Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Полисахариды растений как корректоры цитостатической терапии экспериментальных опухолей

ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Удут Е. В., 2009; De Jong М.Е. et al., 2006]. К сожалению, существуют данные о том, что введение Г-КСФ может способствовать прогрессированию роста опухоли путем стимуляции в ней ангиогенеза (в частности, через. увеличение количества циркулирующих эндотелиальных стволовых клеток). Кроме того, in vitro показано, что Г-КСФ может провоцировать рост рака яичников, поскольку, как оказалось, рецепторы… Читать ещё >

Содержание

  • СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ СОКРАЩЕНИЙ
  • Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ. и
    • 1. 1. Токсичность противоопухолевых препаратов и способы ее коррекции
    • 1. 2. Полисахариды природного происхождения в комплексной терапии злокачественных новообразований
    • 1. 3. Фармакологическая характеристика и ботаническое описание изучаемых растений, применение в практической и народной медицине
  • Глава 2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
  • Глава 3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ НАБЛЮДЕНИЙ
    • 3. 1. Влияние водорастворимых полисахаридов мать-и-мачехи обыкновенной, аира болотного и эхинацеи пурпурной на развитие перевиваемых опухолей животных и эффективность цитостатической терапии
      • 3. 1. 1. Влияние водорастворимых полисахаридов мать-и-мачехи обыкновенной, аира болотного и эхинацеи пурпурной на развитие карциномы легких Льюис и эффективность лечения паклитакселом
      • 3. 1. 2. Влияние водорастворимых полисахаридов мать-и-мачехи обыкновенной, аира болотного и нейпогена на эффективность лечения паклитакселом мышей с карциномой легких Льюис
      • 3. 1. 3. Влияние водорастворимых полисахаридов мать-и-мачехи обыкновенной, аира болотного и эхинацеи пурпурной на эффективность лечения паклитакселом мышей с меланомой В
      • 3. 1. 4. Влияние водорастворимых полисахаридов мать-и-мачехи обыкновенной, аира болотного и эхинацеи пурпурной на эффективность лечения 5-фторурацилом мышей с карциномой легких Льюис
      • 3. 1. 5. Влияние водорастворимых полисахаридов мать-и-мачехи обыкновенной^ аира болотного и эхинацеи пурпурной на эффективность лечения циклофосфаном мышей с раком легкого
      • 3. 1. 6. Влияние водорастворимых полисахаридов мать-и-мачехи обыкновенной, аира болотного и эссенциале Н на эффективность лечения циклофосфаном беспородных крыс с карциносаркомой Уокер
    • 3. 2. Функциональная активность клеток лимфоузлов мышей с карциномой легких Льюис после введения паклитаксела и водорастворимых полисахаридов мать-и-мачехи обыкновенной
    • 3. 3. Влияние полисахаридов мать-и-мачехи обыкновенной, аира болотного и эхинацеи пурпурной на гематотоксичность цитостатических препаратов

    3.3.1. Влияние водорастворимых полисахаридов мать-и-мачехи обыкновенной, аира болотного и эхинацеи пурпурной на систему периферической крови мышей с карциномой легких Льюис на фоне терапии паклитакселом.

    3.3.2. Влияние водорастворимых полисахаридов мать-и-мачехи обыкновенной, аира болотного и нейпогена на клеточный состав лейкоцитарной формулы мышей с карциномой легких Льюис на фоне терапии паклитакселом.

    3.3.3. Влияние водорастворимых полисахаридов мать-и-мачехи обыкновенной, аира болотного и нейпогена на показатели костномозгового кроветворения мышей с карциномой легких Льюис на фоне терапии паклитакселом.

    3.4. Влияние водорастворимых полисахаридов мать-и-мачехи обыкновенной, аира болотного и эхинацеи пурпурной на слизистую оболочку тонкого кишечника мышей в условиях цитостатической терапии.

    3.4.1. Влияние водорастворимых полисахаридов мать-и-мачехи обыкновенной, аира болотного и эхинацеи пурпурной на слизистую оболочку тонкого кишечника мышей с карциномой легких Льюис на фоне терапии паклитакселом.

    3.4.2. Влияние водорастворимых полисахаридов мать-и-мачехи обыкновенной, аира болотного и эхинацеи пурпурной на слизистую оболочку тонкого кишечника мышей с карциномой легких Льюис на фоне терапии 5-фторурацилом.

    3.5. Влияние водорастворимых полисахаридов мать-и-мачехи обыкновенной и аира болотного на гепатотоксичность цитостатических препаратов

    3.5.1. Активность ферментов печени.

    3.5.2. Абсолютная и относительная масса печени крыс.

Полисахариды растений как корректоры цитостатической терапии экспериментальных опухолей (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы. Онкологическая патология занимает второе место после заболеваний сердечно-сосудистой системы в структуре причин смертности населения. Ежегодно в России выявляется около 500 тыс. человек с впервые установленным онкологическим диагнозом и в 60% случаев выявляются опухоли третьей — четвертой стадии [Чиссов В.И., 2010]. Наряду с лучевой терапией и хирургическим вмешательством химиотерапия является одним из основных методов лечения злокачественных новообразований [Пе-реводчикова Н.И., 2005; Машковский М. Д., 2008]. Использование существующих антибластомных препаратов в клинике позволяет увеличить продолжительность жизни больных, а в некоторых случаях и полностью излечить заболевание [Богданова Н.В., 2001; Моисеенко В. М., 2004]. Известно, что химиотерапевтические средства обладают дозозависимым эффектом: применение цитостатиков в высоких дозах приводит к адекватному ответу на терапию, увеличению вероятности наступления ремиссии и, как следствие, повышению эффективности проводимого лечения. В то же время, цитостати-ческие препараты помимо опухолевых клеток поражают здоровые ткани организма с высокой фракцией роста. Наиболее распространены гематологическая, гастроинтестинальная и гепатотоксичность противоопухолевых средств [Богуш Т.А. и др., 2000; Гершанович М. Л., 2004; Птушкин В. В., 2004]. Побочное действие большинства цитостатиков ограничивает их применение и служит показанием к снижению дозы лекарства, прерыванию и даже прекращению лечения.

В настоящее время наиболее эффективными средствами для снижения токсического проявления цитостатиков на систему крови считаются препараты качественно нового типа, созданные на основе эндогенных регуляторов гемопоэза (колониестимулирующие факторы, интерлейкины, эритропоэтин). Применение рекомбинантных гемоцитокинов вызывает быструю пролиферацию клеток-предшественников в зрелые дифференцированные клетки крови, стимулируя определенные ростки кроветворения [Дыгай А. М., Жданов В. В.,.

Удут Е. В., 2009; De Jong М.Е. et al., 2006]. К сожалению, существуют данные о том, что введение Г-КСФ может способствовать прогрессированию роста опухоли путем стимуляции в ней ангиогенеза (в частности, через. увеличение количества циркулирующих эндотелиальных стволовых клеток) [Okazaki Т. et al., 2006]. Кроме того, in vitro показано, что Г-КСФ может провоцировать рост рака яичников [Ninci Е.В. et al., 2000], поскольку, как оказалось, рецепторы Г-КСФ часто экспрессируются в клетках данного вида опухолей. Установлено, что Г-КСФ в ряде случаев индуцирует иммуносупрессию и ослабление регуляции иммунного ответа Т-хелперами как in vivo, так и in vitro [Ohta Y. et al., 2004]. У препарата выявлены местные реакции на введение, костно-мышечные боли и аллергические реакции. Стоит отметить высокую стоимость рекомбинантных гемоцитокинов, что ограничивает их применение [Singbartl G., 1994; Nguyen Y. К., 1994; Ohta Y. et al., 2004; Kanbayashi Y. et al., 2006].

Для профилактики лекарственных поражений печени используют гепа-топротекторы. В настоящее время, в клинике применяются следующие препараты: гептрал, Гепа-Мерц, эссенциале. Широко известны печеночные средства на основе флавоноидов расторопши пятнистой (силибор, легалон, карсил, гепабене, гепатофальк-планта), фенольных соединений в сочетании с инулином артишока (хофитол), комплекса биологически активных веществ семян тыквы (тыквеол) [Оковитый C.B., 2002; Ларионова В. Б., 2004].

Система коррекции гастроинтестинальной токсичности довольно сложна. Для получения оптимальных результатов требуется согласованность мер по профилактике и лечению основных желудочно-кишечных осложнений в комплексе. В настоящее время применяются средства лишь для снижения симптоматики диспептического синдрома: тошноты, рвоты, диареи, задержки стула и стоматитов [Гершанович M. JL, 1999; Орлова Р. В., 2001; Птушкин В. В., 2005], однако не существует препаратов, которые бы патогенетически воздействовали на пораженный в результате химиотерапии эпителий желудочно-кишечного тракта.

Таким образом, проблема повышения эффективности цитостатической терапии является актуальной в современной медицине. В связи с этим, важным является разработка новых средств, способных одновременно уменьшать проявления побочного действия цитостатиков на систему крови, печень и тонкий кишечник, без снижения их терапевтической эффективности. Перспективными в этом плане являются препараты из растительного сырья, обладающие целым рядом преимуществ перед синтетическими: они легко усваиваются организмом человека, не обладают побочными эффектами, очень редко проявляют токсичность. Растительные полисахариды способны стимулировать иммунную систему организма: увеличивать функциональную активность нейтрофилов, выработку интерферонов и TNF-альфа макрофагами, повышать количество лейкоцитов в крови, активировать процесс фагоцитоза, увеличивать количество антителообразующих клеток и продукцию ими антител [Васфилова Е.С., Багаутдинова Р. И., 2005; Учасова Е. Г., 2009; Лигачева А. А., 2010; Pillai S. et al., 2007; Xie G. et al., 2007; Diao H. et al., 2008]. Полисахариды оказывают защитное действие на печень, проявляя противовоспалительные свойства [Дергунова М.А. и др., 2007]. Установлена способность этих веществ стимулировать гемопоэз при облучении [Сычева И.А., 2008; Song Y.H. et al., 2008; Jettanacheawchankit S. et al., 2009; Wei S-Y. et al., 2009]. Выявлено, что растительные полисахариды уменьшают рост и метастазиро-вание бластом, подавляя ангиогенез и индуцируя процесс апоптоза в опухолевой ткани [Лопатина К.А., 2007; Vinall R.L. et al., 2007; Badr El-Din N.K., Noaman E., Ghoneum M., 2008; Feregrino-Perez A.A. et al., 2008; Kim H.M. et al., 2008; Wang L., Li X., Chen Z., 2009; Ghosh К. et al., 2009]. Кроме того, богатая сырьевая база и низкая стоимость растительного сырья выгодно отличают их от существующих на сегодняшний день препаратов-корректоров цитостатической терапии. Учитывая вышесказанное, актуальным является изучение растительных полисахаридов в онкологическом эксперименте с целью создания на их основе препаратов, повышающих эффективность химиотерапии злокачественных заболеваний.

Цель исследования. Изучить влияние водорастворимых полисахаридов мать-и-мачехи обыкновенной, аира болотного и эхинацеи пурпурной на эффективность химиотерапии, перевиваемых опухолей и оценить возможность снижения с их помощью токсичности цитостатиков на систему крови, печень и тонкий кишечник животных.

Задачи исследования.

1. Изучить влияние водорастворимых полисахаридов мать-и-мачехи обыкновенной, аира болотного и эхинацеи пурпурной на развитие перевиваемых опухолей мышей и крыс в условиях цитостатической терапии.

2. Исследовать функциональную активность клеток лимфоузлов мышей с карциномой легких Льюис после введения паклитаксела и водорастворимых полисахаридов мать-и-мачехи обыкновенной.

3. Оценить влияние водорастворимых полисахаридов мать-и-мачехи обыкновенной, аира болотного и эхинацеи пурпурной на состояние кроветворной системы (периферическая кровь и костный мозг) мышей с карциномой легких Льюис на фоне лечения паклитакселом.

4. Изучить состояние слизистой оболочкитонкого кишечника мышей с карциномой легких Льюис, леченных полисахаридами мать-и-мачехи обыкновенной, аира болотного и эхинацеи пурпурной в сочетании с паклитаксаелом И' 5-фторурацилом.

5. Исследовать влияние водорастворимых полисахаридов мать-и-мачехи обыкновенной* и аира болотного на функциональное состояние печени крыс с карциносаркомой Уокер-256 на фоне терапии циклофосфаном.

Научная новизна. Впервые на моделях экспериментальных опухолей мышей и крыс в условиях химиотерапии цитостатиками различного механизма действия (паклитаксел, циклофосфан, 5-фторурацил) выявлено повышение эффективности лечения водорастворимыми полисахаридами корневищ аира болотного, листьев мать-и-мачехи обыкновенной, цветков эхинацеи пурпурной. В тесте нейтрализации опухолевых клеток Винна установленосвойство водорастворимых полисахаридов мать-и-мачехи обыкновенной стимулировать функциональную активность, клеток лимфоузлов по отношениюк опухолевым клеткам приих изолированном введении и на фоне вызванной паклитакселом иммунодепрессии.

Впервые показана коррекция водорастворимыми полисахаридами аира болотного, мать-и-мачехи обыкновенной и эхинацеи пурпурной токсического действия цитостатиков на систему крови, эпителий тонкого кишечника и печень животных с перевиваемыми опухолями. Выявлено защитное и стимулирующее действие растительных полисахаридов на систему крови (периферическая кровь, костный мозг) мышей с карциномой легких Льюис в условиях терапии паклитакселом. Установлено, что гемостимулирующий эффект полисахаридов сравним с таковым у препарата рекомбинантного колоние-стимулирующего фактора — нейпогена. Обнаружено защитное действие водорастворимых полисахаридов аира болотного, мать-и-мачехи обыкновенной и эхинацеи пурпурной на эпителий тонкого кишечника мышей с карциномой легких Льюис в условиях терапии паклитакселом. Установлена способность полисахаридов аира и мать-и-мачехи уменьшать активность аминотрансфе-раз и щелочной фосфатазы в сыворотке крови крыс с карциносаркомой Уо-кер-256, повышенную в результате введения циклофосфана. Выявленный эффект полисахаридов, аира на функциональное состояние печени превосходит таковой у фосфолипидного препарата эссенциале Н.

Практическая значимость работы. На основании исследований установлено, что водорастворимые полисахариды аира. болотного, мать-и-мачехи обыкновенной и эхинацеи пурпурной уменьшают токсическое влияние цитостатиков на систему крови, печень и тонкий кишечник, повышая — их антиметастатическое действие. Представленные данные могут служить основой для разработки новых препаратов-корректоров цитостатической терапии и их использования в комплексной терапии больных со злокачественными новообразованиями. По результатам диссертационного исследования оформлен патент РФ на изобретение № 2 397 774 «Средство, снижающее гематотоксич-ность цитостатических препаратов».

Апробация работы. Основные положения диссертационной работы докладывались, обсуждались и представлялись на конференциях молодых ученых НИИ онкологии СО РАМН «Актуальные вопросы экспериментальной и клинической онкологии» (Томск, 2009 и 2011) и НИИ фармакологии СО РАМН «Лабораторные животные как основа экспериментальной медицины» (Томск, 2009), на конференциях молодых ученых «Актуальные вопросы клинической и экспериментальной медицины» (Санкт-Петербург, 2009 и 2010), «VIII Всероссийской университетской научно-практической конференции молодых ученых по медицине» (Тула, 2009).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 11 работ, из них 5 — в журналах, рекомендованных перечнем ВАК. Получен 1 патент РФ на изобретение.

Объем и структура работы. Диссертация изложена на 188 страницах машинописного текста и состоит из введения, четырех глав, выводов, списка использованной литературы. Работа иллюстрирована 24 рисунками и 21 таблицей. Библиографический указатель включает 331 источник, из них 150 отечественных, 181 иностранный.

выводы.

1. Водорастворимые полисахариды мать-и-мачехи обыкновенной, аира, болотного и эхинацеи пурпурной повышают антиметастатическое действие паклитаксела, циклофосфана и 5-фторурацила у животных с перевиваемыми опухолями (карциномой легких Льюис, меланомой В-16, раком легкого-67, карциносаркомой Уокер-256). Полисахариды мать-и-мачехи обыкновенной, аира болотного усиливают антибластомное действие ци-тостатиков на первичный опухолевый узел меланомы В-16 и рака легкого-67.

2. Функциональную активность клеток лимфоузлов мышей с карциномой легких Льюис по отношению к опухолевым клеткам на фоне вызванной паклитакселом иммунодепрессии повышают водорастворимые полисахариды мать-и-мачехи обыкновенной.

3. Полисахариды мать-и-мачехи обыкновенной, аира болотного и эхинацеи пурпурной снижают токсическое влияние паклитаксела на систему крови мышей с карциномой легких Льюис, препятствуя опустошению костного мозга и стимулируя процесс восстановления гранулоцитарного и эритроидного ростков гемопоэза, пораженных цитостатическим воздействием.

4. Полисахариды мать-и-мачехи обыкновенной, аира болотного и эхинацеи пурпурной оказывают защитное действие на слизистую оболочку тонкого кишечника мышей с карциномой легких Льюис при ее повреждении паклитакселом и 5-фторурацилом, стимулируя пролиферацию, в криптах и нормализуя процессы клеточного обновления.

5. Активность аминотрансфераз и щелочной фосфатазы в сыворотке крови крыс с кациносаркомой Уокер-256, повышенную в результате введения циклофосфана, снижают полисахариды мать-и-мачехи обыкновенной и аира болотного.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Е.В., Дыгай A.Mi, Гольдберг В. Е. и др. Влияние экстракта шлемника байкальского на регуляцию кроветворения у мышей линии C57BL/6 с карциномой легких Льюис, получавших циклофосфан // Экспериментальная онкология. 1991. — Т. 13. — № 6. — С. 68−70.
  2. Т.А., Дашинамжилов Ж. Б. Влияние полифитохола на сочетанное поражение печени // IV Российский национальный конгресс «Человек и лекарство». Москва, 1997. — С. 138.
  3. С.Г., Горбачева A.B., Пашинский В .Т. Влияние спиртовойвы-тяжки лабазника вязолистного на состояние системы крови после введения цитостатика// Сибирский онкологический журнал. 2004. — № 4. — С. 66−68.
  4. Р.К., Прилипко Л. И., Дамиров И. А. и др. Лекарственные растения Азербайджана. Баку, 1972. — 196 с.
  5. Д. Лечение и профилактика рака: комплексный подход. М.: АО «Интерэксперт», 2000. — 224 с.
  6. И.Г., Шарабанов A.C., Моляренко Е. В., Яковлева Е. В. Тромбоци-топения у больных хроническим: гепатитом С // Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2010. — Т 5. — № 5. — С. 52−60.
  7. К.П., Воронцова А. Л. Лекарственные растения и рак. Киев, 1982.-376 с.
  8. Э.И., Задорожная H.A., Цыгольник М. Д. Немедикаментозная терапия заболеваний органов пищеварения (дието-, физио-, бальнеотерапия, фитотерапия). Томск, 2001. — 104 с.
  9. JI. Ф., Алибеков С. Д., Багинская А. И. и др. Азарон и его биологические свойства // Фармакология и токсикология. 1985. — Т. 48. — № 6. -С. 17−20:
  10. Е.А., Златкина А. Р. Синдром диареи в практике гастроэнтеролога: патофизиология и дифференциальный подход к лечению // Фарматека. -2003.-№ Ю.-С. 65−71.
  11. Н.М. Роль клеток системы иммунитета в микроокружении опухоли. I. Клетки и цитокины участники воспаления // Онкология. — 2009. -Т. 11.-№ 9.-С. 6−17.
  12. С. С. Возможности таксола (паклитаксела) в терапии больных неходжкинскими лимфомами // Современная онкология. 2003. — Т. 5. -№ 1.-С. 19−21.
  13. H.H., Переводчикова Н. И. Химиотерапия опухолевых заболеваний. М.: «Медицина», 1984. — 304 с.
  14. Т.Г., Удинцев С. Н., Зуева Е. П. Ослабление токсического действия 5-фторурацила на слизистую оболочку тонкой кишки мышей соком подорожника // Вопросы онкологии. 1987. — Т. 33. — № 7.- С. 60−64.
  15. Т.Г., Фомина Т. И., Яременко К. В. Снижение токсического действия рубомицина.на тонкую кишку мышей с перевиваемой опухолью с помощью' экстракта родиолы // Антибиотики и химиотерапия. 1988. — № 8. — С. 615−616.
  16. Т.Г., Гольдберг В. Е., Румпель O.A. и др. Состояние сперматогенеза крыс после введения противоопухолевого препарата Паклитаксела // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2009. — Т. 147. — № 6. -С. 655−658.
  17. И.М., Пога A.A. Изменение содержания и концентрации-ДНК в ядрах опухолевых клеток карциномы Герена и ее лекарственно устойчивого варианта под влиянием циклофосфана // Оценка эффективности лекарственного лечения опухолей. Рига, 1977. — С. 28−48.
  18. B.JI. Цитология и общая гистология. Спб.: Сотис, 2002. — 520 с.
  19. Р., Финтельманн Ф. Фитотерапия. Руководство: Пер. с нем. М.: «Медицина», 2004. — 552 с.
  20. Е.С., Багаутдинова Р. И. Продуктивность подземных частей Echinacea purpurea (Asteraceae) и накопление в ней фруктозосодержащих углеводов при интродукции в средний Урал // Растительные ресурсы. 2005. -№ 1.-С. 107−115.
  21. А. И. Фармакологические подходы к регуляции функции печени // Бюллетень сибирской медицины. № 1. — 2002. — С. 25−29.
  22. А.Ф., Кадаев Г. Н., Яценко-Хмелевский A.A. Лекарственные растения (растения-целители). Москва, 1983. — 400 с.
  23. М.Л. Коррекция желудочно-кишечных осложнений в химиотерапии // Материалы третьей ежегодной Российской онкологической конференции. Санкт-Петербург, 1999. — С. 25−31.
  24. М.Л., Филов В. А., Акимов М. А. и др. Введение в химиотерапию злокачественных опухолей. СПб., 1999. — 152 с.
  25. Е.Д., Дыгай A.M., Литвиненко В. И. и др. Шлемник байкальский. Фитохимия и фармакологические свойства. Томск, 1994. — 223 с.
  26. Е.Д., Дыгай A.M., Шахов В. П. Методы культуры ткани в гематологии.- Томск, 1992.- 264 с.
  27. Е.Д., Зуева Е. П. Препараты из лекарственных растений в комплексной терапии злокачественных новообразований. Томск: Изд-во ТГУ, 2000. — 129 с.
  28. Е.Д., Разина Т. Г., Зуева Е. П. и др. Растения в комплексной терапии опухолей. М.: Изд-во РАМН, 2008. — 232 с.
  29. Е.В. Вычислительные методы анализа и распознавания патологических процессов. Л., 1978. — 193 с.
  30. Л.А., Удут В. В., Симанина Е. В. и" др. Механизмы регуляции системы крови под влиянием гемостимуляторов на фоне цитостатической миелосу-прессии // Сибирский онкологический журнал. 2005. — Т. 15. — № 3. — С. 39−43.
  31. Л. А., Жданов В. В., Удут Е. В. и др. Механизмы действия стимуляторов гранулоцитопоэза в условиях цитостатической миелосупрессии // Экспериментальная и клиническая фармакология. 2006. — Т. 69. — № 2. — С. 44−47.
  32. С. А. Петруша А.О. Фебрильная нейтропения: методы профилактики и терапии // Уральский журнал гематологии и трансфузиологии. 2006. -Т. 6.-№ 1.-С. 48−57.
  33. М.Г., Гурьев A.M., Вельская М. В. и др. Влияние растительных полисахаридов на NO-синтазу и аргиназу макрофагов мыши // Вестник Уральской медицинской академической науки. 2009. — № 2. — Вып. 25. — С. 49−50.
  34. JT.A. Противоопухолевые свойства препаратов родиолы розовой. Автореф. дис.. канд. биол. наук. Томск, 1987. — 21 с.
  35. Д.А., Попова Т. С., Газина Т.П-. Послеоперационное лечение перитонита пектинсодержащими препаратами в эксперименте и клинике// Вестник восстановительной медицины. 2005. — № 4. — С. 47−52.
  36. М.А., Жанаева С. Я., Филюшина Е. Е. и др. Характеристика новых химически модифицированных Р-1,3−0-гликанов как стимуляторов макрофагов // Бюллетень Сибирского отделения Российской академии медицинских наук. 2006. — № 1. — С. 77−81.
  37. М.А., Филатова Т. Г., Жанаева С. Я. и др. Влияние химически модифицированных полисахаридов на развитие селективной депрессии макрофагов печени // Бюллетень СО РАМН. 2007. — Т. 123. — № 1. — С. 27- 32.
  38. А. М., Жданов В. В., Удут Е. В. Фармакологическая, регуляция эритропоэза. М.: Изд-во РАМН, 2009. — 176 с.
  39. А. М., Удут Е. В., Жданов В. В. и др. Миелотоксичность цитоста-тического препарата растительного происхождения этопозида // Экспериментальная и клиническая фармакология. — 2001. — Т. 64. — № 5. — С. 31−33.
  40. H.H., Банникова Т. Е., Макаров В. А. и др. Антикоагулянтная активность сульфатированных полисахаридов // Экспериментальная и клиническая фармакология. 2006. — Т. 69. — № 6. — С. 51 — 60.
  41. В.А., Мошкова Л. В., Куркин В. А. и др. Анализ номенклатуры им-муномодуляторов, представленных на фармацевтическом рынке России // Фармация в XXI веке: инновации и традиции. СПб, 1999. — С. 94.
  42. Е.И., Рожкова В. Н., Ладыгина ЕЛ. О противовоспалительной активности полисахаридов мать-и-мачехи // Фармация. -1982. Т. 31. — № 2. — С. 37−39.
  43. JI.A. Гепатотоксичность противоопухолевых препаратов растительного происхождения паклитаксела и этопозида и ее фармакологическая коррекция: Автореф. дисс.. канд. мед. наук: Томск, 2008. — 20 с.
  44. Л. А. Карпова Г. В., Чурин A.A. и др. Фармакологическая коррекция общетоксического действия паклитаксела // Проблемы онкофармакологии (Материалы конференции врачей-онкофармакологов). Томск, 2008. — С. 44−47.
  45. Л.А., Дубская Т. Ю., Фомина Т. И. и др. Токсическое действие противоопухолевого препарата паклитаксела на морфофункциональное состояние печени крыс // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2008. — № 2: — С. 225 — 228.
  46. О.В. Адриамицинсодержащие программы в лечении диссемини-рованных форм рака молочной железы: Автореф. дисс.. канд. мед. наук. -Томск, 2000. 29 с.
  47. А.Б., Тюренков И. Н. Осложнения фармакотерапии. М.: «Медицина», 2003. — 544 с.
  48. Злокачественные новообразования в России в 2008 году (заболеваемость и смертность) / Под ред. В. И. Чиссова, В. В. Старинского, Г. В. Петровой. -М.: ФГУ «МНИОИ им. П. А. Герцена Росмедтехнологий», 2010. 256 с.
  49. Зориков< П. С. Основные лекарственные растения Приморского края: учебное пособие. Владивосток: «Дальнаука», 2004. — 129 с.
  50. Е.П., Лопатина К. А., Разина Т. Г. и др. Полисахариды аира болотного в комплексной терапии перевиваемых опухолей // Российский биотерапевтический журнал. 2007. — № 1. — Т. 6. — 0.33.
  51. Е.П., Лопатина К. А., Разина Т. Г., Гурьев A.M. Полисахариды в онкологии. Томск: «Печатная мануфактура», 2010. — 108 с.
  52. К.А., Байбеков И. М., Ходжиметов A.A. Компенсаторно-приспособительные процессы в кишечнике.- М.: «Медицина», 1974. 208 с.
  53. Н.С. Изучение полисахаридов клубней топинамбура и создание на их основе лечебно-профилактических средств: Афтореф. дисс.. канд. фарм. наук. Пятигорск, 1998. — 24 с.
  54. Д., Николов П., Бойчинов А. Фитотерапия. София: «Медицина и физкультура», 1976: пер. с болг. — 233 с.
  55. З.Г., Черткова А. И., Славина Е. Г. Регуляторные Т-клетки и их роль в противоопухолевом иммунном ответе // Вопросы онкологии. 2009. -Т.55. — №. — 3. — С. 269−277.
  56. B.C. Клинико-биохимическая лабораторная диагностика: Справочник: В 2 т. 2-е изд. — М.: «Интерпрессервис», 2003. — 495 с.
  57. Г. В., Фомина Т. И., Воронова О. JI. и др. Миелотоксичность паклитаксела (митотакс) // Экспериментальная и клиническая фармакология. 2007. — Т. 70. — № 4. — С. 39−43.
  58. В.А., Карпищенко А. И., Глушков С. И. и др. Состояние системы глута-тиона и перекисного окисления липидов в тканях печени и почек крыс при острых отравлениях циклофосфаном // Нефрология. 2006. — Т. 10. — № 2. — С. 81−85.
  59. Ким Е.А., Герштейн Е. С., Высоцкая И. В., Кушлинский Н. Е. Экспрессия VEGF и VEGFR2 в опухолях в процессе неоадьювантного лечения больных раком молочной железы // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2008. — Т. 145. — № 2. — С. 206−209.
  60. Н. А., Богуш Т. А., Остапчук Н. В. и др. Гепатотоксическое действие лекарственных препаратов некоторых фармакологических групп // Клиническая медицина. 2003. — Т. 81. — № 10 -С. 11−17.
  61. A.M., Софьина З. П. Частота, сроки и тип метастазирования различных перевиваемых опухолей мышей // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1978. — № 12. — С. 715−718.
  62. О. В, Федорова Е. П., Ермолаева Л. А. Токсические эффекты паклитаксела и пути их снижения // Сибирский онкологический журнал. Прил. № 1.- 2009. С. 100−101.
  63. М.А., Сафонова М. Ю., Болотова В. Ц. и др. Перспективы использования растительных полисахаридов в качестве лечебных и лечебно-профилактических средств // Вестник ВГУ 2005. — № 1. — С. 212−221.
  64. A.A. Разработка фитопрепаратов для профилактики и лечения заболеваний органов дыхания у детей: Автореф. дисс.. канд. фарм. наук: -СПб, 2000. 29 с.
  65. С.А. Основы токсикологии. СПб.: «Фолиант», 2004. — 570 с.
  66. Г. Ф. Биометрия. М.: «Высшая школа», 1980. — 293 с.
  67. Л.Ф. Химиотерапия злокачественных опухолей. М., 1962.- 463 с.
  68. В.Б., Горожанская Э. Г., Коломейцев O.A. Гепатотоксичность лекарственных препаратов у онкологических больных // Вестник интенсивной терапии. 2004. — № 3. — С. 23−34.
  69. Н.С. Система иммунитета и влияние на нее биологически активных веществ растений // Новая Аптека. 2001. — № 2. — С. 21.
  70. A.A. Иммунофармакологические свойства полисахаридов полыни горькой, клевера лугового, березы повислой: Автореф. дисс.. канд. биол. наук: Томск, 2010. — 22 с.
  71. К.А. Водорастворимые полисахариды растений Сибири в комплексной терапии перевиваемых опухолей: Автореф. дисс.. канд. мед. наук: Томск, 2007.-21 с.
  72. К.А., Разина Т. Г., Шилова Н. В., Гурьев A.M. Растительные полисахариды в экспериментальной онкологии // Российский биотерапевтический журнал. 2006. — № 1. — Т. 5. — С. 17.
  73. П.А., Журавлева Н. В. Современная гликобиология и медицина // Вестник ДВО РАН. 2004. — № 3. — С. 24−34.
  74. Е.Л., Непомнящих Л. М., Толстикова Т. Г. Патоморфология мышечных клеток сердца при действии циклофосфамида и тритерпеноидов. -М.: Изд-во РАМН, 2009. 272 с.
  75. Л.М., Котов А. Г., Георгиевский В. П. Стандартизация настойки корней эхинацеи пурпурной // Фармация в XXI веке: инновации и традиции.-СПб., 1999.-С. 175.
  76. Е.А. Исследование эффективности гепатопротектора ло-хеина в комплексной терапии экспериментальных злокачественных опухолей // Сибирский онкологический журнал. 2003. — № 4. — С. 17−21.
  77. Л. В. Дозы и режимы введения таксола // Сборник. Таксол в клинической практике / Под ред. Н. И. Переводчиковой М.: «Полина», 2001. — С. 25−54.
  78. М.Д. Лекарственные средства. М.: «Новая волна», 2008. — 1206 с.
  79. Т.И., Николаев В. О. Сравнительная иммунофармакологическая оценка растительных экстрактов с полифенольными и полисахаридными комплексами // Фармация в XXI веке: инновации и традиции. СПб, 1999. — С. 179.
  80. Методы исследования углеводов / Пер. с англ. В.А. Несмеянова- под ред. A.A. Харлина. М.: «Мир», 1975. — 445 с.
  81. Методы химии углеводов / Под ред. Р. И. Красновой. М.: «Мир», 1967. — 507 с.
  82. .Б., Дешевой Ю. Б., Цыбанев O.A. Влияние карбоната лития на пострадиационное восстановление системы крови в эксперименте // Гематология и трансфузиология. 1986. — № 10, — С. 25−29.
  83. З.К., Халиков Д. Х., Авлоев Х. Х. Эффективность применения пектина в комплексе с антибиотиками в лечении острых кишечных инфекций // Вопросы биологической, медицинской и фармакологической химии. 2003. — № 2. — С. 40−43.
  84. С. В. Клиническая фармакология гепатопротекторов // Фар-миндекс. Практик. 2002. — № 3. — С 32.
  85. А.В. Влияние циклофосфана на перекисное окисление липидов* // Вопросы онкологии. 1985. — № 7. — С. 97 — 101.
  86. Р.В. Коррекция желудочно-кишечных осложнений у онкологических больных // Практическая онкология. 2001. — Т. 5. — № 1. — С. 44−48.
  87. М. Энциклопедия лекарственных растений. М.: «Мир», 1998. — 467 с.
  88. В.Г., Аксиненко С. Г., Горбачева А. В. Влияние настойки надземной части Filipendula ulmaria (Rosaceae) на регенерацию гемопоэза после введения цитостатика // Растительные ресурсы. 2005. — Т. 41. — № 1. — С. 121 -125.
  89. В.Г. Растения в терапии и профилактике болезней. Томск: Изд-во ТГУ, 1989. — 208 с.
  90. Н.И. Место терапии в системе лечения онкологических больных и выбор терапевтической тактики // Современная онкология. 2001. — Т. 3. — № 2. — С.66−69.
  91. Н.И. Руководство по химиотерапии опухолевых заболеваний. М.: «Практическая медицина», 2005. — 704 с.
  92. Т.Е. Лекарственные гепатиты // Терапевтический архив. -1999.-№ 12.-С. 46−49.
  93. С.В., Оводов Ю. С. Влияние пектинов на острый язвенный колит у мышей //Гастроэнтерология Санкт-Петербурга. 2005. — № 1−2. — С. 15−16.
  94. Э.Г., Новиков А. И. Медицинские аспекты применения пектина. М.: «Медкнига», 2002. — 101 с.
  95. В.В. Лечение и профилактика осложнений химиолучевой терапии у больных с лимфомами // Практическая онкология. 2005. — Т. 5. — № 3. — С. 223−230.
  96. В.В. Совершенствование методов поддерживающей терапии при проведении цитостатического лечения // Современная онкология. 2002. i Т. 4. — № 2. — С. 28−30.
  97. B.B. Трансплантация костного мозга в современной химиотерапии злокачественных новообразований // Русский медицинский журнал. -2001. Т. 9. — № 22. — С. 984−989.
  98. Т.Г. Фитопрепараты и биологически активные вещества лекарственных растений в комплексной терапии злокачественных новообразований (экспериментальное исследование): Автореф. дисс.. д-ра биол. наук. -Томск, 2006. 47 с.
  99. Т.Г., Зуева Е. П., Амосова E.H. и др. Глицирам как средство повышения химио- и хирургического методов лечения экспериментальных опухолей // Вопросы онкологии. 1999. — Т. 44. — № 5. — С. 554−556.
  100. А.Р., Корнеева A.B., Цопова И. А. Тромбопоэтин и C-MPL рецептор. 2007. — Т. 7. — № 3. — С. 34−37.
  101. Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ / Под ред. Р. У. Хабриева. 2-изд., перераб. и доп.- М.:ОАО Изд-во «Медицина», 2005. — 832 с.
  102. А.Г., Владимирская Е. Б. Тромбопоэтин: перспективы клинического применения // Педиатрия. 1997. — № 4. — С. 87−92.
  103. A.C., Буркова В. Н., Венгеровский А. И. и др. Новые гепато-протекторы: Лохеин, Эплир, Липроксол // Сибирский онкологический журнал. 2002. — № 1. — С. 70−72.
  104. A.C., Краснов Е. А. Родиола розовая (золотой корень). 4-е издание, переработанное и доп. — Томск: Изд-во ТГУ, 2004. — 292 с.
  105. A.C., Ратькин A.B., Фролов В. Н. и др. Коррекция токсичности циклофосфана гепатопротекторами полифенольной природы // Бюллетень Сибирской медицины. 2004. — № 1. — С. 52−56.
  106. A.B., Ревазова Е. С., Денисова С. И. Иммуномодулирующая и противоопухолевая активность полисахаридов растительного происхождения // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1985. — № 12. — С. 741 743.
  107. Т.П., Орлова Т. Г., Щегловитова О. Н. и др. Интерферониндуци-рующее действие полисахаридсодержащих биополимеров из корня и культу-рыклеток женьшеня // Антибиотики и химиотерапия 1998. — № 11. — С. 21−23.
  108. С.Я. Фитотерапия и фитофармакология. М.: «Мед. информ. Агенство», 2000. — 967 с.
  109. Л.Н., Хотимченко М. Ю. Эффективность пектина, выделенного из морской травы Tosiera marina, при поражении- печени свинцом в эксперименте // Биология моря. 2007. — Т. 33. — № 3. — С. 240−241.
  110. З.П., Сыркин А. Б., Голдин А., Кляйн А. Экспериментальная оценка противоопухолевых препаратов в СССР и США. М.: «Медицина», 1980.-296 с.
  111. A.C. Спектрофотометрическое определение суммарного количества нуклеиновых кислот // Биохимия. 1958. — Т. 23, Вып. 5. — С. 656−661.
  112. Ю. М., Филиппова А. Ю., Кононов И. Н. Лекарственные поражения печени: патогенез, классификация, диагностика, лечение (Richter Gedeon Rt, Венгрия) // Провизор. № 5. — 2005. — С. 37−45.
  113. Е.В. Характеристика ангиогенной активности опухолей человека in vivo // Российский биотерапевтический журнал. 2007. — № 1. — С. 6−7.
  114. И.А. Механизм повышения резистентности организма животных под действием растительных полисахаридов в норме и при патологии: Авто-реф. дисс.. д-ра биол. наук: Москва, 2008. — 37 с.
  115. И.А., Порядин Г. В., Смирнов В. М. Действие полисахаридов на систему крови крыс // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. -2006. Т. 141. — № 5. — С. 530−533.
  116. H.H., Чимишкян К. Л., Птушкин В. В. Трансплантация костного мозга в онкологии // Трансплантология и искусственные органы. 1994. — № 1. — С. 45−49.
  117. Е.В. Коррекция анемического синдрома при миелоингибирующих воздействиях: Автореф. дисс.. д-ра мед. наук: Томск, 2008. — 44 с.
  118. Т.А., Потеряева О. Н., Жанаева С. Я. и др. Цистатин С и цистеино-вые протеиназы в динамике развития и при лечении аденокарциномы легких Льюис у мышей // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. -2003. Т. 135. — № 1. — С. 95−98.
  119. Е.Г. Регуляция активности макрофагов полисахаридами мать-и-мачехи обыкновенной, аира болотного, календулы лекарственной, девясила высокого: Автореф. дисс.. канд. мед. наук: Томск, 2009. — 22 с.
  120. Флора Сибири. Araceae-Orchidaceae.- Новосибирск: «Наука», 1987. 345 с.
  121. Т.И., Тимина Е. А., Карпова Г. В. и др. Миелотоксичность пак-литаксела (митотакс) // Экспериментальная и клиническая фармакология. -2007. № 4. — С. 39−43.
  122. К.П., Афанасьев Б. В., Берштейн JI.M. и др. Современные тенденции в развитии биологической терапии злокачественных опухолей // Вопросы онкологии. 1996. — Т. 42. — № 5. — С. 7−13.
  123. Э.И., Сгребнева М. Н., Ермак И. М., Горбач В. И. Хитозан и неспецифическая резистентность организма // Вестник ДВО РАН. 2005. — № 1. -С. 62−71.
  124. Ю.С., Ермак И. М., Бедняк А. Е. и др. Фармакология некрахмальных полисахаридов // Вестник ДВО РАН. 2005. — № 1. — С. 72−79.
  125. Ю.С., Кропотов A.B., Хотимченко М. Ю. Фармакологические свойства пектинов // Эфферентная терапия. 2001. — Т. 7. — № 4. — С. 22−36.
  126. М.Ю., Сонина JI.H. Эффективность альгината кальция при токсическом поражении печени у крыс // Дальневосточный медицинский журнал. 2006. — № 4. — С. 27−31.
  127. Ю.С., Хасина Э. И. Эффективность пищевых некрахмальных полисахаридов при экспериментальном токсическом гепатите // Вопросы питания. 2000. — Т. 69. — № 1−2. — С. 22−26.
  128. Ю.С., Хасина Э.И, Шевцова О. И. и др. Лечебное действие полисахаридов из морских гидробионтов при экспериментальном токсическом гепатите // Дальневосточный медицинский журнал. 1997. — № 4. — С. 58−59.
  129. Н.В., Литвяков Н. В., Кокорев О. В. и др. Роль системы иммунитета в противоопухолевой активности модификаторов биологических реакций различной природы // Сибирский онкологический журнал. 2002. -№ 1. — С. 56−61.
  130. В.И. Борьба с онкологическими заболеваниями медицинская и социальная задача // Медицинский вестник. — 2010. — № 8. — С.4.1.t
  131. А.А., Гольдберг B.E., Карпова Г. В. и др. Реакции костномозгового кроветворения на токсическое воздействие паклитаксела // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2008. — № 2. — С. 173 — 177.
  132. В .А., Огарков Б. Н., Чхенкели Г. Д. и др. Состав и биологическая активность внеклеточных полисахаридов ксилотрофных // Сибирский медицинский журнал. 2006. — № 8. — С. 352−356.
  133. Е.Г., Блинова К. Ф. Динамика накопления эфирного масла в аире обыкновенном в период вегетации // Вторая республиканская конференция по медицинской ботанике. Тезисы докладов. Киев, 1988. — С. 326−327.
  134. И. А. Активация макрофагов растительными полисахаридами // Антибиотики и химиотерапия. 2004. — Т. 49. — № 1. — С. 35−42.
  135. К.В. Природные средства против рака. СПб, 2001. — 160 с.
  136. Abouelella A.M., Shahein Y.E., Tawfik S.S. et al. Phytotherapeutic effects of Echinacea Purpurea in y-irradiated mice // J. Vet. Sci. 2007. — Vol. 8. — № 4. — P. 341−351.
  137. Akramiene D., Kondrotas A., Didziapetriene J. Effects of P-glucans on the' immune system // Medicina (Kaunas). 2007. — Vol. 43. — № 8. — P. 597−606.
  138. Andrews P.L., Davis C.J., Bingham S. et al. The abdominal visceral innervation and the emetic reflex: pathways, pharmacology and plasticity // Can. J. Physiol. Pharmacol. 1990. — Vol. 68. — P. 325−345.
  139. Aqil F., Ahmad I. Antibacterial properties of traditionally used Indian medicinal plants // Methods Find. Exp. Clin. Pharmacol. 2007. — Vol. 29. — P. 79−92.
  140. Assreuy A.M., Gomes D.M., Silva M.S. et al. Biological effects of a sulfated-polysaccharide isolated from the marine red algae Champia Feldmannii II Biol. Pharm. Bull. 2008. — Vol. 31. — № 4. — P. 691−695.
  141. Atkinson K., Horovitz M.M., Biggs J.C. The clinical diagnosis of acute GVHD, a diversity of views amongst marrow transplant centers // Bone Marrow
  142. Transplant. 1988. — Vol. 3. — P. 5−10.
  143. Bains J.S., Dhuna V., Singh J. et al. Novel lectins from rhizomes of two Acorus Species with mitogenic activity and inhibitory potential towards murine cancer cell lines // Int. Immunopharmacol. 2005. — Vol. 5. — № 9. — P. 1470−1478.
  144. Berkovitch M., Matsui D., Zipursky A. et al. Hepatotoxicity of 6-mercaptopurine in childhood acute lymphocytic leukemia: pharmacokinetic characteristics // Med. Pediatr. Oncol. 1996. — Vol. 26. — № 2. — P.85−89.
  145. Blajchman M.A., Vamvakas E.C. The Continuing Risk of Transfusion-Transmitted Infections //NEJM. 2006. — Vol. 355. — P. 1303−1305.
  146. Bolhius J., Wilson J., Seidenfeld J. et al. Recombinant human eiythropoietins and cancer patients: updated meta-analysis of 57 studies including 9353 patients // J. Natl. Cancer Inst. 2006. — Vol. 98. — P. 708−714.
  147. Bradford M.M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding // Analyt. Biochem. 1976. — Vol. 72. — P: 248−254.
  148. Brizzi M.F., Avanzi G.C., Pegoraro L. Hematopoietic growth factor receptors // Int. J. Cell Cloning. 1991. — Vol. 9. — P. 274−300:
  149. Brown C.G., Wingard J. Clinical consequences of oral microsites // Semin Oncol. Nuts. 2004. — Vol. 20. — № 1. — P. 16−21.
  150. Byon Y.Y., Kim M.H., Yoo E.S. et al. Radioprotective effects of fucoidan on bone marrow cells: improvement of the cell survival and immunoreactivity // J. Vet. Sci. 2008. — Vol. 9. — № 4. — P. 359−365.
  151. Chamorro G., Salazar M., Salazar S. et al. Pharmacology and toxicology of Guat-teria Gaumeri and a-asarone // Rev. Invest. Clin. 1993. — Vol. 45. — № 6. — P. 597−604.
  152. Chaves F., Chacon M., Badilla B. et al. Effect of Echinacea Purpurea (As-teraceae) aqueous extract on antibody response to Bothrops asper venom and immune cell response // Rev. Biol. Trop. 2007. — Vol. 55. — № 1. — P. 113−119.
  153. Cleland B.D., Pokorny C.S. Cyclophosphamide related hepatotoxicity // Aust. N. Z. J. Med. 1993. — Vol. 23. — № 4. — P. 408.
  154. Cui F.J., Li Y., Xu Y.Y. et al. Induction of apoptosis in SGC-7901 cells by polysaccharide-peptide GFPSlb from the cultured mycelia of Grifola Frondosa GF9801 // Toxicol. In Vitro. 2007. — Vol. 21. — № 3. — P. 417−427.
  155. Dang S.S., Zhang X., Jia X.L. et al. Protective effects of emodin and astragalus polysaccharides on chronic hepatic injury in rats // Chin. Med. J. (Engl). 2008. -Vol. 121.-№ 11.-P. 1010−1014.
  156. Daniels J.A., Gibson M.K., Xu L. et al. Gastrointestinal tract epithelial changes associated with taxanes: marker of drug toxicity versus effect // Am J. Surg. Pathol. 2008. — Vol. 32. — № 3. — P. 473−477.
  157. De Jong M.E., Carbiere T., Heuvel-Eibrink M.M. The use of an insuflon device for the administration of G-CSF in pediatric cancer patients // Support Care Cancer. 2006. — Vol. 14. — № 1. — P. 98−100.
  158. Demetter P., Nagy N., Martin B. et al. The galectin family and digestive disease// J. Pathol. 2008. — Vol. 215. — № 1.-P.1−12.
  159. Di Maio M., Gridelli C., Gallo C. et al. Chemotherapy-induced neutropenia and treatment efficacy in advanced non-small-cell lung cancer: a pooled analysis of three randomized trials // Lancet Oncol. 2005. — Vol. 6. — № 9. — P. 669−77.
  160. Diao H., Li X., Chen J. et al. Bletilla Striata polysaccharide stimulates inducible nitric oxide synthase and proinflammatory cytokine expression in macrophages // Biosci. Bioeng. 2008. — Vol. 105. — № 2. — P. 85−89.
  161. Dingemane K.P., Spronsen P., Thunnisen E. B16 melanoma metastasis in mouse liver and lung // Inv. Metast. 1985. — № 5. — P.50−60.
  162. Du X.F., Jiang C.Z., Wu C.F. et al. Synergistic immunostimulating activity of pidotimod and red ginseng acidic polysaccharide against cyclophosphamide-induced immunosuppression // Arch. Pharm. Res. 2008. — Vol. 31. — № 9. — P. 1153−1159.
  163. Dubois M., Gilles K.A., Hamilton J.K. et al. Colorimetric method for determination of sugar and related substances // Anal. Chem. 1956. — Vol. 28. — № 3- -P.350−356.
  164. Farrell G. Drug-induced hepatic injury // Gastroenterol. Hepatol. 1997. -Vol. 12. — № 9−10. — P. 242−250.
  165. Fourcade M. Human recombinant granulocyte colony stimulating factors: glycosylation makes the difference // La Presse Medicale. 1997. — Vol. 26. -'№ 30.
  166. Fukunaga T., Sasaki M., Araki Y. et al. Effects of the soluble fibre pectin on intestinal proliferation, fecal short chain fatty acid production and microbial population // Digestion. 2003. — Vol. 67. — P. 42 — 49.
  167. Gaidamaka N.V., Parovichnikova E.N., Zavalishina L.E. et al. Prolonged bone marrow aplasia in patients with acute leukemia after chemotherapy // Ter Arkh. 2010. — Vol. 82. — № 7. — P. 29−34.
  168. Gamal-Eldeen A.M., Ahmed E.F., Abo-Zeid M.A. In vitro cancer chemopreventive properties of polysaccharide extract from the brown alga Sargassum Lati-folium II Food. Chem. Toxicol. 2009. — Vol. 47. — № 6. — P. 1378−1384.
  169. Ganguly A., Yang H., Cabral F. Paclitaxel-dependent cell lines reveal a novel drug activity // Mol. Cancer Ther. 2010. — Vol. 9. — № 11. — P. 2914−2923.
  170. Ganti A.K., Loberiza F.R., Kessinger A. Factors affecting bone marrow toxicity following administration of carboplatin and paclitaxel in patients with non-small cell lung cancer // Anticancer Res. 2010. — Vol. 30. — № 4. — P. 1365−1369.
  171. Geran R.S., Greenberg N.H., Macdonald M.M. Protocols for screening chemical agents and natural products against animal tumors and other biological systems II Cancer Chemother. Rep. 1972. — Vol. 33. — № 2- - P. 9−11.
  172. Ghosh K., Chandra K., Ojha A.K. et al. Structural identification and cytotoxic activity of a polysaccharide from the fruits of Lagenaria Siceraria L. II Carbohydr. Res. 2009. — Vol. 344. — № 5. — P. 693−698.
  173. Gilani A.U., Shah A.J., Ahmad M. et al. Antispasmodic effect of Acorus Calamus L. is mediated through calcium channel blockade // Phytother. Res. -2006. Vol. 20. — № 12. — P. 1080−1084.
  174. Gonzaga M.L., Bezerra D.P., Alves A.P. et al. In vivo growth-inhibition of Sarcoma 180 by an a-(l—>4)-glucan-P-(l-→6)-glucan-protein complex polysaccharide obtained from Agaricus Blazei M. II Nat. Med. (Tokyo). 2009. — Vol. 63. -№ l.-P. 32−40.
  175. Gu Y., Fujimiya Y., Itokawa Y. et al. Tumoricidal effects of p-glucans: mechanisms include both antioxidant activity plus enhanced systemic and topical immunity // Nutr. Cancer. 2008. — Vol. 60. — № 5. — P. 685−691.
  176. Gu Y.H., Sivam G. Cytotoxic effect of oyster mushroom Pleurotus Ostreatus on human androgen-independent prostate cancer PC-3 cells // J. Med. Food. -2006. Vol. 9. — № 2. — P. 196−204.
  177. Gurion R., Shacham-Abulafia A., Shpilberg O., Raanani P. The use of myeloid colony-stimulating factors in hematologic malignancies: the role of systematic reviews and meta-analyses II Acta Haematol. 2011. — Vol. 125. — № 1−2. — P. 68−79.
  178. Hamerschlak N., Cavalcanti A.B. Neutropenia, agranulocytosis and dipyrone II Sao Paulo Med J. 2005. — Vol. 123. — № 5. — P. 247−249.
  179. Harnack U., Eckert K., Fichtner I., Pecher G. Comparison of the effect of orally administered soluble p-(l-3), (l-6)-D-glucan and of G-CSF on the recovery of murine hematopoiesis // In Vivo. 2010. — Vol. 24. — № 1. — P. 59−63.
  180. Hellmann K. Antimetastatic drugs: from laboratory to clinic // Clin, and Exp. Metastas. 1984. — Vol. 2. — № 1. — P. 1−4.
  181. Hidari K.I., Takahashi N., Arihara M. et al. Structure and anti-dengue virus activity of sulfated polysaccharide from a marine alga // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2008. — Vol. 376. — № 1. — P. 91−95.
  182. Hofmann M.A., Gabriel V., Milling A. et al. High-dose platinum combination therapy in pretreated patients with disseminated melanoma // Chemotherapy. -2007. Vol. 53. — № 6. — P. 422−428.
  183. Hong L., Xun M., Wutong W. Anti-diabetic effect of an a-glucan from fruit body of maitake (Grifola frondosa) on KK-Ay mice // J. Pharm. Pharmacol. -2007. Vol. 59. — № 4. — P. 575−582.
  184. Honjo I., Suou T., Hirayama C. Hepatotoxicity of cyclophosphamide in man: pharmacokinetic analysis // Res. Commun. Chem. Pathol: Pharmacol 1988. -Vol. 61,-№ 2.-P. 1491−1465.
  185. Hu B.Y., Ji Y.Y. Research on the anticarcinogenic activation of Acorus Calamus: Anticarcinogenic activation of a-asarone on human carcinoma cells // J. Mod. Devel. Tradit. Med. 1986. — Vol. 6. — № 8. — P. 480−483.
  186. Hu K., Liu Q., Wang S. et al. New oligosaccharides prepared by acid hydrolysis of the polysaccharides from Nerium Indicum M. and their anti-angiogenesis activities // Carbohydr. Res. 2009. — Vol. 344. — № 2. — P. 198−203.
  187. Hu Z., Yang X., Ho P.C. et al. Herb-drug interactions: a literature review // Drugs. 2005. — Vol. 65. — № 9. — P. 1239−1282.
  188. Huang Z.L., Liu H.Y. Expression of galectin-3 in liver metastasis of colon cancer and the inhibitory effect of modified citrus pectin // Nan. Fang. Yi Ke Da Xue Xue Bao. 2008. — Vol. 28. — № 8. — P. 1358−1361.
  189. Iborra F. Coupled transcription and translation within nuclei of mammalian cells // Science. 2001. — № 293. — P. 1139−1142.
  190. Im S.A., Kim K., Lee C.K. Immunomodulatory activity of polysaccharides isolated from Salicornia Herbacea II Int. ImmunopHarmacol. 2006. — Vol. 6. -№ 9.-P. 1451−1458.
  191. Jaheway C.A., Travers P. Immunology: The immune system in health and disease // Second ed. Publishing Inc, 1996. 235 p.
  192. Jain R., Carmeliet P. Vessels of death or life // Sci. Amer. 2001. — Vol. 285. — P. 39−45.
  193. Jia M., Yang T.H., Yao X.J. et al. Anti-oxidative effect of Angelica polysaccharide sulphate //Zhong Yao Cai. 2007. — Vol. 30. — № 2. — P. 185−188.
  194. Jin L.Q., Zheng Z.J., Peng Y. et al. Opposite effects on tumor growth depending on dose of Achyranthes Bidentata polysaccharides in C57BL/6 mice // Int. Immunopharmacol. 2007. — Vol. 7. — № 5. — P. 568−577.
  195. Jung Y.S., Yang B.K., Jeong Y.T. et al. Immunomodulation activities of water-soluble exopolysaccharides obtained from submerged culture of Lentinus Lepideus II J. Microbiol. Biotechnol. 2008. — Vol. 18. — № 8. — P. 1431−1438.
  196. Kathryn D. R., James D. S-A., Jacenko O. Heparin Sulfate Proteoglycans: A GAGgle of Skeletal-Hematopoietic Regulators // NIH Public Access Author Manuscript. 2008. — Vol. 1237. — № 10. — P. 2622−2642.
  197. Kim C.F., Jiang J.J., Leung K.N. et al. Inhibitory effects of Agaricus Blazei extracts on human myeloid leukemia cells // Ethnopharmacol. 2009. — Vol. 122. -№ 2. — P. 320−326.
  198. Kim G.Y., Lee M.Y., Lee H.J. et al. Effect of water-soluble proteoglycan isolated from Agaricus Blazei on the maturation of murine bone marrow-derived dendritic cells // Int. Immunopharmacol. 2005. — Vol. 5. — № 10. — P. 1523−1532.
  199. Kim H., Han T.H., Lee S.G. Anti-inflammatory activity of a water extract of Acorus Calamus L. leaves on keratinocyte HaCaT cells // J. Ethnopharmacol. -2009. Vol. 122. — № 1. — P. 149−156.
  200. Kim H.M., Kang J.S., Park S.K. et all Antidiabetic activity of angelan isolated from Angelica Gigas N. II Arch. Pharm. Res. 2008. — Vol. 31. — № 11. -P. 1489−1496.
  201. Kim H.Y., Kim J.H., Yang S.B. et al. A polysaccharide extracted from rice bran fermented with Lentinus Edodes enhances natural killer cell activity and exhibits anticancer effects // J. Med. Food. 2007. — Vol. 10. — № 1. — p. 25−31.
  202. Kim-J.Y., Byeon S.E., Lee Y.G. et al. Immunostimulatory activities of polysaccharides from liquid culture of pine-mushroom Tricholoma Matsutake II J. Microbiol. Biotechnol. 2008. — Vol. 18. — № 1. — P. 95−103.
  203. Kim J.Y., Yoon Y.D., Ahn J.M. et al. Angelan isolated from Angelica Gigas N. induces dendritic cell maturation through toll-like receptor 4 // Int. Immunopharmacol. 2007. — Vol. 7. — № 1. — P.78−87.
  204. Kim M. H. Flavonoids inhibit VEGF/bFGF-induced angiogenesis in vitro by inhibiting the matrix-degrading proteases // J. Cell. Biochem. 2003. — Vol. 89. -№ 3. — P. 529−538.
  205. Kim M.R., Lee J.Y., Lee H.H. et al. Antioxidative effects of quercetin-glycosides isolated from the flower buds of Tussilago Farfara L. 11 Food. Chem. Toxicol. 2006. — Vol. 44. — № 8. — P. 1299−1307.
  206. Kim R., Emi M., Tanabe K. Cancer immunosuppression and autoimmune disease: beyond immunesupressive networks for tumor immunity // Immunology. -2006. Vol. 119. — P. 254−264.
  207. Kogan G., Pajtinka M., Babincova M. et al. Yeast cell wall polysaccharides as antioxidants and antimutagens: can they fight cancer? // Neoplasma. 2008. -Vol. 55.-№ 5.-P. 387−393.
  208. Kokoska L., Polesny Z., Rada V. et al. Screening of some Siberian medicinal plants for antimicrobial activity // Journal of Ethnopharmacology. 2002. -Vol. 82.-№ 1.-P. 51−53.
  209. Koroleva I.A., Vel’sher L.Z., Kaziulin A.N. et al. Assessment of gastrointestinal toxicity at patients with breast cancer receiving. Taksans chemotherapy and doxorubicin // Eksp. Klin. Gastroenterol: 2010. — Vol. 3. — P.38−43.
  210. Koster W., Wilke H. Early and late complications of chemotherapy of solid tumors // MMW Fortschr. Med. 2004. — Vol. 146. — № 31−32. — P. 19−22.
  211. Kwon M.J., Nam T.J. A polysaccharide of the marine alga Capsosiphon Ful-vescens induces apoptosis in AGS gastric cancer cells via an IGF-IR-mediated PI3K/Akt pathway // Cell Biol. Int. 2007. — Vol. 31. — № 8. — P. 768−775. *
  212. Laderach, D.J., Compagno D., Toscano M.A. et al. Dissecting the signal transduction pathways triggered by galectin-glycan interactions in physiological and pathological settings // IUBMB Life. 2010. — Vol. 62. — № 1. — P. 1−13.
  213. Lakka S.S., Gondi C.S., Rao J.S. Proteases and glioma angiogenesis // Brain Pathol. 2005. — Vol. 15. — № 4. — P. 327−341.
  214. Laslett T.J., Alvarez F., Nation R.L. et al. Effect of cyclophosphamide administration on the activity and relative content of hepatic P4502D1 in rat // Xeno-biotica. 1995. — Vol. 25. — № 10. — P. 235−246.
  215. Laws HJ., Ammann R.A., Lehrnbecher T. Diagnostic procedures and management of Fever in pediatric cancer patients // Klin. Padiatr. 2005. — Vol. 217. -№ 1.- P. 9−16.
  216. Lee Y.S., Kim J., Lee S.G. et al. Fumigant antifungal activity of essential oil components from Acorus Gramineus against three phytopathogenic fungi // Z. Naturforsch C. 2008. — Vol. 63. — № 7−8. — P. 503−506.
  217. Lee J.S., Kwon J.S., Won D.P. et al. Study of macrophage activation,'and structural characteristics of purified polysaccharide from the fruiting body of Cor-dyceps Militaris II J. Microbiol Biotechnol. 2010. — Vol. 20. — № 7. — P. 10 531 060.
  218. Li H., Lu X., Zhang S. et al. Anti-inflammatory activity of polysaccharide from Pholiota Nameko II Biochemistry (Mosc). 2008. — Vol. 73. — № 6. — P. 669−675.
  219. Li J., Li Q., Feng T. et al. Antitumor activity of crude polysaccharides isolated from Solanum Nigrum L. on U14 cervical carcinoma bearing mice // Phyto-ther. Res. 2007. — Vol. 21. — № 9. — P. 832−840.
  220. Lida S., Kohro T., Kodama T. et al. Identification of CCR2, flotillin, and gp49 B genes as new G-CSF targets during neutrophilic differentiation // J. Leu-koc. Biol. 2005. Vol. 78. — № 2. — P. 481−490.
  221. Lin H., Cheung S.W., Nesin M. et al. Enhancement of umbilical cord blood cell hematopoiesis by maitake (3-glucan is mediated by granulocyte colony-stimulating factor production // Clin. Vaccine Immunol. 2007. — Vol. 14. — № 1. -P. 21−27.
  222. Lins K.O., Bezerra D.P., Alves A.P. et al. Antitumor properties of a sulfated polysaccharide from the red seaweed Champia Feldmannii, D.-P. II J. Appl. Toxicol. 2009. — Vol. 29. — № 1. — P. 20−26.
  223. Liu H.Y., Huang Z.L., Yang G.H. et al. Inhibitory effect of modified citrus pectin on liver metastases in a mouse colon cancer model // World J. Gastroenterol. 2008. — Vol. 14. — № 48. — P. 7386−7391.
  224. Liu J., Gunn L., Hansen R. et al. Yeast-derived (3-glucan in combination with antitumor monoclonal antibody therapy in cancer // Recent. Pat. Anticancer Drug Discov. 2009. — Vol. 4. — № 2. — P. 101−109.
  225. Liu PJ, Hsieh WT, Huang SHE et al. Hematopoietic effect of water-soluble polysaccharides from Angelica Sinensis on mice with acute blood loss // Exp. He-matol. 2010. — Vol. 38. — № 6. — P. 437−445.
  226. Liu Q.Y., Meng Q.Y. Effects of Sargassum Confusum polysaccharide on the expression of p53 and Rb genes in mouse sarcoma SI80 cells // Nan Fang Yi Ke Da Xue Xue Bao. 2008. — Vol. 28. — № 8. — P. 1378−1381.
  227. Liu X.N., Zhang C.Y., Jin X.D. et al. Inhibitory effect of schisandrin B on gastric cancer cells in vitro // World J. Gastroenterol. 2007. — Vol. 13. — № 48. -P. 6506−6511.
  228. Liu Y.F., Yang X.W., Wu B. Studies on chemical constituents in the buds of Tussilago Farfara II Zhongguo Zhong Yao Za Zhi. 2007. — Vol. 32. — № 22. -P: 2378−2381.
  229. Lu Y.Y., Ao Z.H., Lu Z.M. et al. Analgesic and anti-inflammatory effects of the dry matter of culture broth of Termitomyces Albuminosus and its extracts // J. Ethnopharmacol. 2008. — Vol. 120. — № 3. — P. 432−436.
  230. Luftner D., Possinger K. Pegfilgrastim rational drug for the management of chemotherapy-induced neutropenia // Onkologie. — 2005. — Vol. 28. — № 11. -P. 595−602.
  231. Luis-Fernandez J., Rangel-Mayoral J.F., Estepa-Alonso M.J., Liso-Rubio FJ. Neutropenia induced by taxoids and its control with granulocyte colony-stimulating factor // Invest. Clin. 2005. — Vol. 46. — № 3. — P. 265−272.
  232. Lyman H. G., Lyman H. C., Agboola O. For the Anc Study Group. Risk Models for Predicting Chemotherapy-Induced Neutropenia // The Oncologist. -2005. Vol. 10. — № 6. — P. 427−437
  233. Makarenkova I.D., Besednova N.N., Zaporozhets T.S. Antiviral action of sulfated polysaccharides // Antibiot. Khimioter. 2009. — Vol. 54. — № 1−2. — P. 56−62.
  234. Maruyama H., Tamauchi II., Iizuka M. et al. The role of NK cells in antitumor activity of dietary fucoidan from Undaria Pinnatifida sporophylls M./l Planta Med. 2006. — Vol. 72. — № 15. — P. 1415−1417.
  235. Maruyama S., Sukekawa Y., Kaneko Y. et al. Antitumor activities of lentinan and micellapist in tumor-bearing mice // Gan To Kagaku Ryoho. 2006. — Vol. 33. — № 12.-P. 1726−1729.
  236. Masson V. Roles of serine proteases and matrix metalloproteinases in tumor invasion and angiogenesis // Bull. Mem. Acad. R. Med. Belg. 2006. — Vol. 161. -№ 5. — P. 320−326.
  237. McDonnell M.E., Braverman L.E., Patel K.P. et al. Drug-related hepatotoxic-ity // N. Engl. J. Med. 2006. — № 354. — P. 15−26.
  238. Medeiros V.P., Queiroz K.C., Cardoso M.L. et al. Sulfated galactofucan from Lobophora Variegata: anticoagulant and anti-inflammatory properties // Biochemistry (Mosc). 2008. — Vol. 73. — № 9. — P. 1018−1024.
  239. Nakahara S., Oka N., Raz A. On the role of galectin-3 in cancer apoptosis // Apoptosis. 2005. — Vol. 10. — № 2. — P. 267−275.
  240. Nguyen Y. K. Granulocyte colony stimulating factor // Fl. Med. Assoc. -1994. Vol. 81. — № 7. — P. — 467−469.
  241. Nicola N.A. Hemopoietic cell growth factors and their receptors // Annu Rev. Biochem. 1989. — Vol. 58. — P. 45−77.
  242. Ninci E.B., Brandstetter T., Meinhold-Heerlein I. et al. G-CSF receptor expressing in ovarian cancer//Int. J. Gynecol Cancer. 2000. — Vol. 10. — № 1. — P. 19−26.
  243. Niu Y.C., Liu J.C., Zhao X.M. et al. A low molecular weight polysaccharide isolated from Agaricus Blazei suppresses tumor growth and angiogenesis in vivo // Oncol. Rep. 2009. — Vol. 21. — № 1. — P. 145−152*.
  244. Noleto G.R., Petkowicz C.L., Merce A.L. et al. Two galactomannan preparations from seeds from Mimosa Scabrella (bracatinga): Complexation with oxova-nadium (IV/V) and cytotoxicity on HeLa cells // J. Inorg. Biochem. 2009. -Vol. 103.-№ 5.-P. 749−757.
  245. Padilha M.M., Avila A.A., Sousa P.J. et al. Anti-inflammatory activity of aqueous and alkaline extracts from mushrooms (Agaricus Blazei M.) II J. Med. Food. 2009. — Vol. 12. — № 2. — P. 359−364. i"
  246. Padilla G., Ropka M.E. Quality of life and chemotherapy-induced neutropenia // Cancer Nurs. 2005. — Vol. 28 — № 3. — P. 167−171.
  247. Parkin D.M., Bray F., Ferlay J., Pisani P. Global cancer statistics, 2002 // CA Cancer J. Clin. 2005. — Vol. 55. — P. 74−108.
  248. Patrick J., Stiff M.D. The callenges of oral mucositis and its therapy // The J. Support Oncol. 2004. — Vol. 2. — № 2. — P. 70−72.
  249. Phongpaichit S., Pujenjob N., Rukachaisirikul V. et al. Antimicrobial activities of the crude methanol extract of Acorus Calamus L. II Songklanakarin J. Sci. Technol. 2005. — Vol. 27. — № 2. — P. 517−523.
  250. Pillai S., Pillai C., Mitscher L.A. et al. Use of quantitative flow cytometry to measure ex vivo immunostimulant activity of Echinacea: the case for polysaccharides // J. Altern. Complement Med. 2007. — Vol. 13. — № 6. — P. 625−634.
  251. Poplawski J., Lozowicka B., Dubis A.T. et al. Synthesis and hypolipidemic and antiplatelet activities of a-asarone isomers in humans (in vitro), mice (in vivo), and rats (in vivo) // J. Med. Chem. 2000. — Vol. 43. — № 20. — P. 3671−3676.
  252. Popov S.V., Popova G.YU., Ovodova R.G. et al. Antiinflammatory activity of the pectin polysaccharide from Comarum Palustre II Fitoterapia. 2005. — Vol. 76.-№ 3−4.-P. 281−287.
  253. Proksch A., Wagner H. Structural analysis of 4-O-methyl-glucu-ronoarabinoxylan with immunostimulating activity from Echinacea Purpurea II Phytochemistry. 1987. — Vol. 26. — № 7. — P. 1989−1993.
  254. Rice P.J., Kelley J.L., Kogan G. et al. Human monocyte scavenger receptors are pattern recognition receptors for (lY3)-h-d-glucans // J. Leukoc. Biol. 2002. -Vol. 72. — P. 140 — 146.
  255. Rodrigues P.C., Ochoa A.C. T-cell dysfunction in cancer: role of myeloid cells and tumor cells regulating amino acid availability and oxidative stress // Semin. Cancer Biol. 2008. — Vol. 16. — № 1. — P. 66−72.
  256. Rowinsky E. K., Donehower R. C. Paclitaxel (Taxol) // New England Journal of Medicine. 1995. — Vol. 332. — P. 1004−1014.
  257. Salman H., Bergman M., Djaldetti M. et al. Citrus pectin affects cytokine production by human peripheral blood mononuclear cells // Biomed. Pharmacother. 2008. — Vol. 62. — № 9. — P. 579−582.
  258. Santini V., Scappini B., Indik Z.K. et al. The carboxy-terminal region of the granulocyte colony-stimulating factor receptor transduces a phagocytic signal // Blood. 2003. — Vol1. 101.-№ 11.-P. 4615−4622.
  259. Satelli A., Rao P. S., Gupta P.K. et al. Varied expression and localization of multiple galectins in different cancer cell lines // Oncol. Rep. 2008. — Vol. 19. -№ 3.-P. 587−594.
  260. Sathivel A., Raghavendran H.R., Srinivasan P. et al. Anti-peroxidative and anti-hyperlipidemic nature of Ulva Lactuca crude polysaccharide on D-galactosamine induced hepatitis in rats // Food Chem. Toxicol. 2008 — Vol. 46. -№ 10.-P. 3262−3267.
  261. Shanholtz C. Acute life-threatening toxicity of cancer treatment // Crit. Care. Clin. 2001. — Vol. 17. — № 3. — P. 483−502.
  262. Shao B.M., Xu W., Dai H. et al. A study on the immune receptors for polysaccharides from the roots of Astragalus Membranaceus, a Chinese medicinal herb //Biochem. Biophys. Res. Commun. 2004. — Vol. 320. — P. 1103−1 111.
  263. Sharma A., Lokeshwar N. Febrile neutropenia in haematological malignancies // J. Postgrad Med. 2005. — Vol. 51. — P. 42−48.
  264. Sharma M., Schoop R., Hudson J.B. Echinacea as an antiinflammatory agent: the influence of physiologically relevant parameters // Phytother. Res. 2009. -Vol. 23. — № 6. — P. 863−867.
  265. Shih C.M., Cheng S.N., Wong C.S. et al. Antiinflammatory and antihyperal-gesic activity of C-phycocyanin // Anesth Analg. 2009. — Vol. 108. — № 4. -P. 1303−1310.
  266. Shim J.Y., Han Y., Ahn J.Y. et al. Chemoprotective and adjuvant effects of immunomodulator ginsan in cyclophosphamide-treated normal and tumor bearing mice // Int. J. Immunopathol. Pharmacol. 2007. — Vol. 20. — № 3. — P. 487−497.
  267. Shin J.Y., Song J.Y., Yun Y.S. et al. Immunostimulating effects of acidic polysaccharides extract of Panax Ginseng on macrophage function // Immuno-pharmacol. Immunotoxicol. 2002. — Vol. 24. — P. 469−482.
  268. Singbartl G. Adverse events of erythropoietin in long-term and-in acute/short-term treatment II Clin. Investig. 1994. — Vol. 72. — № 6 (suppl.). — P: 36−43.
  269. Soares P.M., Mota J.M., Gomes A.S. et al. Gastrointestinal dysmotility in 5-fluorouracil-induced intestinal mucositis outlasts inflammatory process resolution // Cancer Chemother. Pharmacol. 2008. — Vol. 63. — № 1. — P. 91−98.
  270. Sonis S.T., Elting L.S., Keefe D. et al. Perspectives on cancer therapy-induced mucosalinjuiy: pathogenesis, measurement, epidemiology, and consequences for patients // Cancer. 2004. — Vol. 100. — P. 1995−2025.
  271. Song Y.H., Liu Q., Lv Z.P. et al. Protection of a polysaccharide from Salvia Miltiorrhiza, a Chinese medicinal herb, against immunological liver injury in mice // Int. J. Biol. Macromol. 2008. — Vol. 43. — № 2. — P. 170−175.
  272. Sonis S.T. A biological approach to mucositis // J. Support Oncol. 2004. -Vol.2.-№ 1. p. 21−32.
  273. Sullivan A.M., Laba J.G., Moore J.A. et al. Echinacea-induced macrophage activation // Immunopharmacol. Immunotoxicol. 2008. — Vol. 30. — № 3. — PI 553−574″.
  274. Sun Y., Liu J. Purification, structure and immunobiological activity of a water-soluble polysaccharide from the fruiting body of Pleurotus Ostreatus II Biore-sour. Technol. 2009. — Vol. 100. — № 2. — P. 983−986.
  275. Sun-Waterhouse D., Melton L.D., O’Connor C.J.et al. Effect of apple cell walls and their extracts on the activity of dietary antioxidants // J. Agric. Food Chem. 2008. — Vol. 56. — № 1. — P. 289−295.
  276. Takata R., Yanai T., Yamamoto R. et al. Improvement of the antitumor activity of black currant polysaccharide by an enzymatic treatment // Biosci. Biotechnol. Biochem. 2007. — Vol. 71. — № 5. — 1342−1344.
  277. Takata T., Tamura K. Management of febrile neutropenic patients // Gan To Kagaku Ryoho. 2006. — Vol. 33. — № 1. — P. 13−18.
  278. Taylor P.R., Brown G.D., Reid D.M. et al. The h-glucan receptor, dectin-1, is predominantly expressed on the surface of cells of the monocyte/macrophage and neutrophil lineages // J. Immunol. 2002. — Vol. 169. — P. 3876 — 3882.
  279. Tezcan G., Kupesiz A., Ozturk F. et al. Episodes of fever and neutropenia in children with cancer in a tertiary care medical center in Turkey // Pediatr Hematol Oncol. 2006. — Vol. 23 — № 3. — P. 217−229.
  280. Tong H., Xia F., Feng K. et al. Structural characterization and in vitro antitumor activity of a novel polysaccharide isolated from the fruiting bodies of Pleu-rotus Ostreatus II Bioresour. Technol. 2009. — Vol. 100. — № 4. — P. 1682−1686.
  281. Vetvicka V., Vashishta A., Saraswat-Ohri S. et al. Immunological effects of yeast- and mushroom-derived P-glucans // J. Med. Food. 2008. — Vol. 11. — № 4. -P. 615−622.
  282. Vetvicka V., Vetvickova J., Frank J. et al. Enhancing effects of new biological response modifier beta-1,3 glucan sulfate PS3 on immune reactions // Biomed. Pharmacother. 2008. — Vol. 62. — № 5. — P. 283−288.
  283. Vinall R.L., Hwa K., Ghosh P. et al. Combination treatment of prostate cancer cell lines with bioactive soy isoflavones and perifosine causes increased growth arrest and/or apoptosis // Clin. Cancer Res. 2007. — Vol. 13. — № 20. — B. 62 046 216.
  284. Wang J., Wang F., Zhang Q. et al. Synthesized different derivatives of low molecular fiicoidan extracted from Laminaria Japonica and their potential antioxidant activity in vitro II Int. J. Biol. Macromol. 2009. — Vol. 44. — № 5. — P. 379−384.
  285. Wang L., Li X., Chen Z. Sulfated modification of the polysaccharides obtained from defatted rice bran and their antitumor activities // Int. J. Biol. Macromol. 2009. — Vol. 44. — № 2. — P. 211−214.
  286. Wei S.Y., Zhang P.X., Han N. Effects of Hedysari polysaccharides on regeneration and function recovery following peripheral nerve injury in rats // Am. J. Chin. Med. 2009. — Vol. 37. — № 1. — P. 57−67.
  287. Whitehead M.T., Martin T.D., Scheett T.P. et al. The effect of 4 wk of oral, Echinacea supplementation on serum erythropoietin and indices of erythropoietic status I I Int. J. Sport Nutr. Exerc. Metab. 2007. — Vol. 17. — № 4. — P. 378−390.
  288. Winn H.J. Mechanisms in Homotransplantation. 2. Quantitative Assay of the Immunologic Activity of lymphoid cells stimulated by Tumor Homografts // J.Immunol. 1961. — Vol. 86. — № 2. — P. 228−241.
  289. Wolff E.R., Wisbeck E., Silveira M.L. et al. Antimicrobial and antineoplasic activity of Pleurotus Ostreatus II Appl. Biochem. Biotechnol. 2008. — Vol. 151. -№ 2−3. — P. 402−412.
  290. Xie G., Schepetkin I.A., Quinn M.T. Immunomodulatory activity of- acidic polysaccharides isolated from Tanacetum Vulgare L. II Int. Immunopharmacol.2007. Vol. 7. — № 13. — P. 1639−1650.
  291. Yamac M., Kanbak G., Zeytinoglu M. et al. Hypoglycemic effect oi-Lentinus strigosus S. Fr. crude exopolysaccharide in streptozotocin-induced diabetic rats // J. Med. Food. 2008. — Vol. 11.-№ 3. — P. 513−517.
  292. Yamamoto K., Kimura T., Sugitachi A. et al. Anti-angiogenic and anti-metastatic effects of ?-l, 3-D-glucan purified from Hanabiratake, Sparassis Crispa II Biol. Pharm. Bull. 2009. — Vol. 32. — № 2. — P. 259−263.
  293. Yang X., Guo D., Zhang J. et al. Characterization and antitumor activity of pollen polysaccharide // Int. Immunopharmacol. 2007. — Vol. 7. — № 4. — P. 427−434.
  294. Ye F., Xui L., Yi J. et al. Anticancer activity of Scutellaria Baicalensis and its potential mechanism // J. Altern. Complement Med. 2002. — Vol. 8. — № 5. -P. 567−572.
  295. Yoon T.J., Kim T.J., Lee H. et al. Anti-tumor metastatic activity of ?-glucan purified from mutated Saccharomyces Cerevisiae II Int. Immunopharmacol.2008. Vol. 8. — № 1. — P. 36−42.
  296. Zhai Z., Haney D., Wu L. et al. Alcohol extracts of Echinacea inhibit production of nitric oxide and tumor necrosis factor-alpha by macrophages in vitro // Food Agric. Immunol. 2007. — Vol. 18. — № 3−4. — P. 221−236.
  297. Zhang J., Tiller C., Shen J. et al. Antidiabetic properties of polysaccharide-and polyphenolic-enriched fractions from the brown seaweed Ascophyllum Nodosum II Can. J. Physiol. Pharmacol. 2007. — Vol. 85. — № 11. — P. 1116−1123.
  298. Zhou L.D., Zhang Q.H., Zhang Y. et al. The shiitake mushroom-derived im-muno-stimulant lentinan protects against murine malaria blood-stage infection by evoking adaptive immune-responses // Int. Immunopharmacol. 2009. — Vol. 9. -№ 4. — P. 455−462.
Заполнить форму текущей работой