Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Активный пул органического вещества почвы при разных способах землепользования и системах удобрения

Диссертация: Активный пул органического вещества почвы при разных способах землепользования и системах удобрения
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Валовое содержание азота и соотношение химически гидролизуемых и негидролизуемых его форм, хорошо демонстрируя эволюционно-генетические особенности разных почв, не дают должного представления о запасе активного азота, трансформируемого микроорганизмами и используемого растениями. Трансформация азота почвы зависит от защищенности органических соединений и веществ и носит многостадийный характер… Читать ещё >

Содержание

  • ГЛАВА 1. РОЛЬ ОРГАНИЧЕСКОГО ВЕЩЕСТВА В
  • ФОРМИРОВАНИИ ПЛОДОРОДИЯ ПОЧВ (обзор литературы)
    • 1. 1. Функции органического вещества почвы
    • 1. 2. Компоненты, фракции и пулы органического вещества почвы
    • 1. 3. Процессы ртабилизации и деградации органического вещества почвы
    • 1. 4. Микробная биомасса как динамический компонент органического вещества почвы

Активный пул органического вещества почвы при разных способах землепользования и системах удобрения (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы. Органическое вещество является важнейшим компонентом почвы, определяющим особенности ее свойств и режимов. Многообразие эколого-биосферных и биогеоценотических функций, выполняемых органическим веществом, зависит не только от его валового содержания в почве, но н от качества. Определение фракционно-группового состава органического вещества почвы (ОВП) остается наиболее распространенным способом оценки его качества и характера трансформации при разных природных и антропогенных факторах (Александрова, 1980; Орлов, 1990; Орлов, Бирюкова, 1995; Орлов и др., 1996; Когут, 2003; Орлов и др., 2004, Овчинникова, 2007). В агрономическом отношении наиболее важным является то ОВП, которого либо «не видно», либо «уже нет», т. е. постоянно оборачиваемое, легко минерализуемое, быстро стабилизируемое и поэтому трудно улавливаемое химическими способами. До сих пор нет идеального растворителя или процедуры экстракции, обеспечивающих полное выделение фракций ОВП, чувствительных к быстрым изменениям его состава и исключающих вероятность автоокисления или реполимеризации органических веществ при анализе (Hayes, 2006; Oik, Gregorich, 2006). Даже при самой селективной химической экстракции выделенные фракции ОВП не идентичны тем веществам, которые формируются и фракционируются с участием почвенных микроорганизмов. Краткосрочные изменения ОВП связаны с его биологически трансформируемым, активным пулом, к которому относятся все органические вещества с Т0.5 < 2 лет независимо от их химического и физического состояния (Jenkinson, Rayner, 1977; Paul et al., 2006). Количественные параметры активного пула устанавливаются биокинетическим анализом разложения и минерализации ОВП и измерением микробной биомассы (Иванникова, Гармаш, 1994; Трофимов, 1997; Смагин и др., 2001; Семенов и др., 2005; Семенов и др., 2006; Paul et al., 1999; Collins et al., 2000; Franzluebbers et al., 2000).

Серые лесные почвы и черноземы — преобладающие почвенные типы лесостепной зоны Европейской части России. Интенсивное сельскохозяйственное использование почв привело к уменьшению содержания органического углерода (Сорг) в 1.2−3.3 раза по сравнению с целинными участками и к значительному повышению доли ароматических компонентов в составе ОВП (Орлов, Бирюкова,.

1995; Сорокина,, Когут, 1997; Щербаков, Надежкин, 2000; Schnitzer et al., 2006). Убыль Сорг происходит в первую очередь за счет его быстро разлагаемых фракций, слагающих активный пул ОВП. Недостаточная обеспеченность почв агроценозов активным Сорг может быть причиной ухудшения их водно-физических, физико-химических и агрохимических свойств, слабой азотминерализующей способности, высоких потерь азота и низкой эффективности минеральных удобрений. Внесение минеральных и органических удобрений, использование разных севооборотовнаиболее характерные агрогенные воздействия на почву, однако до сих пор нет единого мнения о влиянии этих приемов на минерализуемость ОВП, структуру его активного пула. Применение органических удобрений однозначно считается основным способом повышения содержания ОВП и улучшения его фракционно-группового состава (Борисова и др., 2005; Егоров, Бычкова, 2006; Золотарева, 2006; Лапа, Босак, 2006; Минеев и др., 2007; Edmeades, 2003). Внесение минеральных удобрений рассматривается как фактор, усиливающий минерализацию и потери ОВП (Никитишен, 2002; Щапова, 2005; Мерзлая и др., 2006; Носко и др., 2006), либо, наоборот, способствующий дополнительному накоплению Сорг в почве (Edmeades, 2003; Alvarez, 2005; Varvel, 2006). В этой связи представляется важным сравнить минерализационную способность ОВП агроценозов и естественных угодий, определить влияние минеральных и органических удобрений на обеспеченность пахотных почв углеродом и азотом активного органического вещества и установить долю микробной биомассы в его составе.

Цель работы: оценить минерализационную способность органического вещества серой лесной почвы и выщелоченного чернозема в зависимости от характера землепользования и системы удобрения полевых культур.

Задачи исследований:

1) определить структуру активного пула ОВП и установить соотношение легко, умеренно и трудно минерализуемых фракций углерода в его составе;

2) оценить обеспеченность необрабатываемых и вовлеченных в сельскохозяйственное производство почв потенциально минерализуемым органическим веществом;

3) установить долю микробной биомассы в составе активного ОВП при разных способах землепользования и системах удобрения культур;

4) выявить характер краткосрочной динамики микробной биомассы в почве после внесения минеральных и органических удобрений;

5) показать роль активного ОВП в формировании почвенного пула минерального азота.

Научная новизна. Дана количественная оценка обеспеченности серой лесной почвы и выщелоченного чернозема углеродом и азотом активного органического вещества и установлено соотношение легко (&>0.1 сут'1), умеренно (?>0.01 сут" 1) и трудно (&>0.001 сут" 1) минерализуемых фракций в его составе. Выявлен факт сильного обеднения пахотных почв потенциально минерализуемым углеродом в основном за счет умеренно минерализуемой фракции (0.1>?>0.001 сут" '). Подтверждена ключевая роль микробной биомассы в формировании активного пула ОВП. Показана строгая зависимость обеспеченности почв активным органическим веществом от регулярности внесения органических удобрений и побочной продукции возделываемых культур. Впервые сопоставлены результаты биокннетического и химического фракционирования ОВП. Отмечено, что биокинетические и химические способы фракционирования отображают разные параметры качества и состояния ОВП. Получены новые данные, указывающие на нарушение минерализационно-иммобилизационной оборачиваемости азота в выщелоченном черноземе агроценозов из-за недостаточной его обеспеченности минерализуемым органическим веществом.

Практическая значимость. Установлено, что используемые в земледелии серая лесная почва и выщелоченный чернозем с традиционным набором агротехнических приемов поддержания плодородия характеризуются острым дефицитом активного органического вещества, расходуемого в краткосрочных биологических процессах. Для устойчиво пролонгированного воспроизводства активного органического вещества необходимо ежегодное внесение органических удобрений с обязательным возвратом растительных остатков и побочной продукции в почву. Результаты исследований могут быть использованы при моделировании потоков углерода в наземных экосистемах, при разработке целевых программ по ограничению антропогенной эмиссии парниковых газов и воспроизводству ОВП в агроэкосистемах.

Поддержка и благодарности. Работа выполнена в лаборатории почвенных циклов азота и углерода Института физико-химических и биологических проблем почвоведения РАН по планам НИР Института, в рамках проектов РФФИ (№№ 0404−48 670 и 07−04−529) и российско-голландского проекта № 047.017.011 «Resilience of microbial communities to disturbances as an indicator of sequestration of С and N in soil: comparison of agricultural and semi-natural ecosystems».

Автор выражает благодарность научному руководителю, ведущему научному сотруднику, д.б.н. В. М. Семенову, заведующему лабораторией, д.б.н., профессору В. Н. Кудеярову, ст.н.с., к.б.н. Т. В. Кузнецовой, ст.н.с., к.б.н. JI.A. Иванниковой, н.с. Н. А. Семеновой, ведущему инженеру Е. М. Гультяевой за помощь в организации исследований, консультации и всестороннюю поддержку. Отдельная благодарность руководителю группы биологического земледелия университета Вагенингена, профессору Ариене ван Бругген и в.н.с. биологического факультета МГУ, д.б.н. A.M. Семенову. Особо признателен профессорам ФГОУ ВПО «ПГСХА» Т. Б. Лебедевой, Е. В. Надежкиной и С. М. Надежкину за предоставленную возможность работать на стационарных опытах и конструктивное содействие в течение всей исследовательской деятельности.

ВЫВОДЫ.

1. Органическое вещество почвы с продолжительностью существования менее 3 лет образует активный пул, подразделяющийся биокинетическим фракционированием на легко (?>0.1 сут" 1), умеренно (?>0.01 сут" 1) и трудно (?>0.001 сут') минерализуемые фракции. В серой лесной почве и выщелоченном черноземе естественных экосистем присутствуют все три фракции активного пула, а пахотные почвы в основном содержат только легко и трудно минерализуемые фракции. Ежегодное применение органических удобрений и полный возврат в почву побочной продукции возделываемых культур позволяют оптимизировать структуру активного пула органического вещества обрабатываемых почв.

2. Серая лесная почва и выщелоченный чернозем неудобренных агроценозов содержат в 3.9 и 5.2 раза меньше углерода потенциально минерализуемого органического вещества, чем те же почвы естественных экосистем (0.18 и 0.28% соответственно). Агрогенное обеднение этих почв потенциально минерализуемым углеродом было в 1.8 и 3.6 раза выше, чем валовым органическим углеродом.

3. Содержание потенциально минерализуемого углерода в серой лесной почве после второго года применения минеральных удобрений в дозах N200P200K200 с заделкой побочной продукции возделываемых культур оставалось на одном и том же уровне, а при внесении органических удобрений в дозе 50 т/га по органическому фону дополнительно увеличивалось в 1.1 раза. Обеспеченность почвы чистого пара потенциально минерализуемым углеродом была в 1.2 и 1.3 раза ниже, чем при минеральной и органической системе удобрения соответственно.

4. Длительное применение на выщелоченном черноземе органических удобрений в дозах 25 и 50 т/га с периодичностью один раз в пять лет способствовало увеличению в 1.9 и 2.4 раза содержания потенциально минерализуемого углерода по сравнению с контролем. Ежегодное внесение минеральных удобрений на фоне органических, повышая содержание Сорг в почве, уменьшало долю потенциально минерализуемой фракции в составе органического вещества. Выщелоченный чернозем зернотравянопропашного севооборота характеризовался повышенным в 1.4 раза содержанием потенциально минерализуемого углерода по сравнению с зернопаропропашным.

5. Содержание углерода микробной биомассы является чувствительным индикатором изменений активного пула органического вещества почвы под действием агрогенных факторов. В серой лесной почве и выщелоченном черноземе неудобренных агроценозов содержалось в 4.6 и 7.3 раза меньше микробного углерода (2.6 и 0.4% от Сорг), чем в почвах природных экосистем (5.7 и 1.9% от Сорг соответственно).

6. Внесение №К+2,4-Д или органического удобрения оказывало принципиально разное влияние на краткосрочную динамику микробной биомассы в серой лесной почве с резкой убылью и медленным накоплением углерода микробной биомассы в случае использования химических средств и быстрым увеличением его содержания с последующим уменьшением — после применения органического удобрения. Величины прироста микробной биомассы и характер ее динамики после заделки растительных остатков были одинаковыми в почве минерального или органического фонов.

7. При минеральной и органической системах удобрения с ежегодной заделкой побочной продукции содержание углерода микробной биомассы в серой лесной почве было в 1.6 и 2.5 раза выше, чем в почве чистого пара. Длительное, но периодическое применение органических удобрений способствовало увеличению в 1.2−1.3 раза обеспеченности выщелоченного чернозема микробным углеродом по сравнению с контролем, а ежегодное внесение минеральных удобрений препятствовало накоплению микробной биомассы.

8. Биокинетические и химические способы фракционирования отображали разные параметры качества и состояния органического вещества выщелоченного чернозема. Ни одна пз групп или фракций ГК и ФК не была специфически чувствительным индикатором минерал изацион ной способности почвенного органического вещества.

9. Азотсодержащие компоненты органического вещества выщелоченного чернозема характеризуются большей устойчивостью к минерализации, чем серой лесной почвы. Внесение минеральных удобрений, повышая обеспеченность выщелоченного чернозема минеральным азотом, уменьшало размеры нетто-минерализации азота органического вещества. Реальное обогащение.

3.4.1.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Длительное сельскохозяйственное использование выщелоченного чернозема не привело к изменениям фракционно-группового состава органического вещества, выходящим за пределы характерных для данного подтипа почвы градаций. Биокинетические и химические способы фракционирования отображали разные параметры качества и состояния ОВП. Ни одна из фракций ГК или ФК не могла служить специфически чувствительным индикатором минерализационной способности ОВП и его биологической активности. Все химические фракции ОВП способны минерализовываться микроорганизмами, хотя и с разной скоростью. Микробная биомасса, накапливаемая в почве, является прямым источником формирования не только потенциально минерализуемых, но и химически устойчивых компонентов ОВП, составляющих его негидролизуемый остаток.

3.5. АЗОТМИНЕРАЛИЗУЮЩИЙ ПОТЕНЦИАЛ СЕРОЙ ЛЕСНОЙ ПОЧВЫ.

И ВЫЩЕЛОЧЕННОГО ЧЕРНОЗЕМА.

Валовое содержание азота и соотношение химически гидролизуемых и негидролизуемых его форм, хорошо демонстрируя эволюционно-генетические особенности разных почв, не дают должного представления о запасе активного азота, трансформируемого микроорганизмами и используемого растениями. Трансформация азота почвы зависит от защищенности органических соединений и веществ и носит многостадийный характер, завися от большого числа факторов (Назарюк, 2002; Егоров, Бычкова, 2006; Шарков и др., 2007). Азотсодержащие органические вещества фракции глины (<2 мкм) и мнкроагрегатов (<250 мкм) менее доступны минерализации по сравнению с более крупными гранулометрическими фракциями и макроагрегатамигрибная масса труднее минерализуется, чем бактериальная, а легко минерализуемые простые соединения становятся трудно минерализуемыми при образовании высокомолекулярных гумусовых веществ или органо-минеральных комплексов.

Активный пул азота включает в себя минеральные формы и часть органического азота, способного к минерализации (Семенов и др., 2001). Полный прямой учет активного пула Nopr провести сложно, поскольку химически идентифицировать его фракции не представляется возможным. Однако активный пул азота можно установить путем определения потенциально минерализуемых соединений, азотминерализующей способности почв и моделирования кинетики минерализации азота в почве (Хабиров и др., 2001). Непрерывный переход минерализуемого азота в синтезируемое ОВ и отношение иммобилизованного азота к его неорганическим формам представляют минерализационно-иммобилизационную оборачиваемость. Гросс-минерализацией называется сумма NH4+, высвобождаемого микроорганизмами из органических форм. Разница между гросс-минерализацией и иммобилизацией представляет собой нетто-минералпзацию (нетто-иммобилизацию). Обычно подсчитывают нетто-минерализацию вследствие сложностей прямого измерения гросс-минерализации.

Однокомпопептная модель Стэнфорда и Смита (Stanford, Smith, 1972) определяет потенциальную минерализацию азота почвы как количество ОВП, способного к минерализации, и скорость минерализации (к) в соответствии с кинетикой первого порядка. Эта модель широко используется (Hadas et al., 1986; Carter, Macleod, 1987) для описания кинетики минерализации азота почв в разных типах землепользования, возделываемых сельскохозяйственных культурах и климатических условиях.

ОВП является основным источником азота для микроорганизмов и растений. Обеспеченность исследуемых почв естественных экосистем общим азотом (N06iy) была существенно выше, чем их пахотных аналогов (табл. 5).

Показать весь текст

Список литературы

  1. Агрохимические методы исследования почв. М.: Наука. 1975. 656 с.
  2. Л.Н. Органическое вещество почвы и процессы его трансформации. Л.: Наука. 1980. 287 с.
  3. В.М. Палеокриогенез и современное почвообразование. Пущино: ОНТИ. 1995. 320 с.
  4. Н.Д. Микробиологические аспекты самоочищения и устойчивости почв. М.: Наука. 2003. 223 с.
  5. Н.Д., Благодатская Е. В., Демкина Т. С. Оценка устойчивости микробных комплексов почв к природным и антропогенным воздействиям // Почвоведение. 2003. № 5. С. 580−587.
  6. .П. К истории формирования серых лесных почв Среднерусской лесостепи // Почвоведение. 1992. № 3. С. 5−18.
  7. Е.В., Ананьева Н. Д. Оценка устойчивости микробных сообществ в процессе разложения поллютантов в почве // Почвоведение. 1996. № 11. С. 1341−1346.
  8. Е.В., Ананьева Н. Д., Мякшина Т. Н. Характеристика состояния микробного сообщества по величине метаболического коэффициента // Почвоведение. 1995. № 2. С. 205−210.
  9. С.А., Благодатская Е. В., Горбенко А. Ю., Паников Н. С. Регидратационный метод определения микробной биомассы в почве // Почвоведение. 1987. № 7. С. 64−71.
  10. Т. С. Чимитдоржиева Г. Д., Цыбенов Ю. Б. Изменение гумусного состояния дефлированиой каштановой почвы под влиянием удобрений при выращивании кормовых культур // Агрохимия. 2005. № 3. С. 22−29.
  11. А.Н., Кудеяров В. Н. Определение нитратов в почве, воде и растениях // Химия в сельском хозяйстве. 1982. № 4. С. 49−51.
  12. Е.А. Оптимизация пищевого режима серых лесных почв // Оптимизация свойств почв Нечерноземья и повышение их плодородия. М. Почвенный институт. 1984. с. 35−42.
  13. Н.Ф. Гумус, свойства почв и урожай // Почвоведение. 1998. № 7. С. 812−819.
  14. Н.Ф. Концептуальная модель гумусообразования // Почвоведение.1997. № 9. С. 1075−1080.
  15. Н.Ф., Борисов Б. А. Гумусообразование и агрономическая оценка почв. М.: Бизнес-центр «Агроконсалт». 1997. 82 с.
  16. Г. В. Структурно-функциональная роль почвы в устойчивости наземных экосистем // Экология и почвы. Том 1. Пущино: ОНТИ.1998. С. 9−15.
  17. Г. В., Никитин Е. Д. Функции почв в биосфере и экосистемах. М, Наука. 1990. 260 с.
  18. B.C., Бычкова JI.A. Последействие различных систем удобрения на азотный режим дерново-подзолистой почвы // Агрохимия. 2006. № 5. С. 12−19.
  19. Е.В. Агробиологическое обоснование приемов регулирования плодородия чернозема выщелоченного в условиях Правобережной лесостепи Среднего Поволжья. Автореферат дисс. кандидата сельскохозяйственных наук. Пенза: ФГОУ ВПО ПГСХА. 2004. 23 с.
  20. .Н. Влияние органических удобрений на плодородие старопахотной серой лесной почвы // Агрохимия. 2006. № 9. С. 13−23.
  21. JI.A. Способ определения минерализации органических веществ в почве по количеству продуцируемого С02 // Методы исследований органического вещества почв. М.: Россельхозакадемия ГНУ ВНИПТИОУ. 2005. С. 376−385.
  22. Иванникова J1.A., Гармаш Г. Г. Определение параметров минерализации органических веществ в почве способом реакционно-кинетического фракционирования // Почвоведение. 1994. № 9. С. 28−36.
  23. .М. Принципы и методы оценки содержания трансформируемого органического вещества в пахотных почвах // Почвоведение. 2003. № 3. С. 308−316.
  24. .М. Трансформация гумусового состояния черноземов при их сельскохозяйственном использовании //Почвоведение. 1998. № 7. С. 794−802.
  25. М.М. Органическое вещество почв, его природа, свойства и методы изучения /М.: Изд-во АН СССР. 1963. 314 с.
  26. Л.И., Авдеева Т. Н., Бойко Т. А. Изменение плодородия аллювиальных луговых почв центральных районов России в условиях антропогенного воздействия // Почвоведение. 1994. № 9. С. 80−89.
  27. В.Н. К методике определения общего азота в почвах и растениях // Агрохимия. 1972. № 11. С. 125−128. ^ 28. Кудеяров В. Н. Колориметрическое определение аммонийного азота в почвахи растениях феноловым методом //Агрохимия. 1965. № 6. С. 146−151.
  28. В.Н. Цикл азота в почве и эффективность удобрений / М.: Наука. 1989.216 с.
  29. В.Н., Башкин А. Ю., Кудеярова А. Н., Бочкарёв А. Н. Экологические проблемы применения минеральных удобрений / М.: Наука. 1984. 213 с.
  30. Т.В., Ходжаева А. К., Семенова Н. А., Иванникова Л. А., Семенов В. М. Минерализационно-иммобилизационная оборачиваемость азота в почве при разной обеспеченности разлагаемым органическим веществом // Агрохимия. 2006. № 6. С. 5−12.
  31. В.В., Босак В. Н. Влияние длительного применения удобрений на продуктивность севооборота и плодородие дерново-подзолистой легкосуглинистой почвы //Агрохимия. 2006. № 10. С. 15−18.
  32. Г. Е., Зябкина Г. А., Фомкина Т. П. Длительное применение органических и минеральных удобрений при оптимизации их доз и сочетаний на легкосуглинистой почве //Агрохимия. 2006. № 10. С. 33−40.
  33. Г. Е., Шевцова Л. К. Гумус и органические удобрения как основа плодородия // Плодородие. 2006. № 5. С. 27−29.
  34. В.Г., Кинжаев P.P., Арзамасова А. В. Влияние длительного применения и последействия удобрений на агрохимические свойства дерново-подзолистой почвы и иммобилизацию биогенных и токсичных элементов в агроценозе // Агрохимия. 2007. № 6. С. 5−13.
  35. В.М. Баланс азота удобрений в зависимости от условий азотного питания овощных культур и картофеля // Агрохимия. 1989. № 2. С. 10−18.
  36. В.М. Баланс и трансформация азота в агроэкосистемах // Новосибирск: Издательство СО РАН. 2002. 257 с.
  37. В.И. Плодородие почвы и устойчивость функционирования агроэкосистемы. М.: Наука. 2002. 214 с.
  38. .С., Бабынин В. И., Юнакова Т. А., Корецкая JI.K., Шаповалова B.C. Динамика гумусного фонда чернозема типичного после распашки залежи при разных системах удобрения // Агрохимия. 2006. № 2. С. 5−15.
  39. М.Ф. Особенности трансформации гумусовых веществ в разных условиях землепользования (на примере дерново-подзолистой почвы). Автореферат дисс. доктора биологических наук. М.: МГУ. 2007. 49 с.
  40. Д.С. Гумусовые кислоты почв и общая теория гумификации. М.: Изд -во МГУ. 1990. 326 с.
  41. Д.С. Химия почв. М.: Изд во МГУ. 1985. 376 с.
  42. Д.С., Бирюкова О. Н., Суханова Н. И. Органическое вещество почв Российской Федерации. М.: Наука. 1996. 256 с.
  43. Д.С., Бирюкова О. Н. Запасы углерода органических соединений в почвах Российской Федерации // Почвоведение. 1995. № 1. С. 21−32.
  44. Д.С., Бирюкова О. Н. Устойчивость органических соединений почвы и эмиссия парниковых газов в атмосферу // Почвоведение. 1998. № 7. С. 783−793.
  45. Д.С., Бирюкова О. Н., Розанова М. С. Дополнительные показатели гумусного состояния почв и их генетических горизонтов // Почвоведение. 2004. № 8. С. 918−926.
  46. Д.С., Бирюкова О. Н., Розанова М. С. Реальные и кажущиеся потери органического вещества почвами Российской Федерации // Почвоведение. 1996. № 2. С. 197−207.
  47. Плодородие черноземов России. Под ред. Милащенко Н. З., ВИУА. М.: 1998. 686 с.
  48. JI.M., Головченко А. В., Звягинцев Д. Г. Микробная биомасса в почвах // Докл. АН. 1995. Т. 344. № 6. С. 846−848.
  49. Л.М., Звягинцев Д. Г. Содержание и структура микробной биомассы как показатель экологического состояния почв // Почвоведение. 2005. № 6. С. 706−714.
  50. Л.М., Лукин С. М., Звягинцев Д. Г. Изменение состава микробной биомассы при культивации почв // Почвоведение. 1977. № 2. С. 206−212.
  51. Н.И., Дедов А. В., Верзилин В. В., Королев Н. Н. О негидролизуемом остатке гумуса черноземов // Почвоведение. 2006. № 4. С. 450 457.
  52. В.М., Ходжаева А. К. Агроэкологические функции растительных остатков в почве // Агрохимия. 2006. № 7. С. 63−81.
  53. В.М., Иванникова J1.A., Кузнецова Т. В. и др. Разложение и минерализация фитомассы в серой лесной почве: кинетический анализ // Почвоведение. 2001а. № 5. С. 569−577.
  54. В.М., Кузнецова Т. В., Иванникова J1.A., Семенова Н. А., Лисова Е. П. Участие растительной биомассы в формировании активной фазы почвенного азота // Агрохимия. 2001b. № 7. С. 5−12.
  55. В.М., Иванникова Л. А., Кузнецова Т. В. Лабораторная диагностика биологического качества органического вещества почвы // Методы исследований органического вещества почв. М.: Россельхозакадемия ГНУ ВНИПТИОУ. 2005. С. 214−230.
  56. В.М., Иванникова Л. А., Кузнецова Т. В., Семенова Н. А. Роль растительной биомассы в формировании активного пула органического вещества почвы // Почвоведение. 2004. № 11. С. 1350−1359.
  57. А.В., Садовникова Н. Б., Смагина М. В. и др. Моделирование динамики органического вещества почв. М.: Изд во МГУ. 2001. 120 с.
  58. Н.П., Когут Б. М. Динамика содержания гумуса в пахотных черноземах и подходы к ее изучению // Почвоведение. 1997. № 2. С. 178−184.
  59. Л.С., Рыжова И. М., Силева Т. М., Бурякова Ю. В. Исследование органического вещества черноземов Приволжской лесостепи методами физического фракционирования // Почвоведение. № 4. 2005. С. 430−437
  60. С .Я. О динамике органического вещества в почвах // Почвоведение. 1997. № 9. С. 1081−1086.
  61. М.М. Роль микроорганизмов в устойчивости почв // Экология и почвы. Пущино: ОНТИ ПНЦ РАН. 1998. С. 15−21.
  62. А. Д. Идеи В. В. Докучаева и проблема органического вещества почв // Почвоведение. 1996. № 2. С. 187−196.
  63. А.Д. О роли органического вещества почв в функционировании природных и сельскохозяйственных экосистем // Почвоведение. 1994. № 4. С. 4045.
  64. И.К., Габбасова И. М., Хазиев Ф. Х. Устойчивость почвенных процессов. Уфа: БГАУ. 2001. 327 с.
  65. И.Н. Влияние азотных удобрений на баланс углерода в почве в условиях вегетационного опыта // Агрохимия. 1984. № 10. С. 3−10.
  66. И.Н., Данилова А. А., Колбин С. А., Прозоров А. С. Особенности минерализации почвенного азота при минимизации зяблевой обработки выщелоченного чернозема в Западной Сибири // Агрохимия. 2007. № 6. С. 14−21.
  67. Л.К. Гумусное состояние и азотный фонд основных типов почв при длительном применении удобрений. Автореферат дисс. доктора биол. наук. М.: 1988.48 с.
  68. Л.Н. Влияние удобрений и извести на микробиологическую активность почвы// Агрохимия. 2005. № 12. С. 11−21.
  69. А.П., Надежкин С. М. Антропогенная эволюция гумусного состояния черноземов в лесостепи Поволжья // Антропогенная эволюция черноземов. Воронеж: Воронежский Государственный Университет. 2000. С. 145 170.
  70. Adu J.K., Oades J.M. Physical factors influencing decomposition of organic materials in soil aggregates // Soil Biol. Biochem. 1978. V. 10. P. 109−115.
  71. Alvarez R. A review of nitrogen fertilizer and conservation tillage effects on soil organic carbon storage // Soil Use and Management. 2005. V. 21. P. 38−52.
  72. Amato M., Ladd J.N. Assay for microbial biomass based on ninhydrin-reactive nitrogen in extracts of fumigated soils // Soil Biol. Biochem. 1988. V. 20. P. 107−114.
  73. Anderson J.P.E., Domsch K.N. A physiological method for the quantitative measurement of microbial biomass in soils // Soil Biol. Biochem. 1978. V. 10. P. 215 221.
  74. Anderson T.-H., Domsch K.H. Application of ecophysiological quotients (qC02 and qD) on microbial biomasses from soils of different cropping histories // Soil Biol. Biochem. 1990. V. 22. P. 251−255.
  75. Anderson T.-H., Domsch K.H. Determination of ecophysiological maintenance carbon requirements of soil microorganisms in a dormant state // Biol. Fertil. Soils. 1985. Vol. 9. № l.P. 81−89.
  76. Anderson T.-H., Domsch K.H. Ratios of microbial biomass to total organic carbon in arable soils // Soil. Biol. Biochem. 1989. V. 21. № 4. P. 471−479.
  77. Baldock J.A., Masiello C.A., Golinas Y., Hedges J.I. Cycling and composition of organic matter in terrestrial and marine ecosystems // Marine Chemistry. 2004. V. 92. P. 39−64.
  78. Barrios E., Buresh R.J., Sprent J.I. Organic matter in soil particle size and density fractions from maize and legume cropping systems // Soil Biol. Biochem. 1996. V. 28. P. 185−193.
  79. Beare M.H., Cabrera M. L., Hendrix P.F., Coleman D.C. Aggregate-protected and unprotected organic matter pools in conventional- and no-tillage soils // Soil Sci. Soc. Am. J. 1994. V. 58. P. 787−795.
  80. Bernoux M., Cerri C.C., Neill Ch. et al. The use of stable carbon isotopes for estimating soil organic matter turnover rates // Geoderma. 1998. V. 82. P. 43−58.
  81. Boix-Fayos C., Calvo-Cases A., Imeson A.C., Soriano-Soto M.D. Influence of soil properties on the aggregation of some Mediterranean soils and the use of aggregate size and stability as land degradation indicators // Catena. 2001. V. 44. P. 47−67.
  82. Bossio D.A., Scow K.M., Gunapala N., Graham K.J. Determinants of soil microbial communities: effects of agricultural management, season, and soil type on phospholipid fatty acid profiles // Microb. Ecol. 1998. V. 36. P. 1−12.
  83. Boudot J.P., Bel Hadj Brahim A., Steiman R., Seigle-Murandi F. Biodegradation of synthetic organo-metallic complexes of iron and aluminum with selected metal to carbon ratios // Soil Biol. Biochem. 1989. V. 21. P. 961−966.
  84. Bradley R.L., Fyles J.W. A kinetic parameters describing soil available carbon and its relationship to rate increase in С mineralization // Soil Biol. Biochem. 1995. Vol. 27. № 2. P. 167−172.
  85. Bronick C.J., Lai R. Soil structure and management: a review // Geoderma. 2005. V. 124. P. 3−22.
  86. Brookes P.C., Landman A., Pruden G., Jenkinson D.S. Chloroform fumigation and the release of soil nitrogen: a rapid direct extraction method to measure microbial biomass in soil // Soil Biol. Biochem. 1985. V. 17. P. 837−840.
  87. Cambardella C.A., Elliott E.T. Particulate soil organic matter changes across a grassland cultivation sequence // Soil Sci. Soc. Am. J. 1992. V. 56. P. 777−783.
  88. Cambardella C.A., Elliott E.T. Methods for physical separation and characterization of soil organic matter fractions // Geoderma. 1993. V. 56. P. 449−457.
  89. Carter M.R., Angers D.A., Gregorich E.G., Bolinder M.A. Characterizing organic matter retention for surface soils in eastern Canada using density and particle size fractions // Canadian Journal of Soil Research. 2003. V. 83. P. 11−23.
  90. Carter M.R., Macleod J.A. Biological properties of some Prince Edward Island soils: relationship between microbial biomass nitrogen and mineralizable nitrogen // Can J. Soil Sci. 1987. V. 67. P. 333−340.
  91. Chaney K., Swift R.S. The influence of organic matter on aggregate stability in some British soils // J. Soil Sci. 1984. V. 35. P. 223−230.
  92. Cheshire M.V., Christensen B.T., Sorensen L.H. Labeled and native sugars in particle size fractions from soils incubated with 14C straw for 6 to 18 years // J. Soil Sci. 1990. V. 41. P. 29−39.
  93. Christensen B.T. Decomposability of organic matter in particle size fractions from field soils with straw incorporation // Soil Biol. Biochem. 1987. V. 19. P. 429−435.
  94. Christensen B.T. Physical fractionation of soil and structural and functional complexity in organic matter turnover // European J. Soil Sci. 2001. V. 52. P. 345−353.
  95. Coelho R.R.R., Sacramento D.R., Linhares L.F. Amino sugars in fungal melanins and soil humic acids // European J. Soil Sci. 1997. V. 48. P. 425−429.
  96. Cole С.V., Paustian К., Elliot E.T., Metherell A.K., Ojima D.S., Parton W.J. Analyses of agroecosystem carbon pools // Water Air Soil Pollut. 1993. V. 70. P. 357−371.
  97. Collins H.P., Elliott E.T., Paustian K. et al. Soil carbon pools and fluxes in long-term corn belt agroecosystems // Soil Biol. Biochem. 2000. V. 32. P. 157−168.
  98. Curtin D., Campbell C. A., Messer D. Prediction of titratable acidity and soil sensitivity to pH change // Journal of Environmental Quality. 1996. V. 25. P. 280−284.
  99. Don A., Kalbitz K. Amounts and degradability of dissolved organic carbon from foliar litter at different decomposition stages // Soil Biology and Biochem. 2005. V. 37. P. 2171−2179.
  100. Drury C.F., Stone J.A., Findlay W.I. Microbial biomass and soil structure associated with corn, grass and legumes // Soil Sci. Soc. Am. J. 1991. V. 55. P. 805−811.
  101. Edmeades D.C. The long-term effects of manures and fertilizers on soil productivity and quality: a review // Nutrient Cycling in Agroecosystems. 2003. V. 66. P. 165−180.
  102. Ekschmitt K., Liu M., Vetter S., Fox O., Wolters V. Strategies used by soil biota to overcome soil organic matter stability why is dead organic matter left over in the soil? // Geoderma. 2005. V. 128. P. 167−176.
  103. Falloon P., Smith P., Coleman K., Marshall S. How important is inert organic matter for predictive soil carbon modelling using the Rothamsted carbon model? // Soil Biology Biochem. 2000. V. 32. P. 433−436.
  104. Falloon P.D., Smith P. Modeling refractory soil organic matter // Biol Fertil. Soils. 2000. V. 30. P. 388−398.
  105. Fauci M.F., Dick R.P. Soil microbial dynamics short and long term effects of inorganic and organic nitrogen // Soil Sci. Soc. Am. J. 1994. V. 58. P. 801−806.
  106. Franzluebbers A.J., Haney R.L., Honeycutt C.W., Schomberg H.H., Hons F.M. Flush of carbon dioxide following rewetting of dried soil relates to active organic pools // Soil Sci. Soc. Am. J. 2000. V. 64. P. 613−623.
  107. Franzluebbers A.J., Haney R.L., Hons F.M., Zuberer D.A. Determination of microbial biomass and nitrogen mineralization following rewetting of dried soil // Soil Sci. Soc. Am. J. 1996. V. 60. P. 1133−1139.
  108. Franzluebbers A.J., Hons F.M., Zuberer D.A. Soil organic carbon, microbial biomass and mineralisable carbon and nitrogen in sorghum // Soil Sci. Soc. Am. J. 1995. V. 59. P. 460−466.
  109. Gaudinski J.B., Trumbore S.E., Davidson E.A. et al. Soil carbon cycling in a temperate forest: radiocarbon-based estimates of residence times, sequestration rates and partitioning of fluxes // Biogeochemistry. 2000. V. 51. P. 33−69.
  110. Glaser В., Lehmann J., Fiihrboter M. et al. Carbon and nitrogen mineralization in cultivated and natural savanna soils of Northern Tanzania // Biol. Fert. Soils. 2001. V. 33. P. 301−309.
  111. Gregorich E.G., Monreal C.M., Schnitzer M., Schulten H.-R. Transformation of plant residues into soil organic matter: chemical characterization of plant tissue, isolated soil fractions and whole soils // Soil Sci. 1996. V. 161. P. 680−693.
  112. Hadas A., Feigenbaum S., Feigin A., Portnoy R. Nitrogen mineralization in profiles of differently managed soil types // Soil Sci. Soc. Am. J. 1986. V. 50. P. 314−319.
  113. Hassink J. Density fractions of soil macroorganic matter and microbial biomass as predictors of С and N mineralization // Soil Biol. Biochem. 1995a. V. 27. P. 1099−1108.
  114. Hassink, J. Decomposition rate constants of size and density fractions of soil organic matter// Soil Sci. Soc. Am. J. 1995b. V. 59. P. 1631−1635.
  115. Hassink J., Bouwman L.A., Zwart K.B., Bloem J., Brussaard L. Relationships between soil texture, physical protection of organic matter, soil biota, and С and N mineralization in grassland soils // Geoderma. 1993a. V. 57. P. 105−128.
  116. Hayes M.H.B. Solvent Systems for the Isolation of organic components from soils // Soil Sci. Soc. Am. J. 2006. V. 70. P. 986−994.
  117. Haynes R.J. Labile organic matter as an indicator of organic matter quality in arable and pastoral soils in New Zealand // Soil Biol. Biochem. 2000. V. 32. P. 211−219.
  118. Haynes R.J., Mokolobate M.S. Amelioration of Al toxicity and P deficiency in acid soils by additions of organic residues: a critical review of the phenomenon and the mechanisms involved // Nutrient Cycling in Agroecosystems. 2001. V. 59. P. 47−63.
  119. Haynes R.J., Naidu R. Influence of lime, fertilizer and manure applications on soil organic matter content and soil physical conditions: a review // Nutrient Cycling in Agroecosystems. 1998. V. 51. P. 123−137.
  120. Hopkins D.W., Shiel R.S. Size and activity of soil microbial communities in long term experimental grassland plots treated with manure and inorganic fertilizers // Biol. Fertil. Soils. 1996. V. 22. P. 66−70.
  121. Houghton R.A. Tropical deforestration and atmospheric carbon dioxide // Climatic Change. 1991. V. 19. P. 99−118.
  122. Islam K.R., Weil R.R., Mulchi C.L. et al. Freeze-dried soil extraction method for the measurement of microbial biomass С // Biol. Fert. Soils. 1997. V. 24. P. 205−210.
  123. Jans-Hammermeister D.C., McGill W.B. Evaluation of three simulation models used to describe plant residue decomposition in soil // Ecological Modelling. 1997. V. 104. P. 1−13.
  124. Jardine P.M., Weber N.L., McCarthy J.F. Mechanisms of dissolved organic carbon adsorption on soil // Soil Sci. Soc. Am. J. 1989. V. 53. P. 1378−1385.
  125. Jastrow J.D., Boutton T.W., Miller R.M. Carbon dynamics of aggregate associated organic matter estimated by Carbon-13 natural abundance // Soil Sci. Soc. Am. J. 1996. V. 60. P. 801−897.
  126. Jenkinson D.S., Powlson D.S. The effects of biocidal treatment on metabolism in soil. V. A method for measuring soil biomass // Soil Biol. Biochem. 1976. V. 8. P. 209 213.
  127. Jenkinson D.S., Rayner J.H. The turnover of soil organic matter in some of the Rothamsted classical experiments // Soil Science. 1977. V. 123. №. 5. P. 298−305.
  128. Kaiser E.-A., Martens R., Heinemeyer O. Temporal changes in soil microbial biomass carbon in an arable soil: consequences for soil sampling // Plant and Soil. 1995. V. 170. P. 287−295.
  129. Kalbitz K., Solinger S., Park J.-H., Michalzik В., Matzner E. Controls on the dynamics of dissolved organic matter in soils: a review // Soil Science. 2000. V. 165. P. 277−304.
  130. Kalbitz К., Schwesig D., Rethemeyer J., Matzner E. Stabilization of dissolved organic matter by sorption to the mineral soil // Soil Biol. Biochem. 2005. V. 37. P. 13 191 331.
  131. Karlen D.L., Ditzler C.A., Andrews S.S. Soil quality: why and how? // Geoderma. 2003. V. 114. P. 145−156.
  132. Khaleel R., Reddy K.R., Overcash M.R. Changes in soil physical properties due to organic waste applications: a review // Journal of Environmental Quality. 1981. V. 10. P. 133−141.
  133. Korschens M., Weigel A., Schulz E. Turnover of soil organic matter (SOM) and long-term balances tools for evaluating sustainable productivity of soils // Zeitschrift fur Pflanzenernahrung und Bodenkunde. 1998. V. 161. P. 409−424.
  134. Kowalenko G.G. Organic nitrogen, phosphorus and sulfur in soils // Soil Organic Matter. Developments in Soil Science. M. Schnitzer, S.U. Khan (Eds.). Amsterdam: Elsevier. 1978. V. 8. P. 95−136.
  135. Kulik D. A., Aja S.U., Sinitsyn V.A., Wood S.A. Acid-base surface chemistry and sorption of some lanthanides on K±saturated Marblehead illite: II. A multisite-surface complexation modeling//Geochim. Cosmochim. Acta. 2000. V. 64. P. 195−213.
  136. Ladd J.N., Amato M., Grace P.R., van Veen J.A. Simulation of 14C turnover through the microbial biomass in soil incubated with 14C-labelled plant residues // Soil Biol. Biochem. 1995. V. 27. P. 777−783.
  137. Lai R. Soil carbon dynamics in cropland and rangeland // Environmental Pollution. 2002. V. 116. P. 353−362.
  138. Lai R. Soil carbon sequestration to mitigate climate change // Geoderma. 2004. V. 123. P. 1−22.
  139. Lavahun M.F.E., Joergensen R.G., Meyer B. Activity and biomass of soil microorganisms at different depths // Biol. Fertil. Soils. 1996. V. 23. № 1. P. 38−42.
  140. Linhares A.A., Linhares L.F., Coelho R.R.R. Neutral sugars in melanins synthesized by actinomycetes from Brazilian soils // Biol. Fertil. Soils. 1998. V. 27. P. 162−167.
  141. Loveland P., Webb J. Is there a critical level of organic matter in the agricultural soils of temperate regions: a review // Soil and Tillage Research. 2003. V. 70. P. 1−18.
  142. Manna M.C., Swarup A., Wanjari R.H., Slingh Y.V., Ghosh P.K., Singh K.N., Tripathi A.K., Saha M.N. Soil organic matter in a West Bengal inceptisol after 30 years of multiple cropping and fertilization // Soil Sci. Soc. Am. J. 2006. V. 70. P. 121−129.
  143. Marschner P., Kandeler E., Marschner B. Structure and function of the soil microbial community in a long-term fertilizer experiment // Soil Biology and Biochem. 2003. V. 35. P. 453−461.
  144. Martens R. Current methods for measuring microbial biomass С in soil: potentials and limitations // Biol. Fertil. Soils. 1995. V. 19. P. 87−99.
  145. Martin J.P., Haider K., Farmer W.J. et al. Decomposition and distribution of residual activity of some 14C-microbial polysaccharides and cells, glucose, cellulose and wheat straw in soil // Soil Biol. Biochem. 1974. V. 6. P. 221−230.
  146. McGrath S.P., Sanders J.R., Shalaby M.H. The effects of soil organic matter levels on soil solution concentrations and extractibilities of manganese, zinc and copper // Geoderma. 1988. V. 42. P. 177−188.
  147. Mikutta R., Kleber M., Torn M.S., Jahn R. Stabilization of soil organic matter: association with minerals or chemical recalcitrance? // Biogeochemistry. 2006. V. 77. P. 25−56.
  148. Molina J.A.E., Smith P. Modelling carbon and nitrogen processes in soils // Adv Agron. 1998. V. 62. P. 253−298.
  149. Molina J.A.E., Crocker G.J., Grace P.R. et al. Simulating trends in soil organic carbon in long-term experiments using the NCSOIL and NCSWAP models // Geoderma. 1997. V. 81. P. 91−107.
  150. Motavalli P.P., Palm C.A., Parton W.J., Elliott E.T., Frey S.F. Comparison of laboratory and modeling simulation methods for estimating soil carbon pools in tropical forest soils // Soil Biol.Biochem. 1994. V. 26. P. 935−944.
  151. Nicolardot В., Molina J.A.E., Allard M.R. С and N fluxes between pools of soil organic matter: Model calibration with long-term incubation data // Soil Biol. Biochem. 1994. V. 26. P. 235−243.
  152. Oik D.C., Gregorich E.G. Overview of the symposium proceedings, «Meaningful pools in determining soil carbon and nitrogen dynamics» // Soil Sci. Soc. Am. J. 2006. V. 70. P. 967−974.
  153. Omay A.B. Soil microbial and chemical property under long crop rotation and fertilization// Soil Sci. Soc. Am. J. 1997. V. 61. P. 1672−1678.
  154. Paul E.A., Collins H.P., Leavitt S.W. Dynamics of resistant soil carbon of Midwestern agricultural soils measured by naturally occurring 14C abundance // Geoderma. 2001. V. 104. P. 239−256.
  155. Paul E.A., Harris D., Collins H.P. et al. Evolution of C02 and soil carbon dynamics in biologically managed, row-crop agroecosystems // Applied Soil Ecology. 1999. V. 11. P. 53−65.
  156. Paul E.A., Morris S.J., Conant R.T., Plante A.F. Does the acid hydrolysis-incubation method measure meaningful soil organic carbon pools? // Soil Sci. Soc. Am. J. 2006. V. 70. P. 1023−1035.
  157. Paustian K., Six J., Elliot E.T. et al. Management options for reducing C02 emissions from agricultural soils // Biogeochemistry. 2000. V. 48. P. 147−163.
  158. Powlson D.S., Brooks P.C., Christensen B.T. Measurement of soil microbial biomass provides an early indication of changes in total soil organic matter due to straw incorporation// Soil Biol. Biochem. 1987. V. 19. P. 159−164.
  159. Puget P., Chenu C., Balesdent J. Total and young organic matter distributions in aggregates of silty cultivated soils // European Journal of Soil Science. 1995. V. 46. P. 449−459.
  160. Quails R.G., Haines B.L. Geochemistry of dissolved organic nutrients in water percolating through a forest ecosystem // Soil Sci. Soc. Am. J. 1991. V. 55. P. 1112−1123.
  161. Quails R.G., Bridgham S.D. Mineralization rate of 14C-labelled dissolved organic matter from leaf litter in soils of a weathering chronosequence // Soil Biology and Biochem. 2005. V. 37. P. 905−916.
  162. Romkens P.F.A.M., van der Plicht J., Hassink J. Soil organic matter dynamics after conversion of arable land to pasture // Biol. Fertil. Soils. 1999. V. 28. P. 277−284.
  163. Schloter M., Dilly O., Munch J.C. Indicators for evaluating soil quality // Agriculture, Ecosystems and Environment. 2003. V. 98. P. 255−262.
  164. Schnitzer M., McAithur D.F.E., Schulten H.-R., Kozak L.M., Huang P.M. Long-term cultivation affects on the quantity and quality of organic matter in Selected Canadian prarie soils // Geoderma. 2006. V. 130. P. 141−156.
  165. Scholes M., Powlson D., Tian G. Input control of organic matter dynamics // Geoderma. 1997. V. 79. P. 25−47.
  166. Six J., Conant R.T., Paul E.A., Paustian K. Stabilization mechanisms of soil organic matter: implications for C-saturation of soils // Plant and Soil. 2002. V. 241. P. 155−176.
  167. Six J., Paustian K., Elliott E.T., Combrink C. Soil structure and organic matter: I. Distribution of aggregate-size classes and aggregates-associated carbon // Soil Sci. Soc. Am. J. 2000. V. 64. P. 681−689.
  168. Six J., Bossuyt H., Degryze S., Denef K. A history of research on the link between (micro)aggregates, soil biota, and soil organic matter dynamics // Soil & Tillage Research. 2004. V. 79. P. 7−31.
  169. Six J., Frey S.D., Thiet R.K., Batten K.M. Bacterial and Fungal Contributions to Carbon Sequestration in Agroecosystems // Soil Sci. Soc. Am. J. 2006. V. 70. P. 555 569.
  170. Sollins P., Robertson G.P., Uehara G. Nutrient mobility in variable- and permanent-charge soils //Biogeochemistry. 1988. V. 6. P. 181−189.
  171. Sollins P., Homann P., Caldwell B.A. Stabilization and destabilization of soil organic matter: mechanisms and controls // Geoderma. 1996. V. 74. P. 65−105.
  172. Stanford G., Smith S.J. Nitrogen mineralization potential of soils // Soil Sci. Soc. Amer. Proc. 1972. V. 109. P. 190−196.
  173. Starr M., Westman C. J., Ala-Reini J. The acid buffer capacity of some Finnish forest soils: results of acid addition laboratory experiments // Water, Air and Soil Pollution. 1996. V. 89. P. 147−157.
  174. Stemmer M., Roth K., Kandeler E. Carbon mineralization and microbial activity in a field site trial used for 14C turnover experiments over a period of 30 years // Biol. Fert. Soils. 2000. V. 31. P. 294−302.
  175. Stevenson F.J. Humus chemistry: genesis, compositions, reactions. 2nd ed. New York: John Wiley & Sons. 1994.
  176. Swanston C., Homann P. S., Caldwell B.A., Myrold D.D., Ganio L., Sollins P. Long-term effects of elevated nitrogen on forest soil organic matter stability // Biogeochemistry. 2004. Y. 70. P. 229−252.
  177. Swanston C.W., Torn M.S., Hansen P.J., Southon J.R., Garten C.T., Hanlon E.M., Ganio L. Initial characterization of processes .of soil carbon stabilization using forest stand-level radiocarbon enrichment // Geoderma. 2005. V. 128. P. 52−62.
  178. Trumbore S.E. Age of soil organic matter and soil respiration: radiocarbon constraints on belowground С dynamics // Ecological Applications. 2000. V. 10. P. 399 411.
  179. Vanlauwe В., Dendooven L., Merckx R. Residue fractionation and decomposition: the significance of the active fraction // Plant and Soil. 1994. V. 158. P. 263−274.
  180. Varadachari С., Mondal A.H., Ghosh К. Some aspects of clay humus complexation: effect of exchangeable cations and lattice charge // Soil Sci. 1991. V. 151. P. 220−227.
  181. Varadachari C., Mondal A.H., Nayak D.C., Ghosh K. Clay-humus complexation: effect of pH and the nature of bonding // Soil Biol. Biochem. 1994. V. 26. P. 1145−1149.
  182. Varvel G. E. Soil organic carbon changes in diversified rotations of the Western corn belt // Soil Sci. Soc. Am. J. 2006. V. 70. P. 426−433.
  183. Wardle D.A. A comparative assessment of factors which influence microbial biomass carbon and nitrogen levels in soil // Biol. Rev. 1992. V. 67. P. 321−358.
  184. Wardle D.A. Changes in the microbial biomass and metabolic quotient during leaf litter succession in some New Zealand forest and scrubland ecosystems // Functional Ecology. 1993. V. 7. P. 346−355.
  185. Wardle D.A., Ghani A. A critique of the microbial metabolic quotient (qC02) as a bioindicator of disturbance and ecosystem development // Soil Biol. Biochem. 1995. V. 27. P. 1601−1610.
  186. Wardle D.A., Yeates G.W., Watson R.N., Nicholson K.S. Response of the soil microbial biomass and plant litter decomposition in maize and asparagus cropping systems // Soil Biol. Biochem. 1993. V. 25. P. 857−868.
  187. Willson T.C., Paul E.A., Harwood R.R. Biologically active soil organic matter fractions in sustainable cropping systems // Appl. Soil Ecol. 2001. V. 16. P. 63−76.
  188. Wolters V. Invertebrate control of soil organic matter stability // Biol. Fert. Soils. 2000. V. 31. P. 1−19.
  189. Wong M.T.F., Gibbs P., Nortcliff S., Swift R.S. Measurement of the acid neutralizing capacity of agroforestry tree prunings added to tropical soils // Journal of Agricultural Science. 2000. V. 134. P. 269−276.•леспашняо а
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?