Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Гликозиды мурамилдипептида: иммуномодулирующая активность и возможность использования при вирусных болезнях

Диссертация: Гликозиды мурамилдипептида: иммуномодулирующая активность и возможность использования при вирусных болезнях
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Предпринятые ранее попытки присоединения циклических структур к гликозидному центру молекулы МДП в одних случаях приводили к увеличению биологической активности гликопептида (Р-циклогексилгликозид МДП), в других — существенно не изменяли или даже снижали ее (аи Р-циклододецилгликозиды МДП). Продолжение поиска эффективных стимуляторов противоинфекционного, в том числе противовирусного, иммунитета… Читать ещё >

Содержание

  • Список сокращений
  • Обзор литературы
  • Глава 1. Иммунотропные препараты
    • 1. 1. Классификация и общая характеристика иммунотропных средств
    • 1. 2. Бактериальные иммуномодуляторы
  • Глава 2. Мурамилпептиды
    • 2. 1. Биологическая активность и механизмы действия мурамилдипептида и его производных
    • 2. 2. Основные направления использования мурамилпептидов в иммунотерапии вирусных болезней
  • Материалы и методы исследования
  • Результаты собственных исследований
  • Глава 1. Влияние гликозидов МДП на неспецифическую резистентность мышей
  • Глава 2. Действие гликозидов МДП на продукцию ключевых цитокинов монопуклеарами периферической крови здоровых доноров
  • Глава 3. Действие р-гептил- и (3-адамантилгликозидов МДП на репликацию вируса иммунодефицита человека 1 в клетках перевиваемой Т-лимфобластоидной линии СЕМ SS
  • Глава 4. Иммуномодулирующая и терапевтическая активность Р-гептилгликозида МДП при хроническом рецидивирующем лабиальном герпесе
  • Обсуждение
  • Выводы

Гликозиды мурамилдипептида: иммуномодулирующая активность и возможность использования при вирусных болезнях (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы.

Бактериальные иммуномодуляторы были и остаются одной из наиболее перспективных групп иммунотропных препаратов [60, 95, 126, 127]. Благодаря наличию высококонсервативных структур — патоген-ассоциированных ¦молекулярных паттернов, или образов, — препараты бактериального происхождения через образраспознающие рецепторы (pattern recognition receptors, PRR) эффективно стимулируют защитные механизмы макроорганизма, в первую очередь звенья врожденного иммунитета [5, 81, 154]. По этой же сигнальной системе реализуется один их филогенетически выработанных механизмов антагонизма бактерий-представителей нормальной микрофлоры по отношению к патогенным вирусам.

Исторически первые бактериальные иммуномодуляторы представляли собой целые бактериальные клетки (БЦЖ, ОК432). Следующим поколением стали бактериальные лизаты и их фракции. В настоящее время предпочтение отдается низкомолекулярным иммуномодуляторам с известной химической структурой и механизмом действия — очищенным или синтетически воспроизведенным компонентам микробных клеток [60].

Ы-ацетилмурамил-Ь-аланил-О-изоглутамин (мурамилдипептидМДП) -компонент пептидогликана группы, А клеточной стенки бактерий — уже более 35 лет является объектом пристального внимания иммунофармакологов как молекула, модификации химической структуры которой привели к созданию нескольких иммунотропных препаратов и большой группы перспективных фармакологических веществ, активирующих противоинфекционный и противоопухолевый иммунитет [18, 45, 105, 122, 123, 144, 223, 224]. Раскрытие молекулярных механизмов действия МДП и его производных, включающих агонизм внутриклеточных PRR NOD-2 [205], послужило новым стимулом для поиска эффективных и безопасных синтетических аналогов МДП.

Известно, что p-гликозидирование ведет к увеличению биологической активности молекулы МДП. Сформулированы предпочтительные направления синтеза высокоэффективных Р-гликозидов МДП с алифатическими и адам антильны ми агликонами [28, 54].

В эксперименте показана способность р-гептилгликозида МДП стимулировать основные звенья противоопухолевого и противоинфекционного, в том числе противовирусного, иммунного ответа [47,49, 52, 55, 58, 59, 210]. Многообещающими выглядят первые результаты применения этого гликопептида в комплексной терапии хронического гепатита С (ХГС) [116]. Остается открытыми вопросы о влиянии Р-гептилгликозида МДП на продукцию интерферона-а (ИФН-а) и репликацию лимфотропных вирусов, а также возможности использования этого соединения при других вирусных болезнях, в том числе герпесе.

На моделях септических состояний и опухолевых заболеваний in vivo р-адамантилгликозид МДП проявил себя как стимулятор антибактериальной резистентности и противоопухолевого иммунитета [54, 57]. Наличие адаман ганового радикала в структуре этого гликопептида и сходство противовирусных и противоопухолевых защитных механизмов говорят о том, что он a prirori может обладать прямыми и/или опосредованными противовирусными свойствами [3]. Тем не менее, данных о влиянии Р-адамантилгликозида МДП на репликацию вирусов и противовирусный иммунитет в доступной литературе не обнаружено.

Предпринятые ранее попытки присоединения циклических структур к гликозидному центру молекулы МДП в одних случаях приводили к увеличению биологической активности гликопептида (Р-циклогексилгликозид МДП) [51, 56], в других — существенно не изменяли или даже снижали ее (аи Р-циклододецилгликозиды МДП) [31]. Продолжение поиска эффективных стимуляторов противоинфекционного, в том числе противовирусного, иммунитета среди циклоалифатических гликозидов МДП выглядит целесообразным, в частности с точки зрения определения зависимости биологической активности производных МДП от структуры агликона и его подвижности по отношению к гликозидному центру молекулы.

В пользу целесообразности проведения настоящей работы говорит и тот факт, что французский аналог МДП — мурабутид — уже зарекомендовал себя как стимулятор противовирусного иммунного ответа и, кроме того, в эксперименте и клинике подавлял репликацию вируса иммунодефицита человека (ВИЧ) [143, 145,.

Цель работы — в сравнительном исследовании выявить наиболее эффективные иммуномодуляторы из группы новых и уже изученных Р-гликозидов МДП с алифатической, трициклической и циклоалифатической структурой агликона и определить возможность их использования при вирусных болезнях.

Задачи исследования.

1. Исследовать способность р-гептил-, Р-адамаптил-, Р-циклогексилметил-, Р-циклогексилэтили Р-4-трет-бутилциклогексилгликозидов МДП стимулировать резистентность мышей к инфекциям, вызванным грамположительными и грамотрицательными бактериями.

2. Изучить влияние Р-гептил-, Р-адамантил-, Р-циклогексилметил-, Р-циклогексилэтили Р-4-трет-бутилциклогексилгликозидов МДП на продукцию ИФН-а, ИФЫ-у, ИЛ-ip, ИЛ-4, ИЛ-6 и ФНО-а мононуклеарными клетками человека in vitro.

3. Определить действие Р-гептили Р-адамантилгликозидов МДП на репликацию ВИЧ-1 в культуре Т-лимфобластоидных клеток СЕМ SS, а также на жизнеспособность и пролиферацию этих клеток.

5. Изучить клиническую эффективность и иммуномодулирующую активность БАД глимурида, включающего в качестве активного компонента Р-гептилгликозид МДП, у больных хроническим рецидивирующим лабиальным герпесом.

Научная новизна.

Впервые изучена иммуномодулирующая активность новых циклоалкилгликозидов МДП: Р-циклогексилметил-, Р-циклогексилэтили Р-4-трет-бутилциклогексилгликозидов МДП. Продемонстрировано, что первые два соединения стимулируют антибактериальную резистентность мышей и продукцию ряда ключевых цитокинов эффективнее, чем немодифицированньтй МДП, тогда как Р-4-ш/7е/и-бутилциклогексилгликозид МДП уступал по активности МДП.

Впервые показана способность Р-гептил-, Р-адамантили Р-циклогексилэтилгликозидов МДП стимулировать продукцию ИФН-а.

Впервые продемонстрировано, что Р-гептилгликозид МДП подавляет репликацию ВИЧ-1 в культуре ВИЧ-1-чувствительных Т-лимфобластоидных клеток. При этом в дозе 100 мкг/мл гликопептид, не оказывая цитотоксических эффектов, угнетал репликацию вируса на 100%.

Впервые показана клиническая и иммуномодулирующая эффективность р-гептилгликозида МДП (глимурида) в комплексной терапии хронического рецидивирующего лабиального герпеса. Доказана способность глимурида потенцировать терапевтический эффект ациклических нуклеозидов.

Теоретическая и практическая значимость.

В результате наших исследований получены данные об иммунотропных эффектах 3 оригинальных производных МДП, дополнена информация о биологической активности 2 известных соединений, что имеет научную ценность с точки зрения определения влияния структуры и подвижности агликона на биологическую активность гликозидов МДП.

Теоретическая ценность работы заключается в описании факта подавления Р-гептилгликозидом МДП репликации ВИЧ-1 в культуре чувствительных к этому вирусу лимфобластоидных клеток.

Этот факт имеет и практическую значимость, так как делает это соединение объектом внимания со стороны разработчиков средств специфической (как адъюванта в составе вакцин) и неспецифической иммунотерапии ВИЧ/СПИД-инфекции.

Теоретическую и практическую ценность имеет обоснование принципиальной возможности использования гликозидов МДП при вирусных болезнях, в частности вызванных лимфотропными вирусами.

Прикладное значение имеют сформулированные в работе практические рекомендации по использованию Р-гептилгликозида МДП (глимурида) в комплексной терапии хронического рецидивирующего лабиального герпеса.

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Р-Гептил-, Р-адамантили Р-циклогексилэтилгликозиды МДП стимулируют устойчивость животных к заражению летальными дозами грамположигельных и грамотрицательных бактерий, превосходя по эффективности немодифицированный МДП.

2. р-Гептил-, р-адамантили р-циклогексилэтилгликозиды МДП усиливают продукцию ИФН-у, ИЛ-ip, ИЛ-4, ИЛ-6 и ФНО-а мопопуклеарными клетками человека in vitro. Эти гликопептиды, в отличие от немодифированного МДП, Р-циклогексилэтили Р-4-т/?ет-бутилщ1клогексил гликозидов МДП, усиливают выработку ИФН-а.

3. Р-Гептилгликозид МДП, не проявляя цитотоксичности, подавляет репликацию ВИЧ-1 в культуре Т-лимфобластоидных клеток СЕМ SS. В дозе 100 мкг/мл это соединение угнетает репликацию вируса на 100%. Р-Адамантилгликозид МДП проявляет тенденцию к подавлению репликации ВИЧ-1.

4. р-Гептилгликозид МДП как активный компонент БАД глимурида существенно снижает продолжительность и тяжесть рецидива лабиального герпеса, а также увеличивает безрецидивпый период и корригирует иммунные нарушения. Глимурид потенцирует терапевтическое действие ациклических нуклеозидов при герпесе.

Практическое внедрение полученных результатов.

Материалы диссертационной работы внедрены в учебный процесс на кафедре клинической иммунологии и аллергологии факультета последипломного профессионального образования врачей ГОУ ВПО Московской медицинской академии им. И. М. Сеченова и используются в исследовательской практике в лаборатории клеточной иммунопатологии и биотехнологии НИИ морфологии человека РАМН.

Результаты настоящей работы, касающиеся применения глимурида при герпесе, внедрены в клиническую практику в Центре современной медицины ГОУ Московской академии рынка труда и информационных технологий Департамента по науке и промышленной политике г. Москвы.

Апробация работы.

Основные положения диссертации были представлены на XVI Российском национальном конгрессе «Человек и лекарство» (Москва, 2009) и научной конференции с международным участием «Актуальные вопросы инфекционной патологии» (Анапа, 2009).

Апробация диссертации состоялась 30 сентября 2009 года на совместной конференции лаборатории иммуноморфологии воспаления и лаборатории клеточной иммунопатологии и биотехнологии НИИ морфологии человека РАМН, кафедры клинической иммунологии и аллергологии факультета последипломного профессионального образования ММА им. И. М. Сеченова, Центра современной медицины ГОУ ВПО Московской академии рынка труда и информационных технологий.

Публикации.

По теме диссертации опубликована 5 печатных работ, в том числе 1 статья в рецензируемом журнале, рекомендованном ВАК Российской Федерации.

Структура и объем диссертации

.

Диссертация состоит из следующих разделов: введение, обзор литературы (2 главы), материалы и методы, результаты собственных исследований (4 главы), обсуждение, выводы, практические рекомендации, библиографический указатель литературы.

Указатель литературы содержит 134 отечественных и 193 иностранных источников.

Диссертация изложена на 109 страницах, иллюстрирована 13 рисунками и содержит 4 таблицы и 3 схемы.

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

ВЫВОДЫ.

1. Профилактическое внутрибрюшиниое введение гликозидов мурамилдипептида (МДП) увеличивало выживаемость мышей, зараженных культурой Stapylococcus aureus в минимальной дозе, вызывающей стопроцентную гибель животных. Максимальный протективный эффект проявили р-гептили р-адамаптилгликозиды МДП, в широком диапазоне доз снижавшие летальность мышей до пуля. Высокой активностью обладал также Р-циклогексил э гилгликозид МДП, несколько меньшей — р-циклогексилметилгликозид МДП, а р-4-трет-бутилциклогексилгликозид МДП был близок по эффективности к немодифицироваиному МДП.

2. На модели сепсиса, вызванного внутрибрюшинным введением культуры Escherichia coli, протектнвная активность гликозидов МДП увеличивалась в ряду: Р-4-шреш-бутилциклогексилгликозид МДП —> р-циклогексилметилгликозид МДП —> р-циклогексилэтилгликозид МДП —> р-адамантилгликозид МДП —>¦ р-гептилгликозид МДП. Последние 3 соединения в дозе 1.5 мг/кг увеличивали до 100% выживаемость животных, зараженных летальной дозой бактерий, превышая действие МДП.

3. р-Гептил-, Р-циклогексилэтилгликозиды МДП в концентрации 20 мкг/мл и Р-адамантилгликозид МДП в концентрации 2 мкг/мл усиливали выработку ИФН-а мононуклеарами крови здоровых доноров in vitro. Также эти 3 гликозида МДП были наиболее эффективными стимуляторами продукции ИФН-у. ФНО-а и ИЛ-ip. Р-Циклогексилметилгликозид-МДП оказался самым действенным активатором выработки ИЛ-4, в концентрации 2 мкг/мл превышая эффект МДП. Все вышеуказанные производные МДП в концентрациях 2 и 20 мкг/мл усиливали продукцию ИЛ-6 в сопоставимой с фитогемагглютинином (1 мкг/мл) степени. Р-4-т/?ет-Бутилциклогексилгликозид-МДП уступал по способности активировать выработку цитокинов МДП и другим его производным, лишь в концентрации 20 мкг/мл стимулируя продукцию ИЛ-4 и ИЛ-6.

4. р-Гептилгликозид МДП в концентрации 100 мкг/мл подавлял на 100% репликацию ВИЧ-1 в культуре Т-лимфобласгоидных клеток СЕМ SS, не изменяя жизнеспособности и пролиферации последних. Р-Адамантилгликозид МДП в этой концентрации проявлял тенденцию к угнетению репликации вируса.

5. |3-Гептилгликозид МДП как активный компонент Б АД глимурида существенно снижал продолжительность и тяжесть рецидива лабиального герпеса, увеличивал безрецидивный период, восстанавливал до нормальных значений исходно сниженное число CD3+, CD3+CD4+, CD3+CD8+, CD3-CD16+CD56+ и CD3+CD16+CD56+ клеток в периферической крови и усиливал поглотительную активность моноцитов и гранулоцитов. В сочетании с пероральным приемом валтрекса и местным применением ацикловира в форме крема глимурид потенцировал терапевтическое действие ациклических нуклеозидов.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ.

При рецидивах хронического лабильного герпеса рекомендуется назначать глимурид по 2 капсулы ежедневно в течение первых 3 суток, затем по 2 капсулы через день в течение следующих 8−10 суток и далее (при наличии лабораторных и клинических признаках недостаточности противоинфекционной защиты) по 1−2 капсулы через день еще в течение 20 суток.

Начинать прием глимурида нужно как можно раньше, желательно с продромальной стадии. Использование глимурида следует комбинировать с применением других противовирусных средств, в частности с пероральным назначением валтрекса или ацикловира в суточной дозе 1 г (или фамцикловира в суточной дозе 750 мг) и местным применением 5% крема ацикловира в течение 710 дней от начала рецидива.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Л.Ф., Арефьева Н. А., Кильсенбаева Ф. А. и др. Влияние беталейкина на иммунную систему больных рецидивирующим гнойным риносинусиюм. // Медицинская иммунология. — 1999. — Т. 1. — № 3−4. — С. 113−114.
  2. Н.Ф. Опыт и схемы клинического применения герпетической вакцины в профилактике рецидивирующей герпетической инфекции. // Иммунопатология, аллергология, инфектология. 1999. — № 1. -131−135.
  3. Н.Г., Галушкина Т. С., Фадеева Т. А. Адамантаны лекарства XXI века. // Int. J. Immunorehabilitation. — 2000. — Vol. 2 (1). P. 54−60.
  4. Н.Г. Иммуномодуляторы, их природа и иммунотерапевтический эффект. // Гематология и трансфузиология. 1988. — Т. 33. — № 10. — С. 37−41.
  5. С.С., Алешкин В. А., Байракова Е. А. и др. Молекулярные механизмы индукции врожденного иммунитета. // Вестник РАМН. — 2009. № 4. — С. 42−49.
  6. И.П., Воробьев А. А. Статистические методы и микробиологические исследования. JL: Медгиз. — 1962.
  7. Е.И. Адамантаны: получение, свойства, применение. М.: Наука. -1989.
  8. И.Д. Эффективность применения ликопида у больных хроническим рецидивирующим фурункулезом (ХФР). // Int. J. Immunorehabilitation. 1998. — № 8. -С. 97.
  9. Н.С. Взаимосвязь химической структуры и биологической активности эндотоксина грам-отрицательных бактерий. // Сб. ст.: Молекулярная и клеточная регуляция инфекционного процесса. М.: НИИЭМ им. Гамалеи. — 1985. — С. 62−70.
  10. А.Ю., Кадагидзе З. Г., Махонова Л. А., Тупицин Н. Н. Иммунологический фенотип лейкозной клетки. М.: Медицина. — 1989.
  11. Н.Боровиков В. П., Боровиков И. П. Statistica® Статистический анализ и обработка в среде Windows®. — М.: Филинъ. — 1997.
  12. .Д., Балашов К. Е. Направленное усиление противоопухолевого иммунитета. // Эксперим. онкология. 1991. — Т.13. — № 2. — С.10−18.
  13. Вакцины и иммунизация: современное положение в мире. — ВОЗ. Женева. — 1998.
  14. Т.И., Малахов А. А., Комалева P.JL и др. Дифференциальный эффект глюкозаминилмурамилдипептида на фенотип сублиний меланомы, различающихся метастатическим потенциалом. // Мол. биология. 1996. — Т. 30. -С. 1394−1401.
  15. Т.И., Малахов А. А., Макаров Е. А. и др. Мурамилпептиды модулируют экспрессию опухолеассоциированных антигенов. // Иммунология. -1995,-№ 4.-С. 32−36.
  16. А.А., Симбирцев А. С., Соколова Н. Г. Изучение применения препарата «беталейкин» для комплексного лечения онкологических больных. // Медицинская иммунология. 1999. — Т. 1. — № 3−4. — 117.
  17. Ю.Е. Проблемы экопатологии детского возраста: иммунологические аспекты. // Педиатрия. 1991. — № 12. — С. 74−80.
  18. Л.И., Бунатян К. А., Пинегин Б. В. и др. Отечественный иммуномодулятор нового поколения ликопид в комплексном лечении и профилактике инфекционных осложнений в хирургической практике. // Вестник РАМН. 1997. — № 11. — С. 46−48.
  19. Л.И., Витвицкая И. М., Попов О. Ю. Иммунная терапия сепсиса-миф или реальность. // Анестезиология и реаниматология. 1997. — № 3 — С. 89−97.
  20. А.А., Медуницин Н. В. Новые принципы создания средств иммунопрофилактики. // Russian Journal of Immunology. 1999. — Vol. 4 (Suppl. 1). -P. 332−336.
  21. A.A., Пашков Е. П., Караулов A.B., Быков А. С. Атлас по медицинской микробиологии, вирусологии и иммунологии. М.: Медицинское информационное агенство. — 2008.
  22. A.M., Личиницер М. Р., Дмитриева Н. В. и др. Биологические эффекты леакадина. // Вопросы онкологии. 1988. — Т. 34. — № 2. — С. 192−196.
  23. С.А., Окулов В. Б., Войтенков Б. О. Стимуляция способности макрофагов, активированных иммуномодулирующими препаратами, усиливать рост опухолевых клеток. // Цитология. 1988. — Т. 30. — С. 1127−1128.
  24. И.В., Ликов В. Ф., Калюжин О. В., Караулов А. В. Клиническое применение иммуномодуляторов-мурамилпептидов. // Медико-Фармацевтический Форум. Тез. докл. М. — 2002. — С. 29.
  25. Д.Г., Лисовенко Г. С., Сядро Т. А. Иммуномодуляторы микробного происхождения и усиление опухолевого роста. // Успехи современной биологии. -1986.-Т. 101.- № 2.- С. 228−236.
  26. А.Е. Мурамошшепгиды: синтез и биологическая активность. Автореф. дис. док. хим. наук. Одесса. — 2000.
  27. А.Е., Цикалов В. В., Калюжин О. В. и др. Гликозиды N-ацстилмурамоил-Ь-алапил-О-изоглутамииа. Влияние конфигурации гликозидного центра и природы агликона на биологическую активность. // Биоорганическая химия. 2003. — Т. 29. — № 3. — С. 316−322.
  28. А.Е., Цикалова В. Н., Цикалов В. В. и др. Синтез и протективное антиинфекционное действие аномеров липофильных гликозидов N
  29. А.Е., Цикалова B.II., Цикалов В. В. и др. (3-Д иал килме галгликозиды М-ацетилмурамоил-Ь-аланил-О-изоглутамина: синтез, протективное антиинфекционное и цитотоксическое действие // Биоорганическая химия. 2008. — Т. 34. — № 1. — С. 114−120.
  30. А.Е., Чирва В. Я. Синтез гликозиднык аналогов N-ацетилмурамоил-Ь-аланил-О-изоглутамина. // Химия природн. соедин. 1987. — № 5. — С. 714.
  31. А.Е., Чирва В. Я. Синтез и биологическая активность N-ацетилмурамоил-Ь-аланил-О-изоглутамина и его аналогов. // Физиологически активные вещества. — 1991. — Вып. 23. С. 12−13.
  32. A.M., Земсков В. М., Вороновский В. А., Новикова JI.A. Биохимическая составляющая иммунопатологии. // Иммунопатология, аллергология, инфектология. 2000. — № 4. — С. 37−47.
  33. A.M., Земсков В. М., Караулов А. В. Клиническая иммунология. — М.: ГЭОТАР-Медиа. 2006.
  34. A.M., Земсков В. М., Караулов А. В. Клиническая иммунология и аллергология: Учебное пособие для вузов (под ред. Караулова А.В.). М.: Медицинское информационное агенство. — 2002.
  35. A.M., Земсков В. М., Караулов А. В. Клиническая иммунология: Учебник для вузов. М.: ГЭОТАР-Медиа. — 2008.
  36. Л.П., Вядро М. М. Модификаторы биологических реакций -препараты с иммуномодулирующей и противоопухолевой активностью. // Антибиотики и химиотерапия. 1989. — Т. 34. — № 7. — С. 530−534.
  37. В.Т., Андронова Т. М., Несмеянов В. А. и др. Механизм действия и клиническая эффективность иммуномодулятора глюкозаминилмурамил дипептида (ликопида). // Клиническая медицина. 1997. — № 3. — С. 11−15.
  38. В.Т., Хаитов P.M. Андронова Т. М., Пинегин Б. В. Ликопид (ГМДП) новый отечественный высокоэффективный иммуномодулятор для лечения и профилактики заболеваний, связанных со вторичной иммунной недостаточностью. // Иммунология.- 1996. — № 2. — С. 4−6.
  39. В.А., Рыбалкин С. Б., М.Г.Романцев. Герпесвирусная инфекция: Рекомендации для врачей. СПб: Тактик-Студио. — 2006.
  40. М.И. Состояние органов пищеварения у больных в резидуальный период хронического описторхоза. Автореф. дисс. док. мед. наук. -Томск. 2000.
  41. О.В. Производные мурамилдипептида в эксперименте и клинике. // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1998. — № 1. — С. 104−108.
  42. О.В., Баштаненко А. Ф., Шкалев М. В. и др. Иммуномодуляторы-мурамилпептиды: от экспериментов к клинике. // Якутский медицинский журнал. -2004.-№ 4(8).-С. 56−60.
  43. О.В., Захарова Н. С., Бриципа М. В. и др. Иммуномодулирующая активность p-гептилгликозид-мурамилдипептида in vivo. II Бюллетень экспериментальной биологии и медицины 1998. — Т. 128. — № 11. — С. 553−554.
  44. О.В., Земляков А. Е., Калина Н. Г. и др. // Биологическая активность аномерных пар липофильных гликозидов Ы-ацстилмурамил-Ь-аланил-D-изоглутамина. // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2008. -Т. 145.-№ 5.-С. 561−564.
  45. О.В., Земляков А. Е., Калюжина Е. В. и др. Действие гликозидов мурамилдипептида на пролиферацию лимфоцитов и выработку ими интерлейкина-2. // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2002. — Т. 134. — № 8. -С. 186−190.
  46. О.В., Земляков А. Е., Шкалев М. В. и др. Производные мурамовой кислоты. Патент на изобретение № 2 181 729. 2000.
  47. О.В., Калина Н. Г., Баштаненко А. Ф. и др. Стимуляция резистентности мышей к бактериальной инфекции гликозидами мурамилдипептида // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2003. — Т. 135. — № 5. — С. 531−535.
  48. О.В., Калюжин В. В., Земляков А. Е. и др. Стимуляция неспецифической резистентности мышей p-гептилгликозид-мурамилдипептидом. // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. — 1999. — Т. 127. № 5. — С. 543−545.
  49. О.В., Мулик Е. Л., Сергеев В. В. и др. Применение (}-гептилгликозид-мурамилдипептида в экспериментальной терапии генерализованных бактериальных инфекций. // Иммунопатология, аллергология, инфектология. 2000. — № 4. — С. 73−77.
  50. О.В., Нелюбов М. В., Кузовлев Ф. Н. и др. Амфифильный дериват мурамилдипептида в терапии мышиной лимфомы EL-4. // Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. — 2001. № 1. — С. 45−46.
  51. О.В., Фукс Б. Б. Влияние гидро-липофильного баланса производных мурамилдипептида на их взаимодейемвие с биомембранами и включение в клетки. // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. -1996. Т. 122. — № 12. — С. 658−661.
  52. О.В., Фукс Б. Б., Бовин Н. В. и др. Иммуномодулирующая активность новых производных мурамилдипептида in vitro. И Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1994. — Т. 117. — № 5. — С. 510−513.
  53. А.В., Калюжин О. В. Иммунотропные препараты: принципы применения и клиническая эффективность. М.: МЦФЭР. — 2007. — 144 с. (Приложение к журналу «Новая аптека», 1−2007. — Библиотека первостольника).
  54. А.В., Калюжип О. В. Цитокины: биологическое действие и клиническое применение. // В книге «Успехи клинической иммунологии и аллергологии» под ред. А. В. Караулова. Т. 1. — М. — 2000. — С. 193−205.
  55. А. В. Калюжин О.В., Ликов В. Ф. и др. Производные мурамилдипептида в клинике. // Актуальные вопросы клинической медицины. — Т. 2. М.: Издательство «Региональное отделение РАЕН». — 2002. — С. 93−100.
  56. А. В. Сокуренко С.И., Калюжин О. В., Евсегнеева И. В. Направленная регуляция иммунных реакций в профилактике и лечении заболеваний человека. // Иммунопатология, аллергология, ипфектология. 2000. -№ 1.-С. 7−13.
  57. М.И., Пинегин Б. В., Хаитов P.M. Иммунопрофилактика и иммунотерапия хирургических инфекций. // Практикующий врач. 1998. — № 12. -С. 5−8.
  58. Э.А., Крылов В. И. Изменение иммунного статуса при описторхозе у детей и попытка его коррекции левамизолом. // Журн. гигиены, эпидемиологии (Прага). 1984. -№ 3.-С. 361−368.
  59. С.А. Современные аспекты изучения цитокинов. // Russian Journal of Immunology. 1999. — Vol. 4 (Suppl. 1). — P. 46−52.
  60. С.А., Симбирцев A.C. Цитокины. СПб.: Издательство Фолиант. — 2008.
  61. С.А., Симбирцев А. С., Воробьев А. А. Эндогенные иммуномодуляторы. СПб.: Гиппократ. — 1992.
  62. В.И. Клиническая практика и перспективы иммупокорригирующей терапии (обзорный материал). // Практикующий врач. — 1998. № 12.-С. 9−12.
  63. В.К., Калинина TI.M., Егорова В. Н. Патогенез ВИЧ-инфекции. Возможности иммунотерапии цитокинами. — СПб: Издательство СПбГУ. — 2001.
  64. В.К., Смирнов M.IL, Егорова В. Н., Лебедев М. Ф. Коррекция иммунореактивности рекомбинантным интерлейкином-2. СПб: Издательство СПбГУ.-2001.
  65. Ю. С. Пяткин К.Д., Ачкасов Ю. Н. и др. Руководство к практическим занаягиям по медицинской микробиологии (под ред. Кривошеина Ю.С.).-Киев. 1986.
  66. В.П. Иммунокорригирующая терапия сопровождения при лечении солидных опухолей. // Int. J. Immunorehabilitation. 2000. — Vol. 2. — N. 1. -P. 100−109.
  67. В.П. Интерферон в каскаде цитокинов: исторический и современный аспекты. // Антибиотик. 1998. — № 5. — С. 28−40.
  68. В.П. Интерфероны как средство иммуномодуляции. // Иммунология. 1987. — № 4. — С. 30−34.
  69. В.П., Караулов А. В. Лейкинферон механизмы терапевтического действия и тактика иммунокоррекции. // Int. J. Immunorehabilitation. — 1998. — N. 10. -P. 66−75.
  70. B.B., Никулин Л. А., Александрова O.K. и др. Герпетическая инфекция (простой герпес). / Под редакцией В. В. Лебедева. Краснодар: Издательство «Просвещение-ЮГ». -2005.
  71. В.В., Шелепов Т. М., Степанов О. Г. и др. Имунофан -регуляторный пептид в терапии инфекционных и неинфекционных болезней (под ред. В.И.Покровского). М.: «Праминко». — 1998.
  72. К.А., Понякина И. Д. Иммунология образраспознающих рецепторов (Интегральная иммунология). -М.: Либроком. 2009.
  73. В.П. Иммуностимуляторы. // Аллергия, астма и клиническая иммунология. 1999. — № 4. — С. 12−25.
  74. Ю.Ф., Андронова Т. М., Казаченко М. А. Позднякова В.В. Применение иммуномодулятора Ликопида в офтальмологии. // Тега Medica. 2001.- № 1.-С. 38−39.
  75. В.В. Новый комплексный препарат Виферон и его применение в иммунореабилитации в педиатрической и акушерской практике. // Int. J. Immunorehabiltation. 1998. -N. 10. — 76−85.
  76. B.M., Петров Р. В., Хаитов P.M. Иммуномодуляторы современное состояние и перспективы. // Аллергия, астма и клиническая иммунология. — 2001. -Том 5. — № 11 .-С. 3−15.
  77. Т.П., Чувирова Д. Г., Гаращенко Т. И. Применение и механизм действия ИРС-19 в группе длительно и часто болеющих детей. // В книге «Успехи клинической иммунологии и аллергологии» под ред. А. В. Караулова. Т. 1. — М. -2000. — С. 259−266.
  78. Т.П., Чувирова Д. Г. Применение и механизм действия имудона в группе длительно и часто болеющих детей. // В книге «Успехи клинической иммунологии и аллергологии» под ред. А. В. Караулова. Т. 2. — М. — 2001. — С. 241 247.
  79. Д., Пенхейл Дж., Седжуик Дж. Выделение различных субпопуляций лимфоцитов. // В книге «Лимфоциты. Методы» (Пер. с англ.). Под ред. Дж. Клауса. М.: Мир. — 1990. — С. 69−95.
  80. А.А. Индивидуальные миелопептиды лекарства «нового поколения», используемые для иммунореабилитации. // Int. J. Immunorehabilitation.- 1996. — N. 2.-P. 27−31.
  81. А.А., Стрелков JI.A. Миелопептиды и перспективы их использования для иммунореабилитации больных с онкологическими заболеваниями. // Int. J. Immunorehabilitation. 1998. -N. 10. — P. 49−53.
  82. Л.П., Макарова O.B., Калюжин О. В. и др. Влияние глимурида на продукцию цитокинов спленоцитами мышей C57BL/6 и BALB/c. // Иммунология.2004. —Т. 25. № 3, — С. 152—154.
  83. В.А. Глюкозаминилмурамоилпептиды: на пути к пониманию молекулярного механизма биологической активности. // Int. J. Immunorehabilitation.- 1998. -N. 10.-P. 19−28.
  84. B.A. Иммуномодуляторы группы мурамилпетидов: на пути к пониманию механизма биологической активности. // Сборник трудов 1-ой национальной конференции РААКИ (Москва). 1997. — С. 153−159.
  85. В.А., Хайдуков С. В., Комалева Р. Л. и др. Влияние N-ацетилглюкозаминил-Р1−4-Ы-ацетилмурамоилалапил-0-изоглутамина на экспрессию 1а-антигенов макрофагами мыши. // Биол. мембраны. 1989. — Т. 6. -С. 245−249.
  86. В.Б. Актуальные проблемы иммунотерапии опухолей в контексте эволюционно закрепленной реакции макрофага на повреждение тканей. // Вопросы онкологии. 1997. — Т. 43. — № 1. — С.102−106.
  87. Н.И. Обеспечение качества жизни больных в процессе противоопухолевой химиотерапии (лекция). // Терапевтический архив. — 1996. № 10,-С. 37−41.
  88. Р.В. Иммунореабилитация и стратегия медицины. // Int. J. Immunorehabilitation. 1994. -N. 1 (Suppl.). — P. 5−6.
  89. P.B., Лопухин Ю. М., Чередеев A.H. и др. Оценка иммунного статуса человека: Методические рекомендации. М.: Медицина. — 1994.
  90. Р.В., Хаитов P.M. Вакцины нового поколения на основе синтетических полиионов: история создания, феноменология и механизмы действия, внедрение в практику. // Int. J. Immunorehabilitation. 1999. — N. 11. — P. 13−25.
  91. Р.В., Хаитов P.M., Некрасов А. В. и др. Полиоксидоний -иммуиомодулятор последнего поколения: итоги трехлетнего клинического применения. // Аллергия, астма и клиническая иммунология. 1999. — № 3. — С. 3−6.
  92. Р.В., Хаитов P.M., Чередеев А. Н., Кожинова Е. В. Иммунофармакологические подходы к оценке иммуномодуляторов. // Иммуномодуляторы. Сборник трудов. М.: ЦНИИ Вакцин и сывороток им. И. И. Мечникова. — 1987. — С. 3−25.
  93. Р.В. Я или не я. Иммунологические мобили. М.: Молодая Гвардия. — 1987.
  94. .В., Андронова Т. М., Карсонова М. И. Препараты мурамилдипептидового ряда — иммунотропные лекарственные средства нового поколения. // Int. J. Immunorehabilitation. 1997. — N. 6. — С. 27−34.
  95. .В., Минкина Г. Н., Агикова JI.A. и др. Использование нового иммуномодулятора ГМДП при лечении больных папиломовирусной инфекции шейки матки. // Иммунология. 1997. — № 1. — С. 49−51.
  96. А.Е. Статистический анализ в медицине и бологии: задачи, терминология, логика, компьютерные методы. М.: Издательство РАМН. — 2000.
  97. В.И., Лебедев В. В., Шелепова Т. М. и др. Имунофан -пептидный препарат нового поколения в лечение инфекционных и онкологических заболеваний: свойства, область применения. // Практикующий врач. 1998. — № 12. -С. 14−15.
  98. О.Ф., Ханухова Л. М., Пинегин Б. В. Влияние иммуномодулятора ликопида на синтез цитокинов и активационные молекулы лимфоцитов периферической крови больных с красным плоским лишаем. // Стоматология. 2000. — Т. 79. — № 2. — С. 6−9.
  99. А.Л. Бактериальные иммуномодуляторы в экспериментальной иммуноонкологии. // Успехи современной биологии. 1990. — Т. 109. -№ 3.- С. 379−392.
  100. А.Л., Мигдал Т. Л., Пелевина М. А. Продукция фактора некроза опухолей и интерлейкина-1 мононуклеарами периферической крови при стимуляции липополисахаридом и мурамилдипептидом in vitro. Иммунология. -1989.-№ 2.-С. 80−82.
  101. Рахмилевич A. J1., Рахимова М. С., Андронова Т. М., Бовин Н. В. Иммуностимулирующее действие мурамилдипепгида, глюкозаминилмурамилдипептида и их синтетических производных в системе in vitro. П Антибиотики и химиотерапия. 1989. — Т. 34. — № 8. — С. 586−589.
  102. . Микроскопическая техника. М. — 1954.
  103. P.M. Основные методы статистической обработки результатов фармакологических экспериментов. // В книге «Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ». М.: ИИА «Ремедиум». — 2000. — С. 349−355.
  104. Г. Т., Малайцев В. В., Богданова И. М. Интерлейкин-2 и его возможная роль в патогенезе стрессорных изменений иммунной системы. // Доклады АН СССР. 1984. — Т. 278. — № 3. — С. 762−765.
  105. М.Х., Калкшин О. В., Нелюбов М. В. и др. Комплексная противовирусная терапия гепатита С. Методические рекомендации. — М.: РМАПО. 2004.
  106. P.M. Иммунология: Учебник для вузов с компакт диском. М.: ГЭОТАР-Медиа. — 2006.
  107. P.M. Физиология иммунной системы. М.: ВИНИТИ РАН. — 2001.
  108. P.M., Гущин И. С., Пинегин Б. В., Зебрев А. И. Экспериментальноеизучение иммунотропной активности фармакологических препаратов. // Ведомостифармакологического комитета. — 1999. № 1. — С. 31−36.
  109. P.M., Пинегин Б. В., Андронова Т. М. Отечественные иммунотропные лекарственные средства последнего поколения и стратегия их применения. // Лечащий врач. 1998. — № 4, — С. 46−51.
  110. P.M., Пииегин Б. В., Бутаков А. А. и др. Иммунотерапия инфекционных послеоперационных осложнений с помощью нового иммуностимулятора ликопида. // Иммунология. 1994. — № 2. — С 47−44.
  111. P.M., Пинегин Б. В. Вторичные иммунодефициты: клиника, диагностика, лечение. // Иммунология. 1999. — № I. — С. 14−17.
  112. P.M., Пинегин Б. В. Иммунодефициты: диагностика и иммунотерапия. // Лечащий врач. — 1999. № 2−3. — С. 63−69.
  113. P.M., Пинегин Б. В. Иммуномодуляторы: механизм действия и клиническое применение // Иммунология. — 2003. — № 4. — С. 196−203.
  114. P.M., Пинегин Б. В. Принципы применения иммуномодуляторов при заболеваниях, связанных с нарушением иммунной системы. // В книге «Успехи клинической иммунологии и аллергологии» под ред. А. В. Караулова. Т. 1. — М. -2000.-С. 22−37.
  115. P.M., Пинегин Б. В., Истамов Х. М. Экологическая иммунология. -М.: ВПИРО.- 1995.
  116. P.M., Пинегин Б. В., Ярилин А. А. Руководство по клинической иммунологии. Диагностика заболеваний иммунной системы: Руководство для врачей. М.: ГЭОТАР-Медиа. — 2009.
  117. P.M., Полсачева О. В., Прошина Ю. А. Специфическая иммунотерапия аллергеном, конъюгированным с синтетическим полимером. // Иммунология. 1994. — № 2. — С. 37−40.
  118. С. Выделение лимфоцитов и вспомогательных клеток. // В книге «Лимфоциты. Методы» (Пер. с англ.). Под ред. Дж. Клауса. М.: Мир. — 1990. — С. 15−65.
  119. Л.Н., Иваницкая Л. П. Низкомолекулярные иммуномодуляторы микробного происхождения. // Антибиотики и химиотерапия. 1989. — Т. 34. — № 10.-С. 786−792.
  120. А.А. Система цитокинов и принципы ее функционирования в норме и при патологии. // Иммунология. 1997. — № 5. — С. 7−14.
  121. А.А. Основы иммунологии: Учебник. — М.: Медицина, 1999.
  122. Adam A., Lederer E. Muramyl peptides: Immunomodulators, sleep factors, and vitamins. // Stevens D.G., ed. Medical research reviews. Vol. 4. — N.Y.: Wiley and Sons. — 1984. — P. 111−152.
  123. Ahoroni R., Teitelbaum D., Sela M., Arnon R. Bystander suppression of experimental autoimmune encephalomyelitis by T cell lines and clones of Th2 type induced by copolymer 1. // J. Neuroimmunol. 1998. — Vol. 91. — P. 135−146.
  124. Akasaki M., Takasaki Т., Kita Y., Tsukada W. Augmentation of immune responses by a muramyl dipeptide analog, MDP-Lys (LI 8). // Agents and Actions. -1987. Vol. 22 (½). — P. 144−150.
  125. Ambler L., Hudson A.M. Pharmacokinetics and metabolism of muramylоdipeptide and nor-muramyl dipeptide (H-labelled) in the mouse. // Int. J. Immunophannacol. 1984. — Vol. 6. — P. 133−139.
  126. Anaya J., Sias J. The use of interleukin-2 in human immunodeficiency virus infection. // Pharmacotherapy. 2005. — Vol. 25. — P. 86−95.
  127. Andre F. Overview of a 5-year clinical experience with a yeast-derived hepatitis В vaccine. // Vaccine. 1990. — Vol. 8 (Suppl.). — P. 74−78.
  128. Asadulach K., Docke W.D., Ebeling M. et al. Interleukin 10 treatment of psoriasis: clinical results of a phase 2 trial. // Arch. Dermatol. 1999. — Vol. 135. — P. 187−192.
  129. Bahr G. M Non-specific immunotherapy of HIV-1 infection: potential use of the synthetic immunodulator murabutide. // Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 2003. -Vol. 51.-P. 5−8.
  130. Bahr G.M., Chedid L. Immunological activities of muramyl peptides. // Federat. Proc. 1986. — Vol. 45 (11). — P. 2541−2544.
  131. Bahr G., Cocude C., Billaut-Mulot O. et al. The cytokine inducer murabutide inhibits the expression of a novel cellular RNA helicase necessary for HIV replication. // Journal of Leukocyte Biology. 2001. — Suppl. — P. 64.
  132. Barratt G.M., Pulsieux F., Yu W.-P. et al. Antimetastatic activity of MDP-L-alanyl-cholesterol incorporated into various types of nanocapsules. // Int. J. Immunopharmacol. 1994. — Vol. 16 (5/6). — P. 457−461.
  133. Barratt G.M., Raddassi K., Petit J.-F., Tenu J.-P. MDP and LPS act synergetically to induce arginine-dependent cytostatic activity in rat alveolar macrophages. // Int. J. Immunopharmacol. 1991. — Vol. 13 (2/3). — P. 159−165.
  134. Becher В., Blain M., Giacomini P. S., Antel J.P. Inhibition of Thl polarization by soluble TNF receptor is dependent on antigen-presenting cell-derived IL-12. // J. Immunol. 1999. — Vol. 162. — P. 684−688.
  135. Becher В., Giacomini P. S., Pelletier D. et al. Interferon-gamma secretion by peripheral blood T-ceII subsets in multiple sclerosis: correlation with disease phase and interferon-beta therapy. // Ann. Neurol. 1999. — Vol. 45. — P. 347−250.
  136. Bestatin (Ubenimex) a low molecular immunomodifier: Papers from a workshop at the 16th International Congress of Chemotherapy. Jerusalem, June 11−16, 1989. // Acta Oncol. — 1990. — Vol. 29 (6). — P. 793−831.
  137. Bettelli E., Kuchroo V.K. IL-12- and IL-23-induced T helper cell subsets: birds of the same feather flock together. // J. Exp. Med. 2005. — Vol. 201. — P. 169−171.
  138. Beutler B. Innate immunity: an overview. // Mol. Immunol. 2004. — Vol. 40. -P. 845−859.
  139. Bjork P. Development of denritic cells and their use in tumor therapy. // Clinical Immunonology. 1999. — Vol. 92. — No. 2. — pp. 119−127.
  140. Bloksma N., Hofiils F.M.A., Willers J.M.N. Endotoxin-induced antitumor activity in the mouse is highly potentiated by muramyl dipeptlde. // Cancer Lett. 1984. -Vol. 23. — 159.
  141. Bogdan С., Paik J., Vodovots Y., Nathan C. Contrasting mechanisms for suppression of macrophage cytokine release by transforming growth factor-beta and interleukin-10. //J. Biol. Chem. 1992. — Vol. 267. — P. 23 301−23 308.
  142. Bongioanni P., Mosti S., Moscato G. et al. Decreases in T-cell tumor necrosis factor alfa binding with interferon beta treatment in patients with multiple sclerosis. // Arch. Neurol. 1999. — Vol. 56. — P. 71−78.
  143. Brodt P., Blore J., Phillips N.C. et al. Inhibition of murine hepatic tumor growth by liposomes containing a lipophilic muramyl dipeptide. // Cancer Immunol. Immunother. 1989. — Vol. 28 (1). — P. 54−58.
  144. Broudy V.C. Kaushanovsky K., Shaemaker S.G. et al. Muramyl dipeptide induces production of hemopoietic growth factors in vivo by mechanism independent of tumor necrosis factor. // J. Immunol. 1990. — Vol. 144 (10). — P. 3789−3794.
  145. Brummer E., Stevens D.A. Mechanisms in opposite modulation of spleen cell and lymph node cell responses to mitogens following muramyl dipeptide treatment in vitro. II Cell. Immunol. 1985. — Vol. 91 (2). — P. 505−514.
  146. Bruntsch U., de Mulder P.H., ten Bokkel Hulnink W.W. et al. Phase II study of recombinant intcrferon-gamma in metastatic renal cell carcinoma. // J. Biol. Response Mod. 1990. — Vol. 9 (3). — P. 335−338.
  147. Bulkwill F.R., Lee A., Adam J. et al. Human tumor xenografts treated with recombinant human tumor necrosis factor alone or in combination with interferon. // Cancer Res. 1986. — Vol. 46 (8). — P. 3990−3993.
  148. Cella M., Jarrossay D., Fachetti F. et al. Plasmacytoid monocytes migrate to inflamed lymph nodes and produce large amounts of type 1 interferon. // Nat. Med. -1999.-Vol. 5.-P. 919−923.
  149. Chedid L. Muramyl peptides as possible endogenous immunopharmacological mediators. // Microbiol. Immunol. 1983. — Vol. 27 (9). — P. 723−732.
  150. Chedid L.A., Parant M.A., Audlbert F.M. et al. Biological activity of new synthetic muramyl peptide adjuvant devoid of pyrogenicity. // Infect. Immunol. 1982. -Vol. 35.-P. 417−424.
  151. Chedid L. Synthetic muramyl peptides: their origin, present status, and future prospects. // Federat. Proc. 1986. — Vol. 45 (11). — P. 2531−2533.
  152. Chun M., Krim M., Granelli-Piperho A. et al. Enhancement of cytotoxic activity of natural killer cells by interleukin 2, and antagonism between interleukin 2 and adenosine cyclic monophosphate. // Scand. J. Immunol. — 1985. Vol. 22. — P. 375−381.
  153. Clementi E., Bucci E., Citterio G. et al. Reversible anergy in circulating lymphocytes of cancer patients during interleukin-2 therapy. // Cancer Immunol. Immunother. 1994. — Vol. 39 (3). — P. 167−171.
  154. Clifford C.A., Mackin A.J., Henry C.J. Treatment of canine hemangiosarcoma: 2000 and beyond. // J. Vet. Intern. Med. 2000. — Vol. 14 (5). — P. 479−485.
  155. Cohen J., Exley A.R. Treatment of septic shock with antibodies to TNF. // Schweiz. Med. Wochenschr. 1993. — Vol. 21. — P. 318−327.
  156. Connick F., Lederman M.M., Kotzin B.L. et al. Immune reconstitution in the first year of potent antiretroviral therapy and its relationship to virologic response. // J. Infect. Dis. 2000. — Vol. 181. — P. 358−363.
  157. Cordero O.J., Maurer H.R., Nogueira M. Novel approaches to immunotherapy using thymic peptides.// Immunol. Today. 1997.-Vol. 18(1).-P. 10−13.
  158. Cursio R., Gugenheim J., Panaia-Ferrari P. et al. Improvement of normothermic rat liver ischemia/reperfusion by muramyl dipeptide. // J. Surg. Res. 1998. — Vol. 80(2). -P. 339−344.
  159. Daemen Т., Regts J., Scherphof G.L. Liposomal phosphatidylserinc inhibits tumor cytotoxicity of liver macrophages induced by muramyl dipeptide and 1 ipopolysaccharide. // Biochim. Biophys. Acta. 1996. — Vol. 1285(2). — P. 219−228.
  160. Darcissac E.C., Truong M.J., Dewulf J. et al. The synthetic immunomodulator murabutide controls human immunodeficiency virus type 1 replication at multiple levels in macrophages and dendritic cells. // J. Virol. 2000. — Vol. 74 (17). — P. 7794−7802.
  161. De La Tribonniere X., Mouton Y., Vidal V. E. et al. A phase 1 study of a six-week cycle of immunotherapy with Murabutide in HIV-1 naive to antiretrovirals. // Med. Sci. Monit.-2003.-Vol. 9 (6).-P. 161−168.
  162. Dozmorov I.M., Kuzin I.I., Lutsan N.I. Comparative study of immunomodulatory properties of muramyl peptides on immune system cells of young and old mice. // Immunopharmacol. Immunotoxicol. 1994. — Vol. 16 (2). -P. 149−163.
  163. Ellouz F., Adam A., Ciobaru R., Lederer E. Minimal strustural requirements for adjuvant activity of bacterial peptidoglycan derivatives. // Biochem. Biophys. Res. Commun.- 1974.-Vol. 59.-P. 1317−1325.
  164. Faradji A., Bohbot A., Frost. H. et al. Phase 1 study of liposomal MTP-PE-activated autologous monocytes administrated intraperitonealy to patients with peritoneal carcinomatosis. // J. Clin. Oncol. 1991. — Vol. 9 (7). — P. 1251- 1260.
  165. Fidler I. Inhibition of pulmonary metastases by intravenous injection of specifically activated macrophages. // Cancer Res. 1974. — Vol. 34. — P. 1074−1079.
  166. Fidler I.J., Kleinerman E.S. Clinical application of phospholipid liposomes containing macrophage activators for therapy of cancer metastasis. // Adv. Drug. Deliv. Rev. 1994. — Vol. 13 (3). — P. 325−340.
  167. Fidler I.J., Schroit A J. Synergism between lymphokines and muramyl dipeptide encapsulated in liposomes: in situ activation of macrophages and therapy of spontaneous cancer metastasis. //J. Immunol. 1984. — Vol. 133 (1). -P. 515−518.
  168. Fleming D.T., McQuillan G.M. et al. Herpes simplex virus type 2 in the United States, 1976−1994.//NEJM.-1997.-N. 16.-P. 1105−1111.
  169. Fogler W.E., Fidler I.J. The activation of tumoricidal properties in human blood monocytes by muramyl dipeptide requires specific intracellular interaction. // J. Immunol. 1986. — Vol. 136 (6). — P. 2311−2317.
  170. Fogler W.E., Wade R., Brundlsh D.E., Fidler I.J. Distribution and fate of free and liposome-encapsulated 3H. nor-MDP dipeptide and ["'HJmuramyl tripeptide phosphatidylethanolamine in mice. //J. Immunol. 1985. — Vol. 135. — P. 1372−1377.
  171. Freund J., Casals J., Hismer E.P. Sensitization and antibody formation after injection of tubercle bacilli and paraffin oil. // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1937. -Vol. 37.-P. 590.
  172. Freund J. Some aspects of active immunization. // Annu. Rev. Microbiol. -1947.-Vol. I.-P. 291−308.
  173. A., Chariot В., Phillips N.C. & Chedid L. Induction of colony-stimulating activity in mice by injection of liposomes containing lipophilic muramyl peptide derivatives. // Cancer Res. 1989. — Vol. 49. — P. 810−815.
  174. Georgiev V.St. Immunomodulating drugs: Major advances in research and development. // Immunomodulating drugs. Edited by V.St. Georgiev, H. Yamaguchi (Annals of the New York Academy of Sciences). — 1993. — Vol. 685. -1−10.
  175. Georgiev V.St. Immunomodulating peptides of natural and synthetic origin. // Med. Res. Rev. 1991.-Vol. 11.-81−119.
  176. Goldstein D., Laszlo J. Interferon therapy in cancer: From imaginon to interferon. // Cancer Res. 1986. — Vol. 46. — P. 4315−4329.
  177. Golovina Т., Fattakhova G., Swiderek K. et al. Specific binding of glucosaminylmuramyl peptides to histones. // FEBS Lett. 1999. — Vol. 454 (1−2). — P. 152−156.
  178. Golovina T.N., Sumaroka M.V., Samokhvalova L.V. et al. Biochemical characterization of glucosaminyl-muramylpeptide binding sites of murine macrophages. // FEBS Letters. 1994. — Vol. 356. — P. 9−12.
  179. Grubhofer N. An adjuvant formulation based on N-acetylglucosaminyl-N-acetylmuramyl-L-alanyl-D-isoglutamine with dimethyldloctadecylammonium chloride and zinc-L-proline complex as synergists. // Immunol. Lett. 1995. — Vol. 44 (1). — P. 1924.
  180. Hadden J.W. Immunostimulants. // Immunol. Today. 1993. — Vol. 14. — P. 275−280.
  181. Hascgawa J., Satoh A., Yagi K., Chida K. Augmentation of immune defense mechanisms of the lung by romurtide. (Japanese). // Nippon Kyobu Shikkan Gakkai Zasshi. ~ 1995. Vol. 33(6).-P. 605−611.
  182. Heinzelmann M., Polk H.C., Chernobelsky A. et al. Endotoxin and muramyl dipeptide modulate surface receptor expression on human mononuclear cells. // Immunopharmacology. 2000. — Vol. 48 (2). — P. 117−128.
  183. Imami N., Gotch F. Prospects of immune reconstitution in HIV-1 patients. // Clin. Exp. Immunol. 2002. — Vol. 127. — P. 402−411.
  184. Inohara N., Ogura Y., Fontalba A. et al. Host recognition of bacterial muramyl dipeptide mediated through NOD2: Implications for Crohn’s disease. // J. Biol. Chem. 2003. Vol. 278 (8). — P. 5509−5512.
  185. Itoh K., Tilden A.B., Balch Ch.M. Interleukin 2 activation of cytotoxic T lymphocytes infiltrating into human metastatic melanomas. // Cancer Res. 1986. — Vol. 46 (6).-P. 3011−3017.
  186. Jenner E. An inquiry into the causes and effects of variolae vaccinae, a disease discovered in some of the western countries of England, particulary Gloucestershire and known by the name of cowpox. London. — 1798.
  187. Johanssen L., Obal F.Jr., Kapas L. et al. Somnogenic activity of muramyl peptide-derived immune adjuvants. // Int. J. Immunopharmacol. 1994. — Vol. 16 (2). -P. 109−116.
  188. Jones P.D.E., Gastro J.E. Immunological mechanisms in metastatic spreed and the antimetastatic effect of C. parvum. 11 Br. J. Cancer. 1977. — Vol. 2 (5). — P. 768 770.
  189. O.V., Zemlyakov A.E. & Fuchs B.B. Distinctive immunomodulating properties and interactivity with model membranes and cells of two homologousmuramyl dipeptide derivatives. // Int. J. Immunopharmacol. 1996. — Vol. 18. — No. 11. -P. 651−659.
  190. Kamitani Т., Suzuki H., Yano S. Systemic administration of IL-2 induces lymphokine-activated killer (LAK) cells capable of killing macrophages in various tissues. // Immunol. 1989. — Vol. 68 (4). — P. 520−525.
  191. Karpoff H.M., Jarnagin W., Delman K., Fong Y. Regional muramyl tripeptide phosphatidylethanolamine administration enhances hepatic immune function and tumor surveillance. // Surgery. 2000. — Vol. 128 (2). — P. 213−218.
  192. Karnovsky M.L. Murarmyl peptides in mammalian tissues and their effects at the cellular level. // Federat. Proc. 1986. — Vol.45 (11). — P. 2556−2560.
  193. Kasid A., Director E.P., Rosenberg S.A. Induction of endogenous cytokine mRNA in circulating peripheral blood mononuclear cell bu IL-2 administration to cancer patients. // J. Immunol. 1989. — Vol. 143 (2). — P. 736−739.
  194. Katano M., Matsuo Т., Morisaki T. et al. Increased proliferation of human breast carcinoma cell line by recombinant interleukin-2. // Cancer Immunol. Immunother. -1994. Vol. 39(3).-P. 161−166.
  195. Kikelj D., Pecar S., Kotnik V. et al. N-trans-2-[[2*-(acetylamino)cyclohexyl.oxy]acetyl]-L-alanyl-D-glutamic acid: a novel immunologically active carbocyclic muramyl dipeptide analogue. // J. Med. Chem. 1998. — Vol.41 (4). -P. 530−539.
  196. Kleinerman E.S. Biologic therapy for osteosarcoma using liposome-encapsulated muramyl tripeptide. // Hematol. Oncol. Clin. North. Am. 1995. — Vol. 9 (4).-P. 927−938.
  197. Kleinerman E.S., Gano J.B., Johnston D.A. et al. Efficacy of liposomal muramyl tripeptide (CGP 19835A) in the treatment of relapsed osteosarcoma. // Am. J. Clin. Oncol. 1995.-Vol. 18(2). — P.93−99.
  198. Klimp A.H., De-Vries. E.G., Scherphof G.L., Daemen T. Chemo-immunotherapy of ovarian cancer in a murine tumour model. // Anticancer Res. 2000.- Vol. 20 (4). P. 2585−2592.
  199. Koike Y., Yoo Y.C., Mitobe M. et al. Enhancing activity of mycobacterial cell-derived adjuvants on immunogenicity of recombinant human hepatitis В virus vaccine. // Vaccine.- 1998.-Vol. 16(20).-P. 1982−1989.
  200. Kotani S., Tsujimoto M., Koga T. et al. Chemical structure and biological activity relationship of bacterial cell walls and muramyl peptides. // Federat. Proc. -1986. Vol. 45 (11). — P. 2534−2540.
  201. Kotani S., Watanable Y., Shimono T. et al. Correlation between the immunoadjuvant activities and pyrogenicitics of synthetic N-acetylmuramyl peptides or amino acids. // Biken J. 1976. — Vol. 19 (1). — P. 9−13.
  202. Kradin R.I., Kurnick J.T., Lazarus D.S. et al. Tumor-infiltrating lymphocytes and interleukin-2 in treatment of advanced cancer. // Lancet. 1989. — N. 8638. — P. 577 580.
  203. Leclerc C., Bourgeois E., Chedid L. Demonstration of muramyl dipeptide (MDP)-induced T-suppressor cells responsible for MDP immunosuppressive activity. // Eur. J. Immunol. 1982. — Vol. 12. — P. 249−252.
  204. Leclerc C., Chedid L. Suppression of IL-2 production by muramyl dipeptide and derivatives. // Oppenheim J.J., ed. Interleukins, lymphokines and cytokines. N.Y.: Academic Press. — 1983. — P. 699−705.
  205. Lee S.H., Aggarwal В., Rinderknecht E. et al. The synergistic antiproliferative effect of y-interferon and human lymphotoxin. // J. Immunol.- 1987. Vol. 133 (3). — P. 1083−1086.
  206. Lefrancier P., Lederer E. Muramyl-peptides. // Pure and Appl. Chem. 1987. -Vol. 59. — P. 449−454.
  207. Ludviksson B.R., Sneller M.C., Chua K.S. et al. Active Wegener’s granulomatosis is associated with HLA-DR+ CD4+ T cells exhibiting an unbalanced Thl-type T cell cytokine pattern: reversal with IL-10. // J. Immunol. 1998. — Vol. 160 (7).-P. 3602−3609.
  208. Luger T. A., Smolen J.S., Chused T.M., Steinberg A.D. Human lymphocytes with either the OKT 4 or OKT 8 phenotype produce interleukin-2 in culture. // J. Clin. Invest. 1989. — Vol. 70 (2). — P. 470−473.
  209. Luo Y., Chen X., Downs Т. M. et al. IFN-alpha 2b enhances Thl cytokine responses in bladder cancer patients receiving Mycobacterium bovis bacillus Calmette-Guerin immunotherapy. // J. Immunol. 1999. — Vol. 162. — 2399−2405.
  210. Maeda H., Saiki I., lshida H. et al. Adjuvant activities of synthetic lipid A subunit analogues and its conjugates with muramyl dipeptide derivatives. // Vaccine. -1989.-Vol. 7(3).-P. 275−281.
  211. Mancini L., Carbonare A., Hermans J. Immunochemical quantisation of natigens by single radial diffusion. // Immonochemistry. 1965. — Vol. 12. — P. 235−254.
  212. Masek К. Immunopharmacology of muramyl peptides. // Federat. Proc. 1986. -Vol. 45 (11).-P. 2549−2551.
  213. Masek K., Kadlecova O., Petrovicky P. The effect of bacterial products on temperature and sleep in rats. // Z. Immun. Forsch. 1975. — Vol. 149. — P. 273−282.
  214. Masek K. Multiplicity of biological effects of muramyl dipeptide. // Meth. and Find. Exp. and Clin. Pharmacol. 1986. — Vol. 8 (2). — P. 97−99.
  215. Mathe G., Umezawa H., Misset J.L. et al. Immunomodulating properties of bestatin in cancer patients. A phase 2 trial. // Biomed. Pharmacother. 1986. — Vol. 40. -P. 732−782.
  216. Merser C., Sinay P., Adam A. Total synthesis and adjuvant activity of bacterial peptidoglycan derivatives. // Biochem. Biophis. Res. Commun. 1975. — Vol. 66. — P. 1316−1322.
  217. Monsigny M., Roche A.C., Bailly P. Tumoricidal activation of murine alveolar macrophages by muramyl dipeptide substituted monnosylated serum albumin. // Biochem. and Biophys. Res. Commun. 1984. — Vol. 121 (2). — P. 579−584.
  218. Morija Y., Nunomura K., Nanjo M. et al. Induction of antitumor effector cells by OK-432. // Int. J. Immunopharmacol. 1988. — Vol. 10 (1). — P. 84.
  219. Morin C., Barratt G., Fessi PI. et al. Improved intracellular delivery of muramyl dipeptide analog by means of nanocapsules. // Int. J. Immunopharmacol. 1994. — Vol. 16 (5/6).-P. 451−456.
  220. Mossman T. Rapid colorimetric assay for cellular growth and survival: application to proliferation and cytotoxicity assays. // J. Immunol. Methods 1983. -Vol. 65. — P. 55−63.
  221. Mule J.J., Mcintosh J.K., Jablons D.M., Rosenberg S.A. Antitumor acrivity of recombinant interleukin 6 in mice. // J. Exp. Med. 1990. — Vol. 171 (3). — P. 629−636.
  222. Munjal I.D., Schmidt D., Speetor S. Role of endogenous morphine in the attenuation of opiate withdrawal syndrome by N-acetylmuramyl-L-alanine-D-isoglutamine (MDP). // Neuropsychopharmacology. 1996. — Vol. 15(1). — P. 99−103.
  223. Nanjo M., Morija Y., Hashimoto S. et al. Antitumor effects of OK-432 and lymphokines. // Int. J. Immunopharmacol. 1988. — Vol. 10 (1). — P. 86.
  224. Nelson M., Nelson D.S. Evasion of host defences by tumors. // Immunol. Cell. Biol. 1987. — Vol. 65. — P. 287−304.
  225. Nesmeyanov V.A., Khaidukov S.V., Komeleva R.L. et al. Muramylpeptides augment expression of la-antigens on mouse macrophages. // Biomed. Sci. 1990. — Vol. l.-P. 151−154.
  226. Nitta Y., Sugita Т., Ikuta Y., Murakami T. Inhibitory effect of liposomal MDP-Lys on lung metastasis of transplantable osteosarcoma in hamster. // Oncol. Res. 2000. — Vol. 12 (1).-P. 25−31.
  227. North R.J., Neubauer R.H., Huang J.J. et al. Interleukin 1-induced T cell-mediated regression of immunogenic murine tumors. Requirement for an adequate level of already acquired host concomitant immunity. // Ibid. 1988. — Vol. 168 (6). — P. 20 312 043.
  228. Ozono S., Iwal A., Babaya K. et al. Effects of bestatin on the host immunity in patients treated for urogenital cancer. // Acta Oncol. 1990. — Vol. 29 (6). — P. 813−816.
  229. Parant M. Influence of synthetic adjuvants on nonspecific resistance to infections. // Int. J. Immunopharmac. 1994. — Vol. 16 (5−6). — P. 445−449.
  230. Parant M., Parant F., Chedid L. et al. Fate of the synthetic immunoadjuvant, muramyl dipeptide (, 4C-labeled) in the mouse. // Int. J. Immunopharmac. 1979. -Vol. 1 (1).-P. 35−41.
  231. Parant M., Poulliart P., Le Contel C. et al. Selective modulation of lipopolisacchride-induced death and cytokine production by various muramyl peptides. // Infect. Immunol. 1995. — Vol. 63 (1). — P. 110−115.
  232. Pardoll D.M. Paracrine cytokine adjuvants in cancer immunotherapy. // Annu. Rev. Immunol. 1995.-Vol. 13.-399−415.
  233. Peri G., Rossi V., Taraboletti G. et al. Ia antigen expression and IL-1 activity in murine tumour-associated macrophafes. // Immunology. 1986. — Vol. 59 (4). — P. 527 537.
  234. Pestka S., Langer J .A., Zoon K.C., Samuel C.E. Interferons and their actions. // Annu Rev. Biochem. 1987. — Vol. 56. — P. 727−777.
  235. Petrov R.V., Mikhailova A.A., Fonina L.A. Bone marrow immunoregulatory peptides (myelopeptides): Isolation, structure and functional activity. // Biopolimers, Peptide Science, Comprehensive Reports and Reviews. 1997. — Vol. 43 (2). — P. 199 203.
  236. Pierson Т., McArthur J., Siliciano R.F. Reservoirs for HIV-1: mechanisms for viral persistence in the presence of antiviral immune responses and antiretroviral therapy. // Annu Rev. Immunol. 2000. — Vol. 18. — P. 665−708.
  237. Polanski M., Vermeulen M.W., Wu J., Karnovsky M.L. Muramyl dipeptide mimicry in the regulation of murine macrophages activation by serotonin. // Int. J. Immunopharmac. 1995. — Vol. 17 (3). — P. 225−232.
  238. Quesda J.R. Update on the antitumor activity of alpha interferon. // Oncology (Williston Park). 1988. — Vol. 2 (3). — P. 49−54.
  239. Rayner A.A., Grimm E.A., Lotze M.T. et al. Lymphokine activated killer (LAK) cells. Analysis of factor relevant to the immunotherapy of human cancer. // Cancer. — 1985. Vol. 55. — P. 1327−1333.
  240. Richerson H.B., Adams P.A., Iwai Y., Barfknecht C.F. Uptake of muramyl dipeptide fluorescent congeners by normal rabbit bronchoalveolar lavage cells: a study using flow cytometry. Am. J. Respir. Cell. Mol. Biol. 1990. — Vol. 2. — P. 171−181.
  241. Romagnani S. Limphokine production by human T cells in disease states. // Annu. Rev. Immunol. 1994. — Vol. 12. — P. 227−257.
  242. Romagnani S. TH1 and TH2 in human diseases. // Clin. Immunol. Immunopath. 1996. — Vol. 80. — P. 225−235.
  243. Rosenberg S.A. Clinical immunotherapy studies in Surgery branch of the US National Cancer Institute: brief review. // Cancer Treat. Rev. 1989. — Vol. 16. — Suppl. A.-P. 115−121.
  244. Rosenberg S.A. Immunotherapy and gene therapy of cancer. // Cancer Res. -1991. Vol. 51. — P. 5074−5079.
  245. Rosenberg S.A. Immunotherapy of cancer using interleukin 2: Current status and future prospects. // Immunol. Today. 1988. — Vol. 9. — N. 2. — P. 58−62.
  246. Rosenberg S.A., Packard B.C., Aebersold P.M. et al. Use of tumor-infiltrating lymphocytes and interleukin-2 in the immunotherapy of patients with metastatic melanoma. A preliminary report. // New Engl. J. Med. 1988. — Vol. 319 (25). — P. 16 761 680.
  247. Rosenberg S.A., Yannelli J.R. Yang J.C. et al. Treatment of patients with metastatic melanoma using autologous tumor infiltrating lymphocytes. // J. Nat. Cancer Inst.-1994.-Vol. 86.-P. 1159−1169.
  248. Ruschen S., Lemm G., Warnatz H. Spontaneous and LPS-stimulated production of intracellular IL-lp by synovial macrophages in rheumatoid arthritis is inhibited by IFN-y. // Clin. Exp. Immunol. 1989. — Vol. 76 (2). — P. 246−251.
  249. Saiki I., Fidler I.J. Synergistic activation by recombinant mouse interferon-y and muramyl dipeptide of tumoricidal properties in mouse macrophages. // J. Immunol. 1985.-Vol. 135.-P. 684−688.
  250. Saiki I., Saito S., Fujita C. et al. Induction of tumoricidal macrophages and production of cytokines by synthetic muramyl dipeptide analogues. // Vaccine. 1988. -Vol. 6(3).-P. 238−244.
  251. Saiki I., Sone S., Fogler W.E. et al. Synergism between human recombinant gamma interferon and muramyl dipeptide encapsulated in liposomes for activation of antitumor properties in human blood monocytes. // Cancer Res. 1985. — Vol. 45. — P. 6188−6198.
  252. Sakai K., Hattori Т., Matsuoka M. et al. Endocrine stimulation of interleukin-1 p in acute myelogenous leukemia cells. // J. Exp. Med. 1987. — Vol. 166. — P. 1597−1602.
  253. Sanceau J., Falcoff R., Beranger F. et al. Secretion of interleukin-6 (IL-6) by human monocytes stimulated by muramyl dipeptide and tumor necrosis factor alpha. // Immunology. 1990. — Vol. 69 (1). — P. 52−56.
  254. Scheurich P., Kronke M., Schluter C. et al. Noncytocidal mechanisms of action of tumor necrosis factor-a on human tumor cells: enhancement of HLA gene expression synergistic with interferon-y. // Immunobiology. 1986. — Vol. 172. — P. 291−300.
  255. Schleifer K.N., Kandler 0. Peptidoglycan types of bacterial cell walls and their taxonomic implications. // Bact. Rev. 1972. — Vol. 24. — P. 313−318.
  256. Sharma S.D., Tsai V. Krahenbuhl J., Remington J. Augmentation of mouse natural killer cell activity by muramyl dipeptide and its analogues. // Cell. Immunol. -1981. Vol. 52.-P. 101−109.
  257. Shin D.M., Fidler I.J., Bucana C.D. et al. Superior antiproliferative effects mediated by interferon-alpha entrapped in liposomes against a newly established human lung cancer cell line. // J. Biol. Response Mod. 1990. — Vol. 9 (4). — P. 355−360.
  258. Siliciano JD, Siliciano RF. A long-term latent reservoir for HIV-1: Discovery and clinical implications. // J. Antimicrob. Chemother. 2004. — Vol. 54. — P. 6−9.
  259. Silverman D.H.S., Imam K., Karnovsky M.L. Muramylpeptide/serotonin receptors in brain-derived preparations. // Peptide Res. 1989. — Vol. 2. — P. 338−344.
  260. Silverman D., Krueger J., Karnovsky M. Specific binding sites for muramyl peptides on murine macrophages. // J. Immunol. 1986. — Vol. 136. — P. 2195−2201.
  261. Silverman D., Wu H., Karnovsky M. Muramyl peptides and serotonin interact at specific binding sites on macrophages and enhance superoxide release. // Biochem. Biophys. Res. Comm. 1985.-Vol. 131.-P. 1160−1167.
  262. Sims J., Nicklin M., Bazan J. et al. A new nomenclature for IL-1-family genes. //Trends Immunol.-2001.-Vol. 22.-P. 536−537.
  263. Slesarev V.I., Ellithorpe R., Dimitroff T. Inhibition of systemic TNF-alpha cytotoxicity in cancer patients by D-peptidoglycan. // Med. Oncol. 1998. — Vol. 15(1). -P. 37−43.
  264. Souwannavong Y., Braun S., Adam A. Murarnyl dipeptide (MDP) synergizes with interleukin 2 and interleukin 4 to stimulate, respectively, the differentiation and proliferation of В cells. // Cell. Immunol. 1990. — Vol. 126 (1). — P. 106−116.
  265. Stevenson H.C., Foon K.A., Sugarbaker P.H. Ex vivo activated monocytes and adoptive immunotherapy trials in colon cancer patients. // Prog. Clin. Biol. Res. 1986. -Vol. 211.-P. 75−82.
  266. Sugimoto M., Germain R.N., Chedid L., Benaccrraf B. Enhancement of carrier-specific helper T-cell function by the synthetic adjuvant N-acetyl-L-alanyl-D-isoglutamine (MDP). // J. Immunol. 1978. — Vol. 120. — P. 980−982.
  267. Sumaroka M.V., Livinov I.S., Khaidukov S.V. et al. Muramyl peptide-binding sites are located inside target cells. // FEBS Letters. 1991. — Vol. 295. — P. 48−50.
  268. Takada FT., Kotani S. Immunopharmacological activities of synthetic muramylpeptides. // Stcwart-Tull D.E.S., Davles M., eds. Immunology of the bacterial cell envelope. Sussex: Willey & Sone. — 1985. — P. 119−151.
  269. Tanaka A., Nagao S., Saito R. et al. Correlation of stereochemically specific structure in muramyl dipeptide between macrophage activation and adjuvant activity. // Biochem. Biophys. Res. Comm. 1977. — Vol. 77. — P. 621−627.
  270. Tanaka A., Saito R., Sugiyama K. et al. Adjuvant activity of synthetic N-acetylmuramyl peptides in rats. // Infect. Immunol. 1977. — Vol. 15. — P. 332−334.
  271. Tepper R.I., Pattengale P., Leder P. Murine interleukin-4 displays potent antitumor activity in vivo. II Cell. 1989. — Vol. 57 (3). — P. 503−512.
  272. Toge Т., Kuroi K., Sawamura A. et al. Reduction of suppressor cell activity by OK-432 through the inhibition of suppressor inducer T-cells. // Int. J. Immunopharmacol. 1988.-Vol. 10(1).-P. 85.
  273. Trajkovic V., Samardzic Т., Stosic-Grujicic S. et al. Muramyl dipeptide potentiates cytokine-induced activation of inducible nitric oxide synthase in rat astrocytes.//Brain Res.-2000.-Vol. 883 (l).-P. 157−163.
  274. Umezava H. Low-molecular-weight immunomodifiers produced by microorganisms. // Biotechnol. Genet. Engl. Rev. 1985. — Vol. 3. — P. 255−273.
  275. Uzuca Y., Saito Y. Bestatin treatment of myelodysplastic syndromes (MDS) and the effects of bestatin on hematopolesis in MDS. // Acta Oncol. 1990. — Vol. 29 (6). -P. 803−807.
  276. Vaddi K., Keller M., Newton R.C. The chemokine factsbook. -N.Y.: Academic Press. 1997.
  277. Valyakina T.I., Malakhov A., Malakhova N. et al. Glucosaminylmuramyldipeptide-induced changes in phenotype of melanoma cells result in their increased lysis by peripheral blood cells. // Int. J. Oncol. 1996. — Vol. 9. — P. 885−891.
  278. Watanabe Y., Shimizu J., Hashizume Y. et al. Changes in immunological parameters in lung cancer patients undergoing immunotherapy with streptococcal preparation OK-432. // Biotherapy. 1990. — Vol. 2 (3). — P. 235−245.
  279. Weaver C.T., Harrington L.E., Mangan P.R. et al. Thl7: An Effector CD4 T Cell Lineage with Regulatory T Cell Ties. // Immunology. 2006. — Vol. 24 (6). — P. 677−688.
  280. Weidermann В., Schletter J., Dziarski R. et al. Specific binding of soluble peptidoglican and muramyldipeptide to CD14 on human monocytes. // Infect. Immunol. 1997. — Vol. 65. — P. 858−864.
  281. Werner G.H., Jolles P. Immunostimulating agents: what next? A review of their present and potential medical applications. // Eur. J. Immunol. 1996. — Vol. 242. — P. 1−19.
  282. Yanagawa H., Haku Т., Takeuchi E. et al. Intrapleural therapy with MDP-Lys (L18), a synthetic derivative of muramyl dipeptide, against malignant pleurisy associated with lung cancer. // Lung Cancer. 2000. — Vol. 27 (2). — P. 67−73.
  283. Yang J., Murphy T.L., Ouyang W., Murphy K.M. Induction of interferon-gamma production in Thl CD4+ T cells: evidence for two distinct pathways for promoter activation. // Eur. J. Immunol. 1999. — Vol. 29. — P. 548−555.
  284. Yang S., Tamai R. Akashi S. et al. Synergistic effect of muramyldipeptide with lipopolysaccharide or lipoteichoic acid to induce inflammatory cytokines in human monocytic cells in culture. // Infect. Immun. 2001. — Vol 69 (4). — P. 2045−2053.
  285. Yokota M., Tagawa Y., Okada D. et al. Peri-operative immunotherapy with OK432. // Biotherapy. 1990. — Vol. 2 (3). — P. 207−212.
  286. Yoo Y.C., Yoshimatsu K., Koike Y. et al. Adjuvant activity of muramyl dipeptide derivatives to enhance immunogenicity of a hantavirus-inactivated vaccine. // Vaccine. 1998.-Vol. 16 (2−3). — P. 216−224.
  287. Youan B.B., Benoit M.A., Rollmann B. et al. Protein-loaded poly (epsilon-caprolactone) microparticles. II. Muramyl dipeptide for oral controlled release of adjuvant. // J. Microencapsul. 1999. — Vol. 16 (5). — P. 601−612.
  288. Zidek Z., Masek K., Sedevy F. Antiinflammatory effects of muramyl dipeptide in experimental models of acute inflammation. // Agents Actions. 1984. — Vol. 14. — P. 72−75.
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?