2. 1. Преобразования хроматина при созревании ооцитов
      • 1. 2. 2. Цитоплазматические изменения в процессе формирования зрелой яйцеклетки
      • 1. 2. 3. Роль митохондрий и других органелл в созревание ооцитов
    • 1. 3. Биологические и технологические аспекты созревания ооцитов и получения эмбрионов свиней in vitro
  • 2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 2. 1. Материал исследований
    • 2. 2. Методы исследований
      • 2. 2. 1. Выделение фолликулов, фолликулярной жидкости и ооцит-кумулюсных комплексов из яичников свиней
      • 2. 2. 2. Морфометрический анализ популяции фолликулов
      • 2. 2. 3. Окраска ооцитов бриллиантовым кристаллическим красителем
      • 2. 2. 4. Определение уровня содержания кальция в ооцитах свиней
      • 2. 2. 5. Оценка функционального состояния митохондрий в ооцитах свиней с использованием флуоресцентных зондов
      • 2. 2. 6. Культивирование ооцит-кумулюсных комплексов
      • 2. 2. 7. Оплодотворение яйцеклеток свиней in vitro
      • 2. 2. 8. Культивирование эмбрионов свиней
      • 2. 2. 9. Оценка состояния ядерного материала в клетках гранулезы и кумулюса
      • 2. 2. 10. Цитогенетический анализ хроматина ооцитов эмбрионов
      • 2. 2. 11. Микроскопирование, микрофотосъемка и статистическая обработка полученных данных
  • 3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 3. 1. Морфометрическая характеристика популяции овариальных фолликулов свиней
    • 3. 2. Оценка статуса хроматина соматических клеток антральных овариальных фолликулов и уровня содержания кальция в ооцитах
    • 3. 3. Родамин 123 как маркер функционального состояния митохондрий в ооцитах свиней
    • 3. 4. Бриллиантовый кристаллический краситель, как индикатор активности глюкозо- 6 -фосфатдегидрогеназы в ооцитах свиней
      • 3. 4. 1. ВСВ-диагностика популяции ооцитов свиней, выделенных из фолликулов разного диаметра
    • 3. 5. Моделирование систем дозревания и оплодотворения ооцитов свиней vitro
      • 3. 5. 1. Морфология и статус хроматина клеток кумулюса при их культивировании в различных системах
    • 3. 6. Культивирование ооцитов свиней в различных системах
      • 3. 6. 1. Исследование роли фолликулярной жидкости и структурных элементов фолликула в формировании зрелой яйцеклетки in vitro
      • 3. 6. 2. Использование MitoTracker Orange CMTMRos для оценки адекватности систем дозревания ооцитов свиней in vitro
  • ОБСУЖДЕНИЕ
  • ВЫВОДЫ
  • ПРЕДЛОЖЕНИЯ

Оценка биологической полноценности ооцитов свиней на основе маркеров ядерно-цитоплазматического созревания (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Последнее десятилетие ознаменовалось интенсификацией разработки и совершенствования инновационных клеточных репродуктивных биотехнологий в свиноводстве [163]. Технология получения эмбрионов вне организма для трансплантации, трансгенез и клонирование свиней, созданияе линий эмбриональных стволовых клеток для дальнейшей ксенотрансплантации органов основываются на базовом методе созревания донорских ооцитов свиней in vitro [141, 26]. Несмотря на несомненные успехи в этой области, уровень оплодотворяемости ооцитов и развития интактных, клонированных или трансгенных эмбрионов продолжает оставаться на низком уровне [99, 38]. Множество факторов вовлечены в процессы экстракорпорального созревания ооцитов, их культивирования и оплодотворения: возраст животного-донора, размер фолликула, морфология ооцит-кумулюсного комплекса, среда для созревания ооцитов и культивирования эмбрионов, качество сперматозоидов, температурный и газовый режимы [126, 50]. Отбор ооцит-кумулюсных комплексов для культивирования — начальный этап клеточных репродуктивных технологий, определяющий дальнейший успех или неудачу эксперимента [185]. Исходная популяция донорских ооцитов, используемых в экспериментах, гетерогенна, Разработка эффективных тестов оценки качества ооцит-кумулюсных комплексов — важная задача эмбриотехнологов. Рост ооцита и формирование зрелой яйцеклетки в организме — комплексный процесс преобразования хроматина и структурно-функциональных изменений ооплазмы и клеточных органелл. В связи с этим, особый интерес представляет, сравнительный анализ статуса хроматина кумулюса и ооцитов, функционального состояния митохондрий, уровня содержания кальция в ооцитах, выделенных из фолликулов разного диаметра, и отобранных с помощью витального красителя бриллиантового кристаллического голубого (ВСВ — индикатора активности). Настоящее исследование посвящено разработке эффективных тестов качества исходной популяции донорских ооцитов свиней и созревших гамет.

Диссертационная работа выполнена в соответствии с программой фундаментальных и приоритетных прикладных исследований по научному обеспечению развития агропромышленного комплекса РФ на 2006;2010 годы по теме: 06.01.03 «Исследовать молекулярно-генетические, биохимические, цитологические и эмбриологические процессы, лежащие в основе трансгенеза, создать генноинженерные конструкции и разработать способы, повышающие эффективность биоинженерных технологий получения животных с заданными свойствами» № гос. регистрации: 15 070.7815014664.06.8.001.0.

Цель и задачи исследований. Цель настоящей работы — исследовать процесс формирования зрелой яйцеклетки свиньи in vitro на основе использования маркеров ядерно-цитоплазматического созревания и разработка систем культивирования для интенсификации клеточных репродуктивных технологий.

В соответствии с поставленной целью в работе решались следующие задачи:

1. Провести мониторинг овариальных фолликулов свиней с учетом диаметра фолликула, васкуляризации, тургора, статуса хроматина женских гамет и соматических клеток фолликула (кумулюса и гранулезы), уровня содержания кальция во внутриклеточных депо ооцитов;

2. Оценить исходную популяцию донорских ооцитов свиней, выделенных из фолликулов разного диаметра с учетом ВСВ-теста (маркер активности глюкозо-6-фосфат дегидрогеназы) и уровня содержания депонированного кальция;

3. Проанализировать возможность использования родамина 123 для оценки функционального состояния ооцитов на различных стадиях мейоза;

4. Оценить перспективы использования различных систем культивирования для получения зрелых яйцеклеток и доимплантационных эмбрионов свиней на основе следующих параметров:

— стадии мейоза ооцитов;

— степени экспансии клеток кумулюса;

— уровня пикнозов в кумулюсе;

— интенсивности флуоресценции MitoTracker Orange CMTMRos;

— оплодотворяемости ооцитов;

— развития доимплантационных эмбрионов.

Научная новизна. Впервые были получены следующие данные:

— дегенерация хроматина соматических клеток антральных фолликулов свиней сопровождается возрастанием уровня содержания кальция во внутриклеточных депо ооцитов;

— на основе ВСВ-теста выявлена гетерогенность популяции донорских ооцитов свиней. В фолликулах диаметром менее 3 мм содержится достоверно меньшее число ВСВ (+) ооцитов по сравнению с фолликулами диаметром — 3−5 и более 5 мм (71% против 86%, соответственно);

— растущие ВСВ (-) и завершившие фазу роста ВСВ (+) ооциты отличаются по уровню содержания кальция во внутриклеточных депо;

— изменения в интенсивности флуоресценции родамина 123 в ооцитах связаны со статусом хроматина (стадией мейоза и дегенерацией);

— при использовании в среде созревания ВСВ (+) ооцитов свиней структурных элементов фолликула и фолликулярной жидкости снижается доля ооцитов с дегенерацией хроматина, возрастает интенсивность флуоресценции MitoTracker Orange CMTMRosповышается число эмбрионов на завершающих стадиях доимплантационного развития.

Теоретическая и практическая значимость работы. На основе использования маркеров ядерно-цитоплазматического созревания (статус хроматина, уровень содержания депонированного кальция, функциональное состояние митохондрий) теоретически обоснована и разработана модель экстракорпорального созревания ооцитов свиней. Прослежена динамика флуоресценции родамина 123 в ооцитах на разных стадиях мейоза, отмечены достоверные различия в показателях интенсивности флуоресценции родамина 123 в ооцитах с нормальным и дегенерированным хроматином. Показано, что процесс формирования зрелой яйцеклетки сопровождается повышением интенсивности флуоресценции MitoTracker Orange CMTMRos в ооцитах, созревших в присутствии структурных элементов фолликулов. Деление ооцитов на «растущие» и «выросшие» с помощью индикатора активности глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы позволило выявить гипераккумуляцию ионов кальция во внутриклеточных депо ВСВ (+) ооцитов, что может свидетельствовать о снижении уровня метаболической активности перед реинициацией мейоза. Проанализирован характер ооцит-кумулюсных взаимодействий в процессе созревания ооцитов в различных системах культивирования. Активная экспансия клеток, снижение уровня пикнозов свидетельствует о возможности увеличение «продуктов» секреции клеток кумулюса (не затронутых деструктивными изменениями), детерминирующих формирование факторов, ответственных за приобретение ооцитами компетентности к завершению мейотического созревания, оплодотворению и развитию эмбрионов. Практическая ценность работы представлена разработкой системы дозревания ВСВ (+) ооцитов свиней из фолликулов диаметром 3−5 мм на основе использования структурных элементов фолликула и его жидкости, позволяющей повышать выход зрелых яйцеклеток и биологически полноценных эмбрионов свиней.

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 9 научных работ, в том числе — 2 в журналах, входящих в Перечень ведущих рецензируемых научных журналов и изданий, рекомендованных ВАК Министерства образования и науки России.

Апробация работы. Материалы диссертации были представлены и одобрены на ежегодных аспирантских сессиях и отчетах ГНУ ВНИИГРЖ Россельхозакадемии, на Международных конференциях: «Рецепция и внутриклеточная сигнализация», с. Пущино, 2007; «Современные достижения и проблемы биотехнологии сельскохозяйственных животных: роль нанотехнологий в реализации приоритетных задач биотехнологии», ВИЖ, Москва, 2008; «Пути интенсификации отрасли свиноводства в странах СНГ», Гродно, Беларусь, 26−27 августа 2009; 25-й ежегодной конференции Европейской Ассоциации по трансплантации эмбрионов, Польша, сентябрь 2009; «Научное обеспечение развития АПК в условиях реформирования», Санкт-Петербург-Пушкин, январь 2009.

Положения, выносимые на защиту:

Популяция ооцитов свиней из фолликулов диаметром 3−5 мм гетерогенна и состоит из ВСВ (+) и ВСВ (-) ооцитов, т. е. завершивших фазу роста (86%) и растущих (14%);

В ВСВ (+) ооцитах свиней уровень содержания кальция во внутриклеточных депо превышает таковой в ВСВ (-) ооцитах;

Деструктивные изменения хроматина в кумулюсных и гранулезных клетках из фолликулов свиней сопровождаются возрастанием уровня содержания кальция во внутриклеточных депо ооцитов;

Уровень интенсивности флуоресценции родамина 123 в ооцитах свиней изменяется в зависимости от статуса хроматина (стадии мейоза и дегенерации);

В ооцитах, созревших в присутствии структурных элементов фолликулов (стенок фолликулов — СФ) и фолликулярной жидкости (ФЖ), достоверно возрастает интенсивность флуоресценции MitoTracker Orange CMTMRos;

Использование для созревания ооцитов in vitro структурных элементов фолликулов (диаметр 3−5мм) в комплексе с гормонами и ФЖ (диаметр фолликулов 3−5мм) позволяет получать 38% эмбрионов на стадиях поздней морулы, бластоцисты.

Объем и структура диссертации. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследований, результатов исследований, их обсуждения, выводов, предложений, списка использованной при написании диссертации литературы, включающего 230 источников, в том числе 216 на иностранном языке. Диссертация изложена на 121 странице, включает 10 таблиц, 27 рисунков (в том числе 17 фотографий).

ВЫВОДЫ.

1. В фолликулах (диаметром 3−5 мм) с обширной васкуляризацией, высоким тургором уровень соматических клеток с пикнотичеекими ядрами достоверно ниже, чем в фолликулах с морфологическими признаками дегенерации (4,0 ± 1,0% против 17,0 ± 1,98%, Р < 0,001).

2. Обнаружено, что дегенерация хроматина в соматических клетках фолликулов сопровождается достоверным возрастанием уровня содержания кальция во внутриклеточных депо ооцитов.

3. Установлено, что в ооцитах с дегенерированным хроматином на разных стадиях мейоза снижается уровень флуоресценции родамина 123 по сравнению с ооцитами с нормальным хроматином (диплотена — 2,22±0,37 усл.ед. против 2,63±0,21 усл.ед., Р < 0,01- метафаза I — 1,77±0,37 усл.ед., 2,51±0,37 усл.ед., Р < 0,05, метафазы П — 0,77±0,12 усл.ед., 1,53±0,35 усл.ед., Р < 0,001).

4. Выявлена гетерогенность исходной популяции ооцитов свиней, выделенных из фолликулов разного диаметра, на основании ВСВ-теста. Наибольшее число ВСВ (+) ооцитов обнаружено в фолликулах диаметром 3−5 мм и более 5 мм (86% против 71% ооцитов, выделенных из фолликулов диаметром менее 3 мм, Р < 0,001).

5. Обнаружено, что ВСВ (+) и ВСВ (-) ооциты свиней, выделенные из фолликулов разного диаметра, различаются по уровню содержания кальция во внутриклеточных депо. Интенсивность флуоресценции комплекса хлортетрациклин-мембрана-кальций в ВСВ (+) ооцитах, выделенных из фолликулов разного диаметра превышала таковую в ВСВ (-) ооцитах .

6. Внесение в среду дозревания ВСВ (+) ооцитов свиней структурных элементов фолликулов (стенок фолликулов диаметром — 3−5мм) и 10% фолликулярной жидкости (диаметр фолликулов 3−5 мм) снижает долю ооцитов с дегенерированным хроматином (14% против 28%, Р < 0,05).

7. Уровень интенсивности флуоресценции MitoTracker Orange CMTMRos в ВСВ (+) ооцитах, созревших в системе с фолликулярной жидкостью (диаметр фолликулов 3−5 мм) и стенками фолликулов (диаметр фолликулов 3−5 мм) достоверно превышает таковой в ооцитах, прокультивированных без структурных элементов фолликулов и фолликулярной жидкости (366,23±15,05 |ла против 127,4 ±10,53 jaa, Р < 0,001).

8. Созревание ВСВ (+) ооцитов в системе с фолликулярной жидкостью и структурными элементами фолликула обеспечивает высокий выход эмбрионов на завершающих стадиях доимплантационного развития (7% против 38%, Р< 0,001).

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

1. В технологиях получения эмбрионов свиней in vitro, клонировании, трансгенезе с целью получения биологически полноценных яйцеклеток проводить предварительное ВСВ — тестирование исходной популяции ооцитов. Для созревания ооцитов использовать ВСВ (+) ооциты, как завершивших стадию роста.

2. С целью повышения эффективности технологии получения биологически полноценных ооцитов in vitro использовать для их экстракорпорального созревания следующую систему: среда NCSU-23 с 10 М.Е. хорионического гонадотропина человека, 10 М.Е. хорионического гонадотропина лошади, дополненную 10% фолликулярной жидкости из фолликулов диаметром 3- 5 мм и стенками фолликулов (диаметр фолликулов 3- 5 мм).

3. Результаты исследований могут быть использованы научными сотрудниками, аспирантами и студентами ветеринарных, сельскохозяйственных, медицинских ВУЗов, НИИ и специалистами биотехцентров репродукции.

Показать весь текст

Список литературы

  1. , В. Г. Влияние гонадотропных гормонов на морфологию фолликулов в процессе их культивирования вне организма / В. Г. Бехтина, П. Ф. Ковалев, Л. Д. Галиева // Бюл. ВНИИГРЖ. Л. — 1990. — Вып. 123. — С.24 — 27.
  2. , А.К. Методические рекомендации по культивированию ооцитов и фолликулов коров / А. К. Голубев, Б. П. Завертяев, Т. И. Кузьмина -1989.-С. 35.
  3. В.Ю., Кузьмина Т. И., Шокин О. В. Зависимость освобождения Са из внутриклеточных депо от уровня NADH и FAD в оплодотворенных и неоплод отворенных яйцеклетках коров // Цитология. 2005. — Т.47. — №.8. — С.704−708.
  4. , А.П. Раннее развитие млекопитающих/ А. П. Дыбан II — Л.: «Наука», 1988.-С. 228.
  5. , В.В. Культивирование ооцитов коров с фолликулярными клетками / В. В. Каганская, Б. Е. Свиридов // Тез. докл. Всес. совещ./ Проблемы развития Биотехнологии в животноводстве. Дубровицы, 1990. — С.14−18.
  6. , Т.И. Методы оценки функционального состояния донорских ооцитов, соматических клеток фолликулов и эмбрионов сельскохозяйственных животных. Методические рекомендации / Т. И. Кузьмина,
  7. B.Ю. Денисенко, И. Ю. Лебедева // М., 2005. — С.32.
  8. , Т.И. Эффекты пролактина в различных системах культивирования на созревание ооцитов коров и их способность к дальнейшему развитию / Т. И. Кузьмина, И. Ю, Лебедева, X. Торнер, X. Альм // Онтогенез. — 2001.-№ 32 (2).-С. 140−147.
  9. , Г. Ф. Биометрия / Г. Ф. Лакин // М.: «Высш. Шк.»: — 1990.1. C. 352.
  10. , И.Ю. Взаимная модуляция регуляторного влияния пролактина и соматотропина на синтез ДНК в клетках гранулезы коров / И. Ю. Лебедева, Т. И. Кузьмина В.А. Лебедев, Т. А. Гойло // Цитология. 2000. — Т. 42(5). — С. 468−472.
  11. , И.Ю. Модуляция пролактином ингибирующего влияния теофиллина на созревание ооцит-кумулюсных комплексов коров in vitro / И. Ю. Лебедева, О. С. Скотти, Т. И. Кузьмина // Цитология. 2006. — Т.48(12). — С. 1010−1015.
  12. , Г. П. Получение ранних зародышей крупного рогатого скота для целей трансплантации / Г. П. Маленко, В. П. Рябых, В. В. Титкова // Всес. совещ. / Трансплантация эмбрионов с/х ж.-х. Алма-Ата, 1989. — С.28−29.
  13. , А.И. Факторы регуляции дифференцировки соматических клеток фолликулов яичников млекопитающих / А. И. Никитин, О.Ф. Воробьева//Цитология. 1988. — Т. 30, № 10. — С. 1155−1171.
  14. , Н.Н. Эпидермальный фактор роста / Н. Н Никольский, А. Л. Сорокин, А. Б. Сорокин // Л.: Наука, 1987. С. 200.
  15. , Г. А. Влияние тканевой культуры фолликулов на мейотическое созревание и оплодотворение in vitro ооцитов коров: Автореф. дис.. канд. биол. наук: 03.00.15 // Шагиахметова Галина Альбертовна. С-Пб. -Пушкин, 1992.-С. 17.
  16. Abeydeera, L.R. In vitro production of embryos in swine / L.R. Abeydeera // Theriogenology. 2002. — V. 57. -N. 1. — P. 256−273.
  17. Al-Katanani, Y.M. Effect of season and exposure to heat stress on oocyte competence in Holstein cows / Y.M. Al-Katanani, F.F. Paula-Lopes, P.J. Hansen // Journal of Dairy Science. -2002. -V. 85. -P. 390−396.
  18. Altura, B. Ca2+ coupling in vascular smooth muscle: Mg2+ and buffer effects on contractility and membrane Ca2+ movements / B. Altura, A. Carella, P. Turlapaty // Can. J. Physiol. Pharm. -1982. -V. 60. -P. 459182.
  19. Arlotto, T. Aspects of follicle and oocyte stage that affect in vitro maturation and development of bovine oocytes / T. Arlotto, J.L. Schwartz, N.L. First, M.L. Leibfried Rutledge // Theriogenology. 1996. -V. 45. -P. 943−956.
  20. Armstrong, D.T. Effects of maternal age on oocyte developmentalcompetence / D.T. Armstrong // Theriogenology. 2001. -V. 55. -P. 1303−1322.
  21. Beitner, R. Control of glycolytic enzymes through binding to cell structures and by glucose-1,6-bisphosphate under different conditions: the role of Ca2+ and calmodulin / R. Beitner // Int. J. Biochem. 1993. -V. 25. -P. 297−305.
  22. Black, J.L. Oogenesis and ovarian development in the prenatal pig / J.L. Black, B.H. Erickson // Anatomical Record. -1968. -V. 161. P. 45−56.
  23. Blondin, P. Manipulation of follicular development to produce developmentally competent bovine oocytes / P. Blondin, D. Bousquet, T. Hermenegilde, F. Barnes, M.A. Sirard // Biol. Reprod. 2002. -V. 66. -P. 38−43.
  24. Blondin, P. Oocyte and follicular morphology as determining characteristics for developmental competence in bovine oocytes / P. Blondin, M.A. Sirard // Mol. Reprod. Dev. 1995. -V. 41. -P. 54−62.
  25. Boquest A.C. Production of cloned pigs from cultured fetal fibroblast cells / A.C. Boquest, C.G. Grupen, S J. Harrison, S.M. Mcllfatrick, R.J. Ashman, A.J. d’Apice, M.B. Nottle // Biol. Reprod. 2002. -V. 66. -N. 5. -P. 1283−1287.
  26. Booth, P.J. The effect of oxygen tension on porcine embryonic development is dependent on embryo type / P.J. Booth, P. Holm, H. Callesen // Theriogenology. 2005. -V.63. -P. 2040−2052.
  27. Briissow, K. P. Follicular and oocyte development in gilts of different age / K. P. Briissow, J. Ratky, H. Tomer, I. Egerszegi, F. Schneider, L. Solti, A. Tuchscherer // Acta Vet. Hung. -2002. -V. 50. -P. 101−110.
  28. Calarco, P.G. Polarization of mitochondria in the unfertilized mouse oocyte / P.G. Calarco // Dev. Genet. 1995. -V. 16. -P. 36−43.
  29. Camous, S. Plasma prolactin LH, FSH, and estrogen excretion patterns in gilts during sexual development / S. Camous, A. Prunier, J. Pelletier // J. Anim. Sci. -1985. -V. 60. -P. 1308−1317.
  30. Campbell, A. Measurement of intracellular calcium ions and oxygen radicals in polymorphonuclear leucocyte-erythrocyte 'ghost' hybrids / A. Campbell, M.B. Hallett //J. Physiol. 1983. -V. 338. -P. 537−50.
  31. Chakraborti, T. Mitochondria and calcium: from cell signalling to cell death / T. Chakraborti, S. Das, M. Mondal, S. Roychoudhury, S. Chakraborti // Cell. Signal. -1999. -V. 11. -N. 2. -P. 77−85.
  32. Coleman, D. A. Factors affecting ovarian compensation after unilateral ovariectomy in gilts / D. A. Coleman, M. W. Fleming, R. A. Dailey // J. Anim. Sci. -1984. -V. 59. -P. 170−176.
  33. Coy, P. Birth of piglets after transferring of in vitro-produced embryos pre-matured with R-roscovitine / P. Coy, R. Romar, S. Ruiz, S. Canovas, J. Gadea, F. Garcia Vazquez, C. Matas //Reproduction. 2005. -V. 129. -N. 6. -P. 747−755.
  34. Cran, D.G. Cortical granules during oocyte maturation and fertilization / D.G. Cran // J. Reprod Fertil. 1989. -V. 38. -P. 49−62.
  35. Dekel, N. Protein phosphorylation/dephosphorylation in the meiotic cell cycle of mammalian oocytes / N. Dekel // Reviews of Reproduction. -1996. — V. 1.- P. 82−88.
  36. De Loos, F. Heterologous cell contacts and metabolic coupling in bovine cumulus oocyte complexes / F. De Loos, P. Kastrop, P. Van Maurik, Т.Н. Van Beneden, T.A.M. Kruip // Mol. Reprod. Dev. 1991. -V. 28. -P. 255−259.
  37. De Loose, F. Structural aspect of bovine oocyte maturation in vitro/ F. De Loose, P. Van Maurik, T. Van Beneden, T.A. Kruip // Molecular Reproduction and Development. -1992. -V. 31. -P. 208−214.
  38. De Rensis, F. Correlation between LH response to challenges with GnRH and naloxone during lactation, and LH secretion and follicular development after weaning in the sows/ F. De Rensis, G. R. Foxcroft // Anim. Reprod. Sci. -1999.-V. 56.-P. 143−152.
  39. De Schepper, G.G. A cytochemical method for measuring enzyme activity in individual mouse oocytes / G.G. De Schepper, C.J. van Noorden, F. Koperdraad // J. Reprod Fert. 1985. -V. 74. -P. 709−716.
  40. De Schepper, G.G. Age-related change of glucose-6-phosphate dehydrogenaseactivity in mouse oocytes / G.G. De Schepper, С.J. van Noorden, J.M. Houtkooper // Histochem J. 1987. -V. 19. -P. 467170.
  41. Di Zerega, G.S. Folliculogenesis in the primate ovarian cycle / G.S. Di Zerega, G.D. Hodgen // Endoc Rev. 1981. — V.2. -N. 1. -P. 27−49.
  42. Downs, S. M. Culture conditions affect meiotic regulation in cumulus cell-enclosed mouse oocytes / S.M. Downs, A. M. Mastropolo // Mol. Reprod. Dev. 1997. -V. 46. — P. 551−566.
  43. Driancourt, M.A. Effect of gonadotropin deprivation on follicular growth in gilts / M.A. Driancourt, A. Locatelli, A. Prunier // Reprod Nutr Dev. -1995. -V. 35. -P. 663−673.
  44. Driancourt, M.A. Follicular dynamics in sheep and cattle / M.A. Driancourt // Theriogenology. 1991. -V. 35. -P. 55−68.
  45. Dubuc, A. Effect of coculturing spermatozoa with oviductal cells on the incidence of polyspermy in pig in vitro fertilization / A. Dubuc, M.A. Sirard // Mol Reprod Dev. 1995. — V. 41. -N. 3. -P. 360−367.
  46. Ducibella, T. Quantification and localization of cortical granules during oogenesis in the mouse / T. Ducibella, P. Duffy, J. Buetow // Biol Reprod. -1994.-V. 50.-P. 467−473.
  47. Ducibella T. Changes in cell surface and cytoplasmic organization during early embryogenesis in preimplantation mouse embryo / T. Ducibella, T. Ukena, M. Kamovsky, E. Anderson // J. Cell Biol. -1977. -V. 74. -P. 153−157
  48. Ducibella, T. Oocyte meiotic maturation and correlation with an egg-induced modification of the zone Pellucida / T. Ducibella, S. Kurasava, S. Rangarajan // Dev. Biol. -1990. V. 137. -P. 46−55.
  49. Duranthon, V. The developmental competence of mammalian oocytes: a convenient but biologically fuzzy concept / V. Duranthon, J.P. Renard // Theriogenology. 2001. -V. 55. -P. 1277−1289.
  50. Dvorak, M. Delivery after intrauterine embryo transfer obtained by fertilization and oocyte culture in vitro / M. Dvorak, J. Tesarik, P. Travnik, L. Pilka, P. Ventruba, K. Krejci, J. Soska // Cesk Gynekol. 1985. — V. 50. -N. 7. -P. 452−459.
  51. Ebensperger, C. Changes at the hamster oocyte surface from the germinal vesicle stage to ovulation / C. Ebensperger, C. Barros // Gamete Res. — 1984.-V. 9.-P. 387−397.
  52. Eppig, J.J. Development in vitro of mouse oocytes from primordial follicles / J.J. Eppig, M.J. O’Brien // Biology of Reproduction. -1996. -V. 54. P. 197−207.
  53. Eppig, J.J. Coordination of nuclear and cytoplasmic oocyte maturation in eutherian mammals / J.J. Eppig // Reprod. Fertil. Dev. -1996. -V. 8. -N. 4. -P. 485−489.
  54. Eppig, J.J. Relationship between the developmental programs controlling nuclear and cytoplasmic maturation of mouse oocytes / J.J. Eppig, R.M. Schultz, M. O’Brien, F. Chesnel // Developmental Biology. -1994. -V. 164. -P. 1−9.
  55. Ericsson, S.A. Assessment of porcine oocytes using brilliant cresyl blue / S.A. Ericsson, M.L. Boice, H. Funahashi, B.N. Day // Theriogenology. -1993.-V. 39.-P. 214.
  56. Esbenshade, К. L. Changes in plasma hormone concentrations associated with onset of puberty in the gilt / K. L. Esbenshade, A. M. Paterson, T. M. Cantley, B. N. Day // J. Anim. Sci. -1982. -V. 54. -P. 320−324.
  57. Esbenshade, K. L. Ovarian response to pregnant mare serum gonadotropin and porcine pituitary extract in gilts actively immunized against gonadotropin releasing hormone / K. L. Esbenshade // J. Anim. Sci. -1987. -V. 65. -P. 1768−1774.
  58. Fair, T. Bovine oocyte diameter in relation to maturational competence and transcriptional activity / T. Fair, P. Hyttel, T. Greve // Mol Reprod Dev. 1995. -V. 42. -P. 437−442.
  59. Fortune, J.E. Follicular development: the role of the follicular microenvironment in selection of the dominant follicle / J.E. Fortune, G.M. Rivera, M.Y. Yang // J. Anim. Sci. 2004. -V.82−83. — P. 109−126.
  60. Fortune, J.E. Ovarion follicular growth and development in mammals / J.E. Fortune // Biol: Reprod. 1994. — V. 50. — P. 225−232.
  61. Fouladi-Nashta, A.A. Impact of dietary fatty acids on oocyte quality and development in lactating dairy cows / A.A. Fouladi-Nashta, C.G. Gutierrez, J.G. Gong, P.C. Garnsworthy, R. Webb // Biology of Reproduction. -2007. -V. 77. -P. 9−17.
  62. Funahashi, H. Advances in in vitro production of pig embryos / H. Funahashi, B.N. Day // Journal of Reproduction and Fertility Supplement. -1997. -V. 52.-P. 271−283.
  63. Funahashi, H. Effect of tissue inhibitor of metalloproteinase (TIMP-1) on early development of swine oocytes matured and fertilized in vitro / H. Funahashi, E.W. Mclntush, M.F. Smith, B.N. Day // Theriogenology. -1997 b. -V. 47. -P. 277.
  64. Funahashi, H. Low salt maturation medium enhances the histone HI kinase activity of porcine oocytes at the end of in vitro maturation / H. Funahashi, T.T. Stumpf, N.H. Kim, B. Day // Journal of Reproduction and Development. -1996.-V. 42.-P. 109−115.
  65. Giacomello, M. Mitochondrial Ca2+ as a key regulator of cell life and death / M. Giacomello, I. Drago, P. Pizzo, T. Pozzan // Cell Death Differ. -2007. -V. 14.-N. 7.-P. 1267−1274.
  66. Ginther, O. J. Major and minor follicular waves during the equine estrous cycle / O. J. Ginther // J. Equine Vet. Sci. -1993. -V. 13. -P. 18−25.
  67. Gosden, R.G. Numbers of follicles and oocytes in mammalian ovaries and their allometric relationships / R.G. Gosden, E.E. Telfer // Journal of Zoology London. -1987. -V. 211. -P. 169−175.
  68. Greenwald, G.S. Isolation and preliminary characterization of pig primordial follicles /G.S. Greenwald, R.M. Moor // Journal of Reproduction and Fertility. -1989. -V. 87. -P. 561−571.
  69. Grupen, C.G. Cysteamine enhances in vitro development of porcine oocytes matured and fertilized in vitro / C.G. Grupen, H. Magashima, M.B. Nottle //Biology of Reproduction. -1995. -V. 53. -P. 173−178.
  70. Guthrie, H. D. Effects of gonadotropin treatment on ovarian follicle growth and granulosa cell aromatase activity in prepuberal gilts / H. D. Guthrie, D. J. Bolt, B. S. Cooper // J. Anim. Sci. -1990. V. 68. -P. 3719−3726.
  71. Guthrie, H. D. Follicular atresia in pigs: Measurement and physiology / H. D. Guthrie, R. W. Grimes, B. S. Cooper, J. M. Hammond // J. Anim. Sci. -1995. -V. 73. -P. 2834−2844.
  72. Guthrie, H. D. The follicular phase in pigs: Follicle populations, circulating hormones, follicle factors and oocytes/ H. D. Guthrie // J. Anim. Sci. -2005. -V. 83. -P. 79−89.
  73. Hagemann, L.J. Influence of the dominant follicle on oocytes from subordinate follicles / L.J. Hagemann // Theriogenology. -1999. —V. 51. —P. 449 459.
  74. Hansen, P.J. Realizing the promise of IVF in cattle--an overview / P.J. Hansen // Theriogenology. 2006. -V. 65. -N. 1. -P. 119−125.
  75. Hickey, Т.Е. Interactions between androgen and growth factors in granulose cell subtypes of porsine antral follicles I Т.Е. Hickey, D.L. Marrocco, R.B. Gilchrist // Biol. Reprod. 2004. — V. 71. — P. 45−52.
  76. Hirao, Y. In vitro growth and maturation of pig oocytes / Y. Hirao, T. Nagai, M. Kubo, T. Miyano, S. Kato // Journal of Reproduction and Fertility. -1994. -V. 100. -P. 333−339.
  77. Hulshof S. C. J. Isolation and characterization of preantral follicles from foetal bovine obaries / S. C. J. Hulshof, J. L. Figueiredo, J. E. Beckers, M. M. Bevers, R. Vanden Hurk //Vet. Quartery. -1994. -V. 16. -P. 78−80.
  78. Hunter, A.G. Stage dependent effects of inhibiting RNA and protein synthesis on meiotic maturation of bovine oocytes in vitro / A.G. Hunter, R.M. Moor // J. Dairy Sci. 1987. -V. 70. -P. 1646−1651.
  79. Hunter, M. G. Histological evidence for heterogeneity in the development of preovulatory pig follicles / M. G. Hunter, S. A. Grant, G. R. Foxcroft // J. Reprod. Fertil. -1989. -V. 86. -P. 165−170.
  80. Hunter, M. G. Evidence for and implications of follicular heterogeneity in pigs / M. G. Hunter, T. Wiesak // J. Reprod. Fertil. -1990. -V. 40. -P. 163−177.
  81. Hunter, M. G. Oocyte maturation and ovum quality in pigs / M. G. Hunter // Reviews of Reproduction. 2000. -V. 5. -P. 122−130.
  82. Hyttel, P. Oocyte growth, capacitation and final maturation in cattle / P. Hyttel, T. Fair, H. Callesen, T. Greve // Theriogenology. 1997. -V. 47. -P. 23−32.
  83. Hyttel, P. Rapid method to prepare mammalian oocytes and embryos for transmission electron microscopy / P. Hyttel, I. Madsen // Acta Anat. 1987. — V. 129. -P. 12−14.
  84. Hyttel, P. Ultrastructural features of preovulatory oocyte maturation in superovulated cattle / P. Hyttel, H. Callesen, T. Greve // J. Reprod. Fertil. 1986. — V. 76. -P. 645−656.
  85. Hyttel, P. Ultrastructure of in-vitro oocyte maturation in cattle / P. Hyttel, K.P. Xu, S. Smith, T. Greve // J. Reprod Fertil. 1986. -V. 78. -P. 615 625.
  86. Ikeda, K. Effects of maturational age of porcine oocytes on the induction of activation and development in vitro following somatic cell nucleartransfer / К. Ikeda, Y. Takahashi // J. Vet Med Sci. 2001. -V. 63. -N. 9. -P. 1003−1008.
  87. Inoue, M. Activation of mitogen-activated protein kinase during meiotic maturation in porcine oocytes / M. Inoue, K. Naito, F. Aoki, Y. Toyoda, E. Sato // Zygote. -1995. -V. 3. -P. 265−271.
  88. Kaplan, G. rRNA accumulation and protein synthetic patterns in growing mouse oocyte / G. Kaplan, S.L. Albern, R. Bachvalova // J. Exp. Zool. -1982.-V. 220.-P. 361−370.
  89. Kastrop, P.M. Changes in protein synthesis and phosphorylation patterns during bovine oocyte maturation in vitro / P.M. Kastrop, M.M. Bevers, O.H. Destree, T.A.M. Kruip // J. Reprod Fertil. 1990. -V. 90. -P. 305−310.
  90. Kastrop, P.M. Protein synthesis and phosphorylation patterns of bovine oocytes maturing in vivo / P.M. Kastrop, M.M. Bevers, O.H. Destree, T.A.M. Kruip // Mol. Reprod. Dev. 1991. -V. 29. -P. 271−275.
  91. Kikuchi, K. Histone HI kinase activity during in vitro fertilization of pig follicular oocytes matured in vitro / K. Kikuchi, K. Naito, F.P. Daen, Y. Izaike, Y. Toyoda//Theriogenology. -1995. -V. 43. -P. 523−532.
  92. Kim, N.H. Microfilament assembly and cortical granule distribution during maturation, parthenogenetic activation and fertilisation in the porcine oocyte / N.H. Kim, B.N. Day, H.T. Lee, K.S. Chung // Zygote. 1996. -V. 4. -P. 145−149.
  93. Kishida, R. In vitro maturation of porcine oocytes using a defined medium and developmental capacity after intracytoplasmic sperm injection / R. Kishida, E.S. Lee, Y. Fukui // Theriogenology. 2004. -V. 62. -P. 1663−1676.
  94. Knox, R. V. Plasma gonadotropins and ovarian hormones during the estrous cycle in high compared to low ovulation rate gilts / R. V. Knox, G. Vatzias, С. H. Naber, D. R. Zimmerman // J. Anim. Sci. -2003. -V. 81. -P. 249−260.
  95. Krieger, С. Mitochondria, Ca2+, and neurodegenerative disease / C. Krieger, M. Duchen // Eur. J. Pharm. -2002. -V. 447. -P. 177−188.
  96. Krisher, R.L. The effect of oocyte quality on development / R.L. Krisher // Journal of Animal Science. -2004. -V. 82. -P. 14−23.
  97. Kruip, T. Structural changes in bovine oocytes during final maturation in vitro / T. Kruip, D. Cran, T. Van Beneden, S. Dieleman // Gam.Res. — 1983. -V. 8. -P. 29−47.
  98. Kubelka, M. Time sequence of germinal vesicle breakdown in pig oocytes after cycloheximide and p-aminobenzamidine block / M. Kubelka, J. Motlik, J.J. Fulka, R. Prochazka, Z. Rimkevikova, J. Fulka // Gam. Res. 1988. -V. 19.-P. 423−431.
  99. Kuzmina, T.I. Effect of prolactin on intracellular stored calcium in the course of bovine oocyte maturation in vitro / Т. I. Kuzmina, I.Yu. Lebedeva, H. Tomer, H. Aim, V.Yu. Denisenko // Theriogenology. 1999. — V.51. -N.7. -P.1363−1374.
  100. Kuzmina, T.I. Mitochondrial activity during the maturation of bovine oocytes in vitro / T.I. Kuzmina, L.D. Galieva, E.D. Fedoskov, L.D. Ignatenko // Reprod. Dom. Anim. 1998. -V. 33. -P. 149.
  101. Laurincik, J. Bovine cumulus expansion and corona-oocyte disconnection during culture in vitro / J. Laurincik, P. Kroslak, P. Hyttel, J. Pivko, A.V. Sirotkin//Reprod. Nutr. Dev. 1992. -V. 32. -P. 151−161.
  102. Levesque, J.T. Resumption of meiosis is initiated by the accumulation of cyclin В in bovine oocytes / J.T. Levesque, M.A. Sirard // Biol. Reprod. 1996. -V. 55. -P. 1427−1436.
  103. Li, C.J. Changes in the 3-dimentional distribution of mitochondria during meioticdivisions of mouse oocytes / C.J. Li, B.Q. Fan // Theriogenology. -1997.-V. 48.-P. 33−41.
  104. Lonergan, P. Development of bovine embryos in vitro following oocyte maturation under defined conditions / P. Lonergan, C. Carolan, P. Mermillod // Reprod. Nutr. Dev. 1994a. -V. 34. -P. 329−339.
  105. , M. С. Ovarian follicular growth in sows/ M. C. Lucy, J. Liu, C. K. Boyd, C. J. Bracken // Reprod. Suppl. 2001. -V. 58. -P. 31−45.
  106. Machatkova', M. Developmental competence of bovine oocytes: effects of follicle size and the phase of follicular wave on in vitro embryo production / M. Machatkova, K. Krausova, E. Jokesova, M. Tomanek // Theriogenology. -2004. -V. 61. -P. 329−335.
  107. Machaty, Z. Developmental changes in the intracellular Ca2+ release mechanisms in porcine oocytes / Z. Machaty, H. Funahashi, B.N. Day, R.S. Prather // Biol. Reprod. -1997. -V. 56. -N. 4. -P. 921−930.
  108. Madison, V. Selection of immature bovine oocytes for developmental potential in vitro / V. Madison, B. Avery, T. Greve // Animal Reproduction Science. -1992. -V. 27. -P. 1−11.
  109. Magnia, F. Biochemistry of growth and maturation in mammalian oocytes / F. Magnia, R. Canipari // Development in Mammals / Ed. Johson M. Amsterdam. — 1977. — V. 2. — P. 1−30.
  110. Mangia, F. Biochemical studies of growing mouse oocytes: preparation of oocytes and analysis of glucose-6-phosphate dehydrogenase and lactate dehydrogenase activities / F. Mangia, C.J. Epstein // Dev. Biol. — 1975. -V. 45.-P. 211−220.
  111. Manjunatha, B.M. Selection of developmentally competent buffalo oocytes by brilliant cresyl blue staining before IVM / B.M. Manjunatha, P. S. Gupta, M. Devaraj, J.P. Ravindra, S. Nandi // Theriogenology. -2007. -V. 68. -P. 1299−1304.
  112. Mao, J. Reproductive, metabolic, and endocrine responses to feed restriction and GnRH treatment in primiparous, lactating sows / J. Mao, L. J. Zak, J. R. Cosgrove, S. Shostak, G. R. Foxcroft // J. Anim. Sci. -1999. -V. 77. -P. 724 735.
  113. Marchal, R. Meiotic and developmental competence of prepubertal and adult swine oocytes /R. Marchal, J.M. Feugang, C. Perreau, E. Venturi, M. Terqui, P. Mermillod // Theriogenology. 2001. -V. 56. -N. 1. -P. 17−29.
  114. Masui, Y. Cytoplasmik control of nuclear behavior during meiotic maturation of frog oocytes / Y. Masui, K. Clarke // J. exp. Zool. — 1971.-V. 177.-P. 129−146.
  115. Matas, C. In vitro penetration assay of boar sperm fertility: effect of various factors on the penetrability of immature pig oocytes / C. Matas, E. Martinez, J.M. Vazquez, J. Roca, J. Gadea // Theriogenology. -1996. -V. 46. -P. 503−513.
  116. Mattioli, M. Effect of follicle somatic cells during pig oocyte maturation on egg penetration and male pronuclear formation / M. Mattioli, G. Galeati, E. Seren // Gamete Research. -1988. -V. 20. -P. 177−183.
  117. Mattioli, M. Follicular factors influence oocyte fertilizability by modulating the intercellular co-operation between cumulus cells and oocytes / M. Mattioli, G. Galeati, M.L. Bacci, E. Seren // Gamete Research. -1988. -V. 21. -P. 223−232.
  118. Mattioli, M. Concentration of cyclic AMF during the maturation pig oocyte in vitro and in vivo / M. Mattioli, G. Galeati, B. Barboni, E. Seren // J. Reprod. and Fertility. 1994. — V. 100. — P. 403−409.
  119. Mauleon, P. Ovarian development in young mammals / P. Mauleon, D.B. Crighton // In Control of Ovulation/ Ed. by Crighton D.B. Butterworths, London. — 1978.-P. 141−158.
  120. May-Panloup, P. Spermatozoon mitochondrial DNA / P. May-Panloup, M.F. Chretien, Y. Malthiery, P. Reynier // Gynecol Obstet Fertil. 2006. -V. 34. -N. 9. -P. 847−854.
  121. McLaren, A. The embryo / A. McLaren//Reproduction in Mammals / Eds. Austin C., Short R. Cambridge. — 1982. — P. 1−25.
  122. Mehlman, L. Redistribution and increase in cortical inositol 1,4,5-trisphostphate receptors after meiotic maturation of the mouse oocyte / L. Mehlman, K. Mikoshiba, D. Kline // Dev. Biol. -1996. -V. 180. -P. 489−498.
  123. Mehlman, L.M. Stop and starts in mammalian oocytes: recent advances in understanding the regulation of meiotic arrest and oocyte maturation / L.M. Mehlman // Reporduction. 2005. — V. 130. — P. 797−799.
  124. Merry, N.E. Cytoskeletal organization in the oocyte, zygote, and early cleaving embryo of stripe-faced dunnart (Sminthopsis macroura) / N.E. Merry, M.H. Johnson, C.A. Gehring, L. Selwood // Mol. Reprod. Dev. 1995. — V. 41. -P. 212−224.
  125. Miyoshi, K. Utility of rapidly matured oocytes as recipients for production of cloned embryos from somatic cells in the pig / K. Miyoshi, S.J. Rzucidlo, S.L. Pratt, S.L.Stice // Biol. Reprod. 2002. -V. 67. -N. 2. -P. 540−545.
  126. Moor, R.M. Maturation of pig oocytes in vivo and in vitro / R.M. Moor, M. Mattioli, J. Ding, T. Nagai // Journal of Reproduction and Fertility Supplement. -1990. -V. 40. -P. 197−210.
  127. Moor, R.M. Regulation of oocyte maturation in mammals / R.M. Moor, G.M. Warnes // In Control of Ovulation / Eds. by Crighton D.B. et al. -Butterworths, London. 1978. -P. 159−176.
  128. Moore, G. cAMF in mammalian follicies cells and oocytes during maturation/ G. Moore, J. Crosby // J. Exp. -1981.-V. 216. -P. 205−209.
  129. Moore, G. Intercellular coupling in mammalian oocytes / G. Moore, D.G. Cran // Development in Mammals / Ed. M. N Johnson. 1980. — V. 4. -P. 3−37.
  130. Morbeck, D.E. Kinetics of follicle growth in the prepubertal gilt / D.E. Morbeck, K.L. Esbenshade, W.L. Flowers, J.H. Britt // Biology of Reproduction. -1992.-V. 47.-P. 485−491.
  131. Motlik, J. Breakdown of the germinal vesicle in pig oocytes in vivo and in vitro / J. Motlik, J. Fulka // Journal of Experimental Zoology. -1976. -V. 198.-P. 155−162.
  132. Motlik, J. Factors affecting meiotic competence in pig oocytes / J. Motlik, J. Fulka// Theriogenology. -1986. -V. 25. -P. 87−96.
  133. Motlik, J. Meiotic competence in vitro of pig oocytes isolated from early antral follicles / J. Motlik, N. Crozet, J. Fulka // Journal of Reproduction and Fertility. -1984. -V. 72. -P. 323−328.
  134. Murphy, B. D. Formation and early development of the corpus luteum in pigs / B. D. Murphy, N. Gevry, T. Ruiz-Cortes, F. Cote, B. R. Downey, J. Sirois //Reprod. Suppl. -2001. -V. 58. -P. 47−63.
  135. Naito, K. Comparison of histone HI kinase activity during meiotic maturation between two types of porcine oocytes matured in different media in vitro / K. Naito, F.P. Daen, Y. Toyoda 11 Biology of Reproduction. -1992. -V. 47. -P. 43−47.
  136. Naito, K. Fluctuation of histone HI kinase activity during meiotic maturation in pig oocytes/ K. Naito, Y. Toyoda // Journal of Reproduction and Fertility. -1991. -V. 93. -P. 467−473.
  137. Newton, H. In vitro growth of oocyte- granulosa cell complexes isolated from cryopreserved ovine tissue / H. Newton, H. Picton, R.G. Gosden // Journal of Reproducetion and Fertility. -1999. -V. 115. -P. 141−150.
  138. Nishi, Y. Change of the mitochondrial distribution in mouse ooplasm during in vitro maturation / Y. Nishi, T. Takeshita, K. Sato, T. Araki // J. Nippon Med. Sch. -2003. -V. 70. -N. 5. -P. 408−415.
  139. Niwa, K. Effectiveness of in vitro maturation and in vitro fertilization techniques in pigs / K. Niwa // Journal of Reproduction and Fertility Supplement. -1993.-V. 48.-P. 49−59.
  140. Okada, A. Development of a cortical granule-free area of cortex and the perivitelline space in the hamster oocyte during maturation and following ovulation / A. Okada, R. Yanagimachi, H. Yanagimachi // J. Submicrosc. Cytol. — 1986.-V. 18.-P. 233−247.
  141. Oxender, W.D. Ovarian development in fetal and prepubertal pigs / W.D. Oxender, B. Colenbrander, D.M. van de Wiel, C.G. Wensing // Biology of Reproduction. -1979. -V. 21. -P. 715−721.
  142. Perreault, S.D. Importance of glutathione in the acquisition and maintenance of sperm nuclear decondensing activity in maturing hamster, oocytes / S.D. Perreault, R.R. Barbee, V.L. Slott // Dev. Biol. 1988. -V. 125. -P. 181−186.
  143. Petters, R.M. Culture of pig embryos / R.M. Petters, K.D. Wells // J. Reprod Fertil Suppl. -1993. -V.48. -P.61−73.
  144. Plancha, C.E. Protein synthesis requirement during resumption of meiosis in the hamster oocyte: early nuclear and microtubule configuration / C.E. Plancha, D.F. Albertini //Mol. Rewprod. Dev. 1992. — V. 33. -P. 324−334.
  145. Plancha, C.E. Cytokeratin dinamics during oocyte maturation in the hamster requires reaching of metafase I / C.E. Plancha // Differentiation. 1996. -V. 60. -P. 87−98.
  146. Prather R.S. Transgenic swine for biomedicine and agriculture / R.S. Prather, R.J. Hawley, D.B. Carter, L. Lai, J.L. Greenstein // Theriogenology. -2003.-V. 59.-N. l.-P. 115−123.
  147. Prunier, A. Patterns of plasma LH, FSH, oestradiol and corticosteroids from birth to the first oestrous cycle in Meishan gilts / A. Prunier, M. Chopineau, A. M. Mounier, P. Mormede //J. Reprod. Fertil. -1993. -V. 98. -P. 313−319.
  148. Pujol, M. Developmental competence of heifers oocytes selected using the brilliant cresyl blue (BCB) test / M. Pujol, M. Lopez-Bejar, M.T. Paramio // Theriogenology. 2004. -V. 61. -P. 735−744.
  149. Rajakoski, E. The follicular system in sexually mature heifers with special reference to seasonal, cyclical and left-right variations / E. Rajakoski // Acta Endocrinol. 1960. -V. 52. -P. 1−68.
  150. Ratky, J. Ovarian activity in gilts including some characteristics of a native breed / J. Ratky, K. P. Brussow // Reprod. Dom. Anim. -1998. -V. 33. -P. 219−222.
  151. Roca, J. Selection of immature pig oocytes for homologous in vitro penetration assays with brilliant cresyl blue test / J. Roca, E. Martinez, J.M. Vazquez, X. Lucas // Reprod. Fert. Dev. 1998. -V. 10. -P. 479−485.
  152. Rodgers R. J. Formation of the ovarian follicular antrum and follicular fluid / R.J. Rodgers, Irving-Rodgers H.F. // Biol. Reprod. -2010. V. 82. -N. 6. -P. 1021−1029.
  153. Rodri’guez-Gonza'lez, E. Selection of prepuberal goat oocytes using the brilliant cresyl blue test / E. Rodri’guez-Gonza'lez, M. Lopez-Be'jar, E. Velilla, M.T. Paramio // Theriogenology. -2002. -V. 57. -P. 1397−1409.
  154. Schwarz, T. Growth of the ovarian follicles in the oestrous cycle in goats in Polish. / T. Schwarz, E. Wierzchos // Medycyna Wet. -2000. -V. 56. -P. 194−197.
  155. Schwarz, T. Physiological mechanisms of ovarian follicular growth in pigs / T. Schwarz, M. Kopyra, J. Nowicki // Acta Veterinaria Hungarica. -2008. -V. 56.-N. 3.-P. 369−378.
  156. Shamsuddin, M. Maturation-related changes in bovine oocytes under different culture conditions / M. Shamsuddin, B. Larsson, H. Rodriguez-Martinez // Anim. Reprod. Sci. 1993. -V. 31. -P. 49−60.
  157. Shea, B.F. Human follicular oocytes and their maturation in vitro/ B.F. Shea, R.D. Baker, J.P. Latour // Fertility and Sterility. -1975. -V. 26. -P. 1075−1082.
  158. Shen, X. In vitro antrum formation of oocyte-cumulus-granulosa cell complexes from pig early antral follicles / X. Shen, K. Hirata, T. Miyano, S. Kato // Journal of Mammalian Ova Research. -1997. -V. 14. -P. 183−190.
  159. Sirard, M.A. Contribution of the oocyte to embryo quality / M.A. Sirard, F. Richard, P. Blondin, C. Robert // Theriogenology. -2006. -V. 65. -P. 126−136.
  160. Sirard, M.A. Follicle-oocyte-sperm interactions in vivo and in vitro in pigs / M.A. Sirard, A. Dubuc, D. Bolamba, Y. Zheng, K. Coenen // Journal of Reproduction and Fertility Supplement. -1993. -V. 48. -P. 3−16.
  161. Sirard, M.A. The culture of bovine oocytes to obtain developmentally competent embryos / M.A. Sirard, J.J. Parrish, C.B. Ware, M.L. Leibfried-Rutledge, N.L. First // Biol. Reprod. 1988. -V. 39. -P. 546−552.
  162. Sirard, M.A. Timing of nuclear progression and protein synthesis necessary for meiotic maturation of bovine oocytes / M.A. Sirard, H.M. Florman, M.L. Leibfried-Rutledge, F.L. Barnes, M.L. Sims, N.L. First // Biol. Reprod. -1989. -V. 40. -P. 1257−1263.
  163. Sirard, M.A. From biological fundamentals to practice, and back / M.A. Sirard // Theriogenology. 2007. -V. 68. -P. 250−256.
  164. Smith, M.F. Production of tissue inhibitor of metalloproteinases 1 by porcine follicular and luteal cells / M.F. Smith, C.N. Kemper, G.W. Smith, T.L. Goetz, V.L. Jarrell // Journal of Animal Science. -1994. -V. 72. -P. 1004−1012.
  165. Sorensen, R.A. Relationship between growth and meiotic maturation of the mouse oocyte / R.A. Sorensen, P.M. Wassarman // Dev. Biol. 1976. —V. 50.-P. 531−536.
  166. Sutovsky, P. Dynamic changes of gap junctions and cytoskeleton during in vitro culture of cattle oocyte cumulus complexes / P. Sutovsky, J.E. Flechon, B. Flechon, J. Motlik, N. Peynot, P. Chesne // Biol. Reprod. 1993. -V. 49. -P. 1277−1287.
  167. Szollosi, D. The nuclear envelope: its breakdown and fate in mammalian oogonia and oocytes / D. Szollosi, P. Calarco, R. Donahue // Anat. Rec. 1972. -V. 174. -N.3. -P. 325−339.
  168. Szybek, K. In vitro maturation of oocyte from sexually inmmaturemice / K. Szybek // J. Endocrinol. 1972. -V. 54. -P. 527−528.
  169. Tarkowski, A. An air-diying method for chromosomal preparation from mouse eggs / A. Tarkowski // Cytogenetic. 1966. — V. 1. -P. 394−400.
  170. Tsafriri, A. Influence of follicular maturation and culture conditions on the meiosis of pig oocytes in vitro / A. Tsafriri, C.P. Channing // J. Reprod. Fertil. 1975. -V. 43. -P. 149−152.
  171. Tsuma, V. T. Hormones profiles around weaning in cyclic and anoestrous sows/ V. T. Tsuma, S. Einarsson, A. Madej, N. Lundeheim // J. Vet. Med. A. -1995. -V. 42. -P. 153−163.
  172. Tsutsumi, O. Determination of enzyme activity of energy metabolism in the maturing rat oocyte / O. Tsutsumi, K. Satoh, Y. Taketani, T. Kato // Mol. Reprod. Dev. 1992. -V. 33. -P. 333−337.
  173. Urdaneta, A. Effect of the addition of glutathione and glucose to the culture medium on embryo development of IVM-IVF prepuberal goat oocytes / A. Urdaneta, A.R. Jime’nez, D. Izquierdo, M.T. Paramio // Zygote. 2003. -V. 11. — P. 131−138.
  174. Van Blerkom, J. Morphodynamics of nuclear and cytoplasmic reorganization during the resumption of arrested meiosis in the mouse oocyte / J. Van Blerkom //Prog Clin Biol Res. 1989. -V. 294. -P. 33−51.
  175. Van Blerkom, J. Microtubule mediation of cytoplasmic and nuclear maturation during the early stages of resumed meiosis in cultured mouse oocytes / J. Van Blerkom // Proc Natl Acad Sci USA.- 1991. -V. 88. -N. 11. -P. 50 315 035.
  176. Van Blerkom, J. Mitochondria in human oogenesis and preimplantation embryogenesis: engines of metabolism, ionic regulation and developmental competence / J. Van Blerkom // Reproduction. -2004. -V. 128. -P. 269−280.
  177. Van Blerkom, J. Mitochondrial transfer between oocytes: potential applications of mitochodrial donation and the issue of heteroplasmy / J. Van Blerkom, J. Sinclair, P. Davis // Human Reproduction. -1998. -V. 13. -P. 28 572 868.
  178. Van Blerkom, J. Mitochondrial reorganization during resumption of arrested meiosis in mouse oocyte/ J. Van Blerkom, M.N. Runner // Am. J. Anat. -1984. -V. 171.-P. 335−355.
  179. Van Blerkom, J. Molecular differentiation of the rabbit ovum. III. Fertilization-autonomous polypeptide synthesis / J. Van Blerkom // Dev. Biol. -1979. -V. 72. -N. 1. -P. 188−194.
  180. Van de Wiel, D. F. Post-weaning anoestrus in primiparous sows: LH patterns and effect of gonadotropin injection and boar exposure / D. F. van de Wiel, P. Booman// Vet. Quart. -1993. -V. 15. -P. 162−166.
  181. Vassena, R. Morphology and developmental competence of bovine oocytes relative to follicular status / R. Vassena, R.J. Mapletoft, S. Allodi, J. Singh, G.P. Adams // Theriogenology. -2003. -V. 60. -P. 923−932.
  182. Wai T. The role of mitochondrial DNA copy number in mammalian fertility / T. Wai, A. Ao, X. Zhang, D. Cyr, D. Dufort, E. A. Shoubridge // Biol. Reprod. -2010. -online.
  183. Wang, L. Mitochondrial functions on oocytes and preimplantation embryos / L. Wang, D. Wang, X. Zou, C. Xu // J. Zhejiang Univ. Sci. B. 2009. -V. 10. -N. 7. -P. 483−492.
  184. Wassarman, M. The mammalian ovum // The physiology of reproduction / Ed. by Knobil E., Neil D. New York, USA Raven Press. — 1988. -V. l.-P. 69−102.
  185. Wehrend, A. The meiotic cell cycle in oocytes of domestic animals / A. Wehrend, B. Meinecke // Reproduction in Domestic Animals. -1998. -V. 33. -P. 289−297.
  186. Wickramasinghe, D. Cell cycle control during mammalian oogenesis / D. Wickramasinghe, D.F. Albertini // Curr. Top. Dev. Biol. 1993. -V. 28. -P. 125−153.
  187. Wilding, M. Mitochondrial aggregation patterns and activity in human oocytes and preimplantation embryos / M. Wilding, B. Dale, M. Marino, L. diMotteo, C. Alviggi, M.L. Pisaturo, L. Lombardi, G. De Placido // Hum. Reprod. -2001. -V. 16.-P. 909−917.
  188. Willis, P. Fine structure of equine oocyte maqtured in vitro for 24 hours / P. Willis, A.B. Caudle, R.A. Fayrer-Hosken // Mol. Reprod. Dev. 1984. -V. 37. -P. 87−92.
  189. Windsor, D.P. Assessment of ram sperm mitochondrial function by quantitative determination of sperm rhodamine 123 accumulation / D.P. Windsor, I.G. White // Molecular reproduction and development. 1993. — V.36. — P. 354 360.
  190. Yen, H. W. Follicular development and maturation in gilts selected for an index of high ovulation rate and high prenatal survival/ H. W. Yen, J. J. Ford, D. R. Zimmerman, R. K. Johnson // J. Anim. Sci. -2005. -V. 83. -P. 130−135.
  191. Yoshida, M. Role of glutathione in the maturation and fertilization of pig oocytes in vitro / M. Yoshida // Molecular Reproduction and Development. -1993.-V. 35.-P. 76−81.
  192. Zamboni, L. Fine morphology of the follicle wall and follicle cell-oocyte association / L. Zamboni // Biol. Reprod. 1974. -V. 10. -P. 125−149.
  193. Zeuner, A. Apoptosis within bovine follicular cells and its effect on oocyte development during in vitro maturation /А. Zeuner, K. Miiller, K. Reguszynski, K. Jewgenow // Theriogenology. -2003. -V. 59. P. 1421−1433.
  194. Zhang, L. Cumulus cell function during bovine oocyte maturation, fertilization, and embryo development in vitro / L. Zhang, S. Jiang, P.J. Wozniak, X. Yang, R.A. Godke // Mol. Reprod. Dev. 1995. -V. 40. -P. 338−344.
  195. Zi^ba, D. A. Pattern of follicular development in high fecundity Olkuska ewes during the estrous cycle / D. A. Zi^ba, M. Murawski, T. Schwarz, E. Wierzchos // Reprod. Biol. -2002. -V. 2. -P- 39−58.
  196. Zuccotti, M. Chromatin organization during mouse oocyte growth / M. Zuccotti, A. Piccinelli, P.G. Rossi, S. Garagna, C.A. Redi // Mol. Reprod. Dev. 1995. -V. 41. -P. 479−485.
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?