Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Динамические неустойчивости в кинетике роста и деполимеризации тубулиновых микротрубочек

Диссертация: Динамические неустойчивости в кинетике роста и деполимеризации тубулиновых микротрубочек
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Однако взаимное действие указанных выше подсистем в неравновесных условиях может быть, вообще говоря, и нескомпенсированным. Например, в условиях, когда доминируют процессы сорбции молекул тубулина, будет иметь место рост микротрубочки. Как следствие, будет смещаться граница раздела фаз. При доминировании процессов десорбции, трубочки будут укорачиваться, а концентрационная фаза насыщаться… Читать ещё >

Содержание

  • СПИСОК ОСНОВНЫХ ИСПОЛЬЗУЕМЫХ СОКРАЩЕНИЙ
  • Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Общие представления о структуре микротрубочек
    • 1. 2. Динамические особенности поведения микротрубочек и их математические модели
      • 1. 2. 1. Модели, основанные на предположении о существовании ГТФ-крышки
      • 1. 2. 2. Кинетическая модель Флайберга, Холи и Лейблера
      • 1. 2. 3. Модели структурных крышек
      • 1. 2. 4. Модель, основанная на представлении о роли вакансий в динамике микротрубочки
      • 1. 2. 5. Кинетические модели
      • 1. 2. 6. Аксиоматические модели Лейблера и соавторов
      • 1. 2. 7. Диффузионные ограничения на рост микротрубочек
      • 1. 2. 8. Диффузионная модель динамики микротрубочек
    • II. Воробьева и соавторов
      • 1. 3. Нелинейные явления в динамике микротрубочек
      • 1. 4. Анализ характерных времен кинетических процессов в динамике микротрубочек
  • Глава 2. СТОХАСТИЧЕСКИЕ АСПЕКТЫ СТРУКТУРНОЙ ДИНАМИКИ ТУБУЛИНОВЫХ ВОЛОКОН
    • 2. 1. Описание динамики димеров тубулина и вакансий
    • 2. 2. Вычислительные эксперименты
    • 2. 3. Феноменологическая «огрубленная» модель
  • Глава 3. КИНЕТИЧЕСКИЕ МЕХАНИЗМЫ РЕГУЛЯЦИИ ДИНАМИКИ МИКРОТРУБОЧЕК
    • 3. 1. Математическая модель
    • 3. 2. Параметрическая диаграмма состояния
    • 3. 3. Динамические характеристики автоколебательных решений
  • Глава 4. КЛАССИФИКАЦИЯ РЕГУЛЯТОРНЫХ ВОЗДЕЙСТВИЙ НА ТУБУЛИНОВЫЙ ЦИТОСКЕЛЕТ

Динамические неустойчивости в кинетике роста и деполимеризации тубулиновых микротрубочек (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Тубулиновые микротрубочки (наряду с актиновыми и промежуточными филаментами) являются основными компонентами цитоскелета эукариотических клеток. Поведение микротрубочек на определенных стадиях клеточного цикла и в условиях in vitro характеризуется крупномасштабными нестационарными пульсациями их длины. Нестационарные апериодические режимы, типа изображенного на рис.В.1, имеют вид, характерный для релаксационных хаотических колебаний [Анищенко, 2000;

Кузнецов, 2001; Данилов, 2001; Трубецков, 2004]. Особенностью этих колебаний являются отчетливо выраженные моменты переключения микротрубочки со стадии роста на деполимеризацию и наоборот. В биологической литературе именно эти моменты в динамике микротрубочек принято называть «катастрофами» и «спасениями"1.

В современной литературе под термином «динамическая нестабильность» микротрубочек понимается круг явлений, связанных с «катастрофами» и «спасениями» [Alberts et al., 2002]. Во избежание недоразумений в дальнейшем под термином «катастрофа» будет подразумеваться динамическая неустойчивость роста микротрубочек, а под термином «спасение» -неустойчивость процесса деполимеризации.

1 В англоязычной литературе catastrophe и rescue event.

Время (часы).

Рис.В.1. Динамическая нестабильность микротрубочки [Fygenson et al., 1994]. По оси абсцисс отложено время, по оси координатразмер индивидуальной микротрубочки.

По существующим представлениям динамические нестабильности в кинетике роста и деполимеризации микротрубочек лежат в основе крупномасштабных трансформаций цитоскелета, свойственных процессам пролиферации, дифференцировки и миграции клеток в норме и патологии [Jordan and Wilson 2004; Watanabe Т. et al., 2005; Honore et al., 2005].

В частности, крупномасштабные пространственно-временные трансформации цитоскелета наблюдаются на стадии деления клеток. В этой связи большое значение приобретает вопрос о том, в какой мере процессы деления атипичных и/или трансформированных клеток обуславливаются условиями возникновения и особенностями развития динамических неустойчивостей микротрубочек [Scholey et al., 2003; Канцерогенез, 2004; Honore et al., 2005].

С момента открытия самого явления динамической нестабильности микротрубочек в 1984 году, накоплен обширный экспериментальный материал и предложено несколько теоретических моделей явления. Проведенный в работе анализ имеющихся данных и теоретических подходов показал, что динамические неустойчивости, свойственные отдельным микротрубочкам и их ансамблям, перспективно изучать в свете современной теории критических явлений и неравновесных структур [Haken, 1977; Николис и Пригожин, 1979; Эбелинг, 1979].

Целью настоящей работы являлось нахождение необходимых и достаточных условий параметрической дестабилизации микротрубочек, выяснение кинетических механизмов регуляции динамических нестабильностей при росте и деполимеризации микротрубочек.

В работе решались следующие задачи:

1. Методами стохастического анализа выяснить условия развития структурных неустойчивостей, сопровождающихся деполимеризацией или фрагментацией микротрубочек.

2. Построить кинетическую модель процессов сорбции молекул тубулина на плюс-концы микротрубочек из раствора (десорбции в раствор).

3. Выяснить условия потери устойчивости стационарных распределений микротрубочек по длинам. Построить диаграммы состояния, позволяющие определять характер динамики микротрубочек при различных значениях параметров системы.

4. Исследовать механизмы формирования концентрационных колебаний и волн тубулина, ассоциированных с крупномасштабными трансформациями цитоскелета.

5. Проанализировать сочетанное действие биохимических агентов различных типов на смену динамических режимов, свойственных тубулиновым волокнам.

Развит последовательный физико-математический подход к описанию катастроф в динамике микротрубочек. Наблюдаемые экспериментально катастрофы трактуются, как результат развития процессов нелинейного взаимодействия структурных дефектов при их кластеризации в микротрубочках. При этом структурные катастрофы и эффекты фрагментации микротрубочек, подобно тому, как это имеет место в физике фазовых переходов первого рода, описываются в рамках феноменологических кинетических уравнений. Использование численных методов и компьютерных алгоритмов так называемой теории клеточных автоматов дало возможность довести результаты расчетов до стадий, допускающих прямое сопоставление с данными экспериментов.

Впервые удалось с единых позиций объяснить целый ряд нетривиальных эффектов, характерных для динамики микротрубочек: степенную зависимость частоты катастроф от скорости роста микротрубочек, дробно-линейную зависимость времени задержки деполимеризации микротрубочек от величины их длины и концентрации тубулина в растворе и т. д.

Впервые исследована обусловленность динамических нестабильностей роста и деполимеризации микротрубочек неустойчивостями кинетических процессов сорбции молекул тубулина из раствора (и десорбции с плюс-концов микротрубочек в раствор). При этом содержащая микротрубочки реконструированная система трактовалась, как существенно двуфазная, состоящая из реакционно-диффузионной части и собственно микротрубочек (тубулиновых волокон), выступающих в качестве конденсированной фазы. Последняя характеризуется наличием черт дальнего порядка в пространственном упорядочении составляющих микротрубочку элементов (тубулиновых димеров), свойственных твердым телам.

Впервые не постулированы, а исследованы условия потери устойчивости этой двуфазной системы. Показано, что в рассмотренной системе при приближении к критическим условиям имеет место увеличение радиуса пространственно-временных корреляций. Концентрационные флуктуации в растворной части системы трансформируются в автоволны конечной амплитуды, управляющие крупномасштабными трепетаниями микротрубочек.

Впервые построена параметрическая диаграмма состояния, на которой отображены границы областей устойчивости, отвечающие стационарным и нестационарным режимам поведения системы. На основе диаграммы состояния дана классификация воздействий цитостатическими агентами на тубулиновые микротрубочки. Выделено четыре основных класса воздействий. Построена таблица, отражающая наличие эффектов взаимного усиления/ослабления действия цитостатических агентов при совместном применении агентов различных классов.

Полученные в работе результаты имеют важное значение для поиска эффективных режимов управления крупномасштабной трансформацией цитоскелета на ключевых стадиях клеточного цикла. Построенная диаграмма состояний микротрубочек позволяет уже на стадии проектирования экспериментов in vitro целенаправленно проводить подбор необходимых параметров (концентрации тубулина, ГТФ, ГДФ), соответствующих искомому динамическому режиму системы микротрубочки-раствор. Установленный характер сочетаемости одновременного воздействия биохимических агентов и цитостатических препаратов различных классов открыл принципиально новую возможность для поиска путей снижения побочного токсического действия. Открылась возможность для целенаправленного поиска и разработки комплексных противоопухолевых препаратов, обладающих совместным (синергетическим) эффектом действия входящих в их состав компонентов.

ВЫВОДЫ.

1. Показано, что динамические нестабильности роста микротрубочек могут развиваться как вследствие кластеризации внутренних структурных микродефектов, так и вследствие лимитирования роста за счет исчерпания в растворе молекул тубулина и/или ГТФ.

2. Построена феноменологическая модель динамических неустойчивостей, обусловленных коллективной кластеризацией микродефектов. Модель позволила объяснить степенную зависимость частоты катастроф от скорости роста микротрубочек.

3. Построена реакционно-диффузионно-преципитационная модель динамики микротрубочек. Показано, что масштабные периодические изменения длины микротрубочек сопряжены с распространением в растворе концентрационных тубулиновых автоволн.

4. Построена параметрическая диаграмма состояний тубулинового цитоскелета, содержащая области, отвечающие устойчивым стационарным и нестационарным состояниям. Выделена область, отвечающая метастабильным состояниям.

5. Показано, что потеря устойчивости стационарных состояний при изменении параметров системы, сопровождается бифуркацией рождения предельного цикла по механизму Андронова-Хопфа. Обнаружена вторичная бифуркация удвоения предельного цикла.

6. Исходя из вида диаграммы состояний, предложена классификация регулирующих динамику микротрубочек биохимических агентов (клеточных факторов и цитостатических препаратов) на четыре класса. Проанализирована проблема взаимной сочетаемости цитостатических воздействий разных классов.

БЛАГОДАРНОСТИ.

Автор глубоко признателен своему научному руководителю Г. Т. Гурия за постановку задач и руководство выполнением настоящей работы. Влияние Георгия Теодоровича на формирование моих научных взглядов трудно переоценить.

Автор благодарит профессора И. А. Воробьева за ценные замечания и критическое обсуждение работы, О. В. Коваленко за любезно предоставленные фотографии тубулинового цитоскелета, А. П. Большакова за обсуждение работы и помощь в подготовке рукописи, И. В. Казбанова за помощь в проверке результатов численного счета, В. И. Казея и коллектив лаборатории биоскрининга компании «ИИХР» за поддержку и предоставление вычислительных ресурсов, Ю. Г. Горбунову, А. Д. Томашевского, А. А. Рабодзея и Р. Б. Дерду за содействие в получении редких литературных источников, С. Г. Узлову, К. Е. Злобину и О. А. Дудченко за поддержку, стимулирующие дискуссии и техническое содействие.

Хочу поблагодарить профессора Э. М. Трухана, за внимание, проявленное к этой работе. Мой интерес к проблемам биофизики во многом сформирован благодаря лекциям Эдуарда Михайловича. Я благодарен преподавателям кафедры физики живых систем МФТИ (зав. кафедрой академик В.И. Шумаков) Ю. А. Чизмаджеву, А. И. Дьяченко, A.M. Мелькумянцу за проявленное внимание к моей работе. Благодарю заместителя декана ФМБФ МФТИ В. Н. Простова за советы и помощь, оказанные мне при поступлении в аспирантуру МФТИ.

Выражаю благодарность коллективу организаторов и участникам нижегородских научных школ «Нелинейные волны» (2002;2006), оказавшим на меня сильнейшее влияние — Д. И. Трубецкову, Д. И. Иудину, В. Г. Яхно, А. А. Полежаеву, Ю. М Романовскому, С. П. Кузнецову, А. А. Веденову. Кроме этого, благодарю всех сотрудников лаборатории биофизики и криобиологии ГНЦ РАМН за поддержку, благожелательное отношение и помощь.

Работа выполнена при поддержке РФФИ, грант № 04−04−49 423а. (рук., Г. Т. Гурия).

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

В связи с биологическими и медицинскими приложениями, проблема регуляции динамических трансформаций микротубулинового цитоскелета представляет большой научный и практический интерес [Jordan and Wilson, 2004; Honore et al., 2005]. К настоящему времени исследован широкий класс биохимических веществ, обладающих цитостатическим регуляторным действием [Wilson et al., 1999; Jordan, 2002]. Развитый нами подход позволил расклассифицировать регуляторные воздействия на четыре основных типа. При этом открылась возможность, опираясь на диаграмму состояний микротубулинового цитоскелета, судить об эффективности совместного действия разных регуляторов (см. табл. 4.2, глава 4).

Микротубулиновый цитоскелет клетки высокочувствителен к условиям проведения эксперимента. Наибольшие экспериментальные затруднения возникают при отыскании условий, при которых проявляется динамическая нестабильность микротрубочек [Carlier et al., 1987; Fygenson et al., 1994]. В свете проведенного анализа эти наблюдения становятся понятными. Дело в том, что области, отвечающие нестационарным режимам на построенной нами диаграмме состояний, представляют собой узкие полосы (см. рис. Z.1). Поэтому случайное попадание параметров в эти обладающие малой площадью области маловероятно.

Намного проще направленная постановка опытов по регистрации нестабильностей в динамике микротрубочек в системах in vitro. Достаточно задать высокую начальную концентрацию тубулина и ГТФ и дождаться возбуждения колебаний в ходе естественного понижения уровня ГТФ [Carlier et al., 1987; Melki et al., 1988]. Отметим, что снижение уровня ГТФ со временем на диаграмме состояний (рис. Z.1) соответствует движению изображающей точки сверху вниз. При этом, как несложно видеть, система микротрубочек на границе между зонами «III» и «II» должна претерпевать переход из стационарного состояния в нестационарное. Таким образом ясно, что в системах in vitro появление нестабильностей в динамике микротрубочек обусловлено рождением предельного цикла (см. рис. 3.3). В терминах теории катастроф, при переходе системы через границу областей «III» и «И» имеет место закритическая бифуркация Андронова-Хопфа [Андронов и др., 1959].

О 2 4 6 8 10 12 14 16 18 20 22 24 26.

Ти°.

Рис. Z.I. Диаграмма состояний (см. рис 3.1), в которой по оси ординат отложено отношение концентрации ГТФ к концентрации ГДФ в растворе, характеризующее степень энергообеспеченности системы.

Природа нестационарных пульсаций микротрубочек, при которых стадии полимеризационного роста внезапно сменяются стадиями деполимеризации, интенсивно обсуждается более 20 лет [Mitchison and Kirschner, 1984]. Наиболее широко дебатируется гипотеза о существовании в окрестности плюс конца микротрубочки так называемой ГТФ-крышки (GTP-cap). Согласно данной гипотезе, гидролиз присоединенной к тубулину молекулы ГТФ происходит не сразу после присоединения очередного димера к микротрубочке, а спустя некоторое время [Chen and Hill, 1983; Chen and Hill, 1984; Stewart et al., 1990; Flyvbjerg et al., 1996]. Образующийся слой молекул тубулина-ГТФ в окрестности плюс-конца предотвращает деполимеризацию и стабилизирует всю микротрубочку [Bayley et al., 1989; Baylay et al., 1990; Stewart et al., 1990]. Переход от роста микротрубочки к ее деполимеризации связан с исчезновением ГТФ-крышки.

Нельзя исключить, что в определенных экспериментальных условиях задержка гидролиза ГТФ в принципе способна вызвать нестабильность в динамике микротрубочек [Carlier et al., 1987; Melki et al., 1988]. Однако проведенный выше анализ показал, что, и не прибегая к этой гипотезе (опираясь только на реакционно-диффузионные представления в рамках модели, изложенной в главе 3), удается получить решения, соответствующие динамическим нестабильностям тубулиновых микротрубочек. Попутно заметим, что в рамках нашего подхода сам собой снимается активно обсуждаемый в альтернативных подходах вопрос о виде частотного спектра случайных событий «переключения» микротрубочек с роста на деполимеризацию и обратно [Dogterom et al., 1995; Houchmandzadeh and Vallade, 1996; Hammele and Zimmermann, 2003].

В рамках развитого нами подхода динамика плюс конца микротрубочки определяется исключительно реакциями сорбции/десорбции молекул тубулина. При этом скорость реакции сорбции зависит от локальной концентрации молекул тубулина, связанных с ГТФ. В этом смысле изменение размера микротрубочки регулируется реакционно-диффузионными процессами в окружающей системе. Проведенный анализ показал, что рост микротрубочки связан с распространением концентрационных автоволн молекул тубулина в растворе. Бегущая слева направо автоволна ГТФ вызывает рост микротрубочек, а распространяющаяся справа налево волна ГДФ сопровождает деполимеризацию. По аналогии с упоминавшимися ранее диффузионно-лимитированными процессами (DLA [Vicsek, 1992]) можно сказать, что критические явления в динамике микротрубочек относятся к энергетически лимитированным процессам агрегации-дисагрегации (ELAD).

Вопрос о роли концентрационных автоволн в динамике микротрубочек, насколько нам известно, не рассматривался ранее теоретически. Однако в пользу влияния концентрационных градиентов на динамику микротрубочек in vivo свидетельствуют недавно опубликованные экспериментальные данные [Caudron et al., 2005; Pearson et al., 2006]. Это позволяет надеяться, что полученные нами теоретические результаты могут оказаться небезынтересными специалистам в области клеточной биологии.

Стоит заметить, что в предпринятой в данной работе попытке описания критических явлений в динамике микротрубочек развиваются общие физико-химические положения теории диссипативных структур [Николис и Пригожин, 1979]. Распределение реагентов в растворе, в котором формируются микротрубочки, описывается в рамках реакционно-диффузионного приближения. А сами микротубулиновые нити трактуются, как «преципитат» из жидкой фазы, то есть, как выпавшее в осадок вещество. В рамках такого подхода проблема роста микротрубочек по своей физико-химической сути предстает, как проблема конденсации молекул тубулина из одной фазы в другую. Несмотря на то, что построенная нами кинетическая реакционно-диффузионно-преципитационная (РДП) модель, вне всякого сомнения, является сильно упрощенной и ухватывает лишь часть из наиболее характерных черт реальной системы, на ее основе удалось построить диаграмму состояний рассматриваемой системы.

В физике переход вещества из одной формы пространственного упорядочения в другую принято рассматривать в рамках теории фазовых переходов, с термодинамических позиций [Ландау и Лившиц, 1964]. Традиционный взгляд на явления смены агрегатного состояния связаны с выяснением условий термодинамической устойчивости фаз [Gibbs, 1928]. Сосуществование двух фаз возможно лишь в случае, если на границе раздела фаз химические потенциалы равны. О спектре агрегатных состояний системы и возможных переходах между ними при изменении термодинамических параметров принято судить по виду «диаграммы состояний» [Gibbs, 1928]. Поэтому построение таких диаграмм является одной из ключевых задач в физике конденсированного состояния. Надо сказать, что диаграммы состояний широко используются и в физической химии. Например, при изучении термодинамических условий выпадения в осадок растворенных в жидкой фазе солей [Мэлвин-Хьюз, 1962]. Применительно к рассмотренной нами ELAD системе, уместно говорить о неравновесных переходах, поскольку в ходе формирования и роста микротрубочек имеет место энергопотреблениерасходуются молекулы ГТФ.

Ввиду того, что тубулиновые микротрубочки способны формироваться и в реконструированных биохимических системах, нам представлялось естественным рассматривать их с позиций современной неравновесной физической химии [Ван Кампен, 1990; Пригожин и Кондепуди, 2002]. С этой точки зрения реконструированная система может рассматриваться, как состоящая их двух взаимодействующих между собой подсистем (см. рис. Z.2). В «концентрационной» подсистеме молекулы тубулина, ассоциированные с ГТФ или ГДФ, способны индивидуально перемещаться в пространстве. Напротив, в «преципитационной» подсистеме отдельные молекулы тубулина плотно упакованы в цилиндрическую 3-хзаходную спиральную структуру см. рис. 1.2, глава 1). В этом смысле тубулиновая микротрубочка представляет собой элемент конденсированной фазы.

Pnc.Z.2. Принципиальная схема рассмотренной реакционно-диффузионно-преципитационной системы.

При этом условная «граница раздела фаз» представляет собой кольцо внешним размером 24 нм и внутренним 13 нм, лежащее в торцевом сечении микротрубочки, в зоне местоположения ее плюс-конца. Понятно, что указанная «граница раздела фаз» должна быть в равновесной ситуации неподвижной (испытывать только флуктуационное дрожание), так как при этом скорость прямых и обратных процессов (сорбции/десорбции) должны быть равны.

Однако взаимное действие указанных выше подсистем в неравновесных условиях может быть, вообще говоря, и нескомпенсированным. Например, в условиях, когда доминируют процессы сорбции молекул тубулина, будет иметь место рост микротрубочки. Как следствие, будет смещаться граница раздела фаз. При доминировании процессов десорбции, трубочки будут укорачиваться, а концентрационная фаза насыщаться молекулами тубулина-ГДФ. Действие подсистем друг на друга, как выяснилось, не всегда бывает компенсаторно сбалансированным в каждый момент времени. Наряду с режимами, которым отвечают стационарные распределения микротрубочек по длинам, имеющими место в зонах «О», «I» и «III» (см. рис. Z.1), возможны и нестационарные режимы, которым отвечают области «II» и «IV» на параметрической диаграмме состояний (см. рис. Z.1). Как мы видели, в последнем случае поведение.

Подсистема 1.

Подсистема 2 десорбция сорбция системы определяется наличием в фазовом пространстве предельного цикла А. Пуанкаре. Представляется важным подчеркнуть, что при этом масштабные периодические изменения длины микротрубочек оказываются сопряженными с концентрационными автоволнами в растворе. В физике широко известно, что при приближении к критическим состояниям, имеет место нарастание крупномасштабных флуктуаций и увеличение радиуса корреляции (второго корреляционного момента) [Балеску, 1978; Ма, 1980]. В рассмотренной нами неравновесной системе увеличение пространственно-временной корреляции в критических условиях обеспечивается за счет автоволновых процессов и сопряженных с ними процессов полимеризации-деполимеризации.

В определенной области параметров (см. «И» ," IV", рис. Z.1) имеет место своеобразная взаимная синхронизация в поведении подсистем, которая проявляется в виде взаимообусловленной пространственно-временной ритмики. Рождение предельного цикла и связанных с ним пространственно-временных форм трансформации элементов тубулинового цитоскелета идет в полном соответствии с открытым А. А. Андроновым механизмом (см. рис. 3.4а).

Таким образом, исследованная реационно-диффузионно-преципитационная система, которая в рамках развитого подхода описывает поведение микротрубочек в условиях in vitro, позволяет эффективно трактовать широкий круг динамических нестабильностей, свойственных данной неравновесной двуфазной системе.

Показать весь текст

Список литературы

  1. А.А., ВиттА.А., Хайкин С. Э. (1959) Теория колебаний, 2-е изд. М.: Физматгиз. 926 с.
  2. B.C. (2000) Знакомство с нелинейной динамикой. Саратов, Из-во Гос УНЦ «Колледж». 180 с.
  3. Д.В., Арнольд В. И. (1985) Динамические системы 1. Современные проблемы математики. Фундаментальные направления. М.: ВИНИТИ. -260 с.
  4. БалескуР. (1978) Равновесная и неравновесная статистическая механика. В двух томах.Т. 1. М.: Мир. 350 с.
  5. В.Н. (1982) Периодический фазовый переход в растворе аммиака. //Ж. Физ. Химии. Т. 57. с. 1822−1824.
  6. В.А., Романовский Ю. М., Яхно В. Г. (1987) Автоволновые процессы. М.: Наука. 240 с.
  7. Волькенштейн М.В.(1988) Биофизика. М.: Наука. 592 с.
  8. Ван Кампен Н. Г. (1990) Стохастические процессы в физике и химии. М.: Высшая школа, 375 с.
  9. И.А., Григорьев И. С. (2003) Динамика и жизненный цикл микротрубочек в клетке. Цитология и генетика. Т.37. с.22−38.
  10. И.А., Григорьев И. С., Бориси Г. Г. (2000) Динамика микротрубочек в культивируемых клетках. Онтогенез. Т. 31. с. 420−428.
  11. Я.И. (1981) Живой кристалл. М.: Наука. 192 с.
  12. Ю.А. (2001) Лекции по нелинейной динамике. Элементарное введение. М.: Постмаркет. 184 с.
  13. Н.В., Розендорн Э. Р. (1970) Линейная алгебра и многомерная геометрия. М.: Наукаю 528 с.
  14. A.M. (1974) Концентрационные колебания. М.: Наука. -120 с.
  15. Канцерогенез. Ред. Д. Г. Заридзе М.: Медицина, 2004. 576 с.
  16. Е.А., Гурия Г. Т. (2006) Динамические нестабильности тубулинового цитоскелета. Диаграмма состояния. Биофизика, 2006, Т.51, с.885−893.
  17. О.В. (2005) Формирование радиальной системы микротрубочек в интерфазных клетках: роль динеина и протеинкиназы LOSK. Дисс. на соискание научной степени к.б.н., МГУ
  18. Колебания и бегущие волны в химических системах. Ред. Р. Филд, М. Бургер. М.: Мир, 1988. 720 с.
  19. А.Н. (1941) О логарифмически-нормальном законе распределения частиц при дроблении. ДАН СССР, Т. XXXI, Вып. 2, с.99−101.
  20. Л.Д., Лившиц Е. М. (1964) Статистическая физика. М.: Наука. -568 с.
  21. МаШ. (1980) Современная теория критических явлений. М.: Мир, -299 с.
  22. Г., Пригожин И. (1979) Самоорганизация в неравновесных системах. М.: Мир.
  23. И., Кондепуди Д. (2002) Современная термодинамика. От тепловых двигателей до диссипативных структур. М.: Мир. 464 с.
  24. Г. (1990) Неравновесная статистическая механика. М.:Мир.
  25. Д.И. (2004) Введение в синтергетику. Хаос и структуры. М. УРС- 240 с.
  26. Франк-Каменецкий Д.А. (1947) Диффузия и теплопередача в химической кинетике. М.: Изд. АН СССР.
  27. Френкель Я. К (1945) Кинетическая теория жидкостей. M.-J1.: АН СССР.
  28. В. (1979) Образование структур при необратимых процессах. Введение в теорию диссипативных структур. М.: Мир. 279 с.
  29. Alberts В., Johnson A., Lewis J., RaffM., Roberts К., Walter P. (2002) Molecular Biology of Cell. New York: Garland Science.
  30. I.B., Vorobjev I.A. (2000) Interphase microtubules in cultured cells: long or short? Membr. Cell Biol., V.14 P. 57−67.
  31. Amos L.A., van den Ent F., Lowe J. (2004) Structural/functional homology between the bacterial and eukaryotic cytoskeletons. Curr Opin Cell Biol. V. 16 P.24−31.
  32. Andersen S.S.L. (2000) Spindle assembly and the art of regulating microtubule dynamics by MAPs and Stathmin/Opl8. Trends Cell Biol. V. 10 P. 261−267.
  33. V., Scorrano L. (2006) The relation between mitochondrial shape and function and cytoskeleton. Biochim. Biophys Acta. V.1757. P.692−699.
  34. I., Wade R.H. (1995) How does taxol stabilize microtubules? Curr. Biol., V.5. P.900−908.
  35. Bak P. (1996) How nature works. Copernicus Press, New York.
  36. P.M., Schilstra M.J., Martin S.R. (1989) A lateral cap model of microtubule dynamic instability. FEBS Lett. V. 259, P.181−184.
  37. P.M., Schilstra M.J., Martin S.R. (1990) Microtubule dynamic instability: numerical simulation of microtubule transition properties using a Lateral Cap model. J. Cell Sci. V.95 P.33−48.
  38. L.J., Borisy G.G. (1980) Head-to-tail polymerization of microtubules in vitro. Electron microscopy analysis of seeded assembly. J. Cell. Biol. V.84, P.141−150
  39. H., Limbach H.J., Tuszynski J.A. (1999) Models of assembly and dissasembly of individual microtubules: stochastic and averages equations. J. Biol. Phys. V.25 P. 1−22.
  40. G.G., Olmsted J.B. (1972) Nucleated assembly of microtubules in porcine brain extracts. Science V.177. P. 1196−1197.
  41. Brandt R., Lee G. (1994) Orientation, assembly, and stability of microtubule bundles induced by a fragment of tau protein. Cell Motil. Cytoskeleton. V. 28(2) P.143−154.
  42. CaplowM., Fee L. (2003) Concerning the chemical nature of tubulin subunits that cap and stabilize microtubules. Biochemistry V.42 P.2122−2126.
  43. M.F., Hill T.L., Chen Y. (1984) Interference of GTP hydrolysis in the mechanism of microtubule assembly: An experimental study. PNAS, V.81, P.771−775.
  44. M.F., Melki R., Pantaloni D., Hill T.L., Chen Y. (1987) Synchronous oscillations in microtubule polymerization. PNAS, V.84, P.5257−5261.
  45. M.F., Pantaloni D. (1981) Kinetic analysis of guanosine 5'-triphosphate hydrolysis associated with tubulin polymerization. Biochemistry. V. 20 P. 1918−1924.
  46. M.F. (1982) Guanosine-5'-triphosphate hydrolysis and tubulin polymerization. Review article. Mol/ Cell Biochem. V. 47 P. 97−113.
  47. J.F. (1952) Microdissection studies of the dividing neuroblast of. the grasshopper, Chortophaga viridifasciata (De Greer). Chromosoma (Berlin). V.5 P.200−220.
  48. L. (1999) Accessory protein regulation of microtubule dynamics throughout the cell cycle. Curr. Opin. Cell Biol. V. 11 P. 134−141.
  49. L., Pryer N.K., Salmon E.D. (1988) Real-time observation of microtubule dynamic instability in living cells. J. Cell Biol. V.107. P.2223−2231.
  50. Caudron M., BuntG., BastiaensP., KarsentiE. (2005) Spatial coordination of spindle assembly by chromosome-mediated signaling gradients. Science, V. 309. P.1373−1376.
  51. Caudron N., Valiron O., Usson Y., Valiron P., Job D. (2000) A reassessment of the factors affecting microtubule assembly and disassembly in vitro. J.Mol.Biol. V. 297. P.211−220.
  52. J.P., Holzbaur E.L. (2006) Microtubule motors at the intersection of trafficking and transport. Trends Cell Biol. V.16(10) P.530−537.
  53. Y., Hill T.L. (1983) Use of Monte Carlo calculations in the study of microtubule subunit kinetics. PNAS. V.80. P.7520−7523.
  54. Y., Hill T.L. (1984) Theoretical treatment of microtubules disappearing in solution. PNAS. V.82. P.4127−4131.
  55. ChenY., Hill T.L. (1987) Theoretical studies on oscillations in microtubule polymerization. PNAS. V.84. P.9418−8423.
  56. D., Metoz F., Verde F., Karsenti E., Wade R.H. (1992) Lattice defects in microtubules: protofilament numbers vary within individual microtubules. J Cell Biol. V. 117(5) P. 1031 -1040.
  57. D., Fuller S.D., Karsenti E. (1995) Structure of growing microtubule ends: two dimensional sheets close into tubes at variable rates. J Cell Biol V. 129 P.1311−1328.
  58. L.J., Odde D.J., Block S.M., Gross S.P. (2002) The importance of lattice defects in katanin-mediated microtubule severing in vitro. Biophys. J. V. 82. P.2916−2927.
  59. A., Mitchison T.J. (1997) Microtubule polymerization dynamics. Annu. Rev. Cell Dev. Biol., V. 13, p.83−117.
  60. J.F., Valpuesta J.M., Chacon P., Diakun G., Andreu J.M. (1998) Changes in microtubule protofilament number induced by taxol binding to an easily accessible site. J. Biol. Chem. V. 273 P.33 803−33 810.
  61. M., Maggs A.C., Leibler S. (1995) Diffusion and formation of microtubule asters: physical processes versus biochemical regulation. PNAS V.92 P.6683−6688.
  62. M., Leibler S. (1993) Physical aspects of the growth and regulation of microtubule structures. Phys. Rev. Lett. V. 70. P. l 347−1350.
  63. D.N., Kirschner M.W. (1994) The minimum GTP cap required to stabilize microtubules. Current Biology, V. 4 P.1053−1061.
  64. Drechsel D.N., Hyman A.A., CobbM.H., Kirschner M.W. (1992) Modulation of the dynamic instability of tubulin assembly by the microtubule associated protein tau. Mol Biol Cell V.3, P. l 141−1154.
  65. P. (1984) Microtubules. 2nd edn. New York: Springer.
  66. Erickson H.P., O’Brien E.T. (1992) Microtubule dynamic instability and GTP hydrolysis. Ann. Rev. Bioph. Biomol. Struct. Vol. 21, P. 145−166.
  67. Ermentrout C.B., Edelstein-Keshet L. (1993) Cellular automata approaches to biological modeling. J.theor.Biol., V. 160, P.97−133.
  68. Н. (1935) The activated complex in chemical reactions. J. Chem. Phys. V.3. P.107−115.
  69. M.J. (1978) Quantitative universality for a class of nonlinear transformations.J. Stat. Phys., V.19, N 1, P.25−52.
  70. FlyvbjergH., Holy Т.Е., Leibler S. (1994) Stochastic dynamics of microtubules: a model for caps and catastrophes. Phys. Rev. Lett, V.73, P.2372−2375.
  71. FlyvbjergH., Holy Т.Е., Leibler S. (1996) Microtubule dynamics: caps, catastrophes, and coupled hydrolysis. Phys. Rev. E, V.54, P.5538−5560.
  72. A.D. (1914) Ann. Physik V.43 P.810
  73. D.K., Braun E., Libchaber A. (1994) Phase diagram of microtubules. Phys. Rev. E. V.50. P. 1579−1588.
  74. J.W. (1928) The Collected Works. Thermodynamics. New York: Longmans, Green and Co., V. 1.
  75. I.S., Chernobelskaya A.A., Vorobjev I.A. (1999) Nocodazole, vinblasine and taxol at low concentrations affect fibroblast locomotion and salutatory movements of organelles. Membr. Cell. Biol. V.13 P.23−48.
  76. I., Borisy G., Vorobjev I. (2006) Regulation of microtubule dynamics in 3T3 fibroblasts by Rho family GTPases. Cell Motil. Cytoskel. 2006. V. 63. P. 29−40.
  77. Gurret J.-P. (1995) Modelling the mitotic apparatus: from the discovery of bipolar spindle to modern concepts. Acta Biotheor. V. 43, P. 127−142.
  78. HakenH. (1977) Synergetics, an introduction. Nonequilibrium Phase-Transitions and Self-Organization in Physics, Chemistry and Biology. Springer, (русский перевод: Хакен Г. Синергетика, М.: Мир, 1980.)
  79. М., Zimmermann W. (2003) Modeling oscillatory microtubule polymerization. Phys. Rev. E. V. 67. P.21 903−19
  80. T.L. (1984) Introductory analysis of the GTP-cap phase-change kinetics at the end of a microtubule. V.81 P.6728−6732.
  81. T.L., Carlier M.F. (1983) Steady-state theory of the interference of GTP hydrolysis in the mechanism of microtubule assembly. V.80 P.7234−7238.
  82. T.L., Chen Y. (1984) Phase changes at the end of a microtubule with GTP cap. V.81 P.5772−5776.
  83. N. (1994) Microtubule organization and dynamics dependent on microtubule-associated proteins. Curr. Opin. Cell Biol. V.6 P.74−81.
  84. P., Brattsand G., Gullberg M. (2002) MAP4 counteracts microtubule catastrophe promotion but not tubulin-sequestering activity in intact cells. Curr Biol. V. 12(12) P. 1034−1039.
  85. Т.Е., Leibler S. (1994) Dynamic instability of microtubules as an efficient way to search in space. PNAS, V.91 P.5682−5685.
  86. Honore S., Pasquier E., BraguerD. (2005) Understanding microtubule dynamics for improved cancer therapy. Cell. Mol. Life Sci., V. 62. P. 30 393 056.
  87. В., Vallade M. (1996) Collective oscillations in microtubule growth. Phys. Rev. E. 1996. V. 53. P.6320−6324.
  88. J., Hyman A.A. (2003) Dynamics and mechanics of the microtubule plus end. Nature, V. 422, P.752−758.
  89. J., Hyman A.A. (2007) Microtubule polymerases and depolymerases. Curr. Opin. Cell Biol, V. 19, P.31−35.
  90. S. (1960) On the physical properties of the mitotic spindle. Ann. N. Y. Acad. Sci. V. 90, P. 529−530.
  91. S., Ritter H. (1975) Dynamics of mitotic spindle organization and function, in «Molecules and Cells Movement» (eds. Inoue S., Stephens R.E.) Raven Press, New York. P.3−30.
  92. S., Sato H. (1967) Cell motility by labile association of molecules. The nature of the mitotic spindle fibers and their role in chromosome movement. J. Gen. Physiol. V. 50 P. 259−292.
  93. S. (1981) Cell division and the mitotic spindle. J. Cell Biol. V. 97. P. 131−147.
  94. , S. (1952) The effect of colchicine on the microscopic and submicroscopic structure of the mitotic spindle. Expl. Cell Res. (Suppl.) V. 2 P.305−319.
  95. , S. (1959) Motility of cilia and the mechanism of mitosis. Rev. mod. Phys. V.31P. 402−408.
  96. P.A. (1998) The cytoskeleton and cell signaling: component localization and mechanical coupling. Physiol. Rev. V.78 P.763−781.
  97. I.M., Chretien D., Flyvbjerg H. (1998) Modeling elastic properties of microtubule tips and walls. Eur Biophys J, V. 27 P.501−513.
  98. I.M., Chretien D., Flyvbjerg H. (2002) Structural microtubule cap: stability, catastrophe, rescue, and third state. Biophys J., V. 83, P.1317−1330.
  99. JansonM.E., DogteromM. (2004) A bending mode analysis for growing microtubules. Biophysical J. V.87, P.2723−2736.
  100. Janulevicius A., Van PeltJ., Van OoyenA. (2006) Compartment volume influences Microtubule dynamic instability: a model study. Biophysical J., V.90, p.788−798.
  101. М.А. (2002) Mechanism of action of antitumor drugs that interact with microtubules and tubulin. Curr. Med. Chem. Anti-Canc. Agents V.2. P. 1−17
  102. D., Valiron O., Oakley B. (2003) Microtubule nucleation. Curr.Opin.Cell Biol., V. 15, P. 111−117.
  103. Jobs E., WolfD.E., FlyvbjergH. (1997) Modeling microtubule oscillations Phys.Rev.Lett. V.79, P. 519−522.
  104. E., Vernos I. (2001) The mitotic spindle: a self-made machine. Science. V. 294. P.543−547.
  105. A.J., Meinhardt H. (1994) Biological pattern formation from basic mechanisms to complex structures. Rev. Modern Physics. V. 66. P. 1481−1507.
  106. Y.A., Vorobjev I.A., Borisy G.G. (2002) Life cycle of MTs: persistent growth in the cell interior, asymmetric transition frequencies and effects of the cell boundary. J Cell Sci. 2002 V. l 15 P.3527−3539.
  107. Koshland D.E., Mitchison T J., Kirschner M.W. (1988) Polewards chromosome movement driven by microtubule depolymerization in vitro. Nature V.331, P. 499−504.
  108. R.J., Williams R.C. (1993) Microtubule-associated protein 2 alters the dynamic properties of microtubule assembly and disassembly. J. Biol Chem. V. 268 P. 9847−9855.
  109. Li H., DeRosier D.J., Nicholson W.V., Nogales E., Downing K. H (2002) Microtubule structure at 8 A resolution. Structure. V. 10. P.1317−1328.
  110. Maddox P., Chin E., Mallavarapu A., Yeh E., Salmon E.D., Bloom K. (1999) Astral microtubule and spindle dynamics in mating and the first zygotic division in the budding yeast Saccharomyces cerevisiae. J. Cell Biol. V.144, P.977−987.
  111. I.V. (2002) Diffusion approximation of the stochastic process of microtubule assembly. Bull. Math. Biol. V.64. P.213−238.
  112. B.B. (2004) Fractals and Chaos. The Mandelbrot Set and Beyond. Springer, 308 P.
  113. E.M., Lange G., Jagla A., Spann U., Mandelkow E. (1988) Dynamics of the microtubule oscillator: role of nucleotides and tubulin -MAP interactions. EMBO J. V.7 P.357−365.
  114. R.L., Wilson L. (1978) Opposite end assembly and disassembly of microtubules at steady state in vitro. Cell, V. 13. P. 1−8.
  115. McNally F.J. (1996) Modulation of microtubule dynamics during the cell cycle. Curr. Opin. Cell Biol. V.8 P.23−29
  116. R., Carlier M.F., Pantaloni D. (1988) Oscillations in microtubule polymerization: the rate of GTP regeneration on tubulin controls the period. EMBO J., V.7, P. 2653−2659.
  117. R., Carlier M.F., Pantaloni D. (1990) Direct evidence for GTP and GDP-Pi intermediates in microtubule assembly. Biochemistry V.29, P.8921−8932.
  118. T.J., Salmon E.D. (2001) Mitosis: a history of division. Nature Cell Biology, V.3, P. E17-E21.
  119. T.J., Kirschner M.W. (1984) Dynamic instability of microtubule growth. Nature, V. 312. P.237−242.
  120. Molodtsov M.I., Ermakova E.A., ShnolE.E., GrishukE.L., Mcintosh J.R., Ataullakhanov F.I. (2005) A molecular-mechanical model of microtubule. Biophysical J. V.88 P.3167−3179.
  121. MoritzM., Braunfeld M.B., SedatJ.W., Alberts В., AgardD.A. (1995) Microtubule nucleation by gamma-tubulin-containing rings in the centrosome. Nature, V. 378, P.638−640.
  122. Muller-Reichert Т., Chretien D., Severin F., Hyman A.A. (1998) Structural changes at microtubule ends accompanying hydrolysis: Information from slowly hydrolysable analogue of GTP, guanylyn (a, p) methylenediphosphonate. PNAS, V.95. P.3661−3666.
  123. S., Yasuda S. (2002) Rho GTPases in animal cell mitosis. Сип-Орт Cell Biol. V.18. P. 199−205.
  124. Nguyen et al., (1999) Microtubule associated protein 4 (MAP4) regulates assembly, protomer-polymer partitioning and synthesis of tubulin in cultured cells. J. Cell Sci. V. l 12, P.1813−1824.
  125. NiethammerP., Bastiaens P., Karsenti E. (2004) Stathmin-tubulin interaction gradients in motile and mitotic cells. Science. V. 303. P. 1862−1866.
  126. E. (2001) Structural insights into microtubule function. Annu. Rev. Biophys. Biomol. Struct. V.30 P.397−420.
  127. Nogales E., WolfS., Downing K.H. (1998) Structure of the alfa-beta tubulin dimer by electron crystallography. Nature V.391, P. 199−203.
  128. Nucleation theory and applications. (1999) edited by J. W. P. Schmelzer, G. Ropke, V. R. Priezzhev, JINR, Dubna.
  129. O’Brien E.T., Voter W.A., Erickson H.P. (1987) GTP hydrolysis during microtubule assembly. Biochemistry V.26(13) P.4148−4156.
  130. O’Brien E.T., Salmon E.D., Walker R.A., Erickson H.P. (1990) Effects of magnesium on the dynamic instability of individual microtubules. Biochemistry, V. 29, P.6648−6656.
  131. D.J., Cassimeris L., Buetten H.M. (1995) Kinetics of microtubule catastrophe assessed by probabilistic analysis. Biophys. J. V.69. P.796−802.
  132. D.J. (1997) Estimation of the diffusion-limited rate of microtubule assembly. Biophys J. V.73(l) P:88−96.
  133. J.B., Borisy G.G. (1975). Ionic and nucleotide requirements for microtubule polymerization in vitro. Biochemistry V. 14. P.2996−3005.
  134. F., Asakura S. (1975) Thermodynamics of the polymerization of protein. New York, Academic Press.
  135. L., Panda D., Jordan M.A. (1999) Modulation of microtubule dynamics by drugs: a paradigm for the actions of cellular regulator. Cell Struct. Function V.24. P.329−335.
  136. D., Miller H.P., Wilson L. (2002) Determination of the size and chemical nature of the stabilizing «cap» at microtubule ends using modulators of polymerization dynamics. Biochemistry V.41 P. 1609−1617.
  137. C.G., Gardner M.K., Paliulis L.V., Salmon E.D., Odde D.J., Bloom K. (2006) Measuring nanometer scale gradients in spindle microtubule dynamics using model convolution microscopy. Mol Biol Cell.V.17. P.4069−4079.
  138. S., Williams R.C. (2002) Concentration Dependence of Variability in Growth Rates of Microtubules. Biophysical J. V. 83 P. 1809−1819
  139. M. (1917) Sitzungsber. Preuss Acad. Wissens. P.324.
  140. T.A., Daum J.R., Pittman B.D., Hudson J.R., Jones T.N., Satinover D.L., Stukenberg P.T., Gorbsky G.J. (2006) The reversibility of mitotic exit in vertebrate cells. Nature. V. 440. P.954−958.
  141. W.H., Teukolsky S.A., Vetterling W.T., Flannery B.P. (2002) Numerical recipes in C. Cambridge University Press. 995 P.
  142. N.K., Walker R.A., Skeen V.P., Bourns B.D., Soboeiro M.F., Salmon E.D. (1992) Microtubule-associated protein 2 alters the dynamic properties of microtubule assembly and disassembly. J. Cell Sci. V.103. P.965−976.
  143. J., Muller S., Vidal C. (1988) Chemical waves. Science. V. 240. P.460−465.
  144. Rubin СЛ., Atweh G.F.(2004) The role of stathmin in the regulation of the cell cycle. J Cell Biochem. 2004, V.93. P. 242−250.
  145. P.J., Borisy G.G. (1988) Direct observation of microtubule dynamics in living cells. Nature. V. 331 P.724−726.
  146. Schaap I.A., de Pablo P.J., Schmidt C.F. (2004) Resolving the molecular structure of microtubules under physiological conditions with scanning force microscopy. Eur. Biophys. J., V.33(5). P.462−467.
  147. Schilstra M. J, Martin S.R., Bayley P.M. (1987) On the relationship between nucleotide hydrolysis and microtubule assembly: studies with a GTP-regenerating system. Biochem. Biophys. Res. Commun. V.147 P.588−595.
  148. A., Hall A. (2002) Guanine nucleotide exchange factors for Rho GTPases: turning on the switch. Genes and Development, V. 16, P. 15 871 609.
  149. Scholey J.M., Brust-Mascher I., Mogilner A. (2003) Cell division. Nature.1. V.422. P.746−752.
  150. M.V. (1996) New concept of microtubule dynamics and microtubule motor movement and new model of chromosome movement in mitosis. J. theor. Biol. V.179, P.91−117.
  151. Sept D., Baker N.A., MacCammon J.A. (2003) The physical basis of microtubule structure and stability. Protein Sci. V.12. P.2257−2261.
  152. Sept D., Limbach H.J., Bolterauer, Tuszynski J.A. (1999) A chemical kinetics model for microtubule oscillations. J. Theor. Biol. V.197. P.77−88.
  153. Seybold P.G., KierL.B., Cheng C.K. (1998) Stochastic cellular automata models of molecular excited-state dynamics. J. Phys.Chem. V. 102. P.886−891.
  154. M.L., Gaskin F., Cantor C.R. (1973) Microtubule assembly in the absence of added nucleotides V.70, P.765−768
  155. D.B. (1963) Cytoplasmic microtubules. J. Cell Biol. V. 18 P.367−388.
  156. Stamenovic D., Mijailovich S.M., Tolic-Norrelykke I.M., Chen J., Wang N. (2002) Cell prestress. II. Contribution of microtubules Am. J. Physiol. Cell Physiol. V. 282 P. C617-C624.
  157. R.E. (1971) Microtubules, in «Subunits and Biological Systems» (eds. S.N. Timasheff and G.D.Fasman) Marcel Dekker Inc., New York. P. 355−391.
  158. R.J., Farrell K.W., Wilson L. (1990) Role of GTP-hydrolysis in microtubule polymerization: evidence for a coupled hydrolysis mechanism. Biochemistry V.29, p.6489−6498.
  159. R. (1982) Mathematical models of morphogenesis. New York, Halsted Press, (русский перевод: Том P. (2006) Математические модели морфогенеза. М.: РХД, 2006. 136 с.)
  160. Tran P.R., R.A.Walker, E.D.Salmon (1997) A metastable intermediate state of microtubule dynamic instability that differs significantly between plus and minus ends. J. Cell Biol. V. 138, P.105−117.
  161. A.M. (1952) The chemical basis of morphogenesis. Phil. Trans. R. Soc. London. V.237. P.37−72.
  162. Valiron O., Caudron N., Job D. (2001) Microtubule dynamics. Cell. Mol. Life Sci. V.58. P.2069−2084.
  163. VanBuren V., Cassimeris L., Odde D.J. (2005) Mechanochemical model of microtubule structure and self-assembly kinetics. Biophysical J. V.89. P.2911−2926.
  164. VanBuren V., Odde D.J., Cassimeris L. (2002) Estimates of lateral and longitudinal bond energies within the microtubule lattice. PNAS V.99 P.6035−6040.
  165. R.J., Howell В., Yvon A.C., Wadsworth P., Cassimeris L. (1997) Nanomolar concentration of nocodazole alter microtubule dynamic instability in vivo and in vitro. Mol. Biol. Cell V.8. P.973−985.
  166. F., Dogterom M., Stelzer E., Karsenti E., Leibler S. (1992) Control of microtubule dynamics and length by cycIin-A and cyclin-B dependent kinases in Xenopus egg extracts. V. 118 P. 1097−1108.
  167. T. (1992) Fractal growth phenomena. World Scientific. 400 P.
  168. I.A., Rodionov V.I., Maly I.V., Borisy G.G. (1999) Contribution of plus and minus end pathways to microtubule turnover. J. Cell Sci. V. 112 P.2277−2289.
  169. I.A., Svitkina T.M., Borisy G.G. (1997) Cytoplasmic assembly of microtubules in cultured cells. J. Cell Sci. V. l 10 P. 2635−2645.
  170. Voter W.A., O’Brien E.T., Erickson H.P. (1991) Dilution-induced disassembly of microtubules: relation to dynamic instability and the GTP cap. Cell Motil. Cytoskeleton. V. 18 P.55−62.
  171. Walker R.A., PryerN.K., Salmon E.D. (1991) Dilution of individual microtubules observed in real-time in vitro: evidence that cap size is small and independent of elongation rate. J. Cell. Biol.V.107, P. 1437−1448.
  172. H.W., Nogales E. (2005) Nucleotide-dependent bending flexibility of tubulin regulates microtubule assembly. Nature. V.435. P.911−915.
  173. Т., Noritake J., Kaibuchi K. (2005) Regulation of microtubules in cell migration. Trends Cell Biol. V. 15(2). P. 76−83.
  174. R. (1972) Microtubule formation in vitro in solutions containing low calcium concentrations. Science, V. 177 P. 1104−1105.
  175. A., Zheng Y. (1999) Stimulation of microtubule aster formation and Spindle assembly by the small GTPase Ran. Science, V.284, P.1359−1362
  176. S. (1986) Theory and applications of cellular automata. Singapore: World Publishing Co.
  177. S. (2002) A new kind of science. Wolfram Media 1192 P.
  178. L. (1998) Principles of development. Oxford. University Press, 1998.
  179. Yu R.X., Holmgren E. (2007) Endpoints for agents that slow tumor growth. Contemporary Clinical Trials, V.28. P. 18−24.
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?