Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Управление пространственной организацией жидкокристаллических дисперсий нуклеиновых кислот при помощи биологически значимых факторов

Диссертация: Управление пространственной организацией жидкокристаллических дисперсий нуклеиновых кислот при помощи биологически значимых факторов
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Исследования in vitro проводятся на нескольких модельных системах, две из которых получили наибольшее распространение. Первая модельная система — жидкокристаллические фазы ДНК, возникающие спонтанно в водных растворах солей щелочных металлов умеренной или высокой ионной силы при достижении в них некоторой «критической» концентрации ДНК [15,16 3. Вторая модельная система — жидкие кристаллы… Читать ещё >

Содержание

  • ЛИТЕРАТУРНЫЙ ОБЗОР
  • Глава I. ЖИДКОКРИСТАЛЛИЧЕСКИЕ ФАЗЫ ДНК В ВОДНО-СОЛЕВЫХ РАСТВОРАХ
  • Глава II. БИОГЕННЫЕ ПОЛИАМИНЫ, АГРЕГАТНОЕ СОСТОЯНИЕ И
  • БИОЛОГИЧЕСКАЯ АКТИВНОСТЬ ДНК
  • Глава III. ЖИДКОКРИСТАЛЛИЧЕСКИЕ ФАЗЫ ДНК В ВОДНО-СОЛЕВЫХ РАСТВОРАХ ПОЛИЭТИЛЕНГЛИКОЛЯ
    • III. Л. Некоторые свойства водных растворов полиэтиленгликоля
      • 111. 2. Рентгенографический анализ жидкокристаллических фаз линейных двухцепочечных молекул ДНК, образующихся в водно-солевых растворах поли-этиленгликоля
      • 111. 3. Оптические текстуры и спектры КД тонких слоев жидкокристаллических фаз линейных двухцепочечных молекул ДНК, образующихся в водно-солевых растворах полиэтиленгликоля
  • ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТ
  • Глава IV. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • IV. 1. Характеристика препаратов ДНК и синтетических полинуклеотидов
    • IV. 2. Характеристика препаратов полиэтиленгликоля 91 IV- 3. Формирование жидкокристаллических дисперсий ДНК и синтетических полинуклеотидов в ПЭГсодержащих водно-солевых растворах
    • IV. 4. Формирование жидкокристаллических дисперсий ДНК в водно-солевых растворах ПЭГ, содержащих изопропанол
    • IV. 5. Формирование жидкокристаллических дисперсий из молекул ДНК, модифицированных цис-дихлородиамминплатиной (II)
    • IV. б. Формирование жидкокристаллических дисперсий из молекул комплексов (ДНК-дауномицин). 98 IV. 7. Формирование жидкокристаллических дисперсий из молекул ДНК, предварительно подвергнутых
  • УФ-облучению
    • IV. 8. Регистрация спектров поглощения и кругового дихроизма
    • IV. 9. Размер частиц жидкокристаллических дисперсий
    • IV. 10. Приготовление образцов жидкокристаллических фаз ДНК для рентгенографического анализа и поляризационной микроскопии

    IV.11. Теоретический расчет спектров кругового дихроизма жидкокристаллических дисперсий ДНК. 104 IV.12. Формирование жидкокристаллических дисперсий и жидкокристаллических фаз комплексов ДНК с синтетическими поликатионами.

    IV.13. Характеристика препаратов гепарина

    IV-14. Формирование жидкокристаллических дисперсий и жидкокристаллических фаз комплексов ДНК с протаминами.

    РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ. ИЗ

    Глава V. УСЛОВИЯ ОБРАЗОВАНИЯ И СВОЙСТВА ЖИДКОКРИСТАЛЛИЧЕСКИХ ДИСПЕРСИЙ ДНК В ВОДНО-СОЛЕВЫХ РАСТВОРАХ, СОДЕРЖАЩИХ ПОЛИЭТИЛЕНГЛИКОЛЬ

    7. 1. Условия образования дисперсий ДНК в водно-солевых растворах полиэтиленгликоля

    V. 2. Некоторые параметры частиц дисперсий ДНК, образующихся в водно-солевых растворах полиэтиленгликоля

    V. 3. Теоретически рассчитанные и экспериментально наблюдаемые спектры КД дисперсий ДНК

    V. 4. Оценка параметра порядка молекул поли (И) х полис Ц), образующих холестерическую жидкокристаллическую дисперсию.

    V. 5. Кинетика формирования холестерических жидкокристаллических дисперсий ДНК.

    7. 6. Факторы стабилизации оптических свойств частиц холестерических жидкокристаллических дисперсий ДНК.

    Глава 71. УПРАВЛЕНИЕ ПРОСТРАНСТВЕННОЙ УКЛАДКОЙ МОЛЕКУЛ ДНК В ЧАСТИЦАХ ЖИДКОКРИСТАЛЛИЧЕСКИХ ДИСПЕРСИЙ

    VI.1. Возможность изменения пространственной укладки молекул полимеров в лиотропных жидких кристаллах: (теория).

    VI.2. Управление пространственной структурой жидкокристаллических дисперсий ДНК в результате изменения диэлектрической постоянной растворителя

    VI-3. Управление пространственной структурой жидкокристаллических дисперсий ДНК при помощи биологически активных соединений

    VI-4. Управление пространственной структурой жидкокристаллических дисперсий поли (И) х поли (Ц) при помощи температуры.

    VI-5- Управление пространственной структурой жидкокристаллических дисперсий ДНК при помощи химических агентов и физических факторов

    VI.5.1. Оптические свойства жидкокристаллических дисперсий, сформированных из молекул ДНК, модифицированных цис-дихлородиамминплатиной (II).. 175 VI.5.2- Фотохимическая модификация азотистых оснований и оптические свойства жидкокристаллических дисперсий ДНК.

    VI.5.3. Возможные причины исчезновения аномальной оптической активности жидкокристаллических дисперсий ДНК при модификации азотистых оснований.

    VI.6. Влияние ионного состава растворителя на эффективность образования жидкокристаллических дисперсий ДНК и характер упаковки молекул ДНК в частицах этих дисперсий

    Глава VII. «ПЭГ-ПОДОБНАЯ СИТУАЦИЯ «В БИОЛОГИЧЕСКИХ СИСТЕМАХ.

    Глава VIII. ЖИДКОКРИСТАЛЛИЧЕСКИЕ ФАЗЫ И ЖИДКОКРИСТАЛЛИЧЕСКИЕ ДИСПЕРСИИ КОМПЛЕКСОВ ДНК С СИНТЕТИЧЕСКИМИ И ПРИРОДНЫМИ ПОЛИКАТИОНАМИ

    VIII.1. Условия образования и свойства жидкокристаллических фаз и жидкокристаллических дисперсий комплексов (ДНК-поликатион), сформированных в водно-солевых растворах

    VIII.2. Управление пространственной организацией жидкокристаллических дисперсий комплексов (ДНК-поликатион) при помощи биологически активных соединений

    Глава IX. ЖИДКОКРИСТАЛЛИЧЕСКОЕ СОСТОЯНИЕ ДНК В СОСТАВЕ БИОЛОГИЧЕСКИХ ОБЪЕКТОВ

    Глава X. АНАЛИТИЧЕСКИЕ СИСТЕМЫ (БИОСЕНСОРЫ) НА ОСНОВЕ ЖИДКОКРИСТАЛЛИЧЕСКИХ ДИСПЕРСИИ ДНК ДЛЯ ОПРЕДЕЛЕНИЯ БИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНЫХ СОЕДИНЕНИЙ.. 252 X.1. Общие принципы создания и функционирования биосенсоров.

    Х.2. Биодатчики на основе холестерических жидкокристаллических дисперсий ДНК.

    Х.З. Биодатчики на основе жидкокристаллических дисперсий комплексов IДНК-поликатион). 275 Х.4. Синтетические полимерные матриксы, содержащие холестерические жидкокристаллические дисперсии ДНК

    СПИСОК СОКРАЩЕНИИ ДОВ — дисперсия оптического вращения КД — круговой дихроизм НК — нуклеиновая кислота ПЭГ — полиэтиленгликоль Т-модель — термодинамическая модель комплекса {ДНК-поликатион) Э-модель — электростатическая модель комплекса (ДНК-поликатион) цис-Р1-(11) — цис-дихлородиамминплатина (II)

    А-762 — 3,6-ди (о-диметиламинопропиламидо)-4,5-диокси-9,10-антрацендион гидрохлорид

    ВБ — бисантрен, 9,10-антрацендикарбоксальдегид-бис-[(4,5-дигидрокси-1Н-имидазол-2-ил)гидразин 1 дигидрохлорид

    МХ — митоксантрон, 1,4-бис-((6-окси-1,4-диазогекеил1−5,8-диокси-9,10-антрацендион ] дигидрохлорид

Управление пространственной организацией жидкокристаллических дисперсий нуклеиновых кислот при помощи биологически значимых факторов (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Двухцепочечные молекулы ДНК в составе биологических объектов (ДНК-содержащие вирусы, хромосомы прои эукариотов) находятся в компактном, плотно упакованном состоянии. Согласно оценкам разных авторов, локальная концентрация ДНК в этих условиях может достигать десятков и даже сотен мг/мл [1−43. Помимо высокой локальной концентрации, супрамолекулярная организация ДНК в составе биологических объектов характеризуется высокой степенью пространственной упорядоченности, выявляемой при помоши рентгенографического анализа [5−7 3, а также в результате изучения ультратонких срезов хромосом и головок бактериофагов при помощи электронного микроскопа с последующей реконструкцией модели укладки ДНК, основанной на анализе полученных электронно-микроскопических фотографий [8−10 3.

Наличие исчерченности (специфических молекулярных узоров) на ультратонких срезах хромосом простейших [8,9 3, в сочетании с наличием аномальной оптической активности, зарегистрированной в спектре КД хроматина, выделенного из головок сперматозоидов [11,12 3, свидетельствует о том, что в тех случаях, когда молекулы ДНК практически не связаны с белками, анизотропные свойства ДНК обеспечивают упорядоченную упаковку жидкокристаллического типа, которая характерна для холестерических жидких кристаллов полимеров.

Еще одной важной особенностью пространственной укладки молекул (или сегментов) ДНК в составе биологических объектов является ее высокая лабильность, выражающаяся в способности быстро и обратимо менять степень компактности и характер упорядочения молекул (или сегментов) ДНК в зависимости от функционального состояния клетки.

Изучение особенностей состояния ДНК в вирусах и хромосомах интересно как с физико-химической, так и с биологической точек зрения. С физико-химической точки зрения такое исследование интересно потому, что оно позволяет определить, во-первых, природу и движущие силы, определяющие упаковку большого объема генетического материала, заключенного в молекулах ДНК, в малом объеме биологического объекта, и, во-вторых, установить тип упаковки молекул (или сегментов) ДНК в образуемых ими in vivo компактных структурах, С биологической точки зрения такое исследование позволяет выяснить факторы, которые влияют на характер упаковки, и установить возможную связь межцу характером пространственной упаковки ДНК и биологической активностью этой макромолекулы. До последнего времени однозначные ответы на эти вопросы не были получены.

Исследование структурной организации ДНК непосредственно в клетке представляет собой трудную задачу. В литературе имеются два предположения, касающихся механизма упаковки генетического материала. Согласно первому из них ?13 1″ в клетке имеется некий специфический «фактор конденсации», обеспечивающий механическую I укладку генетического материала в клеточном ядре. Согласно второму предположению C14J, на определенной стадии клеточного цикла в клетке создаются такие физико-химические условия, которые обеспечивают спонтанную упорядоченную упаковку молекул ДНК. Если исходить из второй гипотезы, то вполне оправданной кажется постановка вопроса о том, можно ли создать модель, отражающую основные черты пространственной организации молекул ДНК in vivo.

1 n.

В последние годы поиск ответа на этот вопрос стал привлекать внимание не только молекулярных биологов, но и специалистов из других областей наукив частности, повышенный интерес к изучению состояния молекул ДНК в составе биологических объектов отмечен у специалистов, занимающихся как в нашей стране, так и за рубежом исследованием лиотропных жидкокристаллических фаз, образуемых молекулами биополимеров в условиях, моделирующих внутриклеточные.

Исследования in vitro проводятся на нескольких модельных системах, две из которых получили наибольшее распространение. Первая модельная система — жидкокристаллические фазы ДНК, возникающие спонтанно в водных растворах солей щелочных металлов умеренной или высокой ионной силы при достижении в них некоторой «критической» концентрации ДНК [15,16 3. Вторая модельная система — жидкие кристаллы, образующиеся при фазовом исключении ДНК из водно-солевых растворов некоторых нейтральных полимеров, например, полиэтиленгликоля (ПЭГ) [17−20 3.

Кроме двух отмеченных выше модельных систем, жидкокристаллические фазы ДНК образуются в присутствии детергентов [213 или этанола [22−23 3, а также в результате конденсации ДНК при помощи соединений поликатионной природы (биогенные полиамины [243, полиаминокислоты [253, гистоновые белки [26 3).

В настоящей работе сделана попытка не только выяснения механизмов и роли факторов, определяющих и регулирующих характер упаковки двухцепочечных молекул (или сегментов) ДНК в составе биологических объектов, но и использования уникального сочетания физико-химических свойств, присущих молекулам этого биополимера и их жидким кристаллам, для решения конкретных прикладных задач, и в частности, задач практического здравоохранения и медицины.

Цель настоящей работы состояла в изучении условий образования и свойств жидкокристаллических дисперсий ДНК, получаемых при помощи двух принципиально разных способов конденсации линейных двухцепочечных молекул ДНК низкой с молекулярной массы (< 1×10): а), в результате фазового исключения молекул ДНК из полимер-содержащих водно-солевых растворов и б), в результате нейтрализации отрицательно заряженных молекул ДНК положительно заряженными противоионами в водно-солевых растворах переменной ионной силы.

Автор защищает три основных, имеющих фундаментальное значение, положения.

1. Образование разных типов жидкокристаллических дисперсий ДНК в водно-солевых растворах, содержащих нейтральный полимерполиэтиленгликоль, и в водно-солевых растворах переменной ионной силы в присутствии природных и синтетических соединений поликатионной природы.

2. Два принципиально разных способа управления характером пространственной упаковки молекул ДНК в частицах жидкокристаллических дисперсий: а), в результате изменения исходных параметров вторичной структуры двухцепочечных молекул ДНК до их конденсацииб). при помощи гидролитических ферментов и гепарина после конденсации молекул ДНК в тех случаях, когда образующаяся жидкокристаллическая дисперсия характеризуется упорядоченной упаковкой соседних молекул ДНК, отличающейся от холестерической,.

3. Использование холестерических жидкокристаллических дисперсий ДНК и жидкокристаллических дисперсий комплексов (ДНК-поликатион) в качестве основы для создания новых типов полифункциональных биодатчиков, предназначенных для определения различных классов биологически активных соединений, представляющих интерес с практической точки зрения.

ЛИТЕРАТУРНЫЙ ОБЗОР.

выводы.

1. При соблюдении «граничных» условий таких, как молекулярная масса, концентрация ДНК и ПЭГ, ионная сила, катионный состав и рН растворителя, в результате фазового исключения (конденсации) из водно-солевых растворов ПЭГ линейные двухцепочечные молекулы ДНК образуют дисперсии.

2. В результате сопоставления экспериментально наблюдаемого спектра КД дисперсии ДНК со спектром КД, характерным для тонкого слоя холестерической жидкокристаллической фазы ДНК, а также с теоретически рассчитанными спектрами КД холестерических жидкокристаллических дисперсий ДНК, установлено, что пространственная упаковка молекул ДНК в частицах дисперсии аналогична упаковке молекул ДНК в холестерических жидких кристаллах.

3- Пространственной организацией жидкокристаллических дисперсий двухцепочечных нуклеиновых кислот можно управлять в результате изменения диэлектрической постоянной (от 80 до 40 ед.),.

Т 2 осмотического давления (от 10 до 10 дин/см) или температуры (от 20 °C до 80°С) ПЭГ-содержащего раствора, формируя жидкокристаллические дисперсии, структура которых аналогична структуре либо холестерических, либо нематических жидких кристаллов ДНК.

4- Продемонстрирована возможность реализации двух принципиально разных способов управления характером пространственной упаковки молекул ДНК в частицах жидкокристаллических дисперсий.

4а. Пространственной упаковкой можно управлять, меняя исходные параметры вторичной структуры двухцепочечных молекул ДНК до их конденсации.

Показано, что в зависимости от степени модификации молекул ДНК при действии цис-РКП) или УФ-облучения можно сформировать не только холестерические жидкокристаллические дисперсии с разным шагом пространственной спиральной закрутки, но и жидкокристаллические дисперсии, свойства которых отличаются от свойств, характерных для классических (холестерических или нематических) жидких кристаллов двухцепочечных нуклеиновых кислот.

46. Пространственной упаковкой молекул ДНК можно управлять после их конденсации в тех случаях, когда образующаяся жидкокристаллическая дисперсия характеризуется упорядоченной упаковкой соседних молекул ДНК, отличающейся от холестерической.

Показано, что пространственной структурой жидкокристаллической дисперсии, сформированной из молекул ДНК, предварительно связанных в комплекс с поликонидином, можно управлять при помощи гепарина, вызывающего диссоциацию комплекса (ДНК-поликонидин). Этот процесс сопровождается исчезновением «неспецифической» упаковки молекул ДНК и «восстановлением» холестерической структуры, характерной для исходных, несвязанных в комплекс, молекул ДНК.

Установлено также, что пространственной структурой жидкокристаллических дисперсий, сформированных из молекул ДНК, предварительно связанных в комплекс со стеллином В, можно управлять в результате добавления трипсина, вызывающего ферментативный гидролиз молекул стеллина В в составе комплекса (ДНК-стеллин В). В этом случае также имеет место «восстановление» холестерической структуры ДНК.

5. Обнаружено, что в водно-солевых растворах молекулы ДНК, взаимодействуя с положительно заряженными молекулами поликониди-на, образуют жидкокристаллические дисперсии, в частицах которых реализуются разные способы упаковки комплексов (ДНК-поликони-дин). Показано, что в этих условиях характером упаковки можно управлять, меняя концентрацию ЫаС1: в пределах 0,15 М ^ сиас1 < М существует гексагональная жидкокристаллическая дисперсия, а при 0,4 М «С^аС1 < 0,55 М — холестерическая жидкокристаллическая дисперсия. бОбоснована возможность использования холестерических жидкокристаллических дисперсий ДНК и жидкокристаллических дисперсий комплексов (ДНК-поликатион) в качестве чувствительных элементов (биодатчиков) биосенсорных устройств.

На примере митоксантрона — противоопухолевого соединения антрахиноновой группы, разработан экспресс-метод его определения в плазме и цельной крови, основанный на применении холестерических жидкокристаллических дисперсий ДНК. Минимальная концентрация митоксантрона, определяемая в анализируемой пробе, составляет — 5×10″ Т М.

Разработан новый способ определения гепарина, основанный на использовании жидкокристаллических дисперсий комплексов (ДНК-по-ликонидин). Минимальная концентрация гепарина, определяемая в анализируемой пробе, составляют — 0,4−0,5 мкг/мл.

7. На основе метакрилатных макромономеров ПЭГ получены гидрогели, содержащие в своем составе холестерические жидкокристаллические дисперсии ДНК. Такие гидрогели могут быть использованы для создания полифункциональных жидкокристаллических биодатчиков пленочного типа" .

Показать весь текст

Список литературы

  1. Kellenberger Е. The compactness of cellular plasmas-1. particular, chromatin compactness in relation to function. -Trends Biochem. Scl., 1987, v. 12, 3, p. 105−107,
  2. Kellenberger E. About organisation of condensed and decondensed non-eukaryotic DNA and the concept of vegetative DNA. Biophys. Chem., 1988, v. 29, 1, p. 51−62.
  3. Д.М. Анализ надмолекулярной организации хроматина в норме и при патологии. Вест. Акад. мед. наук СССР, 1973, 1, с. 29−37.
  4. Earnshaw W.C., Harrison S.C. DNA arrangement in isometric phage heads. Nature, 1977, v. 268, 5621, p. 598−602.
  5. Black L.W., Newcomb W.W., Boring J.W., Brown J.C. Ion etching of bacteriophage T4: support for a spiral-fold model of packaged DNA. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1985, v. 82, 23, p. 7960−7964.
  6. Serwer P. Arrangement of double-stranded DNA packaged in bacteriophage caps ids. (An alternative model) J. Mol. Biol., 1986, v. 190, 3, p. 509−512.
  7. Rill R.L., Livolant F., Aldrich H.C., Davidson M.W. Electron microscopy of liquid crystalline DNA: direct evidence for cholesteric-like organization of DNA in dinoflagellatechromosomes. Chromosoma (Berl.), 1989, v. 98, 4, p. 280−286.
  8. Livolant F. Ordered phases of BNA in vivo and in vitro. -Physica, 1991, v. A 176, 1, p. 117−137.
  9. Lepault J., Bubochet J., Basehong W., Kellenberger E. Organization of double-stranded BNA in bacteriophages: a study by cryo-electron microscopy of vitrified samples. EMBO J., 1987, v. 6, 5, p. 1507−1512.
  10. Wagner T.E., Mann B.R., Vincent R.C. The role of disulfide reduction in chromatin release from equine sperm. -J. Exp. Zoo 1., 1974, v. 189, 1, p. 387−393.
  11. Sipski M.L., Wagner T.E. Probing BNA quaternary ordering with circular dichroism spectroscopy: studies of equine sperm chromosomal fibres. Blopolymers, 1977, v. 16, 3, p. 573−582.
  12. Kellenberger E. Vegetative bacteriophages and the maturation of virus particles. in: Adv. Virus Res., New York: Academic Press, 1961, v. 8, p. 2−57.
  13. Laemli U.K., Paulson J.K., Hitchins V. Maturation of the head of bacteriophage T4. V. A possible BNA-packing mechanism: in vitro cleavage of the head proteins and the structure of the core of the polyhead. J. Supramol. Struct., 1974, v. 2, p. 276−301.
  14. Robinson C. Liquid crystalline structures in polypeptide solutions. Tetrahedron, 1961, v. 13, 1−3, p. 219−234.
  15. Livolant F., Leforestier A. Condensed phases of BNA: structures and phase transitions. in: Prog. Polym. Sci. London: Elsevier Science Ltd, 1996, v. 21, p. 1115−1164.
  16. Lerman L.S. A transition to a compact form of BNA in polymer solutions. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1971, v. 68, 8, p. 1886−1890.
  17. Maniatis T., Venable J.H., Lerman L.S. The structure of? DNA. J. Mol. Biol., 1974, v. 84, 1, p. 37−64.
  18. Evdokimov Yu.M., Platonov A.L., Tikhonenko A.S., Varshavsky Ya.M. A compact form of double-stranded DNA in solution. FEBS Lett., 1972, v. 23, 2, p. 180−184.
  19. Yevdokimov Yu.M., Skuridin S.G., Salyanov V.l. The liquid crystalline phases of double-stranded nucleic acids in vitro and in vivo. Liquid Cryst., 1988, v. 3, 11, p. 1443−1459.
  20. Ghirlando R., Wachtel E.J., Arad T., Minsky A. DNA packaging induced by micellar aggregates: a novel in vitro DNA condensation system. Biochemistry, 1992, v. 31, 31, p. 7110−7119.
  21. Cheng S.-M., Mohr S.C. Condensed states of nucleic acids.1. Effects of molecular size, base composition, and presence of intercalating dyes on the f-transition of DNA. Biopolymers, 1975, v. 14, 3, p. 663−674.
  22. Huey R., Mohr S.C. Condensed state of nucleic acids.
  23. I. ?(+) and conformational transitions of DNA induced by ethanol and salt. Biopolymers, 1981, v. 20, 12, p. 2533−2552.
  24. Sikorav J.-L., Pelta J., Livolant F. A liquid crystalline phase in spermidine-condensed DNA. Biophys. J., 1994, v. 67, 4, p. 1387−1392.
  25. Shapiro J.T., Leng M., Felsenfeld G. Deoxyribonucleic acid polylysin complexes. Structure and nucleotide specificity. — Biochemistry, 1969, v. 8, 8, p. 3219−3232.
  26. Leforestier A., Livolant F. Liquid crystalline ordering of nucleosome core particles under macromolecular crowdingconditions: evidence for a discotic columnar hexagonal phase. -Biophys. J., 1997, v. 73, 4, p. 1771−1776.
  27. Iizuka E. Some new finding in the liquid crystals of sodium salt of deoxyribonucleic acid. Polym. J., 1977, v. 9, 2, p. 173−180.
  28. Potaman V.N., Alexeev D.G., Skuratovskli I.Ya., Rabinovich A.Z., Shlyakhtenko L.S. Study of DNA films by the CD, X-ray and polarization microscopy techniques. Nucl. Acids Res., 1981, v. 9, 1, p. 55−64.
  29. Дж. Жидкокристаллический порядок в полимерах. М.: Мир, 1981, с. 14−56.
  30. А.С. Введение в физику жидких кристаллов. М.: Наука, 1983, с. 3−313.
  31. Hagerman P. Flexibility of DNA. Annu. Rev. Biophys. Biophys. Chem., 1988, v. 17, p. 265−286.
  32. Flory P.J. Phase equilibria in solutions of rod-like particles. Proc. Roy. Soc. A, 1956, v. 234, 1, p. 73−89.
  33. Livolant F. Cholesteric organization of DNA in vivo and in vitro. Eur. J. Cell Biol., 1984, v. 33, 2, p. 300−311.
  34. Livolant F. Cholesteric liquid crystalline phases given by three helical biological polymers: DNA, PBLG and xanthan.
  35. A comparative analysis of their textures. J, Phys. (France), 1986, v. 47, 9, p. 1605−1616.
  36. Strzelecka Т., Rill R.L. Solid-state 31P NMR studies of DNA liquid crystalline phases. The Isotropic to cholesteric transition. J. Amer. Chem. Soc., 1987, v. 109, 15, p. 4513−4518.
  37. Rill R.L., Hilllard P.R., Levy G.C. Spontaneous ordering of DNA. J. Biol. Chem., 1983, v. 258, 1, p. 250−256.
  38. Brandes R., Kearns D.R. Magnetic ordering of DNA liquid crystals. Biochemistry, 1986, v. 25, 20, p. 5890−5895.
  39. Rill R.L. Liquid crystalline phases in concentrated solutions of Na+ DNA. Proc. Natl. Acad. Sei. USA, 1986, v. 83, 2, p. 342−346.
  40. Livolant F., Bouligand Y. Liquid crystalline phases given by helical biological polymers (DNA, PBLG and xanthan). Columnar textures. J. Phys. (France), 1986, v. 47, 10, p. 1813−1827.
  41. Livolant F. Precholesteric liquid crystalline states of DNA. J. Phys. (France), 1987, v. 48, 6, p. 1051−1066.
  42. Livolant F., Maestre M.F. Circular dichroism microscopy of compact forms of DNA and chromatin in vivo and in vitro: choiesteric liquid crystalline phases of DNA and singledinoflagellate nuclei. Biochemistry, 1988, v. 27, 8, p. 3056−3068.
  43. Strzelecka T.E., Davidson M.W., Rill R.L. Multiple liquid crystal phases of DNA at high concentrations. Nature, 1988, v. 331, 6155, p. 457−460.
  44. Livolant F. Lines in liquid crystalline phases ofbiopolymers. J. Phys. (France), 1989, v. 50, 13, p. 1729−1741.
  45. Livolant F., Levelut A.M., Doucet J., Benoit J.P. The highly concentrated liquid crystalline phase of DNA is columnar hexagonal. Nature, 1989, v. 339, 6227, p. 724−726.
  46. Strzelecka T.E., Rill R.L. Phase transitions of concentrated DNA solutions in low concentrations of 1: 1 supporting electrolyte. Biopolymers, 1990, v. 30, ½, p. 57−71.
  47. Van Winkle D.H., Davidson M.W., Wan-Xu Chen, Rill R.L.
  48. Cholesterin helical pitch of near persistence length DNA. -Macromolecules, 1990, v. 23, 18, p. 4140−4148.
  49. Livolant F. Supramolecular organization of double-stranded DNA molecules in the columnar hexagonal liquid crystalline phase. J. Mol. Biol., 1991, v. 218, 1, p. 165−181.
  50. Rill R.L., Strzelecka Т.Е., Davidson M.W.,
  51. Van Winkle D.H. Ordered phases in concentrated DNA solutions. -Physica, 1991, v. A 176, 1, p. 87−116.
  52. Leforestler A., Livolant F. Supramolecular ordering of DNA in the cholesteric liquid crystalline phase: an ultrastructural study. Biophys. J., 1993, v. 65, 1, p. 56−72.
  53. Leforestler A., Livolant F. DNA liquid crystalline blue phases. Electron microscopy evidence and biological Implications. Liquid Cryst., 1994, v. 17, 5, p. 651−658.
  54. Merchant K., Rill R.L. Isotropic to anisotropic phase transition of extremely long DNA in an aquous saline solution. -Macromolecules, 1994, v. 27, 9, p. 2365−2370.
  55. Demus D., Richter L. Textures of Liquid Crystals. Leipzig: VEB, Deutscher Verlag fur Grundstoffindustrie, 1978, p. 3−219.
  56. Spada G.P., Brigldi P., Gottarelli G. The determination of the handedness of cholesteric superhelices formed by DNA fragments. J. Chem. Soc., Chem. Cornmun., 1988, 14, p. 953−954.
  57. В.А., Сонин A.C. Оптика холестерических жидких кристаллов. М.: Наука, 1982, с. 5−347.
  58. Saeva F.D. Cholesteric liquid crystal-induced circular dlchroism. in: Liquid Crystals. The Fourth State of Matter.
  59. New York: M. Dekker, 1979, p. 249−271.
  60. Ю.М. Жидкокристаллические дисперсии нуклеиновых кислот. Изв. АН СССР (сер. физическая), 1991, т. 55, 9, с. 1804−1816.
  61. Gottarelli G., Spada G.P. Application of CD to the study of some cholesteric mesophases, in: Circular Bichroism: Principles and Applications (Nakanishi K., Berova N.,
  62. Woody R.W., eds.). New York: VCH, 1994, p. 105−119.
  63. Livolant F. Cholesteric organization of DNA in the stallion sperm head. Tissue Cell., 1984, v. 16, 4, p. 535−555.
  64. А. Молекулярные основы патогенеза болезней. М.: Медицина, 1982, с. 90−103.
  65. Suau P., Subiгana J. A, X-ray diffaction studies of nucleoprotamine structure. J. Mol. Biol., 1977, v. 117, 4, p. 909−926.
  66. Wolffe A. Chromatin. Structure and Function. 2-nd ed. London: Academic Press, 1995, p. 1−299.
  67. Ames B.N., Bubin B.T. The role of polyamines in the neutralization of bacteriophage deoxyribonucleic acid. J. Biol. Chem., 1960, v. 235, 3, p. 769−775.
  68. Tabor H., Tabor C.W., Rosental S.H. The biochemistry of polyamines: spermidine and spermine. Annu. Rev. Biochem., 1961, v. 30, p. 579−604.
  69. C.W., Tabor H. 1,4-diamlnobutane (putrescine), spermidine and spermine. Annu. Rev. Biochem., 1976, v. 45, p. 285−306.
  70. Walker P.R., Sikorska M., Whitfield J.F. Polyamine metabolism in regenerating livers from normal and hypocalcemlcrats. J. Cell. Physiol., 1978, v. 94, 1, p. 87−91.
  71. Hurwitz C., Rosano C.L. The intracellular concentration of bound and unbound magnesium ions in Escherichia coli.
  72. J. Biol. Chem., 1967, v. 242, 16, p. 3719−3722.
  73. Takeda Y. Polyamines and protein synthesis. I. The shifto+in optimal concentration of Mg by polyamines in the MS2 phage RNA-directed polypeptide synthesis. Blochlm. Biophys. Acta, 1969, v. 179, 1, p. 232−234.
  74. Atkins J.F., Lewis J.В., Anderson C.W., Gesterland R.F. Enhanced differential synthesis of proteins in mammalian cell-free system by addition of polyamines. J. Biol. Chem., 1975, v. 250, 14, p. 5688−5695.
  75. Baeza I., Ibanez M., Santiago J.C., Argue, Но C., Wong C., Oro J. Diffusion of Mn2+ ions into liposomes mediated by phosphatidate and monitored by the activation of an encapsulated enzymatic system. J. Mol. Evol., 1990, v. 31, 6, p. 453−461.
  76. Shuber F. Influence of polyamines on membrane functions. Biochem. J., 1989, v. 260, 1, p. 1−10.
  77. Griffith J.D. Visualization of prokaryotic DNA in regularly condensed chromatin-like fiber. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1976, v. 73, 2, p. 563−567.
  78. К.А., Маленков Г. Г. Роль ионного гомеостаза клетки в явлениях роста и развития. Успехи соврем, биол., 1976, т. 81, 3, с. 445−463.
  79. Hafner E.W., Tabor C.W., Tabor Н. Mutants of Escherichia coll that do not contain 1,4-dlaminobutane (putrescine) or spermidine. J. Biol. Chem., 1979, v. 254, 24, p. 12 419−12 426.
  80. Pegg A.E. Recent advances in the biochemistry ofpolyamines in eukaryotes. Biochem. J., 1986, v. 234, 2, p. 249−262.
  81. Herbst E.J., Tanguay R.B. The interaction of polyamines with nucleic acids. in: Progress in Molecular and Subcellular Biology (Hahn F.E., eds), v. 2. New York: Academic Press, 1971, p. 166−180.
  82. Mandel M. The interaction of spermine and native deoxyribonucleic acid. J. Mol. Biol., 1962, v. 5, 4, p. 435−441.
  83. Hirschman S.Z., Leng M., Felsenfeld G. Interaction of spermine and BNA. Biopolymers, 1967, v. 5, 2, p. 227−233.
  84. Andreasson B., Nordenskiold L., Shultz J. Interactions of spermidine and methylspermidine with DNA studied by nuclear magnetic resonance selfdiffusion measurements. Biophys. J., 1996, v. 70, 6, p. 2847−2856.
  85. Iitaka Y., Huse Y. The crystal structure of spermine phosphate hexahydrate. Acta Cryst., 1965, v. 18, 1, p. 110−121.
  86. Tsuboi M. On the melting temperature of nucleic acid in solution. Bull. Chern. Soc. Jpn, 1964, v. 37, 7, p. 1514−1522.
  87. Langridge R., Marvin B.A., Seeds W., Hooper C.W., Wilson H.R., Wilkins M.H.F., Hamilton L.B. The molecular configuration of deoxyribonucleic acid. II. Molecular models and their fourier transforms. J. Mol. Biol., 1960, v. 2, 1, p. 38−64.
  88. Liquori A.M., Constantino L., Crescenzi V., Elia V., Giglio E., Puliti R., Be Santis Savino M., Vitagliano V. Complexes between DNA and polyamines: a molecular model. -J. Mol. Biol., 1967, v. 24, 1, p. 113−122.
  89. Suwalsky M., Traub W., Shmueli U., Subirana J.A. An X-raystudy of the interaction of DNA with spermine. J. Mol. Biol., 1969, v. 42, 2, p. 363−373.
  90. Heby 0., Agrell I. Observations on the affinity between polyamines and nucleic acids. Hoppe-Seyler's Z. Physiol. Chem., 1971, v. 352, 1, p. 29−38.
  91. Agrell I., Heby 0. Interaction between spermine and histons at nucleoprotein formation. Hoppe-Seyler's Z. Physiol. Chem., 1971, v. 352, 1, p. 39−42.
  92. Lee S.H., Felsenfeld G. Solubility of complexes of polynucleotides with spermine. Nature, 1960, v. 188, 4747, p. 301−302.
  93. Osland A., Kleppe K. Polyamine induced aggregation of DNA. Nucl. Acids Res., 1977, v. 4, 3, p. 685−695.
  94. Boclan E., Rosiek 0., Ziernba-Zoltowska B. Post-irradiation treatment of human lymphocytes with spermidine reduces frequency of chromatid breaks. Bull. Acad. Pol. Sci., 1978, v. 26, 9, p. 639−643.
  95. Johnson H.G., Bach M.K. The antimutagenlc action of polyamines: suppression of the mutagenic action of an E. Coli mutator gene and of 2-aminopurine. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1966, v. 55, 6, p. 1453−1456.
  96. Tabor C.W., Tabor H. Polyamines. Annu. Rev. Biochem., 1984, v. 53, p. 749−790.
  97. Tlkchonenko T.I., Glushakova S.E., Kislina O.S., Grodnltskaya N.A., Manykin A.A., Naroditsky B.S. Transfer of condensed viral DNA into eukaryotic cells usingproteoliposomes. Gene, 1988, v. 63, 2, p. 321−330.
  98. Baeza I., Garigllo P., Rangel L.M., Chavez P.,
  99. Cervantes L., Arguello C. Electron microscopy and biochemical properties of polyamine-compacted DNA. Biochemistry, 1987, v. 26, 20, p. 6387−6392.
  100. Gosule L.C., Schellmari J.A. Compact form of DNA induced by spermidine. Nature, 1976, v. 259, 554, p. 333−335.
  101. Gosule L.C., Schellman J.A. DNA condensation with polyamines. I. Spectroscopic studies. J. Mol. Biol., 1978, v. 121, 3, p. 311−326.
  102. Chattoraj D.K., Gosule L.C., Schellman J.A. DNA condensation with polyamines. II. Electron microscopic studies. J. Mol. Biol., 1978, v. 121, 3, p. 327−337.
  103. Allison S.A., Herr J.С., Schurr J.M. Structure of viral
  104. Bloomfield V. Condensation of DNA by multivalent cations considerations on mechanism, Blopolymers, 1991, v. 31, 13, p. 1471−1481.
  105. A.B., Храпунов C.M. Теоретическое рассмотрение механизмов компактизации ДНК поликатионами. Биофизика, т. 34, 1, с. 28−33.
  106. Wilson R.W., Bloomfield V.A. Counterion-induced condensation of deoxyribonucleic acid. Biochemistry, 1979, v. 18, 11, p. 2192−2196.
  107. Wldom J., Baldwin R.L. Cation-induced toroidal condensation of DNA: studies with Co3+(NH3>g. J. Mol. Biol., 1980, v. 144, 4, p. 431−453.
  108. Baeza I., Ibanez M., Wong C., Chavez P., Gariglio P.,
  109. Oro J. Possible preblotlc significance of polyamines in the condensation, protection, encapsulation, and biological properties of DNA, Orig. Life Evol. Blosph., 1991−92, v. 21, 4, p. 225−242.
  110. Jay B.G., Gilbert W. Basic protein enhances the incorporation of DNA into lipid vesicles: model for the formation of primordial cells. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1987, v. 84,7, p. 1978−1980.
  111. Szelei J., Duda E. Entrapment of high-molecular-mass DNA molecules in liposomes for the genetic transformation of animal cells. Biochem. J., 1989, v. 259, 2, p. 549−553.
  112. Becker M., Misselwitz R., Damaschun H., Damaschun G., Zirver D. Spermine-DNA complexes build up metastable structures. Small-angle X-ray scattering and circular dichroism studies. -Nucl. Acids Res., 1979, v. 7, 5, p. 1297−1309.
  113. Schellman J.A., Parthasarathy N. X-ray diffraction studies on cation-collapsed DNA. J. Mol. Biol., 1984, v. 175, 3, p. 313−329.
  114. Rau D.C., Parsegian V.A. Direct measurement of the intermolecular forces between counterion-condensed DNA double helices. Biophys. J., 1992, v. 61, 1, p. 246−259.
  115. Damaschun G, Damaschun H., Misselwitz R., Zirver D., Muller J.J., Zalenskaya I.A., Vorob’ev V.I., Pyatigorskaya T.L. Supramolecular organization of condensed DNA with and without simple order. Stud, biophys., 1986, v. 112, 2−3, p. 127−137.
  116. Pelta J., Livolant F., Slkorav J.-L. DNA aggregation induced by polyamines and cobalthexamine. J. Biol. Chem., 1996, v. 271, 10, p. 5656−5662.
  117. Pelta J., Durand D., Doucet J., Llvolant F. DNA mesophases induced by spermidine: structural properties arid biological implications. Biophys. J., 1996, v. 71, 1, p. 48−63.
  118. Raspaud E., Olvera de la Cruz M., Slkorav J.-L., Livolant F. Precipitation of BNA by polyamines: a polyelectrolyte behavior. Biophys. J., 1998, v. 74, 1, p. 381−393.
  119. Durand D., Doucet J., Livolant F. A study of the structure of highly concentrated phases of DNA by X-ray diffraction. J. Phys. (France), 1992, v. 2, 7, p. 1769−1783.
  120. Липосомы в биологических системах. М.: Медицина, 1983, с. 5−384.
  121. ИЗ. Лима-де-Фариа А. Эволюция без отбора. (Автоэволюция формы и функции.) М.: Мир, 1991, с. 8−455.
  122. Ю.М. Лиотропные жидкие кристаллы двухцепочечных нуклеиновых кислот. Автореф. дис. на соискание ученой степени доктора хим. наук. М.: МГУ им. М. В. Ломоносова, Химический факультет, 1991, с. 53.
  123. О.Н., Казанский К. С., Мирошников A.M. Гликоли и другие производные окисей этилена и пропилена. М.: Химия, 1976, с. 3−373.
  124. Phillips И.О., Marcinkowsky А.Е., Sachs S.B., Kraus К.А. Properties of organic-water mixtures. II. Self diffusion coefficient of Na+ in polyethylene glycol water mixtures at 25° C. — J. Phys. Chem., 1977, v. 81, 7, p. 679−682.
  125. Malcolm G.N., Rowllnson J.S. The thermodynamic properties of aqueous solutions of polyethylene glycol, polypropylene glycol and dioxane. Trans. Faraday Soc, 1957, v. 53, p. 921−931.
  126. К.С., Дубровский С. А., Антощенко Н.В.
  127. Характеристики и структура полиэтиленоксидных гидрогелей, получаемых через макромономеры. Высокомолекул. соединения А, 1997, т. 39, 5, с. 816−824.
  128. Bailey F.E., Callard R.W. Some properties of polyiethylene oxide) in aqueous solution. J. Appl. Polym. Scl., 1959, v. 1,1, p. 56−62.
  129. В.Г., Торяник И. А. Изучение физико-химических свойств водных растворов полиэтиленоксидов. В кн.: Физическая гидродинамика. Киев, Виша школа, 1977, с. 104−111.
  130. В.Г., Торяник И. А. Вязкость растворов полимеров, Высокомолекул. соединения А, 1979, т. 21, 4, с. 902−906.
  131. В.Г., Иванюта Ю. Ф., Погребняк Л. А., Наумчук Н. В. Вязкость и диаграммы состояния растворов полиэтиленоксида. Изв. высш. учеб. заведений. Химия и химич. технол., 1986, т. 29, 1, с. 92−96.
  132. Liu К.-J., Parsons J.L. Solvent effects on the preferred conformation of polyfethylene glycol). Macromolecules, 1969, v. 2, 5, p. 525−533.
  133. Schick M.J. Effect of temperature on critical micelle concentration of nonionic detergents. Thermodynamics and micelle formation. J. Phys. Chem., 1963, v. 67, 9, p. 1796−1799.
  134. А.А., Соломенцева И. М., Манк В. В., Куриленко О. Д. 0 роли фактора сольватации в стабилизации дисперсных систем, содержащих водо-растворимые полимеры. Докл. Акад. наук СССР, 1972, т. 207, 2, с. 363−366.
  135. Arnold К., Herrmann A., Pratsсh L, Gawrisch К. The dielectric properties of aqueous solutions ofpoly (ethylene glycol) and their influence on membrane structure. Blochim. Biophys. Acta, 1985, v. 815, 3, p. 515−518.
  136. Arnold K., Herrmann A., Gawrisch K., Pratsch L. Water-mediated effects of PEG on membrane properties and fusion. in: Molecular Mechanisms of Membrane Fusion. New York: Plenum Press, 1987, p. 127−145.
  137. Herrmann A., Pratsch L., Arnold K., Lassman G. Effect of polyiethylene glycol) on the polarity of aqueous solutions and on the structure of vesicle membranes. Biochlm. Biophys. Acta, 1983, v. 733, 1, p. 87−94.
  138. Альбертсон П.-О. Разделение клеточных частиц и макромолекул. М.: Мир, 1974, с. 3−381.
  139. И.Н. Применение полиэтиленгликоля в биологии. -Успехи химии, 1980, т. 69, 3, с. 495−517.
  140. Evdokimov Yu.M., Pyatigorskaya T.L., Polyvtsev O.F., Aklmenko N.M., Kadykov V.A., Tsvankin В.Ya., Varshavsky Ya.M.
  141. A comparative X-ray diffraction and circular dichroism study of BNA compact particules formed in water-salt solutions, containing polyiethylene glycol). Nucl. Acids Res., 1976, v. 3, 9, p. 2353−2366.
  142. Большой энциклопедический словарь. Химия. 2-е изд. М.: Большая Российская энциклопедия, 1998, с. 181.
  143. Skuridin S.G., Damaschun H., Damaschun G.,
  144. Yevdokimov Yu.M., Misselwitz R. Polymer condensed DNA: a study by small-angle X-ray scattering, intermediate-angle X-ray scattering, and cicular dichroitic spectroscopy. Stud, biophys., 1986, v. 112, 2−3, p. 139−150.
  145. Skuridin S., Badaev N., Dembo A.T., Lortkipanidze G.В., Yevdokimov Yu.M. Two types of temperature induced transitions of polyil) x poly© liquid crystals. Liquid Cryst., 1988, v. 3, 1, p. 51−62.
  146. С.Г., Дембо А. Т., Осипов M.А., Дамашун X., Дамашун Г., Евдокимов Ю. М. «Компенсированная» структура жидкокристаллических микрофаз нуклеиновых кислот. Докл. Акад. наук СССР, 1985, т. 285, 3, с. 713−716.
  147. Ю.М., Скуридин С. Г., Акименко Н. М. Жидкокристаллические микрофазы низкомолекулярных двухцепочечных нуклеиновых кислот и синтетических полинуклеотидов. -Высокомолекул. соединения А, 1984, т. 26, 11, с. 2403−2410.
  148. Brian A.A., Frisch H.L., Lerman L.S. Thermodynamics and equilibrium sedimentation analysis of the close approach of DNA molecules and a molecular transitions. Biopolymers, 1981, v. 20, 6, p. 1305−1328.
  149. Ю.М., Салянов В. И., Дембо А. Т., Шраго М. И., Ханина Л. А. Оптические свойства жидкокристаллических микрофаз вводно-органических растворах, Кристаллография, 1986, т. 31, 4, с. 736−741.
  150. Ю.М., Скуридин С. Г., Бадаев Н. С. Доказательство образования двух типов жидкокристаллических микрофаз молекул ДНК низкой молекулярной массы в водно-солевых растворах полиэтиленгликоля. Докл. Акад. наук СССР, 1986, т. 286, 4, с. 997−1000.
  151. Ю.М., Скуридин С. Г. Псевдокапсулированные жидкие кристаллы нуклеиновых кислот. Докл. Акад. наук СССР, 1988, т. 303, 1, с. 232−235.
  152. С.П., Куличихин В. Г. Жидкокристаллическое состояние полимеров. М.: Наука, 1977, с. 6−240.
  153. Samulski T.V., Samulski Е.Т. Van-der-Waals-Lifshitz forces In lyotropic polypeptide liquid crystals.
  154. J. Chem, Phys., 1977, v. 67, 2, p. 824−830.
  155. Oslpov M.A. Molecular theory of solvent effect on cholesteric ordering1 in lyotropic polypeptide liquid crystals. -Chem. Phys., 1985, v. 96, 2, p. 259−269.
  156. J., В1Capua E. Supercoiled BNA is interwound in liquid crystalline solutions. EMBO J., 1989, v. 8, 13, p. 4351−4356.
  157. В.И., Прасолов B.C., Палумбо М., Евдокимов Ю. М. Аномальная оптическая активность, индуцируемая при конденсацииразных пространственных форм двухцепочечных кольцевых ДНК. -Биофизика, 1989, т. 33, 1, с. 20−27.
  158. В.И. Жидкокристаллические дисперсии суперспиральных ДНК. Изв. АН СССР (сер. «физическая»), 1991, т. 55, 9, с. 1825−1827.
  159. Salyanov V.I., Bembo А.Т., Yevdoklmov Yu.M. Liquid crystalline phases of circular superhelical plasmid BNA and their modification by the action of nuclease enzymes. Liquid Cryst., 1991, v. 9, 9, p. 229−238.
  160. В.И., Палумбо М., Евдокимов Ю.М, Ферментативное расщепление суперспиральной ДНК в условиях ее жидкокристаллической упаковки. Молекуляр. биология., 1992, т. 26, 5, с. 1036−1046.
  161. Ю.М., Салянов В. И., Лаврентьев П. И. Жидкие кристаллы и жидкокристаллические дисперсии кольцевой ДНК. Изв. АН СССР (сер. «физическая»), 1995, т. 59, 3, с. 117−130.
  162. Adamczyk A. Phase transitions in freely suspended srnectic droplets. Cotton-Mouton technique, architecture of droplets and formation of nematoides. Mol. Cryst. Liq. Cryst., 1989, v. 170, 1, p. 53−69.
  163. Marmur J. A procedure for the isolation of deoxyribonucleic acid from micro-organisms. J. Mol. Biol., 1961, v. 3, 2, p. 208−218.
  164. Loening U.E. The fractionation of high-molecular-weight ribonucleic acid by polyacrylamide-gel electrophoresis. -Blochem. J., 1967, v. 102, 1, p. 251−257.
  165. Parsegian V.A., Rand R.P., Fuller N.L., Rau B.C. Osmotic-stress for the direct measurement of iritermolecular forces.
  166. Methods Enzymo1., 1986, v. 127, p. 400−416.
  167. Ф., Олберти P. Физическая химия. M.: Мир, 1978, с. 355.
  168. . Физика макромолекул. М: Мир, 1979, т. 2, с. 178.
  169. Handbook of chemistry and physics. P 2. 37-th ed. Cleveland, Ohaio: Chem. Rubb. Publ., 1955, p. 2326.
  170. А., Проскауэр Э., Риддик Д., Туппс Э. Органические растворители. М.: изд-во иностр. лит-ры, 1958, с. 45.
  171. Kleinwachter V. Spectrophotometry study of binding of els- and traris-dichlorodiammineplatinum (II) to adenine and its derivatives. Stud, biophys., 1972, v. 33, 3, p. 201−210.
  172. Gabbay E.J., Grier В., Flngerle R.E., Reimer R., Levy R., Pearce S.W., Wilson W.B. Interaction specificity of theanthracyclines with deoxyribonucleic acid. Biochemistry, 1976, v. 15, 10, p. 2062−2070.
  173. И.Я. Определение размера частиц по светорассеянию. Оптика и спектроскопия, 1960, т. 8, 1, с. 98−108.
  174. .А. Рассеяние взвесей бактерий в видимой области спектра. Биофизика, 1963, т. 8, 3, с. 380−384.
  175. П.Н. Диффузия макромолекул. В кн.: Спектроскопия оптического смешения и корреляция фотонов. М.: Наука, 1973, с. 386−441.
  176. С.Е., Ерусалимский Б. Л. Физика и химия макромолекул. М.-Л.: Наука, 1965, с. 126.
  177. Bloomfield V.A., Crothers В.М., Tinoko I. Physical Chemistry of Nucleic Acids. New York: Harper and Row, 1974, p. 222.
  178. Podgornlc R., Strey H.H., Rau B.C., Parseglan V.A. Watching molecules crowd: BNA double helices under osmotic-stress. Biophys. Chem., 1995, v. 57, 1, p. 111−121.
  179. В.В., Рухадзе Е. Г., Потапов В. М. Получение и исследование оптически активных веществ. М.: изд-во МГУ, 1979, с. 37−72.
  180. A.B., Берестецкая Т. З., Ефимов B.C., Чернова О. В. Синтез и антигепариновые свойства четвертичных аммонийных солей монодисперсных олигомеров конидина. -Хим.-фармацевт, ж., 1982, 10, с. (1211) 59-И215) 63.
  181. B.C., Серединин С. Б., Чернова О. В., Гришин В. Л., Берестецкая Т. З., Некрасов A.B. Выведение из организма и распределение по органам синтетических поликатионов на основе конидина. Хим.-фармацевт, ж., 1983, 1, с. 55−59.
  182. Е.П., Рыбин В. К., Силаев А. Б. Первичная структура стеллина А. Биоорган, химия, 1979, т. 5, 1, с. 5−10.
  183. Е.П., Рыбин В. К., Силаев А. Б. Первичная структура стеллина В. Химия природн, соедин., 1979, 5, с. 700−704.
  184. П. Статистическая механика цепных молекул. М.: Мир, 1971, с. 196−199.
  185. Ю.М., Салянов В. И., Мчедлишвили Б.В.,
  186. В.А., Спенер Ф., Палумбо М. Молекулярное конструирование на основе двухцепочечных нуклеиновых кислот и синтетических полинуклеотидов для создания интегрального биодатчика. -Сенсорные системы, 1999, т. 13, 1, с. 82−91.
  187. Ю.М., Пятигорская Т. Л., Акименко Н. М., Варшавский Я. М. Компактная форма ДНК в растворе. IV. Влияние дефектности вторичной структуры на укладку двухцепочечных молекул
  188. ДНК в компактных частицах. Молекуляр. биология, 1975, т. 9, 6, с. 879−866.
  189. Г., Уолкен Дж, Жидкие кристаллы и биологические структуры. М.: Мир, 1982, с. 5−198.
  190. Чандрасекар С, Жидкие кристаллы. М.: Мир, 1980, с. 51.
  191. А.З., Безбородов B.C., Минько А.А.,
  192. B.C. Текстурообразование и структурная упорядоченность в жидких кристаллах. Минск: изд-во Университетское, 1987, с. 3−175.
  193. В.В., Кизель В. А. Круговой дихроизм в области поглощения голубых фаз и холестерических жидких кристаллов. -Кристаллография, 1985, т. 30, 5, с. 958−960.
  194. Де Же В. Физические свойства жидкокристаллических веществ. М.: Мир, 1982, с. 3−148.
  195. Cowley A.C., Fuller N.L., Rand R.P., Parsegian V.A. Measurement of repulsive forces between charged phospholipid bilayers. Biochemistry, 1978, v. 17, 15, p. 3163−3168.
  196. Rau. B.C., Parsegian V.A. Direct measurement of the iritermolecular forces between counter ion-condensed DNA double-helices. Blophys. J., 1992, v. 61, 1, p. 246−259.
  197. Podgornik R., Rau B.C., Parsegian V.A. Parametrization of direct and soft sterlc-undulatory forces between DNA doublehelical polyelectrolytes in solutions of several different anions and cations. Biophys. J., 1994, v. 66, 4, p. 962−971.
  198. Rau D.C., Lee В., Parseglan V.A. Measurement of the repulsive force between polyelectrolyte molecules in ionic solution: Hydration forces between parallel BNA double helices. -Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1984, v. 81, 5, p. 2621−2625.
  199. Evdokimov Yu.M., Pyatigorskaya T.L., Kadikov Y.A., Polyvtsev O.F., Doscocll J., Koudelka J., Varshavsky Ya.M.
  200. A compact form of double-stranded RNA in solution containing poly (ethyleneglycol). Nucl. Acids Res., 1976, v. 3, 6, p. 1533−1547.
  201. Ю.М., Скуридин С. Г., Семенов С.В.,
  202. В.И., Лорткипанидзе Г. Б. Стабилизация оптических свойств частиц холестерических жидкокристаллических дисперсий ДНК. -Биофизика, 1998, т. 43, 2, с. 240−252.
  203. М.В. Химия антрахинонов. М.: Химия, 1983, с. 3−296.
  204. Lippard S.J. Chemistry and molecular biology of platinum anticancer drugs. Pure and Apll. Chem., 1987, v. 59, 6, p. 731−742.
  205. Lippard S.J. Platinum, gold and other metal chemotherapeutical agents. ACS Symposium (ser. 209), 1983, p. 5−311.
  206. Wang S.Y. Photochemistry and Photobiology of Nucleic-Acids. v. I-II. New York, Academic Press, 1976.
  207. A.P., Яковлев Д. Ю., Хомутов P.M. Новая реакция 2,4-дикетопиримидимов. Биоорган, химия, 1990, т. 16, 3, с. 427−429.
  208. И.А., Хохлов А. Р. Жидкокристаллическое упорядочение в растворах полиэлектролитов. Биофизика, 1986, т. 31, 5, с. 771−776.
  209. .К. Дифракция рентгеновых лучей на цепных молекулах. М.: Наука, 1963, с. 184−240.
  210. Kornyshev A., Leikln S. Theory of interaction between helical molecules. J. Chem. Phys., 1997, v. 107, 9, p. 3656−3674.
  211. В.И., Евдокимов Ю. М. Нарушение «однородности» спиральной поверхности двухцепочечных ДНК и образование жидкокристаллических дисперсий. Докл. Акад. наук, 1999, т. 368, 5, с. 1−3.
  212. Strauss U.P., Wineman P.L. Molecular dimensions and interactions of long-chain polyphosphate in sodium bromide solutions. J. Amer. Chem. Soc., 1958, v. 80, 10, p. 2366−2371,
  213. Manning G.S. The molecular theory of polyelectrolyte solutions with application to the electrostatic properties of polynucleotides. Quart. Revs Biophys., 1978, v. 11, 2, p. 179−246.
  214. Subirana J.A., Vives J.L. The precipitation of BNA by spermine. Biopolymers, 1981, v. 20, 10, p. 2281−2283.
  215. Marx K.A., Ruben G.C. Studies of BNA organization in hydrated spermldlne-condensed BNA toruses and spermidine-BNAfibres. J. Biomol. Struct. Bynam., 1984, v. 1, 5, p. 1109−1132.
  216. Zimmerman S.B., Minton A.P. Macromolecular crowding: biochemical, biophysical, and physiological consequences. Armu. Rev. Biophys. Biomol. Struct., 1993, v. 22, p. 27−65.
  217. Schindler Т., Nordmeier E. The stability of polyelectrolyte complexes of calf-thymus DNA and synthetic polycations: theoretical and experimental investigations. -Macromol. Chem. Phys., 1997, v. 198, 5, p. 1943−1972.
  218. Kenworthy A.K., Hristova K., Needham В., Mcintosh T.J. Range and magnitude of the steric pressure between bllayers containing phospholipids with covalently attached polyfethylene glycol). Biophys. J., 1995, v. 68, 5, p. 1921−1936.
  219. М.Д. Лекарственные средства (пособие для врачей). 12-е изд. М.: Медицина, 1993, т. 2, с. 79.
  220. Skurldin S.G., Hall J., Turner A.P.F., Yevdokimov Yu.M. Restructuring space ordering of (BNA-protamine) complexes in liquid crystalline dispersions under proteolytic enzyme treatment, Liquid Cryst., 1995, v. 19, 5, p. 595−602.
  221. Bas N.K., Barker C. Mitotic chromosome condensation in the sperm nucleus during postfertilizatlon maturation division in urechis eggs. J. Cell Biol., 1976, v. 68, 1, p. 155−159.
  222. Marushige Y., Marushige K. Enzymatic unpacking of bull sperm chromatin. Biochim. Biophys. Acta, 1975, v. 403, 1, p. 180−191.
  223. Hohn T. Packaging of genomes in bacteriophages: a comparison of ssRNA bacteriophages and dsBNA bacteriophages. -Phil. Trans. Roy. Soc. London B, 1976, v. 276, 1, p. 143−150.
  224. Earnshaw W., Casjens S., Harrison S.C. Assembly of thehead of bacteriophage P22: X-ray diffraction from heads, proheads and related structures. J. Mol. Biol., 1976, v. 104, 2, p. 387−410.
  225. Bellus H., Worcel A. Electron microscopic visualization of the folded chromosome of Escherichia coll. J. Mol. Biol., 1974, v. 82, 1, p. 107−109.
  226. Golomb H.M., Bahr G.F. Electron microscopy of human interphase nuclei. Determination of total dry mass and DNA-packing ratio. Chromosoma (Berl.), 1974, v. 46, 3, p. 233−245.
  227. Kavenoff R., Bowen B.C. On the organization of BNA in isolated bacterial chromosomes. Stadler Symp., University of Missouri, 1977, v. 9, p. 159−168.
  228. Tlnoko I., Bustarnante C., Maestre M.F. The optical activity of nucleic acids and their aggregates. Annu. Rev. Blophys. Bioeng., 1980, v. 9, 1, p. 107−141.
  229. А.Т., Добров E.H., Леднев В. В., Тихоненко Т. И., Фейгин Л. А. Об упаковке ДНК внутри головок бактериофагов Д~, Т2 и Сд. Биофизика, 1965, т. 10, 3, с. 404−407.
  230. North А.С.Т., Rich A, X-ray diffraction studies of bacterial viruses. Nature, 1961, v. 191, 4795, p. 1242−1245.
  231. Bram S., Rls H. On the structure of nucleohistone. -J. Mol. Biol., 1971, v. 55, 3, p. 325−336.
  232. Subirana J.A., Martinez A.B. Model studies of chromatin structure based on X-ray diffraction data. Nucl. Acids Res., 1976, v. 3, 11, p. 3025−3042,
  233. Wilkins M.H.F., Zubay G., Wilson H.R. X-ray diffraction studies of the molecular structure of nucleohistone andchromosomes. J. Mol. Biol., 1959, v, 1, 2, p. 179−185.
  234. Klimenko S.M., Tikchonenko T.I., Andreev Y.M. Packing- of BNA in the head of bacteriophage T2. J. Mol. Biol., 1967, v. 23, 3, p. 523−533.
  235. Tikchonenko T.I. Conformation of viral nucleic acids in situ. Adv. Virus Res., 1969, v. 15, p. 201−209.
  236. Richards K.E., Williams R.C., Calendar R. Mode of BNA packing within bacteriophage heads. J. Mol. Biol., 1973, v. 78, 2, p. 255−259.
  237. Maestre M.F., Tinoko I., Jr. Optical rotatory dispersion of viruses. J. Mol. Biol., 1967, v. 23, 3, p. 323−335.
  238. .В., Крылов В. Н., Плотникова Т. Г., Минаев В. Е., Пермогоров В. И. Некоторые физико-химические свойства бактериофага qcKZ. Молекуляр. биология, 1980, т. 14, 5, с. 1019−1022.
  239. Clark L.C., Jr., Lyons С. Electrode systems for continuous monitoring in cardiovascular surgery. Ann. N. Y, Acad. Sci., 1962, v. 102, 1, p. 29−45.
  240. Биосенсоры: основы и приложения. Под ред. Э. Тернера, И. Карубе и Дж.Уилсона. М.: Мир, 1992, с. 5−614.
  241. Ю.М., Бундин B.C., Островский М. А. Биосенсоры и сенсорная биология. Сенсорные системы, 1997, т. 11, 4, с. 374−387.
  242. Bowris М.Е.А., Kobayashi 3., Karube I. New BNA technology and the BNA biosensor. Anal. Lett., 1987, v, 20, 12, p. 1897−1927.
  243. Millan K.M., Saraulo A., Mikkelsen S.R. Voltammetric BNA biosensor for cystic fibrosis based on modified carbon pasteelectrode. Anal. Chem., 1994, v. 66, 18, p. 2943−2948.
  244. Gebhart C.J., Ward G.E., Murtaugh M.P. Species-specific cloned DNA probes for the identification of Campylobacterhyointestinalis. J. Clin. Microbiol., 1989, v. 27, 12, p. 2717−2723.
  245. Matthews J.A., Kricka L.J. Analytical strategies for the use of DNA probes. Anal. Biochem., 1986, v. 169, 1, p. 1−25.
  246. Э.М. Биосенсоры в системе оперативной оценки пригодности среды обитания. Сенсорные системы, 1998, т. 12, 1, с. 135−144.
  247. Yevdokimov Yu.M., Salyanov Y.I., Palumbo M. Liquid crystalline state of DNA molecules complexed with biologically active compounds. Mol. Cryst. Liq. Cryst., 1985, v. 131, 3−4, p. 285−297.
  248. Молекулярные основы действия антибиотиков. М.: Мир, 1975, с. 5−500.
  249. Nicoletto М.О., Padrini R., Ferrazzi E., Nascimben 0., Visona E., Tumolo S., Palumbo M., Costa L., Vinante 0., Monfardini S., Florentino M.V. Phase I-II intraperitoneal mltoxantrone in advanced pretreated ovarian cancer. Eur. J.
  250. Cancer, 1993, v. 29A, 9, p.1242−1248.
  251. Shindo Y., Ohmi Y. Problems of CD spectrometers. 3. Critical comments on liquid crystal induced circular dichroism, J. Amer. Chem. Sos., 1985, v. 107, 1, p. 91−97.
  252. Выражаю глубокую благодарность научному консультанту работы проф. Ю. М. Евдокимову за постоянную помощь и поддержку в организации исследований, а также полезные советы при обсуждении результатов.
  253. Благодарю А. Г. Габибова, Л. В. Григорову, С. Н. Кочеткова, О.Н. и И. С. Кулаевых, Г. Б. Лорткипанидзе, В. С. Прасолова, В. О. Речинского, К. Т. Турпаева и А. Р. Хомутова за дружеское расположение, которое поддерживало меня на всех этапах работы.
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?