Биокаталитические системы на основе иммобилизованных клеток гриба Rhizopus oryzae: Способы получения и свойства
Диссертация
Отрасли отечественной промышленности испытывают дефицит в МК, 80% этого продукта в Россию импортируется. В настоящее время на практике для биосинтеза МК используют только клетки бактерий. Для интенсификации существующего производства необходим переход к новым продуцентам, видам сырья и процессам с существенно сниженной экологической нагрузкой. В связи с этим, актуальной представляется разработка… Читать ещё >
Содержание
- СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
- Глава I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ. И
- 1. 1. Биокатализаторы на основе иммобилизованных клеток микроорганизмов
- 1. 1. 1. Иммобилизованные клетки в биотехнологии
- 1. 1. 2. Методы иммобилизации мицелиальных грибов
- 1. 1. 3. Общая характеристика криогеля поливинилового спирта как носителя для иммобилизации клеток
- 1. 1. 4. Свойства иммобилизованных клеток
- 1. 2. Молочная кислота
- 1. 2. 1. Практическое значение молочной кислоты и ее производных ф 1.2.2. Химические методы получения молочной кислоты
- 1. 2. 3. Микробиологические способы получение молочной кислоты
- 1. 2. 3. 1. Бактериальные продуценты молочной кислоты
- 1. 2. 3. 2. Мицелиальные грибы — продуценты молочной кислоты
- 1. 2. 3. 3. Биокатализаторы на основе иммобилизованных грибов продуцентов молочной кислоты
- 1. 1. Биокатализаторы на основе иммобилизованных клеток микроорганизмов
- 1. 3. Липолитические ферменты
- 1. 3. 1. Общая характеристика липолитических ферментов
- 1. 3. 2. Влияние различных факторов на биосинтез липаз мицелиальных грибов
- 1. 3. 3. Иммобилизованные грибные продуценты липолитических ферментов ф 1.3.4. Проблемы очистки сточных вод, содержащих вещества липидной природы
- 2. 1. Материалы
- 2. 1. 1. Химические реактивы
- 2. 1. 2. Микроорганизмы
- 2. 2. Методы
- 2. 2. 1. Хранение культур грибов
- 2. 2. 2. Выращивание и хранение культур бактерий
- 2. 2. 3. Иммобилизация спорового материала и биомассы бактерий ф в криогель ПВС
- 2. 2. 4. Сбраживание глюкозосодержащей среды свободными и иммобилизованными клетками бактерий в периодическом реакторе
- 2. 2. 5. Культивирование клеток гриба R. oryzae в процессах получения молочной кислоты
- 2. 2. 6. Определение амилазной активности
- 2. 2. 7. Определение концентрации глюкозы
- 2. 2. 8. Определение динамической вязкости растворов по методу Оствальда
- 2. 2. 9. Определение концентрации молочной кислоты
- 2. 2. 10. Определение концентрации крахмала
- 2. 2. 11. Определение сухого веса биомассы
- 2. 2. 12. Определение концентрации внутриклеточного АТР биолюминисцентным методом
- 2. 2. 13. Культивирование клеток гриба i?. oryzae в процессах биосинтеза внеклеточных липолитических ферментов
- 2. 2. 14. Определение активности липазы модифицированным методом Олфорда и Пирса
- 2. 2. 15. Определение ХПК
- 2. 2. 16. Хроматографическое разделение комплекса липолитических ферментов, секретируемых свободными и иммобилизованными клетками гриба R. oryzae
- 2. 2. 17. Электронная и световая микроскопия образцов гранул
- 2. 2. 18. Электрофоретический анализ белков
- 2. 2. 19. Исследование реологических характеристик гранул, полученных на основе криогеля поливинилового спирта
- 2. 2. 20. Определение кинетических параметров процессов с использованием свободных и иммобилизованных клеток
- 3. 1. Биокатализатор для получения молочной кислоты: условия формирования и свойства
- 3. 1. 1. Скрининг культур по соотношению синтезируемых ими L- и D-изомеров молочной кислоты
- 3. 1. 2. Получение молочной кислоты при использовании свободных и иммобилизованных клеток бактерий
- 3. 1. 2. 1. Кинетические характеристики сбраживания глюкозы свободными бактериальными клетками
- 3. 1. 2. 2. Молочнокислое брожение в реакторе периодического действия с использованием концентрированных суспензий клеток L. case
- 3. 1. 2. 3. Молочнокислое брожение в реакторе периодического действия с использованием иммобилизованных клеток бактерий L. case
- 3. 1. 3. Получение молочной кислоты при использовании свободных и иммобилизованных клеток гриба R. oryzae
- 3. 1. 3. 1. Продуцирование молочной кислоты свободными клетками R. oryzae
- 3. 1. 3. 2. Получение молочной кислоты иммобилизованными клетками R. oryzae в процессе формирования биокатализатора при использовании питательных сред различного состава
- 3. 1. 3. 2. 1. Формирование биокатализатора при использовании питательной среды с глюкозой
- 3. 1. 3. 2. 2. Формирование биокатализатора при использовании крахмалосодержащей питательной среды
- 3. 1. 3. 2. 3. Сравнительный анализ процессов формирования биокатализатора на основе иммобилизованных в криогель ПВС клеток гриба R. oryzae, выбор оптимальных условий
- 3. 1. 3. 3. Получение молочной кислоты при использовании биокатализатора на основе иммобилизованных клеток гриба R. oryzae
- 3. 1. 3. 3. 1. Получение молочной кислоты в периодическом процессе с использованием питательной среды, содержащей глюкозу
- 3. 1. 3. 3. 2. Накопление молочной кислоты в режиме периодического процесса с подпитками субстратом — глюкозой
- 3. 1. 3. 3. 3. Получение молочной кислоты в периодическом процессе при использовании кислотных гидролизатов крахмала
- 3. 1. 3. 3. 4. Получение молочной кислоты при использовании кислотных гидролизатов крахмала в периодическом процессе с подпитками субстратом
- 3. 1. 3. 3. 5. Получение молочной кислоты в периодическом процессе при использовании клейстеризованного крахмала
- 3. 1. 4. Анализ параметров процесса получения молочной кислоты с использованием биокатализатора на основе иммобилизованных клеток гриба R. oryzae
- 3. 2. Биокатализатор на основе иммобилизованных клеток гриба R. oryzae, секретирующих липолитические ферменты
- 3. 2. 1. Скрининг продуцентов липаз среди штаммов гриба Rhizopus oryzae для разработки биокатализатора на основе иммобилизованных клеток
- 3. 2. 2. Влияние состава питательной среды на формирование свободного и иммобилизованного мицелия, секретирующего липазы
- 3. 2. 3. Влияние различных факторов на результаты многократного использования иммобилизованных клеток гриба R. oryzae, продуцирующих липазы
- 3. 2. 3. 1. Влияние состава среды на липолитическую активность внеклеточных ферментов, секретируемых иммобилизованными клетками гриба
- 3. 2. 3. 2. Характеристики биокатализатора на основе клеток гриба иммобилизованных в криогеле ПВС R. oryzae, осуществляющих биосинтез внеклеточных липолитических ферментов
- 3. 2. 4. Анализ комплексов липолитических ферментов, секретируемых свободными и иммобилизованными клетками гриба R. oryzae
- 3. 2. 5. Исследование возможности использования биокатализатора на основе иммобилизованных клеток гриба R. oryzae для очистки сточных вод, содержащих вещества липидной природы
Список литературы
- Willaert R.G., Baron G.V. Immobilised living cell systems: modeling and experimental methods. //John Wiley and Sons Ltd Pbsh. 1996. 386p.
- Wijffels R.H. Immobilized cells. // Sprinter-Verlag Pbsh. 2001. 26lp.
- Tampion J., Tampion M.D. Immobilized cells: principles and applications. // New York: Cambridge University Press. 1987. 257p.
- Kenichi I., Kazuhisa K.- Nobutoshi N.- Tsukasa S. New microorganism and apparatus for treating wastewater containing oil-and-fat using the microorganism // Pat. 2 003 000 228 (JP). 2003.
- Yayka§ li K.O., Demirel G., Ya§ ar A. Influence of alcohols on citric acid production by Aspergillus niger A-9 entrapped in polyacrylamide gels. // J. Food Eng. 2005. V.70. 1.4. P.518−522.
- Cassidy M.B., Lee H., Trevors J.T. Environmental applications of immobilized microbial cells: a review. // J. Ind. Microbiol. 1996. V.16. № 1−2. P.79−101.
- Nedovik V., Willaert R. Fundamentals of cell immobilisation biotechnology. // Springer Pbsh. Ser.: Focus on biotechnology. V.8A. 2004. 550p.
- Nedovik V., Willaert R. Applications of cell immobilisation biotechnology. // Springer Pbsh. Ser.: Focus on biotechnology. V.8B. 2005. 573p.
- Хенце M., Армоэс П., Ля-Кур-Янсен Й., Арван Э. Очистка сточных вод. Биологические и химические процессы. // М.: Изд. Мир. 2004.241с.
- Синицын А.П., Райнина Е. И., Лозинский В. И., Спасов С. Д. Иммобилизованные клетки микроорганизмов. // М.: Изд. МГУ. 1994.288с.
- Junter G-A., Jouenne Т. Immobilized viable microbial cells: from the process to the proteome. or the cart before the horse. // Biotechnol. Adv. 2004. V.22.1.8. P.633−658.
- Greval H. S., Kalra K.L. Fungul production of citric acid. // Biotechnol. Adv. 1995. V.13. № 2. P.209−234.
- Domingues F.C., Queiroz J.A., Cabral J.M.S., Fonseca L.P. The influence of culture conditions on mycelial structure and cellulase production by Trichoderma reesei Rut C-30.1 I Enzyme Microb. Tech. 2000. V.26. P.394-^01.
- Henriksson G., Johansson G., Pettersson G. A critical review of cellobiose dehydrogenases. // J. Biotechnol. 2000. V.78. P.93−113.
- Lozinsky V.I., Plieva F.M. Polyvinyl alcohol) cryogels employed as matrices for cell immobilization. 3. Overview of recent research and developments. Basics and Applications. // Enzyme Microb. Tech. 1998. V.23. № 3−4. P.227−242.
- Riley M.R., Muzzio F.J., Reyes S.C. Experimental and modeling studies of diffusion in immobilized-cell systems. //Appl. Biochem. Biotech. 1999. V.80.1.4. P.151−188.
- Fujii N., Oki Т., Sakurai A., Suye S., Sakakibara M. Ethanol production from starch by immobilized Aspergillus awamori and Saccharomyces pastorianus using cellulose carriers. // J. Ind. Microbiol. Biot. 2001. V.27. P.52−57.
- Pashova S., Slokoska L., Krumova E., Angelova M. Induction of polymethylgalacturonase biosynthesis by immobilized cells of Aspergillus niger 26. // Enzyme Microb. Tech. 1999. V.24. P.535−540.
- Луста К.А., Горкина Н. Б., Шульга A.B., Фихте Б. А. Иммобилизация мицелиальных грибов, продуцирующих полисахаразы, в криополиакриламидном геле. // Прикл. Биох. Микробиол. 1990. Т.26. С.492−499.
- McCabe В., Kuek С., Gordon G., Phillips М. Production of /?-glucosidase using immobilised Piromyces sp. KSX1 and Orpinomyces sp. 478P1 in repeat-batch culture. // J. Ind. Microbiol. Biot. 2003. V.30. P.205−209.
- Beunink J., Baumgartl H., Zimelka W., Rehm H.-J. Determination of oxygen gradients in single Ca-alginate beads by means of oxygen microelectrodes. // Experimentia. 1989. V.45. № 7−8. P. l041−1047.
- El-Katatny M.H., Hetta A.M., Shaban G.M., El-Komy H.M. Improvement of cell wall degrading enzymes production by alginate encapsulated Trihoderma spp. II Food Thechnol. Biotech. 2003 V.41. № 3. P.219−225.
- Aloysius R., Karim M.I.A., Ariff A.B. The mechanism of cadmium removal from aqueus solution by nonmetabolizing free and immobilized live biomass of Rhizopus oligosporus. И World J. Microb. Biot. 1999. V.15. P.571−578.
- Sun Y., Li Y.-L., Yang H., Bai S., Hu Z.-D. Characteristics of immobilized Rhizopus oryzae in polyurethane foam cubes. // Biotechnol. Tech. 1996. V.10. № 11. P.809−814.
- Sun Y., Li Y.-L., Bai S. Modeling of continuous L (+)-lactic acid production with immobilized Rhizopus oryzae in an air-lift bioreactor. // J. Biochem. Eng. 1999. V.3. № 1. P.87−90.
- Tay A., Yang S.-T. Production of L (+)-lactic acid from glucose and starch by immobilized cell of Rhizopus oryzae in a rotating fibrous bed bioreactor. // Biotechnol. Bioeng. 2002. V.80. № 1. P. 1−12.
- Hashimoto S., Furukawa K., Hama H. Immobilization of activated sludge and its treatment capability. // J. Japan Sewege Works Assoc. 1986. V.23. № 1. P. 16−22.
- Ariga O., Takagi H., Nishizawa H. Immobilisation of microorganisms with PVA hardend by iterative freezing and thawing. // J. Ferment. Technol. 1987. V.65. № 6. P.651−658.
- Guobin S., Jianmin X., Chen G., Huizhou L., Jiayong C. Biodesulfiirization using Pseudomonas delafueldii in magnetic polyvinyl alcohol beads. // Lett. Appl. Microbiol. 2005. V.40. P.30−36.
- Лозинский В.И., Вайнерман Е. С., Рогожин С. В. Способ получения иммобилизованных клеток микроорганизмов. // А.С. СССР № 1 400 071. 1986.
- Watase М., Nishinari К., Nambu М. Anomalious increase of the elastic modulus of frozen poly (vinil alcohol) gels. // Cryo-Lett. 1983. V.4. № 2. P.197−200.
- Рогожин C.B., Лозинский В. И., Вайнерман E.C., Домотенко Л. В., Мамцис A.M., Иванова С. А., Штильман М. И., Коршак В. В. Нековалентное криоструктурирование в полимерных системах. //Докл. АН СССР. 1984. Т.278. № 1. С.129−133.
- Lozinsky V.I., Domotenko L.V., Vainerman E.S. Study of cryostructurization of polymer systems. VII. Sructure formation under freeazing of poly (vinyl alcohol) aqueous solution. // Colloid Polym. Sci. 1986. V.264. № 1. P.19−24.
- Yokoyama F., Masada I., Shinamura Т., Irawa Т., Monobe K. Morphology and structure of highly elastic poly (vinyl alcohol) hydrogel prepared by repeated freezing-and-melting. // Colloid Polym. Sci. 1986. V.264. № 7. P.595−601.
- Trieu H.H., Qutubuddin S. Polyvinyl alcohol) hydrogels. 1. Microscopic structure by freeze-etching and critical point drying techniques. // Colloid Polym. Sci. 1994. V.272. № 3. P.301−309.
- Urushizaki F., Yamaguchi H., Nakamura K., Numajiri S. Swelling and mechanical properties of polyvinyl alcohol) hydrogels. // Int. J. Pharm. 1990. V.58. № 2. P.135−142.
- Trieu H.H., Qutubuddin S. Polyvinyl alcohol) hydrogels. 2. Effect of processing parameters on structure and properties. // Polymer. 1995. V.36. № 13. P.2531−2538.
- Lozinsky V.I., Zubov A.L., Titova E.F. Swelling behavior of polyvinyl alcohol) hydrogels employed as matrices for cell immobilization. // Enzyme Microb. Tech. 1996. V.18. № 6. P.561−569.
- Shubhangi G. Gholap J., Jog P., Badiger M.V. Synthesis and characterization of hydrophobically modified polyvinyl alcohol) hydrogel membrane. // Polymer. 2004. V.45. № 17. P.5863−5873.
- Лозинский В.И. Криогели на основе природных и синтетических полимеров: получение, свойства и области применения. // Успехи химии. 2002. Т.71. № 6. С.559−585.
- Свириденко Ю.Я., Абдуллаева JT.B., Райнина Е. И., Ефременко Е. Н. Иммобилизованные дрожжи для сбраживания молочной сыворотки. // Пищевая промышленность. 1994. № 8. С.6−7.
- Синицын А.П., Райнина Е. И., Бачурина Г. П., Махлис Т. А., Гусаков А. В., Ефремов А. Б. Использование иммобилизованных клеток микроорганизмов для получения этанола. //
- В сб.: Иммобилизованные клетки в биотехнологии. Пущино. 1987. С. 140−149.
- Кевбрина М.В., Рябоконь A.M. Пушаева М. А. Образование ацетата свободными и иммобилизованными клетками термофильной гомоацетогенной бактерии Thermoanaerobacter kivui из смесей газов, содержащих СО. // Микробиология. 1996. Т.6. С.753−757.
- Shreve G.S., Vogel T.M. Comparison of substrate utilization and growth kinetics between
- Ф immobilized and suspended Pseudomonas cells. // Biotechnol. Bioeng. 1993. V.41. № 3.1. P.370−379.
- Rainina E.I., Efremenko E.N., Simonian A.L., Wild J., Varfolomeev S.D. The development• of a new biosensor based on recombinant E. coli for the detection of organophosphorus neurotoxins. // Biosens. Bioelectron. 1996. V. l 1. P.991−1000.
- Kim J.-W., Rainina E.I., Efremenko E.N., Engler C.R., Wild J.R. Degradation of thiodiglycol, the hydrolysis product of sulfur mustard, with bacteria immobilized within poly (vinyl)alcohol cryogels. // Biotechnol. Lett. 1997. V. l9. P. 1067−1071.
- Shimyo A., Kimura H., Okada H. Physiology of a-amylase production by immobilized Bacillus amylofiquefacieus. // Eur. J. Appl. Microb. Biot. 1982. V.14. № 1. P.7−12.
- Манолов Р.Ж., Тавобилов И. М., Лозинский В. И., Вайнерман Е. С., Титова Е.Ф.,
- Белавцева Е.М., Безбородова С. И., Рогожин С. В., Безбородов A.M. Изучение иммобилизованных клеток Aspergillus clavatus, продуцирующих рибонуклеазу. // Прикл. Биох. Микробиол. 1988. Т.24. № 4. С.514−519.
- Junter G., Coquet L., Vilain S., Jouenne T. Immobilized-cell physiology: current data and the potentialities of proteomics. // Enzyme Microb. Tech. 2002. V.31. P.201−212.
- Inac E., Miller J.E., DiBiasio D. Effect of oxygen supply on metabolism of immobilized and suspended Escherichia coli. II Biotechnol. Bioeng. 1996. V.51. P.697−702.
- Parascandola P., Alteriis E. Patterns of growth and respiratory activity of Saccharomyces cerevisiae (baker's yeast) cells growing entrapped in an insolubilized gelatin gel. //
- Biotechnol. Appl. Bioc. 1996. V.23. P.7−12.
- Kiy Т., Tiedtke A. Effects of immobilization on growth, morphology and DNA content of the ciliated protozoon Tetrahymena thermophila. II FEMS Microbiol. Lett. 1993. V.106. PI 17−122.
- Suzuki Т., Yamaguchi Т., Ishida M. Immobilization of Prototheca zopfil in calcium-alginate beads for the degradation of hydrocarbons. // Process Biochem. 1998. V.33. P.541−546.
- Yamaguchi Т., Isida M., Suzuki T. An immobilized-cell system in polyurethane foam for the lipophilic micro-alga Prototheca zopfii. И Process Biochem. 1999. V.34. P. 167−171.
- Lau. P. S., Tam N.F.Y., Wong Y.S. Effect of carrageenan immobilization on the physiological activities of Chlorella vulgaris. II Bioresource Technol. 1998. V.63. P. l 15−121.
- Chun G., Agathos S.N. Comparative studies of physiological and environmental effects on the production of cyclosporin A in suspended and immobilized cells of Tolypocladium inflatum. //Biotechnol. Bioeng. 1991. V.37. P.256−265.
- Doran P.M., Bailey J.E. Effects of immobilisation on growth, fermentation properties, and macromolecular composition of S. cerevisiae attached to gelatin. // Biotechnol. Bioeng. 1986. V.28. P.73−87.
- Galazzo J.L., Bailey J.E. In vivo nuclear magnetic resonance analysis of immobilization effects on glucose metabolism of yeast Saccharomyces cerevisiae. II Biotechnol. Bioeng. 1989. V.33. P.1283−1289.
- Taipa M.A., Cabral J.M.S. Santos H. Comparison of glucose fermentation by suspended and gel-entrapped yeast cells: an in vivo nuclear magnetic resonance study. // Biotechnol. Bioeng. 1993. V.41. P.647−653.
- Paragianni M., Joshi N., Moo-Young M. Comparative studies on extracellular protease secretion and glucoamylase production by free and immobilized Aspergillus niger cultures. // J. Ind. Microbiol. Biotech. 2002. V.29. P.259−263.
- Kren V., Ludvik J., Kofronova O., Kozova J., Rehacek Z. Physiological activity of immobilized cells of Claveceps fusiformis during long-therm semicontinuous cultivation. // Appl. Microbiol. Biot. 1987. V.26. P.219−226.
- Klingeberg M., Vorlop K.D., Antrakinian C. Immobilization of anaerobic thermophilic bacteria for the production of cell-free thermostable a-amylases and pullulanases. // Appl. Microbiol. Biot. 1990. V.33. P.494−500.
- Mori A., Matsumoto N., Imai C. Growth behavior of immobilized acetic acid bacteria. // Biotechnol. Lett. 1989. V.ll. P.183−188.
- Molin G., Nilsson I. Degradation of phenol by Pseudomonas putida ATCC 11 172 in continious culture at different ratios of biofilm surface to culture volume. // Appl. Environ. Microb. 1985. V.50. № 4. P.946−950.
- Norton S., D’amore T. Physiological effects of yeast cell immobilization: application for brewing. // Enzyme Microb. Tech. 1994. V.16. P.265−375.
- Parascandola P., Alteriis E., Sentandreu R., Zueco J. Immobilization and ethanol stress induce the same molecular responce at the level of the cell wall in growing yeast. // FEMS Microbiol. Lett. 1997. V.150. P.121−126.
- Jirku V. Whole-cell immobilization as a means of enhancing ethanol tolerance. // J. Ind. Microbiol. Biot. 1999. V.22. P.147−151.
- Wolken W.A.M., Tramper J., Werf M.J. What can spores do for us? // Trends Biotechnol. 2003. V.21. № 8. P.338−345.
- Шлегель Г. Общая микробиология. // М.: Изд. Мир. 1987.456с.
- Бачурина Г. П. Биоконверсия гидролизатов растительного сырья в этанол иммобилизованными бактериями Zymomonas mobilis. // Дисс. на соиск. степени к.б.н. 1998. Москва. 153с.
- Фрунджян В.Г. Биолюминесцентная АТФ-метрия в клинической и санитарной микробиологии. //Дисс. на соиск. степени к.х.н. 1999. Москва. 152с.
- Угарова Н.Н., Фрунджян В. Г. Применение биолюминесцентной АТФ-метрии в биоаналитических целях. // Метод, разработка к спецкурсу «Прикладная энзимология». М.: Изд. МГУ, Хим. факультет. 2003. 45с.
- Hester A. IB Market forecast. // Ind. Bioprocess. 2000. V.22. P.3−5.
- Кулев Д. Состояние и перспективы развития производства пищевых добавок в России. // Российский продовольственный рынок. 2001. № 4. С.24−29.
- Плетнев М.Ю. Биополимеры как материал для экологичной упаковки: в фокусе полилактаты. // SOFW-Journal (рус. версия). 2004. № 1. С.64−68.
- Hofvendahl К., Hahn-Hagerdal В. Factors affecting the fermentative lactic acid production from renewable resources. // Enzyme Microb. Tech. 2000. V.26. № 2−4. P.87−100.
- Datta R., Moon S.-H., Tsai S.-P., Bonsignore P., Frank J.R. Technological and economic potential of poly (lactic acid) and lactic acid derivatives. // FEMS Microbiol. Rev. 1995. V.16. № 2−3. P.221−231.
- Марков В.И., Карпищенко Jl.С., Парамонова Т. Г. Молочная кислота и перспективы ее производства. //Вопросы химии и химической технологии. 1985. № 79. С.48−54.
- Уставщиков В.Ф., Подгорнова В. А., Фарберов М. И., Усакова М. С. Синтез молочной кислоты на основе пропилена. // Нефтехимия. 1966. Т.4. № 1. С.115−122.
- Мардоян М.К., Беренский И. К., Габриелян С. М. Способ получения молочной кислоты. //А.С. СССР № 335 154.1972.
- Марков В.И., Карпищенко Л. С., Патамонова Т. Г. Способ получения молочной кислоты.//А.С. СССР№ 1 011 630. 1983.
- Narayanan N., Roychudhury Р.К., Srivastava A. L (+)-lactic acid fermentation and its product polymerization.//Electronic J. Biotechnol. 2004. V.7. № 2. P.167−179.
- Воробьева А.И. Промышленная микробиология. // M.: Изд. МГУ. 1989.294с.
- Yumoto I., Ikeda К. Direct fermentation of starch to L-(+)-lactic acid using Lactobacillus amylophilus. И Biotechnol. Lett. 1995. V.17.1.5. P.543−546.
- Yoon K.Y., Woodams E.E., Hang Y.D. Fermentation of beet juice by beneficial lactic acid bacteria. // Lebensmittel-Wissenschaft und Technologie. 2005. V.38.1.1. P.73−75.
- Saxelin M., Tynkkynen S., Mattila-Sandholm Т., Vos W.M. Probiotic and other functional microbes: from markets to mechanisms. // Curr. Opin. Biotech. 2005. V.16.1.2. P.204−211.
- Shamtsyan M.M., Solodovnik K.A., Yakovlev V.I. Biosynthesis of lactic acid by the Streptococcus bovis culture from starch- and inulin-containing raw materials. // Biotechnology. 2002. № 4. P.48−54.
- Gordon G.L., Doelle H.W. Production of racemic lactic acid in Pediococcus cerevisiae cultures by two lactate dehydrogenases. // J. Bacteriol. 1975. V.121.1.2. P.600−607.
- Dartois V., Phalip V., Schmitt P. Purification, properties and DNA sequence of the D-lactate dehydrogenase from Leuconostoc mesenteroides subsp. cremoris. И Res. Microbiol. 1995. V.146.1.4. P.291−302.
- Беккер З.Э. Физиология и биохимия грибов. // М.: Изд. МГУ. 1988.229с.
- Hirata М., Gao М., Toorisaka Е., Takanashi Н., Hano Т. Production of lactic acid by continuous electrodialysis fermentation with a glucose concentration controller. // Biochem. Eng. J. 2005. V.25.1. 2. P.159−163.
- Bennett J.W. Mycotechnology: the role of fungi in biotechnology. // J. Biotechnol. 1998. V.66. P.101−107.
- Панкратов А.Я., Антипова Jl.B., Шуваева Г. П. Биосинтез ферментов грибами рода Ризопус. // Воронеж: Изд. ВГУ. 1993.184с.
- Soccol C.R., Stonoga V.J., Raimbault М. Production of L-lactic acid by Rhyzopus species. И World J. Microb. Biot. 1994. V.10. № 3−4. P.433−435.
- Yin P., Yahiro K., Ishigaki Т., Park Y., Okabe M. L (+)-lactic acid production by repeated batch culture of Rhizopus oryzae in air-lift bioreactor. // J. Ferm. Bioeng. 1998. V.85. № 1. P.96−100.
- Miura S., Arimura Т., Hoshino M., Kojima M., Dwiarti L., Okabe M. Optimization and scale-up of L-lactic acid fermentation by mutant strain Rhizopus sp. MK-96−1196. // J. Biosci. Bioeng. 2003. V. 96. № 1. P.65−69.
- Bai D.-M., Jia M.-Z., Zhao X.-M., Ban R., Shen F., Li X.-G., Xu S.-M. L (+)-lactic acid production by pellet-form Rhizopus oryzae R1021 in a stirred tank fermentor. // Chem. Bioeng. Science. 2003. V.58. P.785−791.
- Hang Y.D., Hamamci H., Woodams E.E. Production of L (+)-lactic acid by Rhizopus oryzae immobilized in calcium alginate gels. // Biotechnol. Lett. 1989. V. l 1. № 2. P. l 19−120.
- Park E.Y., Kosakai Y., Okabe M. Efficient production of L (+)-lactic acid using mycelial cotton-like floes of Rhizopus oryzae in an air-lift bioreactor. // Biotechnol. Prog. 1998. V.14. № 5. P.699−704.
- Yin P., Nishina N., Kosakai Y., Yahiro K., Park Y., Okabe M. Enhanced production of L (+)-lactic acid from corn starch in a culture of Rhizopus oryzae using an air-lift bioreactor. //J. Ferment. Bioeng. 1997. V.84. № 3. P.249−253.
- Hang Y.D. Direct fermentation of corn to L (+)-Lactic acid by Rhizopus oryzae. II Biotechnol. Lett. 1989. V. l 1. № 4. P.299−300.
- Yu R., Hang Y.D. Kinetics of direct fermentation of agricultural commodities to L (+)-lactic acid by Rhizopus oryzae. II Biotechnol. Lett. 1989. V. l 1. № 8. P.597−600.
- Huang L.P., Jin В., Lant P., Zhou J. Biotechnological production of lactic acid integrated with potato wastewater treatment by Rhizopus arrhizus. II J. Chem. Technol. Biot. 2003. V.78. P.899−906.
- Yang C.W., Lu Z., Tsao G.T. Lactic acid production by pellet-form Rhizopus oryzae in a submerged system. // Appl. Biochem. Biotechnol. 1995. V.51−52. № 1. P.57−71.
- Soccol C.R., Marin В., Raimbault M., Lebeault J.-M. Potential of solid state fermentation for production of L (+)-lactic acid by Rhizopus oryzae. И J. Appl. Microb. Biot. 1994. V.41. № 4. P.286−290.
- Dominiquez J. M., Voquez M. Effect of the operational conditions on the of L (+)-lactic acid production by Rhizopus oryzae. II Cienc. Technol. Aliment. 1999. V.2. № 3. P. 113−118.
- Kosakai Y., Park Y.S., Okabe M. Enhancement of L (+)-lactic acid production using mycelial floes of Rhizopus oryzae. И Biotechnol. Bioeng. 1997. V.55. № 3. P.462−466.
- Oh H., Wee Y-J., Yun J-S., Han S. H., Jung S., Ryu H-W. Lactic acid production from agricultural resources as cheap raw materials. // Bioresourse Technol. 2005. V.96. 1.13. P.1492−1498.
- Dong X.-Y., Bai S., Sun Y. Production of L (+)-lactic acid with Rhizopus oryzae immobilized in polyurethane foam cubes. // Biotechnol. Lett. 1996. V.18. № 2. P.225−228.
- Sun Y., Li Y.-L., Bai S., Yang H., Hu Z.-D. Stability of immobilized Rhizopus oryzae in repetitive batch productions of L (+)-Iactic acid: effect of inorganic salts. // Bioprocess Eng. 1998. V.19. № 2. P.155−157.
- Hamamci H., Ryu D.D.Y. Production of L (+)-lactic acid using immobilized Rhizopus oryzae. //Appl. Biochem. Biotech. 1994. V.44. № 2. P.125-I33.
- Xuemei L., Jianping L., Mo’e L., Peilin C. L (+)-Lactic acid production using immobilized Rhizopus oryzae in a three-phase fluidized-bed with simultaneous product separation by electrodialysis. //Bioprocess Eng. 1999. V.20. № 3. P.231−237.
- Sharma R., Chisti Y., Baneijee U.C. Production, purification, characterization, and applications of lipases. // Biotechnol. Adv. 2001. V.19. P.627−662.
- Ban К., Наша S., Nishizuka K., Kaieda M., Matsumoto Т., Kondo A., Noda H., Fukuda H. Repeated use of whole-cell biocatalysts immobilized within biomass support particles for biodiesel fuel production. // J. Mol. Catal. B-Enzym. 2002. V.17. P.157−165.
- Villeneuve P., Muderhwa J. M., Graille J., Haas M.J. Customizing lipases for biocatalysis: a survey of chemical, physical and molecular biological approaches. // J. Mol. Catal. B-Enzym. 2000. V.9. P. l 13−148.
- Васильев B.A., Добрынина А. Ф., Файзуллина Г. Г., Барабанов В. П. Интенсификация процесса очистки сточных вод мехперерабатывающих производств. // Хим. Пром. 2003. Т.80. № 7. С.33−38.
- Laufenberg G., Kunz В., Nustroem М. Tansformation of vegetable waste into value added products: (A) the upgrading concept- (B) practical implementations. // Bioresourse Technol. 2003. V.87.1 2. P.167−198.
- Рекомендуемые уровни потребления пищевых и биологически активных веществ. // Метод, рекомендации MP 2.3.1.1915−04. Под ред. Тутельяна В. А. Оренбург: Изд. РИК ГОУ ОГУ. 2004.18с.
- Грачева И.М., Кривова А. Ю. Технология ферментных препаратов. // М.: Изд. Элевар. 2000. 348с.
- Winkler F.K., D’Arcy A., Hunziker W. Structure of human pancreatic lipase. // Nature. 1990. V.343. P.771−774.
- Tilbeurgh H., Sarda L., Verger R., Cambillau C. Structure of the pancreatic lipase-procolipase complex. //Nature. 1992. V.359. P.159−162.
- Павленко И.М. Липазы в системе обращенных мицелл: роль межфазной поверхности в регуляции липолитической активности ферментов. // Дисс. на соиск. степени к.х.н. 2005. Москва. 184с.
- Razak C.N.A., Salleh А.В., Musani R., Samad M.Y., Basri M. Some characteristics of lipases from thermofilic fungi isolated from palm oil mill effluent. // J. Mol. Catal. B-Enzym. 1997. V.3. P.153−159.
- Halldorsson A., Magnusson C. D., Haraldsson G. G. Chemoenzymatic synthesis of structured triacylglycerols by highly regioselective acylation. // Tetrahedron. 2003. V.59. P.9101−9109.
- Yang H., Wang В., Cui F., Tan T. Production of lipase by repeated batch fermentation with immobilized Rhizopus arrhizus. II Process Biochem. 2005. V.40.1.6. P.2095−2103.
- Oda M., Kaieda M., Hama S., Yamaji H., Kondo A., Izumoto E., Fukuda H. Facilitatory effect of immobilized lipase-producing Rhizopus oryzae cells on acyl migration in biodiesel-fuel production. // Biochem. Eng. J. 2005. V.23.1.1. P.45−51.
- Saxena R.K., Davidson W.S., Seoran A., Giri B. Purification and characterization of an alkaline thermostable lipase from Aspergillus carneus. // Process Biochem. 2003. V.39. 1.2. P.239−247.
- Melo L.L.M.M., Pastore G.M., Macedo G.A. Optimized synthesis of citronellyl flavour esters using free and immobilized lipase from Rhizopus sp. // Process Biochem. 2005. V.40. 1.10. P.3181−3185.
- Tan Т., Yin C. The mechanism and kinetic model for glycerolysis by 1.3 position specific lipase from Rhizopus arrhizus. И Biochem. Eng. J. 2005. V.25.1.1. P.39−45.
- Hiol A., Jonzo M.D., Rugani N., Druet D., Sarda L., Comeau L.C. Purification and characterization of an extracellular lipase from a thermofilic Rhizopus oryzae strain isolated from palm fruit. // Enzyme Microb. Tech. 2000. V.26. P.421−430.
- Holzwarth H., Pleiss J., Schmid R. D. Computer-aided modelling of stereoselective triglyceride hydrolysis catalized by Rhizopus oryzae lipase. // J. Mol. Catal. B-Enzym. 1997. V.3. P .73−82.
- Derevenda U., Swenson L., Green R., Wei Y., Dodson G.G., Yamaguchi S., Haas M.J., Derevenda Z.S. An unusual buried polar cluster in a family of fungal lipases. // Nat. Struct. Biol. 1994. V.l. P.36−47.
- Balcao V.M., Malcata F.X. Interesterification and acidolysis of butterfat with oleic acid by Mucor javanicus lipase: Changes in the pool of fatty acid residues. // Enzyme Microb. Tech. 1998. V.22.1.6. P.511−519.
- Shimada Y., Sugihara A., Nakano H., Nagao Т., Suenaga M., Nakai S., Tominaga Y. Fatty ф acid specificity of Rhizopus delemar lipase in acidolysis. // J. Ferment. Bioeng. 1997. V.83.14. P.321−327.
- Beer H. D., Wohlfahrt G., McCarthy J.M., Schomburg D., Schmid R.D. Analysis of the ц catalytic mechanism of a fungal lipase using computer-aided design and structural mutant. //
- Protein Eng. 1996. V.9. P.507−517.
- Larsen M.D., Jensen K. The effects of environmental conditions oh the lipolytic activity of strains of Penicillium roqueforti. II Int. J. Food Microbiol. 1999. V.46.1.2. P.159−166.
- Mahadik N.D., Puntambekar U.S., Bastawde K.B., Khire J.M., Gokhale D.V. Production of acidic lipase by Aspergillus niger in solid state fermentation. // Process Biochem. 2002. V.38.1.5. P.715−721.
- Безбородое A.M., Астапович Н. И. Секреция ферментов у микроорганизмов. // М.: Изд. Наука. 1984. 60с.
- Ng Т.В. Peptides and proteins from fungi. // Peptides. 2004. V.25.1.6. P. 1055−1073.
- Abbas H., Hiol A., Deyris V., Comeau L. Isolation and characterization of an extracellular lipase from Mucor sp. strain isolated from palm fruit. // Enzyme Microb. Tech. 2002. V.31. 1.7. P.968−975.
- Рубан E.JI. Микробные липиды и липазы. // М.: Изд. Наука. 1977. 215с.
- Singh S, Kumar S, Chimni S.S. Kinetic resolution of beta- and gamma-hydroxy sulfides by fungal lipase from Humicola lanuginosa // Enantiomer. 2002. V.7.1.4−5. P.231 271.
- Elibol M., Ozer D. Lipase production by immobilised Rhizopus arrhizus. // Process Biochem. 2000. V.36.1.3. P.219−223.
- Yanf K., Wang Y-J. Lipase-catalyzed transesterification in aqueous medium under thermodynamic and kinetic control using carboxymethyl cellulose acetylation as the model reaction. // Enzyme Microb. Tech. 2004. V.35.1.2−3. P.223−231.
- Феофилова Е.П. Клеточная стенка грибов. // М.: Изд. Наука. 1983. 53с.
- Мирзаев Т.Ш., Саттаров A.C., Давранов К. Д. Получение и применение иммобилизованных клеток гриба Mucor miehei. // Химия природных соединений. 2000. № 4. С.329−330.
- Chen J., Wang. J. Wax ester synthesis by lipase-catalyzed esterification with fungal cells immobilized on cellulose biomass support particles. // Enzyme Microb. Tech. 1997. V.20. 1.3. P.615−622.
- Prabhakar E., Ramakrishna Т., Adinarayana T. Production of lipase by immobilized cells of Aspergillus niger. II Process Biochem. 2004. № 39. P.525−528.
- Паронян B.X., Кафиев H.M., Мазняк Ф. И., Чекмарева И. Б. Технология жиров и жирозаменителей. // М.: Изд. Легкая промышленность. 1982. 352с.
- Huska J., Toth D., Zavadska I. Immobilized cells for waste-water treatment. // Biologicke listy. 1997. V.62.1.4. P.265−284.
- Кошкина Л.Ю., Сироткин Ф. С., Куликов Ю. М., Набаткин А. Н., Важарова Т. А., Шагинурова Г. И. Комплексная технология очистки промышленных сточных вод, содержащих жиры и СПАВ. // Хим. пром. 2001. № 7. С.5−8.
- Методические разработки к практикуму по коллоидной химии. // под ред. Перцова А. В. 6-ое изд. М.: Изд. МГУ. 1999. 248с.
- Руководство к практическим занятиям по микробиологии. // под ред. Егорова Н. С. М.: Изд. МГУ. 1995. 224с.
- Дементьева Е.И., Кутузова Г. Д., Люндовщих И. А., Угарова Н. Н. реагент для определения аденозин-5'-трифосфата. // Патент РФ на изобретение № 2 164 241.2001.
- Лабораторный практикум для студентов специальности 1015. Энзимология. МТИПП. //М.: Типография Внешторгиздата. 1973. 169с.
- Hooijmans С.М., Veenstra S., Lubberding H.J. Int. Course in anaerobic waste water treatment. // Ed. G. bettings. Deltf.:Agricultural University. Wageningen (Holland). 1990. P.44.
- Остерман Л.А. Методы исследования белков и нуклеиновых кислот. // М.: Изд. МЦНМО. 2002.247с.
- Кочетов Г. А. Практическое руководство по энзимологии. // М.: Изд. Высшая школа. 1980. 272с.
- Bradford М. A rapid and sensitive method for the quantitation of microorganisms qualities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. // Anal. Biochem. 1976. V.72. № 1. P.248−254.
- Guobin S., Jianmin X., Chen G., Huizhou L., Jiayong C. Biodesulftirization using Pseudomonas delafieldii in magnetic polyvinyl alcohol beads. // Lett. Appl. Microbiol. 2005. V.40.1.l.P.30−36.
- Перт С.Дж. Основы культивирования микроорганизмов и клеток. // М.: Изд. Мир. 1978. 332с.
- Hujanen М., Linko Y.-Y. Effect of temperature and various nitrogen sources on L (+)-lactic acid production by Lactobacillus casei. I I Appl. Microbiol. Biotechnol. 1996. V.45. P.307−313.
- Kwon Y.J., Kaul R., Mattiasson B. Extractive lactic acid fermentation in poly (ethy!eneimine)-based aqueous system. //Biotechnol. Bioeng. 1996. V.50. P.280−290.
- Viscroy T.B.V., Blanch H.W., Wilke C.R. Lactic acid production by Lactobacillus delbrueckii in a hollow fiber fermenter. // Biotechnol. Lett. 1982. V.4 P.483−488.
- Yoo I.-K., Seong G. H., Chang H. N., Park J. K. Encapsulation of Lactobacillus casei cells in liquid-core alginate capsules for lactic acid production. // Enzyme Microb. Tech. 1996. V.9. P.428−433.
- Senthuran A., Senthuran V., Hatti-Kaul R., Mattiasson B. Lactic acid fermentation in a recycle batch reactor using immobilized Lactobacillus casei. I I Biotechnol. Bioeng. 1997. V.55. P.841−853.
- Кривова А.Ю. Технология микробных ферментных препаратов, осуществляющих трансформацию липидов. // Дисс. на соиск. степени д.т.н. 1995. Москва. 223с.
- Cochet N., Tyagi R.D., Ghose Т.К., Lebeault J.M. ATP measurment for cellulase production control. // Biotechnol. Lett. 1984. V.6. № 3. P.155−160.
- Wakelin N.G., Forster C.F. An investigation into microbial removal of fats, oils and greases.// Bioresource Technology. 1997. V.59. P.37−43.
- Goulibaly L., Gourene G., Agathos N.S. Utilization of fungi for biotreatment of raw wastewaters. // Afr. J. Biotechnol. 2003. V.2.1.12. P.620−630.