Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Разработка методов диагностики инфекции, вызываемой Mycoplasma hyopneumoniae

Диссертация: Разработка методов диагностики инфекции, вызываемой Mycoplasma hyopneumoniae
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Апробация работы. Материалы диссертации представлены, опубликованы и обсуждены на научно-практической конференции «Ветеринарное обеспечение свиноводства: современное состояние и пути развития» (Харьков, 2005 г.), в материалах международной научно-практической конференции «Современные проблемы ветеринарной медицины в свиноводстве» (Киев, 2006 г.), на XV московском международном ветеринарном… Читать ещё >

Содержание

  • 1. 0. Б30Р ЛИТЕРАТУРЫ
  • 1. 1. Возбудитель энзоотической пневмонии свиней
    • 1. 1. 1. Таксономическое и филогенетическое положение
    • 1. 1. 2. Морфология и строение
      • 1. 1. 2. 1. Структура микоплазмы
      • 1. 1. 2. 2. Геном Mycoplasma hyopneumoniae
  • 1. 2. Общая характеристика энзоотической пневмонии свиней
    • 1. 2. 1. Патогенез
    • 1. 2. 2. Клиническая картина заболевания
    • 1. 2. 3. Патологоанатомические изменения
    • 1. 2. 4. Иммунитет и специфическая профилактика
  • 1. 3. Диагностика энзоотической пневмонии свиней
    • 1. 3. 1. Обнаружение Mycoplasma hyopneumoniae
    • 1. 3. 2. Методы молекулярного типирования
    • 1. 3. 3. Обнаружение антител к Mycoplasma hyopneumoniae

Разработка методов диагностики инфекции, вызываемой Mycoplasma hyopneumoniae (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность темы

Mycoplasma hyopneumoniae является этиологическим агентом энзоотической пневмонии (ЭП) свиней. Ей также принадлежит важная роль в развитии респираторного симптомокомплекса свиней (РСКС) — многокомпонентного заболевания, являющегося одной из наиболее актуальных проблем современного свиноводства [87, 193, 199].

В качестве инфекционного агента, вызывающего ЭП свиней, М. hyopneumoniae была определена Goodwin et al., Маге и Switzer в 1965 году [6, 79]. Заболевание распространено во всем мире [142]. Экономический ущерб от энзоотической пневмонии свиней составляет в странах с развитым свиноводством до одного миллиарда долларов в год [100, 43]. В некоторых странах проведенные исследования выявили поражения, типичные для хронической формы заболевания, у 80% поросят группы откорма [201].

Коинфицирование свиней микоплазмами и другими патогенами (прежде всего такими, как вирус репродуктивно-респираторного синдрома свиней, цирковирус свиней второго типа, вирус гриппа свиней, Pasteurella multocida, Haemophilus parasuis, Actinobacillus pleuropneumoniae, Streptococcus suis) отягощает проявление основных симптомов пневмонии и приводит к формированию респираторного симптомокомплекса свиней. РСКС наносит значительный экономический ущерб свиноводству во всем мире. В различных хозяйствах заболеваемость поросят может достигать 30−70%, а летальность -15% в зависимости от количества ассоциированных инфекционных агентов [116].

Эффективность мер по борьбе с респираторными заболеваниями, ассоциированными с М. hyopneumoniae, во многом зависит от своевременной их диагностики, которая основывается на эпизоотологических данных, клинических признаках болезни, результатах патологоанатомического вскрытия и лабораторных исследований. Проблема осложняется тем, что до настоящего времени в России не было разработано надёжных и достоверных диагностических методов по обнаружению М. Пуорпеитопгае. Слабоизученным оставался широкий круг проблем, связанных с этим видом микоплазм: масштабы распространения М. Нуорпеитотае в свиноводческих хозяйствах и дикой фауне РФ, ее роль в развитии РСКС в российских свиноводческих хозяйствах, филогенетичекие особенности отечественных изолятов бактерии.

Степень разработанности проблемы. На настоящий момент иностранными авторами разработано несколько тест-систем, основанных на иммунофлюоресцентных, иммуногистохимических методах [131, 153, 179] и на различных модификациях ПЦР, позволяющих выявлять М. Нуорпеитотае в носовых, трахеобронхиальных смывах, а также в легочной ткани [42, 65, 69, 76, 206]. Также за рубежом осуществляют серодиагностику микоплазменной инфекции с использованием реакций агглютинации, связывания комплемента и ИФА в различных вариантах [137, 149, 154, 167].

В России до текущего времени не было разработано надёжных и достоверных диагностических методов по обнаружению М. Нуорпеитотае. Слабоизученным оставался широкий круг проблем, связанных с этим видом микоплазммасштабы распространения М. Нуорпеитотае в свиноводческих хозяйствах и дикой фауне РФ, ее роль в развитии РСКС в российских свиноводческих хозяйствах, филогенетичекие особенности отечественных изолятов бактерии.

Цели и задачи исследования.

Цель данной работы состояла в разработке методов обнаружения М. Нуорпеитотае и антител к ней, а также в применении разработанных методов для изучения распространения этого вида микоплазм на территории РФ и его роли в респираторных болезнях свиней в российских хозяйствах.

Для достижения поставленной цели необходимо было решить следующие задачи:

— разработать методы обнаружения ДНК М. куорпеитотае, основанные на ПЦР;

— применить разработанные методы в диагностических исследованиях;

— провести филогенетический анализ полевых изолятов М. куорпеитотае;

— получить рекомбинантный видоспецифичный белок М. куорпеитотае и разработать на его основе непрямой вариант иммуноферментного анализа (н-ИФА) для выявления антител к данному инфекционному агенту в сыворотках крови свиней;

— провести с использованием разработанного иммуноферментного метода серомониторинг микоплазменной инфекции и определить статус российских свиноводческих хозяйств.

— изучить распространение М. куорпеитотае в дикой фауне РФ.

Научная новизна исследований. Впервые в РФ разработан метод обнаружения ДНК М. куорпеитотае, основанный на ПЦР с электрофоретической детекцией.

Впервые в России разработан метод количественного обнаружения ДНК М. куорпеитотае, основанный на ПЦР в реальном времени (ПЦР-РВ).

Проведен филогенетический анализ полевых изолятов М. куорпеитотае.

Впервые в РФ получен рекомбинантный видоспецифичный белок р65 М. куорпеитотае, и на его основе разработан непрямой вариант иммуноферментного анализа для выявления антител к М. куорпеитотае.

Проведён мониторинг микоплазменной инфекции свиней, показано широкое распространение М. куорпеитотае в свиноводческих хозяйствах и дикой фауне РФ.

С использованием непрямого варианта ИФА определен серологический статус более 5 тысяч племенных свиней, ввезенных в Россию в 2005;2009 гг из Канады и европейских стран, в отношении микоплазменной инфекции.

Практическая значимость исследований. В результате проведённых исследований утверждены следующие нормативные документы:

Методика обнаружения антител к Mycoplasma hyopneumoniae в непрямом варианте иммуноферментного анализа", одобренная учёным советом и утверждённая директором ФГУ «ВНИИЗЖ» 08.02.2006 г.;

Методика обнаружения Mycoplasma hyopneumoniae с использованием полимеразной цепной реакции", одобренная учёным советом и утверждённая директором ФГУ «ВНИИЗЖ» 20.03.2006 г.;

Методические указания по выявлению и количественному анализу Mycoplasma hyopneumoniae методом полимеразной цепной реакции в режиме реального времени", одобренная учёным советом и утверждённая директором ФГУ «ВНИИЗЖ» 10.03.2010 г.

Разработанные методики и методические указания используются при проведении диагностических и мониторинговых исследований для выявления М. hyopneumoniae и антител к ней.

Публикации научных исследований. По теме диссертации опубликовано 9 научных работ, в том числе три работы в изданиях, рекомендованных ВАК РФ.

Апробация работы. Материалы диссертации представлены, опубликованы и обсуждены на научно-практической конференции «Ветеринарное обеспечение свиноводства: современное состояние и пути развития» (Харьков, 2005 г.), в материалах международной научно-практической конференции «Современные проблемы ветеринарной медицины в свиноводстве» (Киев, 2006 г.), на XV московском международном ветеринарном конгрессе по болезням мелких домашних животных «Проблемы инфекционной патологии свиней» (Москва, 2007 г.), а также на заседаниях учёного совета ФГУ «Федеральный центр охраны здоровья животных» в период 2005;2009 гг.

Личный вклад. Основной объем исследований проведен автором самостоятельно. Консультативную и методическую помощь при выполнении отдельных этапов работы оказывали следующие сотрудники лаборатории диагностики особо опасных инфекций: к.б.н. А. С. Яковлева, к.в.н. А. В. Канынина, к.в.н. А. М. Тимина, заведующий лабораторией, к.б.н. А. В. Щербаков.

Основные положения, выносимые на защиту:

Метод обнаружения ДНК М. куорпеитотае, основанный на ПЦР с электрофоретической детекцией.

Метод количественного обнаружения ДНК М. куорпеитотае, основанный на ПЦР в реальном времени.

Филогенетический анализ полевых изолятов М. куорпеитотае.

Рекомбинантный видоспецифичный белок М. куорпеитотае и разработанный на его основе непрямой вариант ИФА для выявления антител к микоплазме.

Результаты использования разработанных методов при проведении диагностических и мониторинговых исследований микоплазменной инфекции.

Структура и объём работы. Диссертация изложена на 134 страницах и содержит следующие разделы: введение, обзор литературы, результаты собственных исследований и их обсуждение, заключение и выводы. Список используемой литературы включает 215 источников, из которых 185 иностранных. Работа иллюстрирована 15 таблицами и 17 рисунками.

4. ВЫВОДЫ.

1. Разработанным методом обнаружения ДНК М. hyopneumoniae, основанным на ПЦР с электрофоретической детекцией, установлено, что из исследованных 850 проб патологического материала от свиней из 195 хозяйств 43 регионов РФ М. hyopneumoniae выявлена в 22% проб. i.

2. Разработанный метод количественного определения ДНК М hyopneumoniae, основанный на ПЦР в режиме реального времени, позволяет установить концентрацию микоплазмы в легких больных свиней, которая обычно составляет 105−10б клеток/г.

3. На основе полученного рекомбинантного антигена разработан непрямой вариант ИФА для выявления антител к М. hyopneumoniae в i сыворотках крови свиней. Диагностическая чувствительность и диагностическая специфичность непрямого варианта ИФА составляет 97,0% и 98,9% соответственно.

4. С использованием разработанного иммуноферментного метода проведен серомониторинг микоплазменной инфекции в хозяйствах РФ. Антитела к М. hyopneumoniae у свиней выявлены в 76 из 136 обследованных хозяйств РФ.

5. Определен серопозитивный статус племенных свиней, ввезенных в Россию в 2005;2009 гг из Франции, Дании, Германии, Великобритании, Литвы, Венгрии и Испании, в отношении инфекции, обусловленной М. hyopneumoniae.

6. С использованием ПЦР и ИФА установлено, что М. hyopneumoniae распространена в ЦФО России среди кабанов, являющихся природным резервуаром данного возбудителя.

7. Проведен филогенетический анализ полевых изолятов М hyopneumoniae. Установлено, что все изоляты формируют два сильно отличающихся кластера. Один кластер включает изоляты как от домашних свиней, так и от кабанов, второй кластер объединяет изоляты М. hyopneumoniae исключительно от кабанов.

5. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

Для практического использования предлагаются:

Методика обнаружения антител к Mycoplasma hyopneumoniae в непрямом варианте иммуноферментного анализа";

Методика обнаружения Mycoplasma hyopneumoniae с использованием полимеразной цепной реакции";

Методические указания по выявлению и количественному анализу Mycoplasma hyopneumoniae методом полимеразной цепной реакции в режиме реального времени".

Разработанные методики и методические указания используются при проведении диагностических и мониторинговых исследований для выявления М. hyopneumoniae и антител к ней.

3.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

В настоящее время одной из наиболее актуальных проблем свиноводства являются респираторные заболевания. В хозяйствах Российской Федерации и за рубежом широко распространена энзоотическая пневмония свиней, этиологическим агентом которой является М. куорпеитотае. Как монозаболевание энзоотическая пневмония встречается редко и обычно является составной частью респираторного симптомокомплекса свиней.

В России до настоящего момента неизученным оставался широкий круг вопросов, связанных с М. куорпеитотае: степень распространения возбудителя среди домашних свиней и диких кабанов, вовлечённость М. куорпеитотае в инфекционную патологию. Для решения этих задач необходимо иметь в распоряжении надежные методы диагностики микоплазменной инфекции свиней.

В результате проведенных исследований был разработан метод ПЦР, позволяющий выявлять ДНК М. куорпеитотае в легких животных с респираторной патологией. Метод основан на использовании пары видоспецифичных праймеров, комплементарных участку гена р46. Было показано, что данный метод обладает высокой аналитической^ специфичностью и чувствительностью.

С помощью разработанного-метода в период с 2005 по 2009 'годы исследовали более 850' проб патологического материала от свиней с респираторной патологией из 195 хозяйств 43 регионов РФ. В. результате проведенных исследований М. куорпеитотае была выявлена в 22% проб.

При исследованиях материала от свиней различных возрастных групп оказалось, что наиболее часто М. куорпеитотае обнаруживалась у поросят в послеотъемный период (возраст 2−4 месяца) и в период откорма (возраст 4−6 месяцев): 26,6% и 24,2%, соответственно. У животных старше 6 месяцев М. куорпеитотае также выявляли в значительном количестве случаев (16,3%). У поросят-сосунов с респираторной патологией микоплазму обнаруживали значительно реже. Таким образом, наши исследования подтвердили данные литературы [93, 142, 196, 197] о том, что респираторные заболевания, ассоциированные с М. куорпеитотае, присущи, главным образом, поросятам послеотъемного и откормочного периодов.

У животных с респираторной патологией кроме М. куорпеитотае обнаруживали и другие виды патогенных бактерий и вирусы: М. куогЫтз, бактерии семейства Ра81еиге11асеае, ЦВС-2, вирус РРСС. Вирус гриппа свиней обнаруживали редко. Полученные результаты подтверждают данные литературы [50, 98, 116, 132] о значении ассоциаций респираторных патогенов в развитии осложнений энзоотической пневмонии.

Таким образом, в результате проведенных нами исследований было установлено, что спектр патогенов, обнаруживаемых у свиней, пораженных РСКС (чаще всего поросят групп отъема и откорма), включает М. куорпеитотае в ассоциации с рядом других инфекционных агентов вирусной и бактериальной природы.

Для обнаружения ДНК М. куорпеитотае нами был также разработан метод ПЦР в режиме реального времени. В основе метода лежит использование пары праймеров и зонда, комплементарных участку гена р46. ПЦР-РВ имел ряд преимуществ по сравнению с классическим вариантом ПЦР. Аналитическая чувствительность ПЦР-РВ' на порядок превышала чувствительность ПЦР с электрофоретической детекцией. Кроме того, ПЦР-РВ позволяет проводить количественную оценку содержания! М. hyopneumoniae в исследуемых пробах. Для этого нами путеммолекулярного клонирования гена р46 были получены стандарты, ДНК. С использованием количественной ПЦР-РВ мы определили, что у поросят с выраженными признаками пневмонии содержится 105−106 клеток микоплазмы в 1 г легочной ткани.

С целью разработки иммуноферментной тест-системы для выявления антител к М hyopneumoniae экспрессией в Е. coli был получен рекомбинантный видоспецифичный белок М. hyopneumoniae. В непрямом варианте ИФА с контрольными сыворотками показали его высокую антигенную активность и специфичность.

На основе рекомбинантного антигена разработали непрямой вариант ИФА для выявления антител к М. hyopneumoniae в сыворотках крови свиней. Определили рабочее разведение антигена и сывороток, оптимальные режимы постановки реакции, установили позитивно-негативный порог реакции, допустимые значения оптической плотности контрольных сывороток и коэффициент вариации.

Диагностические чувствительность и специфичность метода, установленные на панели заведомо положительных и заведомо отрицательных сывороток, составляли 97,0% и 98,9%, соответственно.

Показано, что результаты, получаемые в н-ИФА, очень хорошо согласуются с результатами, получаемыми при использовании коммерческого набора «Mycoplasma hyopneumoniae Antibody Test Kit» (IDEXX, США). Согласованность двух тест-систем определяли по методу капа-статистики, значение k-критерия равнялось 0,92.

С использованием разработанной иммуноферментной тест-системы исследовали более 20 000 проб сывороток крови от свиней из 136 хозяйств 43 регионов. РФ. В-* 76* хозяйствах у животных обнаружили антитела к М. куорпеитотае. В результате проведенного серомониторинга впервые было показано широкое распространение этого вида, микоплазм в РФ, а также определен статус большогочисла российских хозяйств в отношении инфекции, обусловленной’М. куорпеитотае. При исследовании сывороток крови племенных свиней, ввезенных в РФ из-за рубежа, было установлено, что количество серопозитивных животных, импортированных из некоторых стран Европы, достигало 88%. Животные, ввезенные из Канады, Польши, Эстонии, Чехии и Ирландии оказались серонегативными в отношении данного возбудителя.

С использованием разработанных методов и методик изучено распространение М. куорпеитотае в дикой фауне РФ. ДНК микоплазмы и/или антитела к ней были обнаружены у диких кабанов, павших или отстрелянных с диагностической целью в Тверской, Смоленской, Владимирской, Московской, Курской, Белгородской областях и в Ставропольском крае. Таким образом, было показано широкое географическое распространение М. куорпеитотае в дикой фауне России.

С целью изучения генетического разнообразия * российских изолятов М. куорпеитотае проведено секвенирование фрагмента гена р46 микоплазм, выявленных у домашних свиней из 9 хозяйств и диких кабанов из 4 областей ЦФО. Филогенетический анализ установленных нуклеотидных последовательностей показал, что все изоляты формируют два сильно отличающихся кластера. Один кластер включал изоляты М. куорпеитотае, выделенные от домашних свиней в России, Канаде и Японии. В этот кластер вошли также несколько изолятов от диких кабанов из ЦФО РФ. Второй кластер формировали изоляты М. куорпеитотае исключительно от диких кабанов.

Таким образом, в результате проведенных исследований было разработано несколько методов и методик по обнаружению возбудителя энзоотической пневмонии свиней, а именно: ПЦР и ПЦР-РВ, а также непрямой вариант ИФА для выявления антител к М. hyopneumoniae в сыворотках крови животных. Применение разработанных методов и методик в диагностических исследованиях позволило установить степень распространения М. hyopneumoniae среди домашних свиней и диких кабанов, а также роль возбудителяв ассоциированной респираторной патологии свиней.

Показать весь текст

Список литературы

  1. .Ф., Воронин Е. С., Ватутин А. А. Инфекционные болезни животных. М.: КолосС, 2007. — 671 с.
  2. Болезни свиней / В. Сидоркин, В. Гавриш, А. Егунова, С. Убираев. М.: Аквариум, 2007. — 274' с.
  3. Х.З., Романова Е. А. Инфекционные болезни свиней и современные средства борьбы с ними. — Казань: Школа, Шестой элемент, 2003.-200 с.
  4. Э.Г. Заболевания свиней: пер. с нем. М.: Астрель, ACT, 2003.112 с.
  5. В.М. Молекулярно-биологические методы выявления и идентификации инфекционных агентов, клиническая лабораторная аналитика, частные аналитические технологии в клинической лаборатории / под ред. В. В. Меньшикова. М.: КолосС, 1999. — 432 с.
  6. С.Н. Комплекс респираторных заболеваний свиней (PRDO) // Гл. зоотехник. 2009. — № 2. — С. 59.
  7. Диагностика микоплазменных заражений- с помощью направленной амплификации / Е. Ю. Жуланова, М. С. Вонский, В. В. Лисин и др. // Молекуляр. генетика, микробиология и вирусология. 1993. — № 2. — С. 913.
  8. С.А. Количественная эпизоотология: основы прикладной эпидемиологии и биостатистики. Владимир: Демиург, 2005. — 460 с.
  9. Инфекционная патология животных / ред. А .Я. Самуйленко, Б. В. Соловьева, Е. А. Непоклонова, Е. С. Воронина. — М.: Академкнига, 2006. -807 с.
  10. Инфекционная патология животных: материалы Междунар. науч. конф., посвящ. 45-летию ФГУ «ВНИИЗЖ», Владимир, 30−31 окт. 2003 г. -Владимир, 2003. — 155 с.
  11. Использование аэросила А-300 и фильтров GF/F (GF/C) для очистки фрагментов ДНК, ДНК-плазмид и РНК / О. Г. Грибанов и др. //
  12. Биохимия. 1996.-Т. 21, № 6.-С. 1064−1070.
  13. A.B. Разработка методов иммуноферментного анализа для выявления антител к вирусу репродуктивно-респираторного синдрома свиней: дис.. канд. вет. наук. Владимир, 2004. — 123 с.
  14. Е.А. Микоплазмы и JI-формы бактерий в патологии животных. Уссурийск: Приморский с.-х. ин-т, 1983. — 554 с.
  15. С.А. Особенности течения и вакцинопрофилактика репродуктивно-респираторного синдрома свиней в Российской Федерации: дис.. канд. вет. наук. Владимир, 2000. — 176 с.
  16. Ю.В. Руководство по инфекционным болезням. СПб.: Фолиант, 2000. — 932 с.
  17. А. С. Биологические и генетические характеристики цирковирусов свиней: дис. .канд. биол. наук. Покров, 2009. — 131 с.
  18. Методические указания по диагностике заболеваний сельскохозяйственных животных методом полимеразной цепной реакции / под ред. A.A. Гусева, А. Н. Панина. Владимир: ОКНИИиМС ВНИИЗЖ, 1998.-519 с.
  19. В.В. Носительство микроорганизмов в носовой полости у поросят // Ветеринария. 2004. — № 1. — С. 29−30.
  20. И. О. Практическое пособие по медицинской статистике. Л.: Медицина, 1975. — 150 с.
  21. С.Р., Левина Г. А., Рыжов Е. В. Сравнительное изучение патогенных свойств некоторых видов L-форм бактерий и микоплазм // Вестн. АМН СССР. 1969. — № 5. — С. 72.
  22. В.А. Разработка молекулярно-биологических методов обнаружения и штаммовой дифференциации вируса репродуктивно-респираторного синдрома свиней: дис.. канд. биол. наук. Владимир, 2003.-112 с.
  23. Ресурсы основных видов охотничьих животных и охотничьи угодья России (1991−1995ГГ.) / И. К. Ломанов и др. М.: ЦНИЛ Охотдепартамента Минсельхозпрода России, 1996. — 226 с.
  24. Теория и практика иммуноферментного анализа / A.M. Егоров и др. -М.: Высш. школа, 1991.-288 с.
  25. В.Д., Каган Г.А. L-формы бактерий и семейство Mycoplasmatoceae в патологии. М.: Медицина, 1973. — 392 с.
  26. A.M. Разработка методов лабораторной диагностики цирковирусной инфекции свиней: дис.. канд. вет. наук. Владимир, 2006.- 130 с.
  27. Д. Методы трансформации. Клонирование ДНК / под ред. Д. Гловера. М., 1988. — 487 с.
  28. Этиологическая структура инфекционных болезней свиней в животноводческих хозяйствах России: материалы Междунар. науч. конф., посвящ. 45-летию ФГУ «ВНИИЗЖ», Владимир, 30−31 окт. 2003 г. -Владимир, 2003. 210 с.
  29. А.С., Канынина А. В., Щербаков А. В. Экспрессия в Е. coli рекомбинантных белков ЗА, ЗВ и 3 АВ вируса ящура / Труды Федерального центра охраны здоровья животных. Владимир: Транзит-ИКС, 2005. — Т. 3. — С. 105−114.
  30. Absence of strictly age-related resistance to Mycoplasma hyosynoviae infection in 6-week-old pigs / К. T. Lauritsen et al. // Vet. Microbiol. 2008. — Vol. 130. — P. 385−390.
  31. Adams C., Pitzer J., Minion F. C. In vivo expression analysis of the P97 and PI02 paralog families of Mycoplasma hyopneumoniae II Infect. Immun. -2005. Vol. 73. — P. 7784−7787.
  32. A longitudinal- study of serological, patterns of respiratory infections in? nine infected Danish swine herds / Ml Andreasen et al. // Prevent. Vet. Med- -2000.-Vol. 25.-P. 221−235-
  33. Ameri-Mahabadi M., Zhou E.M., Hsu W.H. Comparison of two swine Mycoplasma hyopneumoniae enzyme-linked- immunosorbent: assays fon detection: of antibodies from vaccinated pigs and Held serum samples // J. Vet. Diagn. Invest.- 2005.- Vol. 17.- P. 61−64,
  34. Amikam D.G., Rasin S. Mycoplasmas (Mollicutes) have: a low number of rRNA genes // J. Bacteriology. 1984. — Vol. 158. — P. 376−378.
  35. Amplified-fragment length polymorphism fingerprinting of Mycoplasma species / B. Kokotovic et al,. // J. Clin. Microbiol. 1999. — Vol. 37. — P. 3300−3307.
  36. A multiplex PCR to identify porcine mycoplasmas present in broth cultures / T. Stakenborg et al. // Vet. Res. Commun. 2006- - Vol. 30: — P. 239−247.
  37. A mycoplasma genetic element resembling’prokaryotic insertion sequences / Ferrell R.V. et al.-// Mol. Microbiol: 1989. — Vol. 3. — P. 957−967.
  38. A nested PCR assay for the detection of Mycopasma hyopneumoniae in tracheobronchiolar washings from pigs / Verdin E. et al. // Vet. Microbiol. -2000.-Vol. 76.-P. 31−40.
  39. An improved enzyme linked immunosorbent assay (ELISA) for the detection of porcine serum antibodies against Mycoplasma hyopneumoniae / S.P. Djordjevic et al. // Vet. Microbiol. 1994. — Vol. 39. — P. 261−273.
  40. Antimicrobial susceptibility of Mycoplasma hyorhinis / C.C. Wu et al. // Vet. Microbiol. 2000- - Vol. 76. — P. 25−30.
  41. Application and field validation of a PCR assay for the detection of Mycoplasma hyopneumoniae from swine lung tissue samples / H.Y. Cai et al. //J. Vet. Diagn. Invest.- 2007. Vol. 19. — P- 91−95.
  42. A processed multidomain Mycoplasma hyopneumoniae adhesion binds fibronectin, plasminogen and swine respiratory cilia / Lisa M. Seymour et al. /URL: www.jbc.org/cgi/doi/10.1075/jbc.Ml 10.104 463.
  43. Array-based comparative hybridization analysis of field strains of Mycoplasma hyopneumoniae / M.L. Madsen et al. // J. Bacteriol. 2007. -Vol. 189. — P. 7977−7982.
  44. Artiushin S., Minion F.C. Arbitrarily primed PCR analysis of Mycoplasma hyopneumoniae field isolates demonstrates genetic heterogeneity // Int. J. System. Bacteriol. 1996. — Vol. 1. — P. 324−328.
  45. Associations between pathogens in healthy pigs and pigs with pneumonia I A. Palzer et al. // Vet. Ree. 2008. — Vol. 162. — P. 267−271.
  46. Automated annotation of keywords for proteins related to Mycoplasmataceae using machine learning techniques / L.C. Bazzan et al. // Bioinformatics. — 2002.-Vol. 18.-P. 35−43.
  47. Association of lysogenic bacteriophage MAV1 with virulence of Mycoplasma arthritidis / L.L. Voelker et al. // Infect. Immun. 1995. — Vol. 63. — P. 40 164 023.
  48. Aymard R.T. Neuraminidase assays // Dev. Biol. 2003. — Vol. 115. — P. 7583.
  49. Baker R.B. Respiratory disease in growing pigs: with emphasis on diagnosis, treatment, and control of bacterial pneumonia // North California Healthy Hog Seminar. 1998.
  50. Barry M.A., Lai W.C., Johnston S.A. Protection against mycoplasma infection using expression-library immunization // Nature. 1995. — Vol. 377. — P. 632 635.
  51. Baseman J.B., Lange M., Criscimangna N.L. Interplay between mycoplasmas and host target cells // Microb. Pathog. 1995. — Vol. 19. — P. 105−116.
  52. Battrell M.A., Farms M., Hill R. Managing swine respiratory disease // J. Gen. Virol. 2008. — Vol. 87.-P. 1264−1274.
  53. Benfield D. A. Porcine reproductive and respiratory syndrome // Diseases of Swine / ed. D.J. Taylor. Ames, Iowa, 1999. — P. 201−224.
  54. Berner H. Impfung-eine neue methode der Bekampfung der Enzootischen Pneumoniae des Schweines // Prakt. Tierarzt. 1995. — P. 668−682.
  55. Bisping W., Amtsberg G. Mycoplasms // Farbatlas zur Diagnose Bakterieller Infektionserreger der Tiere. Berlin, Hamburg, 1988. — P. 307−323.
  56. Blank W.A., Stemke G.W. A physical and genetic map of the Mycoplasma hyopneumoniae strain J genome // Can. J. Microbiol. 2000. — Vol. 46. — P. 832−840.
  57. Blending of a conventional Mycoplasma hyopneumoniae vaccine with a positive marker: tracking of immunized pigs by peptide-specific antibodies raised to the marker component / B. Walders et al. // Res. Vet. Sci. 2005. -Vol. 78.-P. 135−141.
  58. Botner A. Diagnosis of PRRS // Vet. Microbiol. 1997. — Vol. 55. — P. 295 301.
  59. Bruggmann S., Keller H. Quantitative detection of antibodies to Mycoplasma suipneumoniae in pigs' sera by an enzyme-linked immunosorbent assay // Vet. Rec.- 1977.-Vol. 101.-P. 109−111.
  60. Burch D.G.S. The comparative efficacy of antimicrobials for the prevention and treatment of enzootic pneumonia and some of their pharmacokinetic // Pig J. 2004. — Vol. 53. — P. 8−27.
  61. Calsamaglia M., Pijoan C., Trigo A. Application of a nested polymerase chain reaction assay to detect Mycoplasma hyopneumoniae from nasal swabs // J. Vet. Diagn. Invest. 1999. — Vol. 11. — P. 246−251.
  62. Caron J., Ouardani M., Dea S. Detection and differentiation of Mycoplasma hyopneumoniae and Mycoplasma hyorhinis by PCR amplification of the P36 and P46 genes // J. Clin. Microbiol. 2000. — Vol. 38. — P. 1390−1396.
  63. Characterization of the Mycoplasma genome / Rasin R. et al. // J. Biol. Med. 1983.-№ 56.-P. 357.
  64. Choi Y.K., Goyal S.M., Joo H.S. Retrospective analysis of etiologic agents associated with respiratory diseases in pigs // Can. Vet. J. 2003. — Vol. 44. -P. 735−737.
  65. Chronological’study of Mycoplasma hyopneumoniae infection, seroconversion and associated lung lesions in vaccinated and non-vaccinated pigs / M. Sibila et al. // Vet. Microbiol. 2007. — Vol. 122. — P. 97−107.
  66. Comparison of transmission of Mycoplasma hyopneumoniae in vaccinated and non-vaccinated populations / T. Meyns et al. // Vaccine. 2006. — Vol. 24. -P. 701−7086.
  67. Construction of the mycoplasma evolutionary tree from 5S rRNA sequence data / M. J. Rogers et al. // PNAS. 1985. — Vol. 82. — P. 1160−1164.
  68. Controlling Mycoplasma hyopneumoniae / F. Joisel et al. // Merial, France. -2001.
  69. Current perspectives on the diagnosis and epidemiology of Mycoplasma hyopneumoniae infection / M. Sibila et al. // Vet. J. 2008. — Vol. 3. — P. 125 129.
  70. Debey M.C., Roth J.A., Ross R.F. Enhancement of the increase in intracellular calcium concentration in stimulated" neutrophils by Mycoplasma hyopneumoniae H Vet. Res. Commun. 1993. — Vol. 17. — P. 249−257.
  71. Detection and treatment of mycoplasma contamination in cultured cells // H. Jung et al. // Med. J. 2003. -Vol. 26. — P. 250−258.1.l
  72. Detection of Mycoplasma hyopneumoniae in bronchoalveolar lavage fluids of pigs by PCR / A.K. Baumeister, M. Runge, M. Ganter, A.A. Feenstra // J. Clin. Microbiol. 1998. — Vol. 36. — P. 1984−1988.
  73. Detection of Mycoplasma hyopneumoniae DNA by the polymerase chain reaction / Harasawa R. et al. // Molecular Cell Probes. 1991. — Vol. 5. — P. 103−109.
  74. Detection of Mycoplasma hyopneumoniae in lung and nasal swab samples from pigs by nested PCR and culture methods / Y. Otagiri et al. // J. Vet. Med. Sei. 2005. — Vol. 67. — P. 801−805.
  75. Detection of Mycoplasma hyopneumoniae in nose swabs from pigs by in vitro amplification of the 16S rRNA gene / L.G. Mattsson et al. // J. Clin. Microbiol. 1995. — Vol. 33. — P. 893−897.
  76. Detection of Mycoplasma hyopneumoniae in porcine nasal swabs using realtime PCR / F. Zeeh et al. // Proceedings 18th IPVS Congr. Hamburg, Germany, 2004. — Vol. 1. — P. 178.
  77. Detection of porcine reproductive and respiratory syndrome virus and Mycoplasma hyorhinis antigens in pulmonary lesions of pigs suffering from respiratory syndrome / K. Kawashima et al. // J. Comp. Pathol. 1996. — Vol. 114.-P. 315−323.
  78. Detection of respiratory pathogens in porcine lung tissue and lavage fluid / L. Moorkamp et al. // Vet. J. 2008. — Vol. 175. — P. 273−275.
  79. Development of two real-time PCR assays for the detection of Mycoplasma hyopneumoniae in clinical samples / C.R. Dubosson et al. // Vet. Microbiol. -2004.-Vol. 102.-P. 55−65.
  80. Differentiation of Mycoplasma hyopneumoniae, M. flocculare and M hyorhinis on the basis of amplification of a 16S rRNA gene sequence / G.W. Stemke et al. // Am. J. Vet. Res. 1994. — Vol. 55. — P. 81−84.
  81. Diversity of Mycoplasma hyopneumoniae in pig farms revealed by direct molecular typing of clinical material / D. Mayor et al. // Vet. Res. — 2007. -Vol. 38.-P. 391−398.
  82. Done S.H. Enzootic pneumonia (mycoplasmosis) revisited // Pig Vet. J. 1996. -Vol. 38.-P. 40−61.
  83. Done S.H. Porcine respiratory disease complex (PRDC) // Pig J. 2002. — Vol. 50.-P. 174−196.
  84. Dussurget O., Roulland-dussoix D. Rapid, sensitive PCR-based detection of Mycoplasmas in simulated samples of animal sera // Appl. Environ. Microbiol. 1994.-Vol. 60.-P. 953−959.
  85. Dybvig K. Molecular biology of mycoplasmas // Annu. Rev. Microbiol. -1996.-Vol. 50.-P. 25−57.
  86. Dybvig K. Mycoplasmal genetics // Annu. Rev. Microbiol. 1990. — Vol. 44. -P. 81−104.
  87. Easterday B.C. Swine influenza // Diseases of Swine / ed. D.J. Taylor. Ames, Iowa, USA, 1999. — P. 277−290.
  88. Effect of sow vaccination against Mycoplasma hyopneumoniae on sow and piglet colonization and seroconversion, and pig lung lesions at slaughter / M. Sibila et al. // Vet. Microbiol. 2008. — Vol. 127. — P. 165−170.
  89. Effect of vaccination against Mycoplasma hyopneumoniae in pig herds with an all-in/all-out production system / D. Maes et al. // Vaccine. 1999. — Vol. 17. -P. 1024−1034.
  90. Enzootic pneumoniae in pigs / D. Maes et al. // Vet. Quart. 1996. — Vol. 18. -P. 104−109.
  91. Erlandson K.R. Evaluation of three serum antibody enzyme-linked immunosorbent assays for Mycoplasma hyopneumoniae II J. Swine Health and Production. -2005. Vol. 13. — P. 198−203.
  92. Evaluation of tRNA gene for identification of Mollicutes / T. Stakenborg et al. // J. Clin. Microbiol. 2005. — Vol. 43. — P. 4558−4566.
  93. Fagan P.K., Djordjevic S.P., Chin J. Oral immunization of mice with attenuated Salmonella typhimumum uroA expressing a recombinant Mycoplasma hyopneumoniae antigen (NrdF) // Infect. Immun. 1997. — Vol. 65. — P. 2502−2507.
  94. Fano E., Pijoan C.,. Dee S. A longitudinal assessment of Mycoplasma hyopneumoniae serology, comparing three different infection routes and two ELISA tests // Proceedings 18th IPVS Congr. Hamburg, Germany. — 2004: -Vol. 1. — P. 128.
  95. Fano E., Pijoan C., Dee S. Dynamics and persistence of Mycoplasma hyopneumoniae infection in pigs // Can. J. Vet. Res. 2005. — Vol. 69. — Pi 223 228.
  96. Frey J., Haldimann A., Nicolet J. Chromosomal heterogeneity of various Mycoplasma hyopneumoniae field strains // Int. J. System. Bacteriol. 1992. -Vol. 42. P. 275−280.
  97. Friis N.F. Mycoplasma hyorhinis in the etiology of serositis among piglets // Acta Vet. Scand. 1994. — Vol. 35. — P. 93−98.
  98. Galfre G., Howe S.C., Milstein C. Antibodies to major histocom-patibility antigens produced by hybrid cell lines // Nature. 1977. — Vol. 266. — P. 550 552.
  99. Genus- and species-specific identification of Mycoplasmas by 16S rRNA amplification / Kuppeveld F.J.M. et al. // Appl. Envir. Microbiol- 1992. -Vol. 58.-P. 2606−2615.
  100. Global transcriptional analysis of Mycoplasma hyopneumoniae following exposure to hydrogen peroxide / E.R. Schafer et al. // Microbiology. 2007. -Vol. 153.-P. 3785−3790.
  101. Gundersen D.E., Lee I.M., Davis R.E. Phylogeny of mycoplasma like organisms: a basis for their classification // J. Bacteriol. 1994. — Vol. 176. — P. 5244−5254.
  102. Halbur P.G. Emerging and recurring diseases in growing pigs. 2001. — P. 435−437.
  103. Harasawa R., Asada K., Kato I. A novel repetitive sequence from Mycoplasma hyopneumoniae II J. Vet. Med. Sei. 1995. — Vol. 57. — P. 557 558.
  104. Holko J., Urbanova J., Holkova T. Diagnostics of main bacterial agents of porcine respiratory diseases complex (PRDC) using PCR detection of Mycoplasma hyopneumoniae II Vet. Med. 2004. — Vol. 49. — P. 35−41.
  105. Hsu T., Artiushin S., Minion F.C. Cloning and functional analysis of the P97 swine cilium adhesion gene of Mycoplasma hyopneumoniae II J. Bacteriol. -1997.-Vol. 179.-P. 1317−1323.
  106. Hsu T., Minion F.C. Identification of the cilium binding epitope of the Mycoplasma hyopneumoniae P97 adhesin // Infect. Immun. 1998. — Vol. 66. -P. 4762−4766.
  107. Humoral immune response to Mycoplasma hyopneumoniae in sows and offspring following an outbreak of mycoplasmosis / P. Wallgren et al. // Vet. Microbiol. 1998. — Vol. 60. — P. 193−205.
  108. Identification and characterization of cytopathogenic Mycoplasma hyorhinis from swine farms with a history of abortions /"J.H. Shin et al. // J. Vet. Med. Sei. 2003. — Vol. 65. — P. 501−509.
  109. Identification and mapping of immunogenic region of Mycoplasma hyopneumoniae P65 surface lipoprotein expressed in Escherichia coli from a cloned genomic fragment / Kim M. F. et al. // Infect. Immun. 1990. — Vol. 58.-P. 2637−2643.
  110. Immune response of gnotobiotic piglets against Mycoplasma hyopneumoniae / J. Muneta et al. // J. Vet. Med. Sei. 2008. — Voll 70. — P. 1065−1070.
  111. Immunoblot assays using recombinant antigens- for the detection of Mycoplasma hyopneumoniae antibodies / S. Subramaniam et al. // Vet. Microbiol: 2000. — Voli 75: — P. 99−106.
  112. Immunoblotting analysis of antibody response in swine experimentally inoculated with Mycoplasma hyopneumoniae / Y. Mori // Vet. Immunol. Immunopathol. 1988. — Vol. 19. — P. 239−250.
  113. Immunological and pathological reactions in piglets experimentally infected with Mycoplasma hyopneumoniae and/or Mycoplasma flocculare / M. Strasser et al. // Vet. Immun. Immunopathol. 1992. — Vol. 31. — P. 141−153.
  114. Isolation, identification and diversity of Mycoplasma hyopneumoniae strains / T. Stakenborg et al. // Enzootic Diseases. 2002. — Vol. 4. — P. 459 463.
  115. Isolation of Mycoplasma hyopneumoniae from different sampling sites in experimentally infected and contact SPF piglets / C. Marois et al. // Vet. Microbiol. 2007. — Vol. 120. — P. 96−104.
  116. General properties of mollicute genomes / P. Sirand-Pugnet et al.,// Res. Microbiol. 2007. — Vol. 158 — P. 754−766.
  117. Jang E.J., Kim T.J. In vitro expression of the 50-kDa and 30-kDa fragments of the P97 adhesin of Mycoplasma hyopneumoniae in Escherichia coli and their use for serodiagnosis // Can. J. Vet. Res. 2007. — Vol. 71. — P. 278−282.
  118. Kapur V., Elam M.R., Pawlovich T.M. Genetic variation in porcine reproductive and respiratory syndrome virus isolates in the midwestern United States / // J. Gen. Virol. 1996. — Vol. 77. — P. 1271−1276.
  119. Kazama S., Yagihasshi T., Morita T. Isolation of Mycoplasma hyorhinis and Mycoplasma argininvtrom the ears of pigs with otitis media // Res. Vet. Sci. — 1994.-Vol. 56.-P. 108−110.
  120. Keffaber K. K. Reproductive failure of unknown etiology // Am. Assoc. Swine Pract. Newslatter. 1989. — Vol. 1. — P. 1−9.
  121. Kleven S.H. Mycoplasmas in the Etiology of Multifactorial Respiratory Disease // Poultry Sci. 1998. — Vol. 77, № 8. — P. 1146−1149.
  122. Kobish M., Friis N.M. Swine mycoplasmoses // Rev. Sci. Off. Int. Epizoot. -1996.-Vol. 15.-P. 1569−1606.
  123. Kohne K., Huebert P. Mixed respiratory infections associated with the porcine respiratory disease complex detected with multiplex-PCR // Proceeding 19th Int. Congr. Pigs Vet. Soc. 2006. — P. 313.
  124. Koostra W., Adams J., Smith P. In vitro selection and identification of antibiotic-resistant Mycoplasma mutants // J. Bacteriol. 1966. — Vol. 91, № 6.-P. 23−86.
  125. Kwon D., Chae C. Detection and localization of Mycoplasma hyopneumoniae DNA in lungs from naturally infected pigs by in situ hybridization using a digoxigenin-labeled probe // Vet. Pathol. 1999. — Vol. 36.-P. 308−313.
  126. Kwon D., Choi C., Chae C. Chronologic localization of Mycoplasma hyopneumoniae in experimentally infected pigs // Vet. Pathol. 2002. — Vol. 39.-P. 584−587.
  127. Landis J. R., Koch G. G. The measurement of observer agreement for categorical data // Biometrics. 1977. — Vol. 33. — P. 159−174.
  128. Levonen K. The detection of respiratoiy diseases in swine herds by means of antibody assay on colostrum from sows: acad. diss. / Faculty of Veterinary Medicine of the University of Helsinki. Helsinki, 2000. — 91 p.
  129. Loreto E.L.S., Ortiz M.F., Porto J.I.R. Insertion sequences as variability generators in the Mycoplasma hyopneumoniae and Mycoplasma synoviae genomes // Gen. Molec. Biol. 2007. — Vol. 30. — P. 283−289.
  130. Madden D.L., McCullough N.B. Basic biological characteristics of Mycoplasma// J. Am. Vet. Med. Assoc. 1967. — № 151. — P. 16−38.
  131. Maes D., Segales J., Meyns T. Control of Mycoplasma hyopneumoniae infections in pigs // Vet. Microbiol. 2007. — Vol. 126. — P. 297−309.
  132. Microorganisms associated with pneumonia in slaughter weight swine / R.B. Morrison et al. // Can. J. Comp. Med. 1985. — Vol. 49. — P. 129−137.
  133. Minion C.F. Molecular pathogenesis of mycoplasma animal respiratory pathogens // Frontiers Biosci. 2002. — Vol. 7. — P. 1410−1422.
  134. Minion C.F., Lefkowitz E.J., Madsen M.L. The genome sequence of Mycoplasma hyopneumoniae strain 232, the agent of swine mycoplasmosis // J. Bacteriol. 2004. — Vol. 186. — P. 7123−7133.
  135. Mitochondrial activities in human cultured skin fibroblasts contaminated by Mycoplasma hyorhinis / N. Darin et al. // BMC Biochem. 2003. — Vol. 4. -P. 15.
  136. Mori Y., Hamaoka T., Sato S. Use of monoclonal antibody in an enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for the detection of antibodies against Mycoplasma hyopneumoniae // Isr. J. Med. Sei. — 1987. Vol. 23. — P. 657−662.
  137. Mrazek J. Analysis of distribution indicates diverse functions of simple sequence repeats in mycoplasma genomes // Molec. Biol. Evol. 2006. — Vol. 23.-P. 1370−1385.
  138. Mycoplasma diseases of animals / J.W. Simeska et al. // Mycoplasmas: Molecular Biology and Pathogenesis / ed. J. Maniloff [et al.]. Washington, 1992.-P. 391−415.
  139. Mycoplasma hyopneumoniae increases intracellular calcium release in porcine ciliated tracheal cells / S-C. Park et al. II Infect. Immun. 2002. -Vol. 2.-P. 126−129.
  140. Mycoplasma hyopneumoniae infection in pigs: duration of the disease and evaluation of fout diagnostic assays / V. Sorensen et al. // Vet. Microbiol. -1997.-Vol. 54.-P. 23−34.
  141. Mycoplasma hyorhinis in Taiwan: Diagnosis and isolation of swine pneumoniae pathogen / J.H.Lin et al. // Vet. Microbiol. 2006. — Vol. 115. -P. 111−116.
  142. Mycoplasmas: molecular biology and pathogenesis / J.S. Ellison et al. Am. Soc. Microbiol. 1992. — P. 491−504.
  143. O.I.E. WAHID, 2007. URL: www/oie.int/wahis/public.php?page=home.
  144. Patterns of Mycoplasma hyopneumoniae infections in Belgian farrow-to-finish pig herds with diverging disease-course / J. Vicca et al. // J. Vet. Med. Ser. B. 2002. — Vol. 39. — P. 349−353.
  145. PCR-based detection of Mycoplasma species / H. Okada et al. // J. Microbiol. 2005. — Vol. 44. — P. 42−49.
  146. Pollack J.D., Wiliams M.V., Banzon J. Comparative metabolism of Mesoplasma, Entomoplasma, Mycoplasma and Acholeplasma II Int. J. Syst. Bacteriol. 1996. — Vol. 46. — P. 885−890.
  147. Polymerase chain reaction for Mycoplasma detection in tracheobronchiolar washings from pigs / B. Blanchard et al. // Mol. Cell Probes. 1996. — Vol. 10.-P. 15−22.
  148. Pommier P., Pagot E., Keita A. Epidemiological study of porcinereproductive and respiratory syndrome virus in French farrowing-to-finishing>herds // Proceedings 4l Int. Symp. Emerging and Re-emerging Pig Dis. — Rome, 2003.-P. 62−63.
  149. Prevalence of respiratory diseases and their association with growth rate and space in randomly selected swine herds / M.R. Wilson et al. // Can. J. Vet. Res. 1986. — Vol. 50. — P. 209−216.
  150. Proceedings of the 30th-Annual Meeting of the American Association of Swine Practitioners: Abstracts. St. Louis, 2007. — 540 p.
  151. Protein and antigenic variability among Mycoplasma hyopneumoniae strains by SDS-PAGE and immunoblot / P. Assuncao, C. De la Fe, A.S. Ramirez, O. Gonzales Llamazares // Vet. Res. Commun. 2005. — Vol. 29. — P. 563−574.
  152. Protein variability among Mycoplasma hyopneumoniae isolates / D. Calus et al. // Vet. Microbiol. 2007. — Vol. 120. — P. 284−291.
  153. Rapid detection of mycoplasma contamination in cell cultures using SYBR Green-based real-time polymarese chain reaction / Y. Tshikawa et al. // In vitro Cell Dev. Biol. Anim. 2006. — Vol. 42. — P. 63−69.
  154. Rapid serological profiling by enzyme-linked immunosorbent assay. Comparison of computation methods for measuring antibody titers in a single serum dilution / D. B. Snyder et. al. // Avian Dis. 1982. — Vol. 27, № 2. — P. 474−484.
  155. Rapp-Gabrielson V. Evaluation of duration of immunity after vaccination ofswine with a single dose of Mycoplasma hyopneumoniae bacterin (M+Pac) // Proceedings Am. Swine Vet.: Annual Meeting. 2002. — P. 105.
  156. Rasin S. Characteristics of the mycoplasmas as a group // Meth. Mycoplasmol. N. Y. — 1983. — P. 3−7.
  157. Rautiainen E.J. Mycoplasma hyopneumoniae aspects of epidemiology, protection and control: acad. diss. / Faculty of Veterinary Medicine of the University of Helsinki, 2001.- 106 p.
  158. Razin S., Freundt E.A. The Mollicutes, Mycoplasmatales and Mycoplasmatacae // Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology / ed. N. Krieg, J.G. Holt.-Baltimore- London, 1984. Vol. 1. — P. 740−793.
  159. Razin S. The genera*Mycoplasma, Ureaplasma, Acholeplasma, Anaeroplasma and Asteroplasma // The Prokaryotes / ed. A. Balows. N. Y., 1991. — P. 19 371 959.
  160. Razin S., Yogev D., Naot Y. Molecular biology and pathogenicity of mycoplasmas //Microbiol. Mol. Biol. Rev. 1998. — Vol. 64. — P. 1094−1156.
  161. Real-time PCR based on SYBR-Green I fluorescence: an alternative to the TaqMan assay for a relative quantitation of gene rearrangements, gene amplifications and micro gene deletions / F. Ponchel et al. // BMC Biotechnol. -2003.-Vol.3.-P. 1−13.
  162. Reiterated repeat region variability in the ciliary adhesion gene of Mycoplasma hyopneumoniae / J.L. Wilton et al. // Microbiol. 1998. — Vol. 144.-P. 1931−1943.
  163. Rolle M. Bakterien ohne Zellwand, Mykoplasmen // Medizinische Microbiologie, Infektions- und Seuchenlehre. 6 Auflage. — Stuttgart, 1993. -P. 797−810.
  164. Ruiz A., Galina 1., Pijoan C. Mycoplasma hyopneumoniae colonization of pigs sired by different boars // Can. J. Vet. Res. 2002. — Vol. 66. — P. 79−85.
  165. Schmidt J.A., Browning G.F., Markham P.F. Mycoplasma hyopneumoniae p65 surface lipoprotein is a lipolytic enzyme with a preference for shorter-chain fatty acids // J. Bacteriol. 2004. — Vol. 186. — P. 5790−5798.
  166. Schwartz K. Pathological diagnosis of mycoplasmosis in swine // Swine Mycoplasmal Pneumonia Technical Workshop, Kansas City, MO, FDA/CVM. -2002.
  167. Sensitive detection of mycoplasmas in cell cultures by using two-step polymerase chain reaction / R. Harasawa et al. // J. Vet. Med. Sei. 1993. — P. 227−232.
  168. Seroepidemiology of M. hyopneumoniae in pigs from farrow-to-finish farms /E.A. Leon et al. //Vet. Microbiol. 2001. — Vol. 78. — P. 331−341.
  169. Shoukri M. N., Edge V.L. Statistical Methods for Health Sciences. N. Y.: CRC Press Inc., 1996.
  170. Sibila M., Olvera A., Calsamiglia M. Development of a real-time PCR (TaqMan) assay for Mycoplasma hyopneumoniae detection and quantification
  171. Proceedings 18th IPVS Congr., Hamburg, Germany. 2004. — Vol. 1. — P. 1568−1578.
  172. Sieverding E. Handbuch Gesunde Schweine. Osnabruck, 2000. — P. 176 179.
  173. Stark K.D., Keller H., Eggenderger E. Risk factors for the reinfection of specific pathogen free breeding herds with enzootic pneumoniae // Vet. Ree. — 1992.-Vol. 131.-P. 532−535.
  174. Stark K.D., Nicolet J., Frey J. Detection of Mycoplasma hyopneumoniae by air sampling with a nested PCR assay // Appl. Envir. Microbiol. 1998. — Vol. 64. — P. 543−548.
  175. Stemke G.W., Robertson J.A. The growth response of Mycoplasma hyopneumoniae and Mycoplasma flocculare based upon ATP-dependent luminometry // Vet. Microbiol. 1990. — Vol. 24. — P. 135−142.iL
  176. Stevenson G.W. Bacterial pneumoniae in swine // Proc. 15 IPVS Congress. -1998.-P. 11−20.
  177. Stipkovits L. Isolation and pathogenecity of mycoplasmas from geese // Ann. Microbiol. (Inst. Pasteur). 1984. — № 135A. — P. 91.
  178. Swine and poultry pathogens: the complete genome sequences of two strains of Mycoplasma hyopneumoniae and a strain of Mycoplasma synoviae / A.T.R. Vasconcelos, H.B. Ferreira, C.V. Bizarro, S.L. Bonatto // J. Bacteriol. 2005. -Vol. 187.-P. 5568−5577.
  179. Thacker E.L., Thacker B.J. MH and PRRS in the Finisher // American Association of Swine Practitioners. 1999.-P. 145−146.
  180. Thacker E.L., Thacker B., Minion F.C. Development of improved diagnostic PCR assays for Mycoplasma / College of Veterinary Medicine Iowa State University Ames.
  181. Thacker E.B. Factors affecting the efficacy of the Mycoplasma hyopneumoniae vaccine / Veterinary Medical Research Institute, Iowa State University.
  182. Thacker E.L. Diagnosis of Mycoplasma hyopneumoniae // J. Swine Health Prod. 2004. — Vol. 12. — P. 252−254.
  183. The transmission of Mycoplasma hyopneumoiae between sow and piglets during the first 14 days of piglets life / E. Rautianien et al. // 15th Congr. Int. Pig Vet. Soc. Birmingham, 1998. — P. 250.
  184. Ultrastructural observation of the airways of recovered and susceptible pigs after inoculation with Mycoplasma hyopneumoniae / L.F. Irigoyen et al. // Pesq. Vet. Bras. 1998. — Vol. 18. — P. 135−141.
  185. Uphoff C.C., Drexler H.G. Detection of mycoplasma contaminations in cell cultures by PCR analysis II Hum. Cell. 1999. — Vol. 12. — P. 229−236.
  186. URL: www.mcxpx.ru/basegvc/vetzac/document/351.html/
  187. Use of a Mycoplasma hyopneumoniae nested polymerase chain reaction test to determine the optimal sampling sites in swine / K.T. Kurth et al. // J. Vet. Diagn. Invest. 2002. — Vol. 14. — P. 463−469.
  188. Use of a novel serum ELISA method and the tonsil-carrier state for evaluation of Mycoplasma hyosynoviae distributions in pig herds with or without clinical arthritis / E. O. Nielsen et al. // Vet. Microbiol. 2005. — Vol. 111. — P. 41−50.
  189. Variable number of tandem amino acid repeats in adhesion-related CDS products in Mycoplasma hyopneumoniae strains / L.A. de Castro et al. // Vet. Microbiol. 2006. — Vol. 116. — P. 258−269.
  190. Veilleux C., Razin S., May L.H. Detection of mycoplasma infection by PCR // Molecular and Diagnostic Procedures on Mycoplasmology. — 1996. Vol. 2. -P. 431−438.
  191. Vengust G., Valencak Z., Bidovec A. A serological survey of selected pathogens in wild boar in Slovenia // J. Vet. Med. Ser. B. 2006. — Vol. 52. — P. 24−27.
  192. Vicente J., Leon-Vizcaino L., Gortazar C. Antibodies to selected viral and bacterial pathogens in European wild boars from southcentral Spain // J. Wildl. Dis. 2002. — Vol. 38. — P. 649−652.
  193. Welsh J., McClelland M. Genomic fingerprints produced by PCR with consensus tRNA gene primers // Nucleic Acids Res. 1991. — Vol. 19. — P. 861−866.
  194. Woeste K., Grosse Beilage E. Transmission of agents of the porcine respiratory disease complex between swine herds // Dtsch. Tieravztl. Wochenschr. 2007. — Bd. 114. — P. 364−366.
  195. Yagihashi T., Kazama S., Tajima M. Seroepidemiology of mycoplasmal pneumonia of swine in Japan as surveyd by an enzyme-linked immunosorbent assay //Vet. Microbiol. 1993. — Vol. 34. — P. 155−166.
  196. Zimmermann W., Tshudi P., Nicolet J. ELISA-Serologie in Blut und Kolostralmilch: eine Moglichkeit zur Uberwachung der enzootischen Pneumoniae (EP) in Schweine-Bestanden// Schweiz. Arch. Tierheilk. 1986. -Bd. 128.-P. 299−306.
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?