Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Рост и продукция жидких углеводородов водорослью P. Botryococcus

Диссертация: Рост и продукция жидких углеводородов водорослью P. Botryococcus
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

С целью поиска факторов, влияющих на продукцию и выход углеводородов у B. braunii Kutz No LB 807/1 Droop 1950 H-252, проведено выращивание водоросли в различных условиях культивирования, а именно: при дефиците азота, неоптимальной температуре, при ингибировании роста NaCl. Показано, что исследованные факторы не влияют на синтез углеводородов у данного штамма. Содержание последних в биомассе… Читать ещё >

Содержание

  • ГЛАВА 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Углеводороды живых организмов
    • 1. 2. Зеленая водоросль Botryococcus braunii, распространение и физиология
    • 1. 3. Физиология роста В. brauni
    • 1. 4. Химический состав В. brauni
    • 1. 5. Структура углеводородов, синтезируемых В. brauni
    • 1. 6. Влияние факторов среды на рост и продукцию углеводородов у В. brauni
  • ГЛАВА 2. Объекты и методы исследования
    • 2. 1. Объекты исследования
    • 2. 2. Выращивание водорослей и методы измерения параметров культивирования
    • 2. 3. Качественный и количественный анализы пигментов
    • 2. 4. Определение биохимического состава клеток водорослей
    • 2. 5. Анализ состава жирных кислот
    • 2. 6. Идентификация структуры углеводородов
    • 2. 7. Статистическая обработка результатов
  • ГЛАВА 3. Физиолого-биохимическое исследование музейного штамма В. braunii Kutz LB No 807/1 Droop 1950 H
    • 3. 1. Получение лабораторной культуры В. braun
  • Kutz LB No 807/1 Droop 1950 H
    • 3. 2. Анализ пигментов В. braunii Kutz LB No 807/
  • Droop 1950 H
    • 3. 3. Химический состав В. braunii Kutz LB No 807/
  • Droop
    • 3. 4. Жирнокислотный состав липидов B. braun
  • Kutz LB No 807/1 Droop 1950 H
  • Резюме
  • ГЛАВА 4. Влияние факторов среды на рост B. braun
  • Kutz LB No 807/1 Droop 1950 H-252, синтез липидов и продукцию углеводородов
    • 4. 1. Влияние дефицита азота на рост и биохимический состав B. braunii Kutz LB No 807/
  • Droop 1950 H
    • 4. 2. Влияние температуры на рост и продукцию углеводородов B. braunii Kutz LB No 807/
  • Droop 1950 H
    • 4. 3. Влияние NaCl на рост и состав липидов В. braun
  • Kutz LB No 807/1 Droop 1950 H
  • Резюме
  • ГЛАВА 5. Идентификация структуры углеводородов, синтезируемых B. brauni
    • 5. 1. Структура углеводородов музейного штамма
    • B. braunii Kutz LB No 807/1 Droop 1950 H
      • 5. 2. Выделение изолята Botryococcus из озера Шира
  • Резюме

Рост и продукция жидких углеводородов водорослью P. Botryococcus (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Разработка экологически чистых и эффективных способов получения энергоносителей и преобразования энергии актуально в связи с исчерпаемостью традиционных источников энергии и повышением требований к охране окружающей среды. Технологическая биоэнергетика — наука о путях и механизмах трансформации энергии в биологических системах является одним из интенсивно развивающихся разделов биотехнологии. Это направление основано как на использовании достаточно хорошо освоенных биотехнологических процессов превращения биомассы в энергоносители в процессах биометаногенеза и производства спирта, так и принципиально новых разработок, ориентированных на модификацию и повышение эффективности самого процесса фотосинтеза, создание биотопливных элементов, получение фотоводорода и жидких углеводородов. Среди продуцентов жидких углеводородов наиболее перспективной считается колониальная зеленая водоросль Botiyococcus braunii, широко распространенная в естественных условиях в различных климатических зонах как в пресных, так и солоноватых водах.(Hillen et al., 1982; Ahmad, 1988; Kitasato et al., 1989; Metzger et al, 1991a).

Для В. braunii характерна способность к синтезу углеводородов различной структуры, выходы которых, как полагают, определяются штаммовой принадлежностью и, возможно, условиями выращивания (Casadevall et al., 1985; Metzger & Largeau., 1999). В зависимости от типа синтезируемых углеводородов (алкадиены и триены, тритерпеноидные углеводороды, названные ботриококкценами и Сад-ликопадиен) штаммы В. braunii разделены на расы А, В и L (Metzger et al., 1991а).

Изучение данной водоросли в настоящее время активно проводится за рубежом. Описан опыт эксплуатации культур В. braunii в условиях опытных производств с целью получения жидких углеводородов, используемых в качестве топлива, а также для производства фармацевтических препаратов или косметических средств. Так, в США действует ферма по выращиванию 6 водоросли B. braunii с суммарной площадью водоема 52 тыс.га. Несмотря на это, многие вопросы биологии и биотехнологии B. braunii остаются все еще малоизученными. Исследования сосредоточены в основном на идентификации структуры углеводородов и других необычных соединений липидной природы, синтезируемых штаммами B. brauniiвыделенных из разных географических и климатических зон. Не выявлена связь между условиями выращивания, физиологическим состоянием культуры и синтезом углеводородов. Не установлено как связаны состав липидов и жирных кислот, являющихся предшественниками углеводородов, с общим выходом углеводородов и их структурой.

Целью настоящей работы было исследование роста и продукции углеводородов В. braunii в зависимости от условий культивирования водоросли.

Для этого необходимо было решить следующие задачи:

1. Ввести музейный штамм B. braunii Kutz No LB 807/1 Droop 1950 H-252 в культуру, исследовать его физиолого-биохимические свойства и оценить способность штамма к синтезу углеводородов.

2. Изучить влияние условий культивирования на синтез липидов, жирных кислот и углеводородов у B. braunii Kutz No LB 807/1 Droop 1950 H-252.

3. Идентифицировать структуру углеводородов музейного штамма B. braunii Kutz No LB 807/1 Droop 1950 H-252 и изолята Botryococcus, обитающего в озере Шира.

Научная новизна работы и практическая значимость.

Впервые получена устойчивая лабораторная культура В. braunii Kutz No LB 807/1 Droop 1950 H-252, исследованы физиологические характеристики водоросли (|li, время генерации и продуктивность культуры) и показана способность данного штамма к синтезу углеводородов. Установлено, что синтез углеводородов у штамма не зависит от условий среды и определяется возрастом культуры. Максимальная продукция углеводородов характерна для физиологически активной культуры (в экспоненциальной — начале линейной 7 фазах роста). Изучен состав липидов, ЖК и идентифицирована структура углеводородов у двух культур Botryococcus: музейного штамма В. braunii Kiitz No LB 807/1 Droop 1950 H-252 и впервые выделенного из озера Шира изолята В. braunii. Установлено, что музейный штамм синтезирует в основном алифатический углеводороды С]4-С28- Углеводородный спектр изолята В. braunii, выделенного из озера Шира, представлен диенами и триенами С23-С31.

Результаты исследования могут быть использованы для оценки и выбора наиболее перспективных штаммов для биотехнологического синтеза жидких углеводородов.

Положения, выносимые на. защиту.

1. Физиолого-биохимические характеристики культуры В. braunii Kutz No LB 807/1 Droop 1950 H-252.

2. Культивирование В. braunii Kutz No LB 807/1 Droop 1950 H-252 в неоптимальных условиях приводит к существенным изменениям в составе и содержании липидов и жирных кислот, но не влияет на синтез и выделение углеводородов.

3. Идентифицированная структура углеводородов музейного штамма В. braunii Kutz No LB 807/1 Droop 1950 H-252 и изолята Botryococcus, впервые выделенного из озера Шира.

Апробация работы. Материалы диссертации докладывались на XXXVII Международной конференции «Студент и научно-технический прогресс», (Новосибирск, НГУ, 1999), конференции молодых ученых Красноярского научного центра СО РАН (Красноярск, 1999), 8-й Международной научной конференции по соленым озерам (Жемчужный, Хакасия, 2002), семинарах Института биофизики СО РАН (Красноярск, 1998;2001) 8.

Часть биохимических анализов выполнено аналитической лабораторией ИБФ СО РАН. Все исследования проведены при непосредственном участии автора.

Работа выполнена при поддержке Министерства образования Российской Федерации и Американского фонда гражданских исследований и развития для независимых государств бывшего Советского Союза, грант © REC-002 и РФФИ (грант № 99−04−49 321, индивидуальный грант для молодых ученых MAC № 0104−6 340).

Автор благодарит своих научных руководителей Волову Татьяну Григорьевну и Калачеву Галину Сергеевну за постоянное внимание и помощь в работе, сотрудников Института биофизики О. Г. Беляеву., В. Ф. Плотникова, Е. И. Василенко за помощь в проведении экспериментов, М. И. Гладышева за искренний интерес к работе и обсуждение результатов. 9.

104 Выводы.

1. Впервые введен в лабораторную культуру и исследован музейный штамм зеленой водоросли B. braunii Kutz No LB Droop 1950 H-252. Достигнутые показатели удельной скорости роста (0.235 сут1) сопоставимы с лучшими зарубежными результатами.

2. Исследованы динамика синтеза внутриклеточных соединений B. braunii Kutz No LB Droop 1950 H-252 в ходе развития периодической культуры и установлена способность штамма к синтезу углеводородов во все фазах роста с максимумом содержания (12% от липидов) в биомассе и выделения (33% от липидов) в среду.

3. Идентифицирован состав внутрии внеклеточных липидов, которые представлены полярными липидами, диацилглицеринами, стеринами, спиртами, свободными жирными кислотами, триацилглицеринами, эфирами стеринов и углеводородами. Различия в распределении классов среди внутрии внеклеточных липидах свидетельствует о прижизненном характере их выделения, включая фракцию углеводородов.

4. Жирнокислотный состав липидов B. braunii Kutz No LB Droop 1950 H-252 представлен C12-C24 кислотами и характеризуется высоким содержанием диеновых и триеновых кислот С16-С18 — рядов. Длйнноцепочечных моноеновых кислот С2в-Сз2, характерных для алкадиен-, ботриококкцени ликопадиенсинтезирующих штаммов B. braunii, не обнаружено.

5. Ограничение роста B. braunii Kutz No LB Droop 1950 H-252 (дефицит азота, неоптимальная температура и ингибирование NaCl) стимулирует накопление запасных триацилглицеринов, вызывает адаптивное перераспределение насыщенных и ненасыщенных жирных кислот и не влияет на синтез и выделение углеводородов у исследуемого штамма.

6. Идентифицирована структура углеводородов B. braunii Kutz LB No 807/1 Droop 1950 H-252, представленных углеводородами C14-C28.

Доминирующими являются алифатические линейные углеводороды С20-С27 (54.2% от суммы) и 2,6,1 ОД4-тетраметил гексадекадиен (20.5%).

7. Впервые выделен Botryococcus из озера Шира, для которого в отличие от музейного штамма, характерно высокое содержание липидов (до 40% от сухого веса), иной состав жирных кислот, представленных в основном насыщенными и моноеновыми жирными кислотами С12-С32. Углеводороды, содержание которых составляет до 60% от липидов, представлены диенами и триенами С23-С33. Результаты идентификации жирных кислот и углеводородов свидетельствуют о принадлежности организма к B. braunii, раса А.

Заключение

.

Настоящая работа посвящена изучению роста, состава и закономерностей продукции углеводородов с целью поиска факторов, влияющих на их синтез у водоросли B. braunii, являющейся перспективным продуцентом жидких углеводородов среди живых организмов.

Исследованы две культуры зеленой водоросли B. braunii: музейный штамм B. braunii Kutz No LB 807/1 Droop 1950 H-252 и изолят B. braunii, впервые выделенный летом 2000 г из озера Шира.

Введен в устойчивую лабораторную культуру музейный штамм B. braunii Kutz No LB 807/1 Droop 1950 H-252 и исследованы физиолого-биохимические особенности водоросли. Установлена способность штамма к синтезу углеводородов с максимумом в биомассе (12% от липидов) и культуральной среде (33% от липидов), соответствующему физиологически активному состоянию культуры (конец экспоненциальной — начало линейной фаз роста).

В связи со способностью B. braunii синтезировать необычный липидный компонент — жидкие углеводороды, охарактеризован состав липидов данного штамма. Установлено, что внутриклеточные липиды представлены полярными липидами, диацилглицеринами, стеринами, спиртами, СЖК, ТАГ, эфирами стеринов, углеводородами. Соотношение классов во внеклеточных липидах, среди которых идентифицированы полярные липиды, стерины, СЖК, ТАГ и углеводороды, более равномерно по сравнению с внутриклеточными и мало зависело от фазы роста водоросли.

Изучен состав ЖК липидов B. braunii Kutz No LB 807/1 Droop 1950 H-252, среди которых идентифицированы кислоты Си — С24. Показано, что жирнокислотный спектр липидов данной водоросли характеризуется высоким содержанием диеновых и триеновых кислот С16-С18 — ряда. Длинноцепочечных моноеновых кислот, характерных для алкадиен-, ботриококкцени ликопадиенсинтезирующих штаммов B. braunii, не обнаружено.

С целью поиска факторов, влияющих на продукцию и выход углеводородов у B. braunii Kutz No LB 807/1 Droop 1950 H-252, проведено выращивание водоросли в различных условиях культивирования, а именно: при дефиците азота, неоптимальной температуре, при ингибировании роста NaCl. Показано, что исследованные факторы не влияют на синтез углеводородов у данного штамма. Содержание последних в биомассе водоросли, выращенной в различных условиях культивирования, достоверно не отличалось и составляло 14−16% от липидов. В тоже время исследованные факторы существенно затрагивали синтез липидов и жирных кислот. За исключением повышенной температуры, все факторы стимулировали накопление липидов, в основном за счет фракции триацилглицеринов, являющихся запасными веществами многих зеленых водорослей (Thompson, 1996).

Установлено, что жирнокислотный состав липидов B. braunii Kutz No LB 807/1 Droop 1950 H-252 существенно изменялся в зависимости от условий роста. При дефиците азота в среде происходило снижение содержания триеновых кислот и увеличение доли моноеновых, в основном олеиновой, и насыщенных кислот, что, по-видимому, связано с перераспределением в содержании полярных липидов и триацилглицеринов, отличающихся специфичностью жирнокислотных цепей.

Влияние температуры на состав ЖК липидов B. braunii Kutz No LB 807/1 Droop 1950 H-252 согласуется с литературными данными, свидетельствующими, что снижение температуры роста сопровождается увеличением ненасыщенности жирных кислот, а повышенные температуры, наоборот, снижают уровень ненасыщенных кислот в липидах мембран фотосинтезирующих организмов (Browse & Somerville, 1991). При повышенной температуре (32°С) в липидах B. braunii Kutz No LB 807/1 Droop 1950 H-252 происходило изменение баланса диеновых и триеновых кислот в сторону увеличения диеновых кислот, являющихся более насыщенными, чем триеновые. При понижении температуры до 18 °C достоверные изменения заключались в снижении относительного содержания моноеновых кислот до следовых.

102 количеств на фоне увеличения триеновых кислот, что привело к увеличению ненасыщенности ЖК.

Основные изменения в составе ЖК при ингибировании роста NaCl произошли в лаг-фазе и были связаны со снижением полиеновых кислот и увеличением содержания длинноцепочечных насыщенных жирных кислот. Однако при возобновлении роста, содержание этих кислот достигло значений, сопоставимых с контролем, что говорит об адаптации водоросли и состава ЖК к исследованным концентрациям NaCl.

С использованием хромато-масс-спектрометрии исследован состав углеводородов музейного штамма B. braunii Kutz No LB 807/1 Droop 1950 H-252 и установлено, что углеводородный спектр представлен в основном насыщенными линейными и разветвленными углеводородами с длиной углеродной цепи от С14 до C2g.

В связи с тем, что для музейного штамма B. braunii Kutz No LB 807/1 Droop 1950 H-252 характерны углеводороды в основном алифатической природы с низким общим выходом, который не стимулируется различными факторами среды, следующим этапом работы стал поиск природных штаммов с более высоким содержанием углеводородов.

Из озера Шира впервые выделен изолят Botryococcus. Установлено, что в отличие от музейного штамма B. braunii Kutz No LB 807/1 Droop 1950 H-252, жирнокислотный состав липидов изолята B. braunii, выделенного из озера Шира, представлен в основном насыщенными и моноеновыми жирными кислотами Сп~ С32, среди которых были идентифицированы и длинноцепочечные моноеновые ЖК, наличие которых характерно для B.braunii. Состав углеводородов изолята B. braunii, выделенного из озера Шира также принципиально отличался от исследуемого музейного штамма. Углеводороды представлены диенами и триенами С2з-Сзь среди которых доминирующими определены г/ис-изомеры С27:2> С29:2 и Съа. В небольших количествах присутствовали и транс-изомеры, наличие которых отмечено и для других штаммов B.braunii. По составу углеводородов изолят Botryococcus озера Шира похож на большинство к.

Показать весь текст

Список литературы

  1. М.И., Мухитова Ф. К., Золотухина J1.M., Кияшко С. В., Багаева 'Г.В., Карпилова И. Ю. Внеклеточные продукты метаболизма сульфатредуцирующих бактерий рода Desulfovibrio II Микробиология. 1992. -Т.61.-Вып.2,-С. 194−200.
  2. М.Э. Атомно-абсорбционный спектрофотометрический анализ. М.: Химия, 1982.-222 с.
  3. В.Ф., Ладыгина М. Е., Хандобина Л. М. Большой практикум по физиологии растений. М.: Высш.шк., 1975. — 392 с.
  4. М. Техника липидологии. Выделение, анализ и идентификация липидов: Пер. с англ. М.: Мир, 1975. — 305 с.
  5. Клячко-Гурвич Г. Л., Семенова А. Н., Семененко В. Е. Липидный обмен хлоропластов при адаптации клеток хлореллы к снижению освещенности // Физиология растений. 1980. — Т.27. — Вьпт.2. — С.370−379.
  6. В.И., Басаргин Н. Н., Мискирева Л. Г. Методика определения сульфатов в растворах // Агрохимия. 1968. — № 3. — С. 134−136.
  7. Г. Ф. Биометрия. М.: Высшая школа, 1990. — 351 с.
  8. Методы биохимического исследования растений / Под ред. Ермакова А. И. Л.: Колос, 1972. -306 с.
  9. Г. В. Методическое руководство по тонкослойной хроматографии фосфолипидов. М.: Наука, 1972. — 28 с.
  10. Г. В., Руцкая Л. А. Количественное определение липидов мембран хлоропластов // Физиология растений. 1976. — Т. 23. — С. 899−905.
  11. С.Дж. Основы культивирования микроорганизмов и клеток,— М.: Изд. Мир, 1978, — 330 с.
  12. .П. Практикум по биохимии растений. М.: Колос, 1976. — 256 с.107
  13. В.М., Громова М. И. Практическое руководство по спектрофотометрии и колориметрии. М: Изд-во МГУ, 1961. — 159 с.
  14. А. Биотехнология: свершения и надежды: Пер. с англ. М: Мир, 1987.-412 с.
  15. Aaronson S., Berner Т., Gold К., Kushner L., Patni N.J., Repak A., Rubin D. Some observations on the green planktonic alga Botryococcus braunii and its bloom form // Journal of Plankton Research. 1983. — V.5. P.691−700.
  16. Ahmad M.R. Physiological studies on Botryococcus. 1. Effect of growth promoting substances on the growth of green alga Botryococcus braunii II Ciyptogamie, Algologie. 1988. — V.9. — P. 127−131.
  17. Albro O.W., Dittmer J.C. Biochemistry of long-chain, nonisoprenoid hydrocarbons. I. Characterization of the hydrocarbons of Sarcina lutea and the isolation of possible intermediates of biosynthesis // Biochemistry. 1969a. — V.8. -№ 1. — P.394−405.
  18. Albro O.W., Dittmer J.C. Biochemistry of long-chain, nonisoprenoid hydrocarbons. IV. Characteristics of synthesis by a cell-free preparation of Sarcina luteal! Biochemistry. 1969d. — V.8. — № 8. — P.3317−3324.
  19. Al-Hasan R.H., Ghannoum M.A., Sallal A-K., Abu-Elteen K.H., Radwan S.S. Correlative changes of growth, pigmentation and lipid composition of Dunaliella salina in response to halostress // J. Gen. Microbiol. 1987. — V. 133. — P.2607−2616.
  20. Allard В., Casadevall E. Carbohydrate composition and characterization of sugars from the green microalga Botryococcus braunii 11 Phytochemistry. 1990. -V.29. — P.1875−1878.
  21. Amico V. Marine brown algae of family Cystaseiraceae: chemistry and chemotaxonomy // Phytochemistry. 1995. — V.39. — P. 1257−1279.
  22. Bailliez C., Largeau C., Casadevall E. Growth and hydrocarbon production of Botiyococcus braunii immobilized in calcium alginate gel // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1985. — V.23. — P.99−105.
  23. Barrow R.A., Capon J. Alkyl and alkenylresorcinols from an Australian marine sponge, Haliclona sp. (Haplosclerida: Haliclonidae) // Australian Journal of Chemistry. 1991. — V.44. -P.1393−1405.
  24. Belcher J.H. Notes on the physiology of Botryococcus braunii Kutzing // Archiv fur Mikrobiologie. 1968. — V.61. — P.335−346.
  25. Ben-Amotz A., Tornabene T.G., Thomas W.H. Chemical profile of selected species of microalgae with emphasis on lipids // J. Phycol. 1985. — V.21. — P.72−81.
  26. Berkaloff C., Casadevall E., Largeau C., Metzger P., Peracca S., Virlet J. The resistant polymer of the walls of the hydrocarbon-rich alga Botryococcus braunii II Phytochemistry. 1983. — V.22. — P.389−397.
  27. Berkaloff C., Rousseau В., Coute A., Casadevall E., Metzger P., Chirac C. Variability of cell wall structure and hydrocarbon type in different strains of Botryococcus braunii II J. Phycol. 1984. — V.20. — P.377−389.
  28. Blackburn K.B. A reinvestigation of the alga Botryococcus braunii Kutzing // Transactions of the Royal Society of Edinburgh. 1936. — V.58. — P.845−854.
  29. Brassell S.C., Eglinton G., Fu Jia Mo. Biological marker compounds as indicators of the depositional history of the Maoming oil shale // Organic Geochemistry. 1986. — Y.10. — P.927−941.
  30. Brown A.C., Knights B.A., Conway E. Hydrocarbon content and its relationship to physiological state in the green alga Botryococcus braunii II Phytochemistry. 1969. — V.8. — P.543−547.110
  31. Browse J., Somerville C.R. Glycerolipid synthesis: biochemistry and Regulation // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1991. — V.42. — P.467−506.
  32. Cane R.F. Coorongite and the genesis of oil shale // Geochimica et Cosmochimica Acta. 1969. — V.33. — P.257−265.
  33. Cane R: F. Coorongite, Balkashite and related substances. An annoted bibliography // Transactions of the Royal Society of South Australia. 1977. — V.101.- P.153−164.
  34. Cane R.F., Albion P.R. The organic geochemistry of Torbanite precursors // Geochimica et Cosmochimica Acta. 1973. — V.37. — P. 1543−1549.
  35. Casadevall E., Metzger P., Puech M-P. Biosynthesis of triterpenoid hydrocarbons' in the alga Botryococcus braunii II Tetrahedron Letters. 1984. — V.25.- P.4123−4126.
  36. Cassagne C., Lessire R. Studies on alkane biosynthesis in epidermis of Allium porrum L. leaves. Direct synthesis of tricosane from lignoceric acid // Archives of Biochemistry and Biophysics. 1974. — V.165. — P.274−280.
  37. Cassagne C., Lessire R. Biosynthesis of saturated very long chain fatty acids by purified membrane fractions from leek epidermal cells // Archives of Biochemistry and Biophysics. 1978. -V. 191. — P. 146−152.
  38. Cepak V., Lukavsky J. The effect of high irradiances on growth, biosynthetic activities and the ultrastructure of the green alga Botryococcus braunii strain Droop 1950/807−1 // Algological Studies. 1994. -V.72. -P.l 15−131.
  39. Chen F., Johns M.R. Effect of C/N ratio and aeration on the fatty acid composition of heterotrophic Chlorella sorokiniana II J. Appl. Phycol. 1991. — Y.3. — P.203−209.
  40. Chirac C., Casadevall E., Largeau C., Metzger P. Bacterial influence upon growth and hydrocarbon production of the green alga Botryococcus brauni II J. Phycol. 1985. -V.21. -P.380−387.
  41. Christie W.W. Gas chromatography and lipids. A practical guide. Ayr: The Oily Press, 1989.-230 p.
  42. Chu S.P. The influence of the mineral composition of the medium on the growth of planktonic algae. I. Methods and culture media // J. Ecology. 1942. -V.30. — P.284−304.
  43. Cox R.E., Burlingame A.L., Wilson D.M., Eglinton G., Maxwell J.R. Botryococcene a tetramethylated acyclic triterpenoid of algal origin // Journal of Chemical Society Chemical Communications. — 1973. — Y. 12. — P.284−285.
  44. David M., Metzger P., Casadevall E. Two cyclobotryococcenes from the В race of the green alga Botryococcus braunii II Phytochemisty. 1988. — У.21. — P.2863−2867.
  45. Delahais V., Metzger P. Four polymethylsqualene epoxides and one acyclic tetraterpene epoxide from Botryococcus braunii 11 Phytochemistry. 1997. — V.44. -P.671−678.
  46. Dennis M.W., Kolattukudy P.E. Alkane biosynthesis by decarbonylation of aldehyde catalyzed by a microsomal preparation from Botryococcus braunii // Archives of Biochemistry and Biophysics. 1991. — V.287. — P.268−275.
  47. Derenne S., Largeau C., Casadevall E., Berkaloff C. Occurrence of a resistant biopolymer in the L race of Botryococcus braunii 11 Phytochemistry. 1989. — V.28. -P. 1137−1142.
  48. Dillwith J.W., Nelson J.H., Pomonis J.G., Nelson D.R., Blomquist G.J. A 13C NMR study of methyl-branched hydrocarbon biosynthesis in the housefly // J. Biol. Chem. 1982. — V.257. — P. 11 305 — 11 304.112
  49. Drago§ N., Peterfi L.§., Momeu L., Popescu C. An introduction to the algae and the culture collection of algae. Cluj-Napoca: Cluj University Press, 1997. — 267P
  50. Dubinsky Z., Berner Т., Aaronson S. Potential of large-scale algal culture for biomass and lipid production in arid lands // Biotecnology and Bioengineering Symp. 1978.-№ 8.-P.51−68.
  51. Dunstan G.A., Volkman J.K., Barrett S.M., LeRoi J.-M., Jeffrey S.W. Essential polyunsaturated fatty acids from fourteen species of diatom (Bacillariophyceae) // Phytochemistry. 1994. — V.35. — P. 155−161.
  52. Dwyer L.A., Blomquist G.J., Nelson J.H., Pomonis J.G. A 13C NMR study of the biosynthesis of 3-methylpentacosane in the American cockroach // Biocim. Biophys. Acta. — 1981. — V.663. -P.536−544.
  53. Galbraith M.N., Hillen L.W., Wake L.V. Darwinene: a branched hydrocarbon from a green form of Botryococcus braunii II Phytochemistry. 1983. — V.22. -P. 1441−1443.
  54. Gelin F., Volkman J.K., Largeau C., Derenne S., Sinninghe Damste J.S., De Leeuw J.W. Distribution of aliphatic, nonhydrolyzable biopolymers in marine microalgae // Organic Geochemistry. 1999. — V.30. — P. 147 — 159.
  55. Gelpi E., Schneider H., Mann J., Oro J. Hydrocarbons of geochemical significance in microscopic algae /APhytochemistry. 1970. — V.9. — P.603−612.113
  56. Grimalt J.O., Dewit R., Teixidor P., Albaiges J. Lipid biogeochemistry of Phormidium and Microcoleus mats // Organic Geochemistry. 1992. — V.19. -P.509−530.
  57. Gudin C., Chaumont D. For a solar biotechnology based on microalgae // Energy from Biomass / Eds. Chartier P., Palz W. D. Reidel Publishing Company, 1981.-serieE.-V.l.-P. 81−84.
  58. Hagemann M., Erdmann N., Wittenburg E. Synthesis of glucosylglycerol in salt-stressed cells of the cyanobacterium Microcystis firma //Archives of Microbiology. 1987. — V. 148. — № 4. — P.275−279.
  59. Harwood J.L., Jones A.L. Lipid metabolism in algae // Adv. Botanical Res. -1989.-V.16.-P.l-53.
  60. Hillen L., PollardG., Wake L., White N. Hydrocracking of the oils of Botryococcus braunii to transport fuels // Botechnol. Bioeng. 1982. — V.26. -P. 193−205.
  61. Holden M.J., Patterson G.W. Taxonomic implication of sterol composition in the genus Chlorella 11 Lipids. 1982. — V.17. — P.215−219.
  62. Huang Z., Poulter C.D. Braunicene. Absolute stereochemistry of the cyclohexane ring // Journal of Organic Chemistry. 1988a. — V.53. — P.4089−4094.
  63. Huang Z., Poulter C.D. Isobraunicene, wolficene and isowolficene. New cyclic 1−3 fused isoprenoids from Botryococcus braunii // Journal of Organic Chemistry. -1988b.-V.53.-P.5390−5392.
  64. Huang Z., Poulter C.D. Stereochemical studies of botryococcene biosynthesis: analogies between l'-l and Г-3 condensations in isoprenoid pathway // Journal of the American Chemical Society. 1989a. — V.111. -P.2713−2715.114
  65. Huang Z., Poulter C.D. Isoshowacene, a C31 hydrocarbon from Botryococcus braunii var. Showa // Phytochemistry. 1989b. — V.28. — P.3043−3046.
  66. Huang Z., Poulter C.D., Wolf F.R., Somers T.C., White J.D. Braunicene, a novel cyclic C32 isoprenoid from Botryococcus braunii // Journal of the American Chemical Society. 1988. -V. 110. -P.3959−3964.
  67. Jeeji Bai N. Interesting developmental and morphological features of Botryococcus (Chlorococcales, Chlorophyceae) in culture // Nova Hedwigia. 1996.- V. 112. P.489−498.
  68. Kadouri A., Derenne S., Largeau C., Casadevall E., Berkaloff C. Resistant biopolymer in the outer walls of Botryococcus braunii, В race // Phytochemistry. -1988. V.27. -P.551−557.
  69. Kitasato H., Asaoka S., Iwamoto H. Catalytic cracking of hydrocarbons from microalgae // Sekiyu Gakkaishi. 1989. — V.32. — P.28−34.
  70. Knights B.A., Brown A: C., Conway E., Middleditch B.S. Hydrocarbons from the green form of the freshwater alga Botryococcus braunii II Phytochemistry. 1970.- V.9. P.1317−1324.
  71. Kolattukudy P.E., Croteau R., Buckner J.S. Biochemistry of plant waxes // Chemistry and biochemistry of natural waxes / Ed. Kolattukudy P.E. Elsevier, 1976.- P.290−349.115
  72. Madhavi Shekharam К., Venkataraman L.V., Salimath P.V. Carbohydrate composition and characterization of two unusual sugars from the blue green alga, Spirulina platensis II Phytochemistry. 1987. — V.26. — P.2267−2269.
  73. Maxwell J.R., Douglas A.G., Eglinton G., McCormick A. The Botryococcenes. Hydrocarbons of novel structure from the alga Botryococcus braunii Kutzing // Phytochemistry. 1968. — V.7. — P.2157−2171.
  74. McKirdy D.M., Cox R.E., Volkman J.K., Howell V.J. Botryococcane in a new class of Australian non-marine crude oils // Nature. 1986. — V.320. — P. 57−59.
  75. Metzger P. w-Heptacosatrienes and tetraenes from a Bolivian strain of Botryococcus braunii II Phytochemistry. 1993. — V.33. — P. 1125−1128.
  76. Metzger P. Phenolic ether lipids with an w-alkenylresorcinol moiety from a Bolivian strain of Botiyococcus braunii (A race) // Phytochemistry. 1994. — V.36. -P.195−212.
  77. Metzger P., Aumelas A. Lycopanerols A, di-tetraterpenoid tetraether derivatives from the green microalga Botryococcus braunii, L strain // Tetrahedron Letters. 1997. — V.38. — P.2977−2980.
  78. Metzger P., Casadevall E. Structure de trois nouveaux botryococcenes synthetises par une souche de Botryococcus braunii cultivee en laboratoire // Tetrahedron Letters. 1983. — V.24. — P.4013^1016.
  79. Metzger P., Casadevall E. Lycopadiene, a tetraterpenoid hydrocarbon from new strains of the green alga Botryococcus braunii II Tetrahedron Letters. 1987. — V.28. -P.3931−3934.
  80. Metzger P., Casadevall E. Aldehydes, very long chain alkenylphenols, epoxides and other lipids from an alkadiene-producing strain of Botryococcus braunii II Phytochemistry. 1989. — V.28. — P.2097−2104.
  81. Metzger P., Casadevall E. Botryococcoid ethers, ether lipids from Botryococcus braunii II Phytochemistry. 1991. — V.30. — P.1439−1444.
  82. Metzger P., Casadevall E. Ether lipids from Botryococcus braunii and their biosynthesis 11 Phytochemistry. 1992. — V.31. — P.2341−2349.117
  83. Metzger P., Largeau C. Chemicals of Botryococcus braunii II Chemicals from microalgae / Ed. Cohen Z. London: Taylor & Francis, 1999. — P.205−260.
  84. P., Pouet Y. /?-Alkenylpyrogallol dimethyl ethers, aliphatic diol monoesters and some minor ether lipids from Botryococcus braunii, A race // Phytochemistry. 1995. — V.40. — P.543−554.
  85. Metzger P., Berkaloff C., Casadevall E., Coute A. Alkadiene- and botryococcene-producing races> of wild strains of Botryococcus braunii II Phytochemistry. 1985a. — V.24. — P.2305−2312.
  86. Metzger P., Casadevall E., Pouet M.J., Pouet Y. Structures of some botryococcenes: branched hydrocarbons from the В race of the green alga Botryococcus braunii II Phytochemistry. 1985b. — V.24. — P.2995−3002.
  87. Metzger P., Templier J., Largeau C., Casadevall E. An я-alkatriene and n-alkadienes from the A race of the green alga Botryococcus braunii II Phytochemistiy. 1986. -V.25-P.1869−1872.
  88. Metzger P., David M., Casadevall E. Biosynthesis of triterpenoid hydrocarbons in the В race of the green alga Botryococcus braunii. Site of production and nature of the methylating agent // Phytochemistiy. 1987. — V.26. — P. 129−134.
  89. Metzger P., Casadevall E., Coute A. Botryococcene distribution in strains of the green alga Botryococcus braunii II Phytochemistry. 1988. — V.27. — P. 13 831 388.
  90. Metzger P., Villarreal-Rosales E., Casadevall E., Coute A. Hydrocarbons, aldehydes and triacylglycerols in some strains of the A race of the green alga Botryococcus braunii II Phytochemistiy. 1989. — V.28. — P.2349−2353.
  91. Metzger P., Allard В., Casadevall E., Berkaloff C., Coute A. Structure and chemistry of a new chemical race of Botryococcus braunii (Chlorophyceae) that produces lycopadiene, a tetraterpenoid hydrocarbon //J. Phycol. 1990. — V.26. -P.258−266.
  92. Metzger P., Largeau C., Casadevall E. Lipids and macromolecular lipids of the hydrocarbon-rich microalga Botryococcus braunii. Chemical structure and biosynthesis. Geochemical and biotechnological importance // Progress in the118
  93. Chemistry of Organic Natural Products / Eds. Herz W., Kirby G.W., Steglich W., Tamm C. Wien: York: Springer-Verlag, 1991a. — V.57. — P. 1−70.
  94. Metzger P., Villarreal-Rosales E., Casadevall E. Methyl-branched fatty aldehydes and fatty acids in Botryococcus braunii II Phytochemistry. 1991b. — V.30. — P.185 — 191.
  95. Metzger P., Pouet Y., Bischoff R., Casadevall E. An aliphatic polyaldehyde from Botryococcus braunii (A race) // Phytochemistry. 1993. — V.32. — P.875−883.
  96. Metzger P., Pouet Y., Summons R. Chemotaxonomic evidence for the similarity between Botryococcus braunii, L race and Botryococcus neglectus II Phytochemistry. 1997. — V.44. — P. 1071−1075.
  97. Mikkelsen J.D., von Wettstein-Knowles P. Biosynthesis of /?-diketones and hydrocarbons in barley spike epicuticular wax // Archives of Biochemistry and Biophysics. 1978. — V. 188. — P. 172−181.
  98. Moldowan J.M., Seifert W.K. First discovery of botryococcene in petroleum // J. Chem. Soc. Chem. Comm. 1980. — V.19. — P.912−914.
  99. Moore B.G., Tischer R.G. Extracellular polysaccharides of algae: effects on life support systems // Science. 1964. — V.145. — P.586−587.
  100. Murakami M., Nakano H., Yamaguchi K., Konosu S., Nakayama O., Matsumoto Y., Iwamoto H. Meijicoccene, a new cyclic hydrocarbon from Botryococcus braunii II Phytochemistry. 1988. — V.27. — P.455−457.
  101. Murata N., Nishida I. Lipids of blue-green algae // The biochemistry of Plants / Ed. Stumpf K. Orlando: Academic Press, 1987. — P.315−347.
  102. Ohmori M., Wolf W.R., Bassham J.A. Botryococcus braunii carbon/nitrogen metabolism as affected by ammonia addition // Archives of Microbiology. 1984. -V.140. -P.101−106.
  103. Okada S., Murakami M., Yamaguchi K. Hydrocarbon composition of newly isolated strains of the green microalga Botryococcus braunii II J. Appl. Phycol. -1995. V.7. — P.555−559.119
  104. Park M.-O., Tanabe ML, Hirata K., Miyamoto K. Isolation and characterization of a bacterium that produces hydrocarbons extracellularly which are equivalent to light oil // Appl. Microbiol. Biotechnol. 2001. — V.56. — P.448−452.
  105. Patterson G.W. Sterols of some green algae // Сотр. Biochem. Physiol. -1974. V.47B. — P.453−457.
  106. Peslova J., Pokorny J., Komarek J. Adaptation of 21 microalgae species to low level of molecular C02 // Algological Studies. 1990. — V.59. — P.97−109.
  107. Piorreck M., Baasch K-H., Pohl P. Biomass production, total protein, chlorophylls, lipids and fatty acids of freshwater green and blue-green algae under different nitrogen regimes // Phytochemistry. 1984. — V.23. — P.207−216.
  108. Plain N., Largeau C., Derenne S., Coute A. Variabilite morphologique de Botryococcus braunii (Chlorococcales, Chlorophyta): correlations avec les conditions de croissance et la teneur en lipids // Phycologia. -1993. V.32. — P.259−265.
  109. Sawayama S., Inoue S., Yokoyama S. Continuous culture of hydrocarbon-rich microalga Botryococcus braunii in secondarily treated sewage // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1994. — V.41. — P.729−731.
  110. Shiea J., Brassell S.C., Ward D.M. Mid-chain branched mono- and dimethyl alkanes in hot spring cyanobacterial mats: a direct biogenic source for branched alkanes in ancient sediments? // Organic Geochemistry. 1990. — V.15. — P.223−231.
  111. Singh Y., Kumar H.D. Lipid and hydrocarbon production by Botryococcus sp. under nitrogen limitation and anaerobiosis // World J. Microbiol. Biotechnol. 1992. — V.8. — P.121−124.
  112. Suen Y., Hubbard J.S., Holzer C., Tornabene T.G. Total lipid production of the green alga Nannochloropsis .vp.QII under different nitrogen regimes // J. Phycol. -1987.-V.23.-P.289−296.
  113. Sukenik A., Yamaguchi Y., Livne A. Alterations in lipid molecular species of the marine eustigmatophyte Nannochloropsis sp. // J. Phycol. 1993. — V.29. — P.620 -626.
  114. Svetashev V.I., V.E. Vaskovsky. A simplified technique for thin-layer microchromatography of lipids // J. Chromatogr. 1972. — V.67. — P.376−378.• .120
  115. Tegelaar E.W., De Leeuw J.W., Derenne S., Largeau C. A reappraisal of kerogen formation // Geochimica et Cosmochimica Acta. 1989. — V.53. — P.3103−3106.
  116. Templier J., Largeau C., Casadevall E. Mechanism of non-isoprenoid hydrocarbon biosynthesis in Botryococcus braunii II Phytochemistry. 1984. — V.23.- P.1017−1028.
  117. Templier J., Largeau C., Casadevall E. Effect of various inhibitors on biosynthesis of non-isoprenoid hydrocarbons in Botryococcus braunii II Phytochemistry. 1987. — V.26. — P.377 — 383.
  118. Templier J., Largeau C., Casadevall E. Non-specific elongation-decarboxylation in biosynthesis of cis- and /ram-alkadienes by Botryococcus braunii //Phytochemistry. 1991a. — V.30. -P.175−183.
  119. Templier J., Largeau C., Casadevall E. Biosynthesis of я-alkatrienes in Botryococcus braunii 11 Phytochemistry. 1991b. — V.30. — P.2209−2215.
  120. Tenaud M., Ohmori M., Miyachi S. Inorganic carbon and acetate assimilation in Botryococcus braunii (Chlorophyta) // J. Phycol. 1989. — V.25. — P.662−667.
  121. Thompson G.A., Jr. Lipids and membrane function in green algae // Biochim. Biophys. Acta. 1996. — V. 1302. — P. 17−45.
  122. Tornabene Т., Ogg J. Chromatographic studies of the lipid components of Vibrio fetus // Biochim. Biophys. Acta. 1971. — V.239. — P.133−141.
  123. Tornabene T.G., Holzer G., Peterson S.L. Lipid profile of the halophilic alga, Dunaliella salina I I Biochem. Biophys. Res. Commun. 1980. — V.96. — P. 1349— 1356.
  124. Tornabene T.G. Microorganisms as hydrocarbon producers // Experientia. -1982. -V.38. -P.43−46.
  125. Tyman J.H.P. Non-isoprenoid long chain phenols // Chemical Society Reviews.- 1979.-V.8.-P.499−537.
  126. Vaskovsky V.E., Kostetsky E.Y., Vasendin Y.M. A universal reagent for phospholipid analysis // J. Chromatogr. 1975. — V. 114. — P.121−123.121
  127. Vazquez-Duhalt R., Arredondo-Vega B.O. Haloadaptation of the green alga Botryococcus braunii (race A) // Phytochemistry. 1991. — V. 30. — P.2919−2925.
  128. Vieira A. A., Myklestad S. Production of extracellular carbohydrate in cultures of Ankistrodesmus densus Kors. (Chlorophyceae) // J. Plankton Research. 1986. -V.8. — P.985−994.
  129. Villarreal-Rosales E., Metzger P., Casadevall E. Ether lipid production in relation to growth in Botryococcus braunii II Phytochemistry. 1992. — V.31. -P.3021−3027.
  130. Volkman J.K., Barrett S.M., Dunstan G.A. C25 and C30 highly branched isoprenoid alkenes in laboratory cultures of two marine diatoms // Organic Geochemistry. 1994. — V.21. — P.407−413.
  131. Wake L.V., Hillen L.W. Study of a «bloom» of the oil-rich alga Botryococcus braunii in the Darwin River Reservoir // Biotechnology and Bioengineering. 1980. -V.22. — P.1637−1656.
  132. Wake L.V., Hillen L.W. Nature and hydrocarbon content of blooms of the alga Botryococcus braunii occurring in Australian freshwater lakes // Aust. J. Mar. Freshwater Res. 1981. — V.32. — P.353−367.
  133. Wang X., Kolattukudy P.E. Solubilization and purification of aldehyde-generating fatty acyl-CoA reductase from green alga Botryococcus braunii II FEBS Letters. ^ 1995. V.370. — P. 15−18.
  134. Weers P.M.M., Gulati R.D. Growth and reproduction of Daphnia galeata in response to changes in fatty acids, phosphorus, and nitrogen in Chlamydomonas reinhardtii II Limnol. Oceanogr. 1997. — V. 42. — P. 1584−1589.
  135. Weetall H.H. Studies on the nutritional requirements of the oil-producing alga Botryococcus braunii II Applied Biochemistry and Biotechnology. 1985. — V.ll. -P.377−391.
  136. White J.D., Somers T.C., Reddy G.N. Absolute configuration of (-) botiyococcene // Journal of the American Chemical Society. 1986. — V.108. -P.5352^5353.
  137. White J.D., Somers Т.С., Reddy G.N. Degradation and absolute configurational assignment to C34-botryococcene // Journal of Organic Chemistry. 1992. — V.57. -P.4991−4998.
  138. Winters K., Parker P.L., van Baalen C. Hydrocarbons of blue-green algae: geochemical significance // Science. 1969. — V.163. — P.467−468.
  139. Wolf F.R., Cox R.E. Ultrastucture of active and resting colonies of Botryococcus braunii (Chlorophyceae) // J. Phycol. 1981. — V. 17. — P.395−405.
  140. Wolf F.R., Nemethy E.K., Blanding J.H., Bassham J.A. Biosynthesis of unusual acyclic isoprenoids in the alga Botryococcus braunii II Phytochemistry. -1985a. -V.24. -P.733−737.
  141. Wolf F.R., Nonomura A.M., Bassham J.A. Growth and branched hydrocarbon production in a strain of Botryococcus braunii (Chlorophyta)// J. Phycol. 1985b. -V.21. — P.388−396.
  142. Xu N., Zhang X., Fan X., Han L., Zeng C. (Tseng C.K.) Effects of nitrogen source and concentration on growth rate and fatty acid composition of Ellipsoidion sp. (Eustigmatophyta) // J. Appl. Phycol. 2001. — V. 13. — P.463−469.
  143. Yamaguchi K., Nakano H., Murakami M., Konosu S., Nakayama O., Kanda M., Nakamura A., Iwamoto H. Lipid compositions of a green alga Botryococcus braunii H Agric. Biol. Chem. 1987. — V.51. — P.493198.
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?