Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Получение и анализ трансгенных растений пшеницы (Triticum aestivum L.) с агробактериальным геном изопентенилтрансферазы (ipt)

Диссертация: Получение и анализ трансгенных растений пшеницы (Triticum aestivum L.) с агробактериальным геном изопентенилтрансферазы (ipt)
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Современные методы биотехнологии, такие как генетическая инженерия, открывают новые возможности для создания растений с заранее заданными свойствами, в том числе и устойчивых к абиотическим стрессам. Трансгенные растения пшеницы были получены в ряде лабораторий мира, при этом большинство современных методик по получению трансгенных растений пшеницы предусматривают этап культивирования тканей… Читать ещё >

Содержание

  • ВВЕДЕНИЕ
  • ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Влияние переувлажнения почвы на растения
    • 1. 2. Механизмы адаптации растений к анаэробному стрессу
      • 1. 2. 1. Морфолого-анатомические приспособления растений к анаэробному стрессу
      • 1. 2. 2. Метаболическая адаптация растений к гипоксии и аноксии
    • 1. 3. Гормональная регуляция при гипоксии и аноксии
    • 1. 4. Образование активных форм кислорода при анаэробном стрессе
    • 1. 5. Биотехнологические подходы создания устойчивых к анаэробному стрессу растений
      • 1. 5. 1. Клеточная селекция
      • 1. 5. 2. Генетическая инженерия
    • 1. 6. Методы, применяемые при получении трансгенных растений пшеницы
      • 1. 6. 1. Поглощение ДНК протопластами пшеницы
      • 1. 6. 2. Электропорация
      • 1. 6. 3. Баллистическая трансформация пшеницы.
      • 1. 6. 4. Агробактериальная трансформация пшеницы
    • 1. 7. Фитогормоны
    • 1. 8. Общая характеристика цитокининов
      • 1. 8. 1. История открытия.-371.8.2. Химическая структура и функции
      • 1. 8. 3. Биосинтез цитокининов
        • 1. 8. 3. 1. Прямой путь биосинтеза цитокининов
        • 1. 8. 3. 2. Биосинтез цитокининов из тРНК
      • 1. 8. 4. Метаболизм цитокининов в растениях
        • 1. 8. 4. 1. Конъюгация цитокининов в растении
        • 1. 8. 4. 2. Разрушение цитокининов в растениях
    • 1. 9. Получение трансгенных растений с геном ipt
  • ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • 2. 1. Растительный материал
    • 2. 2. Среды для культивирования растений и растительных тканей
    • 2. 3. Получение каллуса и регенерация растений пшеницы
    • 2. 4. Характеристика вектора для трансформации
    • 2. 5. Среды и условия для культивирования агробактерии
    • 2. 6. Методы молекулярной биологии
      • 2. 6. 1. ПЦР-атализ ДНК трансгенных «растений
      • 2. 6. 2. Анализ транскрипции генов методом ОТ-ПЦР
      • 2. 6. 3. Гибридизация ДНК по Саузерну
    • 2. 7. Определение содержания МДА
    • 2. 8. Определение активности супероксиддисмутазы
    • 2. 9. Определение активности каталазы
    • 2. 10. Статистическая обработка результатов
  • ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЯ
    • 3. 1. Получение трансгенных растений пшеницы
      • 3. 1. 1. Обоснование выбора экспланта для трансформации
      • 3. 1. 2. Подбор оптимальной концентрации селективного агента
      • 3. 1. 3. Освобождение от бактериальной инфекции
      • 3. 1. 4. Выбор оптимальной схемы агробактериальной трансформации
    • 3. 2. Анализ трансформированных растений
    • 3. 3. Морфологические особенности трансгенных растений
    • 3. 4. Изучение наследования встроенных генов
    • 3. 5. Анализ транскрипции введенных генов
    • 3. 6. Анализ устойчивости трансгенных растений пшеницы в условиях корневого затопления
      • 3. 6. 1. Создание условий корневого затопления
      • 3. 6. 2. Анализ воздействия корневого затопления на рост и развитие растений
      • 3. 6. 3. Активность антиоксидантной энзиматической системы в растениях пшеницы в условиях корневого затопления
    • 3. 7. Изучение морфогенетического потенциала каллусных линий, полученных от трансгенных растений пшеницы с геном ipt

Получение и анализ трансгенных растений пшеницы (Triticum aestivum L.) с агробактериальным геном изопентенилтрансферазы (ipt) (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы. Пшеница является ведущей продовольственной культурой в мире, в том числе и на территории Российской Федерации. Фактическая урожайность современных сортов пшеницы во многом лимитируется воздействием абиотических и биотических стрессов. Одним из распространенных абиотических стрессов на территории России является затопление полей, происходящее в весенний и осенний периоды, а также в периоды зимних оттепелей. Затопление полей ливневыми и паводковыми водами приводит к почвенной гипоксии, которая является причиной преждевременного старения растений (Dong et al., 1983), приводит к хлорозу листьев, некрозам, дефолиации (Ginkel et al., 1992), прекращению роста (Huang and Johnson, 1995) и уменьшению урожая (Musgrave, 1994, Boru, 1996).

Так в среднем в мире ежегодно подвергаются затоплению 20% площади, используемой для возделывания пшеницы (Setter, T.L., Waters, I., 2003). В результате потеря урожая на затапливаемой территории составляет от 34 до 60%, в основном, за счет уменьшения массы и количества зерна (Setter, T.L., Waters, 2003; Musgrave I., M.E., Ding N, 1998).

Известно, что за формирование устойчивости у растений к таким неблагоприятным факторам как засоление, недостаток или избыток влаги отвечает множество различных генов и регуляторных систем (Agarwal and Grover, 2006). С развитием генетической инженерии стало возможным изучение механизмов стрессового ответа путем манипуляции с единичными генами, не затрагивая другие характеристики растений. Благодаря этому можно оценить вклад конкретных признаков в формирование комплексного механизма устойчивости растений к различным стрессам окружающей среды.

В литературе имеются данные о положительном влиянии экзогенных цитокининов при затоплении растений (Бахтенко, Платонов, 1999), в связи с чем, Zhang et al. (2003) было выдвинуто предположение, что повышение уровня эндогенных цитокининов должно улучшать выживаемость растений в условиях затопления. Создание трансгенных растений с измененным уровнем цитокининов при встраивании в растения гена ipt, кодирующего изопентенилтрансферазу — ключевого фермента синтеза цитокинина, почвенной бактерии Agrobacterium tumefaciens, могло бы изменить устойчивость растений к почвенной гипоксии и послужить удобной моделью для изучения роли этого гормона в защитных реакциях растений на затопление.

Цели и задачи исследования. Целью настоящей работы являлось получение и анализ трансгенных растений пшеницы с геном изопентенилтрансферазы {ipt).

Для достижения поставленной цели необходимо было решить следующие задачи:

1. Разработать метод агробактериальной трансформации пшеницы.

2. Получить трансгенные растения пшеницы с агробактериальным геном биосинтеза цитокининов ipt.

3. Исследовать морфологические особенности полученных растений.

4. Провести анализ экспрессии и наследования введенных генов.

5. Исследовать устойчивость полученных трансгенных растений к корневому затоплению.

6. Изучить морфогенетический потенциал каллусных линий, полученных от трансгенных растений пшеницы с геном ipt.

Научная новизна работы. Разработан новый способ агробактериальной трансформации пшеницы in planta с использованием в качестве растительного экспланта прорастающих семян. С применением данного метода были впервые получены трансгенные растения пшеницы, содержащие и экспрессирующие агробактериальный ген ipt. Впервые для пшеницы было показано влияние введенного гена ipt на устойчивость растений к воздействию корневого затопления. Изучена динамика процессов перекисного окисления липидов у трансгенных растений пшеницы в условиях затопления. Проведено исследование морфогенетического потенциала у каллусных линий, полученных от трансгенных растений пшеницы с геном ipt.

выводы.

1. Разработан эффективный способ агробактериальной трансформации пшеницы, позволяющий использовать в качестве растительного экспланта прорастающие семена.

2. Получены трансгенные растения пшеницы сорта «Энита», содержащие и экспрессирующие встроенные гены изопентенилтрансферазы {ipt) и неомицинфосфотрансферазы (nptll).

3. Показано наследование встроенных генов в первом семенном поколении.

4. Трансформированные растения Т0 были морфологически неоднородны и составляли две фенотипические группы. Первая группа растений была схожа странсформированными растениями, но имела более высокую кустистость и продленный период вегетации. Вторая группа, характеризовалась очень высокой кустистостью, низкорослостью и отсутствием фертильных колосьев.

5. Показано, что после корневого затопления трансгенные растения Ti превосходили нетрансгенные по росту и продуктивности.

6. Фаза истощения адаптационных возможностей к образовавшимся во время затопления активным формам кислорода у трансгенных растений наступала позже, чем у нетрансгенных, и характеризовалась снижением активности ферментов антиоксидантной защиты супероксиддисмутазы и каталазы и ростом концентрации малонового диальдегида.

7. Показано, что каллусные ткани, полученные от трансгенных растений пшеницы, показали большую способность к морфогенезу in vitro, чем каллусы от нетрансгенных растений.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Современные методы биотехнологии, такие как генетическая инженерия, открывают новые возможности для создания растений с заранее заданными свойствами, в том числе и устойчивых к абиотическим стрессам. Трансгенные растения пшеницы были получены в ряде лабораторий мира, при этом большинство современных методик по получению трансгенных растений пшеницы предусматривают этап культивирования тканей in vitro, что имеет ряд недостатков. Во-первых, появляется зависимость от морфогенетического потенциала культивируемых тканей. Во-вторых, условия in vitro могут привести к появлению сомаклональных вариантов, в том числе, и устойчивых к селективному агенту. Кроме этого, растения-регенеранты могут обладать пониженной фертильностью, жизнеспособностью, нести различные уродства.

В настоящей работе в качестве эксплантов для трансформации было предложено использовать прорастающие семена пшеницы, что позволяло исключить из метода стадии культивирования тканей in vitro и регенерации растений. На основании этого был разработан новый способ агробактериальной трансформации пшеницы in planta. Эффективность и универсальность предложенного нами метода трансформации была подтверждена для других однодольных и двудольных растений: ячменя (Майсурян и др., 2006), томатов и газонной травы овсяницы (Степанова и др., 2006, 2008).

При использовании данного метода были получены трансгенные растения пшеницы сорта «Энита», содержавшие и экспрессирующие встроенные гены изопентенилтрансферазы {ipt) и неомицинфосфотрансферазы {nptll). Частота трансформации составляла от 3,6 до 8,0%. Наличие и экспрессия генов были доказаны различными методами, включающими: ПЦР, гибридизацию по Саузерну и ОТ-ПЦР.

Введение

целевого гена ipt в растения пшеницы положительно сказывалось на их устойчивости к корневому затоплению, выражавшееся значительно меньшим снижением ростовых процессов и урожайности по сравнению с растениями дикого типа. Известно, что во время корневого затопления нарушаются кооперативные связи побегов и корней, и надземные части, несмотря на то, что находятся в аэробных условиях, также страдают от стресса, поэтому нам было важно оценить состояние надземных побегов во время затопления. Процесс перекисного окисления липидов ускоряется в результате действия практически всех неблагоприятных факторов, в том числе и затопления, и может являться универсальным критерием, оценивающим состояние клеток. Нами было показано, что во время затопления процессы перекисного окисления липидов в листьях трансгенных растений происходили менее интенсивно, чем у обычных растений, что говорило о более высокой стабильности клеточных мембран этих растений. Таким образом, трансгенные растения могли значительно дольше сохранять свою жизнеспособность и функциональность при воздействии анаэробного стресса.

Данные результаты указывают на перспективность биотехнологических методов для получения толерантных к дефициту кислорода растений, которые можно использовать как в практической деятельности, так и для изучения механизмов устойчивости к кислородной недостаточности.

Показать весь текст

Список литературы

  1. A.M., Вризен В. Х., ван дер Стрэтен Д. Молекулярные и физиологические механизмы избегания затопления и приобретения выносливости к нему у риса // Физиология растений. 2003. Т. 50. С. 832−840.
  2. Е.А., Лутова Л. А. Устойчивость к солям меди и никеля у IPT-трансгенных растений картофеля. // Экологическая генетика, 2004. Т. 2. № 3. С. 25−31.
  3. Т.В., Ложникова В. Н., Махачкова И., Грянко Т. И. Трансформанты Табаков модель для изучения роли фитогормонов в цветении и плодоношении // Физиология, растений. 1999. Т. 46. С. 226−230.
  4. В.А. Механизмы стресса и перекисное окисление липидов. // Успехи соврем, биологии. 1991. Т. 111. Вып. 6. С. 923.
  5. Т.Б. Эмбриогенез и морфогенез половых и соматических зародышей // Физиология растений. 1999. Т. 46. № 6. С. 884−898.
  6. Е.Ю., Платонов А. В. Динамика цитокининов при почвенном затоплении. // Агрохимия. 2004. № 6. С. 51−55.
  7. Е.Ю., Скоробогатова И. В., Карсункина Н. П. Роль гормонального баланса при адаптации растений к затоплению. // Известия РАН серия биол. 2007. № 6. С. 682−690.
  8. P.M., Гусейнова В. Е. Фотосинтез и фотоокислительные процессы // Физиология растений. 1986. Вып. 1. с 171.
  9. Т.В., Родионова Н. А., Гринева Г. М. Образование этилена и активация гидролитических ферментов при адаптации проростков кукурузы к частичному затоплению // Физиология растений. 2003. 'Т. 50. С. 886−890.
  10. Р.Г. Биология клеток высших растений in vitro и биотехнологии на их основе. М.: ФБК-ПРЕСС 1999 — 160 с.
  11. С.Ю., Кудоярова Г. Р., Мустафина А. Р., Вальке Р. Динамика содержания цитокининов в трансгенных и нетрасформированных проростках табака под влиянием теплового шока. // Физиология растений. 1995. Т. 42. № 5. С. 696−699
  12. Ю.А., Арчаков А. Н. Перекисное окисление липидов в биологических мембранах. М: Наука 1972. — 252 с.
  13. Г. М. Регуляция метаболизма у растений при недостатке кислорода: М.: Наука 1975. — 278 с.
  14. Г. М., Борисова Т. А., Гарковенкова А. Ф., Ахриф Г.М, Брагина Т. В. Влияние длительного затопления на экссудацию, дыхание и анатомическое строение корней кукурузы // Физиология растений. 1986. Т. 33. № 5. С. 987−995.
  15. Г. М., Брагина Е. И. Структурные и функциональные параметры формирования адаптаций к затоплению у кукурузы // Физиология растений. 1993. Т. 40. № 4. С.662−667.
  16. С.А., Долгих Ю. И. Стимуляция регенерации растений в культуре тканей кукурузы под действием антибиотика цефотаксима // Физиология растений. 2004. Т. 51. № 4. С. 621−625.
  17. Т.А. Генетический контроль тотипотентности растительных клеток в культуре in vitro. // Онтогенез. 2003. Т. 34. № 4. С. 245−252.
  18. В.В., Кирчихина Н. А., Ласточкин В. В., Чиркова Т. В. Гормональный баланс проростков пшеницы и риса в условиях аноксии. // Физиология растений. 2003. Т. 50. № 6. С. 1−8.
  19. В.В., Чиркова Т. В. Свободные формы гормонов в растениях различающихся по устойчивости к недостатку кислорода, в условиях аэрации и анаэробиоза // Вестн. СПбГУ. 1996. Сер. 3. Вып. 2. № 10. С. 73−81.
  20. Ю.Е., Балахнина Т. И., Закржевский Д. А. Действие почвенной гипоксии на активацию кислорода и систему защиты от окислительной деструкции в корнях и листьях ячменя. // Физиологиярастений. 1994. Т. 41. № 4. С. 583−588.
  21. Л.Г., Бутенко Р. Г. Нативные фитогормоны экспланта и морфогенез пшеницы in vitro II Физиология растений. 1995. Т. 42. № 4. С. 555−558.
  22. Н.Н. Морфогенез в культуре пыльников пшеницы: эмбриологический подход. Уфа: Гилем. 2001. — 203 с.
  23. О.Н. Гормональная регуляция физиологических процессов у растений на уровне синтеза РНК и белка. 41-е Тимирязевское чтение. М.: Наука, — 1982.- 83 с.
  24. О.Н. Цитокинины, их структура и функция. М.: Наука. -1973.-264 с.
  25. О.Н., Кузнецов В. В. новейшие достижения и перспективы в области изучения цитокининов. // Физиология растений. 2002. Т. 49. № 4. С. 626−640.
  26. Н.В. Генетическая инженерия высших растений Киев: Наукова думка. 1997. — 152 стр. -
  27. Л.А., Проворов Н. А., Тиходеев О. Н., Тихонович И. А., Ходжайова Л. Т., Шишкова С. О. Генетика развития растений. СПб.: Наука. 2000. — 539 с.
  28. А.Н., Овчинникова В. Н., Степанова А. Ю., Долгих Ю. И., Терешонок Д. В., Мартиросян Ю. Ц., Харченко П. Н. Агробактериальная трансформация ячменя. // Биотехнология. 2006. № 6. С. 56−61.
  29. Г. С., Чкаников Д. И., Кулаева О. Н., Гамбург К. З. Основы химической регуляции роста и продуктивности растений. М.: ВО Агропромиздат. 1987. — С. 80−133.
  30. А.Н., Азизова О. А., Владимиров Ю. А. Активные формы кислорода и их роль в организме. Успехи биол. химии. М.: Наука — 1972 — Т. 31, С. 181.
  31. Э.С. Основы генетической инженерии растений Москва:I1. Наука 1988 -304 стр.
  32. Г. Н., Горелова С. В., Кожемякин А. В. Стабильность и наследование трансгеннов в растениях рапса. // Физиология растений. 2000. Т. 47. № 3. С. 437−445.
  33. Г. А. Международный симпозиум «Ауксины и цитокинины в развитии растений» (хроника) // Физиология растений. 2000. Т. 47. С. 166−169.
  34. Г. А. Цитокинины и тРНК: новый взгляд на старую проблему // Физиология растений. 1990. Т. 37. С. 1196−1210.
  35. О.А., Веселова С. В., Катасонова А. А., Зайцев Д. Ю., Круглова Н. Н. Иммуноферментный анализ каллусов яровой мягкой пшеницы. // Известия Челябинского научного центра. 2007. Вып. 1, С. 131−135.
  36. И.Д., Гаришвили Т. Г. Метод определения малонового диальдегида с помощью тиобарбитуровой кислоты Современные методы в биохимии. М.: Медицина. — 1977. — С.66−68.
  37. А.Ю., Полякова Л. И., Долгих Ю. И., Вартапетян Б. Б. Реакция культивируемых клеток сахарного тростника Saccharum officinarum на аноксию и отбор устойчивой клеточной линии. // Физиология растений. 2002. Т. 49. С. 451−458.
  38. А.Ю., Терешонок Д. В., Гладков Е. А., Долгих Ю. И. Осипова Е.С. Получение трансгенных растений пшеницы (Triticum aestivum) методом агробактериальной трансформации. Биотехнология. 2006 г. № 2. С.20−27
  39. П.В., Ростова Н. С. Практикум по биометрии. JL: Издательство ЛГУ. 1977. — 152 с.
  40. Н.В., Матвеева Т. В., Лутова Л. А. Использование метода агробактериальной трансформации in vivo для получения фенокопий опухолеобразования у безопухолевой линии редиса Raphanus sativus L. // Биотехнология. 2004. № 4. С. 3−7.
  41. Р.П., Долгих Ю. И., Гужов Ю. Л. Выбор оптимальных сред для массовой регенерации растений сахарного тростника из каллусной культуры // Физиология растений. 1996. Т. 43. С. 111−115.
  42. И.И. Онтогенетические изменения фотосинтетического аппарата и влияние цитокининов // Прикладная биохимия и микробиология. 2000а. Т. 36. С. 611−625.
  43. И.И. Фотосинтез и цитокинины: Обзор // Прикл. биохимия и микробиология. 1993. Т. 29. № 5. С. 644−674
  44. И.И. Фотосинтез листьев сахарной свеклы в онтогенезе при обработке растений 6-бензиламинопурином и метрибузином // Физиология растений. 20 006. Т. 47. № 2. С. 183−189.
  45. Т.В., Белоногова В. А. Активность нитратредуктазы зерновых культур в условиях переувлажнения // Агрохимия. 1991. № 5. С. 56−65.
  46. Т.В., Новицкая Л. О., Блохина О. Б. Перекисное окисление липидов и активность антиоксидантных систем при аноксии у растений с разной устойчивостью к недостатку кислорода //Физиология растений. 1998. Т. 45. № 1. С. 65−73.
  47. А.О., Доронина Н. В., Ламан А. Г., Бровко Ф. А., Троценко Ю. А. Новые данные о способности аэробных метилтрофных бактерий синтезировать цитокинины. // ДАН. 1999. Т. 368. С. 555−557.
  48. Adams A., Zachau H.G. Serine specific transfer ribonucleic acids. 15. Some properties of the aggregates from serine specific transfer ribonucleicacids. // Eur. J. Biochem. 1968. V. 24. № 5. P. 556−558.
  49. Aebi H. Catalase in vitro. И Methods Enzymology. 1984. V. 105. P. 121 126.
  50. Akiyoshi D.E., Klee H., Amasino R.M., Nester E.W., Gordon N.W. T-DNA of Agrobacterium tumefaciens encocodes an enzyme of cytokinin biosynthesis. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1984. V. 81. P. 5994−5998.
  51. Altpeter F., Diaz I., McAuslane H., Gaddour K., Carbonero P. and Vasil I.K. Increased insect resistance in transgenic wheat stably expressing trypsin inhibitor CMe. // Molecular Breeding. 1999. V. 5. P. 53−63.
  52. Altpeter F., Vasil V., Srivastava V. and Vasil I.K. Integration and expression of the high-molecular-weight glutenin subunit lAxl gene into wheat. //Nature Biotechnology. 1996a. V. 14. P. 1155−1159.
  53. Altpeter F., Vasil V., Srivastava V., Stoger E. and Vasil I.K. Accelerated production of transgenic wheat (Triticum aestivum L.) plants. // Plant Cell Reports. 19 966. V. 16. P. 12−17.
  54. Amoah B.K., Wu H., Sparks C. and Jones H.D. Factors influencing Agrobacterium-mediated transient expression of uidA in wheat inflorescence tissue. // Journal of Experimental Botany. 2001. V. 52. P. 1135−1142.
  55. Arbona V., Hossain Z., Lopez-Climent M.F., Perez-Clemente R.M., Gomes-Cadenas A. Antioxidant enzymatic activity is linked to waterlogging stress tolerance in citrus. // Physiologia Plantarum 2008. V. 132. P. 452−466.
  56. Armstrong D.J. Cytokinin oxidase and the regulation of cytokinin degradation. In DWS Мок, MC Мок, eds, Cytokinins: Chemistry, Activity, and Function. // CRC Press, Boca Raton, FL. 1994. P. 139−154
  57. Armstrong W., Brandle R., Jackson M.B. Mechanisms of flood tolerance in plants // Acta Bot. Neerl. 1994. V. 43. № 4. P. 307−358.
  58. Astot C., Dolezal K., Nordstrom A., Wang Q., Kunkel Т., Moritz Т., Chua N.H., Sandberg G. An alternative cytokinin biosynthesis pathway. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2000. V. 97. № 26. P. 14 778−14 783.
  59. Atwell B.J., Thomson C.J., Greenway H., Ward G., Waters I. A study of the impaired growth of roots Zea mays seedlings at low oxygen concentrations // Plant Cell and Environment. 1985. V. 8. P. 179−188.
  60. Barry G.F., Rogers S.G., Fraley R.T., Brand L. Identification of a cloned cytokinin biosynthetic gene. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1984. V. 81. P. 4776−4780.
  61. Bates G.W. Electroporation of plant protoplasts and tissues. // Methods in Cell Biology V. 50 / Eds. D.W. Galbraith, D.P. Bourque, H.J. Bohnert -New York: Acad. Press. 1995. P. 363 — 373.
  62. Bieri S. Potrykus I. and Futterer J. Expression of active barley seed ribosome-inactivating protein in transgenic wheat. // Theoretical and Applied Genetics. 2000. V. 100. P. 755−763.
  63. Blechl A.E. and Anderson O.D. Expression of a novel high-molecular-weight glutenin subunit gene in transgenic wheat. // Nature Biotechnology. 1996. V. 14. P. 875−879.
  64. Bliffeld M., Mundy J., Potrykus I. and Futterer J. Genetic engineering of wheat for increased resistance to powdery mildew disease. // Theoreticaland Applied Genetics. 1999. V. 98. P. 1079−1086.
  65. Blokhina O., Virolainen E., Fagerstedt K.V. Antioxidants, oxidative damage and oxygen deprivation stress: a Review // Annals of Botany. 2003. V. 90. P. 179−194.
  66. Blokhina O.B., Virolainen E., Fagerstedt K.V., Hoikkala A., Wahala K., Chirkova T.V. Antioxidant status of anoxia-tolerant and -intolerant plant species under anoxia and reaeration // Physiologia Plantarum. 2000. V. 109.P. 396−403.
  67. Bommineni V.R., Jauhar P.P. and Peterson T.S. Transgenic durum wheat by microprojectile bombardment of isolated scutella. // Journal of Heredity. 1997.V. 88.P. 301−313.
  68. Born G. Expression and Inheritance of Tolerance to Waterlogging Stresses in Wheat (Triticum aestivum L.). // Ph. D. Thesis, Oregon State University, Corvallis, OR. 1996 — 88 pp.
  69. Brandle R. Kohlehydratgehalte und vitalitat isolierter rhizome von Phragmites australis, Schoenoplectus lacustris und Tupha latifilia nach mehrwochigen 02 mangelstress // Flora. 1985. V. 177. P. 317−321.
  70. Brzobohaty В., Moore I., Kristoffersen P., Bako L., Campos N., Schell J., Palme K. Release of active cytokinin by a beta-glucosidase localized to the maize root meristem. // Science. 1993. V. 262. № 5136. P. 1051−1054.
  71. В., Moore I., Palme K. // Cytokinin metabolism: implications for regulation of plant growth and development. // Plant Mol. Biol. 1994. V. 26. № 5. P. 1483−1497.
  72. Bucher M., Brandle R., Kuhlemeier C. Ethanolic fermentation in transgenic tobacco expressing Zumomonas mobilis pyruvate decarboxylase // Enbo J. 1998. V. 14. P. 327−335.
  73. Bultynck L., Geuns J.M., Van Ginkel G., Caubergs R.J. Properties of plasma membranes of Phsp 70-ipt transformed tobacco (Nicotiana tabacum). //Phytochemistry. 1997. V. 45. P. 1337−1341.
  74. Burnap R.L., Sherman L.A. Detection mutagenesis in Synechocyctis sp.
  75. РСС6803 indicates that the Mn-stabilizing protein of photosystem II is not essential for 02 evolution. // Biochemistiy. 1991. Jan. 15. V. 30. P. 440 446.
  76. Burrows W.J., Carr D.T. Effects of flooding the root system of sunflower plants on cytokinin in the xylem sap // Physiologia Plantarum. 1969. V. 22. P. 1105−1112.'
  77. Cai S.B., Cao Y., Yan J.M., Fang X.W. and Zhu. W. Genotypes in response to hypoxia and subsequent resumption of aeration. // Crop Science. 1994. V. 34. P. 1538−1544.
  78. Cannell R.Q., Calusk, Shaydon R.A., Suhatt R.A. Effects of short term waterlogging on the growth and yield of peas (Pisum sativum L.) // Ann. Appl. Biol. 1979. V. 93. № 3. P. 327−335
  79. Caiy A.J., Liu W., Howell S.H. Cytokinin action is coupled to ethylene in its effects on the inhibition of root and hypocotyl elongation in Arabidopsis thaliana seedlings.//Plant Physiol. 1995. V. 107. P. 1075−1082.
  80. Chatfield J.M., Armstrong D.J. Regulation of Cytokinin Oxidase Activity in Callus Tissues of Phaseolus vulgaris L. cv Great Northern. // Plant Physiol. 1986. V. 80. P. 493−499.
  81. Chen C.M. Biosynthesis and enzymic regulation of the interconversion of cytokinin. Metabolism and molecular activities of cytokinins. // Eds Guern J., Peaud-Lenoel C. Heidelberg: Springer-Verlag. 1981. P. 34−43.
  82. Chen D.F. and Dale P.J. A comparison of methods for delivering DNA to wheat: the application of wheat dwarf virus DNA to seeds with exposed apical meristems. // Transgenic Research. 1992. V. 1. P. 93−100.
  83. Chen C.M. Cytokinin biosynthesis and interconversion // Physiologia
  84. Plantarum. 1997. V. 101. P. 665−673.
  85. Cheng M., Fry J.E., Pang S., Zhou H., Hironaka C.M., Duncan D.R., Conner T.W., Wan Yu. Genetic Transformation of Wheat Mediated by Agrobacterium tumefaciens. II Plant Physiol. 1997. V. 115. P. 971−980.
  86. Chibbar R.N., Kartha K.K., Leung N., Qureshi J. and Caswell K. Transient expression of marker genes in immature zygotic embryos of spring wheat (Triticum aestivum L.) through microprojectile bombardment. // Genome. 1991. V. 34. P. 453−460.
  87. Coenen C., Lomax T.L. Auxin-cytokinin interactions in higher plants: old problems and new tools. // Trends Plant Sci. 1997. V. 2. P. 351−356.
  88. Davies M.S., Hillman G.C. Effects of soil flooding on growth and grain yield of population of tetraploid and hexaploid species of wheat // Annals of Botany. 1988. V. 62. № 6. P. 597−604.
  89. De Block M., Debrouwer D. and Moens T. The development of a nuclear male sterility system in wheat. Expression of the barnase gene under the control of tapetum specific promoters. // Theoretical and Applied Genetics. 1997. V. 95. P. 125−131.
  90. Dekeyser R.A., Claes В., De Rycke R.M.U. Transient gene expression in intact and organized rice tissues. // Plant and Cell. 1990. V. 2. iss. 7. P. 591−602.
  91. Dellaporta S.L., Wood J., Hicks J.B. A plant DNA miniprepration: version II. //Plant. Mol. Biol. 1983. Rep. 1. P. 19−21.
  92. Dobrzanska M, Krysiak C, Kraszewska E Transient and stable transformation of wheat with preparations delivered by a biolistic method // Acta Physiol Plant. 1997. V. 19. P. 277−284.
  93. Dong J.G. and Yu S.W. Effect of cytokinin on senescence and ethylene production in waterlogged wheat plants. // Aeta Phytophysiologia Sinica. 1984. V. 10. P. 55−62.
  94. Dong J.G., Yu Z.W. and Yu S.W. Effect of increased ethylene production during different periods on the resistance of wheat plants to waterlogging. // Acta Phytophysiologia Sinica. 1983. V. 9. P. 383−389.
  95. Doree M., Guern J. Short-term metabolism of some exogenous cytokinins in Acer Pseudoplatanus cells // Biochim. Biophys. Acta. 1993. V. 304. P. 611−622.
  96. Drew M.C., Sisworo E.S. The development of waterlogging damage in young barley plants in relation to plant nutrient status and changes in soil properties //New Phytologist. 1979. V. 82. P. 302−314.
  97. Durand J.M., Bjork G.R., Kuwae A., Yoshikawa M., Sasakawa C. The modified nucleoside 2-methylthio-N6-isopentenyladenosine in tRNA of Shigella flexneri is required for expression of virulence genes. // J. Bacteriol. 1997. V. 179. № 18. 5777−5782.
  98. Eklof S., Astot C., Blackwell J., Moritz Т., Olsson O., Sandberg G. Auxin-cytokinin interaction in wild-tipe and transgenic tobacco // Plant Cell. Physiol. 1997. V. 38. P. 225−235.
  99. Emery R.J., Ma Q., Atkins C.A. The forms and sources of cytokinins in developing white lupine seeds and fruits. // Plant Physiol. 2000. V. 123. P. 1593−1604.
  100. Fromm M.E., Taylor L.P., Walbot V. Expression of genes transferred into monocot and dicot plant cells by electroporation. // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1985. V. 82. P. 5824−5825.
  101. Gan S., Amasino R.M. Cytokinins in plant senescence: from spray and pray to clone and play // BioEssays. 1996. V. 18. P. 557−565.
  102. Gan S., Amasino R.M. Inhibition of leaf senescence by autoregulated production of cytokinin. // Science. 1995. V. 270. P. 1986−1988.
  103. Gaudin V., Vrain Т., Jouanin L. Bacterial genes modifying hormonal balances in plants // Plant Physiol. Biochem. 1994. V. 32. P. 11−29.
  104. Giannopolitis C.N. and Ries S.K. Superoxide Dismutases I. Occurrence in higher plants. // Plant Physiol. 1977. V. 59. P. 309−314.
  105. Goicoechea N., Dolezal K., Antolin MC., Strnad M., Sanchez-Diaz M. Influence of mycorrhizae and Rhizobium on cytokinin content in drought-stress alfalfa. // J. of Exp. Bot. 1995. V. 46. P. 1543−1549.
  106. Grichko V.P., Glick B.R. Ethylene and flooding stress in plants. // Plant Physiol. Biochem. 2001a. V. 39. P. 1−9.
  107. Grichko V.P., Glick B.R. Flooding tolerance of transgenic tomato plants expressing the bacterial enzyme ACC diaminase controlled by the 35S, rolD or PRB-1 b promoter. // Plant Physiol. Biochem. 20 016. V. 39. P. 1925.
  108. Guang-Min X.I.A. and Zhong-Ti L.I. (1999). Transgenic plant regeneration from wheat (Triticum aestivum L.) mediated by Agrobacterium tumefaciens. Acta Phytophysicologica Sinica. 1999. V. 25. P. 22- 28.
  109. He D.G., Mouradev A., Yang Y.M., Mouradeva E. and Scott K.J. Transformation of wheat (Triticum aestivum L.) through electroporation of protoplasts. // Plant Cell Reports. 1994. V. 14. P. 192−196.
  110. He G.Y. and Lazzeri P.A. Analysis and optimization of DNA delivery into wheat scutellum and tritordeum inflorescence explants by tissue elctroporation. // Plant Cell Reports. 1998. V. 18. P. 64−70.
  111. Heidekamp F., Dirkse W.G., Hille J., Ormondt H. Nucleotide sequence of the Agrobacterium tumefaciens octapine Ti plasmid-encoded tmr gene. // Nucl. Acids Res. 1983. V. 11. P. 6211−6233.
  112. Hess D., Dressier K., Nimmrichter R. Transformation experiments by pipetting Agrobacterium into the spikelets of wheat (Triticum aestivum L.) И Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1991. V. 25. P. 233−244.
  113. Hole D.J., Cobb B.G., Hole P., Drew М.С." Enhancement of anaerobic respiration in root tips of Zea mays following low oxygen (hypoxic) acclimation // Plant Physiol. 1992. V. 99. P. 213−218.
  114. Holland M.A. Are cytokinins produced by Plants? // Plan. Physiol. 1997. V. 115. P. 865−868.
  115. Horgan R., Cytokinins. In «Advance Plant Physiology» // Wilkins M.B., Ed., Pitman, London. 1984. P. 53−75.
  116. Houba-Herin N., Pethe C., dAlayer J., Laloue M. ytokinin oxidase from Zea mays', purification, cDNA cloning and expression in moss protoplasts. //Plant J. 1999. V. 17. P. 615−26.http://wheat.pw.usda.gOv/ggpages/awn/45/Textfiles/USKS.html#anchor36 7934
  117. Huang B.R. and Johnson J.W. Root respiration and carbohydrate status of two wheat genotypes in responses to hypoxia. // Annals of Botany. 1995. V. 75. P. 427−432.
  118. Ismond K.P., Dolferus R., Pauw M., Dennis E.S., Good A.G. Enhanced low oxygen survival in Arabidopsis through increased metabolic flux in the fermentative pathway. // Plant Physiology. July 2003. V. 132. P. 12 921 302.
  119. Jackson M.B. Plant and crop response to waterlogging of the soil //Aspects of Appl. Biol. 1983. V. 4. P. 99−116.
  120. Jackson M.B., Armstrong W. Formation of aerenchyma and the processesof plant vertilation in relation to soil flooding and submergence // Plant Biol. 1999. V. 1. P. 274−287.
  121. Jackson M.B., Kowalewska A.K.B. Positive and negative messages from roots induce foliar desiccation and stomatal closure in flooded pea plants // J. Exp. Bot. 1983. V. 34. P. 493−506.
  122. Jackson M.B., Long-distance signaling from roots to shoots assessed: the flooding story. // J. Exp. Bot. 2002. V. 53. P. 391−398.
  123. James E.K., Crawford R.M.M. Effect of oxygen availability on nitrogen fixation by two Lotus species under flooded conditions // J. Exp. Bot. 1998. V. 49. № 320. P.599−609.
  124. Johnson J.R., Cobb B.G., Drew M.C. Hypoxic induction of anoxia tolerance in root tips of Zea mays. // Plant Physiol. 1989. V. 91. P. 837 841. ¦ i
  125. Jones R.J., Schreiber B.M.N. Role of cytokinin oxidase in plants // Plant
  126. Growth Regul. 1997. V. 23. P. 123−136.
  127. Kakimoto T. Biosynthesis of cytokinins. // J. Plant Res. 2003. V. 116. P. 233−139.
  128. Kakimoto T. Plant cytokinin biosynthetic enzymes as dimethylallyl diphosphate: ATP/ADP isopentenyl-transferases. // Plant Cell Physiol. 2001. V. 42. P. 677−685.
  129. Kaminek M., Armstrong D.J. Genotypic Variation in cytokinin oxidase from phaseolus callus cultures. // Plant Physiol. 1990. V. 93. P. 1530−1538.
  130. Karp A. Somaclonal variation as a tool for crop improvement. // Euphytica. 1995. V. 85. P. 295 302.
  131. Kasahara H., Takei K., Ueda N., Hishiyama S., Yamaya Т., Kamiya Y., Yamaguchi S., Sakakibara H. Distinct isoprenoid origins of cis- and trans-zeatin biosyntheses in Arabidopsis. // J. Biol. Chem. 2004. V. 279. P. 14 049−14 054.
  132. Kawase M. Role of cellulase in aerenchyma development in sunflower // Am. J. Hot. 1979. V. 66. P. 183−190.
  133. Kende H., van der Knaap E., Cho H.T. Deepwater rice: a model plant to study stem elongation // Plant Physiol. 1998. V. 118. P. 1105−1110.
  134. Khanna H.K. and Daggard G.E. Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation of wheat using a superbinaiy vector and a polyamine-supplemented regeneration medium. // Plant Cell Rep. 2002. V. 21. P. 429−436.
  135. Klee H., Romano C. The roles of phytohormones in development as studied in transgenic plants. // Critical Rev. in Plant Sciences. 1994. V. 13. P. 311−324.
  136. Klein Т. M., Wolf E.D., Wu R. and Sanford J.C. High-velocity microprojectiles for delivering nucleic acids into living cells. // Nature. 1987. V. 327. P. 70−73.
  137. Klein T.M. and Jones T.J. Methods of genetic transformation: The gene gun. In: Vasil, I.K. ed. Molecular Improvement of Cereal Crops. // Kluwer
  138. Academic Publishers, Dordrecht, The Netherlands. 1999. P. 21−42.
  139. Kloti A., Iglesias V.A., Wijnn J., Burkhardt P.K., Datta S.K. and Potrykus I. Gene transfer by electroporation into intact scutellum cells of wheat embryos. //Plant Cell Reports. 1993. V. 12. P. 671−675.
  140. Krapp A, Hofmann B, Schafer C, Stitt M. Regulation of the expression of rbcS and other photosynthetic genes by carbohydrates: a mechanism for the «sink regulation» of photosynthesis. // The Plant Journal 1993.V. 3. P. 817−828.
  141. Kulaeva O.N., Karavaiko N.N., Selivankina S.Yu., Zemlyachenko Ya.V., Shipilova S.V. Recepter of trans-zeatin involved in transcription activation by cytokinin. // FEBS Lett. 1995. V. 366. P. 26−28.
  142. Kunkel Т., Niu Q.W., Chan Y.S., Chua N.H. Inducible isop>entenyl transferase as a high-efficiency marker for plant transformation. // Nat. Biotechnol. 1999. V. 17. P. 916−919.
  143. Kuroha Т., Kato H., Asami Т., Yoshida S., Kamada H., Satoh S. A trans-zeatin riboside in root xylem sap negatively regulates adventitious root formation on cucumber hypocotyls. // Journal of Experimental Botany. 2002. V. 53. №. 378. P. 2193−2200
  144. Laloue M., Fox J.E. Cytokinin Oxidase from Wheat: Partial Purification and General Properties. // Plant Physiol. 1989. V. 90. P. 899−906.
  145. Lander H.M. An essential role for free radicals and derived species in signal transduction. // FASEB J. 1997. V. 11. P. 118−124.
  146. Leckband G. and Lorz H. Transformation and expression of a stilbene synthase gene of Vitis vinifera L. in barley and wheat for increased fungal resistance. I I Theoretical and Applied Genetics. 1998. V. 96. P. 1004−1012.
  147. Lee В., Murdoch K., Topping J., Kreis M. and Jones M.G.K. Transient gene expression in aleurone protoplasts isolated from developing caryopses of barley and wheat. // Plant Molecular Biology. 1989. V. 13. P. 21−29.
  148. Letham D.S. Zeatin, a factor inducing cell division isolated from Zea mays.1.fe Sci. 1963. V. 8. P. 569−573.
  149. Li Y., Hagen G., Guilfoyle T.J. Altered morphology in transgenic tobacco plants that overproduce cytokinins in specific tissues and organs. // Dev Biol. 1992. V. 153. P. 386−395.
  150. Loreti E., Yamaguchi J., Alpi A., Perata P. Sugar modulation of a-amilase genes under anoxia. //Ann. Bot. 2003. V. 91. Spec. Iss. P. 143−148.
  151. Lorz H., Baker B. and Schell J. Gene transfer to cereal cells mediated by protoplast transformation. // Molecular and General Genetics. 1985. V. 199. P. 178−192.
  152. Mahalakshmi A. and Khurana P. Agrobacterium-mediated gene delivery in various tissues and genotypes of wheat (Triticum aestivum L.). // Journal of Plant Biochemistry and Biotechnology. 1995 V. 4. P. 55−59.
  153. Mahalakshmi A., Maheshwari S.C. and Khurana P. High frequency divisions in leaf base protoplasts of wheat (Triticum aestivum L.). // Journal of Plant Biochemistry and Biotechnology. 1993. V. 2. P. 61−65.
  154. Mallick N., Mohn F.H. Reactive oxygen species: response of algal cells. // J. Plant Physiol. 2000. V. 157. P. 183−193.
  155. Maniatis Т., Fritch F., Sambrook J. Molecular Cloning: a Laboratory Manual. // New York: Cold Spring Harbor Lab. 1989.
  156. Marks M.S., Kemp J.M., Woolston C.J. and Dale P.J. Agroinfection of wheat: A comparision of Agrobacterium strains. I I Plant Science. 1989. V. 63. P. 247−256.
  157. R.C., Мок M.C., Мок D.W. Isolation of a cytokinin gene, ZOG1, encoding zeatin O-glucosyltransferase from Phaseolus lunatus. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1999. V. 96. № 1. P. 284−289.
  158. McGaw B.A., Heald J.K., Horgan R. Dihydrozeatin metabolism in radishseedlings //Phytochemistry. 1984. V. 23. P. 1373−1377.
  159. McGaw B.A., Horgan R. Cytokinin catabolism and cytokinin oxidase. // Phytochemistry. 1983. V. 22. P. 1103−1105
  160. McManmon M., Crawford R.M.M. A metabolic theory of flooding tolerance: the significance of enzyme distribution and behaviour // New Phytologist. 1971. V. 70. № 2. P. 299−306.
  161. Medford J.I., Hordan R., El-Sawi Z., Klee H.J. Alterations of endogenous cytokinins in transgenic plants using a chimeric isopentenyl transferase gene//Plant Cell. 1989. V. l.P. 403−413.
  162. Merritt F., Kemper A., Tallman G. Inhibitors bf ethylene synthesis inhibit auxin-indused stomatal opening in epidermis detached from leaves of Vicia faba // Plant and Cell Physiol. 2001. V. 42. P. 223−230.
  163. Mi Q.L., Velazhahan R., Muthukrishnan S., Liang G.H. Wheat transformation mediated by Agrobacterium tumefaciens. Annual Wheat Newsletter. V. 45 online. 2000.1. Available from: http://wheat.pw.usda.goV/ggpages/awn/45/Textfiles/USKS.html#anchor36 7934
  164. Miller C., Skoog F., Okumura F., von Saltza M., Strong F. Isolation structure and synthesis of kinetin, a substance promoting cell division. // J. Am. Chem. Soc. 1956. V. 78. P. 1375−1384.
  165. Miyawaki K., Matsumoto-Kitano M., Kakimoto T. Expression of cytokinin biosynthetic isopentenyltransferase genes in Arabidopsis: tissue specificity and regulation by auxin, cytokinin, and nitrate. // Plant J. 2004. V. 37. 128 138.
  166. Moller E.M., Bahnweg G., Sandermann H., Geiger H.H. A simple and efficient protocol for isolation of high molecular weight DNA from filamentous fungi, fruit bodies, and infected plant tissues. // Nucleic. Acids Res. 1992. V. 20. № 22. P. 6115−6116.
  167. Monk L.S., Fagerstedt K.V., Crawford M.M. Superoxide Dismutase as an
  168. Anaerobic Polypeptide. // Plant Physiol. 1987. V. 85. P. 1016−1020.
  169. Mooney P.A., Goodwin P.B., Dennis E.S., Llewelleyn D.J. Agrobacterium tumefaciens-gene transfer into wheat tissues // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1991. V. 25. P. 209−218.
  170. Murashige Т., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. // Physiol. Plant. 1962. V. 15. P. 473−497.
  171. Musgrave M.E. Waterlogging effects on yield and photosynthesis in eight winter wheat cultivars. // Crop Sci. 1994. V. 34. P. 1314−1318.
  172. Nandi S.K., Palni L.M., Parker C.W. Dynamics of Endogenous Cytokinins during the Growth Cycle of a Hormone-Autotrophic Genetic Tumor Line of Tobacco. // Plant Physiol. 1990. V. 94. P. 1084−1089.
  173. Noctor G., Foyer C.H. Ascorbate and glutathione: Keeping Active Oxygen Under Control. // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1998. V. 49. P. 249−279.
  174. Palni L.M., Summons R.E., Letham D.S. Mass Spectrometric Analysis of Cytokinins in Plant Tissues: V. Identification of the Cytokinin Complex of
  175. Datura Innoxia Crown Gall Tissue. // Plant Physiol. 1983. V. 72. P. 858 863.
  176. Qi-xian Lai, Zhi-yi Bao, Zhu-jun Zhu, Qiong-qiu Qian, Bi-zeng Mao. Effects of osmotic stress on antioxidant enzymes activities in leaf discs of PSAG12-ZPJ modified gerbera // Journal of Zhejiang University Science B. 2007. V. 8. P. 458−464.
  177. Quirino В., Noh Y-S., Himelblau E., Amasino R.M. Molecular aspects of leaf senescence // Trends in Plant Science. 2000. V. 5. P. 278−282.
  178. Rahman M., Glover A., Peacock W.J., Dennis E.S., Ellis M.H. Effects of manipulation of pyruvate decarboxylase and alcohol dehydrogenase levels on the submergence tolerance of rice. // Australian J. Plant Physiology. 2001. V. 28. P. 1231−1241.
  179. Rasco-Gaunt S., Riley A., Barcelo P. and Lazzeri P.A. Analysis of particle bombardment parameters to optimise DNA delivery into wheat tissues. //
  180. Plant Cell Reports. 1999. V. 19. P. 118−127.
  181. Ricard В., van Toai Т., Chourey P., Saglio P.H. Evidence for the critical role of sucrose synthase for anoxic tolerance of maize roots using a double mutant//Plant Physiol. 1998. V. 116. P. 1323−1331.
  182. Rinaldi A.C., Comandini O. Cytokinin oxidase strikes again. // Trends Plant Sci. 1999. V. 4. № 8. P. 300.
  183. Ryu SB., Wang X. Expression of phospholipase D during castor bean leaf senescence. //Plant Physiol. 1995. V. 108. P. 713−719.
  184. Sa G., Mi M., He-chun Y., Ben-ye L., Guo-feng L., Kang C. Effects of ipt gene expression on the physiological and chemical characteristics of Artemisia annua L. // Plant Sci. 2001. V. 160. P. 691−698.
  185. Saab I.N., Sachs M.M., Flooding-induced xyloglucan endo-transglucosylase homolog in maize in responsive to ethylene and associated with aerenchyma // Plant Physiol. 1996. V. 112. P. 385−391.
  186. Sachs Т., Thimann K.V. The role of auxins and cytokinins in the release of buds from dominance // American J. Bot. 1967. V. 54. P. 136.
  187. Sato Т., Harada Т., Ischizawa K. Stimulation of glycolysis in anaerobicelongation of pondweed (Potamogeton distinctus) turions // J. Exp. Bot. 2002. V. 53. P. 1847−1856.
  188. Schmulling Т., Beinsberger S., De Greef J., Schell J., Van Onckelen H., Spena A. Construction of a heat-inducible chimeric gene to increase the cytokinin content in transgenic plant tissue. // FEBS Lett. 1989. V. 249. P. 401−406
  189. Schwartz D. An example of gene fixation resulting from selective advantage in suboptimal conditions // Am. Natural. 1969. P. 479−481.
  190. Scott H.D., DeAngulo J., Daniels M.B., Wood L.S. Flood duration effects on soybean growth and yield // Agron. J. 1989. V. 81. P. 631−636.
  191. Sharma D.P. and Swarup A. Effect of nutrient composition of wheat in alkaline soils. // Journal of Agricultural Science (UK). 1989. V. 112. P. 191−197.
  192. Smart C., Scofield S., Bevan M., Dyer T. Delayed leaf senescence in tobacco plants transformed with tmr, a gene for cytokinin production in Agrobacterium // Plant Cell. 1991. V. 3. P. 647−656.
  193. Smigocki A. Cytokinin content and tissue distribution in plants transformed by a reconstructed isopentenyl transferase gene. // Plant Mol. Biol. 1991 V. 16. P. 105−115.
  194. Smigocki A., Neal J.W. Jr., McCanna I., Douglass L. Cytokinin-mediated insect resistance in Nicotiana plants transformed with the ipt gene. // Plant Mol. Biol. 1993. V. 23. P. 325−335.
  195. Soejima H., Sugiyama Т., Ishihara К. Changes in chlorophyll contents of leaves and levels of cytokinins in root exudates during ripening of rice cultivars Nipponbare and Akenohoshi. // Plant Cell Physiol. 1995. V. 36. P. 1105−1114.
  196. Sorokin A.P., Ke X.Y., Chen D.F. and Elliott M.C. Production of fertile transgenic wheat plants via tissue electroporation. // Plant Science. 2000. V. 156. P. 227−233.
  197. Sparrow L.A. and Uren N.C. The role of manganese toxicity in crop yellowing on seasonally waterlogged and strongly acidic soils in northeastern Victoria. // Australian Journal of Experimental Agriculture. 1987. V. 27. P. 303−307.
  198. Strnad M., Peters W., Beck E., Kaminek M. Immunodetection and Identification of N-(o-Hydroxybenzylamino)Purine as a Naturally Occurring Cytokinin in Populus x canadensis Moench cv Robusta Leaves. // Plant Physiol. 1992. V. 99. P. 74−80.
  199. Summers Y.E., Ratcliffe R.G., Jackson M.B., Anoxia tolerance in the aquatic monocot Potamogeton pectinatus: absence of oxygen stimulates elongation in association with unusually Pasteur effect // J. Exp. Bot. 2000. V. 51. P. 1413−1422.
  200. Tadege M., Brandle R., Kuhlemeier C. Anoxia tolerance in tobacco roots: effect of overexpression of pyruvate decarboxylase. // The Plant Journal.1998. V. 14. P. 327−335.
  201. Takei К., Sakakibara H., Sugiyama T. Identification of genes encoding adenylate isopentenyltransferase, a cytokinin biosynthesis enzyme, in Arabidopsis thaliana. I/ J. Biol. Chem. 2001. V. 256. P. 26 405−26 410.
  202. Takumi S, Shimada T Variation in transformation efficiencies among six common wheat cultivars through particle bombardment of scutella tissues // Genes Genet Syst. 1997. V. 72. P. 63−69.
  203. Takumi S., Murai K., Mori N. and Nakamura C. Trans-activation of a maize Ds transposable element in transgenic wheat plants expressing the Ac transposase gene. // Theoretical and Applied Genetics. 1999. V. 98. P. 947−953.
  204. Tang K., Wu A., Yao J., Qi H., Lu X. Development mediated transformation and genetic analysis based selektion. // Acta Biotech. 2000. V. 20. iss. 2. P. 175−183.
  205. Trought M.C.T., Drew M.C. Effects of waterlogging on young wheat plants (Triticum aestivum L.) and on soil solutes at different soil temperatures // Plant and Soil. 1982. V. 69. P. 311−326.
  206. Van Toai T.T., Bom G., Zhang J. Flooding tolerance of crops // Encyclopedia of Soil Science. 2002. P. 1−3.
  207. Vartapetian B.B. Introduction: Life without Oxygen / Plant Life in Anaerobic Environments // Eds Hook D.D., Crawford R.M.M. Ann. Arbor, Michigan: Ann. Arbor Sci. 1978. P. 1−12.
  208. Vartapetian B.B., Andreeva I.N., Generozova I.P., Polyakova L.I., Maslova I.P., Dolgikh Y.I., Stepanova A.Yu. Functional electron microscopy in studies of plant response and adaptation to anaerobic stress. // Ann. Bot. 2003. V. 91. P. 155−172.
  209. Vartapetian B.B., Andreeva I.N., Kozlova G.I. The resistance to anoxia and the mitochondria fine structure of rice seedlings. // Protoplasma. 1976. V. 88. P. 215−224.
  210. Vartapetian B.B., Andreeva I.N., Kozlova G.I., Agapova L.P. Mitochondrial ultrastructure in roots of mesophyte and hydrophyte at anoxia and after glucose feeding. // Protoplasma. 1977. V. 91. P. 243−256.
  211. Vartapetian B.B., Jackson M.B. Plant adaptations to anaerobic stress. // Ann. Bot. 1977. V. 79. suppl. A. P. 3−30.
  212. Vasil V., Brown S.M., Re D., Fromm M.E. and Vasil I.K. Stably transformed callus lines from microprojectile bombardment of cell suspension cultures of wheat. // Biotechnology. 1991. V. 9. P. 743−747.
  213. Vasil V., Castillo A.M., Fromm M.E. and Vasil I.K. Herbicide resistant fertile transgenic wheat plants obtained by microprojectile bombardment of regenerable embryogenic callus. // Biotechnology. 1992. V. 10. P. 667 674.
  214. Vasil V., Srivastava V., Castillo A.M., Fromm M.E. and Vasil I.K. Rapid production of transgenic wheat plants by direct bombardment of cultured immature embryos.//Biotechnology. 1993. V. 11. P. 1553−1558.
  215. Voesenek L.A.C.J., Peeters A.J.M. Submergence-induced shoot elongation: plant hormones and microarrays // Abst. 8th Congr. Int. Soc. Plant Anaerobiosis (Perth. West Australia). 2004. P. 44.
  216. Vriezen W.H., Zhou Z., van der Straeten D. Regulation of submergenceinduced enhanced shoot elongation in Oryza sativa L. // Ann. Bot. 2003. V. 91. Spec. Iss. P. 263−270.
  217. Wadman-van-Schravendijk H., van Andel O.M. Interdependence of growth, water relations and abscisic acid level in Phaseolus vulgaris during waterlogging // Physiologia plantarum. 1985. V. 63. P. 215−220.
  218. Wang Y.C., Klein T.M., Fromm M., Cao J., Sanford J.C.and Wu R. Transient expression of foreign genes in rice, wheat and soybean cells following particle bambardment. // Plant Molecular Biology. 1988. V. 11, P. 433−439.
  219. Warner G.J., Rusconi C.P., White I.E., Faust J.R. Identification and sequencing of two isopentenyladenosine-modified transfer RNAs from Chinese hamster ovary cells. // Nucleic. Acids Res. 1998. V. 26. № 23. P. 5533−5535.
  220. Waters I., Armstrong W., Thompson C. J, Setter T.L., Adkins S. Diurnal changes in radial oxygen loss and ethanol metabolism in roots of submerged and non-submerged rice seedlings // New Phytologist. 1989. V. 113. P. 439−451.
  221. Waters I., Kuiper P.J.C., Watkin E., Greenway H., Colmer T.D. Effects of anoxia eat seedlings: I. Interaction between anoxia and other environment factors. //J. Exp. Bot. 1991a. V. 42. P. 1427−1435.
  222. Waters I., Morel S., Greenway H., Colmer T.D. Effects of anoxia on wheat seedlings: II. Influence of O2 supply prior to anoxia on tolerance to anoxia. Alcoholic fermentation and sugar levels // J. Exp. Bot. 19 916. V. 42, P.1437−1447.
  223. Weeks J.T., Anderson O.D. and Blechl A.E. Rapid production of multiple independent lines of fertile transgenic wheat (Triticum aestivum). // Plant Physiology. 1993. V. 102. P. 1077−1084.
  224. Werner Т., Hanus J., Holub J., Schmulling Т.,-Van Onckelen H., Strnad M. New cytokinin metabolites in IPT transgenic Arabidopsis thaliana plants. // Physiol Plant. 2003. V. 118. P. 127−137.
  225. Werner Т., Motyka V., Strand M., Schmulling Th. Regulation of plant growth by cytokinin. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2001. V. 98. P. 1 048 710 492.
  226. Werr W. and Lorz H. Transient gene expression in a Gramineae cell line. // Molecular and General Genetics. 1986. V. 202. P. 471−475.
  227. Woolston C.J., Barker R., Gunn H., Boulton M.I. and Mullineaux P.M. Agroinfection and nucleotide sequence of cloned wheat dwarf virus DNA. // Plant Molecular Biology. 1988. V. 11. P. 35−43.
  228. Wu H., Sparks C., Amoah B. and Jones H.D. Factors influencing successful Agrobacterium-medatQd genetic transformation of wheat. // Plant Cell Rep. 2003. V. 21. P. 659−668.
  229. Wu J.G., Liu S.F., Li F.R. and Zhou J.R. Study on the effect of wet injury on growth and physiology winter wheat. // Acta Agriculture Universitatis Henanensis. 1992. V. 26. P. 31−37.
  230. Xia J.H., Saglio P.H. H4″ efflux and hexose transport under imposed energy status in maize root tip. //Plant Physiol. 1990.V. 93. P. 453−459.
  231. Xia J.H., Saglio P.H., Roberts J.K.M. Nucleotide levels do not critically-determine survival of maize root tips acclimated to a low oxygen environment. //Plant Physiol. 1995. V. 108. P. 589−595.
  232. Yagisawa F., Mori Т., Higashiyama Т., Kuroiwa H., Kuroiwa T. Regulation of Brassica rapa chloroplast proliferation in vivo and in cultured leaf disks. //Protoplasma. 2003. V. 222. P. 139−148.
  233. Yusibov V.M., II P.C., Andrianov V.M., Piruzian E.S. Phenotypically normal transgenic T-cyt tobacco plants as a model for the investigation of plant gene expression in response to phytohormonal stress. // Plant Mol. Biol. 1991. V. 17. P. 825−836.
  234. Zaghmout O.M.F. Transformation of protoplasts and intact cells from slowly growing embryogenic callus of wheat (Triticum aestivum L.). // Theoretical and Applied Genetics. 1994. V. 89. P. 577−582.
  235. Zambryski P., Joos H., Genetello C., Leemans J., Van Montagu M. and
  236. Schell J. Ti plasmid vector for the introduction of DNA into plant cells without alteration of their normal regeneration capacity. // EMBO Journal. 1983. V. 2. № 12. P. 2143−2150.
  237. Zhang J., van Toai Т., Huynh L., Preiszner J. Development of flooding-tolerant Arabidopsis thaliana by autoregulated cytokinin production. // Molecular Breeding. 2000a. V. 6. P. 135−144.
  238. Zhang L., Rybczynski J.J., Langenberg W.G., Mitra A. and French R. An efficient wheat transformation procedure: transformed calli with long-term morphogenic potential for plant regeneration. // Plant Cell Reports. 20 006. V. 19. P. 241−250.
  239. Zhou H., Stiff C.M. and Konzak C.F. Stably transformed callus of wheat by electroporation-induceddirect gene transfer. // Plant Cell Reports. 1993. V. 12. P 612−616.
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?