Функциональная характеристика ретроэлемента Penelope Drosophila virilis
Диссертация
В пользу того, что МЭ Penelope следует выделить в особую группу, также указывают его некоторые структурные особенности. В нашей работе впервые для ретротранспозонов было показано наличие у них интрона. В настоящее время функция его неизвестна. Можно предположить, что вырезание интрона необходимо для выхода транскрипта из ядра, его трансляции и накопления белков. В таком случае транскрипт, который… Читать ещё >
Содержание
- СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
- Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
- 1. 1. Классы мобильных элементов Drosophila
- 1. 2. Ретротранспозон Penelope и его роль в возникновении синдрома гибридного дисгенеза у Drosophila virilis
- 1. 2. 1. Структура ретроэлемента Penelope
- 1. 2. 2. Обратная транскриптаза Penelope сильно дивергировала от обратных транскриптаз других ДКП-несо держащих ретроэлементов
- 1. 2. 3. Penelope кодирует предсказанную нуклеазу, подобную UvrC и эндонуклеазам, содержащим URI мотив
- 1. 2. 4. Ретроэлемент Penelope и его возможное участие в эволюции видов группы virilis
- 1. 3. Межвидовая трансформация насекомых
- 1. 3. 1. Методы введения экзогенной ДНК в геном насекомых
- 1. 3. 2. Использование мобильных элементов в качестве векторов для трансформации насекомых
- 1. 3. 2. 1. Р-элемент
- 1. 3. 2. 2. Элементы hobo и Hermes
- 1. 3. 2. 3. Элементы Mosl и Himarl
- 1. 2. 3. 4. ЭлементPiggyBac
- 1. 3. 3. 5. Элемент Minos
- 1. 3. 3. Использование вирусов в качестве векторов при трансформации насекомых
- 1. 3. 3. 1. Sindbis альфавирус
- 1. 3. 3. 2. Пантропические ретровирусы
- 1. 3. 4. Трансформация насекомых и выбор вектора
- 2. 1. Материалы
- 2. 1. 1. Штаммы бактерий
- 2. 1. 2. Среды и основные буферы
- 2. 1. 3. Олишнуклеотидные праймеры
- 2. 1. 4. Материалы и реактивы
- 2. 2. Методы исследования
- 2. 2. 1. Выделение плазмидной ДНК
- 2. 2. 2. Выделение плазмидной ДНК в неденатурирующих условиях
- 2. 2. 3. Полимеразная цепная реакция (ПЦР)
- 2. 2. 4. Фосфорилирование олигонуклеотидных праймеров
- 2. 2. 5. Препаративное выделение фрагмента ДНК
- 2. 2. 6. Выделение мРНК из мух
- 2. 2. 7. Лигирование фрагментов ДНК
- 2. 2. 8. Получение компетентных клеток E. coli и их трансформация
- 2. 2. 9. Анализ рекомбинантных клонов
- 2. 2. 10. Электрофорез белков
- 2. 2. 11. Определение концентрации белка
- 2. 2. 12. Определение первичной последовательности ДНК
- 2. 2. 13. Получение высокомеченой 32Р-ДНК методом случайного праймера
- 2. 2. 14. Выделение геномной ДНК из мух
- 2. 2. 15. Гибридизация политенных хромосом in situ
- 2. 2. 16. Очистка обратной транскриптазы Penelope
- 2. 2. 17. Определение активности обратной транскриптазы
- 2. 2. 18. Определение эндонуклеазной активности Penelope
- 2. 2. 19. ДНК-ДНК гибридизация по Саузерну
- 2. 2. 20. Иммунологическая реакция
- 2. 2. 21. Культивирование Spodoptera frugiperda
- 2. 2. 22. Р-элемент зависимая трансформация D. melanogaster
- 2. 2. 23. Анализ белковых последовательностей
- 2. 2. 24. Получение антител
- 3. 1. Характеристика экспрессии Penelope in vivo и in vitro
- 3. 1. 1. Клонирование и экспрессия фрагмента ОРС Penelope
- 3. 1. 2. Определение экспрессии Penelope in vivo
- 3. 1. 3. Определение структуры и последовательности кДНК Penelope в дисгенных гибридах D. virilis
- 3. 1. 4. Клонирование ОРС Penelope в бакуловирусном векторе, экспрессия в культуре клеток Spodoptera frugiperda
- 3. 1. 5. Очистка белка Penelope
- 3. 1. 6. Биохимические свойства обратной транскриптазы Penelope
- 3. 1. 7. Тестирование нуклеазной активности, кодируемой ОРС Penelope
- 3. 1. 7. 1. Определение последовательности двух сайтов интеграции Penelope
- 3. 2. 1. Получение конструкций, содержащих МЭ Penelope для интеграции в D. melanogaster
- 3. 2. 2. Анализ трансформированных линий при помощи блота по Саузерну и гибридизация in situ
- 3. 2. 3. Определение структуры 5'-фрагмента кДНК Penelope в трансформированных линиях D. melanogaster
- 3. 2. 4. ПЦР анализ трансформированных линий
Список литературы
- Зайцев Е.Н., Зайцева Е. М., Бакланова И. В., Горелов ВН., Кузьмин Н. П., Крюков В. М., Ланцов В. А. Клонирование и секвенирование гена гесА из штамма Pseudomonas aeruginosa // Генетика. 1986. — Т. 22, № 11. — С. 2721−7.
- Кадыров Ф.А., Калиман А. В., Крюков В. М. Эндонуклеаза SegE фага Т4. I. Клонирование, экспрессия и биохимическая характеризация эндонуклеазной активности // Молекулярная биология. 1996. — Т. 30, № 5. — С. 1096−106.
- Лезин Г. Т., Макарова К В., Великодворская ВВ., Зеленцова ЕС., Кечумян P.P., Кидвелл М. Г., Кунин Е. В., Евгеньев М. Б. // Молекулярная биология. 2001. — Т. 35, № 5, — С. 805−815.
- Altschul S., Madden Т., Schaffer A, Zhang J., Zhang Z., Miller W., Lipman D. Gapped BLAST and PSI-BLAST: a new generation of protein database search programs // Nucleic Acids Res. 1997. — V. 25, № 17. — P. 3389−402.
- Ananiev E.V., Gvozdev V.A., Ilyin Yu.V., Tchurikov N.A., Georgiev G.P. Reiterated genes with varying location in intercalary heterochromatin regions of Drosophila melanogaster polytene chromosomes // Chromosoma. 1978. — V. 70, № 1. — P. 1−17.
- Anxolabehere D., Kidwell M., Periquet G. Molecular characteristics of diverse populations are consistent with the hypothesis of a recent invasion of Drosophila melanogaster by mobile P elements // Mol. Biol. Evol. 1988. — V. 5, № 3. — P. 252−69.
- Aravind L., Walker D., Koonin E. Conserved domains in DNA repair proteins and evolution of repair systems // Nucleic Acids Res. 1999. — V. 27, № 5. — P. 1223−42.
- Arkhipova I. R, Lyubomirskaya N.V., Ilyin Y.V. Drosophila Retrotransposons / Austin, Texas: R. G. Landes Company, 1995. 134 p.
- Atkinson P.W., Pinkerton A C., O’Brochta D A. Genetic transformation system in insect // Annu. Rev. Entomol. 2001. — V. 46. — P. 317−46.
- Atkinson P.W., Warren W.D., O’Brochta D.A. The hobo transposable element of Drosophila can be cross-mobilized in house-flies and excises like the Ac element of maize // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1993. — V. 90, № 20. — P. 9693−97.
- Baldarelli R.M., Lengyel J. A. Transient expression of DNA after ballistic introduction into Drosophila embryos // Nucleic Acids Res. 1990. — V. 18, № 19. — P. 5903−4.
- Bauser C.A., Elick T.A., Fraser M.J. Proteins from nuclear extracts of two lepidopteran cell lines recognize the ends of TTAA-specific transposons piggyBac and tagalong // Insect Mol. Biol. 1999. — V. 8, № 2. — P. 223−30.
- Becker J.L., Barre-Sinoussi F., Dormont D., Best-Belpomme M., Chermann J.C. Characterization of the purified RNA dependent DNA polymerase isolated from Drosophila // Cell. Mol. Biol. 1987. — V. 33, № 2. — P. 225−235.
- Belfort M., Roberts R. Homing endonucleases: keeping house in order // Nucleic Acids Res. 1997. — V. 25, № 17. — P. 3379−88.
- Bender W., Spierer P., Hogness D.S. Chromosomal walking and jumping to isolate DNA from the Ace and rosy loci and the bithorax complex in Drosophila melanogaster U J. Mol. Biol. 1983. -V. 168, № 1. — P. 17−33.
- Berghammer A.J., Klingler M., Wimmer E.A. A universal marker for transgenic insects //Nature. 1999. — V. 402, № 6760. — P. 370−71.
- Bingham P.M., Judd B.H. A copy of the copia transposable element is very tightly linked to the Wa allele at the while locus of D. melanogaster // Cell. 1981. — V. 25, № 3. -P. 705−11.
- Bingham P.M., Kidwell M.G., Rubin G M. The molecular basis of P-M hybrid dysgenesis: the role of the P element, a P-strain-specific transposon family // Cell. 1982. -V. 29, № 3,-P. 995−1004.
- Boeke J.D. Transposable elements in Saccharomyces cerevisiae // Berg D.E., Howe M.M. edc. Mobil DNA. Washington, DC: American Society for Microbiology, 1989. — 33 574 p
- Brennan M.D., Rowan R.G., Dickinson W.J. Introduction of a functional P element into the germ-line of Drosophila hawaiiensis // Cell. 1984. — V. 38, № 1. — P. 147−51.
- Britten R.J. Cases of ancient mobile element DNA insertions that now affect gene regulation // Mol Phylogenet Evol. 1996. — V. 5, № 1. — P. 13−7.
- Bingham P.M., Zachar Z. Retrotransposons and FB transposon from Drosophila melanogaster II Berg D.E., Howe MM. edc. Mobil DNA. Washington, DC: American Society for Microbiology, 1989. — 485−502 p.
- Busseau I.A., Pelisson A., Bucheton A. I elements of Drosophila melanogaster generate specific chromosomal rearrangements during transposition II Mol. Gen. Genet. -1989. V. 218, № 2. — P. 222−8.
- Calvi B.R., Hong T.J., Findley S.D., Gelbart W.M. Evidence for a common evolutionary origin of inverted repeat transposons in Drosophila and plants: hobo, Activator, and Tam3 // Cell. 1991. — V. 66, № 3. -P. 465−71.
- Cappello J., Handelsman K., Cohen S.M., Lodish H.F. Structure and regulated transcription of DIRS-J: an apparent retrotransposon of Dictyostelium discoideum // Cold Spring Harb. Symp. Quant. Biol. 1985. — V. 50. — P. 759−67.
- Capy P., Anxolabehere D., Langin T. The strange phytogenies of transposable elements: are horizontal transfers the only explantation? II Trends Genet. 1994. — V. 10, № l.-P. 7−12.
- Catteruccia F., Nolan T., Blass C., Muller H.-M., Crisanti A., Kafatos F.C., Loukeris T.G. Toward Anopheles transformation: Minos element activity in anopheline cells and embryos // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. -2000. V. 97, № 11. — P. 2157−62.
- Catteruccia F., Nolan T., Loukeris T.G., Blass C., Savakis C., Kafatos F.C., Crisanti A. Stable germline transformation of the malaria mosquito Anopheles stephensi II Nature. -2000. V. 405, № 6789. — P. 959−62.
- Cech T.R. The Generality of self-splicing RNA: Relationship to nuclear mRNA splicing // Cell. 1986. — V. 44, № 2. — P. 207−10.
- Cech T.R. The chemistry of self-splicing RNA and RNA enzymes // Science. 1987. -V. 236, № 4808. — P. 1532−9.
- Chandra A., Gerber T., Chandra P. Biochemical heterogeneity of reverse transcriptase purified from the AIDS virus, HTLV-III // FEBS Lett. 1986. — V. 197, № 1−2. — P. 84−88.
- Coates C.J., Jasinskiene N., Miyashiro L., James A.A. Mariner transposition and transformation of the yellow fever mosquito, Aedes aegypti II Proc. Natl. Acad. Sci. USA. -1998. -V. 95, № 7. P. 3748−51.
- Coates C.J., Jasinskiene N, Pott G.B., James A.A. Promoter-directed expression of recombinant firefly luciferase in the salivary glands of fennel-transformed Aedes aegypti 11 Gene. 1999. — V. 226, № 2. — P. 317−25.
- Coates C.J., Tumey C.L., Frommer M., O’Brochta D.A., Atkinson P.W. Interplasmid transposition of the mariner transposable element in non-drosophilid insects // Mol. Gen. Genet. 1997. — V. 253, № 6. — P. 728−33.
- CraigieR., Mizuuchi K. Mechanism of transposition of bacteriophage Mm: structure of a transposition intermediate // Cell. 1985. — V. 41, № 3. — P. 867−76.
- Daniels S B., Strausbaugh L.D., Armstrong R.A. Molecular analysis of P element behavior in Drosophila simulans transformants 11 Mol. Gen. Genet. 1985. — V. 200, № 2. -P. 258−65.
- Demeric M. Frequency of spontaneous mutations in certain stocks of Drosophila melanogaster. Genetics 1937. V. 22. — P. 469−78
- Eickbush T.H. Transposing without ends: The non-LTR retrotransposable elements // New Biol. 1992. — V. 4. — P. 430−40.
- Eickbush D.G., Luan, D.D., Eickbush T.H. Integration of Bombyx mori R2 Sequences into the 28S Ribosomal RNA Genes of Drosophila melanogaster // Mol. Cell. Biol. 2000. -V. 20, № 1,-p. 213−23.
- Elick T.A., Bauser C.A., Eraser M.J. Excision of the piggyBac transposable element in vitro is a precise event that is enhanced by the expression of its encoded transposase // Genetica. 1996. — V. 98. — P. 33−41.
- Elick T.A., Bauser C.A., Principe N.M., Eraser M.J. PCR analysis of insertion site specificity, transcription, and structural uniformity of the Lepidopteran transposable element IFP2 in the TN-368 genome // Genetica. 1996. — V. 97, № 2. — P. 127−39.
- Emi N, Friedmann T., Yee J.K. Pseudotype formation of murine leukemia virus with the G protein of vesicular stomatitis virus // J.Virol. 1991. — V.65 — P. 1202−7.
- Engels W.R. P elements in Drosophila melanogaster // Berg D.E., Howe M.M. edc. Mobil DNA. Washington, DC: American Society for Microbiology, 1989. — 437−84 p.
- Evgen’ev, M B., Corces V.G., Lankenau D.-H. The Ulysses transposable element of Drosophila shows high structural similarities to functional domains of retroviruses // J. Mol. Biol. 1992. — V. 225. — P. 917−24.
- Evgen’ev M., Yenikolopov G., Peunova N., Ilyin Y. Transposition of mobile genetic elements in interspecific hybrids ofDrosophila II Chromosoma. 1982. — V. 85. — P. 375−86.
- Evgen’ev M., Zelentsova H., Mnjoian L., Poluectova H., Kidwell M.G. Invasion of Drosophila viritis by the Penelope transposable element // Chromosoma. 2000a. — V. 109. -P. 350−7.
- Fadool J.M., Hard D., Dowling J.E. Transposition of the mariner element from Drosophila mauritiana in zebra-fish I I Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1998. — V. 95. — P. 5182−86.
- Felsenstein J. Inferring phylogenies from protein sequences by parsimony, distance, and likelihood methods // Methods Enzymol. 1996. — V. 226. — P. 418−27.
- Feng Q., Moran J. V., Kazazian H.H. Jr., Boeke J.D. Human LI retrotransposon encodes a conserved endonuclease required for retrotransposition I I Cell. 1996. — V. 87, № 5. -P. 905−16.
- Finnegan D.J. Transposable elements in eukaryotes //Int. Rev. Cytol. 1985. — V. 93. -P. 281−326.
- Finnegan D.J. Eukaryotic transposable elements and genom evolution // Trends Genet.- 1989. V. 5.-P. 103−7.
- Finnegan D.J., Rubin G.M., Young M.W., Hogness D.S. Repeated gene families in Drosophila melcmogaster II Cold Spring Harb. Symp. Quant. Biol. 1978. — V. 42, Pt. 2. — P. 1053−63. Finnegan et al., 1978-
- Franz G., Savakis C. Minos, a new transposable element from the Drosophila hydei, is a member of the Tci-like family of transposons // Nucleic Acids Res. 1991. — V. 19, № 23. — P. 6646.
- Fraser M.J., Cary L., Boonvisudhi K., Wang H.-G.H. Assay for movement of lepidopteran transposon IFP2 in insect cells using a baculovims genome as target DNA // Virology. 1995. — V. 211. -P. 397−07.
- Georgiev G.P. Mobile genetic elements in animal cells and their biological significance // Eur. J. Biochem. 1984. — V. 145. — P. 203−20.
- Georgiev G.P. Ilyin Y.V., Ryskov A.P. et al. Mobil DNA sequences and their possible role in evolution // Dutta S.K. ed. DNA systematics. Boca Raton, FL. CRC Press, 1986. -V. 1.-19−46 p.
- Goryshin I.Y., ReznikoffW.S. Tn5 in vitro transposition // J. Biol. Chem. 1998. — V. 273.-P. 7367−74.
- Gueiros-Filho F.J., Beverley S.M. Trans-kingdom transposition of the Drosophila element mariner within the protozoan Leishmania I I Science. 1997. — V. 276. — P. 1716−19.
- Handler A.M., Gomez S.P. The hobo transposable element excises and has related elements in tephritid species // Genetics. 1996. — V. 143, № 3. — P. 1339−47.
- Handler A.M., Harrell R.A. Germline transformation of Drosophila melanogaster with thepiggyBac transposon vector // Insect Mol. Biol. 1999. — V. 8, № 4. — P. 449−57.
- Handler A.M., James A.A. Insect transgenesis. Methods and application. Boca Ration, FL: CRC Press, 2000. — 376 p.
- Handler A.M., McCombs S.D., Fraser M.J., Saul S.H. The lepidopteran transposon vector, piggyBac, mediates germ line transformation in the Mediterranean fruit fly // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1998. -V. 95. — P. 7520−25.
- Handler A.M., O’Brochta D.A. 1991. Prospects for gene transformation in insects // Annu. Rev. Entomol. 1991. — V. 36. — P. 159−83.
- Hartl D.L., Lohe A.R., Lozovskaya E.R. Modern thoughts on an ancient mariner. function, evolution, regulation // Annu. Rev. Genet. 1997. — V. 3. — P. 337−58.
- Hartl D.L., Lohe A.R., Lozovskaya E.R. Regulation of the transposable element mariner // Genetica. 1997. — V. 100, № 1−3. — P. 177−84.
- Higgs S., Olson K.E., Klimowski L., Powers A.M., Carlson J.O., Possee R.D., Beaty B.J. Mosquito sensitivity to a scorpion neurotoxin expressed using an infectious Sindbis virus vector // Insect Mol. Biol. 1995. — V. 4, № 2. — P. 97−103.
- Higgs S., Rayner J.O., Olson K.E., Davis B.S., Beaty B.J., Blair C.D. Engineered resistance in Aedes aegypti to a West African and a South American strain of yellow fever virus // Am. J. Trap. Med. Hyg. 1998. — V. 58. — P. 663−70.
- Higgs S., Traul D., Davis B.S., Kamrud K.I., Wilcox C.L., Beaty B.J. Green fluorescent protein expressed in living mosquitoes without the requirement of transformation // BioTechniques. 1996. — V. 21. — P. 660−64.
- Jasinskiene N., Coates C.J., James A.A. Structure of Hermes integrations in the germline of the yellow fever mosquito, Aedes aegypti // Insect Mol. Biol. 2000. — V. 9. — P. 11−18.
- Jacobson JW, Medhora MM, Hard DL. Molecular structure of a somatically unstable transposable element in Drosophila. Proc Natl Acad Sci USA. 1986 V.83, № 22 — P. 86 848.
- Jordan I.K., Matyunina L.V., McDonald J.F. Evidence for the recent horizontal transfer of long terminal repeat transposons. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1999. — V. 96. — P. 12 621−25.
- Kadyrov F.A., Shlyapnikov M.G., Kryukov V.M. A phage T4 site-specific endonuclease, SegE, is resposible for a non-reciprocal genetic exchange between T-even-related phages.// FEBS Letters. 1997. — V. 415. — P. 75−80.
- Kamrud K.I., Olson K.E., Higgs S., Powers A.M., Carlson J.O., Beaty B.J. Detection of expressed chloramphenicol acetyltransferase in the saliva of Culex pipiens mosquitoes // Insect. Biochem. Mol. Biol. 1997. -V. 27. — P. 423−29.
- Kidwell M.G. Horizontal transfer of P elements and other short inverted repeat transposons // Genetica. 1992. — V. 86. — P. 275−86.
- Kidwell M.G. Evolution of hybrid dysgenesis determinants in Drosophila melanogaster // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1983. — V. 80, № 6. — P. 1655−9.
- Kidwell M.G. Hybrid dysgenesis in Drosophila melanogaster: The relationship between the P-Mand I-R interaction systems // Genet. Res. -1979. V. 33. — P. 105−17.
- Kidwell M.G., Kidwell J.F., Sved J.A. Hybrid dysgenesis in Drosophila melanogaster. a syndrome of aberrant traits including mutation, sterility and male recombination 11 Genetics. 1977,-V. 36. — P. 813−33.
- Kidwell M. The evolutionary history of the P family of transposable elements // J. Heredity. 1994. — V. 85. — P. 339−46.
- Kim A, Terzian C, Santamaria P, Pelisson A, Purd’homme N, Bucheton A. Retroviruses in invertebrates: the gypsy retrotransposon is apparently an infectious retrovirus of Drosophila melanogaster II Proc.Natl. Acad. Sci USA. 1994 — V. 91 — № 4 — P. 1285−9.
- Koonin E, Mushegian A., Bork P. Non-orthologous gene displacement I I Trends Genet. 1996. -V. 12. — P. 334−36.
- Kokoza V., Ahmed A., Cho W.-L., Jasinskiene N., James A.A., Raikhel A. Engineering blood meal-activated systemic immunity in the yellow fever mosquito, Aedes aegypti I I Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2000. — V. 97, № 16. — P. 9144−49.
- May E.W., Craig N.L. Switching from cut-and-paste to replicative Tn7 transposition // Science. 1996. — V. 272. — P. 401.
- McClintock B. Controlling elements and the gene. Cold Spring Harbor Symp. Quant. Biol. 1956. V. 21, P. 197−216.
- McGinnis W., Beckendorf S.K. Association of a Drosophila transposable element of the roo family with chromosomal deletion breakpoints // Nucl. Acids. Res. 1983. — V. 11, № 3.-P. 737−51.
- McGrane V., Carlson J.O., Miller B.R., Beaty B.J. Microinjection of DNA into Aedes triseriatus ova and detection of integration // Am. J. Trap. Med. Hyg. 1988. — V. 39. — P. 502−10.
- Medhora M., Maruyama K., Haiti D.L. Molecular and functional analysis of the mariner mutator element Mosl in Drosophila // Genetics. 1991. — V. 128. — P. 311−18.
- Mialhe E., Miller L.H. Ballistic techniques for transfection of mosquito embryos (Anopheles gambiae) //BioTechniques. 1994. — V. 16. — P. 924−31.
- Miller L.H., Sakai R.K., Romans P., Gwadz R.W., Kantoff P., Coon H.G. Stable integration and expression of a bacterial gene in the mosquito, Anopheles gambiae // Science.- 1987. V. 237.-P. 779−81.
- Miller L.H., Sakai R.K., Romans P., Gwadz R.W., Kantoff P., Coon H.G. Stable integration and expression of a bacterial gene in the mosquito Anopheles gambiae // Science.- 1987. V. 237, № 4816. — P. 779−81.
- Mizutani S., Kang C.Y., Temin H.M. Endogenous RNA-directed DNA polymerase activity in virions of RNA tumor viruses and in a fraction from normal chicken cells // Methods Enzymol. 1974. — V. 29. — P. 119−24.
- Morris A.C. Microinjection of Mosquito Embryos // Molecular Biology of Insect Disease Vectors, ed. JM Crampton, CB Beard, C Louis. London: Chapman & Hall, 1997. P. 423−29.
- Morris A.C., Eggleston P., Crampton J.M. Genetic transformation of the mosquito Aedes aegypti by microinjection of DNA // Med. Vet. Enlomol. 1989. — V. 3. — P. 1−7.
- Morris A.C., Schaub T.L., James A.A. FlP-mediated recombination in the vector mosquito, Aedes aegypti //Nucleic Acids Res. 1991. — V. 19, № 21. -P. 5895−900.
- O’Brochta D.A., Atkinson P.W., Lehane M.J. Transformation of Stomoxys calcitrans with a Hermes gene vector // Insect Mol. Biol. 2000. — V. 9. — P. 531−38.
- O’Brochta D A. and Handler A.M. Mobility of P elements in drosophilids and nondrosophilids. //Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1988. — V. 85, — P. 6052−56.
- O’Brochta D.A., Gomez S.P., Handler A.M. P element excision in Drosophila melcmogaster and related drosophilids // Mol. Gen. Genet. 1991. — V. 225, № 3. — V. 38 794.
- O’Brochta D.A., Warren W.D., Saville K.J., Atkinson P.W. Hermes, a functional non-drosophilid gene vector from Musca domestica // Genetics. 1996. — V. 142. — P. 907−14.
- Okada H., Inouye Y., Nakamura S. Kinetic analysis of inhibition of reverse transcriptase by streptonigrin // J. Antibioi, 1987. — V. 40. — P. 230−32.
- Olson K.E., Beaty B., Higgs S. Sindbis Virus Expression Systems for the Manipulation of Insect Vectors /New York: Plenum, 1998. P. 371−404.
- Olson K.E., Higgs S., Gaines P.J., Powers A.M., Davis B.S., Kamrud K.I., Carlson J.O., Blair CD., Beaty B.J. Genetically engineered resistance to dengue-2 virus transmission in mosquitoes // Science. 1996. — V. 272. — P. 884−86.
- Patterson, J.T., Stone W.S. Evolution in the Genus Drosophila. New York: The Macmillan Co. 1952. — P. 437−501.
- Peloquin J. J., Thibault S.T., Miller T.A. Genetic transformation of the pink boll-worm
- Pectinophora gossvpiella with the piggyBac element // Insect Mol. Biol. 2000. — V. 9. — P. 323−33.
- Peloquin J.J., Thibault S.T. Schouest L.P.Jr., Miller T.A. Electromechanical microinjection of pink bollwonn Pectinophora gossypiella embryos increases survival // BioTechniques. 1997. — V. 22, № 3. — P. 496−99.
- Petrov D., Schutzman J., Hartl D., Lozovskaya E. (1995) Diverse transposable elements are mobilized in hybrid dysgenesis in Drosophila virilis // Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1995. — V. 92. — P. 8050−54.
- Petrov D.A., Lozovskaya E.R., Hartl D.L. High intrinsic rate of DNA loss in Drosophila II Nature. 1996. — V. 384, № 6607. — P. 346−9.
- Pinkerton A.C., Michel K., O’Brochta D.A., Atkinson P.W. Green fluorescent protein as a genetic marker in transgenic Aedes aegypti II Insect Mol. Biol. 2000. — V. 9. — P. 1−10.
- Pinkerton A C., Whyard S., Mende H.M., Coates C.J., O’Brochta D.A., Atkinson P.W. The Queensland fruit fly, Bactrocera tryoni, contains mutiple members of the hAT family of transposable elements // Insect Mol. Biol. 1999. — V. 8. — P. 423−34.
- PirrottaV. Vectors for P-mediated transformation in Drosophila I I Biotechnology. -1988,-V. 10.- P. 437−56.
- Presnail J.K., Hoy M.A. Stable genetic transformation of a beneficial arthropod, Metaseiulus occidentalis (Acari: Phytoseiidae), by a microinjection technique // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1992. — V. 89. — P. 7732−36.
- Raminani L.N., Cupp E.W. Early embryology of Aedes aegypti (L.) (Diptera:Culicidae) //Int. J. Insect Morphol. Embryol. 1975. — V. 4. — P. 517−28.
- Robertson H.M., Lampe D.J. Distribution of transposable elements in arthropods // Annu. Rev. Entomol. 1995. — V. 40. — P. 333−57.
- Roth M.J., Tanese N., Goff S.P. Purification and characterization of murine retroviral reverse transcriptase expressed in Escherichia coli II J. Biol. Chem. 1985. — V. 260. — P. 9326−35.
- Rubin G.M., Sprandling A.C. Genetic transformation of Drosophila with transposable element vectors// Science. 1982. — V. 218. — P. 348−53.
- Rubin G.M., Spradling A.C. Vectors for P element-mediated gene transfer in Drosophila I I Nucleic Acids Res. 1983. — V. 11. — P. 6341−51.
- Sambrook J., Fritch E.F., Maniatis T. Molecular cloning: a laboratory manual / N.Y.: Cold Spring Harbor Lab. Press, 1989. 319 p.
- Sanger F., Nicklen S., Coulson A.R. DNA sequencing with chain-terminating inhibitors // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1977. — V.74. — P. 5463−7.
- Sarkar A., Coates C. J, Whyard S, Willhoeft U., Atkinson P.W., O’Brochta D A. The Hermes element from Musca domestica can transpose in four families of cylorrhaphan flies // Genetica. 1997. — V. 99. — P. 15−29.
- Sarkar A., Yardley K, Atkinson P.W., James A.A., O’Brochta D.A. Transposition of the Hermes element in embryos of the vector mosquito, Aedes aegypti // Insect Biochem. Mol. Biol, 1997. -V. 27. — P. 359−63.
- Seabaugh R.C., Olson K.E., Higgs S., Carlson J.O., Beaty B.J. Development of a chimeric Sindbis virus with enhanced per os infection of Aedes aegypti II Virology. 1998. -V. 243.-P. 99−112.
- Sedmark J.J., Grossberg S.E. A rapid sensitive and versatile assay for protein using coomassie brilliant blue G-250 // Anal. Biochem. 1977. — V. 79. — P. 544−52.
- Sherman A., Dawson A., Mather C., Gilhooley H., Li Y., Mitchell R., Finnegan D., Sang H. Transposition of the Drosophila element mariner into the chicken germ line // Nat. Biotechnol. 1998. -V. 16, № 11. — P. 1050−53.
- Spicer G. Reevaluation of the phylogeny of the Drosophila virilis species group {Drosophila: Drosophilidae) I I Ann. Ent. Soc. Amer. 1992. — V. 85. — P. 11−25.
- Studier F.W., Moffatt B.A. Use of bacteriophage T7 RNA polymerase to direct selective high-level expression of cloned genes // J. Mol. Biol. 1986. — V. 189. — P. 113−30.
- Sundaraajan P., Atkinson P.W., O’Brochta D.A. Transposable element interactions in insects: crossmobilization of hobo and Hermes I I Insect Mol. Biol. 1999. — V. 8. — P. 35 968.
- KiHpibcoB OU UKKK2KSSOU -----. ь к oiK^aaH^HSj о о 5
- И Ы МН «MHS и ы и м-------j ¦ ¦q i i i fa й J J о co со соя в яй й H ймьшь atzuz в я к я1. ЬйййнИнй OB» ьквьэ^авкни" -------&bdquo-га киш ««! >шажнкнянинккж a ы й в и ж •а .8 ллаиияин мАлидп «Ы «я! ю о м 5ГВ i jS i i i к i i m > «а оi i i i i i i ь к
- DiHhiHA икн ни* твтвй&шт вм •
- Ш ваша к н швиемв я w, а & а ь «в > ошp» a cu
- И PI Я Р! Я |J ?• H Ui й i? J fa Он й н ы н a н
- CO PI to H U3 Pi Pi Pi И Й И> Й|'0 > Pi H- CO fa I > t i i CO Ы I H
- I I I I I I i i i >¦ i i <�яmí- pi> со pi и- ca siKZibfj-. > Й S afcpi ¦ н и > н > > й ' «1.Я t? fe к O Pi M
- S н, а нн ц со 1 со с» н я! M: й н! г й яlü-kjUKH * «СО pi H.. fa m
- И > Я ООО О O IS я «» I >ЬS>аьяьььйГ-jKuHiasi шзга о щ «и>ы"101сасяаи! и и ь q.> fa J Й h -teLos pi, а агщт я с» я ШЙ Й Й м й рДам
- Sas f» д oi u oi
Ч<5 Р! ЙНЙИ"ЫЙ о <га> Я Я со > Я|Н Вл et jaijliMSe^WKogfe j - Н И Н к w й г to oi fa ra я с» н д, а н fa кнкЬяк s»» н я в в н в > н > н <й I i И i iс ?? pi co о: oi ь « о. к шо в pi м>i о о ри о :>| га й н fa в о
- Я Я я! > й И, -OBиййIЙ^ВЯВННйоимк.' oipipí-BPÍ-WB-----→Ж • ШМ. ИШЙ/Е.И
- H I fa 1H I I I I I I I I I I fa I й i I I ' 1 I1. rpji I i I i I I I I I I I I I 'ra I I ж I I I I m I i ' Iи o i pi i я ' я й i i 1<�й"ан"о
- J H ?? fc нЭ? й Ш А. В, Cu Рч «О В «» o-: ¦кя:>>и>3>мя-смгав-шво1НМ •ия t, но о i a vor-uDig .ингчмлпэ лосло’онаоййиофсойвябаб» uhcnh--но • .-i • 2 м ы • • -счсч • •• -в • a 0 шсоигаФЫЯФгаал гаКадсйР|Я:йЯир^н>^я
- XXBXJM u su, а ими n^.i'rti0 о ло (во>п)а) ф а) швввв*0вввк о Я pi Я pi Я Я pi В В «» Pi Pi Я Oi pi .
- CLUSTAL X (1.62b) MULTIPLE SEQUENCE ALIGNMENT
- Xena --KKK-WDLLQN--------LEKDKAI-------DRPQYjRL--||PjgE|gIPC------I^gLPKlB--«PfiTP!
- CoxS. cer- -NMTP)|§ TLETLD------&BaaUIM-------KLSNEIigTgKFKFKPMR-.
- Ec 79---MS--IDIET|--------LQKAYP. .- DFDVLLKS — RPATggfK-------Vjjldip-----KRTI
- MatS. cer- -NMTP^TliETI.D------j3MNM"YLN-------KLSNEigTpKi'KFKPMR.MVNI'P-----SPK^
- P OS e i don — KICK — VIDLLQK--------LEKEQAI-------NKPQ YgRL- - gPjSEJ^jPC------f|№p-----|lHKE:
- EcllO---MS VIRRLAAV--------LRQSDS--------?SISAFLVT---APRk|k-------VgRI-P-----KRTTG:
- MatN. aro- -RMTP|Id8kTEE------DFgPDRLA-------PLIASVATjjAgKPKPVR-.RVFiP-----igKSK:
- Penelope- -QjK-NNTFVAQ--------LFKMpLI-.SKDERNKM- -gTTTAVPPR-----IgjgliPKIf
- Neptune -VATILDTLQRKK---FiCEKQRKYLVg------DVEPRERREYXLPKiigKEPg----KWTSjIp-----YELPPHP-X|^DdGS-ETYF|AEFt----------DF|CNPLST--KgPAFVRDgYH
- EC 8 6 -RNLpLPVMNNLH------DMSKATRI-------SVETLRLL^YgADFRSR-.I0T&jg-----K'KpPEiqilMIYQ'piR-ELlALQg------------WVIiRNIIiD-----KLSSSPFS
- Ec67 --KliDAIiRAATSRE------DliAKJLDI-----KLVFLTNVLYRIgSDNQgT-.QETIP------|i^R|D-RLgbiQRRI---------EDl?sDCRDEIFATRKISNN|-
- Rets. ent- -N^TPVASLDSLS------AMLglERK-------RLDWIVKS---VSMSgK-.-QiKVET----IfKNKKE --Qi-FEPKR-SL|f IQKKtfN---------KEifjEKID----gPHYLHgAL
- TelH. sap- -BLRPIVNMDYVVg---ARTFRREKRAEg- -LT^RVKAL^SVLN^ERARRPSLLj^-Xpvij^LDDI^^AWRTFVl^-WR^QDPPP-ELYFVKVDVTp- «A^^IPQDRLTEVI AS 11KPQNTYCVRR
- TelS .pom- -TERPyiS:iLK|- ------LINEESSg-'- -IPFNIiEVYMKLLTIiKKDLLKHR- - - - -M^pRK- ----RYFVRIDlksBYDRIK-QDLMFRIVK- -------- -KKLKDPEFVIRKjgATIHATS
- RT R2DM --SAREVPSGIMLR------IMNLILWCG---- -NLPHSIRL- -ARTVFIP -U*^- 1"----• ——---—---------—-----------—
- RT R2Nvi--AWNSIDECIKS-------LFNMIMIHG
- RT A. mar---iiKCjjPSRVLAK------VFNLFLLEK
- RT I,. pol — RLKNGIHVSLAN------VFNT.WQFSG
- Md M. mus--FKEDI.XPILHK-------LFHKXEVEG------TLPNSFYEATITLIPKP--PI
- QCPRRgLD--SRTVLIP--------KEPjf----pTOPACFjl- -PL
- KLPAFLMT — SRTVLVP -.- KVKEP-----KAPTDgj — - PI
- RIPECMKS- -NRSVLIP-------KGKSN----IiSDVRHWB--PI---FIEIIKTLKIPAD------TGFEKHQSILN------SFGFERGKSII--------SGR---DYIS----- gAWQKAAHgHVR-----DRATKNFVS-TLPQQMSEVIITLIPKK-YgPEAWKHAQVKMILKP
- RT C. albLIELWPSI.GESI.IR.ASNNILKjgS-
- TART 52 --LXKggLPTkATBY---LIEl'gNSILRLp
- RT T. cru--IPVEWRRATIVP------LLKPGKSP-.EliLESgRPISLTSIVSK
- HXV 1 ---AjpgWjjEKgRQK------liKLEEgT-------NQRAEBMAVLLALQDSKE
- MVLKRLLWVf|PHPHQ YAYRSMR®----------TMQT.AHLIH- - EVEHNRNHgFQ--------VSI.PKKSGIG----§ DSQYVL§ Ii-SfQPlQ|ESSLVQQII.EElpCKEQVYLTWVPAHK|I-.?SSNEKIDKLVS---
- TPEEC^-elRETSlA"THgi.VQWA.V----------AVViPEKED-TTQTTEERHliP--------RTVMATN|SNSiSQ--.60.70.80.90.. .98 95 81 9579