Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Влияние местной стимуляции врожденного иммунитета липополисахаридом Salmonella typhi на репарацию раневых дефектов кожи

Диссертация: Влияние местной стимуляции врожденного иммунитета липополисахаридом Salmonella typhi на репарацию раневых дефектов кожи
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Работа представляет не только научный интерес, заключающийся в более глубоком понимании механизмов влияния структурного компонента бактерий (ЛПС) на процесс репарации, но и обладает потенциалом практического использования. Созданная по результатам исследования лекарственная форма запатентована (Патент РФ № 2 447 082) и успешно прошла доклинические испытания (отчеты № 244/11, 251/11, 252/11… Читать ещё >

Содержание

  • ПРИНЯТЫЕ СОКРАЩЕНИЯ
  • ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Бактериальные липополисахариды: структура, распознавание 14 иммунной системой, применение в медицине
      • 1. 1. 1. Структура бактериальных липополисахаридов
      • 1. 1. 2. Распознавание ЛПС иммунной системой и процесс передачи 21 сигнала от TLR
      • 1. 1. 3. Применение препаратов ЛПС в медицине
    • 1. 2. Участие врожденного иммунитета в репаративных процессах
      • 1. 2. 1. Стадии раневого процесса
      • 1. 2. 2. Участие клеток иммунной системы в репарации ран кожи
      • 1. 2. 3. Участие То11-подобных рецепторов в процессах репарации
      • 1. 2. 4. Участие То11-подобных рецепторов в репарации ран кожи
  • ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • 2. 1. Материалы
      • 2. 1. 1. Бактериальные липополисахариды
      • 2. 1. 2. Клеточные линии
      • 2. 1. 3. Другие реактивы
      • 2. 1. 4. Лабораторные животные
      • 2. 1. 5. Лабораторное оборудование
    • 2. 2. Методы
      • 2. 2. 1. Измерение активности ß--галактозидазы в культуре клеток
      • 2. 2. 2. Иммуноблотинг
      • 2. 2. 3. ЛАЛ-тест
      • 2. 2. 4. Определение уровня секреции IL-6, МСР-1, М1Р-1а при 53 внутримышечном введении ЛПС
      • 2. 2. 5. Определение LD
      • 2. 2. 6. Электрофорез ЛПС в полиакриламидном геле в 54 присутствии до деци л сульфата натрия или деоксихолата натрия
      • 2. 2. 7. Кислотный гидролиз ЛПС
      • 2. 2. 8. Высокоэффективная жидкостная хроматография (ВЭЖХ) 55 полисахаридов
      • 2. 2. 9. Определение степени ацилирования липида, А методом 56 MALDI-масс-спектрометрии
      • 2. 2. 10. Приготовление гелей, содержащих ЛПС, для 56 исследований in vivo
      • 2. 2. 11. Моделирование резаной раны
      • 2. 2. 12. Биомеханические исследования
      • 2. 2. 13. Исследование влияния местного нанесения ЛПС на 58 процесс воспаления и инфильтрацию лейкоцитов, процессы колагенообразования и эпителизации
      • 2. 2. 14. Исследование влияния местного нанесения ЛПС на ангиогенез и количество фибробластов в области раневого дефекта
      • 2. 2. 15. Изготовление гистологических срезов
      • 2. 2. 16. Окрашивание гистологических срезов гематоксилин- 59 эозином и по Массону
      • 2. 2. 17. Иммуногистохимическое окрашивание
      • 2. 2. 18. Гистологическое исследование микропрепаратов
      • 2. 2. 19. Схема эксперимента, направленного на полногеномное 62 исследование экспрессии генов в ответ на местное нанесение ЛПС
      • 2. 2. 20. Выделение РНК из ткани
      • 2. 2. 21. Полногеномное исследование экспрессии генов
      • 2. 2. 22. Изучение кинетики секреции цитокинов, хемокинов и 64 ростовых факторов в области раневого дефекта при нанесении ЛПС
      • 2. 2. 23. Выделение белка из ткани
      • 2. 2. 24. Иммуноферментный анализ
      • 2. 2. 25. Измерение концентрации цитокинов на проточном 65 цитофлуориметре СуЮтюБ БС
      • 2. 2. 26. Измерение концентрации цитокинов на флуориметре Bio- 65 Plex System
      • 2. 2. 27. Доклинические исследования
      • 2. 2. 28. Статистическая обработка
  • ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 3. 1. Сравнительное изучение физико-химических, 67 иммунобиологических и токсикологических свойств липополисахаридов S. typhi Ту24 446 и Е. coli Oil 1: В
    • 3. 2. Определение влияния местного нанесения ЛПС на скорость 74 репарации ран кожи биомеханическим методом
    • 3. 3. Исследование влияния местного нанесения ЛПС на 76 репарацию ран на тканевом уровне
      • 3. 3. 1. Исследование влияния местного нанесения ЛПС на 77 процесс воспаления и инфильтрацию лейкоцитов
      • 3. 3. 2. Исследование влияния местного нанесения ЛПС на 78 процессы коллагенообразования и эпителизации раневых дефектов кожи
  • З.З.ЗИсследование влияние местного нанесения ЛПС на ангиогенез и количество фибробластов в области раневого дефекта
    • 3. 4. Полногеномное изучение изменения экспрессии генов в 83 области раневого дефекта
    • 3. 5. Изучение кинетики секреции цитокинов, хемокинов и 94 ростовых факторов в области раневого дефекта при нанесении ЛПС
    • 3. 6. Доклиническое изучение безопасности местного накожного 97 применения лекарственного средства, содержащего ЛПС
  • ГЛАВА 4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
  • ВЫВОДЫ

Влияние местной стимуляции врожденного иммунитета липополисахаридом Salmonella typhi на репарацию раневых дефектов кожи (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

1. АКТУАЛЬНОСТЬ РАБОТЫ.

Раны различной этиологии, ожоги и язвы кожи и слизистых оболочек являются трудно разрешаемой медико-социальной проблемой современного общества. Особую актуальность изучение вопросов репарации ран кожного покрова приобретает в связи с постоянным ростом ран различного генеза вследствие ожогов, операций, механических травм. Терапия трофических язв, диабетических ран, пролежней, вялогранулирующих инфицированных ран, требует применения широкого арсенала лекарственных средств в течение длительного времени, во многих случаях вызывает необходимость стационарного лечения и зачастую оказывается недостаточно эффективным.

Микробная флора является обязательным участником процесса заживления ран кожи. Полагают, что микроорганизмы, способствуя воспалению и лизису омертвевших тканей, играют важную роль в очищении от них раневого дефектавместе с тем известно, что контаминация раны микроорганизмами может отрицательно сказываться на течении раневого процесса [8]. В целом, влияние микрофлоры на раневый процесс определяется характером повреждения, вирулентностью и количеством микробов, контаминировавших рану и особенностями иммунной системы макроорганизма [44].

Известно, что ключевую роль в процессах репарации играет система врожденного иммунитета [87, 103, 159]. Паттерн-распознающие рецепторы врожденного иммунитета, в отличие от Ти В-клеточных рецепторов адаптивного иммунитета, распознают не уникальные структуры антигенных эпитопов, а высоконсервативные молекулярные структуры, характерные для микроорганизмов и вирусов (Pathogen-associated molecular patterns, PAMPs) [132] а также структуры молекул, высвобождаемых или секретируемых в ответ на повреждение ткани (Danger-associated molecular patterns, DAMPs) [17]. Активация То11-подобных рецепторов (TLRs), одного из основных семейств рецепторов врожденного иммунитета, приводит к запуску биохимических каскадов, приводящих к активации ряда транксрипционных факторов (NF-кВ, IRF3, 5, 7, АР-1), регулирующих секрецию спектра цитокинов, хемокинов, антимикробных пептидов, молекул адгезии и других факторов, которые могут влиять на процесс репарации.

Рецепторы врожденного иммунитета (в частности То11-подобные рецепторы) экспрессируются широким спектром клеток, образующихся или присутствующих в коже: фибробластами, адипоцитами, кератиноцитами, эндотелиальными клетками, включая клетки иммунной системы, такие как моноциты, макрофаги, нейтрофилы, дендритные клетки, клетки Лангерганса, тучные клетки, Ти В-лимфоциты [137].

Важность проведения сигнала через То11-подобные рецепторы для заживления ран была показана с использованием генетически модифицированных животных. Так, у мышей, нокаутных по гену цитозолыюго белка MyD88, необходимого для передачи сигнала от большинства TLRs (кроме TLR3) наблюдается значительно худшее заживление ран кожи, ассоциированное с уменьшенным уровнем ангиогенеза раневого дефекта на [128]. Репарация ран кожи у мышей, нокаутных по гену TLR3, замедлена, и ассоциирована с уменьшенным уровнем секреции хемокинов и худшей инфильтрацией нейтрофилов и альтернативно активированных макрофагов в области раневого дефекта [118].

Недавно опубликованные данные позволяют утверждать, что местная стимуляция врожденного иммунитета лигандами То11-подобных рецепторов, являющихся структурными компонентами бактерий или вирусов, способна стимулировать репарационные процессы в коже. Так, Deiters и соавт. установили высокую эффективность терапии диабетических ран агонистом.

TLR2 — макрофаги-активирующим липопептидом-2 (MALP-2): местное применение MALP-2 усиливало секрецию хемокина МСР-1 и способствовало инфильтрации раны макрофагами [38]. Sato и соавт. показали, что местное нанесение лиганда TLR9, CpG олигонуклеотида, значительно ускоряло.

10 заживление ран кожи, способствовало фиброплазии и ранней эпителизации раневых дефектов [188]. Нанесение на раневую поверхность poli 1: С, лиганда TLR3, стимулировало ангиогенез, способствовало инфильтрации раны макрофагами и приводило к ускорению репарации [119].

Однако к настоящему моменту отсутствуют данные, касающиеся влияния местного применения одного из наиболее активных лигандов TLR, бактериального липополисахарида (лиганда TLR4) на процесс репарации ран кожи. Учитывая, что TLR4 экспрессирован большинством клеток кожи, известен обширный перечень DAMPs лигандов этого рецептора, опубликован ряд данных, полученных in vitro, показывающих участие этого рецептора в активации фибробластов, эпителиальных клеток, клеток эндотелия сосудов, можно предположить, что местная стимуляция TLR4 может оказывать существенное влияние на процессы репарации кожи in vivo.

2.

ЦЕЛЬ И ЗАДАЧИ ИССЛЕДОВАНИЯ

.

Цель работы: Изучение влияния местной стимуляции врожденного иммунитета бактериальным липополисахаридом (ЛПС), лигандом Toll-подобного рецептора 4, на репарацию ран кожи.

В процессе выполнения работы предстояло решить следующие задачи:

1. Охарактеризовать физико-химические, иммунобиологические и токсикологические свойства используемого в работе липополисахарида Salmonella typhi.

2. Изучить влияние местного нанесения ЛПС S. typhi на скорость заживления, процессы воспаления, ангиогенеза, коллагенообразования и эпителизации в области раневого дефекта.

3. Провести полногеномное изучение изменения экспрессии генов при местном нанесении на раневый дефект бактериального ЛПС S. typhi.

4. Изучить кинетику секреции хемокинов, провоспалительных цитокинов и факторов роста, индуцированных местным нанесением ЛПС S. typhi.

5. Определить влияние местного применения ЛПС S. typhi на инфильтрацию макрофагов и нейтрофилов в области раневого дефекта.

6. Провести доклинические исследование разработанной по результатам исследования лекарственной формы для местного применения, содержащей ЛПС S. typhi.

3. НАУЧНАЯ НОВИЗНА.

1. Впервые показана способность низкотоксичного липополисахарида S. typhi при местном нанесении стимулировать заживление ран кожи in vivo, дозозависимо стимулировать ангиогенез и увеличение количества фибробластов на ранних сроках раневого процессауменьшать продолжительность воспалительной фазы раневого процесса и стимулировать процесс коллагенообразоваиия и эпителизацию раны.

2. Впервые установлено, что местное нанесение ЛПС S. typhi на область раны увеличивает экспрессию ряда генов, в том числе генов факторов, участвующих в биохимическом каскаде активации транскрипционного фактора NF-кВгенов цитокинов, хемокинов, и их рецепторовгенов молекул адгезиигенов, кодирующих белки, вовлеченные в антибактериальный, противовирусный иммунный ответ и иммунный ответ против простейших.

3. Впервые установлено, что местное нанесение ЛПС S. typhi на раневую поверхность приводит к избирательному повышению секреции спектра медиаторов, вовлеченных в процесс репарации, в том числе хемокинов, провоспалительных цитокинов и факторов роста.

4. Впервые показано, что местное нанесение ЛПС S. typhi приводит к увеличению количества макрофагов в тканях раны на ранних стадиях раневого процесса, а на более поздних стадиях приводит к уменьшению инфильтрации раны нейтрофилами.

ПРАКТИЧЕСКАЯ ЗНАЧИМОСТЬ.

Работа представляет не только научный интерес, заключающийся в более глубоком понимании механизмов влияния структурного компонента бактерий (ЛПС) на процесс репарации, но и обладает потенциалом практического использования. Созданная по результатам исследования лекарственная форма запатентована (Патент РФ № 2 447 082) и успешно прошла доклинические испытания (отчеты № 244/11, 251/11, 252/11 лаборатории биологических испытаний ФИБХ РАН, г. Пущино). В настоящее время в рамках государственного контракта № 12 411.1008799.13.112 проходят клинические исследования разработанной лекарственной формы.

выводы.

1. Исследованы физико-химические, иммунобиологические и токсикологические свойства используемого в работе липополисахарида S. typhi штамм Ту2 4446. Показано, что ЛПС S. typhi штамм Ту2 4446 представлен преимущественно гипоацилированными формами и обладает сниженной токсичностью, в два раза меньшей, чем классический ЛПС Е. coli.

2. Показано, что местное нанесение липополисахарида S. typhi на область раневого дефекта стимулирует процессы репарации кожи: дозозависимо увеличивает механическую прочность раневого дефекта, дозозависимо стимулирует ангиогепез и способствует увеличению количества фибробластов на ранних сроках раневого процессастимулирует коллагенообразование, уменьшает продолжительность воспалительной фазы раневого процесса и ускоряет эпителизацию раны.

3. Проведено полногеномное изучение изменения экспрессии генов при аппликации бактериального ЛПС S. typhi на раневый дефект кожи. Показано, что местное нанесение ЛПС па область раны увеличивает экспрессию свыше 300 генов, в том числе генов факторов, участвующих в биохимическом каскаде активации транскрипционного фактора NF-kBгенов цитокинов, хемокинов, и их рецепторовгенов молекул адгезиигенов, кодирующих белки, вовлеченные в антибактериальный, противовирусный иммунный ответ и иммунный ответ против простейших.

4. Показано, что местное нанесение ЛПС S. typhi приводит к избирательному повышению секреции (до 30 раз) спектра медиаторов, вовлеченных в процесс репарации, в том числе хемокинов СС-семейства, провоспалительных цитокинов и факторов роста в области раневого дефектаопределена кинетика секреции указанных медиаторов.

5. Показано, что местное нанесение ЛПС S. typhi увеличивает в 2 раза количество макрофагов в тканях раны на ранних стадиях раневого процесса, а на более поздних стадиях приводит к уменьшению инфильтрации раны нейтрофилами.

6. По результатам доклинических исследований разработанной лекарственной формы показано, что нанесение ЛПС S. typhi не приводит к развитию системных токсических эффектов в использованных в исследовании дозах, при нанесении на неповрежденную и поврежденную кожу.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Государственная фармакопея РФ. 12-е изд. — М.,. 2007. — Ч. 1. — 704 с.
  2. Д.С., Прохоренко И. Р. Структурный анализ липополисахаридов грамм-отрицательных бактерий // Биохимия. 2010. — 75(4) — С.469−491.
  3. Ю. А., Кочетков Н. К. Строение липополисахаридов грамотрицательных бактерий. II. Структура области кора // Биохимия. -1993.-58 (2).-С. 182−201.
  4. Ю.А., Кочетков Н. К. Строение липополисахаридов грамотрицательных бактерий. III. Структура О-специфических полисахаридов//Биохимия. -1994. -59(12). -С. 1784- 1851.
  5. Ю.А., Кочетков Н. К. Строение липополисахаридов грамотрицательных бактерий. I. Общая характеристика липополисахаридов и структура липида, А // Биохимия. 1993. — 58 (2). -С. 166−181.
  6. Раны и раневая инфекция /Под ред. М. И. Кузина, Б. М. Костюченок. 2-е изд., перераб. и доп. — М.: Медицина, 1990. -592 с
  7. Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ / Под общей редакцией члеп-корр. РАМН, проф. Р. У. Хабриева. -2 изд., перераб. и доп. М.: ОАО «Издательство «Медицина», 2005. -832 с.
  8. Ю.Тухватулин А. И., Логунов Д. Ю., Щербинин Д. Н., Шмаров М. М., Народицкий Б. С., Гудков А. В., Гинцбург АЛ. То11-подобные рецепторы и их адаптерные молекулы. // Биохимия. 2011. — 75(9). -С.1098−114.
  9. Adachi Y, Moore LE, Bradford BU, Gao W, Thurman RG. Antibiotics prevent liver injury in rats following long-term exposure to ethanol // Gastroenterology. -1995.108(1).-C. 218−24.
  10. Barrientos S, Stojadinovic O, Golinko MS, Brem H, Tomic-Canic M. Growth factors and cytokines in wound healing // Wound Repair Regen. -2008.-16(5). -C. 585−601.
  11. Basu S, Kumar M, Chansuria JP, Singh ТВ, Bhatnagar R, Shukla VK. Effect of Cytomodulin-10 (TGF-betal analogue) on wound healing by primary intention in a murine model // Int J Surg. 2009. -7(5). -C. 460−5.
  12. Basu S, Radziejewska Lebrecht J, Mayer H. Lipopolysaccharide of Providencia rettgeri. Chemical studies and taxonomical implications // Arch Microbiol. -1986. 144.-C. 213−218.
  13. Baume P. Pyrogenicity of 'Pyromen' // Nature. -1968. -217(5132). -C. 970.
  14. Bianchi ME. DAMPs, PAMPs and alarmins: all we need to know about danger // J Leukoc Biol. 2007. -81(1). -C. 1−5.
  15. Bjarnason I, Peters TJ, Wise RJ. The leaky gut of alcoholism: possible route of entry for toxic compounds // Lancet. -1984. 1(8370). -C. 179−82.
  16. Bowie AG, Haga IR. The role of Toll-like receptors in the host response to viruses // Mol Immunol. -2005. 42(8). -C. 859−67.
  17. Brade H, Brade L, Nano FE. Chemical and serological investigations on the genus-specific lipopolysaccharide epitope of Chlamydia // Proc Natl Acad Sci USA. -1987. 84(8). -C. 2508−12.
  18. Brancato SK, Albina JE. Wound macrophages as key regulators of repair: origin, phenotype, and function // Am J Pathol. -2011. -178(1). -C. 19−25.
  19. Brint EK, Xu D, Liu H, Dunne A, McKenzie AN, O’Neill LA, Liew FY. ST2 is an inhibitor of interleukin 1 receptor and Toll-like receptor 4 signaling and maintains endotoxin tolerance // Nat Immunol. -2004. -5(4). -C. 373−9.
  20. Burke JP, Cunningham MF, Watson RW, Docherty NG, Coffey JC, O’Connell PR. Bacterial lipopolysaccharide promotes profibrotic activation of intestinal fibroblasts // Br J Surg. -2010. -97(7). C. 1126−34.
  21. Carty M, Goodbody R, Schroder M, Stack J, Moynagh PN, Bowie AG. The human adaptor SARM negatively regulates adaptor protein TRIF-dependent Toll-like receptor signaling // Nat Immunol. -2006. -7(10). C. 1074−81.
  22. Chang L, Karin M. Mammalian MAP kinase signalling cascades //Nature. -2001. —410(6824). C. 37−40.
  23. Chiang CL, Kandalaft LE, Coukos G. Adjuvants for enhancing the immunogenicity of whole tumor cell vaccines // Int Rev Immunol. -2011. -30(2−3).-C. 150−82.
  24. Chuang TH, Ulevitch RJ. Triad3A, an E3 ubiquitin-protein ligase regulating Toll-like receptors // Nat Immunol. -2004. -5(5). C. 495−502.
  25. Christofidou-Solomidou M, Murphy GF, Albelda SM. Induction of E-selectin-dependent leukocyte recruitment by mast cell degranulation in human skin grafts transplanted on SCID mice // Am J Pathol. -1996. -148(1). C. 177−88.116
  26. Coley W.B. The treatment of malignant tumors by repeated inoculations of erysipelas: with a report of ten original cases // Am J Med Sei. -1893. -105. -C. 487−511.
  27. Courts C, Madea B. Micro-RNA A potential for forensic science? // Forensic Sei Int. -2010. -203(1−3). -C. 106−11.
  28. Covert MW, Leung TH, Gaston JE, Baltimore D. Achieving stability of lipopolysaccharide-induced NF-kappaB activation // Science. -2005. -309(5742).-C. 1854−7.
  29. Daley JM, Brancato SK, Thomay AA, Reichner JS, Albina JE. The phenotype of murine wound macrophages // J Leukoc Biol. -2010. -87(1). -C. 59−67.
  30. Daley JM, Reichner JS, Mahoney EJ, Manfield L, Henry WL Jr, Mastrofrancesco B, Albina JE. Modulation of macrophage phenotype by soluble product (s) released from neutrophils // J Immunol. -2005. -174(4). -C. 2265−72.
  31. Deiters U, Barsig J, Tawil B, Miihlradt PF. The macrophage-activating lipopeptide-2 accelerates wound healing in diabetic mice //Exp Dermatol. -2004. -13(12).-C. 731−9.
  32. Diegelmann RF, Evans MC. Wound healing: an overview of acute, fibrotic and delayed healing // Front Biosci. -2004. -9. -C. 283−9.
  33. DiPietro LA, Burdick M, Low QE, Kunkel SL, Strieter RM. MIP-1 alpha as a critical macrophage chemoattractant in murine wound repair // J Clin Invest. -1998. -101(8).-C. 1693−8.
  34. Dovi JV, He LK, DiPietro LA. Accelerated wound closure in neutrophil-depleted mice // J Leukoc Biol. -2003. -73(4). -C. 448−55.
  35. Edwards R, Harding KG. Bacteria and wound healing // Curr Opin Infect Dis. -2004. -17(2). -C. 91−6.
  36. Egozi EI, Ferreira AM, Burns AL, Gameiii RL, Dipietro LA. Mast cells modulate the inflammatory but not the proliferative response in healing wounds // Wound Repair Regen. 2003. -11(1). -C. 46−54.
  37. Erridge C, Bennett-Guerrero E, Poxton IR. Structure and function of lipopolysaccharides // Microbes Infect. 2002. — 4(8). -C. 837−51.
  38. Fearns C, Pan Q, Mathison JC, Chuang TH. Triad3A regulates ubiquitination and proteasomal degradation of RIP1 following disruption of Hsp90 binding //J Biol Chem. -2006. 281(45). -C. 34 592−600.
  39. Finzi L, Shao MX, Paye F, Housset C, Nadel JA. Lipopolysaccharide initiates a positive feedback of epidermal growth factor receptor signaling by prostaglandin E2 in human biliary carcinoma cells // J Immunol. 2009. -182(4). -C. 2269−76.
  40. Fitzgerald KA, McWhirter SM, Faia KL, Rowe DC, Latz E, Golenbock DT, Coyle AJ, Liao SM, Maniatis T IKKepsilon and TBK1 are essential components of the IRF3 signaling pathway // Nat Immunol. 2003. — 4(5). — C. 491−6.
  41. Fukuoka S, Brandenburg K, Muller M, Lindner B, Koch MH, Seydel U. Physico-chemical analysis of lipid A fractions of lipopolysaccharide from Erwinia carotovora in relation to bioactivity // Biochim Biophys Acta. 2001. -1510(1−2).-C. 185−97.
  42. Galanos C., Luderitz O., Westphal O. Preparation and properties of a standardized lipopolysaccharide from salmonella abortus equi (Novo-Pyrexal) // Zentralbl Bakteriol Orig A. 1979. -243. — C. 226−244.
  43. Gallant-Behm CL, Hildebrand KA, Hart DA. The mast cell stabilizer ketotifen prevents development of excessive skin wound contraction and fibrosis in red Duroc pigs // Wound Repair Regen. 2008. — 16(2). — C. 226−33.
  44. Gillitzer R, Goebeler M. Chemokines in cutaneous wound healing // J Leukoc Biol.-2001.-69(4).-C. 513−21.
  45. Gioannini TL, Weiss JP. Regulation of interactions of Gram-negative bacterial endotoxins with mammalian cells // Immunol Res. 2007. — 39(1−3). — C. 24 960.
  46. Goede V, Brogelli L, Ziehe M, Augustin HG. Induction of inflammatory angiogenesis by monocyte chemoattractant protein-1 // Int J Cancer. 1999. -82(5). — C.765−70.
  47. Gordon S, Taylor PR. Monocyte and macrophage heterogeneity // Nat Rev Immunol. 2005. -5(12). — C. 953−64.
  48. Gordon S. Alternative activation of macrophages // Nat Rev Immunol. 2003. -3(1). -C. 23−35.
  49. Granger DN, Kubes P. The microcirculation and inflammation: modulation of leukocyte-endothelial cell adhesion // J Leukoc Biol. 1994. — 55(5). — C. 66 275.
  50. Green S, Fortier A, Dijkslra J, Madsen J, Swartz G, Einck L, Gubish E, Nacy C. Liposomal vaccines // Adv Exp Med Biol. 1995. — 383. — C. 83−92.
  51. Gruber BL, Marchese MJ, Kew RR. Transforming growth factor-beta 1 mediates mast cell chemotaxis // J Immunol. 1994. — 152(12). — C. 5860−7.
  52. Gurtner GC, Werner S, Barrandon Y, Longaker MT. Wound repair and regeneration // Nature. 2008. — 453(7193). — C. 314−21.
  53. Guo B, Cheng G. Modulation of the interferon antiviral response by the TBKl/IKKi adaptor protein TANK // J Biol Chem. 2007. — 282(16). — C. 11 817−26.
  54. Haller O, Stertz S, Kochs G. The Mx GTPase family of interferon-induced antiviral proteins // Microbes Infect. 2007. — (14−15). — C. 1636−43.
  55. Haslett C. Macrophage phagocytosis of aging neutrophils in inflammation. Programmed cell death in the neutrophil leads to its recognition by macrophages //J Clin Invest. 1989. — 83(3). — C. 865−75.
  56. He Z, Zhu Y, Jiang H. Toll-like receptor 4 mediates lipopolysaccharide-induced collagen secretion by phosphoinositide3-kinase-Akt pathway in fibroblasts during acute lung injury // J Reccpt Signal Transduct Res. 2009. — 29(2). — C. 119−25.
  57. Henry SC, Daniell X, Indaram M, Whitesides JF, Sempowski GD, Howell D, Oliver T, Taylor GA. Impaired macrophage function underscores susceptibility to Salmonella in mice lacking Irgml (LRG-47) // J Immunol. 2007. -179(10). -C. 6963−72.
  58. Hoebe K, Du X, Georgel P, Janssen E, Tabeta K, Kim SO, Goode J, Lin P, Mann N, Mudd S, Crozat K, Sovath S, Han J, Beutler B. Identification of Lps2 as a key transducer of MyD88-independent TIR signaling // Nature. 2003. -424(6950).-C. 743−8.
  59. Honda K, Taniguchi T. IRFs: master regulators of signalling by Toll-like receptors and cytosolic pattern-recognition receptors // Nat Rev Immunol. -2006. 6(9). — C. 644−58.
  60. Hong KH, Ryu J, Han KH. Monocyte chemoattractant protein-1-induced angiogenesis is mediated by vascular endothelial growth factor-A // Blood. -2005. 105(4). — C. 1405−7.
  61. Horng T, Barton GM, Flavell RA, Medzhitov R. The adaptor molecule TIRAP provides signalling specificity for Toll-like receptors // Nature. 2002. -420(6913).-C. 329−33.
  62. Horng T, Barton GM, Medzhitov R. TIRAP: an adapter molecule in the Toll signaling pathway // Nat Immunol. 2001. — 2(9). — C. 835−41.
  63. Huang C, Sali A, Stevens RL. Regulation and function of mast cell proteases in inflammation // J Clin Immunol. 1998. — 18(3). — C. 169−83.121
  64. Huang DW, Sherman BT, Lempicki RA. Bioinformatics enrichment tools: paths toward the comprehensive functional analysis of large gene lists // Nucleic Acids Res. 2009. — 37(1). — C. 1−13.
  65. Huang DW, Sherman BT, Lempicki RA. Systematic and integrative analysis of large gene lists using DAVID Bioinformatics Resources // Nature Protoc. -2009.-4(1).-C. 44−57.
  66. Hunt TK, Knighton DR, Thakral KK, Goodson WH 3rd, Andrews WS. Studies on inflammation and wound healing: angiogenesis and collagen synthesis stimulated in vivo by resident and activated wound macrophages. // Surgery. -1984.- 96(1). -C. 48−54.
  67. Iba Y, Shibata A, Kato M, Masukawa T. Possible involvement of mast cells in collagen remodeling in the late phase of cutaneous wound healing in mice // Int Immunopharmacol. 2004. — 4(14). — C. 1873−80.
  68. Jahr TG, Sundan A, Lichenstein HS, Espevik T. Influence of CD14, LBP and BPI in the monocyte response to LPS of different polysaccharide chain length // Scand J Immunol. 1995.-42(1).-C. 119−27.
  69. Kato H, Haishima Y, lida T, Tanaka A, Tanamoto K. Chemical structure of lipid A isolated from Flavobacterium meningosepticum lipopolysaccharide // J Bacteriol. 1998. — 180(15). — C. 3891−9.
  70. Katsuyama M. NOX/NADPH oxidase, the superoxide-generating enzyme: its transcriptional regulation and physiological roles // J Pharmacol Sci. -2010. -114(2). C. 134−46.
  71. Kauhanen P, Kovanen PT, Reunala T, Lassila R. Effects of skin mast cells on bleeding time and coagulation activation at the site of platelet plug formation // Thromb Haemost. 1998. — 79(4). — C. 843−7.
  72. Kawai T, Adachi O, Ogawa T, Takeda K, Akira S. Unresponsiveness of MyD88-deficient mice to endotoxin // Immunity. 1999. — 11(1). — C. 115−22.
  73. Khanna S, Biswas S, Shang Y, Collard E, Azad A, Kauh C, Bhasker V, Gordillo GM, Sen CK, Roy S. Macrophage dysfunction impairs resolution of inflammation in the wounds of diabetic mice // PLoS One. 2010. — 5(3). — C. 9539.
  74. Kim MH, Liu W, Borjesson DL, Curry FR, Miller LS, Cheung AL, Liu FT, Isseroff RR, Simon SI. Dynamics of neutrophil infiltration during cutaneous wound healing and infection using fluorescence imaging // J Invest Dermatol. -2008. 128(7). — C. 1812−20.
  75. Kim BH, Shenoy AR, Kumar P, Das R, Tiwari S, MacMicking JD. A family of IFN-y-inducible 65-kD GTPases protects against bacterial infection //Science. 2011. — 332(6030). — C. 717−21.
  76. Kluwe J, Menem A, Schwabe RF. Toll-like receptors, wound healing, and carcinogenesis // J Mol Med (Berl). 2009. — 87(2). — C. 125−38.
  77. Kobayashi K, Hernandez LD, Galan JE, Janeway CA Jr, Medzhitov R, Flavell RA. IRAK-M is a negative regulator of Toll-like receptor signaling //Cell. 2002. — 110(2). — C. 191−202.
  78. Koff JL, Shao MX, Kim S, Ueki IF, Nadel JA. Pseudomonas lipopolysaccharide accelerates wound repair via activation of a novel epithelial cell signaling cascadc // J Immunol. 2006. — 177(12). — C. 8693−700.
  79. Koh TJ, DiPietro LA. Inflammation and wound healing: the role of the macrophage // Expert Rev Mol Med. 2011. — 13. — C. 23.
  80. Komuro T, Galanos C. Analysis of Salmonella lipopolysaccharides by sodium deoxycholate-polyacrylamide gel electrophoresis // J Chromatogr. -1988.-450(3).-C. 381−7.
  81. Kondo T, Ishida Y. Molecular pathology of wound healing // Forensic Sci Int. 2010. — 203(1−3). — C. 93−8.
  82. Kulshin VA, Zahringer U, Lindner B, Frasch CE, Tsai CM, Dmitriev BA, Rietschel ET. Structural characterization of the lipid A component of124pathogenic Neisseria meningitidis //J Bacterid. 1992. — 174(6). — C. 1 793 800.
  83. Kurt-Jones EA, Sandor F, Ortiz Y, Bowen GN, Counter SL, Wang TC, Finberg RW. Use of murine embryonic fibroblasts to define Toll-like receptor activation and specificity // J Endotoxin Res. 2004. — 10(6). — C. 419−24.
  84. Laemmli UK. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4 // Nature. 1970. — 227(5259). — C. 680−5.
  85. Lavorgna A, De Filippi R, Formisano S, Leonardi A. TNF receptor-associated factor 1 is a positive regulator of the NF-kappaB alternative pathway // Mol Immunol. 2009. — 46(16). — C. 3278−82.
  86. Leibovich SJ, Ross R. The role of the macrophage in wound repair. A study with hydrocortisone and antimacrophage serum // Am J Pathol. 1975. -78(1). -C. 71−100.
  87. Li J, Bauer SI-I, Mansson M, Moxon ER, Richards JC, Schweda EK. Glycine is a common substituent of the inner core in Haemophilus influenzae lipopolysaccharide // Glycobiology. 2001. — 11(12). — C. 1009−15.
  88. Lin Q, Fang D, Fang J, Ren X, Yang X, Wen F, Su SB. Impaired wound healing with defective expression of chemokines and recruitment of myeloid cells in TLR3-deficient mice // J Immunol. 2011. — 186(6). — C. 3710−7.
  89. Lu P, Li L, Wu Y, Mukaida N, Zhang X. Essential contribution of CCL3 to alkali-induced corneal neovascularization by regulating vascular endothelial growth factor production by macrophages // Mol Vis. 2008. — 14. — C. 161 422.
  90. Lu YC, Yeh WC, Ohashi PS. LPS/TLR4 signal transduction pathway // Cytokine. 2008. — 42(2). — C. 145−51.
  91. Lucas T, Waisman A, Ranjan R, Roes J, Krieg T, Mtiller W, Roers A, Eming SA. Differential roles of macrophages in diverse phases of skin repair // J Immunol. 2010. — 184(7). — C. 3964−77.
  92. Lukacova M, Barak I, Kazar J. Role of structural variations of polysaccharide antigens in the pathogenicity of Gram-negative bacteria // Clin Microbiol Infect. 2008. — 14(3). — C. 200−6.
  93. Lye E, Mirtsos C, Suzuki N, Suzuki S, Yeh WC. The role of interleukin 1 receptor-associated kinase-4 (IRAK-4) kinase activity in IRAK-4-mediated signaling // J Biol Chem. 2004. — 279(39). — C. 40 653−8.
  94. Ma X, Becker Buscaglia LE, Barker JR, Li Y. MicroRNAs in NF-kappaB signaling // J Mol Cell Biol. 2011. — 3(3). — C. 159−66.
  95. Macedo L, Pinhal-Enfield G, Alshits V, Elson G, Cronstein BN, Leibovich SJ. Wound healing is impaired in MyD88-deficient mice: a role for MyD88 in the regulation of wound healing by adenosine A2A receptors // Am J Pathol. -2007.-171(6).-C. 1774−88.
  96. Mahdavian Delavary B, van der Veer WM, van Egmond M, Niessen FB, Beelen RH. Macrophages in skin injury and repair // Immunobiology. -2011. -216(7).-C. 753−62.
  97. Mantovani A, Sozzani S, Locati M, Allavena P, Sica A. Macrophage polarization: tumor-associated macrophages as a paradigm for polarized M2 mononuclear phagocytes // Trends Immunol. 2002. — 23(11). — C. 549−55.
  98. Medzhitov R, Jane way CA Jr. Innate immunity: the virtues of a nonclonal system of recognition //Cell. 1997. — 91(3). — C. 295−8.
  99. Meszaros A J, Reichner JS, Albina JE. Macrophage-induced neutrophil apoptosis //J Immunol. 2000. — 165(1). — C. 435−41.
  100. Meszaros AJ, Rcichner JS, Albina JE. Macrophage phagocytosis of wound neutrophils // J Leukoc Biol. 1999. — 65(1). — C. 35−42.
  101. Meylan E, Burns K, Hofmann K, Blancheteau V, Martinon F, Kelliher M, Tschopp J. RIP1 is an essential mediator of Toll-like receptor 3-induced NF-kappa B activation // Nat Immunol. 2004. — 5(5). — C. 503−7.
  102. Miller LS, Modlin RL. Toll-like receptors in the skin // Semin Immunopathol. 2007. — 29(1). — C. 15−26.
  103. Miller LS. Toll-like receptors in skin // Adv Dermatol. 2008. — 24. — C. 7187.
  104. Mirza R, DiPietro LA, Koh TJ Selective and specific macrophage ablation is detrimental to wound healing in mice // Am J Pathol. 2009. — 175(6). — C. 2454−62.
  105. Miyairi I, Tatireddigari VR, Mahdi OS, Rose LA, Belland RJ, Lu L, Williams RW, Byrne GI. The p47 GTPases Iigp2 and IrgblO regulate innate immunity and inflammation to murine Chlamydia psittaci infection // J Immunol. 2007. — 179(3). — C. 1814−24.
  106. Miyake K. Innate immune sensing of pathogens and danger signals by cell surface Toll-like receptors // Semin Immunol. 2007. — 19(1). — C. 3−10.
  107. Mosser DM. The many faces of macrophage activation // J Leukoc Biol. -2003.- 73(2). -C. 209−12.
  108. Mosser DM, Edwards JP. Exploring the full spectrum of macrophage activation // Nat Rev Immunol. 2008. — 8(12). — C. 958−69.
  109. Moynagh PN. TLR signalling and activation of IRFs: revisiting old friends from the NF-kappaB pathway // Trends Immunol. 2005. — 26(9). — C. 46 976.
  110. Muehlberger T, Morcsi JM, Schwarze H, Hristopoulos G, Laenger F, Wong L. The effect of topical tretinoin on tissue strength and skin components in a murine incisional wound model // J Am Acad Dermatol. 2005. — 52(4). — C. 583−8.
  111. Murphree LJ, Sullivan GW, Marshall MA, Linden J. Lipopolysaccharide rapidly modifies adenosine receptor transcripts in murine and human macrophages: role of NF-kappaB in A (2A) adenosine receptor induction // Biochem J. 2005. — 391. — C. 575−80.
  112. Munford RS, Hall CL. Uptake and deacylation of bacterial lipopolysaccharides by macrophages from normal and endotoxin-hyporesponsive mice // Infect Immun. 1985. — 48(2). — C. 464−73.
  113. Muzio M, Ni J, Feng P, Dixit VM. IRAK (Pelle) family member IRAK-2 and MyD88 as proximal mediators of IL-1 signaling // Science. 1997. -278(5343). — C. 1612−5.
  114. Oganesyan G, Saha SK, Guo B, He JQ, Shahangian A, Zarnegar B, Perry A, Cheng G. Critical role of TRAF3 in the Toll-like receptor-dependent and -independent antiviral response // Nature. 2006. — 439(7073). — C. 208−11.
  115. O’Neill LA, Bowie AG. The family of five: TIR-domain-containing adaptors in Toll-like receptor signalling // Nat Rev Immunol. 2007. — 7(5). — C. 35 364.
  116. Onichtchouk D, Chen YG, Dosch R, Gawantka V, Delius H, Massague J, Niehrs C. Silencing of TGF-beta signalling by the pseudoreceptor BAMBI // Nature. 1999. — 401(6752). — C. 480−5.
  117. Otte JM, Rosenberg IM, Podolsky DK. Intestinal myofibroblasts in innate immune responses of the intestine // Gastroenterology. 2003. -124(7). — C. 1866−78.
  118. Oyama J, Blais C Jr, Liu X, Pu M, Kobzik L, Kelly RA, Bourcier T. Reduced myocardial ischemia-reperfusion injury in toll-like receptor 4-deficient mice // Circulation. 2004. — 109(6). — C. 784−9.
  119. Pacher P, Beckman JS, Liaudet L. Nitric oxide and peroxynitrite in health and disease // Physiol Rev. 2007. — 87(1). — C. 315−424.
  120. Paik YH, Schwabe RF, Bataller R, Russo MP, Jobin C, Brenner DA. Tolllike receptor 4 mediates inflammatory signaling by bacterial lipopolysaccharide in human hepatic stellate cells // Hepatology. 2003. — 37(5). — C. 1043−55.
  121. Park JE, Barbul A. Understanding the role of immune regulation in wound healing // Am J Surg. 2004. — 187(5A). — C. 11−16.
  122. Perry AK, Chen G, Zheng D, Tang H, Cheng G. The host type I interferon response to viral and bacterial infections // Cell Res. 2005. — 15(6). — C. 40 722.
  123. Presta M, Andres G, Leali D, Dell’Era P, Ronca RInflammatory cells and chemokines sustain FGF2-induced angiogenesis // Eur Cytokine Netw. 2009. — 20(2). — C. 39−50.
  124. Presta M, Dell’Era P, Mitola S, Moroni E, Ronca R, Rusnati MFibroblast growth factor/fibroblast growth factor receptor system in angiogenesis // Cytokine Growth Factor Rev. 2005. — 16(2). — C. 159−78.
  125. Posselt G, Schwarz H, Duschl A, Horejs-Hoeck J. Suppressor of cytokine signaling 2 is a feedback inhibitor of TLR-induced activation in human monocyte-derived dcndritic cells // J Immunol. 2011. — 187(6). — C. 2875−84.
  126. Polverini PJ, Cotran PS, Gimbrone MA Jr, Unanue ER. Nature. Activated macrophages induce vascular proliferation. // Nature. 1977. — 269(5631). — C. 804−6.
  127. Pull SL, Doherty JM, Mills JC, Gordon JI, Stappenbeck TS. Activated macrophages are an adaptive element of the colonic epithelial progenitor nichenecessary for regenerative responses to injury // Proc Natl Acad Sci USA. -2005.-102(1).-C.9 9−104.
  128. Puxeddu I, Piliponsky AM, Bachelet I, Levi-Schaffer F. Mast cells in allergy and beyond // Int J Biochem Cell Biol. 2003. — 35(12). — C. 1601−7.
  129. Qin J, Qian Y, Yao J, Grace C, Li X. SIGIRR inhibits interleukin-1 receptor-and toll-like receptor 4-mediated signaling through different mechanisms // J Biol Chem. 2005. — 280(26). — C. 25 233−41.
  130. Raetz CR, Whitfield C. Lipopolysaccharide endotoxins // Annu Rev Biochem. 2002. — 71. — C. 635−700.
  131. Raetz CR, Reynolds CM, Trent MS, Bishop RE. Lipid A modification systems in gram-negative bacteria // Annu Rev Biochem. 2007. — 76. — C. 295−329.
  132. Rakoff-Nahoum S, Paglino J, Eslami-Varzaneh F, Edberg S, Medzhitov R. Recognition of commensal microflora by toll-like receptors is required for intestinal homeostasis // Cell. 2004. — 118(2). — C. 229−41.
  133. Rappolee DA, Mark D, Banda MJ, Werb Z. Wound macrophages express TGF-alpha and other growth factors in vivo: analysis by mRNA phenotyping // Science. 1988. — 241(4866). — C. 708−12.
  134. Ribeiro RA, Souza-Filho MV, Souza MH, Oliveira SH, Costa CH, Cunha FQ, Ferreira HS. Role of resident mast cells and macrophages in the neutrophil migration induced by LTB4, fMLP and C5a des arg // Int Arch Allergy Immunol. -1997. 112(1). — C. 27−35.
  135. Rietschel ET, Kirikac T, Schade FU, Mamat U, Schmidt G, Loppnow H, Ulmer AJ, Zahringer U, Seydel U, Di Padova F, et al. Bacterial endotoxin: molecular relationships of structure to activity and function // FASEB J. 1994. — 8(2).-C. 217−25.
  136. Rietschel ET, Kirikae T, Schade FU, Ulmer AJ, Holst O, Brade H, Schmidt G, Mamat U, Grimmecke HD, Kusumoto S, et al. The chemical structure of bacterial endotoxin in relation to bioactivity // Immunobiology. 1993. -187(3−5).-C. 169−90.
  137. Rodero MP, Khosrotehrani K. Skin wound healing modulation by macrophages // Tnt J Clin Exp Pathol. 2010. — 3(7). — C. 643−53.
  138. Ross R, Odland G. Human wound repair. II. Inflammatory cells, epithelialmesenchymal interrelations, and fibrogenesis // J Cell Biol. 1968. — 39(1). -C. 152−68.
  139. Ruiz N, Kahne D, Silhavy TJ. Transport of lipopolysaccharide across the cell envelope: the long road of discovery // Nat Rev Microbiol. 2009. -7(9). -C. 677−83.
  140. Salcedo R, Poncc ML, Young HA, Wasserman K, Ward JM, Kleinman HK, Oppenheim JJ, Murphy WJ. Human endothelial cells express CCR2 andrespond to MCP-1: direct role of MCP-1 in angiogenesis and tumor progression. // Blood. 2000. — 96(1). — C. 34−40.
  141. Sato T, Yamamoto M, Shimosato T, Klinman DM. Accelerated wound healing mediated by activation of Toll-like receptor 9 // Wound Repair Regen. 2010, — 18(6). -C. 586−93.
  142. Sato S, Sanjo II, Takeda K, Ninomiya-Tsuji J, Yamamoto M, Kawai T, Matsumoto K, Takcuchi O, Akira S. Essential function for the kinase TAK1 in innate and adaptive immune responses // Nat Immunol. 2005. — 6(11). — C. 1087−95.
  143. Schwabe RF, Seki E, Brenner DA. Toll-like receptor signaling in the liver // Gastroenterology. 2006. — 130(6). — C. 1886−900.
  144. Seki E, De Minicis S, Osterreicher CH, Kluwe J, Osawa Y, Brenner DA, Schwabe RF. TLR4 enhances TGF-beta signaling and hepatic fibrosis // Nat Med. 2007. — 13(11). — C. 1324−32.
  145. Sen CK. Wound healing essentials: let there be oxygen // Wound Repair Regen.-2009,-17(1).-C. 1−18.
  146. Serena Leone, Alba Silipo, Evgeny L. Nazarenko, Rosa Lanzetta, Michelangelo Parrilli, Antonio Molinaro Molecular Structure of Endotoxins from Grain-negative Marine Bacteria: An Update // Mar Drugs. 2007. — 5(3). -C. 85−112.
  147. Silipo A, Lanzetta R, Amoresano A, Parrilli M, Molinaro A. Ammonium hydroxide hydrolysis: a valuable support in the MALDI-TOF massspectrometry analysis of Lipid A fatty acid distribution // J Lipid Res. 2002. -43(12).-C. 2188−95.
  148. Simpson DM, Ross R. The neutrophilic leukocyte in wound repair a study with antineutrophil scrum // J Clin Invest. 1972. — 51(8). — C. 2009−23.
  149. Singer AJ, Clark RA. Cutaneous wound healing // N Engl J Med. 1999. -341(10).-C. 738−46.
  150. Swantek JL, Tsen MF, Cobb MH, Thomas JA. IL-1 receptor-associated kinase modulates host responsiveness to endotoxin // J Immunol. 2000. -164(8). -C. 4301−6.
  151. Thomas VA, Wheeless CJ, Stack MS, Johnson DA. Human mast cell tryptase fibrinogenolysis: kinetics, anticoagulation mechanism, and cell adhesion disruption // Biochemistry. 1998. — 37(8). — C. 2291−8.
  152. Tidswell M, LaRosa SP. Toll-like receptor-4 antagonist eritoran tetrasodium for severe sepsis // Expert Rev Anti Infect Ther. 2011. — 9(5). — C. 507−20.
  153. Tiwari S, Choi HP, Matsuzawa T, Pypaert M, MacMicking JD. Targeting of the GTPase Irgml to the phagosomal membrane via PtdIns (3,4)P (2) and PtdIns (3,4,5)P (3) promotes immunity to mycobacteria // Nat Immunol. 2009. — 10(8).-C. 907−17.
  154. Tobias PS, Soldau K, Ulevitch RJ. Isolation of a lipopolysaccharide-binding acute phase reactant from rabbit serum // J Exp Med. 1986. — 164(3). — C. 777−93.
  155. Tran AX, Whittimore JD, Wyrick PB, McGrath SC, Cotter RJ, Trent MS. The lipid A 1-phosphatase of Helicobacter pylori is required for resistance to the antimicrobial peptide polymyxin // J Bacterid. 2006. — 188(12). — C. 4531−41.
  156. Trent MS, Pabich W, Raetz CR, Miller SI. A PhoP/PhoQ-induced Lipase (PagL) that catalyzes 3-O-deacylation of lipid A precursors in membranes of Salmonella typhimurium // J Biol Chem. 2001. — 276(12). — C. 9083−92.
  157. Tsai CM, Frasch CE. A sensitive silver stain for detecting lipopolysaccharides in Polyacrylamide gels // Anal Biochem. 1982. — 119(1). -C. 115−9.
  158. Tsung A, Hoffman RA, Izuishi K, Critchlow ND, Nakao A, Chan MH, Lotze MT, Geller DA, Billiar TR. Hepatic ischemia/reperfusion injury involves functional TLR4 signaling in nonparenchymal cells // J Immunol. 2005. -175(11).-C. 7661−8.
  159. Tsung A, Sahai R, Tanaka H, Nakao A, Fink MP, Lotze MT, Yang H, Li J, Tracey KJ, Geller DA, Billiar TR. The nuclear factor HMGB1 mediates hepatic injury after murine liver ischemia-reperfusion // J Exp Med. 2005. -201(7). -C. 1135−43.
  160. Uesugi T, Froh M, Arteel GE, Bradford BU, Thurman RG. Toll-like receptor 4 is involved in the mechanism of early alcohol-induced liver injury in mice // Hepatology. 2001. — 34(1). — C.101−8.
  161. Ulmer A J, Heine H, Feist W, Kusumoto S, Kusama T, Brade H, Schade U, Rietschel ET, Flad HD. Biological activity of synthetic phosphonooxyethyl analogs of lipid A and lipid A partial structures // Infect Immun. 1992. -60(8). -C. 3309−14.
  162. Valent P, Sillaber C, Baghestanian M, Bankl HC, Kiener HP, Lechner K, Binder BR. What have mast cells to do with edema formation, the consecutive repair and fibrinolysis? // Int Arch Allergy Immunol. 1998. — 115(1). — C. 2−8.
  163. Vandenplas ML, Carlson RW, Jeyaretnam BS, McNeill B, Barton MH, Norton N, Murray TF, Moore JN. Rhizobium sin-1 lipopolysaccharide (LPS) prevents enteric LPS-induced cytokine production.// J Biol Chem. 2002. -277(44).-C. 41 811−6.
  164. Vestal DJ, Jeyaratnam JA. The guanylate-binding proteins: emerging insights into the biochemical properties and functions of this family of large136interferon-induced guanosine triphosphatase.// J Interferon Cytokine Res. -2011. 31(1).-C. 89−97.
  165. Wagner R, Ngamsri KC, Stark S, Vollmer I, Reutershan J. Adenosine receptor A3 is a critical mediator in LPS-induced pulmonary inflammation // Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2010. — 299(4). — C. L502−12.
  166. Wald D, Qin J, Zhao Z, Qian Y, Naramura M, Tian L, Towne J, Sims JE, Stark GR, Li X. SIGIRR, a negative regulator of Toll-like receptor-interleukin 1 receptor signaling // Nat Immunol. 2003. — 4(9). — C. 920−7.
  167. Wang T, Holland JW, Carrington A, Zou J, Secombes CJ. Molecular and functional characterization of IL-15 in rainbow trout Oncorhynchus mykiss: a potent inducer of IFN-gamma expression in spleen leukocytes // J Immunol. -2007.- 179(3).-C. 1475−88.
  168. Walsh LJ, Trinchieri G, Waldorf HA, Whitaker D, Murphy GF Human dermal mast cells contain and release tumor necrosis factor alpha, which induces endothelial leukocyte adhesion molecule 1 // Proc Natl Acad Sei USA.- 1991,-88(10).-C. 4220−4.
  169. Watanabe A, Hashmi A, Gomes DA, Town T, Badou A, Flavell RA, Mehal WZ. Apoptotic hepatocyte DNA inhibits hepatic stellate cell Chemotaxis via toll-like receptor 9 // Hepatology. 2007. — 46(5). — C. 1509−18.
  170. Weber KS, Nelson PJ, Grone HJ, Weber C. Expression of CCR2 by endothelial cells: implications for MCP-1 mediated wound injury repair and In vivo inflammatory activation of endothelium // Arterioscler Thromb Vase Biol.- 1999.- 19(9).-C. 2085−93.
  171. Weller K, Foitzik K, Paus R, Syska W, Maurer M. Mast cells are required for normal healing of skin wounds in mice // FASEB J. 2006. — 20(13). — C. 2366−8.
  172. Werner S, Grose R. Regulation of wound healing by growth factors and cytokines // Physiol Rev. 2003. — 83(3). — C. 835−70.
  173. Wesche H, Gao X, Li X, Kirschning CJ, Stark GR, Cao Z. IRAK-M is a novel member of the Pelle/interleukin-1 receptor-associated kinase (IRAK) family // J Biol Chem. 1999. — 274(27). — C. 19 403−10.
  174. Wicovsky A, Henkler F, Salzmann S, Scheurich P, Kneitz C, Wajant H. Tumor necrosis factor receptor-associated factor-1 enhances proinflammatory TNF receptor-2 signaling and modifies TNFR1-TNFR2 cooperation // Oncogene. 2009. — 28(15). — C. 1769−81.
  175. Wilgus TA. Immune cells in the healing skin wound: influential players at each stage of repair // Pharmacol Res. 2008. — 58(2). — C. 112−6.
  176. Wright SD, Ramos RA, Tobias PS, Ulevitch RJ, Mathison JC. CD14, a receptor for complexes of lipopolysaccharide (LPS) and LPS binding protein // Science. 1990. — 249(4975). — C. 1431−3.
  177. Wright SD, Tobias PS, Ulevitch RJ, Ramos RA. Lipopolysaccharide (LPS) binding protein opsonizes LPS-bearing particles for recognition by a novel receptor on macrophages // J Exp Med. 1989. — 170(4). — C. 1231−41.
  178. Wu H, Chen G, Wyburn KR, Yin J, Bertolino P, Eris JM, Alexander SI, Sharland AF, Chadban SJ. TLR4 activation mediates kidney ischemia/reperfusion injury // J Clin Invest. 2007. — 117(10). — C. 2847−59.
  179. Yamamoto M, Sato S, Hemmi H, Uematsu S, Hoshino K, Kaisho T, Takeuchi O, Takeda K, Akira S. TRAM is specifically involved in the Toll-like receptor 4-mediated MyD88-independent signaling pathway // Nat Immunol. -2003.- 4(11).-C. 1144−50.
  180. Yamamoto M, Sato S, Hemmi H, Hoshino K, Kaisho T, Sanjo H, Takeuchi O, Sugiyama M, Okabe M, Takeda K, Akira S. Role of adaptor TRIF in the MyD88-independent toll-like receptor signaling pathway // Science. 2003. -301(5633).-C. 640−3.
  181. Zhang X, Mosser DM. Macrophage activation by endogenous danger signals // J Pathol. 2008. — 214(2). — C. 161−78.
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?