Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Экологические и физиологические аспекты адаптации к абиотическим факторам среды эндемичных байкальских и палеарктических амфипод

ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Проведенные исследования показали, что различия в функционировании систем физиологической стресс-адаптации связаны с дивергенцией видов по их резистентным способностям (Тимофеев и др., 2003а- 2006а, б, г- 2007). Как следует из проведенных экспериментов, все исследованные виды амфипод используют белки теплового шока и антиоксидантные ферменты в системе стрессового ответа на действие… Читать ещё >

Содержание

  • 1. ЛИТЕРАТУРНЫЙ ОБЗОР
    • 1. 1. Стресс и стрессовые факторы в биологических системах
    • 1. 2. Основные факторы среды, механизмы стрессового влияния на гидробионтов
      • 1. 2. 1. Температура как фактор среды, механизмы адаптации гидробионтов к температурным изменениям
      • 1. 2. 2. Кислород как фактор среды, метаболизм кислорода и адаптации гидробионтов к понижению его уровня
      • 1. 2. 3. Токсичность кислорода и окислительный стресс в биологических системах
      • 1. 2. 4. Антропогенное загрязнение водных экосистем, токсичность ксенобиотиков для гидробионтов
    • 1. 3. Ключевые биохимические механизмы резистентности
      • 1. 3. 1. Система антиоксидантной защиты в живых организмах
        • 1. 3. 1. 1. Система антиоксидантной защиты гидробионтов при различных стрессовых воздействиях
      • 1. 3. 2. Белки теплового шока в живых организмах
        • 1. 3. 2. 1. Белки теплового шока у’гидробионтов при различных стрессовых воздействиях
    • 1. 4. Озеро Байкал и его фауна как уникальный объект для экофизиологических исследований
      • 1. 4. 1. Гидрохимические особенности озера Байкал и его температурный режим
      • 1. 4. 2. Фауна Байкала: биоразнообразие и вопросы эволюции, явление несмешиваемости
      • 1. 4. 3. История экофизиологических исследований байкальской фауны
  • 2. ВЫВОДЫ ИЗ ОБЗОРА ЛИТЕРАТУРЫ, ПОСТАНОВКА ЦЕЛИ И ЗАДАЧ ИССЛЕДОВАНИЯ, ПОЛОЖЕНИЯ, ВЫНОСИМЫЕ НА ЗАЩИТУ
  • 3. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • 3. 1. Объект исследования
      • 3. 1. 1. Систематика и экология основных использованных видов
      • 3. 1. 2. Методика сбора и содержания амфипод
    • 3. 2. Методы экспериментальных исследований
      • 3. 2. 1. Определение температурного предпочтения
      • 3. 2. 2. Определение рН-предпочтения амфипод
      • 3. 2. 3. Определение кислородного предпочтения
      • 3. 2. 4. Определение температурной резистентности
      • 3. 2. 5. Определение резистентности к гипоксии
      • 3. 2. 6. Определение токсикорезистентности
      • 3. 2. 7. Определение активности анаэробного метаболизма
      • 3. 2. 8. Определение активности антиоксидантных ферментов в различных сегментах тела
      • 3. 2. 9. Определение активности антиоксидантных ферментов при температурном стрессе
      • 3. 2. 10. Определение активности антиоксидантных ферментов при гипоксии
      • 3. 2. 11. Определение активности антиоксидантных ферментов при токсическом стрессе
      • 3. 2. 12. Определение активности антиоксидантных ферментов при окислительном стрессе
    • 3. 3. Методы химического и биохимического анализа
      • 3. 3. 1. Определение растворенного кислорода
      • 3. 3. 2. Спектрофотометрическое определение концентрации лактата
      • 3. 3. 3. Иробподготовка для определений ферментной: активности
      • 3. 3. 4. Снектрофотометрическое определение. активности, ¦, каталазы .:.-.
      • 3. 3. 5. Спектрофотометрическое определение активности пероксидазы. .127 3:3.6. Спектрофотометрическое определение активности- глутатион S-трансферазы.'-."
      • 3. 3. 7. Спектрофотометрическое определение перекиси-водорода
      • 3. 3. 8. ЯМР-спектроскопия
    • 3. 319. Выделение суммарного белка
      • 3. 3. 10. Определение концентрации белка по Лоури
  • 3. 311 Г. Определение концентрации: белка по Бредфорд
    • 3. 3. U2. Электрофорез белков в полиакриламидном геле
    • 3. 3. U3. Вестерн-блоттинг
      • 3. 3. 14. Определение интенсивности перекисного окисления липидов по образованию диеновых конъюгатов
    • 3. 4. Расчет и статистическая обработка данных
  • 4. ОТНОШЕНИЕ АМФИПОД К АБИОТИЧЕСКИМ ФАКТОРАМ СРЕДЫ, ПОВЕДЕНЧЕСКИЕ РЕАКЦИИ И РЕЗИСТЕНТНОСТ
    • 4. 1. Реакции предпочтения и избегания
  • 4. Г. 1. Термопреферендум
    • 4. 1. 2. pH-преферендум
    • 4. 1. 3. Кислородное предпочтение
    • 4. 2. Резистентность амфипод и комплексное влияние стрессовых факторов среды
    • 4. 2. 1. Терморезистентность амфипод
    • 4. 2. 2. Резистентность амфипод к гипоксии
    • 4. 2. 3. Токсикорезистентность амфипод
    • 4. 2. 4. Резистентные способности амфипод при изменении уровня растворенного кислорода
      • 4. 2. 4. 1. Влияние пониженного содержания кислорода на терморезистентность
      • 4. 2. 4. 2. Влияние пониженного содержания кислорода на токсикорезистентность
    • 4. 3. Резистентные способности амфипод и их пространственно-временное распределение
  • 5. ФИЗИОЛОГИЧЕСКИЕ МЕХАНИЗМЫ РЕЗИСТЕНТНОСТИ АМФИПОД К ВЛИЯНИЮ ФАКТОРОВ СРЕДЫ.'
    • 5. 1. Характеристики конститутивной активности систем резистентности у амфипод
      • 5. 1. 1. Межвидовое сопоставление активности антиоксидантных ферментов у амфипод, активность ферментов в различных частях тела и размерно-возрастная зависимость
      • 5. 1. 2. Конститутивный синтез стрессовых белков у амфипод
      • 5. 1. 3. Межвидовой полиморфизм стрессовых белков у амфипод
    • 5. 2. Физиологические реакции амфипод при температурном стрессе
      • 5. 2. 1. Температурно-индуцированные изменения активности антиоксидантных ферментов у амфипод
      • 5. 2. 2. Температурно-индуцированный изменения в синтезе стрессовых белков у амфипод
    • 5. 3. Физиологические реакции амфипод при оксидативном воздействии
      • 5. 3. 1. Изменение уровня перекисного окисления липидов, перекиси водорода и активности антиоксидантных ферментов у амфипод при оксидативном воздействии
      • 5. 3. 2. Изменения в синтезе стрессовых белков у амфипод при окислительном стрессе
    • 5. 4. Физиологические реакции амфипод при интоксикации
      • 5. 4. 1. Изменения активности антиоксидантных ферментов у амфипод при интоксикации
      • 5. 4. 2. Изменения в синтезе стрессовых белков у амфипод при токсическом стрессе
    • 5. 5. Физиологические реакции амфипод при гипоксии
      • 5. 5. 1. Изменения активности антиоксидантных ферментов у амфипод при гипоксии
      • 5. 5. 2. Сравнительный анализ накопления и утилизации лактата, ацетона, ацетоуксусной и Р-оксимасляной кислот, а также сукцината в тканях амфипод

Экологические и физиологические аспекты адаптации к абиотическим факторам среды эндемичных байкальских и палеарктических амфипод (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

выводы.

1. Выявлена зависимость основных экологических характеристик амфипод, включая пространственное распространение, температурные и кислородные предпочтения, с резистентными возможностями видов, в основе которых лежат специфичные способности видов к различной степени активации физиологических механизмов стрессовой устойчивости.

2. Выявлена прямая связь между температурной преференцией, температурной резистентностью, чувствительностью к гипоксии, кислородным преферендумом, вертикальным и горизонтальным распространением амфипод в оз. Байкал и за его пределами. Литоральные виды обладают повышенной терморезистентностью и устойчивостью к гипоксии, а также характеризуются наибольшими показателями предпочитаемых температур. Напротив, глубоководные виды обладают наименьшей резистентностью и предпочитают самые низкие температуры. Виды с развитыми резистентными способностями имеют и большее распространение за пределами Байкала.

3. Показано, что белки семейств БТШ70 и нмБТШ, иммунохимически родственные а-кристаллину, принимают участие в механизмах устойчивости амфипод к температурному, окислительному и токсическому воздействиям. Белки семейства БТШ70 у всех исследованных байкальских и палеарктических видов амфипод представлены белками с молекулярной массой 70 кДа, полиморфизм отсутствует. Белки семейства нмБТШ, иммунохимически родственных а-кристаллину, обладают большим полиморфизмом и у большинства исследованных видов имеют молекулярную массу 35кДа, за исключением байкальского реликтового & /аьыаШя, у которого она составляет 36,5 к Да.

4. Показатели термоустойчивости и устойчивости к гипоксии у байкальских и палеарктических амфипод взаимосвязаны с конститутивным содержанием БТШ. Для наиболее резистентных видов характерны и наибольшие конститутивные уровни БТШ, у менее резистентных видов их уровни ниже. У наиболее резистентных видов также наблюдается способность.

307 к более выраженному увеличению количества БТШ в, условиях стрессового воздействия.

5. Активность пероксидазы и каталазы в организме амфиподимеет неравномерное распределение в. разных частях тела и, зависит от. их возраста (размера). Напротив, активность. глутатион S-трансферазьг имеет равномерное распределение потелу амфипод и не изменяетсяс возрастом, (размером). Активность ферментов имеет межвидовые различия, однако не привязана к экологическому или резистентному статусу самих видов.

6. Существуют различия в характере реакции антиоксидантных ферментов in vivo на влияние температурного фактора у термочувствительных и термоустойчивых литоральных видов амфипод. У наиболее термоустойчивых амфипод реакция на температурное воздействие характеризуется' ростом' активности каталазы и глутатион S-трансферазы при отсутствии измененийв активности пероксидазы. У менее термоустойчивых видов происходит рост активности каталазы при одновременном снижении активности пероксидазы и глутатион S-трансферазьг (у Е. cyaneus активность глутатион S-трансферазы остается неизменной).

7. Выявлены различияв характере реакции на оксидативный стресс антиоксидантных ферментов in vivo у байкальских и палеарктических видов. При схожих показателях оксидативного повреждения^ у большинства байкальских амфипод происходит снижение активности пероксидазы и глутатион S-трансферазы на фоне повышения активности каталазы. У палеарктических видов активность пероксидазы и глутатион * S-трансферазы повышается, а активность каталазы, напротив, снижается.

8. В условиях токсического стресса у всех видов амфипод наблюдается снижение активности пероксидазы. При этом у токсичувствительных байкальских видов снижение активности пероксидазы происходит раньше и сопровождается также снижением активности глутатион S-трансферазы.

9. В условиях гипоксии у байкальских видов Е. cyaneus и Е. verrucosus происходит снижение активности пероксидазы и глутатион S-трансферазы, в.

308 то время как у палеарктического С/. /асм^/т активность пероксидазы остается стабильной, а активность глутатион 8-трансферазы растет. При гипоксии у всех исследованных амфипод наблюдается увеличение доли анаэробного метаболизма, включая процессы гликолиза, анаэробного липолиза и анаэробного образования сукцината. Байкальские амфиподы и палеарктический СУ. acustris обладают различной эффективностью использования анаэробных процессов.

10. Выявлены различия в характере и скорости стресс-реакции литоральных и глубоководных видов амфипод на температурное, окислительное и токсическое воздействие. Особенностью реакции литоральных видов является активация разнообразных сценариев стрессового ответа, включая направленные изменения активности антиоксидантных ферментов и интенсивный синтез БТШ. Глубоководные амфиподы характеризуются отсутствием направленных изменений в активности антиоксидантных ферментов, а также задержкой и низкой интенсивностью индуцированного накопления БТШ.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Проведенные исследования показали, что различия в функционировании систем физиологической стресс-адаптации связаны с дивергенцией видов по их резистентным способностям (Тимофеев и др., 2003а- 2006а, б, г- 2007). Как следует из проведенных экспериментов, все исследованные виды амфипод используют белки теплового шока и антиоксидантные ферменты в системе стрессового ответа на действие неблагоприятных факторов среды (Тимофеев и др, 2008; Ттк^еуеу е! а1, 2004, 2009). Однако степень участия данных элементов в защитных механизмах и способность к длительному поддержанию активности на повышенном уровне у видов существенно различаются (Тимофеев и др., 2006 а-жТимофеев, 2007, 2008; Тшк^еуеу, 81е1Ьег§, 2006).

Если проводить сопоставление реакций литоральных видов между собой и с глубоководными амфиподами, можно выявить существенные отличия. При любом стрессовом факторе литоральные виды реализуют разнообразные сценарии стрессовой реакции. Напротив, глубоководные амфиподы характеризуются отсутствием направленных изменений в активности антиоксидантных ферментов, а также задержкой и низкой интенсивностью индуцированного накопления БТШ (Тимофеев и др., 2006а-жТнпоГеуеу, 81е1Ьег& 2006; ТтоГеуеу & а1., 2006аЬ).

Разнообразие стрессовых сценариев у литоральных видов наиболее ярко выражено в реакции антиоксидантных ферментов. Так, в условиях температурного стресса стратегия борьбы термочувствительных литоральных видов осуществляется за счет поддержания активности каталазы, при сниженной активности пероксидазы и глутатион 8-трансферазы. Напротив, стратегиятермоустойчивых видов направлена на одновременное поддержание активности всех антиоксидантных ферментов' на повышенном уровне, что, вероятно, способствует более эффективной деактивации" АФК и определяет большую, термоустойчивость видов (Тимофеев* и др., 20 086- Timofeyev et al., 2009аПавличенко и др., 2009): В> основе различий по устойчивости к интоксикации-также лежат временные возможности поддерживать активность антиоксидантных ферментов. Виды, сохраняющие активность ферментов на высоком уровне более длительное время, характеризуются и большей токсикорезистентностью (Тимофеев и др., 2006вдTimofeyev et al., 2007, 2008; Шатилина и др., 2010ab).

В условиях гипоксии прослеживается хорошо заметные различия у видов, отличающихся по своей устойчивости к недостатку кислорода. Так, у более чувствительных амфипод происходит снижение активности пероксидазы и глутатион S-трансферазы в разные периоды, начало которых имеет прямую зависимость от показателя оксичуствительности. У наиболее устойчивых к недостатку кислорода амфипод не только не происходило снижения активности ферментов при гипоксии, но и обнаруживалась способность к активации глутатион S-трансферазы (Тимофеев и др., 2003а- 2006а).

В условиях оксидативного стресса проявляются различия в функционировании ферментных систем у видов, принадлежащих к различным фаунистическим группам: байкальской или палеарктической. Так, у палеарктических амфипод первый этап включает активацию пероксидазы, затем наступает фаза кратковременного понижения активности фермента. После этого происходит повторное увеличение активности пероксидазы и поддержание ее на повышенном уровне. Напротив, у байкальских амфипод при схожих процессах окислительного поражения липидных структур происходит снижение активности пероксидазы и глутатион S-трансферазы. При этом активность каталазы, напротив, повышается (Тимофеев и др., 20 036- Timofeyev et al., 2004; Timofeyev, Steinberg, 2006; Timofeyev et al., 2006abТимофеев, 2006, 2008, 2009).

Общейреакцией i на воздействие: стрессовых факторов, является индуцированныйсинтез БТШ. При? этом у наиболее устойчивых видов наблюдается более выраженное увеличение содержания БТШ в стрессовых условиях, чем^учувствительных.. '.

Такимюбразом®во'всех случаях различия^в стресс-реакциях были связаны с показателями? резистентности видаНаиболее вероятным объяснением различий в механизмах стресс-реакции является разная способность к перераспределению энергетических потоков^ от менее важных систем метаболизма к более важным.

В условиях стрессового воздействия возрастает необходимость в. дополнительномэнергетическом обеспечении систем^ которые не задействованы! внормальных условиях. Возникающий? дефицит энергии? может отражаться и на процессах энергообеспечения и накопления побочных метаболитов. Было" предположено, что в условиях дефицита энергию может происходить смещение баланса аэробных и анаэробных метаболических процессов. Для проверки этого предположения была проведена экспериментальная оценка уровня лактата у литоральных видов при температурном стрессе на первоначальных этапах. Материалы этот оценки представлены на рисунке 169.

Как видно, из диаграмм уже в ходе первых 3 часов температурного стресса у всех исследованных видов наблюдается увеличение концентрации лактата. Из этого следует, что у амфипод, находящихся в условиях стрессового воздействия, происходит рост доли анаэробных процессов в общем метаболизме. При этом у менее терморезистентных видов (Е. vittatus, Е. verrucosus) достоверный рост лактата отмечен уже через 1 час экспозиции. Напротив, у видов более термоустойчивых (Е. cyaneus, G. lacustris), повышение концентрации лактата отмечалось позднее. Таким образом, можно сделать вывод, что у всех видов возникают изменения в энергетическом метаболизме. При этом у видов менее устойчивых к стрессу они возникают раньше, чем у более устойчивых. Учитывая тот факт, что относительные показатели.

302 устойчивости видов к воздействию разных стрессов близки, можно предположить, что различия в сценариях стресс-реакции, наблюдаемые в экспериментах, могут быть связаны с нарушениями в энергетическом обеспечении у амфипод. При этом резистентные виды способны к более эффективному решению проблемы дефицита энергии, чем виды менее устойчивые.

3,00.

2 2,00 о о.

Е. verrucosus S Й о 2.

1,00.

0,00.

6,00.

4,00.

2,00 контроль 1 ч. 2 ч. 3 ч.

3,00.

§ 2,00 ¦

3 1,00.

0,00.

Е. vittatus.

1 ч.

2 ч.

Зч.

0,00.

Е. cyaneus.

3,00.

2,00.

1 ч.

2 ч.

Зч S.

§ 1,00.

0,00.

G. lacustris.

1 ч.

2 ч.

3 ч.

Рисунок 169.

Содержание лактата в тканях амфипод в контроле и в ходе 3-х часовой экспозиции при температуре 25 °C.

Вероятнее всего в условиях дефицита энергии и роста доли анаэробных метаболических процессов, реализуются сценарии энергообеспечения, характерные для гипоксических состояний. Как уже было показано в разделе.

5.5., различия в устойчивости к гипоксии связаны с более эффективными механизмами энергообеспечения, характеризующихся меньшим накоплением токсических продуктов анаэробиоза (Тимофеев и др., 2003а, 2006а, 2007).

Учитывая тот факт, что уровни термоустойчивости и устойчивости к гипоксии у всех видов близки (Тимофеев, Кириченко, 2004), а реакции на температурный стресс так же как и на гипоксические состояния.

303 сопровождаются* накоплением' лактата, можно ожидать, что в основе стрессового механизма энергообеспечения задействованы общие реакции, проявляющиеся в той или иной мере и с разной степенью эффективности.

Как уже отмечалось, в отличие от литоральных видов, у глубоководных амфипод в условиях исследованных стрессовых воздействий, не выявлено-развитых адаптивных сценариев. Так, в результате воздействия* всех использованных стрессовых факторов на глубоководных амфипод вида О. Аашя у данных рачков не наблюдали направленных изменений в активности ферментных систем. Причем отсутствие реакции наблюдали до момента критического ослабления амфипод и их гибели от влияния стрессового фактора. Для глубоководных амфипод также были характерны крайне низкие уровни конститутивного синтеза БТШ и задержка индукции синтеза в условиях стрессового воздействия*.

Показанное отсутствие направленной реакции антиоксидантных ферментов на стрессовое воздействие у глубоководных амфипод, вероятнее всего обусловлено существенной редукцией адаптивных систем. Этим же фактом и объясняется снижение. роли БТШ у глубоководных амфипод, как при стрессе, так и при конститутивном (не стрессовом) состоянии.

Редукция адаптивных’систем у глубоководных амфипод, вероятно, имеет эволюционные основания. Учитывая то, что при стрессе возникает потребность в росте энергозатрат для обеспечения функционирования резистентных механизмов, организмы стараются снизить и перераспределить свое потребление энергии. При этом, в зависимости от возможностей организма поставлять эту энергию, используются более или менее эффективные системы защиты. Если рассматривать эту проблему с точки зрения выживания вида, то необходимо отметить, что обитание в среде с сильно вариабельными условиями, обуславливает необходимость поддержания энергетического «запаса» в организме для функционирования механизмов стрессовой защиты. В отличие от глубоководных, литоральные амфиподы обитают в постоянно изменяющихся условиях среды, характеризующихся в первую очередь.

304 колебаниями температурно-газового режима. Поддержка повышенных уровней конститутивного" синтеза БТШ должна давать им определенные резистентные преимущества в случаях изменении-этих условий.

Далее, по вертикальному градиенту условий происходит снижение параметров флуктуации факторов среды (от литорали к абиссали). В Байкале этот процесс идет одновременно со снижением продуктивности окружающей среды. На больших глубинах видам сложнее находить пищу, а, следовательно, они ограничены в источниках метаболической энергии. Таким образом, виды сталкиваются с выбором: либо поддерживать повышенную активность систем резистентности и тратить на это трудно-добываемую энергию, либо, отказавшись от дополнительных энергозатрат на поддержание функционирования резистентных систем, увеличить свою энергоэффективность. С учетом отсутствия необходимости поддерживать свои резистентные системы в постоянной функциональнойготовности к флуктуациям факторов среды, эволюция амфипод пошла по пути повышения энергоэффективности.

Таким образом, у видов амфипод, обитателей средних и нижних отделов литорали, уже начинают прослеживаться признаки снижения^конститутивных и стресс-индуцированных параметров активности систем резистентности. У глубоководных же амфипод наблюдается почти полная редукция способности к активации резистентных систем (Timofeyev, Steinberg, 2006).

Можно отметить, что если способность к модуляции активности антиоксидантных ферментов у глубоководных амфипод редуцирована, в случае с более консервативными механизмами БТШ, реакция увеличения экспрессии белков в ответ на стрессовое воздействие сохраняется, однако эффективность этой реакции все же крайне мала. Во первых, «поздний старт» реакции не защищает амфипод от наиболее негативного первоначального этапа стрессового воздействия. Во вторых, у глубоководных амфипод максимальный индуцированный уровень БТШ в экспериментах не превышал конститутивные уровни у литоральных видов. Вероятнее всего, у О. flavus поддерживается.

305 синтез БТШ на уровне, минимально необходимом для протекания: основных метаболических процессовТаким" образом, глубоководные амфиподы настолько оптимизировалисвои* метаболические процессы в соответствии с условиями" среды, что утеряли способность к развитию*адекватной-адаптивнойреакции! в случай их изменений. Учитываякрайнюю стабильность условий обитания в зоне абисали, развитые резистентные системыне являются необходимым условием для-существования в ней организмов, а следовательноредуцирование данных систем, при увеличении энергоэффективности метаболических процессовявляется естественным проявлением эволюционного процесса-.

Аналогичные процессы наблюдаются и в близких по характеристикам древность фаунывертикальныйградиент условий) системахАнтарктики на примере рыб рода Trematomus (Hoimannset alt, 2000; Place et al., 2004; Buckley et. > • al., 2004): Однако в отличие от исследованныхбайкальских глубоководных амфипод, у антарктических видов редукция индуцибельных систем’произошла в большей степениВероятно, этообъясняется большим эволюционным возрастом антарктических видов, эволюция которых проходила в стабильных низкотемпературных условиях на протяжении 15−25 млн. лет (Eastman, 1993). У байкальских амфипод мы, вероятно, наблюдаем ' развитие данного? процесса.

Таким образом, в ходе проведенных исследований выявлена не только взаимосвязь, основных экологических характеристик, амфипод, включая пространственное распространение, температурное и кислородное предпочтениярезистентные возможности^ но и факт того, что в основе этих резистентных возможностей лежат специфичные способности видов к различной: степени активации, физиологических механизмов стрессовой устойчивости, обусловленные особенностями мест их обитания и связанные с эффективностью их энергетических процессов.

1. Агаджанян Н. А. Функции организма в условиях гипоксии и гиперкапнии / Н. А. Агаджанян, А. И. Елфимов. -М., 1986. 470 с.

2. Агулова JI. П. Основные принципы адаптации организмов к космогеофизическим факторам / JI. П. Агулова // Биофизика. 1998. — Т. 43. -вып. 4. — С. 571−575.

3. Андреева В. А. Фермент пероксидаза (участие в защитном механизме у растений) / В. А. Андреева. М.: Наука, 1988.-110с.

4. Аникеева Н. В. Влияние теплового шока на транспозиции МГЭ Dm412 в трех изогенных линиях Drosophila melanogaster / Н. В. Аниксеева, С. А. Забанов, JI. А Васильева и др. // Генетика. 1994. Т. 30. — № 2. — С. 212 — 217.

5. Аннотированный список фауны озера Байкал и его водосборного бассейна. В 2 томах. Том 1 Озеро Байкал. Книга 1(под ред. O.A. Тимошкина). Новосибирск: Наука, 2001.

6. Арчаков А. И. Микросомальное окисление / А. И. Арчаков. М.: Наука, 1975. — 327 с.

7. Атлас определитель пелагобионтов оз. Байкал (под ред. O.A. Тимошкина). -Новосибирск: Наука, 1995. 693 с.

8. Базикалова А. Я. Амфиподы оз. Байкал / А. Я. Базикалова.// Тр. Байкальской лимнологической станции АН СССР 1945. — Т. 11. — 440 с.

9. Базикалова А. Я. Материалы по изучению амфипод Байкала. Поглощение кислорода / А. Я. Базикалова // Изв. АН СССР. Серия биология. 1941. — № 1. С. 151−158.

10. Базикалова А. Я. Материалы по изучению размножения байкальских амфипод / А. Я. Базикалова // Изв. АН СССР серия биол. 1941 — № 3. — С. 407 — 425.

11. Базикалова А. Я. О росте некоторых амфипод из Байкала и Ангары / А. Я. Базикалова // Труды Байкальской Лимнологической станции 1951. — Т. XIII — С. 206−216.

12. Базикалова А. Я. Об амфиподах реки Ангары / А. Я. Базикалова // Труды Байкальской Лимнологической станции. 1957; Т. XV. — С. 377 — 387.

13. Бекман М. Ю. Биология Gammarus lacustris Sars в прибайкальских озерах: Тр. Байкальской лимнологической станции АН СССР / М. Ю. Бекман. — 1954. Т. XIV.-С. 268−311.

14. Бекман М. Ю. Биология и продукционные возможности некоторых байкальских и сибирских бокоплавов / М. Ю. Бекман, А. Я. Базикалова // Тр. Проблемных и тематических совещаний ЗИН: Проблемы гидрологии внутренних вод. — Л., 1951.-Вып. 1.-С. 61−67.

15. Бекман М. Ю. Биология Gammarus lacustris Sars в прибайкальских озерах. / М. Ю. Бекман // Труды Байк. Лимн. Ст. АН СССР. 1954. — Т. XIV. — С. 268 -311.

16. Бекман М. Ю. Экология и продукция Micruropus possolskii (Saw) и Gmelinoides fasciatus (Stebb.) / М. Ю. Бекман // Труды Лимнологического института. 1962. -Т. 2 (22), ч. 1.-С. 141−155.

17. Бекман М. Ю. Население бентали и кормовые ресурсы рыб Байкала / М. Ю. Бекман, Р. С. Деньгина // Биологическая продуктивность водоемов Сибири. М.: 1969. — С. 42- 47.

18. Беляев Д. К. Некоторые генетико-эволюционные проблемы стресса и стрессируемости // Вестник АМН СССР/Д.К. Беляев. 1979. — № 7. — С 124 -134.

19. Берг Л. С. Климат и жизнь / Л. С. Берг. — М.: Госиздат, 1922. С. 28 — 53.

20. Берг Л. С. Фауна Байкала и ее происхождение / Л. С. Берг // Биологический журнал.- 1910.-Т. 1. кн. 1.-С. 10−45.

21. Берг Л. С. Рыбы пресных вод СССР и сопредельных стран/ Л. С. Берг Л.: Изд-во АН СССР, 1949. — Т. 2. — С. 469−929.

22. Березин А. Е. Влияние высокоминерализованных вод на почвенно-растительный покров в районах нефтедобычи / А. Е. Березин, В. А. Базанов, Т. А. Минеева и др. // Вестник ТГУ. 2008. — № 306. — С. 142−148.

23. Биленко М. В. Ишемические и реперфузионные повреждения органов /М.В. Биленко. -М.: Медицина, 1989. 368 с.

24. Бирштейн Я. А. Высшие раки (Ма1асо81та1а) / Я. А. Бирштейн // Жизнь пресных вод. 1940. — Т.1. — С.405−430.

25. Богатов В. В. Рост и продукция амфипод в реках Южного Приморья. / В. В. Богатов // Гидробиологический журнал, 1991. — N.27. — № 1.

26. Бондарь Т. Н. Восстановление органических гидроперекисей глутатионпероксидазой и глутатион-8-трансферазой: влияние структуры субстрата / Т. Н. Бондарь, В. З Ланкин, В. Л. Антоновский // Докл. АН СССР. -1989.-Т. 304. № 1.-С. 217−220.

27. Бурлакова? Е. Б. Перекисное окисление липидов мембрани природные антиок^сиданты / Е.Б. БурлаковаН.Г. Храпова'// Успехи химии. — 1985. — Т. 54.-С. 1540−1558.

28. Бушов Ю. В. Таксономический" анализ индивидуальных реакций организма на тестирующее гипоксическое воздействие / Ю. В: Бушов, К. Т. Протасов // Физиология человека. 1991. — Т. 17. — № 3. — С. 123−128.

29. Бушов Ю. В. Оценка неспецифической резистентности организма по индивидуальной реакции на тестирующее гипоксическое воздействие // Ю. В. Бушов, А. П. Писанко, Ф. В. Осминин и др. // Физиология человека. 1991. — Т. 1'7ю — № 6. — С. 72−78.

30. Васильева Л. А. Анализ изменений локализации МГЭ дрозофилы после селекции и температурного воздействия методом блот-гибридизации по Саузерну / Л. А. Васильева, Н. Юнакович, В. А. Ратнер и др. // Генетика. / -1995. Т. 31. -№ 3. — С. 333−341.

31. Васильева Л. А. Новое подтверждение явления индукции транспозиций МГЭ тяжелым тепловым шоком./Л.А. Васильева, Е. В. Бубенщикова, В. А. Ратнер // Генетика. -1998. Т. 34. -№ 9. — С. 1243−1250.

32. Васильева Л. А. Стрессовая индукция транспозиций ретротранспозонов дрозофилы: реальность явления, характерные особенности и возможная роль в быстрой эволюции /Л.А. Васильева, В. А. Ратнер, Е. В. Бубенщикова // Генетика. -1997.-Т. 33. -№ 8. С. 1083−1093.

33. Вейнберг И. В. Динамика сообщества каменистого пляжа оз. Байкал /И.В. Вейнберг, P.M. Камалтынов, Е. Б. Карабанов //Водные ресурсы. 1995. — Т. 22. — № 4.1 -С. 446−453.

34. Вейнберг И. В. Сообщества макрозообентоса каменистого пляжа озера Байкал. — Дис. канд. биол. наук. Иркутск. — 1995. 180 с.

35. Вейнберг И. В. Сообщества макрозообентоса каменистого пляжа озера Байкал / И. В. Вейнберг, P.M. Камалтынов //Зоологический журнал. — 1998. Т. 77. — № З.-С. 259−265.

36. Верещагин Г. Ю. Байкал / Г. Ю. Верещагин. М.: Географгиз. -1949. — 348 с.

37. Верещагин Г. Ю. Два типа биологических комплексов Байкала / Г. Ю. Верещагин // Тр. Байкальской лимнологической станции АН СССР. 1935. — Т. 6.-С. 113−140.

38. Верещагин Г. Ю. К вопросу о происхождении и истории фауны и флоры Байкала / Г. Ю. Верещагин // Тр. комиссии по изучению оз. Байкал. — 1930. — Т. З.-С. 77−116.

39. Верещагин Г. Ю. Происхождение и история Байкала, его фауны и флоры / Г. Ю. Верещагин // Тр. Байкальской лимнологической станции АН СССР. — 1940. — Т. 10.-С. 85−112.

40. Веселова Т. В. Стресс у растений (Биофизический подход). / Т. В. Веселова, В. Л. Веселовский, Д. С. Чернявский М.: Изд-во Моск. ун-та. — 1993. — 144 с.

41. Владимиров Ю. А. Свободные радикалы в биологических системах // Сорос. Образоват. журн. 2000. — № 12. — С. 13−19.

42. Владимиров Ю. А. Свободные радикалы в живых системах / Ю. А. Владимиров, OA. Азизова, А. И. Деев и др. // Итоги науки и техники. Сер. Биофизика. — 1991. -Т.29. С.1−249.

43. Вознесенский В. Л. Первичная обработка экспериментальных данных. (Практические приемы и примеры) / В. JI. Вознесенский Л.: Изд-во «Наука», 1984.-224 С.

44. Волков В. М. Исследование реакции избегания байкальским гаммарусом некоторых компонентов сточных вод / В. М. Волков // IV Всес. Симпозиум «Борок 1983»: Тез. докл. «Поведение водных беспозвоночных», Борок, 1983. С. 100−101.

45. Воробьева Л. И. Стрессоры, стрессы и выживаемость бактерий (обзор) / Л. И. Воробьева // Прикладная биохимия и микробиология. 2004. — Т. 40. — № 3. — С. 261−269.

46. Воскресенский О. Н. Биоантиоксиданты — облигатные факторы питания // Вопр. мед. химии /О.Н. Воскресенский, В. Н. Бобырев / Биоантиоксиданты, -1992. -№ 4. С.21−26.

47. Воскресенский О. Н. Антиоксидантная система, онтогенез и старение //О.Н. Воскресенский, И. А. Жутаев, В. Н. Бобырев / Вопр.мед.химии. 1982. — № 1. -С. 14−27.

48. Вотинцев К. К. Гидрохимия озера Байкал / К. К. Вотинцев. М.: Изд-во АН СССР. -1961.-С. 311.

49. Гаврилов Г. Б. К вопросу о времени размножения амфипод и изопод оз. Байкал / Г. Б. Гаврилов // Докл. АН СССР. 1949. T.LXIV. — № 5. — С. 739 — 742.

50. Гайнутдинов М. Х. Эволюция: .термотолерантности животных / N1. X Гайнутдинов, Т. Б. Калинникова // Актуальные проблемы экологии физиологии, биохимии и генетики животных Саранск. — 2005. — С. 44−45 .

51. Галазий Г. И. Байкал в вопросах и ответах / IT. Галазий. Иркутск, 1987.

52. Галазий Г. И. Байкал в вопросах и ответах / Г. И. Галазий. Иркутск: ВосточноСибирское книжное изд-во, 1987. — С.384 .

53. Гамалей И. А. Перекись водорода как сигнальная молекула / И. А. Гамалей, И. В. Клюбин // Цитология. 1996. — Т. 38 — № 12. — С. 1233−1247.

54. Гланц С. А. Медико-биологическая статистика / С. А. Гланц. -М: Практика, 1998. 459 с.

55. Говорухина Е. Б. Биология размножения, сезонная и суточная динамика населения литоральных: и сублиторальных видов амфипод озера Байкал: Автореф. дисс.. канд. биол. наук / Е.Б. ГоворухинаИГУ. Иркутск, 2005. -20 с.

56. Говорухина Е. Б. Динамика сообщества прибрежная видов байкальских амфипод у истока реки Ангары в 1999;2002 гг./ Е. Б. Говорухина // Сиб. экол. журн. 2003. -№ 5. — Т. 10. — Р. 575−580.

57. Грачев М. А. Озеро Байкал-природная лаборатория для изучения видообразования / М. А. Грачев // Доклады научно-практической конференции.

58. Развитие жизни в процессе абиотических изменений на земле", Листвянка Иркутской области 18−20 марта 2008 г. 2008. — С. 319−320.

59. Грезе В. Н. Байкальские элементы фауны как акклиматизационный фонд / В. Н. Грезе // Труды Всесоюзного гидробиологического общества.. 1951. — Т. З.-С. 221−226.

60. Грезе В. Н. Основные черты гидробиологии оз. Таймыр / В. Н. Грезе // Тр. ВГБО. 1957. — Т. 8. — С. 183−218.

61. Дедю И. И. Амфиподы пресных и солоноватых вод юго-запада СССРКишинев: Штиинца, 1980. -221с.

62. Детлаф Т. А. Температурно-временные закономерности развития пойкилотермных животных / Т. А. Детлаф М.: Наука , — 2001. -С. 211.

63. Довженко Н. В. Окислительный стресс, индуцируемый кадмием, в тканях двустворчатого моллюска Modiolus modiolus / H.B. Довженко, A.B. Куриленко, H.H. Бельчева, и др. // Биология моря. 2005. — Т. 31. — № 5. — С. 358−362.

64. Дорогостайский В. Ч. Вертикальнное и горизонтальное распределение фауны оз. Байкал / В. Ч. Дорогостайский // Тр. проф. и препод. Иркут. гос. ун-та. -1923.-Вып. 4.-С. 103−131.

65. Ербаева Э. A. Gammarus lacustris Sars водоемов восточной Сибири / Э. А. Ербаева, Г. П. Сафронов // Вид и его продуктивность в ареале: Материалы V Всесоюз. Совещ. Вильнюс, 1988. — С. 239 — 240.

66. Ефремова С. М. Пути эволюции байкальских губок /С.М. Ефремова// Байкалприродная лаборатория для исследования изменений окружающей среды и климата: тез. докл. Междунар. конф. (Иркутск, 11−17 мая 1994 г.). Иркутск, 1994.

67. Журавлёв А. И. Развитие идей Б. Н. Тарусова о роли цепных процессов в биологии /А.И.Журавлев // Биоантиокислители в регуляции метаболизма в норме и патологии. М.: Наука, 1982; С. 3−37.

68. Журавлев А. И. Спонтанная биохемилюминесценция животных тканей /А.И. Журавлев//Биохемилюминесценция. М.: Наука, 1983.-С.3−30.

69. Забанов С. А. Индукция транспозиций МГЭ Dm412 при помощи гамма-облучения в изогенной линии Drosophila melanogasier/ С. А. Забанов, JI.A. Васильева, В. А. Ратнер // Генетика. 1995. — Т. 31. — № 6. — С. 798−803.

70. Забанов С. А. Множественная индукция транспозиций МГЭ В104 у дрозофилы тяжелым тепловым шоком С. А. Забанов, JI.A. Васильева, В. А. Ратнер // Генетика. 1994. — Т. 30. — № 2. — С. 218−224.

71. Забанов С. А. Экспрессия количественного признака radius incompletus у дрозофилы и локализация мобильных элементов МДГ1 и copia / С. А. Забанов, Л. А. Васильева, В. А. Ратнер // Генетика. 1990. — Т. 26. — № 7. — С. 1144−1153.

72. Зайцев В. Г. Защита клеток от экзогенных и эндогенных активных форм кислорода: методологические подходы к изучению/В .Г. ЗайцевВ.И. Закревский //Фундаментальные и прикладные аспекты современной биохимии.I.

73. Тр. научн. конф., поев. 100-летию каф. биохимии Санкт-Петербургск. гос. мед. ун-та им. акад. И. П. Павлова, Санкт-Петербург, 15−17 окт. .- СПб. 1998 г.- Т.2 — С.401−405.

74. Зайцев В. Г. Методологические аспекты исследований свободнорадикального окисления и антиоксидантной системы организма / В. Г. Зайцев, В. И. Закревский // Вестник Волгоградской медицинской академии. Волгоград. -1998.-Вып. 4.-С.49−53.t ?

75. Зайцев В. Г. Связь между химическим строением и мишенью действия как основа классификации антиоксидантов прямого действия/В.Г. Зайцев, О. В. Островский, В. И. Закревский // Эксперим. клин, фармакол. 2003. — Т. 66. — № 4 — С.66−70.

76. Зеленин К. Н. Что такое химическая экотоксикология / К. Н. Зеленин // Соросовский образовательный журнал. — 2000. Т.6. — № 6. — С. 32−36.

77. Зенков Н. К. Окислительный стресс. Биохимический и патофизиологический аспекты/ Н. К. Зенков, В. 3. Ланкин, Е. Б. Меньшикова // М.: Наука. — Интерпериодика, 2001. — С. 340.

78. Зыкова В. В. Стрессовый разобщающий белок БХШ 310 индуцирует перекисное окисление липидов в митохондриях пшеницы при гипотермии /.

79. B.В. Зыкова, О. И. Грабельных, C.B. Владимирова и др. // Доклады РАН. — 2000. Т. 372. — № 4. — С. 562−564.

80. Имашева А. Г. Стрессовые условия среды и генетическая изменчивость в популяциях животных / А. Г. Имашева // Генетика. 1999. — Т. 35. — № 4.1. C.421−431.

81. Исидоров В. А.

Введение

в химическую экотоксикологию./В.А. Исидоров. — СПб., Химиздат., 1999.

82. Камалтынов P.M. Сообщества амфипод Юга Байкала и их изменение под воздействие сточных вод Байкальского целлюлозно-бумажного комбината. — Авторефер. дис. канд. биол. наук: 03.00.16 / P.M. Камалтынов. Иркутск, 1970. -34с.

83. Камалтынов P.M. Токсикологическая устойчивость амфипод / Р. М Камалтынов // Экология Южного Байкала. Иркутск, 1983. — С.251−262.

84. Карташев А. Г. Влияние нефтяного загрязнения на популяцию раковинных амёб // А. Г. Карташев, Т. В. Смолина // Известия Томского политехнического университета. 2006. — Т. 309. — № 8. С. 185−187.

85. Кения М. В. Роль низкомолекулярных антиоксидантов при окислительном стрессе/М.В. Кения, А. И. Лукаш, Е. П. Гуськов // Успехи соврем, биологии. — 1993. Т. 113, — вып. 4. — С. 456−470.

86. Ключевская А. А. Действие температуры на байкальских и общесибирских турбеллярий / А. А. Ключевская // Материалы научной конференции «Студент и научно-технический прогресс», 11 13 апреля 2006 г. — Тез. докл.— Новосибирск, 2006. — Т. 2. С. 178.

87. Ключевская А. А. Сравнение экологических особенностей некоторых байкальских планарий и общесибирской Phagocata sibirica в экспериментеДис. канд. биол. наук, Иркутск, 2007. С. 132.

88. Кожов М. М. Биология озера Байкал / М. М. Кожов. М. Изд-во АН СССР. -1962.-С.315.

89. Кожов М. М. Животный мир озера Байкал / М. М. Кожов. Иркутск: ОГИЗ. 1947.-С.303.

90. Кожов М. М. К познанию фауны Байкала, ее распределения и условий обитания / М. М. Кожов // Изв. Биол.-Геогр. Науч.-Исслед. Ин-та при Госуд. Иркут. Унте. 1931.-Т. 5. .-Вып. 1.-171 с.

91. Кожов М. М. Новый вид Gastropoda из озера Байкал / М. М. Кожев // Рус. гидробиол. журн. 1930 — Т. 8. — № 10−12. — С.300−304.

92. Кожов М. М. О новых находках байкальской фауны вне байкала/ М. М. Кожов А.А.Томилов // Тр. Всесоюз. гидробиол. об-ва, 1949.

93. Кожов М. М. Очерки по Байкаловеденью / М. М. Кожов. Иркутск: Вост. Сиб. кн. изд-во. — 1972. — С.254.

94. Козлова Н. И. Экология байкальского омуля в раннем пстэмбриогенезе Coregonus autunalis miatorius.-Автореф. дисс. канд. наук.-Иркутск, 1997.-19 с.

95. Колесниченко JI.C. Глутатионтрансферазы /Л.С. Колесниченко, В. И. Кулинский // Успехи соврем, биологии. 1989. — Т. 107. вып. 2. — С. 179−194.

96. Колесниченко A.B. Токсичность наноматериалов 15 лет исследований/ A.B. Колесниченко, М. А. Тимофеев, М.В. Протопопова// Российские нанотехнологии. — 2008. — Т. 3. — № 3−4. С. 54−61.

97. Колупаев Б. И. Дыхание гидробионтов в норме и патологии / Б. И. Колупаев. -Казань, 1989. 190 с.

98. Колупаев Б. И. Дыхательный коэффициент у байкальских гидробионтов / Б. И. Колупаев // Экология. 1984. — № 2. — С. 79 — 81.

99. Колчинской А. З. Вторичная тканевая гипоксия / А. З. Колчинской. Киев, 1983. -252 с.

100. Комарова Е. Ю. БТШ70 способен подавлять апоптоз, связываясь с каспазами 3 и 7 / Комарова Е. Ю., Афанасьева Е. А., Маргулис Б. А., и др. // Цитология. 2003. — № 9. — С. 887−888.

101. Константинов A.C. Общая гидробиология: Учеб. для студентов биол. спец. Вузов / A.C. Константинов. 4-е изд., перераб. и доп. — М: Высш. шк., 1986. -472 с.

102. Косолапов В. Н. Действие фенола промышленных стоков ЦБП на двигательную активность. шдробионтов — / В. Н. Косолапов, J1.H. Синева // Токсикогенетические и экологические аспекты загрязнения окружающей среды. Иркутск, 1982. — С. 96−102.

103. Костеша Н. Я. Влияние хитабиса на антиоксидантную активность плазмы крови и кишечной слизи крыс / Н. Я. Костеша, Е. С. Гулик, Г. А. Борило и др. // 2-й съезд физиологов СНЕ. Кишинев: HTJI- 2008. — С. 161−161.

104. Кузин A.M. Структурно-метаболическая теория в радиобиологии / A.M. Кузин. -М.: Наука, 1986. -282 с.

105. Кулаева G.H. Белки теплового шока и устойчивость растений к стрессу / О. Н. Кулаева // Соросовский образовательный журнал. 1997. — № 2. — С. 5−13.

106. Кулинский В. И. Активные формы кислорода и оксидативная модификация макромолекул: польза, вред и защита / В. И. Кулинский // Соросовский образовательный журнал. 1999. — № 1. — С. 2−7.

107. Кулинский В. И. Биологическая роль глутатиона/ В. И. Кулинский, Л.С. Колесниченко//Успехи соврем, биол.- 1990.-Т. 110, вып. 1.-С. 20−33.

108. Кулинский В. И. Обезвреживание ксенобиотиков / В. И. Кулинский // Соросовский образовательный журнал. 1999. — № 1. — С. 8−12.

109. Куценко С. А. Основы токсикологии. С.Пб., 2002. — 256 с.

110. Ланкин В. З. Ферментативная регуляция перекисного окисления липидов в биомембранах: роль фосфолипазы А2 и глутатионтрансферазы/ В. З. Ланкин, А. К. Тихазе, Ю. Г. Осис и др. // Докл. АН СССР.- 1985. Т. 281. Вып. 1. С. 204 207.

111. Леванидова И. М. К вопросу о причинах несмешиваемости байкальской и палеарктической фауны / И. М. Леванидова // Труды Байкальской лимнологической станции АН СССР. 1948. — Т. 12. — С. 57 — 81.

112. Леденев А. Н. Индуцированная УФоблучением люминесценция интактной кожи человека/ А. Н. Леденев, Э. К. Руге, Е. Е. Лунин и др.// Биофизика.- 1989.Т. 34. Вып. 5.-С. 858−862.

113. Ленинджер А. Биохимия. Молекулярные основы структуры и функций клетки/ А. Ленинджер. «Мир». М., 1974. — 957 с.

114. Лосев Н. И. Патофизиология гипоксических состояний и адаптации организма к гипоксии / Н. И. Лосев, Н. К. Хитров, C.B. Грачев. М., 1982. — 80 с.

115. Лукин Е. И. Фауна открытых вод Байкала, ее особенности и происхождение / Е. И. Лукин // Зоол. журн. 1986. — Т. 65. — Вып. 5. — С. 666 — 675.

116. Лукьянчиков B.C., Зефирова Г. С., Королевская Л. И. Неотложные состояния эндокринно —метаболической природы / B.C. Лукьянчиков, Г. С. Зефирова, Л. И. Королевская. М. СИП РИА, 2003. — 340 с.

117. Мазепова Г. Ф. О современном состоянии проблемы происхождения фауны Байкала / Г. Ф. Мазепова // Природа Байкала. Л.: Геогр. о-во СССР, 1974. — С. 178 — 194.

118. Мазепова Г. Ф. Ракушковые рачки (Ostracoda) Байкала / Г. Ф. МазеповаНовосибирск. Наука, 1990. 472 с.

119. Мартинсон Г. Г. Ископаемые моллюски Азии и проблема происхождения фауны Байкала / Г. Г. Мартисон // Геология и геофизика. 1960. — № 2. — С. 47 — 56.

120. Мартинсон Г. Г. Мезозойские и кайнозойские моллюски континентальных отложения Сибирской платформы, Забайкалья и Монголии / Г. Г. МартисонМ.: Изд-во АН СССР, 1961. 178 с.

121. Мартинсон Г. Г. Проблема происхождения фауны Байкала Мезозойские и кайнозойские моллюски континентальных отложения Сибирской платформы, Забайкалья и Монголии / Г. Г. Мартисон // Зоол. журн. 1967. — Т. 46. — Вып. 10. -С. 1597−1598.

122. Мартинсон Г. Г. Происхождение фауны Байкала в свете палеонтологических исследований / Г. Г. Мартисон // Докл. АН СССР. 1958. — Т. 120. — № 5. — С. 1155- 1158.

123. Мартинсон Г. Г. Третичная фауна моллюсков Восточного Прибайкалья / Г. Г. Мартисон // Труды Байкальской Лимнологической станции АН СССР. — 1951. — Т. 13.-С. 30−90.

124. Маянский А. Н. Очерки о нейтрофиле и макрофаге / А. Н. Маянский, Д. Н. Маянский. Новосибирск: Наука, 1989. — 344 с.

125. Мейнелл Дж. Экспериментальная микробиология (теория и практика) -Москва. 1967.-250с.

126. Меньшикова Е. Б. Антиоксиданты и ингибиторы радикальных окислительных процессов/ Е. Б. Меньшикова, Н. К. Зенков // Успехи соврем, биологии. 1993, Т. 113.-Вып. 4.-С. 442−455.

127. Меньшикова Е. Б. Окислительный стресс. Прооксиданты и антиоксиданты / Е. Б. Меныцикова, В. 3. Ланкин, Н. К. Зенков и др. М.: Фирма «Слово», 2006. -553 с.

128. Меныцикова’Е.Б., Метаболическая активность гранулоцитов при хронических неспецифических заболеваниях легких / Е. Б. Меныцикова, Н. К. Зенков // Терапевт.арх.-1991. № И. — С.85−87.

129. Мерзляк М. Н. Активированный кислород и жизнедеятельность растений / М. Н. Мерзляк // Соросовский образовательный журнал. 1999. — № 9> - С. 20−26.

130. Метелица Д. Н. Активация кислорода ферментными системами / Д. Н. Метелица. -М.: Наука. 1982.-256 с.

131. Механикова И. В. Состав и сезонная динамика питания Brandtia parasitica (Dyb.) (Crustacea, Amphipoda) из озера Байкал. / И. В. Механикова // Сб. научн. трудов. Исследование фауны водоемов Восточной Сибири. 2001. — Р. 62−70.

132. Мокрушин А. А. Белок теплового шока (БТШ70) медиатор объемной передачи сигналов в обонятельной коре мозга крыс / А. А. Мокрушин, А. Ю. Плеханов // Докл. РАН. — 2005. — № 1. — С. 124−128.

133. Мордухай-Болтовский Ф. Д. О распространении байкальского бокоплава Gmelinoides fasciatus (Stebbing) в Горьковском водохранилище / Ф. Д. Мордухай-Болтовский, 3. Н. Чиркова // Биология внутренних вод: Информ. Бюл. — 1971—№ 9. — С. 38−41.

134. Музыкантов В. Р. Перекись водорода субтоксических концентрациях активируетфосфоинозитидный обмен в эндотелиальных клетках человека/ В. Р. Музыкантов, Е. А. Пучнина-Артюшенко, Е. В. Чекнева и др. // Биол. Мембраны. 1992. -Т. 9. — № 2. — С. 133.

135. Наградова Н. К. Внутриклеточная регуляция формирования нативной пространственной структуры белков / Н. К. Наградова // Соросовский образовательный журнал. 1997. — № 7. — С. 10−18.

136. Наградова Н. К. Мультидоменная организация ферментов / Н. К. Наградова, В. И. Муронец // Итоги науки и техники. Сер. биологическая химия. — 1991. -Т. 38.-С. 162.

137. Наделяев И. Н. Влияние органических токсикантов на выживаемость и •газообмен байкальских амфипод Е. verrucosus // И. Н. Наделяев // Круговорот веществ и энергии в водоемах. Иркутск, 1981. — Вып. 2. — С. 146−148.

138. Нестерович А. И. Влияние температурного режима водоема на модель размножения Gammarus lacustris Sars / А. И. Нестерович // Вид в ареале биология, экология и продуктивность водных беспозвоночных. Мн.: Навука i тэхшка, 1990. — С. 42 — 49.

139. Нестерович А. И. Особенности размножения Gammarus lacustris (Sars) в прибайкальском водоеме / А. И. Нестерович, В. Е. Рощин // Проблемы экологии Прибайкалья: Тез. докл. Иркутск, 1988. — С. 72.

140. Никольский Г. В. Экология рыб / Г. В. Никольский. М.: «Высшая школа», 1974. -356 с.

141. Нилова О. И. Некоторые черты экологии и биологии Gmelinoides fasciatus Stebb., акклиматизированных в озере отрадное Ленинградской области / О. И. Нилова // Известия Гос. НИИОиРРХ. Ленинград, 1976. — Т. 110. — С. 10−15.

142. Озернюк Н. Д. Механизмы адаптации / Н. Д. Озернюк. М.: Наука. — 1992. 272 с.

143. Осипов А. Н. Активированные формы кислорода и их роль в организме/ А. Н. Осипов, О. А. Азизова, Ю. А. Владимиров // Успехи биол. химии.- 1990. Т. 31. — С.180−208.

144. Островерхова Г. П. Грибные сообщества как объекты регионального мониторинга и биоиндикации загрязнений тяжелыми металлами / Г. П. Островерхова, С. В. Донников, A. JL Мерзляков и др. // Сибирский экологический журнал. 2002. — Вып. 1. — С. 35−40.

145. Островский И. С. Вид в ареале, биология, экология и продуктивность водных беспозвоночных / И. С. Островский // Мн., Навука i тэхнжа, 1990, Р.37−42.

146. Палеолимнологические реконструкции: Байкальская рифтовая зона / С. М. Попова, В. Д. Мац, Г. П. Черняева и др. Новосибирск: Наука, 1989. — 109 с.

147. Панасенко О. О. Структура и свойства малых белков теплового шока /О. О. Панасенко, М. В. Ким, Н. Б. Гусев //Успехи биологической химии. — 2003. Т. 43. — С. 59−98.

148. Парк Д. Б. Биохимия чужеродных соединений / Д. Б. Парк. М.: Медицина, 1973. -288 с.

149. Петрович Ю. А. Свободнорадикальное окисление и его роль в патогенезе воспаления, ишемии и стресса/ Ю. А. Петрович, Д. В. Гуткин // Патол. физиология и эксперим. терапия. 1986. — № 5. — С. 85−92.

150. Плакунов В. К. Основы энзимологии/ В. К. Плакунов.- М: Логос, 2001, — 126 с.

151. Плеханов А. Ю. Белок теплового шока пресноводных простейших и его участие в адаптации к изменению солености среды обитания / А. Ю. Плеханов, Ю. И. Подлипаева, JI. О. Иванова и др. // Цитология. 2006. — Т. 48. — № 6. — С. 530 534.

152. Побежимова Т. П. Методы изучения митохондрий растений. Полярография и электрофорез / Т. П. Побежимова. М, 2004. — 98 с.

153. Пономарева З. А. Распределение некоторых бокоплавов каспийского реликтового комплекса в термоградиентных условиях / З. А. Пономарева // Известия Гос. НИИОиРРХ. 1976 — Т. 110. — С. 36−40.

154. Раев С. Н. Реакция избегания байкальской воды некоторыми гидробионтами / С. Н. Раев, А. Э. Балаян, Д. И. Стом // Природные условия, история и культура Западной Монголии и сопредельных регионов: Матер. V Междунар. конф., 2024 сентября 2001. Ховда, 2001.

155. Разумовский С. Д. Кислород элементарные формы и свойства/ С. Д. Разумовский. — М.: Химия, 1979. — 304 с.

156. Ратнер В. А. Мобильные генетические элементы и количественные признаки у дрозофилы: факты и гипотезы/ В. А. Ратнер, JT. А. Васильева // Генетика. 1992. -Т.28.-№ 11.-С. 15−27.

157. Ратнер В. А. Роль мобильных генетических элементов (МГЭ) в микроэволюции/ В. А. Ратнер, JI. А. Васильева // Генетика. 1992. — Т. 28. — № 12.-С. 5−17.

158. Россолимо JI. Л. Температурный режим озера Байкал / Л. Л. Россолимо // Труды Байкальской Лимнологической станции АН СССР. 1957. — Т. 16. — 240 с.

159. Рубель А. А. Дрожжевой шаперон Hspl04 регулирует экспрессию генов на посттранскрипционном уровне/ A.A. Рубель, А. Г. Лада, A.A. Нижников и др. // Молекулярная биология. 2008. — Т. 42: — № 1. — С. 123−130.

160. Савич И. М. Пероксидазы стрессовые белки растений / И. М. Савич // Успехи современной биологии. — 1989. — Т.107. — Вып. 3. — С. 406 — 417.

161. Сафронов Г. П. Состав и экология видов рода Ga.mma.rus fabricius Юга Восточной Сибири: Дис. канд. биол. наук, Иркутск. 1993.

162. Сафронов Г. П. К экологии Gmelinoides fasciatus Братского водохранилища / Г. П. Сафронов // III Всесоюзн. Конф. «Проблемы экологии Прибайкалья», Иркутск, 5−10 сентября, 1998. Тез. докл. — Иркутск, 1998 — С. 83.

163. Селье Г. На уровне целого организма / Г. Селье. М. — 1982. — 246 с.

164. Скадовский С. Н. Экологическая физиология водных организмов / С. Н. Скадовский — М: Советская наука, 1955. 339 с.

165. Скальская И. А. Беспозвоночные-вселенцы в перифитоне и бентосе верхневолжских водохранилищ (обзор) / И. А. Скальская // Биология внутренних вод, 2008, — № 3. — С. 62 — 73.

166. Скальская И. А. Расселение байкальского бокоплава Gmelinoides fasciatus (Stebbing) в Рыбинском водохранилище / И. А. Скальская // Биология внутренних вод: Информ. бюл. СПб., 1994. — № 96. — С. 35^Ю.

167. Скальская И. А. Структура популяций байкальского бокоплава ОтеНпогЫеБ /азааШБ ^еЬЬн^) в Рыбинском водохранилище / И. А. Скальская // Биология внутренних вод: Информ. бюл. СПб., 1996. — № 99. — С. 29−35.

168. Скулачев В. П. Альтернативные функции клеточного дыхания /В.П.Скулачев // Соросовский Образовательный Журнал. — 1998. № 8. — с. 2−7.

169. Скулачев В. П. Законы биоэнергетики /В.П.Скулачев //Соросовский Образовательный Журнал. 1997.. — № 1. — С. 9−14.

170. Скулачев В. П. Кислород в живой клетке: добро и зло / В. П. Скулачев // Соросовский образовательный журнал. — 1996. № 3. — С.4−10.

171. Скулачев В. П. Эволюция биологических механизмов запасания энергии /В.П.Скулачев //Соросовский Образовательный Журнал.. 1997.. — № 5.. -С. 11−19.

172. Скулачев В. П. Эволюция митохондрий и кислород/ В. П. Скулачев // Соросовский образовательный журнал. 1999. — Т. 6. — № 9. — С. 1−7.

173. Скулачев В. П. Энергетика биологических мембран / В. П. Скулачев. М.: Наука, 1989.-564 с.

174. Скулачев В. П. Явления запрограммированной смерти. Митохондрии, клетки и органы: роль активных форм кислорода / В. П. Скулачев // Соросовский образовательный журнал. 2001. — Т.7. — № 6. — С.4−10.

175. Смирнова О. М. Свободно радикальное окисление и антиоксидантная защита при сахарном диабете (пособие для врачей) / О. М. Смирнова, Т. В. Никонова. -Москва, 2003.

176. Смуров А. О. Белок теплового шока семейства Hsp70 у эвригалинной инфузории Paramecium nephridiatum и его участие в адаптации к изменениюсолености среды / А. О. Смуров, А. В. Гудков, Ю. И. Подлипаева // Цитология. 12 007. Т. 49. — № 4. — С. 292−295.

177. Снимщиков JI. Н. Бентос Истокского сора / JI. Н. Снимщиков // Лимнология прибрежно-соровой зоны Байкала. — Новосибирск: Изд-во «Наука». — 1977. — С. 191−198.

178. Соколовский В. В. Тиоловые антиоксиданты в молекулярных механизмах неспецифической реакции организма на экстремальное воздействие (обзор) / В. В. Соколовский // Вопр. мед.химии. 1988. — № 6. — С. 2−11.

179. Стальная И. Д. Метод определения диеновой конъюгации ненасыщенных высших жирных кислот / И. Д. Стальная // Современные методы биохимии. М.: Медицина, 1977. — С. 63 — 64.

180. Старобогатов Я. И. Фауна моллюсков и зоогеогрфическое районирование континентальных водоемов земного шара / Я. И. Старобогатов Л.: Наука, 1970.-256 с.

181. Стегний В. Н. Архитектоника генома, системные мутации и эволюция / В. Н. Стегний. Новосибирск: Изд-во Новосиб. ун-та, 1993. — 110 с.

182. Стегний В. Н. Проблема системных мутаций / В. Н. Стегний // Генетика. 1996. -Т. 32. -№ 1. — С. 14−22.

183. Стегний В. Н. Системная реорганизация генома при видообразовании / В. Н. Стегний // Эволюционная биология. 2001. С. 128−138.

184. Стом А. Д. Эколого-биологические характеристики некоторых байкальских и прибайкальских ручейников Дис. канд. биол. наук, Иркутск, 2007, 115.

185. Стом Д. И. О реакции избегания Gammarus lacustris Sars байкальской воды/ Д. И. Стом, М. А. Тимофеев //Сибирский экологический журнал. -1999. № 6. -С. 649−655.

186. Середина В. П. Нефтезагрязненные почвы: свойства и рекультивация / В. П. Середина, Т. А. Андреева, Т. И. Бурмистрова и др. Томск: Изд-во ТПУ, 2006. — 270 с.

187. Таганов И. Н. Микроэлементы и тяжелые металлы в доминирующих гидробионтах оз. Байкал. Сообщение II./ И. Н. Таганов, Н. Л. Денисов, М. А. Тимофеев и др. // Изв. РГО. 2005. — Т. 137. — Вып. 2. — С. 76 — 82.

188. Талиев Д. И. Бычки-подкаменщики (Cottoidei) оз. Байкал / Д. Н. Талиев — М.: Изд-во АН СССР, 1955. 603 с.

189. Тахтеев В. В. Фауна бокоплавов прибрежной зоны Байкала в районе Б. Котов.1 Методические указания / В. В. Тахтеев Иркутск: ИГУ, 1993. — 30 с.

190. Тахтеев В. В. Жизненные формы амфипод" озера. Байкал / В. В. Тахтеев- •/— Проблемы^ систематики экологии^и токсикологии беспозвоночных. Иркутск: Изд-во ИГУ, 2000. — С. 12 — 21. «.

191. Тахтеев В. В. Очерки о бокоплавах озера Байкал (систематика, сравнительная экология, эволюция)?/ ВГ ВТахтеевИркутск: Изд-во Ирку т. ун-та, 2000. — 355с. .•' • '•.

192. Тахтеев В. В. Экологические механизмы, эндемичной эволюции бокоплавов (Сп^асеа АтрШрос1а) з озера Байкал / В: ВТахтеев, И. В. Механикова, Е. Б. Говорухина // Сйбир: эколог, журн. 2003.-№-3: — С. -305−3101.

193. Тимофеев М. А. Терморезистентность и термопреферендум некоторых байкальских и сибирских амфипод/ М. А. Тимофеев, Д. И. Стом // Безопасность биосферы: Сборник тезисов докладов. Екатеринбург: УГТУ. -1999.-С. 170.

194. Тимофеев М. А. О возможности применения результатов биохимических исследований в изучении механизмов «несмешиваемости"/ М. А. Тимофеев //Бюллетень ВСНЦ СО РАМН. 2003. — №. 7. — С. 146−149.

195. Тимофеев М. А. К вопросу о существовании механизмов устойчивости к гипоксии у байкальских амфипод/ М. А. Тимофеев, К. А. КириченкоА. В. Рохин // Бюллетень ВСНЦ СО РАМН. 2003а. — № 7. — С. 152−155.

196. Тимофеев М. А. Стрессовые белки в-системе адаптации к неблагоприятным факторам среды у пресноводных амфипод / М. А. Тимофеев, Ж. Mi Шатилина, А. В. Колесниченко, и др. // Бюллетень ВСНЦ СО РАМН. 2003 В. — № 7ю. -С. 149−152.

197. Тимофеев М. А. Экспериментальная оценка роли абиотических факторов в ограничении распространения эндемиков за пределы оз. Байкал, на примере амфипод/ М. А. Тимофеев, К. А. Кириченко // Сибирский экологический журнал. 2004. — № 1. — С 41−50.

198. Тимофеев М. А. Особенности механизмов активации АОС у пресноводных амфипод: I. Палеарктический Gammarus lacustris Sars (Amphipoda, Crustacea) / M. А. Тимофеев // Сибирский экологический журнал. 2006. — № 5. — С. 623 628.

199. Тимофеев М. А. Токсичность солей кадмия для байкальских эндемичных амфипод, некоторые биохимические последствия / М. А. Тимофеев-. Ж. М. Шаталина, А. В. Колесниченко //Сибирский экологическийжурнал, 2006д. — № 2. С. 243 — 248.

200. Тимофеев М. А. Стрессовые белки в механизмах стресс-адаптации байкальских амфипод, сопоставление с палеарктическимивидами/ М. А. Тимофеев, Ж. М. Шаталина, Д. О. Бедулина и др. // Журнал стресс-физиологии и биохимии. 2006е. — Т. 2: — № 1. — C.41−49i.

201. Тимофеев М. А. Полиморфизм белковых спектров эндемичных амфипод озера Байкал и палеарктических видов, влияние температурного стресса / М.

202. А. Тимофеев, Ж. М. Шаталина, А. В. Колесниченкои др. // Сибирский, экологический журнал. 2006 ж. — № 5. — С. 571−579.

203. Тимофеев М. А. Изучение активности некоторых антиоксидантных ферментов у байкальских амфипод, локализация и размерно-возрастная зависимость/ М. А. Тимофеев //Сибирский экологический журнал. 2007. — № 4. — С. 521 — 526.

204. Тимофеев М. А. Особенности механизмов активации АОС у пресноводных амфипод: II. Байкальский литоральный Eulimnogammarus cyaneus (Dyb.) (Amphipoda, Crustacea)/ М. А. Тимофеев //Сибирский экологический журнал. -2008. Т. 5. — С. 681−687.

205. Тимофеев М. А. Особенности применения белков теплового шока (БТШ) в качестве стресс-маркеров у байкальских эндемичных амфипод/ М. А. Тимофеев, Ж. М. Шаталина, Д. С. Бедулина и др. // Прикладная биохимия и микробиология. 2008а. — Т.З. — С. 310−313.

206. Тимофеев М. А. Активация антиоксидантной системы у байкальского литорального вида Eulimnogammarus verrucosus/ М. А. Тимофеев // Известия.

207. Самарского Научного Центра РАН. 2009. — Т. 11. — № 1. — С. 177−180.337.

208. Тимофеев М. А. Вестерн-иммуноблоттинг белков теплового шока у пресноводных гастропод и амфипод, экспонированных в растворах нефти/ М. А. Тимофеев, Д. В. Лозовой, Д. С. Потапов и др. // Известия ИГУ, Серия «Биология. Экология». 2009а. -№ 2. — С. 97−107.

209. Тыщенко В. П. Основы физиологии насекомых / В. П. Тыщенко. Л., 1976. — Ч. 1.-134 с.

210. Флеров М. А. Использование БТШ70 для нормализации последствий неизбегаемого стресса у крыс / М. А. Флеров, Н. Э. Ордян, Б. А. Маргулис и др. // Бюл. эксперим. биол. и мед. 2003. — № 8. — С. 138−141.

211. Флоренсов H.A. История озера / H.A. Флоренсов. Проблемы Байкала. Новосибирск: Наука, 1978. — С. 9−17.

212. Хочачка П. Биохимическая адаптация / П. Хочачка, Дж. Сомеро. М.: Мир, 1988.-568 с.

213. Хочачка П. Стратегия биохимической адаптации / П. Хочачка, Дж. Сомеро. М.: Мир, 1977. 398 с.

214. Чекнев С. Б. Активные метаболиты кислорода в обеспечении и контроле естественных цитотоксических реакций/ С. Б. Чекнев // Вестник Рос. Академии мед. наук. 1999. — № 2. — С. 3−10.

215. Черепанов В. В. Зообенгос прибрежно соровых участков Северного Байкала / В^. В: Черепанов^В: Н: Александров, Р. М: Камалтынов и др. — Новосибирск: Изд-во «Наука» 1977. -С. 198−207.

216. Черепанов В. В. Зообентос прибрежно-соровых участков Северного Байкала/ В. ВГ Черепанов^. МГ А. Арипова, Т. Д1 Евстигнеева и др. // Круговорот веществ и энергии в водоемах. Иркутск, 1981Вып. 2. С. 142−143.

217. Черняев Ж. А. Морфо-экологические особенности размножения и развития песчаной широколобки оз. Байкал / Ж. А. Черняев // Вопр. Ихтиологии. 1977. -Т., 29. — Вып. 3. -С. 501 -503;

218. Черняев Ж. А. Некоторые данные о размножении и развитии малой голомянки Сотер1юги8 с1уЬош81шКогой1е??7 Ж. А. Черняев // Вопросы ихтиологии. — 1971. -Т. 11. -№ 5 (70).-С. 820−831. .

219. Черняев Ж. А. Размножение и развитие большеголовой широколобки Ва1хас1юсоШ18 Ьаюа1еп818 (БуЬ.) оз. Байкал / Ж. А. Черняев //Вопр. Ихтиологии. 1979. — Т. 19. — Вып. 6. — С. 1053−1067.

220. Шаронов Б. ПАнтиокислительные свойства и деградация белков сыворотки активными формами кислорода, генерируемыми стимулированными нейтрофилами/Б.П. Шаронов, Н.Ю. Говорова//Биохимия. 1988. — Т.53. -Вып.5. — С.816−825.

221. Шаталина Ж. М. Особенности активации механизмов антиоксидантной защиты у эндемичных байкальских амфипод / Ж. М. Шаталина, Д. С. Бедулина, М. А. Тимофеев //Вестник Томского государственного университета, Серия «Естественные науки». 20 046. — № 11. — С. 144.

222. Шатилина Ж. М. Белки теплового шока в механизмах стресс-адаптации убайкальских амифпод и палеарктического Оаттагт 1асшМ8 Баге: I. Семейство339.

223. БТШ70 / Ж. М. Шатилина, Т. П. Побежимова, О. И. Грабельных, М.А. Тимофеев// Сибирский экологический журнал. 2010;а.-№ 1. — С. 23−29.

224. Шилов В. Н. Молекулярные механизмы структурного гомеостаза / В. Н. Шилов. М.: Интерсигнал, 2006. — 286 с.

225. Шинкаренко Н. В. Химические свойства синглетного молекулярно кислорода и значение его в биологических системах / Н. В. Шинкаренко, В. Б. Алексовский // Успехи ХИМИИ.-1982: — Т.-5Т:-№ 5—С. 713−735.

226. Шмальгаузен И. И. Факторы эволюции / И. И. Шмальгаузен М.- Л., 1946. — 396.

227. Шмальгаузен. И-И: Факторы эволюции: Теория стабилизирующего отбора. 2-е изд./ И. И. Шмальгаузен. М: Наука, 1968. — 451 с.

228. Юрин В. М. Основы ксенобиологии: Учебное пособие / В. М. Юрин. Мн: БГУ, 2001. -234 с. ^.

229. Якутова Э. ШВзаимодействие гипохлорита с оксигемоглобином приводит к освобождению железа в каталитически активной форме / Э. Ш. Якутова, А. Н. Осипов, О. В. Костенко и др. // Биофизика.- 1992: Т.37. — Вып. 6. — С. 10 211 028.

230. Янковский О. Я. Токсичность кислорода и биологические системы (эволюционные, экологические и медико-биологические аспекты) / О. Я. Янковский. С.-Пб.: «Игра», 2000. — 294 с.

231. Abdel-Eateif H. M. Interaction betweentemperature and — cadmium toxicity in the isopod Porcellio scaber / H. M. Abdel-Lateif, Ml. Hl Donker, N. M: Van Straalen // Funct Ecology. 1998. -V. 12. — I. 4. — 521−527.

232. AbeleD. How does oxidativestress relate2 to thermal tolerance in the Antarctic bivalve Yoldia eightsi? / D. Abele, C. Tesch, Pi Wencke et al. // Antarctic Science. -2001.-V.13.—I. 2.-P. 111−118.

233. Adams J. FactorsAffecting the Microdistribution of Gammarus pulex (Amphipoda) -An Experimental-Study / J. Adams, J. Gee, P. Greenwood, S. Mckelvey et al- // Freshwater Biology. 1987. -V.17.-P.307−316.

234. Alevy Y. G. Increased Expression of the Hdj-2 Heat Shock Protein in Biopsies of Human Rejected Kidney 1 / Y. G. Alevy, D. Brennan, S. Durriya et al. // Transplantation 1996. — V. 61. -1. 6. — P. 963−967.

235. Araoz R. Translation activity under ultraviolet radiation and temperature stress in the cyanobacterium Nostoc sp. / R. Araoz, M. Lebert, D. P. Hader // Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology. 1998. — V. 47. -1. 2−3. P. 115−120.

236. Aravind P. Zinc alleviates cadmium-induced oxidative stress in Ceratophyllum demersum L.: a free floating freshwater macrophyte / P. Aravind, M. N. V. Prasad // Plant Physiology and Biochemistry.-2003. V. 41. -1. 4.-P. 391−397.341.

237. Augusteyn R.C. The effects of isolation buffers on the properties of alpha-crystallin/ R.C. Augusteyn, E.M. Parkhill, A. Stevens // Exp Eye Res. 1992. — V. 54. — I. 2. -P. 219−28.

238. Ayrinhac A. Cold adaptation in geographical populations of Drosophila melanogaster: phenotypic plasticity is more important than genetic variability / A. Ayrinhac, V. Debat, P. Gibert et al. // Functional Ecology. 2004. — V. 18. — P. 700 706.

239. Badenhuizen T.R. Temperatures selected by Tilapia mossambica (Peters) in a test tank with a horizontal temperature gradient/ T.R. Badenhuizen // Hydrobiologia. — 1967. V.30. -P. 3−4.

240. Baija de Quiroga G. Hyperoxia decreases lung size of amphibian tadpoles without changing GSH-peroxidases or tissue peroxidation. / G. Baija de QuirogaM. Lopez-Torres, P. Gil // Сотр. Biochem Physiol. 1989. V. A92. -1. 4.-P. 581−588.

241. Barnard J. L. Fresh Water Amphipoda of the World,/ J. L. Barnard, С. M. Barnard Mt. Vernon. Virginia, 1983. — 830 p.

242. Basha P. S. Cadmium-induced antioxidant defense mechanism in freshwater teleost Oreochromis mossambicus (Tilapia) / P. S. Basha, A.U. Rani // Ecotoxicology and Environmental Safety.-2003. V. 56. — P. 218−221.

243. Bast A. Oxidants and antioxidants: state of the art / A. Bast, G. R. M. M. Haenen, C. J. A. Doelman // Am. J. Med. -1991. V. 91. — S.3C. — P. 2S-13S.

244. Bechtold D.A. Localization of the heat-sock protein Hsp70 to the synapse following hypertermic stress in the brain/ D.A. Bechtold* S.J. Rush, I.R. Brown // Jornal of Neurochemistry.-2000. V. 74. P. 641−646.

245. Bedulina D.S. Sub-littoral and supra-littoral amphipods respond differently to acute thermal stress/ D.S. Bedulina, M. Zimmer, M.A. Timofeyev // Comparative biochemistry and physiology, Part B. 2010a. -1. 155. — P. 41318.

246. Bell G. W. Behavioral responses of free-ranging blue crabs to episodic hypoxia. I. Movement / G. W. Bell, D. B. Eggleston, T. G. Wolcott // Marine Ecology Progress Series. 2003. V. 259. — P. 215−225.

247. Bell G. W. Species-specific avoidance responses by blue crabs and fish to chronic and episodic hypoxia / G. W. Bell, D. B. Eggleston // Marine Biology. 2005; V. 146.-1.4.-P. 761−770.

248. Belova V.A. Sediment formation in Like Baikal / V.A. Belova, B.F. Lut, L.P. Loginova et al. // Hydrobiologia. 1983. — V. 103. — P. 281−285.

249. Belyev O.K. Borodin P.M. The influence of stress on variation and its role in evolution // Biol. Zentralbl. 1982. — V. 100. — P. 705−714.

250. Berger E. M. Small heat shock proteins in Drosophila may confer thermal tolerance / E.M. Berger, M.P. Woodward // Exp. Cell. Res. 1983. — V.147. -1.2. — P. 437−442.

251. Bielski B. H. J. Mechanism of the disproportion of superoxide radicals / B. H. J. Bielski, A. O. Allen // J.Phys.Chem.-1977.-V.81. P. 1048−1050.

252. BijlsmaR. Environmental stress, adaptation and evolution: an overview / R! Bijlsma, V. Loeschcke // Journal of Evolutionary Biology. 2005;. — V.18. — P: 744−749.

253. Bjedov It Stressrinduced mutagenesis in bacteria /1. Bjedov, O. Tenaillon, B. Gerard et al. //. Science. 2003. — V-. 300. -1. 5624., — P. 1404−1409:j.

254. Blokhina O. Antioxidants oxidative damage and oxygen deprivation stress: a review / O. Blokhina, E. Virolainen, K.V. Fagerstedt // Ann. Bot. 2003. — V. 91. — P. 179 194.

255. Boes M. degradation of membrane phospholipids by direct nucleophilic action of superoxide anion / M. Boes, C. Debye, J. Pincemail // Free Radicals, Lipoproteins and Membrane Lipids.-N.Y.: Plenium Press. 1989. — P. 105−113.

256. Boon-Niermeijer E.K. Evidence for Two States of Thermotolerance / E.K. Boon-Niermeijer, M. J. M. Tuijl, M. van* de Scheur // International Journal of Hyperthermia. 1986. — V. 2. — I. 1. — P. 93−65.

257. Booth Ian R. Stress and the single cell: Intrapopulation diversity is a mechanism to ensure survival upon exposure to stress/ Ian R. Booth // International Journal of Food Microbiology. 2002. — V. 78. -1. 1−2. — P. 19−30.

258. Bosch T. C. Thermotolerance and synthesis of heat shock proteins: these responses are present in Hydra attenuata but absent in Hydra oligactis / T. C. Bosch, S. M. Krylow, H. R. Bode et al. // PNAS. 1988. — V. 85. — I. 21. — P. 7927−7931.

259. Bosh S. Chaperone function of Hsp90- associated proteins / S. Bose, T. Weikl, H. Bug // Buchner J. Science. 1996. — V. 274. — P. 1715−1717.

260. BostontR. S:.Molecular cHaperonesiandiRroteinifblding’iniplants-/ Rl SBoston, P. V.. Viitanen, E. Vierling // PlantMolecular Biology. 1996. — V. 32. — I:. 1−2. — P. 191 222:.- ' • ¦ '.¦¦.: ¦

261. Bowmaker J. K. .Visual pigments and photic environment the cottoid fish of Lake Baikal/ J. K. Bowmaker, V.I. Govardovskii, S.A. Shukolyukov et air // Vision Reseach. 1994. — V. 34- - N. 5. — P. — 591 — 605.

262. Braakman I. Role of ATP and disulfide bonds protein during protein folding¦ in the endoplasmic reticulum /1. Braakman // Nature. • 1992 V. 356 — P. 260−271.

263. Bradford M.M. A Rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding / M.M. Bradford // Anal Biochem. 19 761— № 10 — P. 491 — 497.

264. Brelin I). Frequency distribution of coping strategies in four populations of brown trout (Salmo trutta) / Brelin D., E. Petersson, J. Dannewitz, J. Dahl, S. Winberg // Hormones and-Behavior. 2008i — V. 53- - I: 4- - 546−556,.

265. Brouwer M. Biochemical defense mechanisms against copper-inducedoxidative damage in the blue crab, Callinectes sapidus / M. Brouwer, T. H. Brouwer // Archives of Biochemistry and Biophysics. 1998. -V. 351. -1. 2. — P. 257−264.

266. Brover R.W. Pressure effect on thermal preference behavior in gammarid amphipods from 600−1000 m in Lake Baikal / R.W. Brover, M. R. Vordan, G. I. Galazii // J. Threm. Biol. 1984. -1. 3. — P. 305−313.

267. Bruns I. Cadmium lets increase the glutathione pool in bryophytes / I. Bruns, K. Sutter, S. Menge et al. // Journal of Plant Physiology.-2001. V.158.1. 1. — P.79−89.

268. Buck L. Succinate and alanine as anaerobic end-products in the diving turtle (.

269. Buckley B.A., Place S.P., Hofmann G.E. // J. Exp. Biol. 2004.. V. 207. — № 21.. -P. 3649−3656.

270. Buckley, B. A. Regulation of heat shock genes in isolated hepatocytes from an Antarctic fish, Trematomus bernacchii / B. A. Buckley, S. P. Place, G. E. Hofmann // J. Exp. Bio. 2004. — V. 207. — P. 3649−3656.

271. Byczkowski J.Z. Biological role of superoxide ion-radical / J.Z. Byczkowski, T. Gessner// Int. J.Biochem. 1988. — V. 20. — P. 569−580.

272. Cadenas E. Low-level chemiluminescence of biological systems / E. Cadenas, A. Boveris, B. Chance // Methods in Enzymology. 1984. V. 105- N. Y.: Acad. Press. -P. 211−242.

273. Camus L. Temperature-dependent physiological response of Carcinus maenas exposed to copper / L. Camus, P. E. Davies, J. I. Spicer et al.// Marine Environmental Research. 2004. -V. 58.1. 2−5. — 781−785.

274. Carpenter, C.M. Expression of 70 kDa heat shock proteins in antarctic and New Zealand notothenioid fish / C.M. Carpenter, G.E. Hofmann // Comparative347.

275. Biochemistry and Physiology A-Molecular and Integrative Physiology. — 2000. -V.125. P. 229−238.

276. Caspers GJ. The expanding small heat-shock protein family, and structure predictions of the conserved «a-crystallin domain» / G.-J. Caspers, J.A. M. Leunissen, W. W. de Jong // Journal of Molecular Evolution. 1995. — V. 40. -1. 3. -P. 238−248.

277. Chambers, M.R. Population Ecology of Gammarus-Tigrinus (Sexton) in Reed Beds of Tjeukemeer / M.R. Chambers // Hydrobiologia.. 1977. — V.53.. — 1977. P.155. -164.

278. Cheng W.T. Effects of dissolved oxygen on hemolymph parameters of freshwater giant prawn, Macrobrachium rosenbergii (de Man) / W.T. Cheng, C.H. Liu, C.M. Kuo // Aquaculture. 2003. — V. 202. — I. 1−4. — P. 843−856.;

279. Chiang H. L. A role for a 70-kilodalton heat shock protein in lysosomal degradation of intracellular proteins / H. L. Chiang, S. R Terlecky, C.P. Plant et al. // Science. -1989. V. 246. — I. 4928. — P. 382 — 385.

280. Claiborne A. Catalase activity. Handbook of Methods for Oxygen Radical Research / A. Claiborne. Boca Raton: CRC Press, 1986. — P. 283−284.

281. Clegg J. S. Metabolic consequences of the extent and disposition of the aqueous intracellular environment / J.S. Clegg // J. Exp. Zool. 1981. — V. 215. -P. 303−313.

282. Clegg J. S. Extensive intracellular translocations of a major protein accompany anoxia in embryos of-Artemia franciscana / J. S. Clegg, S. A. Jackson, A. H. Warner // Experimental cell research. 1994. — V. — 212. — 1. 1. — P. 77−83.

283. Cornwell D. G. Fatty acid paradoxes in the control of cell proliferation: Prostaglandins, lipid peroxides, and cooxidation reactions / D.G. Cornwell, N. Morisaki//Free Radicals in Biology.- 1984. V. 6. — P. 96−149:

284. Correi A. D. Effects of water-borne cooper on metallothionein and lipid peroxidation in the marine amphipod Gammarus locusta / A.D. Correi, D.R. Livingstone, M.H. Costa // Mar. Environ. Res. 2002. — V. 54: — P. 357−360.

285. Dandapat J. An in v/iro study of metal ion-induced lipid-peroxidation in giant fresh water prawn Macrobrachium rosenbergii (dQ MAN)/. J. Dandapat, K. J. Rao, G. B. N: ChainyII Biometals. 1999. — V. 12. -1. 1. — P. 89−97.

286. Darwin Ch. On the origin of species by natural selection / Ch. Darwin. — London: Murray, 1859.

287. Davies K. J. Oxidative stress: the paradox of aerobic life / K. J. Davies // Biochemical Society symposium. 1995. — 61. — P. 1−31.

288. Dawson T.M., Bredt D.S. Fotuhi M. et al. Nitric oxide synthase and neuronal NADPH diaphorase are identical in brain and peripheral tissues // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.-1991.-Vol.88.-P.7797−7801.

289. Del Rio L.A. A new cellular function for peroxisomes related, to< oxygen free radicals? / L.A. Del Rio, L. M: Sandalino, J.M., Palma// Experientia* (Basel).- 1990.-V. 46. P. 989−992.

290. Demiera E.V. Modulation of K+ channels by hydrogen peroxide / E.V. Demiera // Biochem. Biophys Res. Commun. 1992.-V. 186. — P. 1681−1687.

291. Dhaunsi G.S. Peroxisomal participation in the cellular response to the oxidative stress of endotoxin / G.S. Dhaunsi, I. Singh, C.D. Hanevold // Mol. Cell. Biochem. 1993. -V. 126. P. 25−35.

292. Diaz R. J. Spreading Dead Zones and Consequences for Marine Ecosystems / R. J. Diaz, R. Rosenberg // Science. 2008. V. 321. -1. 5891. — P: 926−929.

293. Dietz T. J. The threshold induction temperature of the 90-kDa heat shock protein is subject to acclimatization in eurythermal goby fishes (genus Gillichthys) / T. J. Dietz, G. N. Somero // PNAS. 1992. — V. 89. — I. 8. — P. 3389−3393.

294. Furlan, Mi I. T. Ferro // Revista Brasileira de Zootecnia-Brazilian Journal of Animal Science. 2001. V. 30i -1. 5. P. 1506−1513. ¦

295. Dix D. J. Hsp-70 expression and function during game-togenesis / D. J. Dix // Cell Stress and Chaperones. 1997i-V. 2r — P. 73−77. ;

296. Dix T. Mechanisms and biolojical relevance of lipid peroxidation inhalation / T. Dix, J. Aitkens // Chem. Res: Toxicol.-1993.-V.6. P. 2−18.

297. Downs C. A. Assessing the Health of Grass. Shrimp (Palaeomonetespugio) Exposed to Natural and Anthropogenic Stressors: A Molecular. Biomarker System / C. A. Downs, J. E. Fauth, G. Mi Woodley // Marine Biotechnology^ 2001. — V.3. -N.4. -P.1436−2236.

298. Dunn J.R. An ultrastructural and histochemical study of the axial musculature in the african lungfish / J.R. Dunn, W. Davison, G.M. Maloiy // Cell and Tissue Ras. -1981. V.220, — P. 599−609. ' '.

299. Eastman, J.T., Antarctic Fish Biology — Evolution in a Unique Environment /J.T. Eastman, // Academic Press, San Diego. P. 1993.322.

300. Eisenberg W.C., Taylor K., Guerrere R.R. Cytogenetic, effects of singlet oxygen / W.C. Eisenberg, K. Taylor, R: R. Guerrere // J. Photochem. Photobiol.-1992:-V.16. -P.381−384.t ,.

301. Elena S.F. Environmental stress and the effects of mutation / S.F. Elena, J. de Visser, G.M. Arjan // Journal of Biology. 2003. — V. 2. — P. 12−32.

302. Elliot W.R. Temperate preference responses of some aquatic, cave-adapted Crustaceans from Central Texas and Northeastern Mexico /W.R. Elliot, W. Mitchell //Int. J. Speliol. 1973. -V. 5. -№ 2. — P. 123−132.

303. Ellis C. Phosphorylation of GAP and GAP-associated proteins by transforming and mitogenic tyrosine kinases,/ C. Ellis, M. Moran, F. McCormick et al. // Nature. -1990. V. 343. P. 377−381.

304. Environmental stress, adaptation and evolution / Eds. R. Bijlsma, V. Loeschke Basel: Boston: Berlin: Birkhauser, 1997. 325 p.

305. Estabrook R.W. Microsomal electron-transport reactions: an overview / R. W Estabrook. Methods in Enzymology. — N.Y.:Acad. Press, 1978. — V. 52. — P.43−47.

306. Esterbauer H. Cytotoxicity and genotoxicity of lipid-oxidation products / H. Esterbauer// Am. J. Clin. Nutr. 1993. — V. 57. — S. — P. 779S-786S.

307. Fader S. C. Seasonal variation in heat shock proteins hsp70 in stream fish under natural conditions / S. C. Fader, Z. Yu, J. R. Spotila // J. Therm. Biol. -1994. V.5. -P. 335−341.

308. Fariaseisner R. The Chemistry and tumoricidal activity of nitric oxide hydrogen and the implications to cell resistance susceptibility / R. Fariaseisner, G. Chaudhuri, E. Aeberhard et al. // J. Biol. Chem. 1996. — V. 271. — P. 6144−6151.

309. Feder M. E. The stress response and stress proteins / M. E. Feder, D. A. Parsell, S. L. Lindquist // Cell Biology of Trauma. 1995. — P. 177−191.

310. Feder M. E. Heat-shock proteins, molecular chaperones, and the stress response: evolutionary and ecological physiology/ M. E. Feder, G. E. Hofmann // Annual Review of Physiology 1999. — V. 61. — P. 243−282.

311. Forbes V.E. Responses of aquatic organism to pollutant stress: theoretical implications. / V.E. Forbes, P. Calow// Environmental stress, adaptation and evolution. Basel: Birkhausen — 1997. -P. 25−42.

312. Freeman B.D. Biological sites and mechanisms of free radical production / B. D. Freeman // Free Radicals Molecular Biology, Aging and disease. 1984. — P. 43−52.

313. Fridovich I. Oxygen toxicity: a radical explanation / I. Fridovich // J Exp Biol. 1998. V. 201. I. 8.-P. 1203−1209.

314. Fries G. Der Einfluss des Massenvorkommens Von Gammarus Tigrinus Sexton Auf Fische und Niedere Tierwelt in der Weser / G. Fries, F. W. Tesch. // Archiv fur Fischereiwissenschaft. V. 16. 1965. -P. 133.

315. Gabai V. L. Role of Hsp70 in regulation of stress-kinase INK: implications in apoptosis and aging / V. L. Gabai, A. B. Meriin, J. A. Yaglom et al. // FEBS Letters.- 1998. V. 438. — I. 1−2. — P. 1−4.

316. Gaitanaris G. Renaturation of denatured lambda repressor requires heat shock proteins / G. Gaitanaris, P. Rubock, A. G. Papavassiliou et al. // Cell. 1990. — V. 61. I. 6. P. 1013−1020.

317. Gething M.J. Protein folding in the cell / MJ. Gething, J. Sambrook // Nature. -1992. — V.355. -P.33−46.

318. Glazier D. S. Energetic of amphipods in ion-poor waters: Stress resistance is not invariably linked to low metabolic rates /D.S Glazier, B.L. Sparks // Functional Ecology.-1997.-V. 11.-I. l.-P. 126−128.

319. Gnaiger E. Physiological reactions of aquatic oligochaetes to environmental anoxia / E. Gnaiger, R. Kaufmann, I. Staudigl // Hydrobiologia. 1987. — V. 155. — I. l.-P. 155.

320. Graig J. K. Hypoxia-induced habitat shifts and energetic consequences in Atlantic croaker and brown shrimp on the Gulf of Mexico shelf / J. K. Graig, L. B. Crowder // Marine Ecology Progress Series. 2005. — V. 294. P. 79−94.

321. Greig S.M. A review of factors influencing the availability of dissolved oxygen to incubating salmonid embryos. / S.M. Greig, D.A. Sear, P.A. Carling // Hydrological Processes. 2007. — V. 21. -1. 3. — P. 323−334.

322. Gullo C. A Heat shock proteins: to present or not, that is the question / C.A. Gullo, G. Teoh // Immunology Letters. 2004. — V. 94. — P. 1−10.

323. Gutteridge J. M. C. Iron promoters of the Fenton reaction and lipid peroxidation can be released from haemoglobin by peroxides / J. M. C. Gutteridge // FEBS Lett. -1986.-V. 201.-P. 291−295.

324. Hahn G. M. Thermotolerance, thermoresistance, and thermosensitization / G. M. Hahn, G. C. Li // Stress Proteins in Biology and Medicine. 1990. — P. 79−100.

325. Hall L.W. Temperature preference of the crayfish Orconectes obscurus / L.W. Hall, D.A. Cincotta, J.R. Stauffer et al. I I Arch. Environ. Contam. Toxicol. 1978. — V. 1−1.3.-P. 379−383.

326. Halliwell B. Biologically significant scavenging of the myeloperoxidase-derived oxidant hypoclorous acid by ascorbic acid / B. Halliwell, M. Wastil, M. Grootveld // FEBS Lett.-1987.-V. 213. P. 15−18.

327. Handy R. D. Physiological responses: their measurements and use as environmental biomarkers in ecotoxicology / R. D. Handy, M. H. Depledge // Ecotoxicology. -1999.-V. 8.-P. 329−349.

328. Harris G. J. Rhythms of locomotion and oxygen consumption in the estuarine amphipod Corophium volutator (Crustacea: Amphipoda) / G. J. Harris, E. Morgan // Chronobiology International. 1984. — V. 1. -1. 1. — P. 21−25.

329. Hartl F. U. Molecular chaperones in cellular protein folding / F.U. Hartl // Nature. -1996.-V. 381.-P. 571−579.

330. Hayes J. D. Glutathione transferases / J. D. Hayes, J. U. Flanagan, I. R. Jowsey // Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. 2005. — V. 45. — P. 51−88.

331. Hayes R. L. Induction of 70-kD heat shock protein in scleractinian corals by elevated temperature: significance for coral bleaching / R. L. Hayes, C. M. King // Mol Mar Biol Biotechnol. 1995. — V.4'. — I. 1. — P. 36−42.

332. Heikkila J.J. Heat-shock gene expression in animal embryonic systems / J. J. Heikkila, L.W. Browder, L. Gedamu et al. // Can. J. Genet. Cytol. 1986. — V.28. -P. 1093−1108.

333. Helfman T. Gene-Expression in Low-Oxygen Tension / T. Helfman, V. Falanga // American Journal of the Medical Sciences. 1993. — V. 306, -1. 1. — P. 37−41.

334. Henderson B. Integrating the cell stress response: A new view of molecular chaperones as immunological and physiological homeostatic regulators/ B. Henderson// Cell Biochemistry and Function. 2010. — V. 28. -1. 1. — P. 1−14.

335. Henry K. S. Oxygen dependent habitat selection in surface and hyporheic environments by Gammarus roeseli Gervais (Crustacea, Amphipoda): experimental evidence. / K. S. Henry, D. L. Danielopol //. Hydrobiologia. 1998. — V. 390. -1. 1−3.-P. 51−60.

336. Herut B. Hydrogen peroxide production rates in clean and polluted coastal marine waters of the Mediterranean, Red and Baltic sea / B. Herut, E. Shoham-Frider, et al. // Marine Pollution Bulletin. 1998. — V. 36. — P. 994−1003.

337. Hinshaw D.B. Inhibition of organic anion transport in endothelian cells by hydrogen peroxide / D.B. Hinshaw, J.M. Burger, R.E. Delius et al. // Arch. Biochem. Biophis. -1992.-V. 298.-P. 464−470.

338. Hochachka P. Succinate accumulation in man during exercise / P. Hochachka, R. Dressendorfer // Eur J Appl Physiol Occup Physiol. 1976. — V. 35. -1. 4. — P. 235 -242.

339. Hoffman A.A. Evolutionary genetics and environmental stress / A.A. Hoffman, P.A. Parsons. Oxford: Oxford Univ. Press. 1991.

340. Hoffmann A.A. Extreme environmental change and evolution / A. A. Hoffmann, P. A. Parsons // Cambridge: Cambr. Univ. Press, 1997. 259 p.

341. Hoffmann A. A. Environmental Stress as an Evolutionary Force / A. A. Hoffmann, M. J. Hercus // Bioscience. 2000. — V. 50. -1. 3. — P. 217−226.

342. Iofmann G. E. Heat-shock protein expression is absent in the antarctic fish Trematomus bernacchii (family Nototheniidae) / G. E. Hofmann, B. A. Buckley, S. Airaksinen et al. // The J. of experimental Biol. 2000; - V. 203. — P. 2331−2339.

343. Hohfeld J. From the cradle to the grave: molecular chaperones that may choose between folding and degradation / J. Hohfeld, D. M. Cyr, C. Patterson // EMBO Rep. -200L V. 2:-L10iP: 885−890.

344. Horst M. Import into and Degradation of Cytosolic Proteins by Isolated Yeast Vacuoles'/M. Horst, E. C. Knecht, P. V. Schu // Mol Biol Cell. -1999. V.10. — I. 9. — P. 2879−2889.

345. Hunt D. M. Spectral tuning and molecular evolution of rod visual pigments in the species flock of cottoid lish in Lake Baikal / D. M. Hunt, J. Fitzgibbon, S. J. Slobodyanyuk et al. // Vision Research. 1996. — V 36. P. — 1217−1224.

346. Hutchinson KA. Proof that hsp70 is required for assembly of the gluco-corticoid receptor into a heterocomplex with hsp90 / KA. Hutchinson, K.D. Dittmar, M.J. Czar et al. // J. Biol. Chem. 1994. V. 269. P. 5043−5049.

347. Jackson S.A. Ontogeny of low molecular weight stress protein p26 during early development of the brine shrimp, Artemia franciscana*/ S.A. Jackson, J.S. Clegg // J. Exp. Biol. 1996. -V. 200. — P1467−475.

348. Jamieson D. Oxygen toxicity and reactive oxygen metabolites in mammals / D. Jamieson // Free Radic. Biol. Med. 1989. — V.7. — P.87−108.

349. Juel C. Intracellular pH recovery and lactate efflux in mouse soleus muscles stimulated in vitro: the involvement of sodium/proton exchange and a lactatecarrier/ C. Juel // Acta Physiol. Scand. 1988. — V. 132. — P. 363−371.

350. Kamaltynov R. M. The consortium of the sponge Lubomirskia baikalensis in Lake Baikal, East Siberia/ R. M. Kamaltynov, V. Chtrnykh, Z. Slugina et al. // Hydrobiologia. 1993. -V. 271. -P. 179 — 189.

351. Kamaltynov R. M. On the evolution of Lake Baikal amphipods / R. M. Kamaltynov // Crustaceana. 1999. — V. 72 — P. 921−931.

352. Kappe G. Characterization of two novel human small heat shock proteins: protein kinase-related HspB8 and testis-specific HspB9 / G. Kappe, P. Verschuure, R. L. A. Philipsen et al. // Biochimica et biophysica acta. 2001. — V. 1520. — 1.1. — P. 1−6.

353. Karaman G.S. New genus of family Gammaridae from BaikalLake, Abludogammarus, n.gen. with reference to genus Ommatogammarus Stebb.(Contribution to the knowledge of the Amphipoda 108) / G.S. Karaman. -npMpofl.Hayica, 1980. P. 149−169:

354. Karla J. Effect of oxygen free radicals, hypoxia and pH on the release of liver lysosomal enzymes / J. Karla, A.K. Chaudhary, K.L. Massey et al. // Mol. Cell. Biochem. 1990. — V. 94. — P. 1−8.

355. Kasting J. F. Earth’s early atmosphere / J. F. Kasting // Science. 1993.-V. 259: — p. 920−926. :

356. Kelly S.A. Oxidative stress in toxicology: Established mammalian and emerging model systems / S. A. Kelly, C. M. Havrilla, T. C. Brady et al. // Environmental Health Perspectives. 1998. — V. 106. -1. 7. — P. 375−384.

357. Keyer K., Imlay J.A. Superoxide accelerates DNA damage by elevating free-iron levels / Keyer K., Imlay J.A. // Proc. Natl. Acad. Sei. USA.-1996.-V. 93.-P. 1 363 513 640.

358. Khan M. A. Q. Effect of temperature on heavy metal toxicity to juvenile crayfish, Orconectes immunis (Hagen) / M. A. Q. Khan, S. A. Ahmed, B. Catalin et al. // Environmental Toxicology. 2006. — V. 21. -1. 5. P. 513−520.

359. Kim K.T. Oxidative stress responses of Daphnia magna exposed to Ti02 nanoparticles according to size fraction / K. T. Kim, S. J. Klaine, J. Cho et al. // Science of the Total Environment. 2010. — V. 408. -1. 10. P. 2268−2272.360.

360. Kir M. Effects oftemperature onacute toxicity oiammonisLtoPenaeussemisulcatus juveniles / Mi Kir,-Mi Kumlu, OT. Eroldoan // Aquaculture. 20 041 — V: 241. — I- 1−4.-P. 479−489.

361. Kirkman H.N. Mechanisms, of protection of catalase by NADPH. Kinetics and stoichiometry / H.N. Kirkman, M. Rolfo, A.M. Ferraris et al. // J. Biol, Chem- 1999: -V. 274.-P. 13 908−13 914.

362. Kiryu C. Physiological production of singlet molecular oxygen in the myeloperoxidase-H^-chloride system / C. Kiryu, M. Makiuchi, J. Miyazaki et al.// FEBS Lett. 1999. — V. 443 — P. 154−158.

363. Klemenz R. Alpha B-crystallin is a small heat shock protein / R. Klemenz, E. Frohli, R.H. Steiger // PNAS. 1991. V. 88. — N. 9. — P. 3652−3656.

364. Koban M. Molecular adaptation to environmental temperature: heat-shock response of the eurythermal teleost Fundulus heteroclitus / M. Koban, A. A. Yup, L. B. Agellon et al. // Mol. Mar. Biol: Biotechnol. 1991. — V. 1. — P. 1−17.

365. Kobayashi T. Novel insights into current models of NADPH oxidase regulation, assembly and localization in human polymorphonuclear leukocytes / T. Kobayashi, H. Seguchi // Histol. Histopahtol.- 1999.-V. 14. P. 1295−1308;

366. Koehn R.K. Towards a physiological and genetically understanding of the stress response / R.K. Koehn, B.L. Bayne7/ Biol. J: Linn. Soc. 1989. — V. 37. — P. 151 171.

367. Kozhov M. M. Lake Baikal and its Life / M. M. Kozhov. Backhuys Publishers, The Hague, 1963.

368. Kozhova O.M. Lake Baikal: Evolution and Biodiversity / O. M. Kozhova L. R. Izmesteva. The Netherlands: Backhuys Publishers. Leiden. '- 1998. — 447 p.

369. Macan T. T. Notes on Garnmaruspulex in the English Lake District/ Macan T. T., Mackereth J. C. // Hydrobiologia. 1957. — V. 9. — P. 1−12.

370. MacRae T.H. Structure and function of small heat shock/alpha-crystallin proteins: established concepts and emerging ideas / T.H. MacRae // Cell. Mol. Life Sci. 2000. -V. 57.-I. 6.-P. 899−913.

371. Mark F.C. Oxygen-limited thermal tolerance in Antarctic fish investigated by MRI and 31P-MRS/F.C. Mark, C. Bock, H.O. Portner // Am J Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 2002. — V. 283. -1. 5. — P. R1254-R1262.

372. Marshall J.S. Identification of heat shock protein hsp70 homologues in chloroplasts / J.S. Marshall, A. E. DeRocher, K. Keegstra // PNAS.- 1990. V. 87. — I. 1. — P. 374 378.

373. Mason C.F. Biology of Freshwater Pollution / C.F. Mason. Longman, London, 1981.

374. Mats V.D. The structure and development of the Baikal rift depression/ V.D. Mats // Earth Sci. Rev. 1993. — V. 34. — P. 81−118.

375. McCauley N. Fish //J. Res. Bd. Can. -1977. -V.34.-P.749−752.

376. McCord J.M. Superoxide inactivates creatine phosphokinase during reperfusion of ischemic heart/ J.M. McCord, W.J. Russell // Oxy-Radicals in Molecular Biology and Pathology. — 1989. — P. 715−722.

377. McDonald R.J. Hydrogen peroxide induces DNAsingle strand breaks in respiratory epithelial cells/ R.J. McDonald, L.C. Pan, J.A. StGeorge et al.// Inflamattion. 1993. V. 17.-P. 715−722.

378. McKenna S.M. Bacterial killing by phagocytes: Potential role (s) of hypochlorous acid and hydrogen peroxide in protein turnover, DNA synthesis, and RNA synthesis/ S.M. McKenna, K.I.A. Davies // Oxygen Radicals in Biology and Medicine. 1988. P.829−837.

379. McNeil D. G. Behavioural responses of a south-east Australian floodplain fish community to gradual hypoxia/ D. G. McNeil, G. P. Closs// Freshwater Biology. -2007. V. 52. -1. 3. — P. 412−420.

380. Miller D. The heat shock response of the cryptobiotic brine shrimp Artemia I. Thermotolerance / D. Miller, A. G. McLennan // Thermal Biol. 1988. — V. 13. — P. 119−123.

381. Mitchell-Olds T. Chaperones as buffering agents? / T. Mitchell-Olds, C. A. Knight // Science. 2002. — V. 296. — P. 2348−2349.

382. Morimoto R.I. Cells in stress: transcriptional activation of heat shock genes/ R.I. Morimoto // Science. 1993. — V. 259. — P. 1409−1410.

383. Morimoto R.I. Stress-inducible responses and heat shock proteins: new pharmacologic targets for cytoprotection / R.I. Morimoto, G. Santoro // Nature Biotechi 1998. — V. 16. — P.833−838I.

384. Mosser D. D. Temperature ranges over which rainbow trout fibroblasts survive and synthesize heat-shock proteins / D. D. Mosser, J. J. Heikkila, N. C. Bols // Journal of Cellular Physiology. 1987. — V. 128. — I. 3. — P. 432 — 440.

385. Mosser D. D. Relationship between heat-shock protein synthesis and thermotolerance in rainbow trout fibroblasts / D. D. Mosser, N. C. Bols // Journal of Comparative Physiology, Part B. 1988. — V. 158. — P. 457−467.

386. Mueller W. E. G. Cold stress defense in the freshwater sponge Lubomirskia baicalensis: Role of okadaic acid produced by symbiotic dinoflagellates / W. E. G. Mueller, S. I. Belikov, O. V. Kaluzhnaya et al. / FEBS Journal. 2007. -V. 274.-I. 1. — P. 23−36.

387. Nadeau D Evaluation for Hsp70 as a biomarker of effect of pollutants on the earthworm Lumbricus terrestris/ D. Nadeau, I. Plante, G. Morrow et al.// Cell Stress Chaperones. 2001. — V. 6. -1. 2. — P. 153−163.

388. Naohiko I. Induction of 72-kDa inducible heat shock protein (HSP72) in cultured rat astrocytes after energy detection/ I. Naohiko, O. Satoshi, M. Iusuke et al. // Neirochem. 1998. -V. 12. -P. 550−557.

389. Noronha-Dutra A.A. Reaction of nitric oxide with hydrogen peroxide as a model' for nitric oxide-mediated killing / A.A. Noronha-Dutra, M.M. Epperlein, N. Woolf // FEBS Lett.- 1993. V. 321. P. 59−62.

390. Nover L. Heat Shock Response / L. Nover. CRC Press, Boca Raton, FL, 1991. — 511 p.

391. Ohkado A. Buffering capacity of histidine in cardioplegia analyzed by myocardial production of lactate and alanine / A. Ohkado, H. Cao-Danh, K. Sommers at al. // Kuobu Geka. 1993. — V. 46, -1. 12. — P. 1021 — 1024.

392. Osterauer R. Temperature-dependent effects of the pesticides thiacloprid and diazinon on the embryonic development of zebrafish (Danio rerio)/ R. Osterauer, H. R. Kohler// Aquatic Toxicology. 2008. — V. 86. -1. 4. — P. 485−494.

393. Ozturk O. Age-related changes of antioxidant enzyme activities, glutathione status and lipid peroxidation in rat erythrocytes after heat stress / O. Ozturk, S. Gumuslu // Life Sci.-2004.-V. 75.-I. 13.-P. 1551−1565.

394. Panov V.E. Invasion History, Biology and Impacts of the Baikalian Amphipod Gmelinoides fasciatus (Stebbing). / V. E. Panov, N. A. Berezina // Invasive Aquatic Species of Europe Dordrecht: Kluwer. 2002. — P. 96−103.

395. Parsons P. A. Evolutionary rates under environmental stress/ P.A. Parsons. -Evolutionary Biology. N.Y.: Plenum Press. 1987. — V. 21. — P. 311−347.

396. Parsons P. A. Stress-resistene genotypes, metabolic efficiency andinterpreting evolutionary change / P. A. Parsons I I Environmental stress, adaptation and evolution: — 1997. P. 291−306.

397. Paul A. Photogeneration of singlet oxygen by humic substances: comparison of humic substances of aquatic and terrestrial origin / A. Paul, S. Hackbarth, R. E>. Vogt et al // Photoch Photobiol Sci: 2004. — V. 3. -P. 273−280.

398. Pelham H. R. The retention signal for soluble proteins of the endoplasmic reticulum / H. R. Pelham // Trends Biochem. Sci. 1990. — V. 15. — I. 12. — P. 483−486.

399. Phillips G. J. Heat-shock proteins-DnaK and GroEL facilitate export of LacZ hybrid proteins in E. coli / G. J. Phillips, T. J. Silhavy // Nature. 1990. — V. 344. ^ P. 882 884.

400. Pigeolet E. Glitation peroxidaze, superoxide dismutase, and cataltze inactivation by peroxides and oxygen derived free radicals/ E. Pigeolet, P. Corbisier, A. Houbion et al.// Mech. Age Dev.-1990. V. 51. — P.283−297.

401. Pinto E. Heavy metal-induced oxidative stress in algae / E. Pinto, T.C.S. Sigaud-Kutner, M.A.S. Leitao et al. // Journal of Phycology. 2003. — V. 39. -1. 6. — P. 10 081 018.

402. Place S. Constitutive expression of a stress-inducible heat shock protein gene, hsp70, in phylogenetically distant Antarctic fish/ S. Place, G. Hofmann// Polar Biology. -2005. V. 28.-P. 261−167.

403. Polla B. S. Mitochondria are selective-targets for, the protective effects of heat shock against oxidative injury / BS. Polla, S. Kantengwa, D: Francis et al. // PNAS: X. 1996: — V. 93. — I: 13. -P: 6458−6463. — ;

404. Portner Hi O. Oxygen limited thermaltolerance ins fish?: Answers? obtained* by nuclearmagnetic resonance techniques/ H.O. Portner, F.C. Mark, C. Bock // Respiratory Physiology & Neurobiology. 2004. — V. 141. — 1. 3. -P. 243−260.

405. Portner H.O. Climate change affects marine: fishes through the oxygen limitation of thermal tolerance/ H. O. Portner, R: Knust // Science. 2007; - V. 315. — P. 95−97.

406. Prodczaey J.J. Reduction of iodonitrotetrazolium violet by superoxide radicals/ J. J. Prodczaey, R. Wei//Biqcherm Biophis. Res. Comm. 1988. — V.150. — P. 1294−1301.

407. Puppo A. Formation of hydrbxylradicalstfrom hydrogen peroxide in the presence of ironIs: haemoglobin^ a biologicalFenton reagent? / A. Puppo, B. Halliwell II Biochem.J. 1988. — V. 249. — P.185−190.

408. Puppo A. Formation of hydroxyl radicals in biological systems. Does myoglobin stimulate hydroxyl radical formation from hydrogen peroxide? / A. Puppo, B. Halliwell // Free Radic Res. Commum. 1988. -V.4. — P. 3415−422.

409. Queltsch C. Hsp90 as a capacitor of phenotypic variation / G. Queltsch, T. A. Sangster, S. Lindquist // Nature. 2002: — I. 417. — P. 618 -624.

410. Raasen J. E. Hypoxic avoidance behaviour in cod (Gadus morhua L.): The effect of temperature and haemoglobin genotype / J. E. Raasen, T. Nilsen, J. J. Meager et al. // Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. 2008. V. 358.1. 1. P. 70−77.

411. Radman M. Evolution-driving genes / M. Radman, F. Taddei, I. Matic // Research in Microbiology. 2000. — V. 151. — I. 2. — P. 91−95.

412. Rassow J. Protein folding and import into organelles / J. Rassow // Post-translational Processing: A Practical Approach. 1999. — P. 43−94.

413. Ratner V.F. Induction of mobile genetic element Dm412 transpositions in the Drosophila genome by heat shock treatment / V.F. Ratner, S. A. Zabanov. O. V. Kolesnikova et al.> // Proc. Natl Acad. Sei. USA. 1992. — V. 89. — P. 5650−5654.

414. Richards D.M.C. Membrane proteins are critical targets in free radical mediated cytolysis / D. M. C. Richards, R. T. Dean, W. Jessup // Biochim. Biophys. Acta. -1988.-V. 946.-P. 281−288.

415. Richter C. Role of mitochondrial DNA modifications in degenerative diseases and aging / C. Richter // Current Topics in Bioenergetics. San’Diego: Acad.Press. -1994.-V.- 17. P. 1−19.

416. Ritossa F. A new puffing pattern induced by heat shock and DNP in Drosophila / F. Ritossa // Experientia. 1962. — V. 18. — P. 571−582.

417. Roast S. D. Behavioural responses of estuarine mysids to hypoxia and disruption by cadmium / S. D. Roast, J. Widdows, M. B. Jones // Marine Environmental Research. 2002. -V. 54.1. 3−5. P. 319−323.

418. Robert J. Evolution of heat shock protein and immunity / J. Robert // Developmental and Comparative Immunology. 2003. — V. 27. — P. 449−464.

419. Roberts D.A. Heat-shock protein expression in Mytilus californianus: acclimatization (seasonal and tidal-height comparisons) and acclimation effects / D. A. Roberts, G. E. Hofmann, G. N. Somero // Biol. Bull. 1997. — V. 192. — P. 309 — 320.

420. Roberts D. A. Field and laboratory simulations of storm water pulses: Behavioural avoidance by marine epifauna / D. A. Roberts, E. L. Johnston, S. Muller et al. // Environmental Pollution. 2008. — V. 152. -1. 1. — P. 153−162.

421. Roche Ch. H. / Choi H. Roche, T. Caquet // Environmental Toxicology and Chemistry. 2000. — V. 19. -1. 2. — P. 495−500.

422. Roots R. Estimation of life times and’diffusion distances «of radicals involved in X-ray-induced DNA strand breaks or killing of mammalian cells / R. Roots', S. Okada // Radiat. Res.- 1975;V. 64. P. 306−320.

423. Roth D.A. Lactate transport is mediated by a membrane-bound carrier in rat skeletal muscle sarcolemmal. vesicles/ Roth D.A., Brooks G.A. // Archives of Biochemistry and Biophysics.-1990. V. 279. — P. 277−285.

424. Rothschild L. Life in extreme environments / Rothschild L.J., Mancinelli R.L. // Nature. -2001. V. 409. P — 1092−1101.

425. Rudolph, K. Die Flohkrebsfauna (Crustacea, Amphipoda) der Lender Brandenburg und Berlin / K. Rudolph // Natursch Landschaftspfl Brandenburg. 2001. -V. 10. -P. 166−172.

426. Rutherford S. Hsp90 as a capacitor for morphological evolution / S. Rutherford, S. Lindquist // Nature. 1998. — V. 396. — N. 6709. — P. 336 — 342.

427. Rutherford S. L. Protein folding and the regulation of signaling pathways / S. L. Rutherford, C. S. Zuker// Cell. 1994. — V. 79. — N. 7. — P. 1129−1132.

428. Sabo M. J. Hydrology and aquatic habitat characteristics of a riverine swamp: II. Hydrology and the occurrence of chronic hypoxia / M. J. Sabo, C. F. Bryan, W. E. Kelso et al. // River Research and Applications. 1999. — V. 15. P. 525−542.

429. Samokyszyn V.M. Release of iron from ferritin and its role on oxygen radicals toxicities / V.M. Samokyszyn^ C.E. Thomas, D.W. Reif et al. // Drug Metab. Rev. -1988.-V. 19.-P. 283−303.

430. Sanders B. M. Characterization of stress protein response in two species of Collisella limpets with different temperature tolerances / B. M. Sanders, C. Hope, V. M. Pascoe et al. //Physiol-Zool. 1991. V. 64. P. 1471−1489i.

431. Sanders B. M. The role of the stress proteins response in physiological adaptation of marine mollusks / B. M. Sanders//MarineEnvironrnentalResearch 1988. — I. 1−4. — V.24. — P. 207−210.

432. Sanders B.M. Stress proteinsin aquatic organisms: an environmental perspective / B.M. Sanders // Critical Reviews inToxicology. 1993. — V. 23. -1. 1. — P. 49−75.

433. Sandstrom P.A. Lipid hydroperoxides induce apoptosis in T cells displaying a HIVassociated glutathione peroxidase deficiency / P.A. Sandstrom, P.W. Tebbey, S.V. Cleave et al. // J. Biol. Chem.- 1994.-V. 269. P. 798801.

434. Schlenk D. Effect of zinc and cadmium treatment on hydrogen peroxide-induced mortality and expression of glutathione and metallothionein in a teleost hepatoma cell line / D. Schlenk, C.D. Rice // Aquatic Toxicology.-1998. V. 43.1. 2−3. P. 121−129.

435. Schroeder, H. C. Stress response in Baikalian sponges exposed to pollutants / H. C. Schroeder, S. M. Efremova, B. A. Margulis et al. / Hydrobiologia 2006 — V. 568 — S. 1 — P. 277−287.

436. Shang E. H. H. Aquatic hypoxia is a teratogen and affects fish embryonic development / E. H. H. Shang, R. S. S. Wu // Environmental Science and Technology. 2004. V. 38. -I. 18. — P. 4763−4767.

437. Sherbakov D. Y. Molecular phylogenetic studies on the origin of biodiversity in Lake Baikal / Sherbakov D. // Trends in Ecology & Evolution. V 14. -1 3. — P. 92−95.

438. Shingu M. Chemotactic activity generated in human serum from the fifth component of complement by hydrogen peroxide / M. Shingu, M. Nobunga // J. Pathol. 1984. -V. 117. — P. 201−206.

439. Shingu. M. Activation of complement in normal serum by hydrogen peroxide and hydrogen peroxide-related oxygen radicals produced by activated neutrophils / M. Shingu, S. Nonaka, H. Nishimukai et.al. // Clin. Experim. Immunol. 1992. — V. 90. -P. 72−78.

440. Shrode B., Zerba K. E., Stephens J. S.// Trans. Amer. Fish. Soc. 1982. -V. 11. — P. 45−51.

441. Shrode J. B. Ecological significance of temperature preference of some inshore California fishes. / J. B. Shrode, K. E. Zerba, J. S. Stephens // Trans. Amer. Fish. Soc. -1982. V.-11.-P. 45−51.

442. Shugart L.R. DNA damage as biomarker of exposure / L. R. Shugart // Ecotoxicology. 2000. — V.9. — P.329−340.

443. Siemien M. J. Temperature preference and tolerance of the spotted tilapia and Rio Grande cichlid/ M. J. Siemien, J. R. Stauffer // Arch. Hydrobiol. 1989. — V. 115.-I. 2.-P. 287−303.

444. Siemien M. J, Stauffer J.R. Temperature preference and tolerance of the spotted tilapia and Rio Grande cichlid // Arch. Hydrobiol. 1989. — V. 115. -1. 2. — P. 287 303.

445. Sies H. Oxidative stress from basic research to clinical application / H. Sies // Am*. J. Med.-1991. V. 9h — S. 3 C.- P. S 31-S 38.

446. Simonoff M. Antioxidant status (selenium, vitamin A and vitamin E) and aging / M. Simonoff, C. Sergeant, N. Gamier et al. // Free Radicals, and AgingBasel: Birkhauser Verlag.-1992; P. 368−397.

447. Skowyra D. The E. coli dnaK gene product, the hsp70 homolog, can reactivate heat-inactivated RNA polymerase in an ATP hydrolysis-dependent manner / D. Skowyra, C. Georgopoulos, M. Zylicz // Cell. 1990. — V. 62. — I. 5. — P. 939−944.

448. Slaninov A Oxidative stress in fish induced by pesticides / A. Slaninov, M. Smutna, H. Modra et al. //Neuroendocrinology Letters 30 (SUPPL.l). -2009. P. 2−12.

449. Snimschikova L. N. Oligochaete fauna of Lake Baikal / L. N. Snimschikova, T. W. Akinshina // Hydrobiologia. 1994. — V. 278. — I. 1−3. — P. 27−34.

450. Sohal R.S. Agening, cytochrome oxidaze activity, and hydrogen peroxide release by mitochondria / R. S. Sohal // Free Radic. Biol. Med. 1993. — V.14. P.583−588.

451. Song M. Y. Osmotic effects as a factor modifying insecticide toxicity on Aedes and Artemia / M. Y. Song, J. J. Brown // Ecotoxicol. Environ. Saf. 1998. — V. 141. — P. 195−202.

452. SouzaM. S. Antioxidant, defences in planktonic crustaceans exposed to different underwater light irradiances in Andean lakes / M. S. Souza, B. E. Modenutti • E G. Balseiro // Water, Air, and Soil Pollution. 2007. — V. 183. -1. 1−4. — P. 49−57. •.

453. Specs J. L. Molt cycle-dependent molecular chaperone and polyubiquitin gene expression in lobster / Ji L. Spees,. S. A. Ghang, D. L. Mykles et al: // Cell Stress & Chaperones. 2003. V. 8. I. 3. — P. 258 — 264.

454. Speit G. Oxygenated water does not. induce genotoxic effects in the comet assay / G. Speit, P. Schutz, K. Trenz, A. Rothfuss // Toxicology Letters. 2002. — V. 133. — P. 203 -210.

455. Stacey G. Oxygen paradox / G. Stacey // Trends in-Microbiology. 1998. — V.6. -1. 11.-P. 434.

456. Steinberg, C. E. W. Ecology of Humic Substances in Freshwaters Determinants from Geochemistry to Ecological Niches / C.E.W. Steinberg // Heidelberg: Springer, Heidelberg. — 2003. — P. 440.

457. Steinberg C. Dissolved humic substances ecological driving forces from the individual to the ecosystem level? (Review) / C. Steinberg, S. Kamara, V. Prokhotskaya, Timofeyev et’al. // Freshwater Biology. — 2006. — V.51. — P. 11 891 210. .

458. Steinberg C. E. W. Dissolved Humic Substances. Part 2: Interactions with organisms/ C.E.W. Steinberg, T. Meinelt, M.A. Timofeyev et al. // Env. Sei. Pollut. Res. 2008. — V, 15. -1. 2. — P. 128−135.

459. Steinberg C. E. W. Dissolved Humic Substances: Interactions with Organisms / C. E. W. Steinberg, M. A. Timofeyev, R. Menzel // Encyclopedia of Inland Waters. 2009. -V. 2.-P. 747−753.

460. Stephen J. R. Molecular responses of Prunus avium (wild-cherry) embryonic axes to temperatures affecting dormancy / J. R. Stephen, K. C. Dent, W. E. Finch-Savage // New Phytologist. 2004. — V. — 161. — I. 2. — P. 401−413.

461. Storey K.B. Intermediary metabolism during low temperature acclimation in the overwintering gall fly larva, Eurosta solidaginis / K.B. Storey, J.G. Baust, J.M. Storey // J. Comp. Physiol. 1981. — V. 144. — P. 183−190.

462. Sundqvist T. Bovine aortic endothelial cells release hydrogen peroxide / T. Sundqvist // J. Cell Physiol. 1991. — V. 148. — P. 152−156.

463. Suzuki Y.J. Inhibition of Ca2+ ATPase of vascular smooth muscle sarcoplasmic reticulum by reactive oxygen intermediates / Y. J. Suzuki, G. D. Ford // Am J. Physyiol. -1991. — V. 261. — P. H 568-H 574.

464. Szaniawska A. The invasive amphipod Gammarus tigrinus Sexton, 1939 in Puck Bay / Szaniawska A., Lapucki T., Normant M. // Oceanologia. 2003. — V. 45. — № 3. -P. 507−510.

465. Taddei F. Genetic variability and adaptation to stress / F. Taddei, M. Vulic, M. Radman et al. // Environmental stress, adaptation and evolution. Basel: Boston: Berlin: Birkhauser. — 1997. — P. 271 — 290.

466. Takahama U. Hydrogen peroxide-dependent generation of singlet molecular oxygen by human saliva: Its detection by chemiluminescence from a Cypridina luciferin analog / U. Takahama // Photochem. Photo-biol. 1993. V. 57. P. 376−379.

467. Takhteev V. V. Effect of artificial illuminationon? the intensity of nocturnal vertical migrationsiofamphipods imEake Baikalt/ V. V.Takhteev., A. Mi LevashkevicKE. B. Govorukhina:. Russian Journal of Ecology. 2004: — V. 35. L 6. — P. 421−423.

468. Tayabali A. F. Cell Integrity Markers for in Vitro Evaluation of Cytotoxic Responses toi Bacteria-Containing Commercial! Insecticides / A-: F. Tayabali, V. L. Seligy•// Ecotoxicology and Environmental Safety 1997. — V. 37. -1. 2: — P. 152−162.

469. Timm V. Eesti Teaduste / V. TimmT. Timm/// Akadeemia Toimetised Bioloogia. -1993.-V. 42.-I. 2.-P. 144−153.

470. Timofeyev M.A. On the role of adaptive abilities in distribution of endemic amphipods from Lake Baikal/ M.A. Timofeyev // Verhandlungen Internationale Vereinigung Limnologie. 2002. — V. 28. — P.1613−1615.

471. Timofeyev M. Impact of natural organic matter (NOM) on freshwater amphipods) /M. Timofeyev, C. Wiegand, B.K.Burnison, et al// The Science of the Total Environment. 2004.-V. 319. — I. 1−3.-P.115−121.

472. Timofeyev M. Antioxidant enzyme activity in endemic Baikalean versus Palaearctic amphipods: Tagmaand size-related changes/ M. Timofeyev // Comparative biochemistry and physiology Part B. 2006. — V. 143. -1. 3. — P. 302−308.378.

473. Timofeyev M.A. Antioxidant response to natural" organic matter (NOM) exposure in three Baikalean amphipod species from" contrasting* habitats/ M.A. Timofeyev, C. Steinberg // Comparative biochemistry and physiology, Part B. 2006. — V. 145. — P. 197−203.

474. Timofeyev M. Different preference reactions of three Lake Baikal endemic amphipods to temperature and oxygen are correlated with symbiotic life / M. Timofeyev, Z. Shatilina // Crustaceana. 2007. — V. 80. -1. 2. — P. 129−138.

475. Timofeyev M.A. Evaluation of biochemical responses in Palearctic and Lake Baikal endemic amphipod species exposed to CdC12 / M.A. Timofeyev, Z. M. Shatilina, D.S. Bedulina et al.// Ecotoxicol. Environm. Safety. 2008 — V. 70. — I. 1. — P. 99 105.

476. Timofeyev M. Thermal stress defense in freshwater amphipods from contrastinghabitats with emphasis on small heat shock proteins (sHSPs)/ M. Timofeyev, Z.M.379.

477. Shatilina, M.V. Protopopova et al.// Journal of Thermal Biology. 2009a. — V. 34. -P. 281−285.

478. Timofeyev M. Can acclimation of amphipods change their antioxidative response? / M. Timofeyev, M. Protopopova, V. Pavlichenko et al. // Aquatic Ecology. 2009b. -V. 43. — P. 1041−1045.

479. Tissieres A. Protein synthesis in salivary glands of Drosophila melanogaster: Relation to chromosome puffs / A. Tissieres, H. K. Mitchell, U. M. Tracy // Journal of molecular biology.-1974. V.85. I. 3. — P. 389−398.

480. Torielli M.V. Free radicals in inflamattoru disease/M.V. Torielli, M.U. Dianzani // Free Radicals in Molecular Biology, Aging, and Disease. N.Y.: Raven Press, 1984.-P.355−379.

481. Vanasbeck B. S. Involvement of oxygen radicals and blood cells in the pathogenesis of ARDS by endotoxin and hyperoxia / B.S. Vanasbeck // Appl. Cardiopulm. Pathophysiol. 1991.-V. 4. — P. 127−138.

482. Vanderkooi J. M. Oxygen in mammalian tissue: methods of measurement and affinities of various reactions / J.M. Vanderkooi, M. Erecinska, I. A Silver // Am. J. Physiol. -1991. -V. 260. P. C1131-C1150.

483. Vega M.P. Oxidative stress and defence mechanisms of the freshwater cladoceran Daphnia longispina exposed to UV radiation / M. P. Vega, R. A. Pizarro // Journal of Photochemistry and Photobiology B-Biology. 2000. -V. 54. -1. 2−3. — P. 121−125.

484. Verma A. Carbon monoxide: a putative neural messenger/A. Verma, D. J. Hirsch, C. E. Glatt et al. // Science. 1993. — V. 259. — P.551−560.

485. Wang K. Alpha-crystallin can act as a chaperone under conditions of oxidative stress / K. Wang, A. Spector // Investigative Ophthalmology & Visual Science. 1995. -V.36.-P. 311−321. '.

486. Waiters J. V. Behavioral responses of mosshead and woolly sculpins to increasing environmental hypoxia / J.V.Waiters, J. J Cech Jr. // Copeia. 2003. — № 2. — P. 397. 401.

487. Weisfeldt M. L. Oxygen-derived free radicals and myocardial ischemic injury / M. L. Weisfeldt, J. L. Zweier, J. T. Flaherty // Health dis. 1988. — № 3. — P.60−72.

488. Weiss S.J. The interplay of oxidants and proteinases in neutrophil-mediated tissue damage / S. J. Weiss // J. Cell. Biochem. 1991. — S. 5c. — P. 210.

489. Weiss S. J: The role of superoxide in the destruction of erythrocyte targets by human neutrophils / S. J. Weiss // L Biol. Chem. 1980. -V. 255. -P. 9912−9917.

490. Weiss S.J. Tissue destruction by neutrophils / S.J.Weiss // New England Journal" of Medicine. 1989. — V. 320: — P. 365 — 376:

491. Wendel A. Enzymes acting against reactive oxygen / A. Wendel // Enzymes Tools and Targets. — Basel: Kar-ger. -1988. — P. 161−167.

492. Werner I. Stress proteins HSP60 and HSP70 in three species of amphipods exposed to cadmium, diazinon, dieldrin and fluoranthene / I. Werner, R. Nagel // Envir. Toxicol. And Chem- 1997. V.16. № 11. -P.2393−2403.

493. Wiasner R. Pathways of succinate formation and their, contribution to improvement of cardiac function in the hypoxic rat heart / R. Wiasner, P. Rosen, M. Grieshaber // Biochem Med Metab Biol. 1988. — V. 40. -1. 1. — P. 19 — 34.

494. Wiegant F. Stressor-Specific Induction of Heat-Shock Proteins in Rat Hepatoma-Cells / F. Wiegant, A. C. Souren, J. E. M. VanRijn at al*. // Toxicology. 1994. — V. 94.-P. 143−159.

495. Wiens M. Axial (Apical-Basal) Expression of Pro-apoptotic and Pro-survival Genes in the Lake Baikal Demosponge Lubomirskia baicalensis / M. Wiens, S. I. Belikov, O. V. Kaluzhnaya at al./ DNA and Cell Biology 2006. — V. 25 -1. 3 — P. 152−164.

496. Wijnhoven S. Exotic and indigenous freshwater gammarid species: physiological tolerance to water temperature in relation to ionic content of the water / S.

497. Wijnhoven, M. C. Van Riel, G. Van der Velde // Aquatic ecology. 2003. — V. 37. -P. 151.-158.

498. Willsie J. K. Nuclear* p26- a small heat shock/ -crystallin protein, and its relationship to stress resistance inArtemia franciscana embryos / J1 K. Willsie, J. S. Clegg // The Journal of Experimental Biology. 2001. — V. 204. — P. 2339−2350.

499. Willson R.L. Organic peroxy free radicals as ultimate agents in oxygen toxicity /R.L. Willson// Oxidative Stress-L.: Acad.Press. -1985. -P. 41−72.

500. Wilson J. Oxidants, ATP depletion, and endothelial permeability to macromolecules /J. Wilson, M. Winter, D.M. Shasby // Blood. -1990. -V.76. -P.2578−2582.

501. Winston G.W. Oxidants and antioxidants in aquatic animals / G.W. Winston // Comp. Biochem. Physiol.-1991. C. 1991.-V. 100.-N. 1−2.-P. 173−176.

502. Wright A. Singlet oxygen-mediated protein oxidation: evidence for the formation of reactive side chain peroxides on tyrosine residues / A. Wright, W. A. Bubb, C. L. Hawkins at al.// Photochem. Photobiol. 2002. — V. 76. — P. 35−46.

503. Wu R. S. S. Tolerance to, and avoidance of, hypoxia by the penaeid shrimp (Metapenaeus ensis). Environmental Pollution / R. S. S. Wu, P. K. S. Lam, K. L. Wan // 2002. -V. 118. — № 3. -P. 351−355.

504. Wunterbourn C. C. Mechanism of hypochlorite-mediated inactivation of proteinase inhibition by alpha 2-macroglobulin / C. C. Wunterbourn, S. V. Pizzp // Biochemistry. -1999. -V. 38. -P. 13 983−13 990.

505. Yu B.P. Cellular defenses against damage from reactive oxygen species /B. P. Yu // Physiol. Rev. 1994. — V. 74. -P. — 139−162.

506. Zagarese H.E. Impact of solar UV radiation on Zooplankton and fish /H. E. Zagarese, H. Willekens, S. Chamnongpol at al. // The effects of UV radiation in the marine environment. 2000. — V. 10. — P. 279−309.

507. Zhu Y. Transcriptional elongation factor P-TEFB is required for HIV-1 Tat transactivation in vitro/ Y. Zhu, T. Pe’ery ., J. Peng et al. // Genes Dev. 1997. -V. 11.-P. 2622−2632.

Показать весь текст
Заполнить форму текущей работой