Миогенная дифференцировка личиночных клеток мидии Mytilus trossulus в условиях культуры
В настоящее время достаточно подробно исследованы процессы миогенеза в первичных культурах клеток позвоночных. Показано, что образующиеся в культурах мышечных клеток высокодифференцированные структуры сохраняют все морфологические и функциональные особенности мышечной организации. Это и обусловливает широкое использование их для изучения механизмов миогенеза, а также для исследования общих… Читать ещё >
Содержание
- 1. ВВЕДЕНИЕ
- 2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
- 2. 1. Общая характеристика мышечных клеток
- 2. 2. Особенности организации мышц беспозвоночных животных
- 2. 2. 1. Особенности структурной организации
- 2. 2. 2. Особенности белкового состава
- 2. 3. Физиологические свойства гладких мышц беспозвоночных животных
- 2. 4. Основные медиаторы нервно-мышечной системы беспозвоночных
- 2. 5. Молекулярные механизмы регуляции работы гладких мышц моллюсков
- 2. 6. Молекулярные механизмы миогенной дифференцировки
- 2. 6. 1. Участие миогенных регуляторных факторов (МРФ) в миогенезе скелетных мышц
- 2. 6. 2. Участие транскрипционных факторов семейства MEF в миогенезе скелетных мышц
- 2. 7. Миогенная дифференцировка клеток позвоночных животных in vitro
- 2. 8. Миогенная дифференцировка клеток беспозвоночных животных in vitro
- 3. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
- 3. 1. Получение первичных культур из эмбрионов мидии М. trossulus
- 3. 2. Выявление актинового цитоскелета культивируемых клеток
- 3. 3. Система регистрации спонтанной двигательной активности клеток в культуре
- 3. 4. Получение препарата белков сократительного аппарата
- 3. 5. Разделение белков методом электрофореза в полиакриламидном геле в присутствии ДС-Na
- 3. 6. Получение парамиозина из запирательной мышцы мидии
- 3. 7. Получение антител к парамиозину
- 3. 8. Вестерн-блоттинг
- 4. РАЗРАБОТКА КОМПЛЕКСА УСЛОВИЙ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ, ПРИВОД5ЩИХКМИОгаННОЙДИФФЕРЕНЦИРОВКЕ ЖЧИНОЧНЫХ КЛЕТОК МИДИИ
- 4. 1. Выбор источника получения клеточного материала
- 4. 2. Влияние растворимых компонентов питательной среды на миогенную дифференцировку культивируемых клеток трохофоры мидии
- 4. 3. Влияние субстрата на направление дифференцировки личиночных клеток мидии in vitro
- 5. ДОКАЗАТЕЛЬСТВА МИОГЕННОЙ ПРИРОДЫ КУЛЬТИВИРУЕМЫХ КЛЕТОК МИДИИ
- 5. 1. Распределение фибриллярного актина в культивируемых клетках трохофоры мидии
- 5. 2. Исследование бежового состава сократительного аппарата культивируемых клеток и личинок мидии
- 5. 3. Исследования функциональных (физиологических) свойств дифференцирующихся клеток
- 5. 3. 1. Исследование характера спонтанной сократительной активности дифференцирующихся клеток мидии
БСА — бычий сывороточный альбумин ДТТ — дитиотреитол м.м. — молекулярная масса МРФ — миогенные регуляторные факторы цАМФ — аденозин-3', 5'-циклофосфат ФМСФ — фенилметил сульфонил фторид ЭДТА — этилендиамид тетрауксусная кислота ЭС — эмбриональная сыворотка телят
ABRM — передний ретрактор бисуса (anterior byssus retractor muscle) CMFSS — искуственная морская вода не содержащая ионов Са2+, Mg2+
5-НТ — 5-гидрокситриптами
L-15* - модифицированная среда Лейбовича
RGD-последовательность — последовательность из трех аминокислот: аргинина — глицина — аспарагиновой кислоты.
Список литературы
- Бузников Г. А. Низкомолекулярные регуляторы зародышевого развития. М.: Наука. 1967. 265 с.
- Жуков Е.К. Развитие сократительной функции двигательного аппарата. Л.: Наука. 1974. 339 с.
- Заварзин А.А. Основы частной цитологии и сравнительной гистологии многоклеточных животных. Л.: Наука. 1976. 411с.
- Иванова-Казас О. М. Сравнительная эмбриология беспозвоночных животных. М.: Наука. 1981. 307 с.
- Исаева В.В. Клетки в морфогенезе. М.: Наука, 1994. 223 с.
- Исаева В.В., Преснов Е. В. Топологическое строение морфогенетических полей. М.: Наука. 1990. 255 с.
- Карпенко А.А. Патент России № 1 838 893 A3. Метод регистрации TV сигнала биологических объектов и прибор для этой цели. MKIH04N. 1993.
- Кумейко В.В., Мороз Е. С., Плотников С. В., Корчагин В. П. Новый термостабильный белок толстых филаменгов гладких мышц двустворчатых моллюсков //Биология моря. 1999. Т. 25. С. 132−134.
- Лабас Ю.А., Белоусов Л. В., Баденко Л. А., Летунов В. Н. Методика регистрации линейного роста и перемещения клеточных масс у многоклеточных животных и растений // Цитология. 1982. Т. 24. N 8. С. 973−979.
- Малахов В.В., Медведева Л. А. Эмбриональное и раннее личиночное развитие двустворчатого моллюска Mytilus edulis // Зоологический журнал. 1985. Т. 64. С. 1808−1815.
- Машковский Д.А. Лекарственные средства. Т. 2. М.: Изд-во Новая волна. 1999. 608 с.
- Пинаев Т.П., УшаковаВ.Б. Проблемы миогенеза. Л.: Наука. 1981. 268 с.94
- Премингер Н.К. Белковый состав сократительного аппарата мышечных тканей мидии // Биология моря. 1977. Т. 5. С. 82−84.
- Румянцев П.П., Ерохина И. Л. Морфологические аспекты дифференцировки и пролиферации в гистогенезе скелетных, сердечной и гладких мышц позвоночных // Проблемы миогенеза (под ред. Г. П. Пинаева, В.Б. Ушакова). Л.: Наука. 1981. С. 22−50.
- Фридлянская И.И. Постоянные клеточные линии, дифференцирующиеся in vitro II В: Биология клетки в культуре. Л. Наука. 1984. С. 50−101.
- Хлопин Н.Г. Общебиологические и экспериментальные основы гистологии. М.: Изд-во АН СССР. 1946. 491 с.
- Achazi R.K., Dolling В., Haakshorst R. 5-HT-induced relaxation and cyclic AMP in a molluscan smooth muscle // Pflugers Arch. 1974. Vol. 349. N 1. P. 19−27.
- Adams J.C., Watt F.M. Regulation of development and cell differenciation by the extracellular matrix//Development. 1993. Vol. 117. P. 1183−1198.
- Arredondo J.J., Ferreres R.M., Maroto M., Cripps R.M., Marco R., Bernstein S.I., Cervera M. Control of Drosophila paramyosin/miniparamyosin gene expression//J. Biol. Chem. 2001. Vol. 276. N 11. P. 8278−8287.
- Ashton F.T., Somlyo A.V., Somlyo A.P. The contractile apparatus of vascular smooth muscle: intermediate high voltage stereo electron microscopy // J. Mol. Biol. 1975. Vol. 98. N 1. P. 17−29.
- Atsumi S., Sugi H. Localization of calcium-accumulating structures in the anterior byssal retractor muscle of Mytilus edulis and their role in the regulation of active and catch contractions // J. Physiol. 1976. Vol. 257. N 3. P. 549−560.
- Bader D., Masaki Т., Fischman D.A. Immunochemical analysis of myosin heavy chain during avian myogenesis in vivo and in vitro // J. Cell Biol. 1982. Vol. 95. N 3. P. 763−770.
- Bagby R.M., Pepe F.A. Striated myofibrils in anti-myosin stained, isolated chicken gizzard smooth muscle cells //Histochemistry. 1978. Vol. 58. N 3. P. 219−235.95
- Baguet F., Gillis J.M. Stimulation of the respiration of lamellibranch muscles by 5-hydroxytryptamine // Arch. Int. Physiol. Biochim. 1964. Vol. 72. N 2. P. 351 352.
- Baylies M.K., Bate ML, Ruiz Gomez M. Myogenesis: a view from Drosophila II Cell. 1998. Vol. 93. N6. P. 921−927.
- Beinbrech G., Ashton FX, Pepe F.A. Invertebrate myosin filament: subfilament arrangement in the wall of tubular filaments of insect flight muscles // J. Mol. Biol. 1988. Vol. 201. N 3. P. 557−565.
- Beinbrech G., Ashton F.T., Pepe F.A. The invertebrate myosin filament: subfilament arrangement of the solid filaments of insect flight muscles // Biophys. J. 1992. Vol. 61. N6. P. 1495−1512.
- Benezra R., Davis R.L., Lassar A., Tapscott S., Thayer M., Lockshon D., Weintraub H. Id: a negative regulator of helix-loop-helix DNA binding proteins. Control of terminal myogenic differentiation // Ann. NY Acad. Sci. 1990. Vol. 599. P. 111.
- Bengal E., Ransone L., Scharfmann R., Dwarki V.J., Tapscott S.J., Weintraub H., Verma I.M. Functional antagonism between c-Jun and MyoD proteins: a direct physical association // Cell. 1992. Vol. 68. N 3. P. 507−519.
- Ben-Ze'ev A. Animal cell shape changes and gene expression // Bioassays. 1991.1. Vol. 13. P. 207−212.
- Bernfield M. Matrix regulation of cell proliferation: implications for grows of the embrio// Semin. Perinatal. 1984.Vol. 8. N2. P. 117−122.
- Bi W., Drake C.J., Schwarz J.J. The transcription factor MEF2C-null mouse exhibits complex vascular malformations and reduced cardiac expression of angiopoietin 1 and VEGF // Dev. Biol. 1999. Vol. 211. N 2. P. 255−267.
- Black B.L., Olson E.N. Transcriptional control of muscle development by myocyte enhancer factor-2 (MEF2) proteins // Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 1998. Vol. 14. P. 167−196.96
- Bond ML, Somlyo A.V. Dense bodies and actin polarity in vertebrate smooth muscle // J. Cell Biol. 1982. Vol. 95. N 2. Pt. 1. P. 403−413.
- Bowden J. The structure and innervation of lumellibranch muscle // Int. Rev. Cytol. 1958. Vol. 7. P. 295−335.
- Braun Т., Bober E., Arnold H.H. Inhibition of muscle differentiation by the adenovirus El a protein: repression of the transcriptional activating function of the HLH protein Myf-5 // Genes Dev. 1992. Vol. 6. N 5. P. 888−902.
- Breitbart R.E., Liang C.S., Smoot L.B., Laheru D.A., Mahdavi V., Nadal-Ginard B. A fourth human MEF2 transcription factor, hMEF2D, is an early marker of the myogenic lineage // Development. 1993. Vol. 118. N 4. P. 1095−1106.
- Buckingham M. Making muscle in mammals // Trends Genet. 1992. Vol. 8. N 4. P. 144−148.
- Buckingham M. Muscle differentiation. Which myogenic factors make muscle? // Curr. Biol. 1994. Vol. 4. N 1. P. 61−63.
- Cadoret J.P., Debon R., Cornudella L., Lardans V., Morvan A., Roch P., Boulo V. Transient expression assays with the proximal promoter of a newly characterized actin gene from the oyster Crassostrea gigas // FEBS Letters. 1999. Vol. 460. N1. P. 81−85.
- Cano M.L., Cassimeris L., Joyce M., Zigmond S. H, Characterization of tetramethylrhodaminyl-phalloidin binding to cellular F-actin // Cell Motil. Cytoskeleton. 1992. Vol. 21. P. 147−158.
- Carlini D.B., Reece K.S., Graves J.E. Actin gene family evolution and the phylogeny of coleoid cephalopods (Mollusca: Cephalopoda) I I Mol. Biol. Evol. 2000. Vol. 17. N9. P. 1353−1370.
- Castellani L., Cohen C. Myosin rod phosphorilation and the catch state of molluscan muscles // Science. 1987. Vol. 235. P. 334−337.97
- Castellani L., Vibert P. Location of paramyosin in relation to the subfilaments within the thick filaments of scallop striated muscle // J. Muscle Res. Cell Motil. 1992. Vol. 13. N2. P. 174−182.
- Chen L., Krause M., Draper В., Weintraub H., Fire A. Body-wall muscle formation in Caenorhabditis elegans embryos that lack the MyoD homolog hlh-1 // Science. 1992. Vol. 256. N 5054. P. 240−243.
- Chen L., Krause M., Sepanski M., Fire A. The Caenorhabditis elegans MYOD homologue HLH-1 is essential for proper muscle function and complete morphogenesis//Development. 1994. Vol. 120. N6. P. 1631−1641.
- Cohen C., Lanar D.E., Parry D.A. Amino acid sequence and structural repeats in schistosome paramyosin match those of myosin // Biosci. Rep. 1987. Vol. 7. N1. P. 11−16.
- Cohen C., Parry D.A. A conserved C-terminal assembly region in paramyosin and myosin rods // J. Struct. Biol. 1998. Vol. 122. N 1−2. P. 180−187.
- Cohen C., Szent-Gyorgyi A.G., Kendrick-Jones J. Paramyosin and the filaments of molluscan «catch» muscles. I. Paramyosin: structure and assembly // J. Mol. Biol. 1971. Vol. 56. N. 2. P. 223−227.
- Cooke P. A filamentous cytoskeleton in vertebrate smooth muscle fibers // J. Cell Biol. 1976. Vol. 68. N 3. P. 539−556.
- Corneliussen В., Thornell A., Hallberg В., Grundstrom T. Helix-loop-helix transcriptional activators bind to a sequence in glucocorticoid response elements of retrovirus enhancers //J. Virol. 1991. Vol. 65. N 11. P. 6084−6093.
- Deitiker P.R., Epstein H.F. Thick filament substructures in Caenorhabditis elegans: evidence for two populations of paramyosin // J. Cell Biol. 1993. Vol. 123. N 2. P. 303−311.
- Dodou E., Sparrow D.B., Mohun Т., Treisman R. MEF2 proteins, including MBF2A, are expressed in both muscle and non-muscle cells // Nucleic Acids Res. 1995. Vol. 23. N21. P. 4267−4274.
- Ebashi S. Regulation of muscle contraction // Cell Muscle Motil. 1983. Vol. 3. P. 7987.
- Elliott A., Offer G. Shape and flexibility of the myosin molecule // J. Mol. Biol. 1978. Vol. 123. N. 4. P. 505−519.
- Blzinga M. Primary structure of actin from rabbit skeletal muscle. Five cyanogen bromide peptides, including the amino and carboxyl termini // J. Biol. Chem. 1975. Vol. 250. P. 5897−5905.
- Elzinga M., Lu R.C. Comparative amino acid study of actin // In: Contractile systems of nonmuscle tissues. Edited by Perry S.V., Margreth A., Adelstain R.S. Amsterdam, Elsevier North-Holland. 1976. P. 29−37.
- Emerson C.P. Myogenesis and developmental control genes // Curr. Opin. Cell Biol. 1990. Vol. 2. N6. P. 1065−1075.
- Emerson C.P. Embryonic signals for skeletal myogenesis: arriving at the beginning // Curr. Opin. Cell Biol. 1993. Vol. 5. N 6. P. 1057−1064.
- Epstein H.F., Miller D.M., Ortiz I., Berliner G.C. Myosin and paramyosin are organized about a newly identified core structure // J. Cell. Biol. 1985. Vol. 100. N3. P. 904−915.
- Epstein H.F., Casey D.L., Ortiz I. Myosin and paramyosin of Caenorhabditis elegans embryos assemble into nascent structures distinct from thick filaments and multi-filament assemblages // J. Cell. Biol. 1993. Vol. 122. N 4. P. 845−858.
- Fay F.S., Fujiwara K., Rees D.D., Fogarty K.E. Distribution of alpha-actinin in single isolated smooth muscle cells //J. Cell Biol. 1983. Vol. 96. N 3. P. 783−795.
- Firulli A.B., Han D" Roloff K.L., Koteliansky V.E., Schwartz S.M., Olson E.N., Miano J.M. A comparative molecular analysis of four rat smooth muscle cell lines // In Vitro Cell. Dev. Biol. Anim. 1998. Vol. 34. N 3. P. 217−226.99
- Florey E. Neurotransmitters and modulators in the animal kingdom // Fed. Proc. 1967. Vol. 26. N4. P. 1164−1178.
- Freshney R.I. Culture of animal cells // A manual of basic technique. New York: AlanR. Liss. 1987. 258 p.
- Gabella G. Structural apparatus for force transmission in smooth muscles // Physiol. Rev. 1984. Vol. 64. N 2. P. 455−477.
- George-Weinstein M, Gerhart J, Reed R, Flynn J, Callihan B, Mattiacci M, Miehle C, Foti G, Lash JW, Weintraub H Skeletal myogenesis: the preferred pathway of chick embryo epiblast cells in vitro // Dev. Biol. 1996. Vol. 173, N 1. P. 279 291.
- Groschel-Stewart U. Immunochemistry of cytoplasmic contractile proteins // Int. Rev. Cytol. 1980. Vol. 65. P. 193−254.
- Harfe B.D., Branda C.S., Krause M., Stern M.J., Fire A. MyoD and the specification of muscle and non-muscle fates during postembryonic development of the C. elegans mesoderm // Development. 1998. Vol. 125. N 13. P. 2479−2488.
- Harrington W.F., Rodgers M.E. Myosin // Annu. Rev. Biochem. 1984. Vol. 53. P. 3573.
- Hasty P., Bradley A., Morris J.H., Edmondson D.G., Venuti J.M., Olson E.N., Klein W.H. Muscle deficiency and neonatal death in mice with a targeted mutation in the myogenin gene // Nature. 1993. Vol. 364. N 437. P. 501−506.
- Hayward L.J., Schwartz R.J. Sequential expression of chicken actin genes during myogenesis // J. Cell Biol. 1986. Vol. 102. N 4. P. 1485−1493.100
- Hedin U., Thyberg J. Plasma fibronectin promotes modulation of arterial smooth muscle cells from contractile to synthetyc phenotype // Differentiation. 1987. V. 33. p. 440−446.
- Herman I.M. Actin isoforms // Curr. Opin. Cell Biol. 1993. Vol. 5. P. 48−55.
- Hodge Т., Cope M.J. A myosin family tree // J. Cell Sci. 2000. Vol. 113. N 19. P. 3353−3354.
- Holmes K.C. Muscle proteins their actions and interactions // Curr. Opin. Struct. Biol. 1996. Vol. 6. P. 781−489.
- Jen Y, Weintraub H, Benezra R Overexpression of Id protein inhibits the muscle differentiation program: in vivo association of Id with E2A proteins 11 Genes Dev. 1992. Vol. 6. N 8. P. 1466−1479.101
- Juliano R.L., Haskill S. Signal transduction from the extracellular matrix // J. Cell Biol. 1993. Vol. 120. P. 577−585.
- Khaitlina S.Yu. Functional specificity of actin isoforms // Int. Rev. Cytol. 2001. Vol. 202. P. 35−98.
- Knudsen K.A. Cell adhesion molecules in myogenesis // Curr. Opin. Cell Biol. 1990. Vol. 2. N 5. P. 902−906.
- Konigsberg I.R. Aspects of cytodifferentiation of skeletal muscle // Organogenesis. New-York.: Holt, Renehart and Winston. 1965. P. 337−358.
- Konigsberg I.R. Skeletal myogenesis in culture // Meth. Enzymol. 1979. Vol. 58. P. 511−527.
- Konigsberg I.R., Pfister K.K. Replicative and differentiative behavior in daughter pairs of myogenic stem cells // Exp. Cell Res. 1986. Vol. 167. N 1. P. 63−74.
- Kowbel D.J., Smith M.J. The genomic nucleotide sequences of two differentially expressed actin-coding genes from the sea star Pisaster ochraceus И Gene.1989. Vol. 77. P. 297−308.
- Krause M., Fire A., Harrison S.W., Priess J., Weintraub H. CeMyoD accumulation defines the body wall muscle cell fate during C. elegans embryogenesis I I Cell.1990. Vol. 63. N5. 907−919.
- L., Chambard J.C., Karin M., Olson E.N. Fos and Jun repress transcriptional activation by myogenin and MyoD: the amino terminus of Jun can mediate repression // Genes Dev. 1992. Vol. 6. N 4. P. 676−689.
- Maglott D.R. Dissociation of cells from sea urchin embryos alters the synthesis of actins and other proteins // Cell Differ. 1985. Vol. 17. N 1. P. 29−43.
- Manak J.R., Scott M.P. A class act: conservation of homeodomain protein functions //Dev. Suppl. 1994. P. 61−77.103
- Mao Z., Bonni A., Xia F., Nadal-Vicens M., Greenberg M.E. Neuronal activity-dependent cell survival mediated by transcription factor MEF2 // Science. 1999. Vol. 286. N 5440. P. 785−790.
- Miano J.M., Cserjesi P., Ligon K.L., Periasamy M., Olson E.N. Smooth muscle myosin heavy chain exclusively marks the smooth muscle lineage during mouse embryogenesis// Circ. Res. 1994. Vol. 75. N 5. P. 803−812.
- Miano J.M., Olson E.N. Expression of the smooth muscle cell calponin gene marks the early cardiac and smooth muscle cell lineages during mouse embryogenesis // J. Biol. Chem. 1996. Vol. 271. N 12. P. 7095−7103.
- Michelson A.M., Abmayr S.M., Bate M., Arias A.M., Maniatis T. Expression of a MyoD family member prefigures muscle pattern in Drosophila embryos // Genes Dev. 1990. Vol. 4. N 12A. P. 2086−2097.
- Molkentin J.D., Black B.L., Martin J.F., Olson E.N. Cooperative activation of muscle gene expression by MEF2 and myogenic bHLH proteins // Cell. 1995. Vol. 83. N7. P. 1125−1136.
- Morita F., Kondo S. Regulatory light chain contents and molecular species of myosin in catch muscle of scallop // J. Biochem. (Tokyo). 1982. Vol. 92. N 4. P. 977 983.
- Mounier N.M., Guoy D., Mouchiroud, Prudhomme C. Insect muscle actins differ distinctly from invertebrate and vertebrate cytoplasmic actins // J. Mol. Evol. 1992. Vol. 34. P. 406−415.
- Nabeshima Y., Hanaoka K., Hayasaka M., Esumi E, Li S., Nonaka I., Nabeshima Y. Myogenin gene disruption results in perinatal lethality because of severe muscle defect // Nature. 1993. Vol. 364. N 6437. P. 532−535.104
- Naganuma Т., Degnan В. ML, Horikoshi К., Morse D.E. Myogenesis in primary cell cultures from larvae of the abalone, Haliotis rufescens // Mol. Marine Biol. Biotechnol. 1994. Vol. 3. P. 131−140.
- Naya F.J., Wu C., Richardson J.A., Overbeek P., Olson E.N. Transcriptional activity of MEF2 during mouse embryogenesis monitored with a MEF2-dependent transgene // Development. 1999. Vol. 126. N 10. P. 2045−2052.
- Olson E.N., Klein W.H. bHLH factors in muscle development: dead lines and commitments, what to leave in and what to leave out // Genes Dev. 1994. Vol. 8. N LP. 1−8.
- Opas M., Dziak E. Afhesion, spreeding and proliferation of cells on protein carperts: effects of stability of a carpet // In vitro Cell Dev. Biol. 1991. V. 27A. P. 878 885.
- Panner B.J., Honig C.R. Filament ultrastructure and organization in vertebrate smooth muscle. Contraction hypothesis based on localization of actin and myosin // J. Cell Biol. 1967. Vol. 35. N. 2. P. 303−321.
- Pascolini R., Di Rosa I., Fagotti A., Panara F., Gabbiani G. The mammalian anti-alpha-smooth muscle actin monoclonal antibody recognizes an alpha-actin-like protein in planaria (.Dugesia lugubris s.l.) // Differentiation. 1992. Vol. 51. P. 177−186.
- Pavlov I.P. Wie die muschel ihre schaale offnet // Pflug. Arch. ges. Physiol. 1885. Vol. 37. P. 6−31.
- Pearson J.D., Carleton J.S., Gordon J.L. Metabolism of adenine nucleotides by ectoenzymes of vascular endothelial and smooth-muscle cells in culture // Biochem. J. 1980. Vol. 190. N 2. P. 421−429.
- Pierschbacher M.D., Ruoslahti E. Cell attachment activity of fibronectin can be duplicated by small synthetic fragments of the molecule // Nature. 1984. Vol. 309. N 5963. P.30−33.105
- Pinney D.F., Pearson-White S.H., Konieczny S.F., Latham K.E., Emerson C.P. Myogenic lineage determination and differentiation: evidence for a regulatory gene pathway // Cell. 1988. Vol. 53. N 5. P. 781−793.
- Pollock R., Treisman R. Human SRF-related proteins: DNA-binding properties and potential regulatory targets // Genes Dev. 1991. Vol. 5. N 12A. P. 2327−2341.
- Rao S., Karray S., Gackstetter E.R., Koshland M.E. Myocyte enhancer factor-related B-MEF2 is developmental^ expressed in В cells and regulates the immunoglobulin J chain promoter // J. Biol. Chem. 1998. Vol. 273. N 40. P. 26 123−26 129.
- Rudnicki M.A., Braun Т., Hinuma S., Jaenisch R. Inactivation of MyoD in mice leads to up-regulation of the myogenic HLH gene Myf-5 and results in apparently normal muscle development // Cell. 1992. Vol. 71. N 3. P. 383−390.
- Rudnicki M.A., Schnegelsberg P.N., Stead R.H., Braun Т., Arnold H.H., Jaenisch R. MyoD or Myf-5 is required for the formation of skeletal muscle // Cell. 1993. Vol. 75. N7. P. 1351−1359.
- Rudnicki M.A., Jaenisch R. The MyoD family of transcription factors and skeletal myogenesis //Bioessays. 1995. Vol. 17. N. 3. P. 203−209.
- Ruegg J.C. On tropomyosin-paramyosin system in relation to the viscous tone of lamellibranch «catch' muscle //Proc. Roy. Soc. 1961. Vol. 154. P. 224−249.106
- Ruoslahti E. RGD and other recognition sequences for integrins 11 Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 1996. Vol. 12. P. 697−715.
- Sanger J.W., Mittal В., Sanger J.M. Formation of myofibrils in spreading chick cardiac myocytes // Cell Motil. 1984. Vol. 4. N 6. P. 405−416.
- Sargent T.D., JamrichM., David I.B. Cell interactions and the control of gene activity during early development of Xenopus laevis 11 Develop. Biol. 1986. V. 114. P. 238−246.
- Sartorelli V., Huang J., Hamamori Y., Kedes L. Molecular mechanisms of myogenic coactivation by p300: direct interaction with the activation domain of MyoD and with the MADS box of MEF2C // Mol. Cell. Biol. 1997. Vol. 17. N 2. P. 10 101 026.
- Satyaraj E., Storb U. Mef2 proteins, required for muscle differentiation, bind an essential site in the Ig lambda enhancer // J. Immunol. 1998. Vol. 161. N 9. P. 4795−4802.
- Schmid V., Alder H. Isolated, mononucleated, striated muscle can undergo pluripotent transdifferentiation and form a complex regenerate // Cell. 1984. Vol. 38. N3. P. 801−809.
- Schmid V. Transdifferentiation in Medusae II Int. Rev. Cytol. 1992. Vol. 142. P. 213 261.
- Schmid V., Reber-Muller S. Transdifferentiation of isolated striated muscle of jellyfish in vitro: the initiation process // Semin. Cell Biol. 1995. Vol. 6. N 3. P. 109−116.107
- Seecof R.L., Alleaume N., Teplitz R.L., Gerson I. Differentiation of neurons and myocytes in cell cultures made from Drosophila gastrulae // Exp. Cell Res. 1971. Vol. 69. P. 161−73.
- Shelud’ko N.S., Preminger N.K. Myosin-actin weight ratio in phasic and tonic parts of scallop adductor // Сотр. Biochem. Physiol. 1989. Vol. 93A. N 2. P. 327 330.
- Shelud’ko N.S., Tuturova K.Ph., Permyakova, T.V., Orlova A.A. Thick filaments of smooth muscle of bivalve molluscs contain the unknown protein // Biophys. J. 1998. Vol. 74. P. 262.
- Shelud’ko N.S., Tuturova K.Ph., Permyakova, T.V., Plotnikov S.V., Orlova A.A. A novel thick filament protein in smooth muscles of bivalvia molluscs // Сотр. Biochem. Physiol. 1999. Vol. 122. P. 277−285.
- Shelud’ko N. Permjakova Т., Tuturova K., Neverkina 0., Drozdov A. Myorod, a thick filament protein of molluscan smooth muscle: isolation, polymerization and interaction with myosin // J. Muscle Res. Cell. Motil. 2001. Vol. 22. P. 91 100.
- Shore P., Sharrocks A.D. The MADS-box family of transcription factors // Eur. J. Biochem. 1995. Vol. 229. N 1. P. 1−13.
- Slavkin H.C. Combinatorial process for extracellular matrix influences on gene expression: A hypothesis // J. Craniofac. Genet. And Develop. Biol. 1982. Vol. 2. N2. P. 179−189.
- Small J.V. Studies on isolated smooth muscle cells: The contractile apparatus // J. Cell Sci. 1977. Vol. 24. P. 327−349.
- Small J. V., Furst D.O., Thornel L.E. The cytoskeletal lattice of muscle cells // Eur. J. Biochem. 1992. Vol. 208. P. 359−372.
- Staatz W.D., Fok K.F., Zutter M.M., Adams S.P., Rodriguez B.A., Santoro S.A. Identification of a tetrapeptide recognition sequence for the alpha 2 beta 1 integrin in collagen // J. Biol. Chem. 1991. Vol. 266. N 12. P. 7363−7367.108
- Stern H.M., Brown A.M., Hauschka S.D. Myogenesis in paraxial mesoderm: preferential induction by dorsal neural tube and by cells expressing Wnt-1 // Development. 1995. Vol. 121. N 11. P. 3675−3686.
- Stockdale F.E., Miller J.B. The cellular basis of myosin heavy chain isoform expression during development of avian skeletal muscles // Dev. Biol. 1987. Vol. 123. N1. P. 1−9.
- Swanson B.J., Jack H.M., Lyons G.E. Characterization of myocyte enhancer factor 2 (MEF2) expression in В and T cells: MEF2C is, а В cell-restricted transcription factor in lymphocytes // Mol. Immunol. 1998. Vol. 35. N 8. P. 445−458.
- Thiery J.P., Duband J.L., Tucker G.C. Cell migration in the vertebrate embryo: role of cell adhesion and tissue environment in pattern formation // Annu. Rev. Cell Biol. 1985. Vol. 1. P. 91−113.
- Trouche D., Grigoriev M., Lenormand J.L., Robin P., Leibovitch S.A., Sassone-Corsi P., Harel-Bellan A. Repression of c-fos promoter by MyoD on muscle cell differentiation // Nature. 1993. Vol. 363. N 6424. P. 79−82.
- Tsukita S., Tsukita S., Ishikawa H. Association of actin and 10 nm filaments with the dense body in smooth muscle cells of the chicken gizzard // Cell Tissue Res. 1983. Vol. 229. N 2. P. 233−242.
- Twarog B. Innervation and activity of a molluscan smooth muscle // J. Physiol. 1960. Vol. 152. P 220−232.
- Twarog B.M. Factors influencing contraction and catch in Mytilus smooth muscle // J. Physiol. 1967. Vol. 192. N 3. P. 847−856.
- Twarog B.M. The regulation of catch in molluscan muscle // J. Gen. Physiol. 1967. Vol. 50. N6. P. 157−169.109
- Vandekerckhove J., Weber K. The complete amino acid sequence of actins from bovine aorta, bovine heart, bovine fast skeletal muscle and rabbit slow skeletal muscle//Differentiation. 1979. Vol. 14. P. 123−133.
- Vandekerckhove J., Weber K. Chordate muscle actins differ distinctly from invertebrate muscle actins. The evolution of the different vertebrate muscle actins // J. Mol. Biol. 1984. Vol. 179. N 3. P. 391−413.
- Venuti J.M., Goldberg L., Chakraborty Т., Olson E.N., Klein W.H. A myogenic factor from sea urchin embryos capable of programming muscle differentiation in mammalian cells // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1991. Vol. 88. N 14. P. 62 196 223.
- Vibert P., York M.L., Castellani L., Edelstein S., Elliott В., Nyitray L. Structure and distribution of mini-titins //Adv. Biophys. 1996. Vol. 33. P. 199−209.
- Vinos J., Domingo A., Marco R., Cervera M. Identification and characterization of Drosophila melanogaster paramyosin // J. Mol. Biol. 1991. Vol. 220. N 3. P. 687−700.
- Vinos J., Maroto M., Garesse R., Marco R., Cervera M. Drosophila melanogaster paramyosin: developmental pattern, mapping and properties deduced from its complete coding sequence //Mol. Gen. Genet. 1992. Vol. 231. N 3. P. 385−394.
- Wang K. Cytoskeletal matrix in striated muscle: the role of titin, nebulin and intermediate filaments //Adv. Exp. Med. Biol. 1984. Vol. 170. P. 285−305.
- Watabe S., Iwasaki K., Funabara D., Hirayama Y., Nakaya M., Kikuchi K. Complete amino acid sequence of Mytilus anterior byssus retractor paramyosin and its putative phosphorilation site // J. Exp. Zool. 2000. Vol. 286. P. 24−35.
- Weber C., Alder H., Schmid V. In vitro transdifferentiation of striated muscle to smooth muscle cells of a medusa // Cell Differ. 1987 Vol. 20. N 2−3. P. 103−115.110
- Weintraub H. The MyoD family and myogenesis: redundancy, networks, and thresholds // Cell. 1993. Vol. 75. N 7. P. 1241−1244.
- Yang J.T., Wu C.C. The shape of myosin subfragment-1. A equivalent oblate ellipsoid model based on hydrodynamic properties // Biochemistry. 1977. Vol. 16. N26. P. 5785−5789.
- Yamada A., Yoshio M., Oiwa K., Nyitray L. Catchin, a novel protein in molluscan catch muscles, is produced by alternative splicing from the myosin heavy chain gene // J. Mol. Biol. 2000. Vol. 295. N 2. P. 169−178.
- Youn H.D., Sun L., Prywes R., Liu J.O. Apoptosis of T cells mediated by Ca2±induced release of the transcription factor MEF2 // Science. 1999. Vol. 286. N 5440. P. 790−793.
- Yu Y.T., Breitbart R.E., Smoot L.B., Lee Y., Mahdavi V., Nadal-Ginard B. Human myocyte-specific enhancer factor 2 comprises a group of tissue-restricted MADS box transcription factors // Genes Dev. 1992. Vol. 6. N 9. P. 1783−1798.
- Zhang J.M., Chen L., Krause M., Fire A., Paterson B.M. Evolutionary conservation of MyoD function and differential utilization of E proteins // Dev. Biol. 1999. Vol. 208. N 2. P. 465−472.
- Ziegler C. Titin-related proteins in invertebrate muscles // Сотр. Biochem. Physiol. (Sen A Physiol). 1994. Vol. 109. N 4. P. 823−833.