Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Изучение генетического разнообразия вируса мозаики турнепса и создание удвоенных гаплоидных линий Brassica — источников устойчивости к нему

Диссертация: Изучение генетического разнообразия вируса мозаики турнепса и создание удвоенных гаплоидных линий Brassica — источников устойчивости к нему
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Один из наиболее опасных способов распространения и сохранения вирусной инфекции — передача вируса с семенами, что имеет серьезные последствия, и создает очаги первичной инфекции при посеве/посадке растений в поле. Вирусы могут сохраняться в семени в течение длительного времени и распространяться на большие расстояния (Matthews, 2009). Эффективных химических методов борьбы с вирусными… Читать ещё >

Содержание

  • I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Вирус мозаики турнепса (TuMV)
      • 1. 1. 1. Систематика, происхождение и эволюция
      • 1. 1. 2. Морфология частиц и организация генома
      • 1. 1. 3. Генетическое разнообразие TuMV
      • 1. 1. 4. Симптомы, пути распространения и вредоносность
    • 1. 2. Растения-хозяева (семейство Brassicaceae)
      • 1. 2. 1. Систематика, морфобиологические, генетические и физиологические особенности
      • 1. 2. 2. Устойчивость к TuMV
      • 1. 2. 3. Устойчивость растений к TuMV, определяемая локусами eIF (iso)4E и eIF4E
      • 1. 2. 4. Получение гаплоидных растений рода Brassica с использованием культуры микроспор

Изучение генетического разнообразия вируса мозаики турнепса и создание удвоенных гаплоидных линий Brassica — источников устойчивости к нему (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Вирус мозаики турнепса (Turnip mosaic virus — TuMV) относится к крупнейшей группе фитопатогенных вирусов семейства потивирусы (Potyviridae) (Shukla, V.l., 1994). Это один из наиболее интересных представителей семейства, так как он инфицирует широкий спектр культурных видов растений, включая все возделываемые виды капустных, а также декоративные, дикорастущие и сорные виды из 156 родов 43 семейств растений (Edwardson, J.R., Christie R.G., 1991). Это наиболее известный представитель рода Potyvirus, поражающий растения семейства Капустные.

При поражении растений происходит задержка в росте, ранняя дефолиация, снижение товарного вида кочанных и салатных форм, что приводит к снижению урожайности и значительным экономическим потерям при выращивании сельскохозяйственных культур видов рода Brassica (Shattuck, V.l., 1992). Во многих странах по экономической вредоносности TuMV стоит на втором месте, уступая лишь вирусу мозаики огурца (Cucumber Mosaic Virus — CMV) (Tomlison, J.A., Carter, A.L., Dale, W.T., et al., 1970). Его вредоносность резко усиливается при перекрестном заражении с другими вирусами (Camele, I., Nuzzaci, М., Rana, G.L., et al., 1991).

Один из наиболее опасных способов распространения и сохранения вирусной инфекции — передача вируса с семенами, что имеет серьезные последствия, и создает очаги первичной инфекции при посеве/посадке растений в поле. Вирусы могут сохраняться в семени в течение длительного времени и распространяться на большие расстояния (Matthews, 2009). Эффективных химических методов борьбы с вирусными заболеваниями в настоящее время не существует. Больные растения рекомендуется удалять из посадок, своевременно проводить опрыскивание от насекомых-переносчиков (тли), подавлять сорняки и улучшать общие фитосанитарные условия. Естественная устойчивость растений является единственно возможным, эффективным и экологически безопасным способом борьбы с TuMV (Suh, S.K. et al, 1995; Walsh, J.A. et al., 2002).

В настоящее время в России проводится небольшое количество работ, связанных с TuMV и посвященных исследованию устойчивости к этому вирусу у капусты пекинской (Микрюков, А.С., 2010). Генетическое разнообразие российской популяции TuMV не изучено вовсе: только два изолята были включены в исследования английских и японских ученых, посвященных генетическому полиморфизму вируса (Jenner, С.Е., Walsh, J.A., 1996; Tomimura, К., Gibbs, A.J., et al., 2003). На сегодняшний момент изучение TuMV особенно важно, поскольку опасность распространения TuMV нарастает, а количество сортов капустных, устойчивых к нему, невелико. Известные сорта эффективны только против какого-либо одного патотипа TuMV, а гены устойчивости малоизученны.

Анализ аллельного состояния генов устойчивости и их вариативности по нуклеотидной последовательности, приводящей к устойчивости к разным штаммам, возможны только при анализе чистых линий. В свою очередь для создания генетически выровненных чистых линий перекрестных культур требуется не менее 8−10 лет, причем метод самоопыления часто приводит к инбредной депрессии, а иногда и просто невозможен из-за явления самонесовместимости. Поэтому в качестве объекта исследований при изучении генов устойчивости наиболее часто используются удвоенные гаплоидные растения (Rusholme, R.L., 2007; Jenner, С.Е., 2010; Qian, W., 2013), на создание которых требуется от 1 до 2 лет.

Удвоенные гаплоидные растения являются полностью гомозиготными по всем генам и при скрещивании дают морфологически, физиологически и генетически однородное потомство. Кроме того, удвоенные гаплоиды лишены летальных и сублетальных мутаций, ведущих к ослаблению потомства растений при инбредном размножении, и могут использоваться в качестве линий — источников генов устойчивости к TuMV при создании коммерческих сортов и гибридов. Поэтому для изучения генов устойчивости получение удвоенных гаплоидных линий, одновременно являющихся источниками генов устойчивости к TuMV, представляет собой важную научную и практическую задачу.

Цель исследования — изучить генетическое разнообразие вируса мозаики турнепса и создать удвоенные гаплоидные линии рода Brassicaисточники устойчивости к патогену.

Для достижения поставленной цели решали следующие задачи:

1. Провести молекулярно-генетический и филогенетический анализ изучаемых изолятов TuMV.

2. Оценить коллекции Brassica на устойчивость к TuMV и получить удвоенные гаплоидные линии — источники устойчивости к нему.

3. Оценить полиморфизм локусов eIF4E и eIF (iso)4E, связанных с устойчивостью к TuMV, у представителей Brassica.

4. Изучить возможность передачи изолята TuMV 12 через семена Brassica, получить и проанализировать полную нуклеотидную последовательность кодирующей части его генома.

I ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

ВЫВОДЫ.

1. В результате молекулярно-генетического анализа были определены 6 новых изолятов TuMV, принадлежащих к 1 и 5 патотипам вируса, имеющих различное происхождение, вирулентность и характер заражения растений.

2. Получены удвоенные гаплоидные линии 13 генотипов видов В. napus и В. oleracea, обладающих устойчивостью к 6 изолятам TuMV, относящихся к 1 и 5 патотипам.

3. Впервые показано наличие эукариотического фактора инициации трансляции BraA. eIF4E.a у изученных представителей всех видов рода Brassica и отсутствие его изоформ BraA. eIF (iso)4E.a и BraA. eIF (iso)4E.c в геноме В. juncea.

4. В результате сравнения аминокислотных последовательностей локусов BraA. eIF (iso)4E.a и BraA. eIF4E.a у устойчивых к TuMV образцов Brassica выявлены аминокислотные замены i52Gly —> Asp и 4oThr —> Ile, соответственно.

5. Впервые показана возможность передачи TuMV (изолят 12) семенами растений рода Brassica через зародыш семени.

6. В результате анализа полной последовательности кодирующей части генома изолята TuMV 12 показано, что способность передаваться семенами может быть связана с уникальными аминокислотными заменами в последовательностях генов PI (122, 134, 261, 301) и СР (2896).

1.2.5 Заключение.

Вирус мозаики турнепса является серьезным негативным фактором в сельском хозяйстве, поражающим ряд культур и приводящим к огромным экономическим потерям. Вирус инфицирует все растения семейства Капустные (Brassicaceae), в том числе такие важные сельскохозяйственные культуры как масличный рапс (В. napus), капуста белокочанная (В. oleraceo), репа, турнепс (В. rapa), горчица. Ситуация осложняется отсутствием эффективных мер борьбы с вирусными заболеваниями. Единственно возможный, перспективный и экологически безопасный способ борьбы с болезнью — создание устойчивых сортов.

В настоящее время известно несколько генов устойчивости к различным штаммам TuMV, но наиболее перспективно открытие и изучение генов, отвечающих за неспецифическую устойчивость к патогену. При анализе аллельного состояния генов устойчивости, а также вариативности по их нуклеотидным последовательностям, приводящим к устойчивости к разным штаммам, используются только чистые линии. Однако масличный рапсфакультативный самоопылитель, перекрестное опыление в разных условиях его выращивания может достигать 30%, и на создание генетически выровненных чистых линий рапса требуется не менее 8−10 лет, причем метод самоопыления часто приводит к инбредной депрессии. Поэтому в качестве объекта исследований при изучении генов устойчивости масличного рапса целесообразно использовать удвоенные гаплоидные растения, на создание которых требуется от 1 до 2 лет. Одной из технологий получения гаплоидных растений является культура изолированных микроспор. Культура микроспорпростой и доступный метод для создания гаплодиных и удвоенных гаплоидных линий, необходимых для генетических исследований и получения линий — источников устойчивости к ТиМУ.

II МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ.

2.1 Растения и изоляты вируса.

Материалом для исследования вирулентности и агрессивности изолятов TuMV, а также отбора образцов для создания линий — источников устойчивости к TuMV, служили 136 образцов растений семейства Brassicaceae из двух коллекций. Коллекция № 1 состояла из 64 образцов и включала в себя представителей Brassica napus, Brassica oleracea, Brassica juncea, Brassica nigra и Brassica carinata. Образцы собирали из нескольких источников: собственная коллекция, растения, полученные из коллекций научно-исследовательских институтов Японии, Великобритании, Нидерландов и ВНИПТИР (Всероссийский научно-исследовательский и проектно-технологический институт рапса РАСХН, г. Липецк) — и поддерживали в лаборатории молекулярной фитопатологии Центра «Биоинженерия» РАН. Коллекция № 2 включала 72 образца, представляющих стержневую коллекцию Brassica rapa ВИРа (Всероссийский институт растениеводства имени H.H. Вавилова). Перечень линий, сортов и гибридов сформированных коллекций представлен в таблице 4.

Показать весь текст

Список литературы

  1. , Т.Н., Князев, А.Н., Камионская, A.M. Создание гаплоидных растений масленичного рапса Brassica napus с использованием культуры микроспор Текст. / Т. Н. Грибова // Биотехнология. 2012. — № 2. -С.59−65.
  2. , Б.А. Методика полевого опыта (с основами статистической обработки результатов исследований) Текст. М.: Агропромиздат. — 1985. — 351 с.
  3. , A.M., Осипов, А.П. Теория и практика иммуноферментного анализа Текст. М.: Высшая школа, 1991. — 288 с.
  4. , Т.В. Капуста Текст. Л.: Колос, 1965. — 384 с.
  5. , Т.В. Культурная флора СССР. Т. XI. Капуста Текст. -Л.: Колос, 1984.-328 с.
  6. , В.И. Механизмы устойчивости растений к вирусам Текст. Владивосток: Дальнаука, 2010. — 324 с.
  7. , И.А. Селекция и семеноводство овощных культур Текст. М.: Колос, 1997. — 480 с.
  8. , В.А., Соловьев, A.A., Бадаева, Е.Д., Юрцев, В. Н. Практикум по цитологии и цитогенетике растений Текст. М.: Колос, 2007. — 200 с.
  9. , Д.В., Саматов, Г.А., Трофимов, Д.Ю. ПЦР в реальном времени Текст. М.: БИНОМ. Лаборатория знаний, 2009. — 223 с.
  10. , М.В. Внутренняя инициация трансляции -разнообразие механизмов и возможная роль в жизнедеятельности клетки Текст. / М. В. Скулачев // Успехи биологической химии. 2005.- № 45. — С. 123−172.
  11. , Г. И. Овощеводство Текст. М.: Колос, 2002. — 472 с.
  12. , В.Ф., Чуян, А.Х., Крылов, A.B. Биологические свойствавируса мозаики турнепса, выделенного из лобы в Приморском крае Текст. / В. Ф. Толкач // Проблемы фитовирусологии на Дальнем Востоке. 1996. — С. 64−73.
  13. , Ф. Селекция растений и цитогенетика Текст. М.: Колос, 1961.-448 с.
  14. Ahlawat, Y.S., Chenulu, V.V. Losses due to radish mosaic causes by a strain of Turnip mosaic virus and its control Text. / Y.S. Ahlawat // Indian Phytopathology. 1982. — Vol. 35, № 2. — P. 255−260.
  15. Ahlquist, P., Noueiry, A.O., Lee, W.M., Kushner, D.B., Dye, B.T. Host factors in positive-strand RNA virus genome replication Text. / P. Ahlquist //Virology. 2003. — Vol.77, № 15.-P. 8181−8186.
  16. Anandalakshmi, R., Pruss, G.J., Ge, X., Marathe, R., Mallory, A.C., Smith, T.M., Vance, V.B. A viral suppressor of gene silencing in plants Text. / R. Anandalakshmi // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1998. — Vol. 95. — P. 1 307 913 084.
  17. Andrade, M., Abe, Y., Nakahara, K.S., Uyeda, I. The cyv-2 resistance to Clover yellow vein virus in pea is controlled by the eukaryotic initiation factor 4E Text. / M. Andrade // Gen. Plant Pathol. 2009. — Vol. 75. — P. 241−249.
  18. Atreya, C. D., Atreya, P. L., Thornbury, D. W. Site-directed mutations in the potyvirus НС-PRO gene affect helper component activity, virus accumulation, and symptom expression in infected tobacco plants Text. / C.D.
  19. Atreya // Virology. 1992. — Vol. 191. — P. 106−111.
  20. AVRDC. AVRDC Progress Report 1983 Text. Asian Vegetable Research and Development Center. — 1985. — 189 p.
  21. Axelsson, T., Bowman, C.M., Sharpe, A.G., Lydiate, D.J. Amphidiploid Brassica juncea contains conserved progenitor genomes Text. / T. Axelsson // Genome. 2000. — Vol. 43, № 4. — P. 679−688.
  22. Bantounas, I, Phylactou, L.A., Uney, J.B. RNA interference and the use of small interfering RNA to study gene function in mammalian systems Text. /1. Bantounas // Molecular Endocrinology. 2004. — Vol. 33, № 3. — P. 545−557.
  23. Bellardi, M.G., Bertaccini, A. First report of Turnip mosaic virus in lily Text. / M.G. Bellardi // Plant Pathol. 2001. — Vol. 83. — P. 69.
  24. Bendahmane, A., Kanyuka, K., Baulcombe, D.C. The Rx gene from potato controls separate virus resistance and cell death responses Text. / A. Bendahmane // Plant Cell. 1999. — Vol. 11. — P. 781−791.
  25. Blanc, S., Lopez-Moya, J.J., Wang, R. A specific interaction between coat protein and helper component correlates with aphid transmission of a Potyvirus Text. / S. Blanc I I Virology. 1997. Vol. 231. — P. 141−147.
  26. Blanc, S., Ammar, E.D., Garcia-Lampasona, S., Dolja, V.V. et al. Mutations in the potyvirus helper component protein: effects on interactions with virions and aphid stylets Text. / S. Blanc // General Virology. 1998. Vol. 79. -P. 3119−3122.
  27. Bohanec, B. Ploidy determination using flow cytometry Text. / B. Bohanec // Doubled haploid production in crop plants: a manual. 2003. — P. 397 403.
  28. Boni, M.F., Posada, D., Feldman, M.W. An exact nonparametric method for inferring mosaic structure in sequence triplets Text. / M.F. Boni // Genetics. 2007. — Vol. 176. — P. 1035−1047.
  29. Borgstrom, B., Johansen, I.E. Mutations in pea seedborne mosaic virus genome-linked protein VPg after pathotype-specific virulence in Pisum sativum Text. / B. Borgstrom // Mol Plant Microbe Interact. 2001. — Vol. 14, № 6.-P. 707−714.
  30. Break, J., Break, J. Jr. Computer aided eyaluation of differences in host reactions between isolates of turnip mosaic virus from Sisymbrium loeselii Text. / J. Break // Biotogia Pkmtari. 1980. — Vol. 22. — P. 366−373.
  31. Brigneti, G., Voinnet, O., Li, W.-X., Ji, L.-H., Ding, S.-W., Baulcombe, D. Viral pathogenicity determinants are suppressers of transgene silencing in Nicotiana benthamiana Text. / G. Brigneti 11 EMBO. 1998. — Vol. 17.-P. 6739−6746.
  32. Browning, K.S. The plant translational apparatus Text. / K.S. Browing // Plant Mol Biol. 1996. — Vol. 32. — P. 107−143.
  33. Bruun-Rasmussen, M., Moller, I.S., Tulinius, G., Hansen, J.K.R., 1. nd,
  34. O.S., Johansen, I.E. The same allele of translation initiation factor 4E mediates resistance against two Potyvirus spp. in Pisum sativum Text. / M. Bruun-Rasmussen // Mol. Plant-Microbe Interact. 2007. — Vol. 20. — P. 1075−1082.
  35. Camele, I., Nuzzaci, M., Rana, G.L., Kyriakopoulou, P.E. Papaver rhoeas L., a host of two pathogenic viruses of cultivated plants Text. /1. Camele // Petria.- 1991. -Vol. l.-P. 111−115.
  36. Canto, T., Lopez-Moya, J.J., Lopez-Abella, D., Serra-Yoldi, M. T. Different helper component mutations associated with lack of aphid transmissibility in two isolates of potato virus Y Text. / T. Canto // Phytopathology. 1995. — Vol. 85. — P. 1519−1524.
  37. Carrington, J.C., Cary, S.M., Parks, T.D., Dougherty, W.G. A secondproteinase encoded by a plant Potyvirus genome Text. / J.C. Carrington // EMBO. 1989. — Vol. 8, № 2. — P. 365−370.
  38. Carrington, J.C., Jensen, P.E., Schaad, M.C. Genetic evidence for an essential role for potyvirus CI protein in cell-to-cell movement Text. / J.C. Carrington // Plant. 1998. — Vol. 14, № 4. — P. 393−400.
  39. Chen, J., Chen J.S. Occurrence and control of mosaic disease Turnip mosaic virus in saffron (Crocus sativus) Text. / J. Chen // Zhejiang Nongye Kexue. 2000. — Vol. 3. — P. 132−135.
  40. Chen, J., Chen, J.P., Adams, M.J. Variation between Turnip mosaic virus Isolates in Zhejiang Province, China and Evidence for Recombination Text. / J. Chen // Phytopathology. 2002. — Vol. 150. — P. 142−145.
  41. Chisholm, S.T., Para, M.A., Anderberg, R.J., Carrington, J.C. Arabidopsis RTM1 and RTM2 genes function in phloem to restrict long-distance movement of tobacco etch virus Text. / S.T. Chisholm // Plant Physiol. 2001. -Vol. 127.-P. 1667−1675.
  42. Choi, J.K., Matsuyama, N. and Wakimoto, S. Comparative studies on biological and serological properties of Turnip mosaic virus isolates Text. / J.K. Choi // Fac. Agric. Kyushu Univ. 1980. — Vol. 25. — P. 15−23.
  43. Chupp, C., Sherf, A.F. Vegetable diseases and their control Text. / C. Chupp // Ronald Press. 1960. — P. 252−256.
  44. Coventry, J., Kott, L., Beversdorf, W. Manual for microspore culture technique for Brassica napus Text. / J. Coventry // Guelph, Ont. Canada: Dep. Crop Sci. Technol. Bull., OAC publication 0489, Univ. of Guelph. 1988.
  45. Dangl, J.L., Jones, J.D.G. Plant pathogens and integrated defense responses to infection Text. / J.L. Dangl // Nature. 2001. — Vol. 411. — P. 826 833.
  46. , P.A. (2003) Barley isolated microspore culture (IMC) method Text. / P.A. Davies // Doubled haploid production in crop plants: a manual. — 2003. -P 49−52.
  47. Dougherty, W.G., Carrington, J.C., Cary, S.M., Parks, T.D. Biochemical and mutational analysis of a plant virus polyprotein cleavage site Text. / W.G. Dougherty // EMBO. 1988. — Vol. 7, № 5. — P. 1281−1287.
  48. Edwards, S.K., Johonstone, C., Thompson, C. A simple and rapid method for the preparation of plant genomic DNA for PCR analyses Text. / S.K. Edwards //Nucl. Acids Res. 1991. — Vol. 19., № 6. — P. 1349.
  49. Edwardson, J.R., Christie, R.G. The Potyvirus group Text. / J.R. Edwardson // Fia. Agrie. Exp. Stn. Monogr. 1991. — Vol. 3−4. — P. 1082−1243.
  50. Evans, I.R., MacNeil, B.H. Virus disease of rutabagas (turnips) Text.
  51. I.R. Evans // Ontario Ministry of Agriculture and Food Factsheet. 1983. — Vol. 73.-61 p.
  52. Farzadfar, S., Tomitaka, Y. Molecular characterisation of Turnip mosaic virus isolates from Brassicaceae weeds Text. / S. Farzadfar // Plant Pathol. 2009. — Vol. 124. — P. 45−55.
  53. Ferrie, A.M.R., Keller, W.A. Microspore culture for haploid plant production Text. / A.M.R. Ferrie // Plant cell, tissue and organ culture. Fundamental methods. 1995. — P. 155−164.
  54. Ferrie, A.M.R., Epp, D.J., Keller, W.A. Evaluation of Brassica rapa L. genotypes for microspore culture response and identification of a highly embryogenic line Text. / A.M.R. Ferrie // Plant Cell Rep. 1995. — Vol. 14. — P. 580−584.
  55. Ferrie, A.M.R., Dirpaul, J., Krishna, P., Krochko, J., Keller, W.A. Effects of brassinosteroids on microspore embryogenesis in Brassica species Text. / A.M.R. Ferrie // In Vitro Cell Dev Biol Plant. 2005. — Vol. 41. — P. 742 745.
  56. Ferrie, A.M.R., Caswell, K.L. Isolated microspore culture techniques and recent progress for haploid and doubled haploid plant production Text. / A.M.R. Ferrie // Plant Cell Tiss Organ Cult. 2011. — Vol. 104. — P. 301−309.
  57. Fletcher, R., Coventry, J., Kott, L.S. Doubled haploid technology for spring and winter Brassica napus (revised ed.) Text. / R. Fletcher // In: Publication O (ed) Technical Bulletin. University of Guelph, Ontario, Canada. -1981.-P 42.
  58. Flor, H.H. The current status of the gene for gene concept Text. / H.H. Flor // Annu. Rev. Phytopathol. 1971. — Vol. 9. — P. 275−296
  59. Fraser, R.S.S. The genetics of plant-virus interactions: implications for plant breeding Text. / R.S.S. Fraser // Euphytica. 1992. — Vol. 63. — P. 175 185.
  60. Fraser, R.S.S. Introduction to classical cross protection Text. / R.S.S.
  61. Fraser // Plant Virology Protocols: from Virus Isolation to Transgenic Resistance.- 1998.-P. 13−24.
  62. Gallie, D.R., Browning, K.S. eIF4G functionally differs from eIFiso4G in promoting internal initiation, cap-independent translation, and translation of structured mRNAs Text. / D.R. Gallie // Biol Chem. 2001. — Vol. 276,№ 40.-P. 36 951−36 960.
  63. Gamborg, O.L., Miller, R.A., Ojima, K. Nutrient requirements of suspension cultures of soyabean root cells Text. / O.L. Gamborg // Exp Cell Res.- 1968. Vol. 50. — P. 151−158.
  64. Gardner, M.W., Kendrick, J.B. Turnip Mosaic Text. / M.W. Gardner // Agriculture Research. 1921. — Vol. 22. — P. 123−124.
  65. Gera, A., Lampel, M., Cohen, J., Rosner, A. Okra (Hibiscus esculentus) a new host of Turnip mosaic virus in Israel Text. / A. Gera // Plant Dis.-2001.-Vol. 85-P. 336.
  66. Gibbs, A.J., Ohshima, K., Phillips, M.J., Gibbs, M.J. (2008) The prehistory of potyviruses: their initial radiation was during the dawn of agriculture Text. / A. Gibbs // PLoS One. 2008. — Vol. 3, № 6: e2523.
  67. Gibbs, A.J., Ohshima, K. Potyviruses and the digital revolution Text. / A. Gibbs // Annu Rev Phytopathol. 2010. — Vol. 48. — P. 205−223.
  68. Gibbs, M.J., Armstrong, J.S., Gibbs, A.J. Sister-Scanning: a Monte Carlo procedure for assessing signals in recombinant sequences Text. / M.J.
  69. Gibbs // Bioinformatics. 2000. — Vol. 16. — P. 573−582.
  70. Gland, A.A. Doubling chromosomes in interspecific hybrids by colchicine treatment Text. / A.A. Gland // Eucarpia Cruciferae Newsl. 1981. — Vol. 6.-P. 20−22.
  71. Green, S.K., Deng, T.C. Turnip mosaic virus strains in cruciferous hosts in Taiwan Text. / S.K. Green // Plant Dis. 1985. — Vol. 69. — P. 28−31.
  72. Guglielmone, L., Jenner, C.E., Walsh, J.A., Ramasso, E., Marian, D. An unusual isolate of Turnip mosaic potyvirus from Abutilon theophrasti Text. / L. Guglielmone // Phytoparasitica. 2000. — Vol. 28. — P. 149−152.
  73. Guo, Y.-D., Pulli, S. High-frequency embryogenesis in Brassica campestris microspore culture Text. / Y.-D. Guo // Plant Cell. 1996. — Vol. 46. -P. 219−225.
  74. Hendy, M.D., Holland, B.R. Upper bounds on maximum likelihood for phylogenetic trees Text. / M.D. Hendy // Bioinformatics. 2003 — Vol. 19 — P. 66−72.
  75. Holmes, E.C., Worobey, M., Rambaut, A. Phylogenetic evidence for recombination in dengue virus Text. / E.C. Holmes // Mol Biol and Evol. 1999. -Vol. 16.-P. 405−409.
  76. Holmes, F.O. Local lesions in tobacco mosaic Text. / F.O. Holmes // Bot. Gazette. 1929. — Vol. 87. — P. 39−55.
  77. Hunter, C.P. Plant regeneration from microspores of barley, Hordeum vulgare L. Text. / C.P. Hunter // Wye College, University of London. 1988.
  78. Hughes, S.L. Interaction of turnip mosaic virus (TuMV) with members of the Brassicaceae Text. / S.L. Hughes // University of Birmingham. -2001.
  79. Jenner, C.E., Nellist, C.F., Barker, G.C., Walsh, J.A. Turnip mosaic virus (TuMV) is able to use alleles of both eIF4E and eIF (iso)4E from multiple loci of the diploid Brassica rapa Text. / C.E. Jenner // MPMI. 2010. — Vol. 23, №. 11.-P. 1498−1505.
  80. Jenner, C.E., Walsh, J.A. Pathotypic variation in turnip mosaic virus with special reference to European isolates Text. / C.E. Jenner // Plant Pathol. -1996.-Vol. 45.-P. 848−856.
  81. Jenner, C.E., Keane, G.J., Jones, J.E., Walsh, J.A. Serotypic variation in Turnip mosaic virus Text. / C.E. Jenner // Plant Pathology. 1999. — Vol. 48. -P. 101−108.
  82. Jenner, C.E., Wang, X., Tomimura, K., Ohshima, K. The dual role of the potyvirus P3 protein of Turnip mosaic virus as a symptom and avirulence determinant in Brassicas Text. / C.E. Jenner // Mol Plant Microbe Interact.2003. Vol. 16, № 9. — P. 777−784.
  83. Johansen, I.E., Lund, O.S., Hjulsager, C.K., Laursen, J. Recessive resistance in Pisurn sativum and potyvirus pathotype resolved in a gene-for-cistron correspondence between host and virus Text. / I.E. Johansen // Virol. 2001. -Vol. 75.-P. 6609−6614.
  84. Johnson, B.L., Barnhart, D. Transfer of mosaic resistance to commercial varieties of Matthiola incana Text. / B.L. Johnson // Proc. Am. Soc. Hortic. Sei. 1956. — Vol. 67. — P. 522−533.
  85. Kang, B.C., Yearn, I., Frantz, J.D., Murphy, J.D., Jahn, M.M. The pvrl locus in Capsicum encodes a translation initiation factor eIF4E that interacts with Tobacco etch virus VPg Text. / B.C. Kang // Plant. 2005. — Vol. 42. — P. 392−405.
  86. Kasha, K.J., Simion, E., Oro, R., Yao, Q.A., Carlson AR An improved in vitro technique for isolated microspore culture of barley Text. / K.J. Kasha // Euphytica.-2001.-Vol. 120.-P. 379−385.
  87. Kasschau, K. D., Carrington, J. C. A counterdefensive strategy of plant viruses: suppression of posttranscriptional gene silencing Text. / R.D. Kasschau // Cell. 1998. — Vol. 95. — P. 461−470.
  88. Kohm, B.A., Goulden, M.G., Gilbert, J.E., Kavanagh, T.A., Baulcombe, D.C. A potato virus X resistance gene mediates an induced, nonspecific resistance in protoplasts Text. / B.A. Kohm // Plant Cell. 1993.1. Vol. 5.-P. 913−920.
  89. Kozubek, E., Irzukowski, W., Lehmann, P. Genetic and moleculare variability of a Turnip mosaic virus population from horseradish (Cochlearia armoracia L.) Text. / E. Kozubek // Appl. Genet. 2007. — Vol. 48, № 3. — P. 295−306.
  90. Lantos, C., Paricsi, S., Zofajova, A., Weyen, J., Pauk, J. Isolated microspore culture of wheat (Triticum aestivum L.) with Hungarian cultivars Text. / C. Lantos // Acta Biol Szeged. 2006. — Vol. 50. — P. 31−35.
  91. Larson, R.H., Walker, J.C. Properties and host range of a cabbage mosaic virus Text. / R.H. Larson // Phytopathology. 1938. — Vol. 28, № 13. -Abstract.
  92. Larson, R.H., Walker, J.C. Ring necrosis of cabbage Text. / R.H. Larson // Agr. Res. 1941. — Vol. 62. — P. 475−491.
  93. Lartey, R.T., Ghoshroy, S., Citovsky, V. Identification of an Arabidopsis thaliana mutation (vsml) that restricts systemic movement of tobamoviruses Text. / R.T. Lartey // Mol Plant Microbe Interact. 1998. — Vol. 11,№ 7.-P. 706−709.
  94. Lellis, A.D., Kasschau, K.D., Whitham, S.A., Carrington, J. Loss-of-susceptibility mutants of Arabidopsis thaliana reveal an essential role for eIF (iso)4E during potyvirus infection Text. / A.D. Lellis // Curr Biol. 2002. -Vol. 12.-P. 1046−1051.
  95. Leonard, S., Plante, D., Wittmann, S., Daigneault, N., Fortin, M.G. Complex formation between potyvirus VPg and translation eukaryotic initiation factor 4E correlates with virus infectivity Text. / S. Leonard // Virology. 2000.
  96. Vol. 74, № 17. P. 7730−7737.
  97. Leonard, S., Viel, C., Beauchemin, C., Daigneault, N. Interaction of VPg-Pro of Turnip mosaic virus with the translation initiation factor 4E and the poly (A)-binding protein in planta Text. / S. Leonard // Gen. Virology. 2004. -Vol. 85.-P. 1055−1063.
  98. Lesmann, D.E., Vetten, H.J. The occurrence of tobacco rattle and Turnip mosaic virus in Orchis spp. and of an unidentified Potyvirus in Cypripedium calceolus Text. / D.-E. Lesmann // ISHS Acta Horticulturae. 1985. -Vol. 164.-P. 45−54.
  99. Lichter, R. Anther culture of Brassica napus in a liquid culture medium Text. / R. Lichter // Pflanzenphysiol. 1981. — Vol. 103. — P. 229−237.
  100. Lichter, R. Induction of haploid plants from isolated pollen of Brassica napus Text. / R. Lichter // Plant Physiol. 1982. — Vol. 105. — P. 427 434.
  101. Liu, X.P., Lu, W., Lin, B. A study of TuMV strain differentiation on cruciferous vegetables from tenregions of China. Identification results with Green’s methods Text. / X. Liu // Virologica Sinica. 1990. — Vol. 5. — P. 82−87.
  102. Lu, Y.W., Shen, W.T., Zhou, P., Tang, Q.J. Complete genomic sequence of a Papaya ringspot virus isolate from Hainan Island, China Text. / Y.W. Lu // Arch, virol. 2008. — Vol. 153. — P. 991−993.
  103. Maia, I.G., Haenni, A.-L., Bernardi, F. Potyviral HC-Pro: a multifunctional protein Text. / I.G. Maia // General Virology. 1996. — Vol. 77. -P. 1335−1341.
  104. Maluszynska, J. Cytogenetic tests for ploidy level analyses-chromosome counting Text. / J. Maluszynska // Doubled haploid production incrop plants: a manual. 2003. — P. 391−395.
  105. Martin, D.P., Lemey, P., Lott, M., Moulton, V., Posada, D., Lefeuvre, P. RDP3: a flexible and fast computer program for analyzing recombination Text. / D.P. Martin // Bioinformatics. 2010. — Vol. 26. — P. 2462−2463.
  106. Martin, D.P., Posada, D., Crandall, K.A., Williamson, C. A modified bootscan algorithm for automated identification of recombinant sequences and recombination breakpoints Text. / D.P. Martin //AIDS Res Hum Retroviruses. -2005.-Vol. 21.-P. 98−102.
  107. Martin, D.P., Rybicki, E. RDP: detection of recombination amongst aligned sequences Text. / D.P. Martin // Bioinformatics. 2000. — Vol. 16. — P. 562−563.
  108. Maule, A., Leh, V., Lederer, C. The dialogue between viruses and hosts in compatible interactions Text. / A. Maule // Curr. Opin. Plant Biology. -2002. Vol. 5, № 4. — P. 279−284.
  109. Maynard Smith, J. Analyzing the mosaic structure of genes Text. / J. Manuard Smith // Mol Evol. 1992. — Vol. 34. — P. 126−129.
  110. McDonald, J.G., Hiebert, J.G. Characterization of the capsid and cylindrical inclusion proteins of three strains of turnip mosaic virus Text. / J.G. McDonald // Virology. 1975. — Vol. 63. — P. 295−303.
  111. Moury, B., Morel, C., Johansen, E., Guilbaud, L., Souche, S.
  112. Mutations in potato virus Y genome-linked protein determine virulence toward recessive resistances in Capsicum annuum and Lycopersicon hirsutum Text. / B. Moury 11 Mol Plant Microbe Interact. 2004. — Vol. 17, № 3. — P. 322−329.
  113. Murashige, T., Skoog, F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures Text. / T. Murashige // Physiol. Plant. -1962.-Vol. 15.-P. 473−496.
  114. Murphy, J.F., Klein, P.G., Hunt, A.G., Shaw, J.G. Replacement of the tyrosine residue that links a potyviral VPg to the viral RNA is lethal Text. / Murphy, J.F. // Virology. 1996. — Vol. 220, № 2. — P. 535−538.
  115. Nakashima, H., Sako, N., Hori, K. Nucleotide sequences of the helper component-proteinase genes of aphid transmissible and non-transmissible isolates of turnip mosaic virus Text. / H. Nakashima // Arch. Virol. 1993. — Vol. 131. — P. 17−27.
  116. Nguyen, H.D., Tomitaka, Y., Gibbs, A.J., Ohshima, K. Turnip mosaic potyvirus probably first spread to Eurasian Brassica crops from wild orchids about 1000 years ago Text. / H.D. Nguyen // Plos one. 2013. — Vol. 8. — P. e55336.
  117. Nicolas, O., Laliberte., J.-F. The complete nucleotide sequence of Turnip mosaic potyvirus RNA Text. / O. Nicolas // General Virology. 1992. -Vol. 73.-P. 2785−2793.
  118. Nicolas, O., Dunningtona, S.W., Gotowa, L.F. Variations in the VPg
  119. Protein Allow a Potyvirus to OvercomevaGene Resistance in Tobacco Text. / O. Nicolas // Virology. 1997. — Vol. 237. — P. 452−459.
  120. Nitsch, C. La culture de pollen isole sur mileu synthetique Text. / C. Nitsch //CR Acad Sei Paris. 1974. — Vol. 278. — P. 1031−1034.
  121. Nitsch, C., Nitsch, J. The induction of flowering in vitro in stem segments of Plumbago indica L. I. The production of vegetative buds Text. / C. Nitsch // Planta. 1967. — Vol. 72. — P. 355−370.
  122. Niu, X., Leung, H., Williams, P.H. Sources and nature of resistance to downy mildew and Turnip mosaic virus in Chinese cabbage Text. / X. Niu // Am. Soc. Hortic. Sei. 1983. — Vol. 108. — P. 775−778.
  123. Ochatt, S.J. Flow cytometry in plant breeding Text. / S.J. Ochatt // Cytometry. 2008. — Vol. 73. — P. 581−598.
  124. Ohshima, K., Akaishi, S., Kajiyama, H., Koga, R., Gibbs, A.J. Evolutionary trajectory of turnip mosaic virus populations adapting to a new host Text. / K. Ohshima // General Virology. 2010. — Vol. 91. — P. 788−801.
  125. Ohshima, K., Tanaka, M., Sako, N. The complete nucleotide sequence of Turnip mosaic virus RNA Japanese strain Text. / K. Ohshima 11 Arch Virol. -1996.-Vol. 141.-P. 1991−1997.
  126. Ohshima, K., Tomitaka, Y., Wood, J.T., Minematsu, Y. et al. Patterns of recombination in Turnip mosaic virus genomic sequences indicate hotspots of recombination Text. / K. Ohshima // Journal of General Virology. 2007. — Vol. 88.-P. 298−315.
  127. Padidam, M., Sawyer, S., Fauquet, C.M. Possible emergence of new geminiviruses by frequent recombination Text. / M. Padidam // Virology. 1999. -Vol. 265.-P. 218−225.
  128. Paludan, N., Turnip Mosaic Virus in horse radish (Armoracia lapathifolia Gilib.) Text. / N. Paludan // Tid. Plant. 1973. — Vol. 77. — P. 161 169.
  129. Parkin, I.A., Sharpe, A.G., Keith, DJ., Lydiate, D.J. Identification of the A and C genomes of amphidiploid Brassica napus (oilseed rape) Text. / I.A. Parkin // Genome. 1995. — Vol. 38, № 6. — P. 1122−1131.
  130. Pink, D.A.C., Walkey, D.G.A. The reaction of summer- and autumn-maturing cauliflowers to infection by cauliflower and turnip mosaic viruses Text. / D.A.C. Pink // Hort Sei. 1988. — Vol. 63. — P. 95−102.
  131. Posada, D., Crandall, K.A. Evaluation of methods for detecting recombination from DNA sequences: Computer simulations Text. / D. Posada // Proc Natl Acad Sei. 2001. — Vol. 98. — P. 13 757−13 762.
  132. Pound, G.S. Horseradish mosaic Text. / G.S. Pound // Agr. Res. -1948.-Vol. 77.-P. 97−114.
  133. Pound, G.S., Walker, J.C., Differentiation of certain crucifer viruses by the use of temperature and host immunity reactions Text. /G.S. Pound // Agricultural Research. 1945. — Vol. 71. — P. 255−278.
  134. Pound, G.S., Williams, P.H., Walker, J.C. Mosaic and yellows resistant inbred cabbage varieties Text. /G.S. Pound // Wis Agric Exp St Res Bull.- 1965.-259 P.
  135. Prem, D., Gupta, K., Gautam, S., Agnihotri, A. Activated charcoal induced high frequency microspore embryogenesis and efficient doubled haploid production in Brassica juncea Text. / D. Prem // Plant Cell Tiss Organ Cult. -2008.-Vol. 93.-P. 269−282.
  136. Prowidenti, R., Robinson, R.W., Shail, J.W. Chicory: a voluable source of resistance to Turnip mosaic virus for endive and escarole Text. / R. Prowidenti // Am. Soc. Hortic. Sci. 1979. — Vol. 276. — P. 726−728.
  137. Prowidenti, R. Evaluation of Chinese cabbage cultivars from Japan and the People’s Republic of China for resistance to turnip mosaic virus and cauliflower mosaic virus Text. / R. Prowidenti // Am. Soc. Hortic. Sci. 1980. — Vol. 105.-P. 571−573.
  138. Prowidenti, R. A destructive disease of garden balsam caused by a strain of Turnip mosaic virus Text. / R. Prowidenti // Plant Disease Reptr. — 1982. Vol. 66, № 11. — P. 1076−1077.
  139. Qian, W., Zhang, S., Li, F., Zhang, H., Walsh, J.A. Mapping and candidate-gene screening of the novel Turnip mosaic virus resistance gene retr02 in Chinese cabbage (Brassica rapa L.) Text. / W. Qian // Theor Appl Genet. — 2013.-Vol. 126.-P. 179−188.
  140. Ragetli, H.W.J. Virus-host interactions, with emphasis on certain cytopatic phenomena Text. / H.W.J. Ragetli // Canad. J. Bot. 1967. — Vol. 45, № 8.-P. 1221−1234.
  141. Rao, R.S., Kumar, C.G., Prakasham, R.S., Hobbs, P.J. The Taguchi methodology as a statistical tool for biotechnological applications: a critical appraisal Text. / R.S. Rao // Biotechnology. 2008. — Vol. 3. — P. 510−523.
  142. Revers, F., Le Gall, O., Candresse, T., Maule, A. J. New advances in understanding the molecular biology of plant/Potyvirus interactions Text. / F. Revers // Mol Plant Microbe Interact. 1999. — Vol. 12. — P. 367−376.
  143. Riechmann, J.L., Cervera, M.T., Garcia, J.A. Processing of the plum pox virus polyprotein at the P3−6K1 junction is not required for virus viability Text. / J.L. Riechmann // J. General Virol. 1995. — Vol. 76. — P. 951−956.
  144. Robaglia, C., Caranta, C. Translation initiation factors: a weak link in plant RNA virus infection Text. / C. Robaglia // Trends Plant Sci/ 2006. — Vol. 11.-P. 40−45.
  145. Robbins, M. A., Witsenboer, H., Michelmore, R. W., Laliberte, J.-F., Fortin, M. G. Genetic mapping of Turnip mosaic virus resistance in Lactuca sativa Text. / M.A. Robbins // Theor Appl Genet. 1994. — Vol. 89. — P. 583−589.
  146. Roudet-Tavert, G., German-Retana, S., Delaunay, T., Delecolle, B., Candresse, T. Interaction between potyvirus helper component-proteinase and capsid protein in infected plants Text. / G. Roudet-Tavert // Gen Virol. 2002. -Vol. 83, № 7.-p. 1765−1770.
  147. Ruffel, S., Gallois, J.L., Lesage, M.L., Caranta, C. The recessive potyvirus resistance gene pot-1 is the tomato orthologue of the pepper pvr2-eIF4E gene Text. / S. Ruffel // Mol Genet Genom. 2005. — Vol. 274. — P. 346−353.
  148. Rusholme, R. L. The genetic control of resistance to Turnip mosaic virus (TuMV) in Brassica Text. / R.L. Rusholme // PhD Thesis, University of East Anglia, Norwich. 2000.
  149. Rusholme, R. L., Walsh, J. A., Lydiate, D. J. Genetic control of immunity to turnip mosaic virus (TuMV) pathotype 1 in Brassica rapa (Chinese cabbage) Text. / R.L. Rusholme // Genome. 2007. — Vol. 345. — P. 123−145.
  150. Rzhetsky, A., Nei, M. A simple method for estimating and testing minimum evolution trees Text. / A. Rzhetsky // Molecular Biology and Evolution. 1992.-Vol. 9.-P. 945−967.
  151. Sadowy, E., Milner, M., Haenni, A.-L. Proteins attached to viral genomes are multifunctional Text. / E. sadowy // Advances in Virus Research. -2001.-Vol. 57.-P. 185−262.
  152. Saitou, N., Nei, M. The neighbor-joining method: A new method for reconstructing phylogenetic trees Text. / N. Saitou // Molecular Biology and Evolution. 1987. — Vol. 4. — P. 406−425.
  153. Sanchez, F., Wang, X., Jenner, C.E., Walsh, J.A. Strains of Turnip mosaic potyvirus as defined by the molecular analysis of the coat protein gene of the virus Text. / F. Sanchez // Virus Res. 2003. — Vol. 94, № 1. — P. 33−43.
  154. Sanger, F., Nicklen, S., Coulson, A.R. DNA sequencing with chain-terminanting inhibitors Text. / F. Sanger // Proc. Natl. Acad. Sci. 1977. — Vol. 84.-P. 63−67.
  155. Sano, Y., van der Vlugt, R., de Haan, P., Takahashi, A., Kawakami, M., Goldbach, R., Kojima, M. On the variability of the 3' terminal sequence of the turnip mosaic virus genome Text. / Y. Sano // Arch Virol. 1992. — Vol. 126. -P. 231−238.
  156. Schaad, M.C., Lellis, A.D., Carrington, J.C. VPg of tobacco etch potyvirus is a host genotype-specific determinant for long-distance movement Text. / M.C. Shaad // Virology. 1997. — Vol. 71, № 11. — P. 8624−8631.
  157. Shariatpanahi, M.E., Bai, U., Heberle-Bors, E., Touraev, A. Stresses applied for the re-programming of plant microspores towards in vitro embriogenesis Text. / M.E. Shariatpanahi // Physiologia Plantarum. 2006. -Vol. 127.-519−534.
  158. Sharpe, A.G., Parkin, I.A.P., Keith, D.J., Lydiate, D.J. Frequent nonreciprocal translocations in the amphidiploid genome of oilseed rape (Brassica napus) Text. / A.G. Sharpe // Genome. 1995. — Vol. 38. — P. 1112−121.
  159. Shattuck, V.l. The Biology, Epidemiology, and Control of Turnip Mosaic Virus Text. / V.l. Shattuck // Plant Breed Rev. 1992. — Vol. 14. — P. 199−238.
  160. Shattuck, V.l., Stobbs, L.W. Evaluation of rutabaga cultivars for turnip mosaic virus resistance and the inheritance of resistance Text. / V.l. Shattuck // HortScience. 1987. — Vol. 22. — 935−937.
  161. Schultz, E.S. A transmissible mosaic disease of Chinese cabbage, mustard and turnip Text. / E.S. Shultz // Agric. Res. 1921. — Vol. 22. — P. 173 177.
  162. Shen, W.T., Wang, M.Q., Yan, P., Gao, L. Protein interaction matrix of Papaya ringspot virus type P based on a yeast two-hybrid system Text. / W.T. Shen // Acta Virologica. 2010. — Vol. 54. — P. 49−54.
  163. Shukla, D.D., Ward, C.W., Brunt, A.A. The Potyviridae Text. UK: CAB International, 1994. — 528 p.
  164. Smith, K.M. A virus disease of cultivated crucifers Text. / K.M. Smith // Ann. Appl. Biol. 1935. — Vol. 22. — P. 239−242.
  165. Staskawicz, B.J., Ausubel, F.M., Baker, B.J., Ellis, J.G., Jones, J.D.G. Molecular genetics of plant disease resistance Text. / B.J. Staskawicz // Science. -1995.-Vol. 268.-P. 661−667.
  166. Stavolone, L., Alioto, D., Ragozzino, A., Laliberte, J.-F. Variability among turnip mosaic potyvirus isolates Text. / L. Stavolone // Phytopathology. -1998. Vol. 88. — P. 1200−1204.
  167. Stobbs, L.W., Shattuck, V.l. Turnip mosaic virus strains in southern Ontario Text. / L.W. Stobbs // Plant Disease. 1989. — Vol. 75. — P. 575−579.
  168. Suh, S.K., Green, S.K., Park, H.G. Genetics of resistance to five strains of turnip mosaic virus in Chinese cabbage Text. / S.K. Suh // Euphytica. -1995.-Vol. 81.-P. 71−77.
  169. Suh, S.K., Park, H.G. and Green, S.K. Interactions among TuMV strains inoculated and their movement in Chinese cabbage Text. / S.K. Suh // Kor. Soc. Hort. Sei. 1996. — Vol. 37. — P. 392−398.
  170. Suheiro, N., Natsuaki, T., Watanabe, T. and Okuda, S. An important determinant of the ability of Turnip mosaic virus to infect Brassica spp. and/or Raphanus sativus is in its P3 protein Text. / N. Suheiro // Gen. Virol. 2004. -Vol. 85.-P. 2087−2098.
  171. Takanori, S., Takeshi, N., Masashi, H. Plant regeneration from isolated microspore cultures of Chinese cabbage (Brassica campestris spp. pekinensis) Text. / S. Takanori // Plant Cell Reports. 1989. — Vol. 8. — P. 486 488.
  172. Tamura, K., Nei, M., Kumar, S. Prospects for inferring very large phylogenies by using the neighbor-joining method Text. / K. Tamura // Proceedings of the National Academy of Sciences (USA). 2004. — Vol. 101. — P. 11 030−11 035.
  173. Thomas, W.T.B., Forster, B.P., Gertsson, B. Doubled haploids in breeding Text. / W.T.B. Thomas // Doubled haploid production in crop plants: a manual. 2003. — P. 337−349.
  174. Tochihara, H. Studies on the viruses of Japanese radish mosaic diseases. Properties and morphology of radish P virus Text. / H. Tochihara // Ann. Phytopath Soc. Japan. 1959. — Vol. 24. — P. 287−295.
  175. Tomitaka, Y., Ohshima, K. A phylogeographical study of the Turnip mosaic virus population in East Asia reveals an 'emergent' lineage in Japan Text. / Y. Tomitaka // Mol Ecol. 2006. — Vol. 14, № 14. — P. 4437−4457.
  176. Tomlison, J.A., Carter, A.L., Dale, W.T., Simpson, C.J. Weed plants as sources of cucumber mosaic virus Text. / J.A. Tomlison // Annals of Applied Biology. 1970. — Vol. 66. — P. 11−16.
  177. Tomlinson, J.A. Epidemiology and control of virus diseases of vegetables Text. / J.A. Tomlison // Ann. Appl. Biol. 1987. — Vol. 110. — P. 661 681.
  178. Tompkins, C.M. Two mosaic diseases of annual stock Text. / C.M. Tompkins // Agriculture Research. 1939. — Vol. 58. — P. 63−77.
  179. Touraev, A., Vincente, O., Heberle-Bors, E. Initiation of microspore embryogenesis by stress Text. / A. Touraev // Trends Plant Sei Rev. 1997. -Vol. 2.-P. 297−302.
  180. Urcuqui-Inchima S, Maia, I.G., Drugeon, G., Haenni, A.L., Bernardi, F. Effect of mutations within the cys-rich region of potyvirus helper component-proteinase on self-interaction Text. / S. Urcuqui-Inchima // Gen Virol. 1999. -Vol. 80.-P. 2809−2812.
  181. Urcuqui-Inchima, S, Maia, I.G., Arruda, P., Haenni, A.L., Bernardi, F. Deletion mapping of the potyviral helper component-proteinase reveals two regions involved in RNA binding Text. / S. Urcuqui-Inchima // Virology. 2000. -Vol. 268,№ l.-P. 104−111.
  182. Urcuqui-Inchima, S., Haenni, A.L., Bernardi, F. Potyvirus proteins: a wealth of functions Text. / S. Urcuqui-Inchima // Virus research. 2001. — Vol. 74.-P. 157−175.
  183. Vance, V., Vaucheret, H. RNA silencing in plants-defense and counterdefense Text. / V. Vance // Science. 2001. — Vol. 292, № 5525. — P. 2277−2280.
  184. Vargason, J.M., Szittya, G., Burgyan, J. Size Selective Recognition of siRNA by an RNA Silencing Suppressor Text. / J.M. Vargason // Cell. 2003. -Vol. 115.-P. 799−811.
  185. Walker, J.C. Studies upon the inheritance of Fusarium resistance in cabbage Text. / J.C. Walker // Phytopathology. 1926. — Vol. 16.-87 p.
  186. Walkey, D.G.A., Pink, D.A.C. Reactions of white cabbage {Brassica oleracea var. capitata) to four different strains of Turnip mosaic virus Text. / D.G.A. Walkey // Ann. Appl. Biol. 1988. — Vol. 112. — P. 273−284.
  187. Walkey, D.G.A., Webb, M.J.W. Text. / D.G.A. Walkey // Internal necrosis is stored while cabbage caused by Turnip mosaic virus. Ann. Appl. Biol.- 1978.-Vol. 89.-P. 435−441.
  188. Walsh, J.A. Genetic control of immunity to turnip mosaic virus in winter oilseed rape {Brassica napus ssp. oleifera) and the effect of foreign isolates of the virus Text. / J.A. Walsh // Annals of Applied Biology. 1989. — Vol. 115.- P. 89−99.
  189. Walsh, J.A., Jenner, C. E. Turnip mosaic virus and the quest for durable resistance Text. / J.A. Walsh // Mol. Plant Pathol. 2002. — Vol. 3, № 5.- P. 289−300.
  190. Walsh, J.A., Jenner, C.E. Resistance to Turnip mosaic virus in the Brassicaceae Text. / J.A. Walsh // Natural Resistance Mechanisms of Plants to Viruses. 2006. — P. 415−430.
  191. Walsh, J.A., Sharpe, A. G., Jenner, C. E., Lydiate, D. J. Characterisation of resistance to Turnip mosaic virus in oilseed rape {Brassica napus) and genetic mapping of TuRBOl Text. / J.A. Walsh // Theor Appl Genet. -1999.-Vol. 99.-P. 1149−1154.
  192. Walsh, J.A., Tomlinson, J.A. Viruses infecting winter oilseed rape {Brassica napus ssp. oleifera) Text. / J.A. Walsh // Annals of Applied Biology. -1985.-Vol. 107.-P. 485−95.
  193. Whitham, S.A., Yamamoto, M.L., Carrington, J.C. Selectable viruses and altered susceptibility mutants in Arabidopsis thaliana Text. / S.A. Whitham // Proc Natl Acad Sci USA. 1999. — Vol. 96, № 2. — P. 772−777.
  194. Whitham, S.A., Yang, C., Goodin, M.M. Global impact: elucidatingplant responses to viral infection Text. / S.A. Whitham // Mol Plant Microbe Interact. 2006. — Vol. 19, № 11. — P. 1207−1215.
  195. Yang, Y., Shah, J., Klessig, D.F. Signal perception and transduction in plant defense responses Text. / Y. Yang // Genes Dev. 1997. — Vol. 11. — P. 1621−1639.
  196. Yap, Y.K., Duangjit, J, Panyim, S. N-terminal of Papaya ringspot virus type-W (PRSV-W) helper component proteinase (HC-Pro) is essential for PRSV systemic infection in zucchini Text. / Y.K. Yap // Virus Genes. 2009. -Vol. 38.-P. 461−467.
  197. Yoon, J.Y., Green, S.K., Opena, R.T. Inheritance of resistance to turnip mosaic virus in Chinese cabbage Text. / J.Y. Yoon // Euphytica. 1993. -Vol. 69.-P. 103−108.
  198. Yoshii, H. On the strain distribution of turnip mosaic virus Text. / H. Yoshii // Ann. Phytopathol. Soc. Jpn. 1963. — Vol. 28. — P. 221−227.
  199. Zhang, Z., Schwartz, S., Wagner, L., Miller, W. A greedy algorithm for aligning DNA sequences Text. / Z. Zhang // Comput Biol. 2000. — Vol. 7, № 1−2.-P. 203−214.
  200. Zink, F.W., Duffus, J.E. 1970. Linkage of turnip mosaic virus susceptibility and downy mildew (Bremia lactucae) resistance in lettuce Text. / F.W. Zink // Am. Soc. Hortic. Sci. 1970. — Vol. 95. — P. 420−422.
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?