Изучение иммуноцитохимическими методами локализации цитокинин-связывающего белка 70 кД в тканях и клетках этиолированных проростков кукурузы
Диссертация
Передача гормонального сигнала в растении является одной из основных областей исследования современной физиологии растений. В настоящее время большое внимание уделяется изучению путей рецепции и трансдукции цитокининового сигнала в растительной клетке. На сегодняшний день установлена и продолжает изучаться система цитокининовой регуляции, включающая мембранные сенсорные гистидин-киназы CRE1… Читать ещё >
Содержание
- СПИСОК УПОТРЕБЛЯЕМЫХ СОКРАЩЕНИЙ
- 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
- 1. 1. Передача гормонального сигнала в растениях
- 1. 2. Передача цитокининового сигнала в растении
- 1. 2. 1. Физиологические функции цитокининов
- 1. 2. 2. Биосинтез цитокининов
- 1. 2. 3. Механизм трансдукции цитокининового сигнала
- 1. 2. 3. 1. Мембранные рецепторы цитокининов гибридные гистидиновые протеинкиназы
- 1. 2. 3. 2. Трансдукция сигнала внутри клетки: фосфотрансмиттеры
- 1. 2. 3. 3. Гены первичного ответа на цитокинин и их продукты — регуляторы ответа
- 1. 2. 3. 4. Передача цитокининового сигнала через мембранный рецептор, общая схема
- 1. 2. 3. 5. Цитоплазматическиерецепторы цитокинина
- 2. 1. Материалы и методы исследования
- 2. 1. 1. Объекты исследования
- 2. 1. 2. Выделение растворимых растительных белков для подбора условий иммуноцитохимического анализа ЦСБ
- 2. 1. 3. Выделение ЦСБ-70 для анализа специфичности моноклональных антител разных групп
- 2. 1. 4. Измерение концентрации белка
- 2. 1. 5. Проведение аналитического электрофореза и иммуноблоттинга ЦСБ
- 2. 1. 6. Иммуноферментный анализ влияния фиксации и дегидратации на сохранение иммунореактивности ЦСБ
- 2. 1. 7. Иммуноферментный анализ влияния химических реагентов на сохранение иммунореактивности ЦСБ
- 2. 1. 8. Фиксация и заливка в смолу растительной ткани
- 2. 1. 9. Выявление ЦСБ-70 на полутонких срезах для световой микроскопии с помощью иммуномечения
- 2. 1. 10. Выявление ЦСБ-70 на ультратонких срезах для электронной микроскопии с помощью иммуномечения
- 2. 1. 11. Количественная оценка выявления ЦСБ-70 с помощью электронной микроскопии в компартментах клеток проростка кукурузы
- 2. 2. Результаты и обсуждение
- 2. 2. 1. Разработка методов иммуноцитохимического исследования локализации ЦСБ-70 в тканях и клетках проростка кукурузы
- 2. 2. 1. 1. Исследование воздействия наЦСБ-70 реагентов, используемых для обработки растительного материала
- 2. 2. 1. 2. Подбор условий для иммобилизации растительного материала в полимерную среду
- 2. 2. 1. 3. Подбор условий для иммуноцитохимического выявления ЦСБ-70 на срезах растительной ткани
- 2. 2. 2. Подбор антител для дифференцированного выявления ЦСБ-70 в органеллах растительных клеток
- 2. 2. 3. Иммуноцитохимическое исследование локализации ЦСБ-70 в цитоплазме и ядрах клеток проростка кукурузы
- 2. 2. 4. Иммуноцитохимическое исследование локализации ЦСБ-70 в пластидах клеток проростка кукурузы
- 2. 2. 1. Разработка методов иммуноцитохимического исследования локализации ЦСБ-70 в тканях и клетках проростка кукурузы
Список литературы
- Аверина Н.Г. Механизмы регуляции и внутрипластидная локализация биосинтеза хлорофилла//Биол. мембраны. 1998. т. 15. № 5. с. 504−516.
- Ананиев Е., Шакирова Ф. М., Клячко H.JL, Кулаева О. Н. Влияние цитокинина на образование полисом из предшествующих мРНК и рибосом // ДАН. 1980. т. 255. с. 508−510.
- Бровко Ф.А., Шепеляковская А. О., Бурханова Э. А., Бозиев Х. М., Ламан А. С., Васильева B.C., Холл М. А., Кулаева О. Н. Преимущественная локализация цитокининсвязывающего белка (70 кД) в апикальной меристеме корня // ДАН. 2001. т. 381. № 5. с. 684−686.
- Бурханова Э.А., Федина А. Б., Дмитриева Г. Н., Кулаева О. Н. Влияние цитокинина на активность РНК-полимеразы в ядрах, выделенных из протопластов // ДАН. 1980. т. 252. вып. 2. с. 488−491.
- Заграничная Т.К., Бровко Ф. А., Шепеляковская А. О., Бозиев Х. М., Липкин В. М. Моноклональные антитела к цитокинин-связывающему белку 70 кД из этиолированных проростков кукурузы // Физиология растений. 1997. т. 44. с. 5−10.
- Каравайко Н.Н., Мошков И. Е., Селиванкина С. Ю., Новикова Г. В., Кулаева О. Н. Выделение при помощи антиидиотииических антител белка со свойствами рецептора цитокининов // ДАН. 1990. т. 310. № 3. с. 765−767.
- Кулаева О.Н. Гормональная регуляция физиологических процессов у растений на уровне синтеза РНК и белка. М.: Наука, 1982. 84 с.
- Кулаева О.Н. Цитокинины, их структура и функция. М.: Наука, 1973. 264 с.
- Кулаева О.Н., Кузнецов В. В. Новейшие достижения и перспективы в области изучения цитокининов // Физиология растений, 2002. Т. 49, № 4, с. 626−640.
- Кулаева О.Н., Кузнецов В. В. Новейшие достижения и перспективы изучения механизма действия фитогормонов и их участия в сигнальных системах целого растения // Вестник РФФИ. 2004. № 2 (36). с. 12−36.
- Кулаева О.Н., Прокопцева О. С. Новейшие достижения в изучении механизма действия фитогормонов // Биохим. 2004. т. 69. № 3. с. 233−247.
- Курсанов А.Л., Кулаева О. Н., Свешникова И. Н., Попова Э. А., Болякина Ю. П., Клячко Н. Л., Воробьева И. П. Восстановление клеточных структур и обмена веществ в желтых листьях под действием 6-бензиламинопурина // Физиология растений. 1964. т. 11. с. 838−847.
- Микулович Т.П., Хохлова В. А., Кулаева О. Н., Свешникова И. Н. Влияние 6-бензиламинопурина на изолированные семядоли тыквы // Физиология растений. 1971. т. 18. с. 98.
- Миронов А.А., Комиссарчик Я. Ю., Миронов В. А. Методы электронной микроскопии в биологии и медицине. С-Пб.: Наука, 1994. 399 с.
- Свешникова И.Н., Кулаева О. Н. Болякина Ю.П. Образование ламелл и гран в хлоропластах желтых листьев под дейетием 6-бензиламинопурина // Физиология растений. 1966. т. 13. с. 769.
- Селиванкина С.Ю., Каравайко Н. Н., Земляченко Я. В., Маслова Г. Г., Кулаева О. Н. Регуляция транскрипции рецептором цитокинина в системах in vitro // Физиология растений. 2001. т. 48. с. 434−440.
- Селиванкина С.Ю., Каравайко Н. Н., Черепнева Г. Г., Прищепова А. Е., Кузнецов В. В., Кулаева О. Н. Биологически активный зеатин-связывающий белок из хлоропластов листьев ячменя // ДАН. 1997. т. 356. № 6. с. 830−832.
- Селиванкина С.Ю., Зубо Я. О., Зубкова Н. К., Кудрякова Н. В., Кулаева О. Н., Кузнецов В. В. Цитокинин контролирует Транскрипцию генов рРНК в зеленеющих листьях ячменя // Докл. биохим. биофиз. 2004. т. 397. с. 258−260.
- Хохлова В.А., Свешникова И. Н., Кулаева О. Н. Влияние фитогормонов на формирование структуры хлоропластов в изолированных семядолях тыквы // Цитология. 1978. т. 20. с. 1033−1038.
- Хохлова В.А., Каравайко Н. Н., Подергина Т. А., Кулаева О. Н. Антагонизм в действии абсцизовой кислоты и цитокинина на структуру и биохимическую дифференцировку хлоропластов в изолированных семядолях тыквы // Цитология. 1978. т. 29. с. 10 331 039.
- Aloni R., Langhans M., Aloni E., Dreieicher E., Ullrich C.I. Root-synthesized cytokinin in Arabidopsis is distributed in the shoot by the transpiration stream // J. Exp. Bot. 2005. v. 56 pp. 1535−1544.
- Allison L.A. The role of sigma factor in plastid transcription // Biochimie. 2000. v. 82. pp. 537 548
- Amador V., Monte E., Garci’a-Martinez J.-L., and Prat S. Gibberellins signal nuclear import of PHOR1, a photoperiod-responsive protein with homology to Drosophila armadillo // Cell. 2001. v. 106. pp. 343−354.
- Anantharaman V., Aravind L. The CHASE domain: a predicted ligand-binding module in plant cytokinin receptors and other eukaryotic and bacterial receptors // Trends Biochem. Sci. 2001. v. 26. pp. 579−582.
- Aoyama Т., Oka A. Cytokinin signal transduction in plant cells // J. Plant Res. 2003. v. 116. pp. 221−231.
- Avrameas S. Coupling of enzymes to proteins with glutaraldehyde. Use of the conjugates for the detection of antigens and antibodies // Immunochem. 1969. v. 6. pp. 43−47.
- Barkan A., Goldschmidt-Clermont M. Participation of nuclear genes in chloroplast gene expression // Biochimie. 2000. v. 82. pp. 559−572.
- Batt S., Venis M.A. Separation and localization of two classes of auxin-binding sites in corn coleoptile membranes // Planta. 1976. v. 130. pp. 15−21.
- Benkova E., Witters E., van Dongen W., Kolar J., Motyka V., Brzobohaty В., van Onckelen H.A., Machackova I. Cytokinins in tobacco and wheat chloroplasts. Occurrence and changes due to light/dark treatment// Plant Physiol. 1999. v. 121. pp. 245−251.
- Bligny M., Courtois F., Thaminy S., Chang Ch.-Ch., Lagrange Th., Baruah-Wolf J., Stern D., Lerbs-Maehe S. Regulation of plastid rDNA transcription by interactions of CDF2 with two different RNA polymerases // EMBO J. 2000. v. 19. pp. 1850−2000.
- Bodescu G.O., Napier R.M. Receptors for auxin: will it all and in TIRs? // Tr. In PI. Sci. 2006. v. 11, pp. 217−223.
- Bradford M.M. A rapid and sensitive method of the quantitation of microgram quantities of protein using the principle of protein-dye binding // Anal. Biochem. 1976. v. 72. № 1. pp.248−254.
- Bronsema F.B.F., van Oostveen W.J.F., van Lammeren A.A.M. Immunocytochemical localization of auxin-binding proteins in coleoptiles and embryos of lea mays L. II Protoplasma. 1998. v. 202. pp. 65−75.
- Che P., Gingerich D.J., Lall S., Howell S.II. Global and hormone-induced gene expression changes during shoot development in Arabidopsis I/ Plant Cell. 2002. v. 14. pp. 2771−2785.
- Chen J.G., Ullah H., Young J.C., Sussman M.R., Jones A.M. ABP1 is required for organized cell elongation and division in Arabidopsis embryogenesis 11 Genes Dev. 2001. v. 15. pp. 902 911.
- Chen Yi-F., Randlett M.D., Findell J.L., Schaller G.E. Localization of the Ethylene Receptor ETR1 to the Endoplasmic Reticulum of Arabidopsis II J. Biol. Chem. 2002. v. 277. pp. 19 861−19 866.
- Craig S., Goodchild D.J. Post-embedding immunolabelling. Some effects of tissue preparation on the antigenicity of plant proteins // Eur. J. of Cell Biol. 1982. v. 28. pp. 251−256.
- D’Agostino I.B., Deruere J., Kieber J.J. Characterization of the response of the Arabidopsis response regulator gene family to cytokinin // Plant Physiol. 2000. v. 124. pp. 1706−1717.
- Dill A., Jung H.-S., Sun T.-P. The DELLA motif is essential for gibberellin-induced degradation of RGA // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2001. v. 98. pp. 14 162−14 167.
- Dill A., Thomas S.G., Hu J., Steber C.M., Sun T.-P. The Arabidopsis F-box protein SLEEPY 1 targets gibberellin signaling repressors for gibberellin-induced degradation // Plant Cell. 2004. v. 16: pp. 1392−1405.
- Dodds J.H. Experiments in plant tissue culture. Cambridge University Press, 1995.231 p.
- Dubell A.N., Mullet J.E. Differential transcription of Pea chloroplast genes during light-induces leaf development// Plant Physiol. 1995. v. 1995. pp. 105−112.
- Fasulo M.P. Kinetin counteracts the myomycin inhibitory effect on plastid differentiation in excised cucumber cotyledons // Biohem. Physiol. Pflanzen. 1980. v. 175. pp. 322−326.
- Flores S., Tobin E.M. Cytokinin modulation of LHCP mRNA levels: the involvement of posttranscriptional regulation // Plant Mol. Biol. 1988. v. 11. pp. 409−417.
- Gaudino R.J., Pikaard C.S. Cytokinin induction of RNA polymerase I transcription in Arabidopsis thaliana II J. Biol. Chem. 1997. v. 272. № 10. pp. 6799−6804.
- Golovko A., Sitbon F., Tillberg E., Nicander B. // Plant Mol. Biol. 2002. v. 49. pp. 161−169.
- Grefen Ch., Harter K. Plant two-component systems: principles functions, complexity and cross talk // Planta. 2004. v. 219. pp. 733−742.
- Haberer G., Kieber J.J., Cytokinins: new insights into a classic phytohormone // Plant Physiol. 2002. v. 128. pp. 359−362.
- Hall A.E., Findell J.L., Schaller G.E., Sisler E.C., Bleecker A.B. Ethylene perception by the ERS1 protein in Arabidopsis // Plant Physiol. 2000. v. 123. pp 1449−1458.
- Hall J.M., Couse J.F., Korach K.S. The multifaceted mechanisms of estrogen receptor signaling // J. Biol. Chem. 2001. v. 276. pp. 36 869−36 872.
- Hare P.D., van Staden J. The molecular basis of cytokinin action // Plant Growth Regul. 1997. v. 23. pp. 41−78.
- Hess W.R., Borner Th. Organellar RNA polymerases of higher plants // Int. Rev. Cytol.1999. v. 190. pp. 1−59.
- Hua J., Sakai H., Nourizadeh S., Chen Q.G., Bleecker A.B., Ecker J.R., Meyerowitz E.M. EIN4 and ERS2 are members of the putative ethylene-receptor gene family in Arabidopsis // Plant Cell. 1998. v. 10. pp. 1321−1332.
- Hutchison C.E., Kieber J.J. Cytokinin Signaling in Arabidopsis II The Plant Cell. 2002. v. 14. pp. 47−59.
- Jacobs M., Connell L., Cattolico R.A. A conserved His-Asp signal response regulator-like in Heterosigma akashiwo chloroplasts // Plant Mol. Biol. 1999. v. 41, pp. 645−655.
- Jacobsen S.E., Olszewski N.E. Mutations at the SPINDLY locus of Arabidopsis alter gibberellin signal transduction // Plant Cell. 1993. v. 5. pp. 887−896.
- Jensen E.V. Overview of Nuclear Receptor Family. In: Nuclear hormone receptors molecular mechanisms, cellular functions and clinical abnormalities/ ed. Parker M. London: Academic Press. 1991. pp. 1−13.
- Jones A.M., Herman E.M. KDEL-containing auxin-binding protein is secreted to the plasma membrane and cell wall//Plant Physiol. 1993. v. 101. pp. 595−606.
- Johnstone A., Thorpe R. Immunochemistry in Practice. N.-Y.: Blackwell Science Publications. 1982. 394 p.
- Kakimoto T. CKI-1 a histidine kinase homologue implicated in cytokinin signal transduction // Science. 1996. v. 274. pp. 982−985.
- Kakimoto T. Plant cytokinin biosynthetic enzymes as dimethylallyl diphosphate: ATP/ADP isopentenyltransferases // Plant Cell Physiol. 2001. v. 42. pp. 677−685.
- Kasahara H., Takei K., Ueda N., Hishiyama Sh., Yamaya Т., Kamiya Yu., Yamaguchi Sh., Sakakibara H. Distinct isoprenoid origins of cis- and trans-zzatin biosyntheses in Arabidopsis II J. Biol. Chem. 2004. v. 279. № 14. pp. 14 049−14 054.
- Kende H., Zeevaart A.D. The five «classical» plant hormones // The Plant Cell. 1997. v. 9. pp. 1197−1210.
- Kim M., Christopher D.A., Mullet J.E. ADP-dependent phosphorylation regulates association of a DNA-binding complexwith the Barley chloroplast psbD blue-ligt-responsive promoter // Plant Physiol. 1999. v. 119. pp. 663−670.
- Kim Y.S., Kim D.H., Jung J. Isolation of a novel auxin-receptor from soluble fractions of rice (Oryza sativa L.) shoots // FEBS Lett. 1998. v. 438. pp. 241−244.
- Kulaeva O.N., Karavaiko N.N., Moshkov I.E., Selivankina S.Yu., Novikova G.V. Isolation of a protein with cytokinin-receptor properties by means of anti-idiotype antibodies // FEBS Lett. 1990. v. 261. № 1. pp. 410−412.
- Kulaeva O.N., Karavaiko N.N., Selivankina S. Yu., Zemlyachenko Ya.V., Shipilova S.V. Receptor of trans-zeatin involved in transcription activation by cytokinin // FEBS Lett. 1995. v. 366. pp. 26−28.
- Kulaeva O.N., Karavaiko N.N., Selivankina S.Yu., Moshkov I.E., Novikova G.V., Zemlyachenko Ya.V., Shipilova S.V., Orudgev E.M. Cytokinin signaling systems // Plant Growth Regul. 1996. v. 18. pp. 29−37.
- Kulaeva O.N., Zagranichnaya Т.К., Brovko F.A., Karavaiko N.N., Selivankina S.Yu., Zemlyachenko Ya.V., Hall M., Lipkin V.M., Boziev Kh.M. A new family of cytokinin receptors from Cereales // FEBS Lett. 1998. v. 423. pp. 239−242.
- Maliga P. Two plastid RNA-polymerases of higher plants: a evolving story // Trends Plant Sci. 1998. v. 3. pp. 4−6.
- McGinnis K.M., Thomas S.G., Soule J.D., Strader L.C., Zale J.M., Sun T.-P., Steber C.M. The Arabidopsis SLEEPY 1 gene encodes a putative F-box subunit of an SCF E3 ubiquitin ligase //Plant Cell. 2003. v. 15: pp. 1120−1130.
- Melan M.A. Overview of cell fixation and permeabilization // Methods Mol. Biol. 1994. v. 34. pp. 55−66.
- Mendel D.D., Bodwell J.E., Gametchu B. The role of Heat Shock proteins in regulation of the function of the glucocorticoid receptor//J. Biol. Chem. 1986. v. 261. pp. 3758−3763.
- Miyawaki K., Matsumoto-Kitano M., Kakimoto T. Expression of cytokinin biosynthesis isopentenyltransferase genes in Arabidopsis: tissue specificity and regulation by auxin, cytokinin and nitrate // The Plant J. 2004. v. 37. pp. 128−138.
- Мок M.C. Cytokinins and plant development An overview // Cytokinins: Chemistry, activity and functions. Boca Raton: CRC Press, 1994. p. 155−166.
- Мок D.W., Мок M.C. Cytokinin metabolism and action // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 2001. v. 52. pp. 89−118.
- Monte E., Amador V., Russo E., Martinez-Garcia J., Prat S. PHOR1: a U-box GA signaling component with a role in proteasome degradation? // J. Plant Growth Regul. 2003. v. 22. pp.152−162.
- Napier R.M., Venis M.A. Epitope mapping reveals conserved regions of an auxin-binding protein // Biochem. J. 1992. v. 284. pp. 841−845.
- Oelmiiller R. Photooxidative destruction of chloroplasts and its effect on nuclear gene expression and extraplastidic enzyme levels // Photochem. Photobiol. 1989. v. 49. pp. 229−239.
- Ogawa M., Kusano Т., Katsumi M., Sano H. Rice gibberellin-insensitive gene homolog, OsGAI, encodes a nuclear-localized protein capable of gene activation at transcriptional level // Gene. 2000. v. 245. pp. 21−29.
- Parthier В. The role of phytohormones (eytokinins) in ehloroplast development // Biochem. Physiol. Pflanz. 1979. v. 174. pp. 173−214.
- Pelletier G., Morel G. Immunoenzyme techniques at the electron microscopical level // Immunolabelling for electron microscopy.: Amsterdam: Elsevier, 1984. pp. 83−93.
- Peng J., Carol P., Richards D.E., King K.E., Cowling R.J., Murphy G.P., Harberd N.P. The Arabidopsis GAI gene defines a signaling pathway that negatively regulates gibberellin responses // Genes Dev. 1997. v. 11. pp. 3194−3205.
- Pischke M.S., Jones L.G., Otsuga D., Fernandez D.E., Drews G.N., Sussman M.R. An Arabidopsis histidine kinase is essential for megagametogenesis // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2002. v. 99. pp. 15 800−15 805.
- Rashotte A.M., Carson S.D.B., To J.P.C., Kieber J.J. Expression profiling of cytokinin action in Arabidopsis II Plant Physiol. 2003. v. 132. pp. 1998−2011.
- Razem F.A., Luo M., Liu J.-H., Abrams S.R., Hill R.D. Purification and characterization of a barley aleurone abscisic acid-binding protein // J. Biol. Chem. 2003. v. 279. pp. 9922−9929.
- Razem F.A., El-Kereamy A., Abrams S.R., Hill R.D. The RNA-binding protein FCA is an abscisic acid receptor//Nature. 2006. v. 439. pp. 227−228.
- Ritchie S., Gilroy S. Abscisic acid signal transduction in the barley aleurone is mediated by phospholipase D activity // Plant Biol. 1998. v. 95, pp. 2697−2702.
- Rodermel S. Pathways of plastid-to-nucleus signaling // Trends Plant Sci. 2001. v. 6. pp. 471 478.
- Roland J.C., Vian В. General preparation and staining of thin sections // Electron microscopy of plant cells. London: Academic Press, 1991. pp. 1−66.
- Sakakibara H., Suzuki M" Takei K., Deji A., Taniguchi M., Sugiyama T.A. Response-regulator homologue possibly involved in nitrogen signal transduction mediated by cytokinin in maize // Plant J. 1998. v. 14. pp. 337−344.
- Schaller G.E., Ladd A.N., Lanahan M.B., Spanbauer J.M., Bleecker A.B. The ethylene response mediator ETR1 from Arabidopsis forms a disulfide-linked dimmer // J. Biol. Chem. 1995. v. 270. pp. 12 526−12 530.
- Silverstone A.L., Мак P.Y.A., Casamitjana Martinez E., and Sun T.-P. The new RGA locus encodes a negative regulator of gibberellin response in Arabidopsis thaliana II Genetics. 1997. v. 146. pp. 1087−1099.
- Sossountzov L., Maldiney R., Sotta В., Subbagh I., Habricot Y., Bonner M., Miginias E. Immunocytochemical localization of cytokinins in Graigella tomato and a side-shoot less mutant // Planta. 1988. v. 175. pp. 291−304.
- Spurr A.R. A low viscosity epoxy resin embedding medium for electron microscopy // J. Ultrastruc. Res. 1969. v. 26. pp. 31−43.
- Sternberger L.A., Sternberger N.H. The unlabelled antibody method: comparison of peroxidase-antiperoxidase with avidin-biotin complex by a new method of quantification // J. Histohem. Cytochem. 1986. v. 34. pp. 599−602.
- Stock A.M., Robinson V.L., Goudreau P.N. Two-component signal transduction // Annu. Rev. Biochem. 2000. v. 97. pp. 14 778−14 788.
- Suzuki Т., Imamura A., Ueguchi C., Mizuno T. Histidine-containing phosphotransfer (HPt) signal transducers implicated in His-to-Asp phosphorelay in Arabidopsis И Plant Cell Physiol. 1998. v. 39. pp. 1258−1268.
- Suzuki Т., Miwa К., Ishikawa К., Yamada H., Aiba H., Mizuno Т. The Arabidopsis sensor His-kinase, AHK4, can respond to cytokinins // Plant Cell Physiol. 2001. v. 42. pp. 107−113.
- Swain S.M., Tseng T.-S., Thornton Т., Gopalraj M., Olszewski N.E. SPINDLY is a nuclear-localized repressor of gibberellin signal transduction expressed throughout the plant // Plant Physiol. 2002. v. 129. pp. 605−615.
- Takei K., Sakakibara H., Sugiyama T. Identification of genes encoding adenilate isopentenyltransferase, a cytokinin biosynthesis enzyme, in Arabidopsis thaliana II J. Biol. Chem. 2001. v. 276. pp. 26 405−26 410.
- Takei K., Yamaya Т., Sakakibara H. Arabidipsis CYP735A1 and CYP735A2 encode cytokinin hydroxylases that catalyze the biosynthesis of trans-zeatin // J. Biol. Chem. 2004. v. 279. pp. 41 866−41 872.
- Taniguchi M., Kiba Т., Sakakibara H., Ueguchi C., Mizuno Т., Sugiyama T. Expression of Arabidopsis response-regulator homologies is induced by cytokinin and nitrate // FEBS Lett. 1998. v. 429. pp. 259−262.
- Thornton T.M., Swain S.M., Olszewski N.E. Gibberellin signal transduction presents ellipsis the SPY who O-GlcNAc'd me // Trends Plant Sci. 1999. v. 4. pp. 424128.
- Timms B.G. Postembedding immunogold labeling for electron microscopy using «LR White» resin // Am. J. Anat. 1986 v. 175. v. 267−275.
- Tsai M.J., O’Malley B.W. Molecular mechanisms of action of steroid. Thyroid receptor super family members//Annu. Rev. Biochem. 1994. v. 63. pp. 451−486.
- Ueguchi C., Koizumi H., Suzuki Т., Mizuno T. Novel family of sensor histidine kinase genes in Arabidopsis thaliana IУ Plant Cell Physiol., 2001. v. 42, pp. 231−235.
- Ueguchi-Tanaka M., Ashikari M., Nakajina M, et al. Gibberellin insensitive dwarfl encodes a soluble receptor for gibberellin // Nature. 2005. v. 437. pp. 627−628.
- Wang X. The role of phospholipase D in signal cascades // Plant Physiol. 1999. v. 120. pp. 645 651.
- Werner Т., Motyka V., Strnad M., Schmiilling T. Regulation of plant growth by cytokinin // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2001. v. 98. pp. 10 487−10 492.
- Wilchek M., Bayer E.A. The avidin-biotin complex in bioanalytical applications // Anal. Biochem. 1988. v. 171. pp. 1−32.
- Yakovleva L.A., Kulaeva O.N. The effect of phytohormones on phosphorylation of ribosomal proteins in detached pumpkin cotyledons // Biochem. Physiol. Pflanz. 1987. v. 182. pp. 359 365.
- Yonekura-Sakakibara K., Kojima M., Yamaya Т., Sakakibara H. Molecular characterization of cytokinin-responsive histidine kinases in maize. Differential ligand preferences and response to c/j-zeatin // Plant Physiol. 2004. v. 134, pp. 1654−1661.
- Zhang D.-P., Wu Z.-Y., Li X.-Y., Zhao Z.-X. Purification and identification of a 42-kilodalton abscisic acid-specific-binding protein from epidermis of broad bean leaves // Plant Physiol. 2002. v. 128. pp. 714−725.
- Zheng Z., Nafisi M., Tam A. Plasma membrane-associated ROPIO small GTPase is a specific negative regulator of abscisic acid responses in Arabidopsis II The Plant Cell. 2002. v. 14. pp.2787−2797.