Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Широта циркуляции плесневых грибов среди пациентов и в больничной среде детского стационара, пути оптимизации дезинфекционных мероприятий

Диссертация: Широта циркуляции плесневых грибов среди пациентов и в больничной среде детского стационара, пути оптимизации дезинфекционных мероприятий
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Эпидемиологический надзор за внутрибольничными микозами в практических условиях фактически не организован. Пациенты ЛПУ не обследуются на плесневые грибы, а микологический мониторинг больничной среды ориентирован лишь на оценку микробной контаминации воздуха отдельных помещений ЛПУ (родильных залов, процедурных, перевязочных, реанимационных, палат хирургических отделений, детских палат). Причем… Читать ещё >

Содержание

  • Общая характеристика работы
  • Глава 1. Эпидемиологические особенности внутрибольничных плесневых микозов и проблемы эпидемиологического надзора и контроля (обзор данных литературы)
    • 1. 1. Проявления эпидемического процесса внутрибольничных плесневых микозов
    • 1. 2. Механизм развития и факторы риска эпидемического процесса внутрибольничных плесневых микозов
    • 1. 3. Проблемы эпидемиологического надзора и контроля за внутрибольничными плесневыми микозами
  • Глава 2. Материалы и методы
    • 2. 1. Материалы
    • 2. 2. Методы
  • Глава 3. Широта и закономерности циркуляции плесневых грибов среди пациентов и в больничной среде детского стационара онкогематологического и пульмонологического профиля
    • 3. 1. Инфицированность пациентов детского стационара плесневыми грибами и заболеваемость плесневыми микозами
    • 3. 2. Распространенность плесневых грибов в больничной среде детского стационара

    Глава 4. Оценка устойчивости внутрибольничных штаммов плесневых грибов к дезинфектантам и эффективность некоторых методов противоплесневой обработки воздушной среды лечебно-профилактических учреждений.

    4.1. Оценка устойчивости плесневых грибов, изолированных из больничной среды, к действию некоторых дезинфицирующих препаратов.

    4.2. Эффективность противоплесневой аэрозольной дезинфекции воздуха вентиляционных систем лечебно-профилактических учреждений с помощью переносного генератора холодного тумана с использованием дезинфицирующих препаратов «Тефлекс» и «Амиксидин».

    4.3. Эффективность озонирования воздуха больничного помещения в отношении плесневых грибов.

    Обсуждение результатов и заключение.

    Выводы.

Широта циркуляции плесневых грибов среди пациентов и в больничной среде детского стационара, пути оптимизации дезинфекционных мероприятий (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

В последние десятилетия во всем мире отмечается рост числа внутрибольничных инфекций, обусловленных плесневыми грибами родов Aspergillus, Penicillium и др. Предполагается, что одной из причин этого является увеличение числа больных с иммуносупрессией различного генеза вследствие повсеместного применения антибиотиков, гормональных препаратов, лучевой и химиотерапии, ухудшения экологической обстановки [7, 92].

Возрастающая проблема микозов в стационарах в последние годы подтверждается многочисленными исследованиями отечественных и зарубежных авторов, которые единодушно отмечают высокий риск возникновения нозокомиальных грибковых инфекций в отделениях интенсивной терапии (ОИТ), ожоговых, онкологических, гематологических, инфекционных, травматологических отделениях, родильных домах, отделениях патологии новорожденных, трансплантации органов и ВИЧ-инфекции [14,16,27,29]. Авторы подчеркивают, что это создает серьезные проблемы для больных, их семей, персонала и наносит большой экономический ущерб.

Между тем очень многие вопросы эпидемиологии внутрибольничных плесневых микозов остаются неясными. В отличие от заболеваемости внутрибольничными плесневыми микозами инфицированность микромицетами пациентов различных типов лечебно-профилактических учреждений (ЛПУ) остается почти неизученной. Соответственно неясными остаются и проявления скрыто протекающего эпидемического процесса плесневых микозов, такие как группы риска и внутригодовая динамика инфицированности. Работы в части оценки связи заболеваемости пациентов с контаминацией микромицетами больничной среды единичны.

36,75,113] и противоречивы. Роль человека как возможного источника возбудителя плесневых микозов в условиях ЛПУ остается дискуссионной.

Многие из выпускаемых дезинфицирующих средств не тестированы в отношении плесневых грибов. Поэтому требуется поиск таких дезинфицирующих препаратов, которые обладали бы выраженным фунгицидным действием и могли бы быть рекомендованы для эффективной противоплесневой обработки больничной среды. Не исключено, что длительно циркулирующие в ЛПУ микромицеты могут выработать устойчивость к используемым дезинфектантам. Между тем результаты изучения устойчивости к дезинфектантам микромицетов, циркулирующих в ЛПУ, представлены лишь в единичных сообщениях [60, 62,63].

Учитывая аэрозольный механизм передачи возбудителей плесневых микозов, особое внимание должно придаваться дезинфекционной обработке воздуха больничных помещений, в т. ч. воздуха вентиляционных систем. Технология аэрозольной дезинфекции вентиляционных систем разработана [48], но в отношении плесневых грибов она пока что не апробирована. Нет четких рекомендаций и по применению конкретных фунгицидных средств для обеззараживания воздуха в системах вентиляции ЛПУ.

Одним из доступных для медицинского персонала методов антибактериальной дезинфекции воздуха может быть озонирование [68,70], в основу которого положена методика генерирования озона из кислорода воздуха помещения. Вместе с тем в литературе отсутствуют сведения об эффективности озонирования воздуха в отношении плесневых грибов.

Эпидемиологический надзор за внутрибольничными микозами в практических условиях фактически не организован. Пациенты ЛПУ не обследуются на плесневые грибы, а микологический мониторинг больничной среды ориентирован лишь на оценку микробной контаминации воздуха отдельных помещений ЛПУ (родильных залов, процедурных, перевязочных, реанимационных, палат хирургических отделений, детских палат) [18]. Причем при исследовании воздуха определяется только общий уровень грибов без расшифровки их родовой и видовой принадлежности. До настоящего времени в Российской Федерации отсутствуют методические документы, регламентирующие эпидемиологический надзор и контроль за внутрибольничными плесневыми микозами.

Цель исследования.

Целью настоящей работы явилась оценка широты циркуляции плесневых грибов среди пациентов и в больничной среде детского стационара и некоторых методов дезинфекционной обработки воздуха помещений.

Основные задачи работы.

1. Изучить широту циркуляции плесневых грибов среди пациентов и в больничной среде стационара онкогематологического и пульмонологического профиля по результатам микологических исследований биоматериала от больных, проб воздуха и смывов с объектов внешней среды.

2. По данным историй госпитализированных детей оценить встречаемость клинически выраженных плесневых микозов у детей с онкогематологической и пульмонологической патологией.

3. Изучить устойчивость штаммов плесневых грибов {Aspergillus flavus, Aspergillus amstelodami, Aspergillus rugulosus, Cladosporium cladosporioides и Penicillium chrysogenum), изолированных из больничной среды, к некоторым четвертично-аммониевым и гуанидинсодержащим дезинфицирующим препаратам («Амиксан».

Амиксидин", «Диабак», «Лизоформин специаль», «Дезофран», «Тефлекс»).

4. Апробировать метод аэрозольной противоплесневой дезинфекции воздуха вентиляционной системы лечебно-профилактических учреждений с помощью переносного генератора холодного тумана «Турбофоггер» с использованием дезинфицирующих препаратов «Тефлекс» и «Амиксидин».

5. Оценить эффективность метода озонирования воздуха больничного помещения в отношении плесневых грибов при естественной и повышенной относительной влажности воздуха.

Научная новизна.

Впервые на примере детского стационара изучена инфицированность плесневыми грибами пациентов разного профиля. Установлено несоответствие групп риска инфицированности плесневыми грибами (пациенты пульмонологического отделения с муковисцидозом) и заболеваемости плесневыми микозами (пациенты онкологического отделения, страдающие лимфобластным лейкозом).

Обнаружено, что частота выделения микромицетов из воздуха помещений нарастает в весенние и летние месяцы, тогда как инфицированность детей увеличивается в холодный период года.

Выявлена устойчивость штаммов плесневых грибов, циркулирующих в больничной среде лечебно-профилактических учреждений, к рабочим растворам ряда четвертично-аммониевых и гуанидинсодержащих дезинфицирующих препаратов.

Впервые проведена оценка эффективности аэрозольной противоплесневой дезинфекции воздуха вентиляционной системы лечебно-профилактических учреждений с помощью переносного генератора холодного тумана «Турбофоггер». При этом установлено противоплесневое действие дезинфицирующих средств «Тефлекс» гуанидинсодержащий препарат) и «Амиксидин» (сочетание ЧАС и гуанидина).

Впервые изучена эффективность озонирования воздуха больничного помещения в отношении плесневых грибов. Выявлен противоплесневой эффект озонирования воздушной среды при повышенной влажности воздуха.

Практическая значимость работы.

Результаты работы могут быть положены в основу разработки системы эпидемиологического надзора за внутрибольничными плесневыми микозами, а также использованы при организации противоплесневых дезинфекционных мероприятий в ЛПУ.

Внедрение результатов в практику.

Материалы исследования использованы при подготовке регионального информационно-методического письма «Основные пути повышения эффективности мероприятий по профилактике внутрибольничных плесневых микозов» (Пермь, 2010 г.).

С учетом полученных в работе новых данных и в связи с необходимостью организации эпидемиологического надзора за плесневыми микозами по инициативе автора на базе микробиологической лаборатории ФГУЗ «Центр гигиены и эпидемиологии в Пермском крае» впервые организовано микологическое отделение, ориентированное на изучение широты циркуляции плесневых грибов среди пациентов и в больничной среде лечебно-профилактических учреждений, а также устойчивости штаммов микромицетов, циркулирующих в лечебно-профилактических учреждениях, к дезинфицирующим средствам.

Результаты работы учитываются специалистами учреждений Роспотребнадзора Пермского края при осуществлении государственного надзора за учреждениями, осуществляющими медицинскую деятельность.

Полученные материалы используются в учебном процессе додипломного (студенты) и последипломного (интерны, ординаторы, врачи) образования на кафедрах эпидемиологии и гигиены питания ГОУ ВПО ПГМА им. ак. Е. А. Вагнера Росздрава.

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Среди пациентов онкологического, гематологического и пульмонологического отделений детской больницы широко циркулируют плесневые грибы, инфицирование которыми нередко носит внутрибольничный характер. Группами риска инфицированности плесневыми грибами являются пациенты пульмонологического отделения с муковисцидозом, а заболеваемости — пациенты онкологического отделения, страдающие лимфобластным лейкозом. Частота выделения микромицетов из воздуха помещений нарастает в летние месяцы, инфицированность детей — в зимние.

2. Штаммы плесневых грибов, выделенные из внешней среды лечебно-профилактических учреждений, устойчивы к рабочим растворам ряда четвертично-аммониевых и гуанидинсодержащих дезинфицирующих препаратов. Аэрозольная дезинфекция воздуха вентиляционных систем лечебно-профилактических учреждений с применением дезинфицирующих средств «Тефлекс» (гуанидинсодержащий препарат) и «Амиксидин» (сочетание четвертично-аммониевых соединений и гуанидина) и генератора холодного тумана «Турбофоггер», а также озонирование воздуха больничных помещений обеспечивают достоверное снижение концентрации плесневых грибов.

Апробация работы.

Материалы диссертации доложены и обсуждены на пленарных заседаниях Пермского краевого отделения Всероссийского научнопрактического общества эпидемиологов, микробиологов и паразитологов (2008,2010 г.), заседании круглого стола «Проблемы борьбы с внутрибольничными микозами, вызываемыми плесневыми грибами» XV международной выставки «Медицина и здоровье — 2009» (г.Пермь, 2009), итоговых совещаниях эпидемиологов, микробиологов и паразитологов Пермского края (2008, 2009), заседании Коордиционно-методического совета при МЗ Пермского края и Управлении Роспотребнадзора по Пермскому краю (2010г.), съезде военных врачей медико-профилактического профиля (С-Петербург, 2010 г.).

Публикации. Научные положения, изложенные в диссертации, отражены в 13 работах, опубликованных в 2008 — 2010 гг., из них в рекомендуемых ВАК журналах — 8.

выводы.

1. Выявлена широкая циркуляция плесневых грибов среди пациентов онкологического, гематологического и пульмонологического отделений детского стационара. По результатам исследования проб из носа и зева, инфицированность больных в группе однократно обследованных в целом составила 19,3 ±3,1%, двукратно — 53 ± 6,1%. Установлено, что заражение плесневыми грибами пациентов детской больницы нередко носит внутрибольничный характер, что подтверждается: совпадением пейзажа микромицетов, изолированных от пациентов и из больничной среды детского стационараувеличением частоты контаминации пациентов грибами соответственно продолжительности основного заболевания и количеству госпитализацийпоявлением клинически выраженного аспергиллеза легких у детей после длительного (свыше месяца) пребывания в стационаре, отсутствием существенных различий между частотой поражения плесенью квартир инфицированных и неинфицированных микромицетами детей.

2. Максимально инфицированными плесневыми грибами оказались дети пульмонологического отделения детской больницы, в этом же отделении выявлена и наиболее контаминированная микромицетами больничная среда. Подтверждено, что использование кондиционера в помещениях лечебно-профилактических учреждений уменьшает количество спор микромицетов как в воздушной среде, так и на предметах окружающей обстановки.

3. Выявлено несовпадение групп риска инфицированности плесневыми грибами и заболеваемости плесневыми микозами. В условиях детского стационара группой риска инфицирования аспергиллами оказались пациенты пульмонологического отделения с муковисцидозом, а группой заболевания легочным аспергиллезом — пациенты онкологического отделения, страдающие лимфобластным лейкозом.

4.0бнаружены различия во внутригодовой динамике инфицированности пациентов детского стационара плесневыми грибами и грибковой контаминации воздуха больничной среды. Частота выделения микромицетов из воздуха помещений нарастает в весенний и летний месяцы, тогда как инфицированность детей увеличивается в холодный период года.

5.Штаммы плесневых грибов, циркулирующих в больничной среде лечебно-профилактических учреждений, оказались устойчивыми по отношению к рабочим растворам ряда четвертично-аммониевых и гуанидинсодержащих дезинфицирующих препаратов. Следовательно, для эффективной противоплесневой обработки объектов больничной среды в конкретном ЛПУ целесообразно предварительное изучение чувствительности циркулирующих в стационарах микромицетов к тем дезинфектантам, которые предполагается использовать.

6. Установлено противоплесневое действие дезинфицирующих средств «Тефлекс» (гуанидинсодержащий препарат) и «Амиксидин» (сочетание ЧАС и гуанидина) при аэрозольной обработке воздуха вентиляционных систем лечебно-профилактических учреждений с помощью генератора холодного тумана «Турбофоггер». Применение 4% раствора тефлекса в акушерском стационаре при расходе препарата 50 мл на 1 м³ и 60-минутной экспозиции без предварительной механической очистки внутренней поверхности воздуховодов привело через сутки к снижению количества плесневых грибов в 8 раз — с 54,9 ± 27,1 до 6,8 ± 3,5 КОЕ/м. Распыление 1,5% раствора амиксидина в онкогематологическом корпусе детской больницы при тех же параметрах расхода препарата и экспозиции дезинфекции с предварительной механической очисткой внутренней поверхности воздуховодов обеспечило снижение количества плесневых грибов в 10 разс 28,3 ± 17 до 2,8 ± 2,7 КОЕ/м3.

7. Выявлен противоплесневой эффект озонирования воздушной среды больничного помещения с помощью аппарата «ОЗДВ-РИОС» при повышенной влажности воздуха. При использовании режима работы озонатора, предусматривающего производительность выработки озона 2,85±0,85 г/час, время работы — 12 мин., дезинфекционную выдержку — 60 мин. в случае естественной 65%-ной через 60 мин., 180 мин. и 24 часа по сравнению с исходным уровнем не изменилась. При искусственной 80%-ной относительной влажности воздуха через 60 мин. после обработки концентрация плесневых грибов по сравнению с фоновым уровнем снизилась в 3,4 раза, через 180 мин. — в 4,5 раза, через 24 часа — в 7,2 раза.

Практические рекомендации.

1. Считать одним из направлений эпидемиологического надзора за внутрибольничными плесневыми микозами постоянный микологический мониторинг пациентов и больничной среды стационаров риска с определением рода, вида и концентрации изолированных микромицетов. Микологический мониторинг пациентов проводить с целью выявления групп риска инфицированности и случаев инвазивных микозов, микологический мониторинг больничной среды — для установления эпидемиологических связей и организации целенаправленных дезинфекционных и иных противоэпидемических мероприятий.

2. Для повышения эффективности противоплесневой обработки объектов больничной среды лечебно-профилактических учреждений осуществлять предварительное изучение чувствительности микромицетов, циркулирующих в конкретном стационаре, к тем дезинфектантам, которые предполагается использовать.

3. Использовать аэрозольную противоплесневую обработку воздуха вентиляционных систем лечебно-профилактических учреждений с помощью генераторов холодного тумана. Принять к сведению установленную при этом противоплесневую эффективность 1,5% раствора амиксидина и 4% раствора тефлекса при расходе 50 мл препаратов на 1 м³ воздуха и 60-минутной экспозиции.

4. Рекомендовать проведение противоплесневой обработки отдельных помещений лечебно-профилактических учреждений методом озонирования воздуха при условии искусственного создания повышенной влажности.

Показать весь текст

Список литературы

  1. , С.А. Фактор грибкового загрязнения зданий и его влияние на здоровье. Состояние проблемы / С. А. Алексаков, А. И. Мельникова // ЗНиСО.- 2003.- № 3. С.29−31.
  2. , В.Б. Концепция «Микозы как антропогенное очаговые заболевания»: теоретическое и практическое значение / В. Б. Антонов // Проб. мед. микол. 2005. — Т.7, № 2. — С.43.
  3. , P.A. Диагностика микозов / P.A. Аравийский, H.H. Климко, Н. В. Васильева СПб, 2004. — 186с.
  4. Безопасность работы с микроорганизмами III IV группы патогенности и возбудителями паразитарных инфекций. СП 1.3.232 208.
  5. , В.Д. Эпидемиология / В. Д. Беляков, Р. Х. Яфаев М., -1989.-415 с.
  6. , H.A. Эпидемиология внутрибольничного аспергиллеза (обзор)/ Н. А. Беляков, Т. С. Богомолова, Н. В. Васильева // Проб. мед. микол. 1999. — Т.1, № 4. — С.4−9.
  7. , H.A. Вклад микробиоты в процессы старения больничных зданий и ее потенциальная опасность для здоровья больных / H.A. Беляков, А. П. Щербо, Н. П. Блинов и др. // Проб. мед. микол. 2005. — Т.7, № 4. — С.3−12.
  8. , В.И. Определитель токсинообразующих микромицетов/ В. И. Билай, З. А. Курбацкая Киев: Наук.думка. — 1990. — 133 с.
  9. Биоповреждения больничных зданий и их влияние на здоровье человека / Под ред. А. П. Щербо, В. Б. Антонова СПб, МАПОб.2008. 232 с.
  10. П.Богомолова, Т. С. Этиология и эпидемиология нозокомиальных грибковых инфекций / Т. С. Богомолова, В. Я. Ильина // Проб. мед. микол. 2000. Т.2, № 2. — С.39−40.
  11. , Ю.В. Хронический инвазивный аспергиллез легких у больных в Санкт-Петербурге / Ю. В. Борзова, Е. А. Десятик, С. Н. Хостелиди и др. // Пробл. мед.микол. 2009. — Т.11, № 3. — С.20−25.
  12. , Л.Г. Микобиота различных локусов у детей с онкогематологическими заболеваниями в стадии интенсивного лечения / Л. Г. Воронина, С. М. Блинова // Пробл. мед.микол. 2009. -Т.11, № 3. — С.10−15.
  13. , С.А. Внутрибольничные микозы: актуальность проблемы и методы борьбы / С. А. Бурова // Стерилиз. и госпит. инф. 2008. — № 4 (10).-С. 41−44.
  14. , О.Д. «Тефлекс» новый полимерный антифунгальный дезинфектант / О. Д. Васильев, Д. А. Светлов, М. Г. Сдобнова // Пробл. мед. микол. — 2005. — Т.7, № 2. С.97−98.
  15. , Н.В. Микроорганизмы-контаминанты и патогены-индукторы процессов старения больничных зданий и помещений медицинского назначения, а также возбудители некоторых заболеваний людей / Н. В. Васильева, Н. П. Блинов СПб.: Коста.2009. 224 с.
  16. Гамиля, Мохаммед Абдо Сайд. Респираторные микоаллергозы и пневмомикозы у детей/ Гамиля Мохаммед Абдо Сайд / Автореф. дисс. канд. мед. наук.- СПб, 2000. 25с.
  17. Гигиенические требования к размещению, устройству, оборудованию и эксплуатации больниц, родильных домов и других лечебных стационаров. Сан Пин 2.1.3.1375−03.
  18. , Н.И. Особенности подбора и применения средств противогрибковой обработки в больничных зданиях / Н. И. Глушко, Е. В. Халдеева // Пробл. мед.микол. 2006. — Т.11, № 2. — С. 64 .
  19. , Н.П. Аспергиллезная инфекция- подходы к ее диагностике и лечению / Н. П. Блинов, B.C. Митрофанов, P.M. Чернопятова // Пробл. мед. микол.-2002.-Т.4, № 1.- С.4−15.
  20. Зуева, Л. П. Эпидемиология / Л. П. Зуева, Р. Х. Яфаев СПб.: Фолиант. 2006. — С.627−633.
  21. , В.Я. Эпидемиологические особенности микобиоты помещений различного профиля / В. Я. Ильина, С. М. Игнатьева // Пробл. мед. микол. 2006. — Т.8, № 2. — С.44.
  22. Инструкция по определению бактерицидных свойств новых дезинфицирующих средств. Утв. зам. нач. Главного сан-эпид. управления МЗ СССР. 1968. 14 с.
  23. , З.О. Нозокомиальные микозы: состояние и перспективы решения проблемы / З. О. Караев // Пробл. мед. микол. 2007. — Т.9, № 3. — С.21−23.
  24. , Т.Ю. Статистические методы в эпидемиологическом анализе / Т. Ю. Каспарова М.- Медикас. -1994. 35 с.
  25. , П.Н. Определитель патгенных, токсигенных и вредных для человека грибов / П. Н. Кашкин, М. Н. Хохряков, А. П. Кашкин -Ленинград, 1979. — 259 с.
  26. H.H. Микозы: диагностика и лечение. Рук-во для врачей / Климко H.H. М.,: Ви Джи Групп, 2008. — 336 с.
  27. Кирцидели, И. Ю. Микологический мониторинг воздуха городской среды Санкт-Петербурга/ И. Ю. Кирцидели, A.M. Иванова, Е. В. Богомолова // Пробл. мед. микол.- 2006. Т.8., № 2. — С.46−47.
  28. , H.H. Инвазивный аспергиллез у гематологических и онкологических больных /H.H. Климко //Онкогематология. 2006. -№ 1−2. — С.97−107.
  29. , Г. А. Инвазивный аспергиллез легких / Г. А. Клясова, H.A. Петрова // Терап. архив. 2005 г. — С. 1−8
  30. , Я.И. Описание двух случаев инвазивного аспергиллеза, вызванного Aspergillus niger V.Tiegh. (1986), контаминирующим жилые и производственные помещения / Я. И. Козлова, Ю. В. Борзова H.H. Климко // Проб. мед. микол. 2006. — Т.8, № 1. — С.16 -20.
  31. , Я.И. Микогенная аллергия у жителей помещений, пораженных микромицетами/ Я. И. Козлова // Автореф. дис. канд.мед.наук. С-Пб. -2008.- 22 с.
  32. А.П. Справочник по антисептике/ А. П. Красильников Минск. 1995.- 367 с .
  33. , Д.В. Комплексный подход к противоплесневым обработкам в J111 У/ Д. В. Краюхин, A.A. Голубкова, A.M. Грибанова //Вест. Рос. BMA. 2008. Прил.2 (22). 4.1. — С. 15−20.
  34. Лабораторная диагностика микозов, вызванных плесневыми грибами. Метод, реком. Ленингр. госуд. ордена Ленина и ордена Октябрьской революции инстит. усоверш. врачей им. С. М. Кирова под ред. Караева З. О. Л., — 1986i — 31с.
  35. , B.C. Микромицеты из зева пациентов и внутрибольничных аэрозолей многопрофильной больницы г Волгограда / B.C. Лесовой, Л. Н. Ступенко, И. В. Новицкая // Пробл. мед. микол. 2000. — Т. 2, № 2. — С.37.
  36. , И.Ю. Природная очаговость болезней: развитие концепции к исходу века/ И. Ю. Литвин, Э. Ю. Коренберг // Природная очаговость болезней: исследования Института им. Н. Ф. Гамалеи РАМН. Сб.тр. под ред. Э. И. Коренберга.- М. 2003. -С. 12−34.
  37. , A.A. Клиника, диагностика и лечение инвазивного аспергиллеза у детей с онкологическими заболеваниями. Рук-во для врачей / A.A. Масчан //М., -2006. С.49−51.
  38. , В.М. Влияние диссиминации грибов и их метаболитов в жилищной среде на здоровье населения (обзор) / В. М. Масюк // Пробл. мед. микол. 2005. — Т.7, № 1. — С. 14- 18.
  39. Методы испытаний дезинфекционных средств для оценки их безопасности и эффективности. М., 1998. — 28 с.
  40. Микробиологический мониторинг производственной среды. Метод, указан. Федер. центра Госсанэпиднадзора МЗ России М., 1999. — 32 с.
  41. , Т.Г. Современные подходы к оценке биомассы и продуктивности грибов и бактерий в почве / Т. Г. Мирчинк, Н. С. Паников // Успехи микробиол. 1985. -Т.20. — С. 26−29.
  42. , B.C. Аспергиллез легких / В. С. Митрофанов, Е. В. Свирщевская СПб.: Фолиант. 2005. — 144 с.
  43. , B.C. Вторая конференция «Успехи в борьбе против аспергиллеза» Афины. Греция. 22−25 февраля, 2006 (обзор)/
  44. B.С.Митрофанов, Т. С. Богомолова //Пробл. мед. микол. 2006. -Т.8, № 4.- С.53−55.
  45. Молекулярная клиническая диагностика. Методы / Под ред.
  46. C.Херрингтона и Дж.Макги. М.: Мир. — 1999. — 558 с.
  47. Определение вредных веществ в сварочном аэрозоле (твердая фаза и газы). Метод, указания, утв. МЗ СССР 22.12.1988 г. № 4945−88. 163 с.
  48. Основы инфекционного контроля. Практическое руководство. Второе издание / П. Экерман, М. Бракман, С. Браун С. 2005. С.79−81.
  49. , И.Э. Биоповреждения в больничных зданиях Санкт-Петербурга / И. Э. Павлова // Пробл. мед. микол. 2008. — Т. 10, № 1. -С.35−39.
  50. , E.H. Руководство по паразитологии человека / E.H. Павловский E.H. -М., 1946. -С. 25−28.
  51. Патоморфология и цитологическая диагностика поражений, вызываемых условно-патогенными грибами. Метод, реком. МЗ СССР под ред. O.K. Хмельницкого. М., 1988. — 23 с.
  52. , H.A. Распространение мицелиальных грибов в гематологическом стационаре / H.A. Петрова, Г. А. Клясова // Терап. архив. 2003. — № 7.- С.58−63.
  53. Профилактика внутрибольничных инфекций в стационарах (отделениях) хирургического профиля лечебных организаций. СП 3.1.2485−09.
  54. , Д. Определитель патогенных и условно-патогенных грибов / Д. Саттон, А. Фотергилл, М. Ринальди М.:Мир. — 2001. — 468 с.
  55. , Э.В. Особенности микозов и микоаллергозов при муковисцедозе у детей / Э. В. Старовойтова, Ф. П. Романюк, В. П. Алферов // Пробл. мед. микол. 2002. — Т.4, № 2. — С.30 -35 .
  56. Суханова, Ю. А. Меры профилактики и организации микологического мониторинга в помещениях ЛПУ/ Ю. А. Суханова // Пробл. медиц. микол.-2009.-T.il, № 2.- С. 116.
  57. , Ю.А. Микромицеты контаминанты больничных помещений //Автореф. дисс. канд. мед. наук — СПб.- 2009.- 16 с.
  58. , Т.Д. Изучение чувствительности оппортунистических и патогенных грибов к новым дезинфицирующим препаратам/ Т. Д. Тарасова, B.C. Лесовой, В. Н. Андрус // Пробл. мед. микол. 2005. -Т.7, № 2. — С. 110.
  59. , Т.Д. Поиск перспективных дезинфектантов против опасных грибов / Т. Д. Тарасова, A.B. Липницкий // Пробл. мед. микол. 2006. — Т.8, № 4. — С.37−40.
  60. , Т.Д. Сравнительная характеристика чувствительности патогенных и оппортунистических грибов к препаратам четвертично-аммонийных соединений (сообщение 1) / Тарасова Т. Д., A.B. Липницкий, B.C. Лесовой // Дез. дело. 2008. № 2. — С. 44- 47.
  61. , Л.С. Актуальные проблемы повышения эффективности дезинфекционных мероприятий / Л. С. Федорова // Дез. дело. 2004. -№ 4. — С. 40−42.
  62. Чистота воздуха в лечебных учреждениях. Общие требования. ГОСТ Р 52 539−2006. М., 2006. 74 с.
  63. , М.Г. Методологические проблемы современной дезинфектологии / М. Г. Шандала // Актуал. пробл. дезинфектол. в профил. инфекц. и паразит, заб. М., 2002. — С.9−16.
  64. , М.Г. Дезинфекционные мероприятия при аспергиллезах / М. Г. Шандала, JI.C. Федорова, И. М. Цвирова и др. // Дез. дело. 2006. — № 1. — С.31−34.
  65. , В.В. Дезинфектология / В. В Шкарин, М. Ш. Шафеев -Н.Новгород.: НГМА, 2003. 367 с.
  66. , В.Г. Дезинфекционные технологии и оборудование для обеззараживания воздуха в ЛПУ/ В. Г. Юзбашев, И. А. Криштафович // Поликлиника. 2006. — № 4.- С.82−85.
  67. , D. / Invasive pulmonary aspergillosis. Necropsy series / D. Alba, J. Comez-Cerezo, J. C. Cobo and al // Rev.Clin.Esp. 1995. № 195 (1). -P.22−25.
  68. Anaissie, E.J. Emerging fungal infections: don’t drink the water / E.J. Anaissie // Abstracts of the 38th Interscience Conference on Antimicrobia Agent and Chemotherapy. San Diego, California. — 1998. — V. 93. -P. 147.
  69. Anaissie, E.J. Aspergillus species in hospitas: Showering as a potential mode of exposure/ E.J. Anaissie, S.L. Stratton, R. C Summerbell et al // 39 Interscience conference on antimicrobial agents and chemotherapy.-Sanfrancisco. 1999. — P. 1908.
  70. Anaissie, E.J. Pathogenic Aspergillus species recovered from A hospital water system: a new year prospective study/ E.J. Anaissie, S.L. Stratton, C. Dignani et al. / Clin.Infect.Dis. 2002. — V.34. — P. 780−782.
  71. Anderson, K. Aspergillosis in immunocompromised paediatric patients: associations with building hygiene, design, and indoor air / K. Anderson, G. Morris, H. Kennedy et al. // Thorax. 1996. -V.51, N 3. — P. 256−261.
  72. Arvanitidou, M. High level of recovery of fungi from water and dialysate in haemodialysis units/ M. Arvanitidou, S. Spaia, A. Velegraki et al // J. Hosp. Infect. 2000. — V. 45. — P. 225−230.
  73. Barnes, A.J. Prevention of nosocomial aspergillosis / A.J. Barnes // St. James’s University hospital Leeds S9 7TF, UK July 2000.- from: htt://www.aspergillus.org/uk/secure/articles/webbarnes.htm
  74. Birch, M. DNA typing of epidemiological^ related isolates of Aspergillus fumigatus/M. Birch, N. Noland, G. Shankland et al. // Infect. Epidemiol. -1995.-Vol.l 14. P.168−169.
  75. Bosi, A. Survellence mycologique chex les patients soumis a une greffe de moella a Florence (Italia)/ Bosi A., Fanci R., Rossi et al. //Bull. Soc. Fr. My col. Med. 1990. — Vol. l9,N.2. — P. 163−166.
  76. Bryce, E.A. Ah outbreak of cutaneous aspergillosis in a tertiary-care hospital / E.A. Bryce, N. Walker, D. Scharf et al. // Ihf. Control Hosp. Epidemiol. -1996. V.17, N3. — P. 170−172.
  77. Caillot, D. Improved management of invasive pulmonary aspergillosis in neutropenic patient using early thoracic computed tomografic scan and surgery / D. Caillot, O. Casasnovas, A. Bernard A. et al. // J. Clin. Oncol. -1997.-V.15-P. 139−147.
  78. Carson, G.L. Aspergillus wound infection, fooling laparostomy / G.L. Carson, M. Birch, M.K. Mughal et al. // J.Infection.- 1996. V.33 -P.l 19−122.
  79. Cimon, B. Aspergillus terreus in a cystic fibrosis clinic: environmental distributon and patient colonization pattern / B. Cimon, R. Zouhair, F. Symoens et al. // J. Hosp. Infection. 2002. — V.10. — P.81−82.
  80. Croll, A. Trends in the postmortem epidemiology of invasive fungal infections at a university hospital / A. Croll, P. Shah, C. Menzel et al // J.Infect.-1996. V.33. -P.23−32.
  81. Duthie, R. Aspergillus fungemia: report of two cases and review / R. Duthie, D, W. RDenning // Clin. Infect. Dis. 1995. — V. 20. — P.598−605.
  82. Dening D.W. Invasive aspergillosis / D.W. Dening // Clin Infect. Dis. -1998. -V. 26 (4). P. 781−803.
  83. Hay RJ. Fungal aerobiology: how, when and where? / R.J. Hay, Y.M. Clayton, J.M. Goodley // J. Hosp. Infection. 1995. — V.30 (Supp 1.). -P.352−357.
  84. Fridkin S.K. Epidemioogy of nosocomial fungy infections / S.K. Fridkin, W.R. Harvis // Clin. Microbiol Rev. 1996. — № 9. — P. 499−511.
  85. Hoog, G.S. Atlas of clinical fungi. 2-hd ed. / G.S. Hoog, J. Guarro, J. Gene Spain. 2000. — P. 39.
  86. Jensen. P.A., Sampling and Characterization of Bioaerosols NIOSH Manual of Analytical Methods / P. A Jensen, M. P Shafer, M.E. Casenelli // NIOSH Publication. 1994. — P. 94−113.
  87. Kontoyiannis, D. G. Systemic mycosis in the immunocompromised host: an update in antifungal therapy/ D. Kontoyiannis, E. Mantadakis, G. Samonis // J. Hosp. Infect. 2003. — V.53. — P.243−258.
  88. Kowalski, W.J. UVGI Design Basics for air and surface Disinfection / W.J. Kowalski, W.P. Bahnfleth // Heating. Piping. Air Conditioning. 2000.- January.-P. 100−110.
  89. Kuehn, Т.Н. Airborn infection control in health care facilities / Т.Н. Kuehn // H.Trans. SAME. J. Sol. Energy Eng. 2000. — V.123, № 3. -P.366−371.
  90. Latge, J.P. Aspergillus Fumigatus and aspergillosis / J. P Latge // Clinical Microbiol. Rev. 1999. — V.12 .№ 2 — P. 310−350.
  91. Lutz, B.D. Outbreak of invasive Aspergillus in surgical patients, associated with a contaminated air-handing system/ B.D. Lutz, J. Jin, M.G. Rinaldi et al. // Clin. Infect. Dis. 2003. -V. 37. — P. 786−793.
  92. Malcolm, D. Richardson Epidemiology, diagnosis and treatment of invasive aspergillosis / D. Malcolm // ripoSn. Me#. mhkoji. 2000. — T.2, № 2. — C. 44.
  93. Manuel, R.J. The epidemiology and prevention of invasive aspergillosis / R.J. Manuel, C.C. Kibbler // J. Hosp. Infect. 1998. V. 39. — P. 95−109.
  94. Mah, M.W. Outbreak of fungal sinusitis on a paediatric oncology unit / M.W. Mah, J. Stoesz, Z. Memish // J. Hosp.Infect. 1998. — V.40, suppl. A-P. 373.
  95. Marr, K. Combination antifungal therapy for invasive aspergillosis / K. Marr, M. Boeckh, R. Carter // Clin. Infect. Dis. 2004. — V. 39. — P. 797 -802.
  96. Morris, G. Sampling of Aspergillus spores in air/ G. Morris, M.H. Kokki, K. Anderson // J. Hosp. Infect. 2000. -№ 44. — P.81- 92.
  97. Munos, P. Environmental surveillance and other control measures in the prevention of nozocomial fungal infections/ P. Munos, A. Burillo, E. Bouza // Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2001. — V.7.-P.38−45.
  98. Neil, M. Trends in mortality due to invasive mycotic diseases in the United States, 1980−1997 / M. Neil, S. Nash, R. Hajjeh et al. // Clin. Infec. Dis. 2001. — Vol.33. — P. 641−647.
  99. Panagopoulou, P. Environmental surveillance for filamentous in a tertiary care hospital / P. Panagopoulou, I. Filioti, E. Farmaki et al // Ibid. -P.394.
  100. Patterson, J.E. Hospital epidemiologic survellence for invasive aspergillosis: patient demographics and the utility of antigen detection/
  101. J.E. Patterson, A. Zidouh, P. Miniter et al // Inf. Control Hosp. Epidemiol. 1997.-Vol.l8,N 2. — P. 104−108.
  102. Paugam, A. Use of randomly amplified polymorphic DNA marked (RAPD) to emonstrate nosocomial contamination in a case of lethal invasive aspergillosis/ A. Paugam, M.E. Boughoux, F. Robert et al // J. Hosp.Infect. 1995. — V.29, N.2 -P.158−161.
  103. Perlroth, J. Nosocomial fungal infections: epidemiology, diagnosis, and treatment. Review / J. Perlroth, B. Choj, B.Spellberg. // Medical Mycology. 2007. — June. V.45 — P. 321−346.
  104. Russell A.D. Similaritis and differences in the responses of microorganisms to biocides / A.D. Russell // J. Am. Chemother.- 2003. -№ 52. -P. 750−763.
  105. Sherertz, R. Impact of air filtration on nozocomial Aspergillus unfections. Unique risk of bone marrow transplant recipients / R. Sherertz, A. Belani, B. Kramer et al. // Amer. J. Medicine.- 1987. V.83. — P.709−718.
  106. Singh, N. Trends in the epidemiology of opportunistic from infections: predisposing factors and the impact of antimicotic use practices/ N. Singh // Clin. Infect. Dis.- 2002. V.33. — P.1692−1696.
  107. Verweij, P. Genotypic characterization of Sequential Aspergillus fiimigatus Isolates from Patients with Cystic Fibrosis / P. Verweij, J.F.G. Meis // J. of Clinical Micr.- 1996.- P.2529−2597.
  108. Warris, A. Hospital sources of Aspergillus species: New routes of transmission?/ A. Warris, A. Voss, P. Verweij // Rev. iberoam micol. -2001.-V.18.-P. 156−162.
  109. Yu, V.L. Significance of isolation of Aspergilosis from the respiratory tract in diagnosis of invasive pulmonary aspergillosis: resualts from a three-year prospective study/ Yu V.L., Muder R.R., Poorsattar A. // Am. J. Med. 1986.-V. 81. -P.249−254.
  110. Yamazaki, T. Epidemiolgy of visceral mycosis: analysis of data in annual of the pathological autopsy cases in Japan/ T. Yamazaki, H. Kume, S. Murase et al. // J.Clin. Microbol.- 1999. V. 37. — P. 1732−1738.
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?