Экспериментальный трихинеллез: разработка новых методов моделирования, диагностики, профилактики и лечения
Диссертация
Исходя из этого, проведенные нами исследования были направлены на разработку нового, высокоинформативного метода диагностики трихинеллёза у экспериментально зараженных лабораторных животных, применение этого метода для оценки терапевтической активности оригинальных экспериментальных лекарственных форм препаратов группы карбаматбензимидазолов, для определения протективной активности оригинального… Читать ещё >
Содержание
- I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
- I. Сведения о биологии возбудителя, диагностике, лечении и 10 профилактике трихинеллеза
- 1. 1. Систематическое положение Т. spiralis
- 1. 2. Географическое распространение трихинеллеза
- 1. 3. Морфология и развитие паразита
- 1. 4. Диагностика трихинеллеза
- 1. 5. Химиотерапия трихинеллеза
- 1. 6. Профилактика трихинеллеза
- 1. 7. Моделирование трихинеллеза
- II. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
- 1. Материалы и методы
- 1. 1. Методы получения инвазионного материала и заражения лабораторных животных
- 1. 1. 1. Метод переваривания скелетных мышц в искусственном же- 40 лудочном соке
- 1. 1. 2. Метод выделения кишечных трихинелл
- 1. 1. 3. Подсчет количества личинок и кишечных трихинелл при за- 41 ражении животных
- 1. 1. 4. Заражение лабораторных животных личинками трихинелл
- 1. 1. 5. Заражение лабораторных животных кишечными трихинел- 41 лами
- 1. 2. Методы диагностики инвазии у экспериментально заражен- 42 ных лабораторных животных
- 1. 2. 1. Оригинальный метод прижизненной диагностики (МПД) 42 трихинеллеза у экспериментально зараженных лабораторных животных
- 1. 2. 2. Метод компрессорной трихинеллоскопии (КТ)
- 1. 3. Методика проведения опытов по экспериментальной химио- 45 терапии и оценке протективной активности препарата на основе НПА
- 1. 3. 1. Методика опытов по скринингу и изучению эффективности хи- 45 миотерапевтических препаратов
- 1. 3. 2. Методика и схемы опытов по определению протективной ак- 46 тивности оригинального препарата на основе нового паразитарного антигена (НПА)
- 1. 4. Постановка и учет опытов
- 1. 4. 1. Постановка и учет опыта по сравнению метода прижизненной 48 диагностики (МПД) и посмертной комрпессорной трихинеллоскопии (КТ)
- 1. 4. 2. Схемы опытов по оценке терапевтической активности оригинальных экспериментальных лекарственных форм препаратов группы карбаматбензимидазолов
- 1. 4. 2. 1. Схема опыта по оценке терапевтической активности ориги- 49 нальной масляной суспензии медамина (МСМ)
- 1. 4. 2. 2. Схема опыта по оценке терапевтической активности ориги- 50 нального водного раствора медамина (ВРМ)
- 1. 4. 2. 4. Схема опыта по оценке терапевтической активности оригинальной коммерческой 2,5%-суспензии альбендазола (СА)
- 1. 4. 2. 4. Оценка терапевтической активности оригинального водного 50 раствора альбендазола (ВРА)
- 1. 4. 2. 5. Сравнительная эффективность оригинальных масляных сус- 51 пензий эсказола (МСЭ) и немозола (МСН) при экспериментальном трихинеллезе белых мышей на мышечной стадии инвазии
- 1. 4. 3. Постановка и учет опыта по оральному заражению кишечны- 51 ми трихинеллами интактных лабораторных животных
- 1. 1. Методы получения инвазионного материала и заражения лабораторных животных
- 2. 1. Сравнение методов прижизненной диагностики (МПД) три- 52 хинеллеза и посмертной компрессорной трихинеллоскопии
- 2. 1. 1. Сравнительная эффективность МПД и КТ в отношении каче- 52 ственных параметров инвазии
- 2. 1. 2. Сравнительная эффективность МПД и КТ по количественным 60 параметрам инвазии
- 2. 2. Применение МПД у экспериментально зараженных животных 63 при скрининге и оценке эффективности противотрихинеллезных препаратов
- 2. 2. 1. Эффективность оригинальной масляной суспензии медамина 63 (МСМ) при экспериментальном трихинеллезе белых мышей на мышечной фазе инвазии
- 2. 2. 2. Оценка терапевтической активности оригинального водорас- 65 творимого продукта из медамина (ВРМ)
- 2. 2. 3. Оценка терапевтической активности коммерческой 2,5%- 67 суспензии альбендазола (СА)
- 2. 2. 4. Оценка терапевтической активности водорастворимого про- 69 дукта из альбендазола (ВРА)
- 2. 2. 5. Оценка сравнительной эффективности оригинальных масля- 70 ных суспензий эсказола (МСЭ) и немозола (МСН) при экспериментальном трихинеллезе белых мышей на мышечной фазе инвазии
- 2. 3. Протективная активность препарата на основе нового парази- 73 тарного антигена (НПА) при экспериментальном трихинеллезе белых крыс
- 2. 4. Искусственная трансплантация просветных форм трихинелл
Список литературы
- Бекеш О.-Я.Л., Рачковская И. В. Аллергическая реакция при экспериментальном трихинеллезе тучных клеток брызжеки крыс //Матер, науч. ис-след. членов Всес. об-ва гельминтол.- М.- 1972, — Вып.24.- С. 15−18.
- Белозеров С.Н. Эффективность реакции непрямой иммунофлуорес-ценции при экспериментальном трихинеллезе свиней //Бюл. ВИГИС.- М.-1973.- Вып. 10.- С.11−15.
- Белозеров С.Н. Применение непрямой реакции иммунофлуоресценции для прижизненной диагностики трихинеллеза свиней //Матер, докл. 2-й Всес. конф. по пробл. трихинеллеза человека и животных.- Вильнюс.-1976.- С.175−178.
- Белозеров С.Н. Иммунологическая диагностика гельминтозов //Автореф. дис. док. вет. наук.- М.- 1990.- 44с.
- Белозеров С.Н., Бессонов А. С. Применение реакции иммунофлуоресценции для прижизненной диагностики трихинеллеза свиней в производственных условиях //Бюл. ВИГИС.- М.- 1974, — Вып.12.- С. 175−179.
- Белозеров С.Н., Гуданавичус Т. И. Реакция энзимом меченных антител для диагностики трихинеллеза //Ветеринария.- 1982.- № 11.- С.41−44.
- Белозеров С.Н., Жданова О. Б. Прижизненная диагностика трихинеллеза песцов с помощью иммуноферментной реакции //Ветеринария.- 2000.-№ 2.- С.34−36.
- Белозеров С.Н., Шеховцов Н. В. Реакция иммунофлуоресценции для диагностики трихинеллеза //Ветеринария.- 1978.- № 2.- С.61−64.
- Бережко В.К. Видоспецифические антигены гельминтов и иммуно-ферментная реакция в диагностике гельминтозов //Тр. ВИГИС.- 1988.-Т.29.- С.8−22.
- Бережко В.К., Белозеров С. Н., Шеховцов Н. В., НаписановаЛ.А., Успенский А. В. Диагностическая эффективность имму, но ферментной реакции при трихинеллезе свиней //Матер. 5-й Всес. конф. по пробл. человека и животных, Новочеркасск.- 1988.- С.21−22.
- Бессонов А.С. К вопросу об аллергической диагностике трихинеллеза свиней //Тр. ВИГИС.- 1962.- Т.9.- С. 196−209.
- Бессонов А.С. Изучение реакции латекс-агглютинации для диагностики трихинеллеза свиней //Вопросы очаговости болезни.- Алма-Ата.-1966, — С.23−25.
- Бессонов А.С. Сравнительная диагностическая эффективность внут-рикожной аллергической реакции, биопсии, трихинеллоскопии ножек диафрагмы при трихинеллезе свиней //Тематический сборник работ по гель-минтол. с/х животных.- М.- 1967.- № 13.- С.165−174.
- Бессонов А.С. Эпизоотология и диагностика трихинеллеза свиней //Животноводство и ветеринария.- М: Колос.- 1968.- С.325−337.
- Бессонов А.С. Эпизоотология (эпидемиология), диагностика и профилактика трихинеллеза (монографический анализ и собственные исследования) //Автореф. дис. док. вет. наук.- М.- 1970.
- Бессонов А.С. Диагностика трихинеллеза//Вильнюс:Минтис.- 1975.-380с.
- Бессонов А.С. Иммунитет и иммунодиагностика трихинеллеза //Трихинеллез,-М.:Колос.- 1976.- С.162−237.
- Бессонов А.С., Успенский А. В. Прижизненная диагностика трихинеллеза песцов в звероводческом хозяйстве //Бюл. ВИГИС.- 1971.- Вып.75.-С.5−9.
- Бессонов А.С., Успенский А. В. Методика постановки и учета реакции кольцепреципитации в капилляре для прижизненной диагностики трихинеллеза песцов //Бюл. ВИГИС.- 1977.- Вып. 19.- С. 9.
- Бессонов А.С. Трихинеллез. Итоги науки и техники. — Зоопаразито-логия. — 1979.-Т.6.-С. 130−207.
- Гаркави Б.Л. Реакция кольцепреципитации при трихинеллезе свиней (РКП) //Ветеринария.- 1971.- № 7.- С.69−70.
- Ефремов Е.Е., Ермолин Г. А. Иммуноферментный метод обнаружения антител кантигенам декапсулированных личинок трихинелл //В кн.:Морфофункциональные закономерности неспецифических защитных реакций организма.- М.- 1980.- С. 112−116.
- Жданова О.Б. Диагностическая эффективность ИФА при трихинеллезе песцов //Матер, докл. 7-й Науч. конф. по трихинеллезу человека и жмвотных.- М.- 1996.- С.27−28.
- Жданова О.Б. Иммунологическая диагностика трихинеллеза песцов //Дис. канд. вет. наук.- Киров.- 1997.- 154с.
- Калюс В.А. Трихинеллез (трихиноз) человека //Автореф. дис. док. мед. наук.- М.- 1947.- 41с.
- Костецкий А.Ф., Васерин Ю. И. Сравнительная характеристика чувствительности и специфичности РНГА с культуральным и коммерческим трихинеллезными антигенами //Матер. 5-й Всес. конф. по проблеме трихинеллеза человека и животных, — М.- 1988.- С.90−91
- Лейкина Е.С. Сероэпидемиологические исследования пригельминто-зах//Мед. паразитол. и паразитар. болезни, — 1989.- № 2.- С.3−8.
- Лейкина Е.С., Мартыненко В. Б., Зорихина В. И. и др. Формула коррекции показателей сероэпидемиологического обследования населения наэхинококкозы//Мед. паразитол. и паразитар. болезни.- 1984.- № 1.- С. 17−19.96
- Лейкина Е.С., Полякова О. И. Упрощенный метод иммунодиагностики гельминтов. I Реакция агглютинации при диагностике экспериментального аскаридоза и трихинеллеза животных //Мед. паразитол и паразитар. болезни.- 1956.- Вып.25(2).- С. 131−136.
- Лукашенко Н.П. Прижизненная диагностика трихинеллеза свиней методами аллергической (внутрикожной) и серологических реакций //Дисс. на соиск. уч. ст. канд. вет. наук М.- 1956, — 21с.
- Лукашенко Н.П. Изучение прижизненной диагностики трихинеллеза свиней методами аллергических и серологических реакций //Ветеринария.-1957.-№ 2.- С.31−32.
- Михайлов А.Т., Симирский В. Н. Методы иммунохимического анализа в биологии развития //М.:Наука.- 1991.- 288С.
- Озерецковская Н.Н. Иммунологические и иммунопатологические реакции в клинике и патогенезе трихинеллеза //Тр. 1 Моск. мед. ин-та.- 1967.-Т.48.- С.179−194.
- Пашук В.П. Экспериментальные данные к применению иммунологических реакций в диагностике трихинеллеза //Здравоохранение Белоруссии, — 1956.- Вып.З.- С.42−45.
- Пашук В.П. Опыт серологической дтагностики трихинеллеза у свиней/Матер. ВОГ.- 1965.- 4.4.- С. 191−195.
- Пашук В.П. Трихинелльные антигены и серодиагностика трихинеллеза //Вет. наука пр-ву.- 1984.- Вып.22, — С. 199−206.
- Пашук В.П. Реакция непрямой иммунофлуоресценции и непрямой гемагглютинации в диагностике трихинеллеза человека и вопросы перси-стенции трихинелл //Матер. 4-й Всес. конф. по пробл. человека и животных.- Ереван.- 1985.- С.107−110.
- Полетаева О.Г., Красовская Н. Н., Глаголева В. А. Характеристика иммуноферментной тест-системы с антигенами трихинелл //Мед. паразитол. и паразитар. болезни.- 1986.- № 3.- С.51−56.
- Полетаева О.Г., Нгуен Суан Тхао, Красовская Н.Н. Оценка эффективности серологических реакций при трихинеллезе //Матер, докл. науч. конф. Гельминтозы меры борьбы и профилактика.- М.- 1994.- С.121−123.
- Полетаева О.Г., Угликова М., Хюбнер И., Красовская Н. Н. Эффективность двух тест-систем иммуноферментного анализа в диагностике трихинеллеза человека //Мед. паразитол. и паразитар. болезни.- 1990.- № 4.-С.43−45.
- Сакалаускайте Ю.А. Иммунный ответ хозяина на паразитирование трихинелл и его изменение под воздействием мебендазола. Сообщение 1//Мед. паразитол. и паразитар. болезни.- 1978.- № 5.- С.24−29.
- Сапунов О.Я. Эффективность реакции кольцепреципитации (РКП) при диагностике трихинеллеза свиней //Бюл. ВИГИС.- 1986.- Вып.43.- С. 83.
- Степанов А.В. Динамика преципитинов в сыворотке крови и лейкоцитарная формула у лабораторных животных при экспериментальном трихинеллезе //Сб науч. тр. Моск. вет. акад.- 1975.- Т.79(2).- С.13−14.
- Субботин Н.Ф. Эффективность иммунологических реакций в диагностике трихинеллеза //Ветеринирия, — № 2.- С.66−68.
- Тараканов В.И. Методика приготовления искусственной питательной среды для культивирования трихинелл //Матер. 2-й Всес. конф. по пробл. трихинеллеза человека и животных, Вильнюс.- 1976.- С. 209.
- Тараканов В.И. Методические приемы и принципы культивирования гельминтов в искусственных питательных средах //Тр. ВИГИС.- 1985.-№ 28.- С. 109−116.
- Твердохлебова Т.И., Васерин Ю. И., Нагорный С. А., Попов М. А. Разработка технологии получения диагностикума трихинеллезного антигенного эритроцитарного сухого для РНГА //Метер. докл. науч. конф.- М.- 2001.-С.268−270.
- Успенский А.В. Изучение реакции латексагглютинации для прижизненной диагностики трихинеллеза животных //Бюл. ВИГИС.- М.- 1971.-Вып.5.- С.127−130.
- Успенский А.В. Сравнительная диагностическая эффективность агг-лютинационных реакций при трихинеллезе //Автореф. дис. канд. вет. наук.-М.- 1972.- 27с.
- Успенский А.В., Назарова Н. С., Нечиненный А. Д., Певнева В. Д. Реакция кольцепреципитации в капилляре (РКПК) для прижизненной диагностики трихинеллеза песцов //Бюл. ВИГИС.- М.- 1975.- Вып. 16, — С.80−81.
- Шеховцов Н.В., Бережко В, К., Написанова JI.A. Сравнительная эффективность РНИФ и ИФР в диагностике трихинеллеза свиней //Ветеринария.- 1989.- № 12.- С.39−41.
- Arriaga C., Yepez-Mulia L., Morilla A., Ortega-Pierres G. Detection of circulating Trichinella spiralis muscle larva antigens in serum samples of experimentally and naturally infected swine //Vet. Parasitol.- 1995.- V.58(4).- P.319−326.
- Armas-Serra C., Gimenez-Pardo C., Bernadina W.E., Rodriguez-Caabeiro F. Antibody response to a protease secreted by Trichinella spiralis muscle larvae //Parasitol. Res.- 1995.- V.81(6).- P.540−542.
- Avrameas S., Guilbert B. Dosade enzymo-immunoglogique de proteines a l’aide d’immunosorbants d’antigenes marques aux enzymes //S.R. Acad, Sci., Ser.D.- 1971, — V.273.- P.2705−2715.
- Berntzen A.K. Efects of environment on the growth and development of Trichinella spiralis in vitro //Proceedings of the 3-d Inter. Conf. on Trichinellosis. New York.- 1974.- P.25−30.
- Bloomfield N., Snook G.W. Use of slide-latex test for detecting trichinosis in hogs //Cornell Veterinarian.- 1962.- V.52(4).- P.569−581.
- Boctor F.N., Farid Z. El-Scherif N. Using whole bacteria, LPS, and soluble antigens to detect IgG, IgM, IgA in human brucellosis by dot-ELISA with nitrocellulose as a solid phase //Clin. Chemistry.- 1987.- V.33.- P. 1570−1571.
- Bozicevich J. The bentonite flocculation test for trichinosis and its evaluation with the compliment fixation test on sera obtained from infected animals //Wiad. Parasitol.- I960.- V6(4).- P.345.
- Catherine S. McVay, Peter Bracken, Lucille F. Gagliardo, Judith Apple-ton. Antibodies to tyvelose exhibit multiple modes of interference with the epithelial niche of Trichinella spiralis //Infection and immunity, Apr.200, P1912−1918.
- Choy W.E., Lin P.L., Ng M.H. A comparison of immunological methods for the detection of Trichinella spiralis antigen //J. Immunol. Meth.- 1988.-V.113(1).- P.17−24.
- Choy W.E., Lin P.L. A rapid method for detecting Trichinella spiralis larvae in pork using a monoclonal AT-latex conjugate //Vet. Parasitol.- 1989.-V.32(4).- P.301−310.
- Chroust К. Sensibility of indirect fluorescent method with living Trichi-nella spiralis larvae //Wiad. Parasitol.- 1970.- V.16(l).- P.12−15.
- Chroust K., Dubansky V. Fluorescent-antibody studies on muscle larvae Trichinella spiralis (Owen, 183 5), II the indirect fluorescent-antibody method //Acta Univ. Agric. Fac. Vet.- 1967.- V.36(2).- P.299−306.
- Chroust K., Mittermayer T. Indirect fluorescent antibody test in diagnosis of trichinellosis in man //Acta Vet. Brno.- 1983.- V.52(3−4).- P. l77−181.
- Chung MS, Joo KH, Quan FS, Kwon HS, Cho SW/ Efficacy of flubenda-zol and albendozole against Trichinella spiralis in mice. Parasite, 2001 Jun, 8 (2 Suppl) S 195−8.
- Daryl O.M., Benjamin L. An enzyme-linked immunosorbent assay for the detection of platelet antibodies using detergent-solubilized platelets immobilized on nitrocellulose discs //J. Immunol. Meth.- 1987, — V. I05.- P.63−70.
- Derer M.M., Miescher S., Johansson H. Application of the dot immuno-binding assay to allergy diagnosis //J. Allergy Clin. Immunol.- 1984.- V.74.-P.85−92.
- Diaconu S., Militaru D., Vior E., Sarca M. Kinetics Trichinella antibodies defected by ELISA, the ELITRICH kit, in experimentally infected pigs //Studies and Researches in Vet.Ved.- 1995.- V.3.- P.77−79.
- Draelants E., Hofkens E., Harding E., Brandt J., Geerts S. Development of a dot-enzyme immunoassay for the detection of circulating antigen in cattle infected with Taenia saginata cysticerci //Res. Vet. Sci.- 1995.- V. 58(1).- P.99−100.
- Durham R.J., Isenstein R.S., Despommier D.D., Robinson B.J., Mattingly J.A. The use of an ELISA for detection of antibody to Trichinella spiralis in porcine serum of blood //Abstr. Annu. Meet. Amer. Soc. Microbiol.- 1987.- P276.
- Durham R.J., Isenstein R.S., Despommier D.D., Mattingly J.A. Development of an ELISA for detection of antibody to Trichinella spiralis in porcine serum //Abstr. Annu. Meet. Amer. Soc. Microbiol.- 1986.- P.277.
- Dzebenski Т.Н., Bitkowska E., Plonlca W. Detection of a circulating parasitic antigen in acute infections with Trichinella spiralis: diagnostic significance of finding //Zentralblatt for Bakteriologie.- 1994.- V.281(4).- P.519−525.
- Engvall E., Perlman P. Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). Quatitative assay of immunoglobulin G by means of enzymelabelled antigen and antibody-coated tubes //Biochim., Biophys. Acta.- 1971.- V.271.- P.427−435.
- Faubert O.M., Viens P., Magluilo P. Superiority of the ELISA technique over parasitological methods for detection of trichinellosis in slaughtered pigs in Canada//Can. I. Cong. Med.- 1985.- V.49(l).- P.75−78.
- Franci C., Ingles J. et al. Further studies on the ELISA-spot technique. Its applications to particulate antigens and potential improvement in sensitivity //J. Immunol. Meth.- 1986.- V.88.- P.225−232.
- Fiydas S.I., Alexakis A.E., van Knapen F. Prevalence of IgG antibodies to Trichinella spiralis in dogs in Macedonia, northern Greece /Net. Parasitol.-1995.-V.59(l).-P.81−85.
- Furuya K., Nero S. et al. Adsorption of influenza viruses to nitrocellulose membrane filters by filtration and their quantitative densitomatric determination //J. Virol. Meth.- 1984.- V.- P.191−199.
- Gamble H.R., Anderson W.R., Graham C.E., Murrell K.D. Diagnosis of swine trichinosis by enzyme-linked immunosorbent (ELISA) using an excretory-secretory antigen //Vet. Parasitol.- 1983.- V.13(4).- P.349−361.
- Gamble H.R., Graham C.E. Comparison of monoclonal antibody-based competetiv and indirect enzyme-linked immunosorbent assays for the diagnosis of swine trichinosis //Vet. Immunol. Immunopathol.- 1984.- V.6(3−4).- P.379−389.
- Gamble H.R., Murrell K.D. Conservatin of diagnostic antigen epitopes among biologically diverse isolates of Trichinella spiralis //J. Parasitol.- 1986.1. V.72(6).- P.921−925.
- Gamble H.R., Rapic. D., Marinculic. A., Murrell K.D. Evaluation on excretory-secretory antigens for the serodiagnosis of swine trichinellosis //Vet. Pa-rasitol.- 1988.- V.30(2).- P.131−137.
- Gancarz Z. Metody immunologiczne w diagnostyce wlosnicy u ludzi i zvierzat //Med. dosw. i microbiol.- 1968.- V.20(2).- P.213−218.
- Giannini S.H. Induction and detection of leishmanial infections in Rattus norvegicus //Trans. Roy. Trop. Med. Hyg.- 1985.- V.79.- P.458−461.
- Gore R.W., Sadun E.H. A soluble antigen fluorescent antibody (SAFA) test for the immunodiagnosis of trichinellosis in man and experimental animals //II Int. Conf. of Trichinellosis. Wroclaw.- 1969.-P.153−154.
- Haralambidis S.T., Fridas S.J., Himonas C.A. Latex agglutination test for detecting Trichinella spiralis infections in pigs using muscle extract //Vet. Parasi-tol.- 1989.- V.34(3).- P.191−201.
- Hardman E., Jarvis H.M. Nitrocellulose-based assays for the detection of glucolipids and other antigens: mechanism of binding to nitrocellulose //J. Immunol. Meth.- 1985.- V.33.- P. l 13−123.
- Hassan M.M., Seleem M.A., Eterwa S.E. Humoral and cellular immune responses in experimental trichinosis //J. Egypt. Soc. Parasitol.- 1994.- V.24(2).-P.363−370.
- Hawkes R., Niday E., Gordan J.A. A dot immunobinding assay for monoclonal and other antibodies. //Analyt. Biochem.- 1982.- V. l 19.- P. 142−147.
- Ibhu В., Lesia В., Sumana B. Detection of IgE binding to same airborne pollen and fungal allergens using dot immunoassay //J. E. Mitchell Sci. Soc.-1988.- V.103.- P.77−79.
- Isenstein R.S. Testing of swine for trichinellosis in the US //4-th Int. Conf. on Trichinellosis Abstr. of Papers.- 1976.- V.82
- Isenstein R.S., Marks H.M., Webert D.W., Judkins J.C., Parker C.M., Despommier D.D. Development of an enzyme immunoassay for surveillance of trichinellosis in swine //6-th Int. Conf. on Trichinellosis. Trichinellosis Proceedings.- 1985.- P.240−245.
- Isenstein R.S., Webert D.W., Leightg J.C., Zimmermann W.J., Singh P., Oliver D.G., Jang L. Development of an industrial immunoassay for trichinellosis //7-th Int. Conf. on Trichinellosis Prog, and Abstr.- 1988.- №.62.
- Ivanoska D., Sofrinic L., Movsesijan M., Cuperlovic K., Murrell K.D., Gamble H.R. Detection of Trichinella spiralis antigens //Period. Biol.- 1986.-V.88(l).- P.243−245.
- Ivo dos Santos J., Galvao-Castro B. et al. Dot enzyme immunoassay. A simple, cheap and stable test for antibody to human immunodeficiency virus (HIV) //J. Immunol. Meth.- 1987.- V.99.- P. 191−194.
- Jacob H.P., Eckert J., Jemmi Т., Gottstein B. Trichinellosis in slaughtered and wild animals in Switzerland using a digestion method and a serologic method (ES-ELISA). //Schweiz Arch. Tierheilkd.- 1994.- V.136(9).- P.298−308.
- Jiang H.J., Yang L.X., Pang S.H., Sun Т., Xie S.P., Meng J.M., Wen G.Z., Wang G.Z. Dot-ELISA in the diagnosis of neurocysticercosis // Chung Kuo Chi Sheng Chung Hsueh Yu Chi Sheng Chug Ping Tsa Chin.- 1990.- V.8(3).-P.207−209.
- Jol-Van der Zijde C.M., Labadie J. et al. Dot immunobinding assay as an accurate and versatile technique for the quantification of human IgG subclasses //J. Immunol. Meth.- 1988.- V.108.- P. 195−203.
- Kagan I.G. Standardization and quality control of immunodiagnostic methods //Behring Inst. Mitt.- 1982.- V.71.- P.10−22.
- Kagan I.G. Serodiagnosis of trichinosis //Immunol. Parasit. Infect.-1976.- P.143−151.
- Kampelmacher E.H., Streefkerk E.W. Experiments with a latex-slide test for the serodiagnosis of trichinosis //Wiad. Parazytol.- 1965.- V. ll (4).- P.317−326.
- Kimball S.R., Rannels S.L. et al. Quantitation of proteins by dot immunobinding assay. A comparison of visualization methods using eukariotic initiation factor 2 and a monospecific antibody. //J. Immunol. Meth.- 1988.- V.106.-P.217−223.
- Knapen van F., Franchimont J.H., Ruitenberg E.J., Andre P., Baldelli В., Gibson Т.Е., Henriksen S.A. et al. Comparison of three methods for detection of prolonged experimental Trichinellosis in pigs //Vet. Parasitol.- 1984a.- V.16(l-2).- P. 167−171.
- Knapen F. Van., Ruitenberg E.J., Vermeulen C.J. Results obtaind with enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) in conventionally held experimentally and naturally Trichinella spiralis infected slaughter pigs //4-th Int. Conf. on
- Trichinellosis. Abstr. of Papers.- 19 766.- P.78.105
- Korinkova К., Kovarcik H., Pavlicova Z., Koldela B. Detection of Trichinella infections in experimentally inoculated goat kids by ELISA //Helminthologia.- 2003.- V.40(3).- P. 179.
- Kozar Z., Kozar M. Indirect fluorescent antibody test in diagnosis on tri-chinellosis //Wiad. Parazytol.- 1970.- V.16(l).- P.7−13.
- Laemmli U.K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4 //Nature.- 1970.- V.227.- P.680−685.
- Layne E. Spectrophotometric and turbidometric methods for measuring proteins //Methods Enzymol.- 1957.- V.3.- P.447−454.
- Lazarovits G., Zutra D., Bar-Joseph M. Enzyme-linked immunosorbent assay on nitrocellulose membranes (dot-ELISA) in the serodiagnosis of plant pathogenic bacteria//Canad. J. Microbiol.- 1987.- V.33.- P.98−103.
- Leek M.L. van der, Dame J.B., Littel R.C. Minimizing ELISA background in the diagnosis of swine trichinellosis //J. Parasitol.- 1982.- V.78(5).-P.822−829.
- Lefroit-Joliy M., Neven T. Description and comparison of three in vitro methods for the detection of guined pig MHC antigen. //J. Immunol. Meth.-1986.- V.89.- P.141−148.
- Leighty F.C. Regulatory action to control Trichinella spiralis //Food. Tehnol.- 1983, — V.37(3).-P.95−97.
- Lin T.M., Halbert S.P. Rapid dot enzyme immunoassay for the detection of antibodies to cytomegalovirus //J. Clin. Microbiol.- 1986.- V.24.- P.7−11.
- Liu Y.S., Du W.P., Wu Z.X. Dot-immunogold-silver staining in the diagnosis of cysticercosis //Int. J. Parasitol.- 1996.- V.26(l).- P.127−129.
- Londner M.V., Revel A. et al. Dot-ELISA a potential immunoassay of Plasmodium falciparum antibodies //Trans. Roy. Soc. Trop. Med. Hyg.- 1988.-V.82.- P.686−688.
- Lupasco G., Hacig A., Solomon P. at al. Etude sur la dynamique des an-ticorps dans la trichinellose experimentale pas methode de Г immunofluorescence
- Arch. roum. pathol. exp. et microbiol.- 1968.- V.27(3).- P.611−618.106
- Magat W.J., Jeska E.L. A serodiagnostic antigen for trichinellosis //Acta parasitol polon.- 1976.- V.24(l 1−19).- P. 191−198.
- Mazzola V. New trichinosis test first step to fradication //Agricult. Res.- 1984.- V.32(10).-P.10.
- McVie A., Ersfeld K., Rogan M. T, Craig P. S. Expression and immunological characterisation of Echinococcus granulosus recombinant antigen В for IgG4 subclass detection in human cystic echinococcosis //Acta Trop.- 1997-V.67(l-2).- P.19−35.
- Mearus G., Richmond S.J., Storey C.C. Sensitive immune dot blot test for diagnosis of Chlamidia trachomatis infection //J. Clin. Microbiol.- 1988.-V.26.- P.1810−1813.
- Melcher L.R. An antigenic analysis of Trichinella spiralis //J. Infect. Dis.- 1943.- V.73(l).- P.31−39.
- Molinaro G.A., Eby W.C., Reimer C.A. A monoclonal antibody may show cross reactivities in Ouchterlony assay but not in other assays //J. Immunol. Meth.- 1987.- V.96.-P.219−222.
- Morlow S.J., Handa A.K. Immuno spot-blot using a membrane which covalently binds protein //J. Immunol. Meth.- 1987.- V.101.- P.133−139.
- Murrell K.D., Vannier W.E., Ahmed A. Antigenic heterogenity of excretions and secretions //Exp. Parasitol.- 1984.- V.36.- P.316−330.
- Navarrete J., Reina D., Habela M., Serrano F. Standardization of the ELISA test for the serodiagnosis of Trichinella in pigs //Progr. and Abstr. of the 5-th Europ Multicolloq. of Parasitol.- 1988.- F. 10−13.
- Navarrete J., Serrano F., Habela M., Reina D. Cross-reaction between Trichinella antigens and other parasites of pigs in endemic area of Trichinellosis //Progr. and Abstr. of the 5-th Europ Multicolloq. of Parasitol.- 1988.- F. 10−12.
- Navarrete J., Serrano F., Reina D., Albarran-Gomez E., Habela M., Nieto C.G. Standardization of the enzyme-linked immunosorbent assay in the detection of swine trichinellosis //7-th Int. Conf. on Trichinellosis Progr. and Abstr.- 1988.-№ 68.
- Nockler K., Voigt W.P., Protz D., Miko A., Ziedler K., Diagnosis of trichinellosis in living pigs using indirect ELISA. //Berl. Munch. Tierarztl Wo-chenschhr.- 1995.- V.108(5).- P.167−174.
- Nodet P., Grange J., Fevre M. Dot-blot assays and their use as direct an-tigenbinding method to screen monoclonal antibodies to 1,4-B and 1,3-B glucan sunthases //Analyt. Biochem.- 1988.- V.174.- P.662−666.
- Norman L., Sadun E.H., Redding R.W., Cooperider O.E. Flocculation test in sera from hogs experimentally and naturally infected with Trichinella spiralis //J. Parasitol.- 1955.- V.41(2).- P. 162−166.
- Pappas M.G. Recent applications of dot-ELISA immunoparasitology //Vet. Parasitology.- 1988.- V.29.- P.105−129.
- Pappas M.G., Ballou W.R., Gray M.R., Takafuji E. T, Miller R.N., Hockmeyer W.T. Rapid diagnosis of leptospirosis using the IgM specific dot-ELISA: comparison with the microscopic agglutination test //Am. J. Trop. Med. Hyg.- 1985.- V.34.- P.346−354.
- Pappas M.G., Hajkowski R., Hockmeyer W.T. Dot enzyme-linked immunosorbent assay (dot-ELISA): a micro method for the rapid diagnosis of visceral leishmaniasis //J. Immunol. Meth.- 1983.- V.64.- P.205−214.
- Parkhouse R.M.E., Ortega-Pierres G. Stage-specific antigens of Trichi-nella spiralis //Parasitology.- 1988.- V.88(4).- P.623−630.
- Patel J.D., Joseph J.M., Falkler W.A. Direct detection of Chlamidia trachomatis in clinical speciamens by a dot immunobinding technique using monoclonal antibody //J. Immunol. Meth.- 1988, — V.108.- P.279−287.
- Phillip M., Parkhouse R.M.E., Ogilvie B.M. Molecular basis for stage specificity of the primary antibody responses to the surface of T. spiralis //5-th Int. Conf. on Trichinellosis. Trichinellosis Proc. Readbooks.- 1980.- P.59−63.
- Prichard D.I. Antigen production by encysted muscle larvae of Trichinel-la spiralis //J. Helminthol.- 1985.- V.59(l).- P.71−77.
- Prosad S., Thraves P. et al. A dot-blot method for screening polyclonal and monoclonal antisera to poly (ADP-ribose). //J.Immunol. Meth.- 1989,-V.l 16.- P.79−85.
- Rapic D. Immunoenzimski test (ELISA) u dijagnostici eksperimentalne i prirodne trichineloze svinja //Acta Parasitol. Jugosl.- 1980.- V. l 1(1−2).- P.49−57.
- Rapic D., Dzakula N., Matic-Piantanida D. Evaluation of different antigens in seroepizootiological survey of trichinellosis by enzyme-linked immunosorbent assay //Vet. Parasitol.- 1986.- V.21(4).- P.285−289.
- Rapic D., Dzakula N., Zukovic M. A study of the cross reaction between trichinellosis and metastrongylosis in pigs trichinellosis by enzyme-linked immo-nosorbent assay (ELISA) //Vet. arhiv.- 1981.- V.51(5).- P.223−227.
- Rapic D., Stojilkovic D., Marinkulic A. Influence of cultivation time of Trichinella spiralis muscle larvae on antigenic properties of excretory/secretory products. //6-th Int. Congr. of Parasitol. Progr. and Abstr. Handbook.- 1986,-№ 536,1L.
- Reina D., Munoz-Ojegda M.C., Serrano F., Molina J.M., Navarrete I. Experimental trichinellosis in goats //Vet.Parazitol.- 1996.- V.62(1−2).- P. 125 132.
- Reissmann E. Kann die Trichinenschau ohne sanitaren Nachteil be scharankt und verbilligt werden //Fleisch-u Milchhyg.- 1908.- V.19(l).- P. 1−9.
- Richard O. McCracen. Efficacy of mebendazole and albendozole against Trichinella spiralis in mice. J. Parasitol., 64 (2), 1978, P 214−219
- Rivera Marrero C.A., Santiago N., Hillyer G.V. Evaluation of immuno-diagnostic antigens in the excretory-secretory products of Fasciola hepatica //J.Parasitol.- 1998.- V.74(4).- P.646−652.
- Rogan M.T., Craig P. S., Zeyhle E., Roming Т., Lubano G.M., Deshan L. Evaluation of rapid dot-ELISA us a field test for the diagnosis of cystic hydatid disease. //Trans. Roy. Soc. Trop. Med. Hyg.- 1991, — V.85 (6).- P.773−777.
- Romia S.A., Youssef M.E., Handoussa A.E., Rizk H.M., Sallam S.M. Dot-ELISA as a diagnostic test in hydatid disease. //J. Egypt. Soc. Parasitol.-1992.- V.22(3).- P.603−610.
- Roop R.M., Preston-Moore D. et al. Rapid identification of smooth Brucella species with a monoclonal antibody. //J. Clin. Microbiol.- 1987.- V.25.-P.2090−2093.
- Rozeik C., Schulz-Harder B. The competitive antigen spot test (CAST). A rapid and simple means of quantitatively screening antisera. //J. Immunol. Meth.- 1986.- V.91.- P.91−97.
- Ruinterberg E.J., Buys J. Trichinella spiralis infections in pigs. Comparison of homologous passive cutaneous anaphylactic (PCA) reactions with the enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). //Vet.Parazitol.- 1979.- V.5(l).-P.73−78
- Ruitenberg E.J., Kampelmacher E.H., Berkvens J. Recherche sur la tehni-que indirecte des anticorps fluorescents comme methode diagnostique pour la Trichinese //Office international des epizooties.- 1968.- V.70(l).- P.736−749.
- Ruitenberg E.J., Van Knapen F. Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) as a diagnostic method for T. spiralis in pigs //Vet. Paraziol.- 1973.-V.3(4).-P.317−326.
- Ruitenberg E.J., van Knapen F., Vermeulen C.J. Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) in Trichinella spiralis infections in pigs //Proc. of the 4th Int. Conf on Trichinellosis (1976).- Poznan.- 1978, — P.487−489.
- Ruitenberg E.J., Streerenberg P.A., Brosi B.J.M., Buys J. Serodiagnosis of Trichinella spiralis infections in pigs by enzyme-linked immunosorbent assay //Bull. WldHLTH.- 1974.- V.51(l).- P108−109.
- Rutenberg E.J., Steerenberg P.A., Brosi B.J.M., Buys J. Reliability of the enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for the serodiagnosis of Trichinella spiralis infections in conventionally raised pigs //J. Immunol Method.- 1976.-V.10(l).- P.67−83.
- Sakamoto T. Development and behavior of adult and larval Trichinella spiralis cultured in vitro //Mem.Fac.Agr. Kagoshima Univ.- 1979.- V. 15(24).-P.107−114.
- Scholtens R.G., Kagan I.G., Quist K.D., Norman L.G. An evaluation of test for the diagnosis of trichinosis in swine and associated quantitative epidemiologic observations //Amer. J. Epidemiol.- 1966.- V.83(3).- P.489−500.
- Seawight G.L., Bartlett M. L, Sanders W.M. Automated enzyme immunoassay for detecting Trichinella spiralis antibody in swine //Abstr. 79-th Annu. Meet. Amer. Soc. Microbiol.- 1979.- P.314.
- Smith H.J. Evalution of the ELISA for the serological diagnosis of trichinosis in Canadian swine //Can. J. Vet. Res.- 1987.- V.51(2).- P. 194−197.
- Smith H.J. Comparison of pepsin-digestion and enzyme-linked immunosorbent assay for the diagnosis of trichinosis in swine //Can.J.Vet. Res.- 1988.-V.52(l).- P.63−66.
- Smith H.J., Snowdon K.E. Detection of Trichinella spiralis nativa antibodies in porcine sera by ELISA using T. spiralis spiralis excretory-secretory antigen //Can. J. Vet. Res.- 1987, — V.51(3).- P.413−414.
- Smith H.J., Snowdon K.E. Experimental Trichinella infections in ponies //Can. J. Vet. Res.- 1987.- V.51(3).- P.415−416.
- Smith H.J., Snowdan K.E., Bishop L.J. Prevalence of trichinosis in Canadian swine determined serologically by enzyme-linked immunosorbent assay //Can. J. Vet. Res.-1988.- V.52(3).- P.392−393.
- Stay M., Wahl R., Beierwaltes W.H. Dot-based ELISA and RIA: two rapid assay that screen hybridoma supernatants against whole live cells //J.Immunol. Meth.- 1984, — V.73.- P.75−81.
- Steinmetz H.T., Pfreundschuh M.G. Production of monoclonal antibodies againts glucose oxidase, alcaline phosphatase and peroxidase. //J. Immunol. Meth.- 1987.-V.101.-P.251−259.
- Strobel H. Die Serodiagnostik der Trichinosis //Munch, med. Wo-chennschr.- 1911.- V.58.-P.672.
- Su X.Z., Prestwood A.K. A dot-ELISA mimicry western blot test for the detection of swine trichinellosis //J. Parasitol.- 1991.- V.77 (1).- P.76−82.
- Sulzer A.J., Chisholm E.S. Comparison of the IFAA and other test for Trichinella spiralis antibodies //Publ. Health. Rep.- 1966.- V.81(8).- P.729−734.
- Taylor S.M., Kilpatrick D., Kenny J. The influense of age and husbandry of pigs on evaluatin of the enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for Trichinella spiralis infection//Zbe. Veterinarmed.- 1978.- V.25(4).- P.482−489.
- Tellez-Giron E., Ramas M.C., Alvarez P., Dufour L., Montante M. Detection and characterization of antigens from Taenia solium cysticercus in cerebrospinal fluid//Acta Leiden.-1989.- V.57(2).- P.101−105.
- Thomas E.H., Bozicevich J., Hoy em H.M. Flocculation reactions in rabbits experimentally infected with Trihinella spiralis //J. Infect. Diseuses.- 1953.-V.92(l).- P.89−96.
- Tondon A., Murthy P.K. et al. Dot-ELISA for diagnosis of limphatic fila-riasis //Indian J. Med.- 1988, — V.87.- P.429−433.
- Tong W.D., Guo S.J., Sun L.G. Studies on the rapid diagnosis of the cys-ticercosis, trichinosis and toxoplasmosis using trace blod dot-ELISA //Int. Conf. On Parasitic Zoonoses, Sept. 20−24.- 1994.- P. 138.
- Towbin H., Gordon L. Immunoblotting and dot immunobinding-current status and outlook//J. Immunol. Meth.- 984.- V.72.- P.313−340.
- Uhlikova M., Hubner J. Comparison of the ELISA reaction with four other methods for the detection of Trichinella spiralis infection //6-ht Int. Helm. Symp.- High Tatras.- Prog. And Abstr.- 1991.- P. 133.
- Vertosich F.T., Kelly R.H. Antibodies to native and denatured DNA. Quantitation using on immuno slot-blot technique // J.Immunol. Meth.- 1987.-V.102.- P.15−21.
- Vior E., Popesku., Vior C., Fromunda V., Oproiu V., Tetu M. Aplicarea testilui imunoenzimatic (ELISA) in trichineloza experimentala //Rev. crest, anim.- 1980.- V.30(10).-P18−22.
- Vishawapoka U., Hemachudha T. et al. Detection of rabies antigen in canine parotid glands by dot-blot technique //Lancet.- 1988.- V.I.- P.881.
- Vullo V., Contini C. et al. Evalyation of dot immunobinding assay (DIB) for the detection of antibodies against Brucella melitensis //J. Immunol. Immuno-pharmacol.- 1987.- V.7.- P. 147−150.
- Whelen A.C., George J. E, Osburn R.L., Wikel S.K. Dot-ELISA for examine serologic responses of Bos taurus and Bos indicus to ixodid tick infestation //Fed. Proc.- 1984, — V.43.- P. 1628.
- Wilozynski M., MikulskiZ., Gancarz Z. Immunobiologic methods in the diagnosis of trichinellosis in pigs and laboratory animals //2-d Int. Conf. on Trichinellosis. Abstr of Papers.- 1969.- P. 169−170.115
- Yan X.X., Xu X.F., Ma Y.X. Changes in T lymphocytes and their subpo-pulations and IgG in peripheral blood from mice infected with Trichinella spiralis //Chung Kuo Chi Sheng Chung Hsueh Yu Chi Sheng Chug Ping Tsa Chin.1992.-V.10(l).-P.62−65.
- Yang S.M. A preliminary study on the use of enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for detection of Trichinella spiralis infections in dogs //Vet. Parasitol.- 1989.- V.31(2).- P. 165−171.
- Yao C., Prestwood A.K., McGraw R.A. Trichinella spiralis (Tl) and Trichinella (T5): a comparison using animal infectivity and molecular biology techniques //J. Parasitol.- 1997.- V.83(l).- P.88−95.
- Yepez-Muila L., Ortega-Pierres M.G. Current aspects of trichinosis diagnosis. //Rev. Latinoam. Microbiol.- 1994.- V.36(2).- P.127−138.
- Zalis M., Jaffe C.L. Routine dot-blot assay of multiple serum samples using a simple apparatus //J. Immunol. Meth.- 1987.- V.101.- P.261−264.
- Zapart W., Slusarski W. Attempts to employ hom-made latex particles in the serodiagnosis of trichinellosis in experimental animals //Acta parazitol po-lon.- 1972,-V.10.-P.29.
- Zhang Y.W., Lee D.L., Smith J.E. Biochemical haracterisation of Trichi-nellaspiralis and Trichinella pseudospiralis stihocyti antigens //Appl. Parasitol.1993.- V.34(4).- P.291−294.
- Zhu X.Q., Dou L.Q., Shi X.H., Shi L., Niu B.H. Analisis of excretory-secretory and soluble antigens of Trichinella spiralis muscle larvae by electrophoresis //Acta Vet. at Zootech. Sin.- 1995.- V.26(2).- P. 168−173.
- Zimmerman G.L., Nelson M.J., Clark C.R.B. Diagnosis of ovine fasci-oliasis by a dot enzyme-linked immunosorbent assay: a rapid microdiagnostic technique//Am. J. Vet.Res.- 1985.- V.46.- P.1513−1515.