Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Экспрессия рибосомных цистронов и кариотипическая нестабильность клеток животных при воздействии факторов внешней среды

Диссертация: Экспрессия рибосомных цистронов и кариотипическая нестабильность клеток животных при воздействии факторов внешней среды
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Существуют механизмы, которые защищают клетку от вредного действия мутаций на уровне генома, одним из таких механизмов является полиплоидия, а также существенное нарастание частоты аберраций стабильного типа. Это является вполне закономерным результатом естественной селекции в пользу аберраций стабильного типа (атипичные хромосомы — транслокации и инверсии), которые не сопряжены с потерей… Читать ещё >

Содержание

  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Морфологические аномалии ядер интерфазных клеток
    • 1. 2. Морфология ядрышек и функциональная природа ядрышек и ядрышкообразующих районов хромосом
    • 1. 3. Биологические и экологические аспекты действия комбинированных электромагнитных излучений
  • 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
  • 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 3. 1. Характеристики цитологических показателей
    • 3. 2. Морфологические аномалии ядер в экспериментах по экологическому мониторингу
      • 3. 2. 1. Частоты встречаемости аномалий ядер лимфоцитов in vitro в эксперименте с применением цитокинетического блока
      • 3. 2. 2. Сравнительный анализ частот аномальных ядер клеток периферической крови in vivo у рыб
    • 3. 3. Количественный анализ фибриллярных центров в мононуклеарных клетках периферической крови крупного рогатого скота
    • 3. 4. Цитологические эффекты при облучении электромагнитными волнами гектагерцового диапазона
      • 3. 4. 1. Сравнительный анализ соотношения клеток периферической крови крыс, облученных электромагнитным излучением гектагерцового диапазона
      • 3. 4. 2. Сравнительный анализ миелограмм крыс, облученных электромагнитным излучением гектагерцового диапазона
      • 3. 4. 3. Сравнительный анализ индексов фибриллярных центров и ядрышек в мононуклеарах костного мозга и сперматоцитах между группами облученных крыс
      • 3. 4. 4. Сравнительный анализ частот встречаемости аномалий ядер сперматоцитов in vivo после облучения электромагнитным полем в гектагерцовом диапазоне
  • 4. ОБСУЖДЕНИЕ
  • ВЫВОДЫ
  • ПРЕДЛОЖЕНИЯ ПРОИЗВОДСТВУ
  • БИБЛИОГРАФИЧЕСКИЙ УКАЗАТЕЛ
  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ ДНК — дезоксирибонуклеиновая кислота р-РНК — рибонуклеиновая кислота с копией рибосомных генов
  • РИД — реакция иммунодиффузии
  • ЧЛМ — частота лимфоцитов с микроядрами
  • ЧЭХв — частота эритроцитов с хвостатыми ядрами
  • ЧЭМ — частота эритроцитов с микроядрами
  • РЦ — рибосомный цистрон
  • ФЦ — фибриллярный центр
  • ПФК — плотный фибриллярный компонент
  • ГК — гранулярный компонент
  • ЭМП — электромагнитное поле
  • ЯОР — район ядрышкового организатора

Экспрессия рибосомных цистронов и кариотипическая нестабильность клеток животных при воздействии факторов внешней среды (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность темы

В связи с антропогенным давлением на окружающую среду существует необходимость внедрения в практику экологических тестов, направленных на определение влияния внешних факторов на геном животных. В настоящее время проблема устойчивости генома живых организмов при действии различных факторов внешней среды является интенсивно изучаемой и широко обсуждаемой в научных кругах. Основная концепция генетики и молекулярной биологии заключается в том, что все наследственные признаки передаются через ДНК. Дезоксирибонуклеино-вая кислота является довольно устойчивой и стабильной молекулой, но при определенных условиях она может модифицироваться. Такие внешние физические факторы, как ионизирующая радиация, химические мутагены, вирусы вызывают изменения генетического материала. Накопление мутаций часто приводит к повышению нестабильности генотипа. Полагают, что возникновение нестабильности генома сопряжено с наличием ошибок в клетках в период репарационного восстановления так называемых двунитевых разрывов ДНК (Бочков, 1972). Неправильная репарация приводит к появлению клеток с фенотипом, характерным для злокачественных клеток. Таким образом, разрывы ДНК являются первым шагом формирования хромосомных аберраций. Визуальным проявлением аберраций летального типа может служить формирование микроядер. По мнению Fenech с коллегами (1997), возросшая частота микроядер может отражать общую нестабильность генома, что позволяет использовать этот параметр для широкомасштабного мониторинга популяций в условиях с меняющимся техногенным давлением. В настоящее время можно считать общепризнанным тот факт, что формирующаяся генетическая нестабильность, ведет не только к новообразованиям, но может быть также ответственна и за ряд ее отдаленных феноменов, реализующихся на организменном уровне. Так, известно, что уровень хромосомных аберраций в облученных лимфоцитах детей, родители которых подверглись противоопухолевой радиоили химиотерапии, был существенно выше, чем в контрольной группе (Бочков, 1989).

В связи с этим возникает потребность в проведении исследований, направленных на как можно раннее выявление геномной, и в частности хромосомной нестабильности, с диагностической и прогностической целью.

Существуют механизмы, которые защищают клетку от вредного действия мутаций на уровне генома, одним из таких механизмов является полиплоидия, а также существенное нарастание частоты аберраций стабильного типа. Это является вполне закономерным результатом естественной селекции в пользу аберраций стабильного типа (атипичные хромосомы — транслокации и инверсии), которые не сопряжены с потерей генетического материала и, следовательно, не являются столь гибельными для клетки. Дело в том, что в полиплоидных клетках, когда ген представлен многими копиями, поражение одной из копий ни к каким особым генетическим последствиям не приведет, поскольку зачастую мутантные аллели рецессивны, а нормальная аллель гена доминантна.

Так как приобретение новых свойств клетками, является, по сути многостадийным процессом, исследования нестабильности генома связаны с изучением процессов, приводящих клетку к трансформации на стадиях «от ДНК к белку» то есть процессов транскрипции и трансляции.

Контроль состояния механизмов, обеспечивающих стабильность функционирования генома, представляется нам важным. Для оценки степени полиплоидии клеток очень удобным является метод, выявляющий рибосомные цистроны (Howell, Black, 1979).

По данным Н. Н. Мамаева (1998) форма и число ядрышек является важнейшей характеристикой направления и уровня диффе-ренцировки клеток, а также их функционального состояния. С использованием метода серебрения рибосомных цистронов открывается возможность количественной оценки уровня транскрипции прерибосомной РНК в каждой ядросодержащей клетке. Доказана прямая зависимость числа рибосомных цистронов от пролифера-тивного статуса клеток, направления их дифференцировки и степени полиплоидизации ядра (Crocker, 1999).

В своих исследованиях мы использовали простые, но хорошо зарекомендовавшие себя методы: микроядерный тест и выявление рибосомных цистронов. Несмотря на то, что имеется масса различных опытных данных, часто противоречащих друг другу, эти методы являются довольно точными и наиболее приемлемыми как экспресс-тесты in vivo.

Цели и задачи настоящей работы. Целью работы является выявление изменений кариотипической нестабильности клеток и экспрессии рибосомных цистронов при воздействии факторов внешней среды на различных биологических объектах.

Были поставлены следующие задачи: 1. Определить адекватность показателя «индекс фибриллярных центров» на препаратах периферической крови коров in vivo с целью дальнейшего использования методики в прогностических исследованиях на больших популяциях сельскохозяйственных животных;

2. Исследовать частоту лимфоцитов с микроядрами при использовании цитокинетического блока в различных популяциях крупного рогатого скота;

3. Изучить частоту встречаемости эритробластов и их предшественников на препаратах костного мозга in vivo крыс, подвергшихся облучению электромагнитным излучением низкой мощности;

4. Исследовать величину «индекса фибриллярных центров» в клетках периферической крови, костного мозга и семенников крыс под действием электромагнитного излучения низкой мощности.

Научная новизна.

Впервые показано увеличение показателя «индекс фибриллярных центров» у РИДположительных на лейкоз коров.

Показано отсутствие структурных нарушений генома при слабом электромагнитном облучении крыс, и отмечено изменение экспрессии рибосомных цистронов в зависимости от мощности и частоты излучения.

Определены фоновые показатели частоты клеток крови с «хвостатыми ядрами» и микроядрами у карповых и осетровых рыб Каспийского бассейна.

Теоретическая и практическая значимость работы.

Выявлена зависимость экспрессии рибосомных цистронов от мощности и частоты электромагнитного облучения при отсутствии выраженной кариотипической нестабильности. Установлена возможность использования показателя индекс фибриллярных центров для применения во вспомогательной диагностике лейкоза коров.

Апробация работы. Материалы диссертационной работы представлены на конференцях «Роль молодых ученых в развитии АПК Северо-Запада РФ» (Санкт-Петербург, 1999), «Актуальные проблемы биологии в животноводстве"(Боровск, 2000), «Актуаль9 ные проблемы ветеринарной науки» (Москва, 1999) и на отчетных сессиях аспирантов ГНУ ВНИИГРЖ в 1999;2001 гг. Положения, выносимые на защиту.

Влияние электромагнитного облучения низкой мощности в гектагерцовом диапазоне на индекс фибриллярных центров и кариотипическую нестабильность клеток периферической крови, костного мозга и семенников крыс.

Связь положительной реакцией на РИД крупного рогатого скота и увеличения индекса фибриллярных центров.

Фоновая кариотипическая нестабильность двух видов рыб различного пола и возраста.

выводы.

1. Выявлены достоверные межполовые различия по частоте лимфоцитов с микроядрами у крупного рогатого скота после цитокинетического блока.

2. Спонтанная частота эритроцитов с микроядрами в популяциях карповых рыб Каспийского бассейна составила 1,22%, в популяциях осетровых рыб — 1,45%. Определены фоновые частоты встречаемости «хвостатых» ядер у карповых (0,27%) и у осетровых (0,23%) рыб. Выявлены достоверные межполовые различия по частоте эритроцитов с микроядрами в выборке осетровых рыб.

3. В группе РИД-положительных коров обнаружено достоверно увеличение индекса фибриллярных центров в лимфоцитах in vivo.

4. При электромагнитном облучении в периферической крови подопытных крыс показано достоверное повышение содержания лимфоцитов и моноцитов.

5. Выявлено снижение в костном мозге содержания эозинофилов и нейтрофилов и, наоборот повышение содержания гемогистобластов, метамиелоцитов, лимфоцитов и нормобластов.

6. Установлено, что при воздействии электромагнитными волнами на крыс в мононуклеарах костного мозга изменялись значения индекса ядрышек и фибриллярных центров, при этом в двух режимах отмечено увеличение индекса фибриллярных центров, в других — снижение по сравнению с нормой.

Показать весь текст

Список литературы

  1. И.А. Цитофизиология и патология митоза.//М.: Медицина, 1972-С.45−78.
  2. С.Г., Эйдельман Ю. И. Подходы к предсказанию пространственной структуры интерфазных хромосом на основе статистической физики полимеров. //Радиац.Биол. Радиоэкол.- 2001. Сент.-окт.- 41(5) С.469−74.
  3. В.Н., Жукова О. В., Вениашвили Д. Ш., Менабдзе М. З., Гупта Д. Эффект светового режима и электромагнитных полей на карциногенез молочной железы у крыс. // Биофизика. -1996. Июл.-авг. — 41(4) — С.807−14.
  4. ., Брей Д., Льюис Дж., Рэфф М., Роберте К., Уотсон Дж. Основные генетические механизмы //Молекулярная биология клетки, М: Мир, 1994.- Т.2, С.7−51.
  5. А.Д. Структурно-функциональные изменения в организмепри воздействии техногенных вращающихся и переменных электрических полей и механизмы их возникновения: Автореф канд дис./ Новосибирск: Изд-воНТУ, 1999, 23 с.
  6. К.Р., Счастный С. А., Щукин С. И., Рослый И. М., Зубенко В. Г., Семикин Г. И., Морозов А. А. Механизм действия электромагнитных полей на организм человека. //- Вестник РАМН.- 1996.-Т.5, С.51−4.
  7. A.M., Жулев В. И., Кураев Г. А., Пропшн Е. М. Системы комплексной электромагнитной терапии.- М: Лаборатория Базовых Знаний, 2000, С. 13−34.
  8. Н.В., Тимченко О. И. К механизму цитогенетического действия электромагнитного излучения: роль окислительного гомеостаза // Радиац. биология. Радиоэкология. 2000. — Т.40, N 2. — С.149−153.
  9. Е.Б. Достоинства и недостатки некоторых представлений о механизмах действия низкоинтенсивных факторов на биосистемы.// Мат-лы II межд. конгресса Слаб, и сверхслаб, поля и излучения в биологии и медицине. -СПб-2000-С.5.
  10. Ю.Босток К., Самнер Э. Интерфазное ядро// Хромосома эукариотической клетки. -М. Мир 1978 С.208−63.
  11. Н.П., Демин Ю. С., Лучник Н. В. Классификация и методы учета хромосомных аберраций в соматических клетках.// Генетика, — 1972, — 8, № 5, С.133−41.
  12. Н.П., Чеботарев А. Н. Наследственность человека и мутагены внешней среды. М: Медицина -1989. С. 172−196.
  13. А.Б., Чемерис Н. К. Модельный подход к анализу действия модулированного электромагнитного излучения на клетки животных // Биофизика. 2000. — Т.45 — Вып.2. — С.299−312.
  14. П.П. Волновой геном. М.: Общественная польза. 1994 — С.23−36.
  15. А.С. ЭМП и живая природа, М: 1968. С.15−34.
  16. Ю.П., Гичев Ю. Ю. Влияние электромагнитных полей на здоровье человека: Аналитич. обзор / Сер. Экол. Вып. 52. Новосибирск: ГПНТБ СО РАН — 1999. С.67−81.
  17. О.А. Электромагнитные поля и здоровье человека.Состояние проблемы. // Энергия, — 1999.-№ 5 С. 18.
  18. Ю.Г. Отдаленные последствия биологического действия электромагнитных полей // Радиац. биология. Радиоэкология. 2000. — Т.40 -N2.-С.217−225.
  19. С.Н., Родионов Б. Н. Возможные последствия воздействия низкоэнергетического электромагнитного излучения на генетический аппарат живой клетки // Вестн. нов. мед. технол. 1999, — Т.6 — N 1. — С.40−42.
  20. С.Ю., Стефанова В.Н.
  21. С.Ю. Структура хроматина и хромосом на препаратах дериватов интерфазных ядер после удаления ядерной мембраны. / Структура хроматина, ассоциации хромосом в растянутых безмембранных ядрах и митотические структуры.//Цитология.-1999.-41(1) С.66−86.
  22. Н.П., Немцева JI.C. Механизм образования кольцевых хромосом и соматический кроссинговер.// Генетика.- 1970.-6-№ 9 — С.67−80.
  23. Н.Н., Ильинских И. Н., Бочаров Е. Ф. Цитогенетический гомеостаз и иммунитет. Новосибирск: Наука, 1986. 115 с.
  24. Н.Н., Новицкий В. В., Ванчугова Н. Н. Микроядерный анализ и цитогенетическая нестабильность. Томск, 1992. С.45−97.
  25. А.Г., Иванов В. Л., Козьмин Г. В., Козлов В. А. Биологические и экологические аспекты действия комбинированных электромагнитных излучений (ЭМИ) на сельскохозяйственных животных. // Радиац. биология. Радиоэкология. 1999. — Т.39 — N 5. — С.583−587.
  26. Н.А., Сергиевич JI.A., Квакина Е. Б. Исследование функционального состояния синтетического аппарата лимфоцитов крови при действии слабых низкочастотных магнитных полей / // Биофизика. 2000. -Т.45, — Вып. 4. — С.716−722.
  27. А.Ф. Механизм энергоинформационного воздействия ЭМИ малой интенсивности // Проблемы электромагнитной безопасности человека: Тез. докл. 1 Рос. конф. М. 1996. С.45−48.
  28. Д. Районы ядрышкового организатора и фибриллярные центры. /Молекулярная клиническая диагностика: Методы (под ред.С.Херрингтон и Дж. Макги) М: Мир -1999. — С.261−79.
  29. Н.Н. Нейрофизиологические механизмы биологического действия низкоинтенсивных электромагнитных полей // Радиотехника. 1997. — N 4. -С.62−66.
  30. В.М., Андрейчук Т. Н., Кару Т. И., Челидзе П. В., Зеленин А. В. Активация транскрипционной функции в лимфоцитах после облучения гелий-неоновым лазером. // Мол. Биол. 1990. — Июл-Авг -24(4) — С. 1067−75.
  31. Н.Н. Использование метода серебрения цистронов рибосомной РНК интерфазных клеток для количественной оценки гемопоэза при заболеваниях крови./ СПГМУ, С.-П. 1998 11 с.
  32. Р.Г. Электромагнитный мониторинг // Вестник МЭИ. 1997. -N 1. — С.51−55.
  33. Г. Ф. /механизмы действия низкоэнергетических магнитных полей./ Основные закономерности низкочастотной электромагнитобиологии,-Томск: Изд-во Томск. Унив-та 1990. С.76−99.
  34. Прокофьева-Бельговская А. А. Радиационные поражения хромосом на ранних стадиях развития лосося. // Цитология, — 1961.-Т.З № 4. С.437−45.
  35. С.Н., Кравцов В. Ю., Ольнев М. Г., Яковлев А. Ф., Бахтин Ю. Б. Хромосомные мосты и «хвостатые» ядра в популяциях злокачественных клеток.// Генетика.-1998.-Т.34(1) -с.61−4.
  36. С.Н., Гаврилов Б. А., Косякова Г. П., Яковлев А. Ф. Исследование частоты микроядер лимфоцитов крупного рогатого скота с использованием цитокинетического блока. // Доклады РАСХН, № 6, 2000, С. 37.
  37. С.Н., Гаврилов Б. А., Старожилова Т. П., Яковлев А. Ф. Увеличение активности рибосомных цистронов лимфоцитов периферическрй крови крупного рогатого скота при лейкозе.// Ветеринария, 2001, № 2, С.25−27.
  38. В.И. Феномен теломерного слияния хромосом в клетках с микроядрами и его возможное объяснение. / Хромосомы человека в норме и патологии.-мат-лы конф., М. 1989. С. 95−100.
  39. Е.В., Кравцов В. Ю., Федорцева Р. Ф. Аномалии интерфазных ядер лимфоцитов в периферической крови у ликвидаторов последствий аварии на ЧАЭС./ Вопросы трансфузиологии и клинической медицины./ Матер.науч.конф. мол.уч. -1996. С. 46.
  40. М.В., Кравцов В. Ю., Старожилова Т. П., Яковлев А. Ф. Аномалии ядер лимфоцитов у больных лейкозом коров.// Доклады РАСХН, — 1996.-№ 4 -С.48−49.
  41. А.Б. О биологическом действии сверхнизкочастотных магнитных полей: резонансные механизмы и их реализация в клетках.// Биофизика. 2000. -Т.45. Вып.5. — С.888−893.
  42. Ю.А. Организм и магнитные поля. // Успехи физиол. наук. 1982.-Т.13 № 2. — С.48−64.
  43. Ю.А., Шишло МА Электромагнитные поля в нейрофизиологии. -М: Наука, 1979,-С.111−116.
  44. Шишло М. А О биотропных параметрах магнитных полей. // Вопросы курортологии и физиотерапии. 1981.-№ 3. — С.61−63.
  45. У.Р. Частотные и энергетические окна при воздействии слабых электромагнитных полей на живую ткань.// Труды инженеров ин-та по электротехнике и радиоэлектронике, — 1980.-Т.68 № 1 С. 140−48.
  46. Ager DD, Radul JA. Effect of 60-Hz magnetic fields on ultraviolet light-induced mutation and mitotic recombination in Saccharomyces cerevisiae. //Mutat Res.-1992.- Dec. V. 283(4).-p. 279−86.
  47. A1-Sabti K, Metcalfe CD. Fish micronuclei for assessing genotoxicity in water. // Mutat. Res.- 1995. Jun. — 343(2−3) — p. 121−35.
  48. Anderson L.E. Biological effects of extremely low-frequency electromagnetic fields: in vivo studies. //Am. Ind. Hyg. Assoc. J. 1993. Apr. — 54(4) — p. 186−96.
  49. Bateman E, Paule MR. Regulation of eukaryotic ribosomal RNA transcription by RNA polymerase modification.// Cell. 1986. Nov 7. — 47(3). — p. 445−50.
  50. Bauchinger M, Schmid E, Braselman H. Cell survival and radiation induced chromosome aberrations. II Experimental findings in human lymphocytes analysed in first and second post-irradiation metaphases. //Radiat.Environ.Biophys. 1986. -V.25- p.253−60.
  51. Boorman G.A. EMF working group. // Environ Health Perspect. 1998. Dec. -106(12)-A584.
  52. Brechard MP, Hartung M, de Lanversin A, Cau P, Stahl A. Localization of r-DNA transcription sites in nucleoli of human Sertoli cells: An EM quantative autoradiographic study using Н-3-uridine. // Biol. Cell. 1994. -81- p.247−56.
  53. Brenner SL, Liaw L-H, Berns MW. Laser microirradiation of kinetochores in mitotic PtK2 cells: chromatid separation and micronucleus formation. //Cell Biophys. 1980. — V.2, p.139−52.
  54. Busch H. Nucleolar and nucleolonemal proteins of cancer cells.// J. Tumor Marker Oncol. 1997. — 12 — p.5−68.
  55. Buttgereit D, Pflugfelder G, Grummt I. Growth-dependent regulation of rRNA synthesis is mediated by a transcription initiation factor (TIF-IA). //Nucleic Acids Res. 1985. Nov. 25. — 13(22) — p.8165−80.
  56. Cadossi R, Bersani F, Cossarizza A, Zucchini P, Emilia G, Torelli G, Franceschi C. Lymphocytes and low-frequency electromagnetic fields. // FASEB J. 1992 Jun. -6(9)-p. 2667−74.
  57. Cantoni O, Sestili P, Cattabeni F. Randomly distributed DNA single strand breaks are not lethal for mammalian cells. //Xenobiotica. -1988. Dec. -18(12) p. 1481−7.
  58. Claussen U, Mazur A, Rubtsov N. Chromosomes are highly elastic and can be stretched. //Cytogen.Cell Genet. 1994.-V.66. — p. 120−25.
  59. Cohen MM, Kunska A, Astemborski JA, McCulloch D.
  60. The effect of low-level 60-Hz electromagnetic fields on human lymphoid cells. П. Sister-chromatid exchanges in peripheral lymphocytes and lymphoblastoid cell lines. //Mutat. Res.-1986. Nov. -172(2) — p. 177−84.
  61. Cohen MM, Kunska A, Astemborski JA, McCulloch D, Paskewitz
  62. DA. Effect of low-level, 60-Hz electromagnetic fields on human lymphoid cells: I. Mitotic rate and chromosome breakage in human peripheral lymphocytes. //Bioelectromagnetics. -1986. 7(4) — p. 415−23.
  63. Cooper W. Hypothesis on a casual link between EMF and an evolutionary class of cancer and spontaneous abortion. // Cancer Biochem. Biophys. 1996. — Apr.-V.15(3) — p. 151−70.
  64. Countryman PI, Heddle J.A. The production of micronuclei from chromosome aberrations in irradiated cultures of human lymphocytes.// -Mut.Res. -1976.-V.41 p.321−332.
  65. Dadoune JP, Siffroi JP, Alfonsi MF. Ultrastructural localization of r-DNA and r-RNA by in situ hybridization in the nucleolus of human spermatids. //Cell Tissue Res.-1994.-278-p. 611−16.
  66. Das ВС, Sharma T. The fate of X-ray-induced chromosome aberrations in blood lymphocyte culture. //Mut.Res.- 1987.-V.176. p. 93−104.
  67. Degrassi F, Tanzarella CA. A new assay for the detection of aneuploidy. // Mut. Res.- 1986.-203-p.339−45.
  68. Derenzini M, Trere D. Standardization of interphase Ag-NOR measurement by means of an automated image analysis system using lymphocytes as an internal control.// J. Pathol. 1991. Dec. -165(4) — p.337−42.
  69. Derenzini M. The AgNORs. //Micron. 2000. — 31.- p. 117−120.
  70. Dijkhuzen T, Vandenberg E, Molenaar WM, Menzelaar JJ, Dejong B. Rearrangements involving 12pl2 in two cases of cardiac myxoma. // Cancer Genet. Cytogen. 1995. — V.82(2). — p.161−62.
  71. Evans HJ, Neary GJ, Williamson FS. The relative biological efficiency of single doses of fast neutrons and gamma-rays on Vicia faba. Р. П Chromosome damage: the production of micronuclei. // Int.J.Radiat.Biol.- 1959.-V.3. p. 216−29.
  72. Fairbairn DW, O’Neill KL. The effect of electromagnetic field exposure on the formation of DNA single strand breaks in human cells. //Cell Mol. Biol. (Noisy-le-grand) — 1994. Jun. — 40(4) — p. 561−7.
  73. Falistocco E, Torricelli R, Feretti D, Zerbini I, Zani C, Monarca S. Enhancement of micronuclei frequency in the Tradescantia micronuclei test using a long recovery time. // Hereditas. 2000. — 133(2) — p. 171−4.
  74. Fam WZ, Mikhail EL. Lymphoma induced in mice chronically exposed to very strong low-frequency electromagnetic field. // Cancer Lett. 1996. — Aug. 2. — 105(2) -p. 257−69.
  75. Fenech M, Morly AA. Measurement of micronuclei in lymphocytes. // Mutat. Res.-1985. V.147. — p. 29−36.
  76. Feychting M, Ahlbom A. Magnetic fields and cancer in children residing near Swedish high-voltage power lines. // Am. J. Epidemiol. 1993. Oct. 1. — 138(7)-p.467−81.
  77. Feychting M. Occupational exposure to electromagnetic fields and adult leukaemia: a review of the epidemiological evidence. //Radiat. Environ. Biophys.-1996.-Nov. 35(4) — p. 237−42.
  78. Fiorani M, Cantoni O, Sestili P, Conti R, Nicolini P, Vetrano F, Dacha M. Electric and/or magnetic field effects on DNA structure and function in cultured human cells.//Mutat. Res. 1992. — May. — 282(1) — p.25−9.
  79. Fitzsimmons RJ, Strong DD, Mohan S, Baylink D. Low-amplitude, low-frequency electric field-stimulated bone cell proliferation may in part be mediated by increased IGF-II release. // J Cell Physiol. 1992 Jan. -150(1) — p. 84−9.
  80. Frazier ME, Reese JA, Morris JE, Jostes RF, Miller DL. Exposure of mammalian cells to 60-Hz magnetic or electric fields: analysis of DNA repair of induced, single-strand breaks. // Bioelectromagnetics. 1990. 11(3) — p.229−34.
  81. French PW, Penny R, Laurence JA, McKenzie DR. Mobile phones, heat shock proteins and cancer. // Differentiation. 2001. Jun. — 67(4−5) — p. 93−7.
  82. Friedman MA, Staub J. Induction of micronuclei in mouse and hamster bone marrow by chemical carcinogens. // Mut. Res. 1977. — V.43. — p. 255−62.
  83. Goodman R, Bumann J, Wei L-X, Shirley-Henderson A. The sensitivity of the myc-promoter in mice? Irradiated with EMF. //Electro and Magnetobiology.- 1992. V.ll. p.19−28.
  84. Goodman R, Weisbrot D, Uluc A, Henderson A. Transcription in Drosophila melanogaster salivary gland cells is altered following exposure to low-frequency electromagnetic fields: analysis of chromosome 3R. //Bioelectromagnetics. 1992.-13(2)-p. 111−8.
  85. Goodman R, Wei LX, Xu JC, Henderson A. Exposure of human cells to low-frequency electromagnetic fields results in quantitative changes in transcripts. //Biochim. Biophys. Acta. 1989. — Dec. 22. — 1009(3) — p. 216−20.
  86. Goodman R, Henderson AS. Sine waves enhance cellular transcription. //Bioelectromagnetics.- 1986. V.7. p. 23−29.
  87. Goodman R, Blank M. Magnetic field stress induces expression of hsp 70. II Cell Stress Chaperones. 1998. — V.3. — p. 79−88.
  88. Gold S, Goodman R, Shirley-Henderson A. Exposure of simian virus-40-transformed human cells to magnetic fields results in increased levels of T-antigen mRNA and protein. // Bioelectromagnetics. 1994. 15(4) p. 329−36.
  89. Gokal PK, Mahajan PB, Thompson EA. Hormonal regulation of transcription of rDNA. Formation of initiated complexes by RNA polymerase I in vitro. // J. Biol. Chem.-1990. Sep 25. 265(27) — p. 16 234−43.
  90. Goessens G, Thiry M, Lepoint A. In Chromosomes today, Vol.9 (ed. A. Stahl, JM Lucini, AM Vagner-Capodano) Allen&Unwin. London. 1987. — p. 261−71.
  91. Geraud G, Laquerriere F, Masson C, Arnoult J, Labidi B, Hernandez-Verdun D. Three-dimensional organisation of micronuclei induced by colchicines in PtKl cells. // Exp. Cell Res. -1989. V.181. — p. 27−39.
  92. Ghosh S, Paweletz N. Synchronous DNA synthesis and mitosis in multinucleated cells with one chromosome in each nucleus. // Chromosoma. 1984. -V.89. — p. 304−11.
  93. Granick D. Nucleolar necklaces in chick embryo fibroblast cells. II. Microscope observations of the effect of adenosine analogues on nucleolar necklaces formation. // J. Cell Biol.- 1975.-65 p. 418−427.
  94. Galvanovskis J, Sandblom J, Bergqvist B, Gait S, Hamnerius Y. The influence of 50-Hz magnetic fields on cytoplasmic Ca2+ oscillations in human leukemia T-cells. //Sci. Total Environ. -1996. Feb. 2. — 180(1) — p.19−33.
  95. Heddle JA, Carrano AV. The DNA content of micronuclei induced in mouse bone marrow by gamma-radiation: evidence that micronuclei arise from acentric chromosomal fragments. // Mut.Res. -1977. V.44. — p. 63−9.
  96. Heddle JA, Cimino MC, Romagna F, Shelby MD, Tucker JD, Vanparys P, MacGregor JT. Micronuclei as an index of cytogenetic damage: past, present and future. //Environ.Mol.Mutagen. 1991. — V.18. — p. 277−91.
  97. Hernandez-Verdun D, Boitelle M, Ege T, Ringertz NR. Fine structure of micronucleated cells. //Exp.Cell Res.- 1979. V.124. — p. 223−35.
  98. Hiraoka M, Miyakoshi J, Li YP, Shung B, Takebe H, Abe M Induction of c-fos gene expression by exposure to a static magnetic field in HeLaS3 cells.// Cancer Res. 1992. Dec. 1. 52(23)-p. 6522−4.
  99. Hozak P, Zatsepina OV, Likovsky Z. In situ separation of nucleolar components by hypotonic treatment of cells. // Biol. Cell. 1990. — 68 — p. 167−70.
  100. Hozak P, Roussel P, Hernandez-Verdun D. Procedures for specific detection of silver-stained nucleolar proteins on Western blots. // J. Hystochem. Cytochem. -1992.-40.-p. 1089−96.
  101. Hozak P, Cook PR, Schoeffer C, Mosgoeller W, Wachtler F. Site of transcription of ribosomal RNA and intranucleolar structure in HeLa cells. // J. Cell Sci. 1994. — 107. — p. 639−48.
  102. Hsu TC, Spirito SE, Pardue ML. Distribution of 18+28S ribosomal genes in mammalian genomes. // Chromosoma. 1975. Nov. 20. — 53(1) — p.25−36.
  103. Hsu TG, Pathak S, Caillean R, Cowles RS. Nature of nuclear projections in an adenocarcinoma of the breast. //Lancet. 1974. — p.413−14.
  104. Ismael SJ, Callera F, Garcia AB, Baffa O, Falcao RP. Increased dexamethasone-induced apoptosis of thymocytes from mice exposed to long-term extremely low frequency magnetic fields. //Bioelectromagnetics. 1998. — 19(2) — p. 131−5.
  105. Jajte J.M. Programmed cell death as a biological function of electromagnetic fields at a frequency of (50/60 Hz). // Med. Pr.- 2000. 51(4). — p. 383−9.
  106. Jolly J. Recherches sur la formation des mammiferes. //Arch.Anat.Microscop. -1907.-V.9. p. 133−314.
  107. Jordan E.G. The nucleolus at Weimar. // Nature.- 1979.-V.281. p.529−30.
  108. Kalland KH, Szilvay AM, Langhoff E, Haukenes G. Subcellular distribution of human immunodeficiency virus type 1 Rev and colocalization of Rev with RNA splicing factors in a speckled pattern in the nucleoplasm. // J. Virol. 1994. — 68. — p. 1475−85.
  109. Karabakhtsian R, Broude N, Shalts N, Kochlatyi S, Goodman R, Henderson AS. Calcium is necessary in the cell response to EM fields. // FEBS Lett. -1994. 349. -p. 1−6.
  110. Katsir G, Baram SC, Parola AH Effect of sinusoidally varying magnetic fields on cell proliferation and adenosine deaminase specific activity.// Bioelectromagnetics. 1998. 19(1)-p. 46−52.
  111. Kavet R. EMF and current cancer concepts. // Bioelectromagnetics. 1996.-17(5)-p. 339−57.
  112. Kavet R, Stuchly MA, Bailey WH, Bracken TD. Evaluation of biological effects, dosimetric models, and exposure assessment related to ELF electric- and magnetic-field guidelines. //Appl. Occup. Environ. Hyg. 2001. Dec. 16(12) -p. 1118−38.
  113. Kerr JFR, Wyllie AH, Currie AR. Apoptosis: a basic biological phenomenon with wide-ranging implications in tissue kinetics. //Br.J.Cancer. 1972. — V.26. — p. 239−57.
  114. Khalil AM, Qassem W. Cytogenetic effects of pulsing electromagnetic field on human lymphocytes in vitro: chromosome aberrations, sister-chromatid exchanges and cell kinetics. //Mutat. Res.-1991.-Mar. -247(1) p. 141−6.
  115. Koana T, Okada MO, Takashima Y, Ikehata M, Miyakoshi J. Involvement of eddy currents in the mutagenicity of ELF magnetic fields. // Mutat. Res.- 2001. -May 9.-476(1−2)-p. 55−62.
  116. Komar A. Parthenogenetic development of mouse eggs activated by heat shock.// J. Reprod. Fertil. 1973, — V.35.- p. 437−43.
  117. Kramer J, Schaich-Walch G, Niisse M. DNA synthesis in radiation-induced micronuclei studied by bromodeoxyuridine (BrdUrd) labeling and anti-Brd-Urd antibodies. //Mutagenesis. 1990.-V.5. -№ 5. — p. 491−95.
  118. Kuhn A, Grummt I. Dual role of the nucleolar transcription factor UBF: trans-activator and antirepressor. // Proc. Natl. Acad.Sci. USA.- 1992. Aug. 15. -89(16) -p. 7340−4.
  119. Kuhn A, Stefanovsky V, Grummt I. The nucleolar transcription activator UBF relieves Ku antigen-mediated repression of mouse ribosomal gene transcription. // Nucleic Acids Res. 1993. May 11. — 21(9) — p. 2057−63.
  120. Lacy-Hulbert A, Wilkins RC, Hesketh TR, Metcalfe JC. No effect of 60 Hz electromagnetic fields on MYC or beta-actin expression in human leukemic cells. // Radiat. Res.-1995. -Oct. 144(1)-p. 9−17.
  121. Lagroye I, Poncy JL. The effect of 50 Hz electromagnetic fields on the formation of micronuclei in rodent cell lines exposed to gamma radiation. //Int. J. Radiat. Biol.-1997. -Aug. 72(2) — p. 249−54.
  122. Lai H, Singh NP. Acute exposure to a 60 Hz magnetic field increases DNA strand breaks in rat brain cells. // Bioelectromagnetics. 1997. 18(2) p. 156−65.
  123. Lai H, Singh NP. Melatonin and N-tert-butyl-alpha-phenylnitrone block 60-Hz magnetic field-induced DNA single and double strand breaks in rat brain cells. // J. Pineal Res. 1997. Apr. 22(3) — p. 152−62.
  124. Larson DE, Xie W, Glibetic M, O’Mahony D, Sells BH, Rothblum LI. Coordinated decreases in rRNA gene transcription factors and rRNA synthesis during muscle cell differentiation. // Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 1993. Sep. 1. — 90(17) -p. 7933−6.
  125. Larson DE, Zahradka P, Sells ВН. Control points in eucaryotic ribosome biogenesis. // Biochem. Cell Biol. 1991. Jan. 69(1) — p. 5−22.
  126. Le Panse S, Masson C, Heliot L, Chassery JM, Junera HR, Hernandez VD. 3-D organization of ribosomal transcription units after DRB inhibition of RNA polymerase II transcription. // J. Cell Sci. 1999. V. l 12. — p. 2145−2154.
  127. Lima-Brito J, Guedes-Pinto H, and Heslop-Harrison J.S. Nucleolar activity studies in F1 hybrids between Tritordeum, wheat and Triticale. // Jornadas do ICETA 2000.-p. 43−44.
  128. Lin H, Blank M, Rossol-Haseroth K, Goodman R. Regulating Genes with electromagnetic response elements. // J. Cell Biochem. -2001. V.81. — p. 143−48.
  129. Lindholm C, Salomaa S, Tekkel M, Paile W, Koivistoinen A, Ilus T, Veidebaum T. Biodosimetry after accidental radiation exposure by conventional chromosome analysis and FISH. // Int. J. Radiat. Biol. 1996. Dec. — 70(6) — p. 647−56.
  130. Lindholm C, Norppa H, Hayashi M, Sorsa M. Induction of micronuclei and anaphase aberrations by cytochalasin В in human lymphocyte cultures. //Mut. Res.-1991,-V.260.-p. 369−375.
  131. Lloyd DC, Purrot RJ, Reeder EJ. The incidence of instable chromosome aberrations in peripheral blood lymphocytes from unirradiated and occupationally exposed people. //Mut.Res. 1980. — Y.72. — p. 523−232.
  132. Lorimore SA, Kowalczuk CI, Saunders RD, Wright EG. Lack of acute effects of 20 mT, 50 FIz magnetic fields on murine haemopoiesis. // Int. J. Radiat. Biol. 1990. Oct.-58(4)-p. 713−23.
  133. Mamaev NN, Kovalyeva OV, Amineva KhK, Gudkova AYa, Maier YuB, Polykarpov IS, Schneider YuA, Proshin SN, Lebedev LV. AgNORs in cardiomyocytes from surgical patients with coronary heart disease. // Mol. Pathol. 1998. Aug.-51(4)-p. 218−21.
  134. Mamaev NN, Mamaeva SE. Nucleolar organizer region activity in human chromosomes and interphase nuclei of normal, leukemic, and tumor cells as evaluated by silver staining. // Int. Rev. Cytol. 1990. 121. — p. 233−66.
  135. Margonato V, Veicsteinas A, Conti R, Nicolini P, Cerretelli P. Biologic effects of prolonged exposure to ELF electromagnetic fields in rats. I. 50 Hz electric fields. // Bioelectromagnetics. 1993. 14(5)-p. 479−93.
  136. Margonato V, Nicolini P, Conti R, Zecca L, Veicsteinas A, Cerretelli P. Biologic effects of prolonged exposure to ELF electromagnetic fields in rats: II. 50 Hz magnetic fields. // Bioelectromagnetics. 1995. 16(6) — p. 343−55.
  137. Mavourin KN, Blakey DH, Cimino MC, Salamone MF, Heddle JA. The in vivo micronucleus assay in mammalian bone marrow and peripheral blood. A report of the US EPAGTP. // Mut.Res.- 1990.-V.239. p. 29−80.
  138. Mayr B, Schleger W, Auer H. Frequency of Ag-stained nucleolus organizer regions in the chromosomes of cattle. //J. Hered. 1987. — May-Jun.- 78(3) — p.206−7.
  139. McCann J, Dietrich F, Rafferty C. The genotoxic potential of electric and magnetic fields: an update. //Mutat Res. 1998. — Aug. — 411(1) — p. 45−86.
  140. McClintock B. The fusion of broken ends of chromosomes following nuclear fusion. // Proc.Nat.Acad.Sci.- 1942.-V.28. p. 458−63.
  141. Miller OL, Beatty BR. Visualization of nucleolar genes. // Science. 1969. -164.-p. 955−57.
  142. Miyakoshi J, Ohtsu S, Shibata T, Takebe H. Exposure to magnetic field (5 mT at 60 Hz) does not affect cell growth and c-myc gene expression. // J. Radiat. Res. (Tokyo). 1996. Sep. — 37(3)-p. 185−91.
  143. Miyakoshi J, Tsukada T, Tachiiri S, Bandoh S, Yamaguchi K, Takebe H. Enhanced NOR-1 gene expression by exposure of Chinese hamster cells to high-density 50 Hz magnetic fields. // Mol. Cell Biochem. 1998. Apr. — 181 (1−2) -p. 191−5.
  144. Morandi MA, Рак CM, Caren RP, Caren LD. Lack of an EMF-induced genotoxic effect in the Ames assay. // Life Sci.- 1996. 59(3) — p. 263−71.
  145. Morgan WF, Corcoran J, Hartmann A, Kaplan MI, Limoli CL, Ponnaiya B. DNA double-strand breaks, chromosomal rearrangements, and genomic instability. // Mutat. Res. -1998. Aug. — 3. — 404(1−2) — p. 125−8.
  146. Mosgoeller W, Kastner P, Fang KS, Kitzmueller E, Hoeger H, Seither P, Labudova O, Lubec G, Lubec B. Brain RNA-polymerase and nucleolar structure in perinatal asphyxia of the rat. // Exp. Neurol. 2000. — V. 161. — p. 174−82.
  147. Moss T, Stefanovsky VY. Promotion and regulation of ribosomal transcription in eukaryotes by RNA polymerase I. // Prog. Nucleic Acid Res. Mol. Biol. 1995. -50.-p. 25−66.
  148. Muller W-U, Streffer C. Micronucleus assays. // Advances in mutagenesis research (edited by Obe G)/ Springer-Verlag. -1995. — p.1−134.
  149. Nindl G, Swez JA, Miller JM, Balcavage WX. Growth stage dependent effects of electromagnetic fields on DNA synthesis of Jurkat cells. // FEBS Lett. 1997. Sep. 15.-414(3)-p. 501−6.
  150. Nito S, Ariyuki F, Okaniwa A. Spontaneous expulsion of micronuclei by enucleation in the micronucleus assay. // Mut.Res.- 1988.-V.207. p. 185−92.
  151. Nordenson I, Mild KH, Nordstrom S, Sweins A, Birke E. Clastogenic effects in human lymphocytes of power frequency electric fields: in vivo and in vitro studies. //Radiat. Environ. Biophys. 1984. -23(3)-p. 191−201.
  152. Pakhomov AG, Akyel Y, Pakhomova ON, Stuck BE, Murphy MR. Current state and implications of research on biological effects of millimeter waves: a review of the literature. // Bioelectromagnetics. 1998. 19(7) — p. 393−413.
  153. Parker JE, Winters W. Expression of gene-specific RNA in cultured cells exposed to rotating 60-Hz magnetic fields. // Biochem. Cell Biol. 1992. Mar.-Apr. -70(3−4)-p. 237−41.
  154. Parton JW, Garriot ML, Beyers JE. Expulsion on colchicines-induced micronuclei from mouse bone marrow polychromatic erythrocytes. // Environ. Mol. Mutagen. -1991. V.21. — p.864−69.
  155. Parvinen M, Lahdetie J, Parvinen LM. Toxic and mutagenic influences on spermatogenesis. // Arch.Toxicol.Suppl. 1984. — V.7. — p. 128−39.
  156. Paule MR, Iida CT, Perna PJ, Harris GH, Knoll DA, D’Alessio JM. In vitro evidence that eukaryotic ribosomal RNA transcription is regulated by modification of RNA polymerase I. // Nucleic Acids Res. 1984. Nov. 12. -12(21) — p. 8161−80.
  157. Perry R.P. The nucleolus and the synthesis of ribosomes. // Prog. Nucleic Acid Res. Mol. Biol. 1967. 6. — p. 219−57.
  158. Pederson T. The plurifunctional nucleolus. // Nucl. Acid Res. 1998. — 26. -p. 3871−3876.
  159. Phillips JL, Haggren W, Thomas WJ, Ishida-Jones T, Adey WR. Magnetic field-induced changes in specific gene transcription. // Biochim. Biophys. Acta. -1992. Sep. 24. — 1132(2) — p. 140−4.
  160. Pich A, Chiusa L, Margaria E. Prognostic relevance of Ag NORs in tumor pathology. //Micron. 2000. — 31. — p. 133−141.
  161. Ploton D, Bendayan M, Adnet J-J. Ultrastructural localization of Ag-NOR proteins and nucleic acids in reticulated nucleoli. // Biol. Cell. 1983. 49(1) -p. 29−34.
  162. Polk C. Dosimetry of extremely-low-frequency magnetic fields.// Bioelectromagnetics. 1992. Suppl. 1. — p. 209−35.
  163. Polk C. Dosimetric extrapolations of extremely-low-frequency electric and magnetic fields across biological systems. // Bioelectromagnetics. 1992. Suppl. 1. -p. 205−8.
  164. Prescott DM. The cell cycle and the control of cellular reproduction. //Adv. Genet. 1976.-18.-p. 99−177.
  165. Puvion-Durilleuel F, Puvion E, Bachellerie JP. Early stages of pre-rRNA formation within the nucleolar ultrastructure of mouse cells studied by in situ hybridization with 5'ETS leader probe. // Chromosoma. 1997. 105. — p. 496−505.
  166. Quimsiyeh M.B. Impact of rearrangements on function and position of chromosomes in the interphase nucleus and on human genetic disorders. // Chromosome Res.- 1995. V.3. — p. 455−65.
  167. Raff M.C. Social controls on cell survival and cell death.// Nature. 1992. Apr. 2.-356(6368)-p. 397−400.
  168. Raska I, Dundr M, Koberna K, Melcak I, Risueno MC, Тбгбк I. Does the synthesis of ribosomal RNA take place within nucleolar centers or dense fibrillar components? A critical appraisal. // J. Struct. Biol. 1995. — 114. — p. 1−22.
  169. Reese J A, Jostes RF, Frazier ME. Exposure of mammalian cells to 60-Hz magnetic or electric fields: analysis for DNA single-strand breaks. // -Bioelectromagnetics.- 1988.-V.9(3). p. 237−47.
  170. Rosenthal M, Obe G. Effects of 50-hertz electromagnetic fields on proliferation and on chromosomal alterations in human peripheral lymphocytes untreated or pretreated with chemical mutagens. // Mutat. Res.-1989. Feb. — 210(2) — p. 329−35.
  171. Royle M. The preterminal regions and telomere of human chromosomes. // Adv.Genetics. 1995, — V.32. — p. 273−315.
  172. Russell LB. Chromosome aberration in experimental mammals. In: Steinberg AG, Beam AG.// Progress in medical genetics.-V.2. NY. — 1962. — p.23−29.
  173. Sasaki MS, Norman A. Selection against chromosome aberrations in human lymphocytes. //Nature. 1967. — V.214. — p. 502−3.
  174. Savage J.R.K. An Introduction to Chromosomal Aberrations. / In: Atlas Genet Cytogenet Oncol Haematol./ March 1999.
  175. Scarfi MR, Lioi MB, Di Berardino D, Zeni O, Coviello AM, Matassino D. Measurement of micronuclei by cytokinesis-block method in bovine lymphocytes. // Mutat. Res. 1993. Oct. 289 (2) — p. 291−5.
  176. Scarfi MR, Lioi MB, Zeni O, Franceschetti G, Franceschi C, Bersani F. Lack of chromosomal aberration and micronucleus induction in human lymphocytes exposed to pulsed magnetic fields. // Mutat. Res. 1994. Apr. 15. — 306(2) — p. 129−33.
  177. Simko M, Kriehuber R, Weiss DG, Luben RA. Effects of 50 Hz EMF exposure on micronucleus formation and apoptosis in transformed and nontransformed human cell lines. //Bioelectromagnetics. 1998. — 19(2) — p. 85−91.
  178. Simko M, Richard D, Kriehuber R, Weiss DG. Micronucleus inductionin Syrian hamster embryo cells following exposure to 50 Hz magnetic fields, benzo (a)pyrene, and TPA in vitro. // Mutat. Res. 2001. — Aug. 22. — 495(1−2) -p. 43−50.
  179. Smetana K, Likovsky Z, Ochs R, Novak J, Busch H. Studies on satellite nucleoli in human normal and leukemic lymphocytes. // Virchows Arch. B. Cell Pathol. Incl. Mol. Pathol. 1986. 51(2)-p. 155−60.
  180. Stich HF, Rosin MP, Hornby AP, Mathew В. Remission of oral leukoplakias and micronuclei in tobacco chewers treated with betacarotene and betacarotene plus vitamin A. //J.Cancer. 1988. V.42. — p. 195−99.
  181. Stubblefield E. DNA synthesis and chromosomal morphology of CHO cells cultured in media containing colcemid. /In: Harris RJH: Cytogenetics of cells in culture. /Acad.Press NY. 1964. p. 223−48.
  182. Takahashi К, Kaneko I, Date M, Fukada E. Effect of pulsing EMF on DNA synthesis in mammalian cells in culture. // Experimentia. -1986. Feb. 15. — 42(2). -p. 185−6.
  183. Tao Q, Henderson A. EMF induces differentiation in HL-60 cells. // J. Cell Biochem.- 1999, — May-1. V. 73(2). — p.212−7.
  184. Teerenhovi L, Lintula R, Ruutu T, Knuutila S. Correlation between bone marrow karyotype and the occurrence of erythroblast micronuclei and nuclear budding in patients with myelodysplastic syndromes. // Eur.J.Haematol. 1987. -V.39. — p. 237−40.
  185. Thiry M, Thiiy-Blaise L. In situ hybridization at the electron microscopic level: an improved method for precise localization of ribosomal DNA and RNA. //Eur. J. Cell Biol. 1989. — 50. — p. 235−43.
  186. Thiry M, Thiry-Blaise L. Locating transcribed and non-transcribed r-DNA spacer sequences within the nucleolus by in situ hybridization and immunelectron microscopy. // Nucl. Acids Res. 1991. -19. — p. 11−15.
  187. Trosic I, Matausicpisl M, Radalj Z, Prlic I Animal study on electromagnetic field biological potency. //Arh. Hig. Rada Toksikol. 1999. Mar.-V. 50(1). — p. 5−11.
  188. Vallarino-Kelly T, Morales-Ramirez P. Kinetics of micronucleus induction and cytotoxic activity of colchicine in murine erythroblast in vivo. // Mutat. Res.-2001. -Aug. 22.-495(1−2)-p. 51−9.
  189. Verhaegen F., Vral A., Seuntjens J. Scoring of radiation-induced micronuclei in cytokynesis-blocked human lymphocytes by automated image analysis. //Cytometry. 1994. — 17(2) — p. l 19−27.
  190. Vig BK, Swearngin SE. Sequence of centromere separation: kinetochore formation in induced laggards and micronuclei. // Mutagenesis. 1986. — V. 1. -p. 461−65.
  191. Vijayalaxmi, Seaman RL, Belt ML, Doyle JM, Mathur SP, Prihoda TJ. Frequency of micronuclei in the blood and bone marrow cells of mice exposed to ultra-wideband electromagnetic radiation. //Int. J. Radiat. Biol. 1999.-Jan. 75(1) — p. 115−20.
  192. Visser AE, Jaunin F, Fakan S, Aten JA High resolution analysis of interphase chromosome domains. // J. Cell Sc.- 2000. V. l 13. — p. 2585−93.
  193. Weissenborn U, Streffer C. The one cell mouse embryo: cell cycle-dependent radiosensitivity and development of chromosomal anomalies in postradiation cell cycles. //Int. J. Radiat.Biol. 1988. — V.54. — p. 659−74.
  194. Weipoltshammer К, Schoeffer С, Wachtler F, Hozak P. The transcription unit of ribosomal genes is attached to the nuclear skeleton. //Exp. Cell Res. 1996. — 227. -p. 374−79.
  195. Weipoltshammer K, Schoeffer C, Almeder M, Philimonenko VV, Frei K, Wachtler F, Hozak P. Intranuclear anchoring of repetitive DNA sequences: centromeres, telomeres and ribosomal DNA. // J. Cell Biol. 1999. — 147. -p. 1409−18.
  196. Wendt E. Lebendbeobachtungen an bestrahlten Interphasekernen. // -Z.Zellforsch.- 1959. V.49. — p. 677−89.
  197. Whitson GL, Carrier WL, Francis AA, Shih CC, Georghiou S, Regan JD. Effects of extremely low frequency (ELF) electric fields on cell growth and DNA repair in human skin fibroblasts. //Cell Tissue Kinet. 1986. Jan. — 19(1). — p. 39−47.
  198. Woloschak GE, Paunesku T. Mechanisms of radiation-induced gene responses. // Stem Cells. 1997. 15. Suppl. 2. — p. 15−25.
  199. Weisbrot DR, Khorkova O, Lin H, Henderson AS, Goodman R. // Bioelectrochem.Bioenerget. 1993. — V.31. — p. 167−77.
  200. Wilkins JR 3rd, Wellage LC. Brain tumor risk in offspring of men occupationally exposed to electric and magnetic fields. // Scand. J. Work Environ. Health. 1996. Oct.-V. 22(5) — p. 339−45.
  201. Wolgemuth DJ, Biedler JL, Melera PW. Repetitive DNA sequences in methotrexate- and methasquin-sensitive and -resistant Chinese hamster cell lines. //Biochem Genet. 1980. Aug. -18(7−8) — p. 655−67.
  202. Wyllie AH, Currie AR. Cell death: the significance of apoptosis. // Int. Rev.Cytol. 1980. — V.68. — p. 251−306.
  203. Wu H. Probabilities of radiation-induced inter- and intrachromosomal exchanges and their dependence on the DNA content of the chromosome. // Radiat. Res. 2001, — V. 156(5 Pt 2). — p. 603−6.
  204. Zahradka P, Larson DE, Sells ВН. Regulation of ribosome biogenesis in differentiated rat myotubes. // Mol. Cell Biochem. 1991. May 29 Jun. 12. — 104(1−2) -p. 189−94.
  205. Zakeri ZF, Quaglino D, Latham T, Lockshin RA. Delayed internucleosomal DNA fragmentation in programmed cell death. // FASEB J. 1993. Mar. 7(5) -p.470−8.
  206. Zatsepina OV, Dudnic OA, Chentsov YS, Thiry M, Spring H, Trendelenburg MF. Reassembly of functional nucleoli.// Exp. Cell Res.-1997. 233. — p. 155−168.
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?