Ультраструктура азотфиксирующей ткани корневых клубеньков симбиотических мутантов гороха (Pisum sativum L.)
Диссертация
Исследование механизма нитратного ингибирования у бобовых является одним из направлений изучения бобово-ризобиального симбиоза. К настоящему времени показано, что растение играет основную роль в регуляции клубенькообразования и азотфиксации в присутствии нитратов, найдены различия по чувствительности к нитратам между видами, сортами и линиями внутри видов (Carrol, Mathews, 1990). Выращивание… Читать ещё >
Содержание
- СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
- Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
- 1. 1. Гены бактерий, участвующие в клубенькообразовании
- 1. 2. Основные подходы изучения генетического контроля развития и функционирования симбиоза у растений
- 1. 3. Основные этапы развития симбиоза
- 1. 4. Функционирование клубенька
- 1. 5. Организация азотфиксирующих клубеньков
- 1. 5. 1. Морфология и организация азотфиксирующих клубеньков
- 1. 5. 2. Строение недетерминированного клубенька
- 1. 5. 3. Эффективные и неэффективные клубеньки. р
- 1. 6. Генетический контроль симбиотических признаков у бобовых
- 1. 6. 1. Межвидовой и межсортовой полиморфизм по клубенькообразованию и азотфиксации
- 1. 6. 2. Получение индуцированных мутантов бобовых
- 1. 6. 3. Особенности проявления симбиотических генов
- 1. 6. 4. Индуцированные мутанты бобовых
- 1. 6. 5. Мутанты гороха
- 1. 7. Основные регуляторные системы, контролирующие формирование бобово-ризобиального симбиоза
- 1. 7. 1. Эволюция специфичности образования бобово-ризобиального симбиоза
- 1. 7. 2. Нитратное ингибирование клубенькообразования у бобовых
Список литературы
- Андреева И.Н., Козлова Г. И., Мандхан К., Измайлов С. Ф. Структурныеособенности различающихся по эффективности азотфиксации клубеньков бобовых // Физиология растений. 1992. Т.39. С.314−324.
- Андреева И.Н., Кожаринова Г. М., Измайлов С. Ф. Структурные особенностимитохондрий корневых клубеньков бобовых // Физиология растений. 1995. Т.42. С.218−226.
- Болоболова Е.У., Байбородин С. И., Сидорова К. К. // Ультраструктурабактероидсодержащей ткани линий гороха Pisum sativum L., имеющих разные регуляторные механизмы клубенькообразования // Цитология. 2000а. Т.42. С.1033−1036.
- Болоболова Е.У., Губанова Н. В., Сидорова К. К. Ультраструктурныеособенности строения корневых клубеньков симбиотических суперклубеньковых мутантов гороха Pisum sativum L. // Отчетная сессия ИИЦиГ СО РАН / Сб. научн. тр. Новосибирск, 20 006. С.201−204.
- Борисов А.Ю., Проворов Н. А., Тихонович И. А., Цыганов В. Е. Генетическийконтроль взаимодействия бобовых растений с клубеньковыми бактериями // Генетика симбиотической азотфиксации с основами селекции. Санкт-Петербург: Наука, 1998. С.8−62.
- Гордиенко Н.Я., Майстренко Г. Г. Структурная основа развития симбиозов иих функционирование // Биологическая фиксация азота. Новосибирск: Наука, 1991. С.64−94.
- Груздев А.Д., Христолюбова Н. Б., Шилов А. Г., Киселева Е.В., Мельников
- В.А Применение стереологических методов в цитологии. Новосибирск: Изд-во ИциГ СО АН СССР, 1974. 80 с.
- Миронов А.А., Комиссарчик Я. Ю., Миронов В. А. Методы электронной микроскопии. Санкт-Петербург: Наука, 1994. 399 с.
- Моржина Е.В., Борисова А. Ю., Куликова А. О., Лебский В. К. Ультраструктурный анализ эффективных и неэффективных клубеньков гороха // Цитология. 1991. Т.ЗЗ. С.3−7.
- Проворов Н.А. Эволюция генетических систем симбиоза у клубеньковых бактерий // Генетика. 1996а. Т.32. С. 1029−1040.
- Проворов Н.А. Коэволюция бобовых растений и клубеньковых бактерий: таксономические и генетические аспекты // Журнал общей биологии. 19 966. Т.57. С.52−77.
- Сидорова К.К. Генетические аспекты симбиотической азотфиксации //
- Биологическая фиксация азота. Новосибирск: Наука, 1991. С.6−22. П. Сидорова К. К., Ужинцева Л. П. Использование мутантов для выявления генов, контролирующих симбиотические признаки у гороха // Генетика. 1992. Т.28. С.144−151.
- Сидорова К.К., Ужинцева Л. П. Локализация мутантного гена nod4, контролирующего супернодуляцию у гороха // ДАН. 1994. Т.336. С.847−849.
- Сидорова К.К., Шумный В. К. Новый ген гороха (Pisum sativum L.) Nod5-nod5,контролирующий нодуляцию // ДАН. 1997. Т.353. С.703−704.
- Сидорова К.К., Шумный В. К., Власова Е. Ю. Исследование симбиотическихмутантов гороха // Генетика. 1997. Т.ЗЗ. С.656−659.
- Сидорова К.К., Шумный В. К. Исследование суперклубеньковых мутантовгороха (Pisum sativum L.) // Генетика. 1998. Т.34. С. 1452−1454.
- Сидорова К.К., Шумный В. К. Генетика симбиотической азотфиксации иосновы селекции для самоопыляющихся бобовых культур (на примере Pisum sativum L.) // Генетика. 1999а. Т.35. С.1550−1557.
- Сидорова К.К., Шумный В. К. Генетическая роль бобового растения в симбиотической азотфиксации (на примере Pisum sativum) II Сибирский экологический журнал. 19 996. Т.6. С.281−288.
- Сидорова К.К., Гордиенко Н. Я., Новикова Т. И. Ультраструктура корневыхклубеньков симбиотических мутантов гороха Pisum sativum II Цитология. 1995. Т.37. С.849−852.
- Сидорова К.К., Назарюк В. М., Шумный В. К., Кленова М. И. Новая модельдля определения эффективности бобово-ризобиального симбиоза // ДАН. 2001а. Т.380. С.283−285.
- Сидорова К.К., Шумный В. К., Болоболова Е. У. О возможностииспользования линий гороха, маркированных геном Nods, в качестве доноров в селекции на повышение азотфиксации // ДАН. 20 016. Т.377. С.847−849.
- Сидорова К.К., Шумный В. К., Мищенко Т. М. Хромосомная локализациягена Nod5, контролирующего нодуляцию у гороха (Pisum sativum L.) // ДАН. 1999. Т.367. С. 851−852.
- Тихонович И.А., Проворов Н. А. Взаимодействие микроорганизмов ирастений: фундаментальные и прикладные аспекты // Генетика симбиотической азотфиксации с основами селекции. Санкт-Петербург: Наука, 1998. С. 176−189.
- Умаров М.М. Ассоциативная азотфиксация // М.: Изд-во МГУ, 1986. 131 с.
- Федорова М.Ю., Моржина Е. В., Филатов А. А., Лебский В. К., Тихонович
- И.А. Влияние бактериальных и растительных мутаций, блокирующих симбиотическую азотфиксацию, на активность аспартатаминотрансферазыв клубеньках гороха {Pisum sativum L.) // Физиология растений. 1995. T.42. C.227−234.
- Чесноков B.A., Базырина Е. Н. 1957. Выращивание растений без почвы наискусственных средах//Вестн. с.-х. науки. 1957. Т.4. С. 121−128. 32. Чундерова А. И. О генетике бобово-ризобиального симбиоза // С.-х. биология. 1981. Т.16. С.402−406.
- Шильникова В.К. Ультраструктурная организация клубеньковых бактерий клевера и люцерны в условиях чистой культуры и симбиоза // Новое в изучении биологической фиксации азота. М., 1971. С.50−53.
- Шильникова В.К. Цитоморфология и цитохимия клубеньковых бактерий вонтогенезе клубеньков разных видов бобовых культур // Изв. ТСХА. 1974. С.3−13.
- Шумный В.К., Сидорова К. К., Клевенская И. Л., Родынюк И.С., Майстренко
- Г. Г., Гордиенко Н. Я., Степаненко И. Ю., Сметанин Н. И., Артамонова B.C., Косинова Л. Ю., Новикова Т. И., Столярова С. Н., Аветисов Л. А. Биологическая фиксация азота. Новосибирск: Наука, 1991. 271 с.
- Appleby С.А. Leghemoglobin and Rhizobium respiration // Annu. Rev. Plant
- Physiol. 1984. V.35. P.443−478.
- Appels M.A., Haaker H. Identification of cytoplasmic nodule-associated forms ofmalate dehydrogenase involved in the symbiosis between Rhizobium leguminosarum and Pisum sativum II Eur. J. Biochem. 1988. V.171. P.515−522.
- Basset В., Goodman R.N., Novacky A. Ultrastructure of soybean nodules: Releaseof rhizobia from hte infection thread // Can. J. Microbiol. 1977. V.23. P.573−582.
- Becana M., Sprent J.I. Nitrogen fixation and nitrate reduction in the root nodules of legumes // Phisiol. Plant. 1987 V.70. P.757−765.
- Bergersen F.J. Anatomy and structure of nodules // Root nodules of legumes: structure and function. New York, 1982. P.23−50.
- Bladergroen M.R., Spaink H.P. Genes and signal molecules involved in the Rhizobia-Leguminoseae symbiosis // Current Opinion in Plant Biology. 1998. V.l. P.353−359.
- Borisov A.Y., Morzhina E.V., Kulikova O.A., Tchetkova S.A., Lebsky V.K.,
- Tikhonovich I.A. New symbiotic mutants of pea (Pisum sativum L.) affecting either nodule initiation or symbiosome development // Symbiosis. 1992. V.14. P.297−313.
- Brewin N.J. Development of the legume root nodule // Annu. Rev. Cell Biol. 1991. Y.7. P191−226.
- Caetano-Annolles G., Gresshoff P.M. Plant genetic control of nodulation // Annu.
- Rev. Microbiol. 1991. V.45. P.345−382.
- Carroll B.J., Mathews A. 1990. Nitrate ingibition of nodulation in legumes //
- Molecular Biology of Symbiotic Nitrogen Fixation. Boca-Raton, 1990. P. 159 180.
- Cullimore J.V., Bennett M.J. The molecular biology and biochemistry of plant glutamine syntase from root nodules of Phaseolus vulgaris L. and other legumes //Plant Physiol. 1988. V.132. P.387−393.
- Dart P.J., Mercer F.V. Fine structure of bacteroids in root nodules of Vignasinesis, Acacia longifolia, Viminaria juncea and Lupinus angustifolius II J. Bacteriol. 1966. V.91. P.1314−1319.
- Day D.A., Lambers H., Bateman J., Carrol B.J., Gresshoff P.M. Growthcomparisons of a supernodulating soybean (Glycine max) mutant and its wildtype parent // Physiol. Plant. 1986. V.68. P.375−382.
- Denison R.F., Harter B.L. Nitrate effects on nodule oxygen permiability and leghemoglobin // Plant Physiol. 1995. V.107. P.1355−1364.
- Deroche M.-E., Carrayol E. Nodule phosphoenolpyruvate carboxylase: a review // Physiol. Plant. 1988. V.74. P.775−782.
- Due G., Messager A. Mutagenesis of pea {Pisum sativum L.) and the isolation ofmutants for nodulation and nitrogen fixation // Plant Sci. 1989. V.60. P.207−213.
- Fisher H.-M. Genetic regulation of nitrogen fixation in Rhizobia II Microbiol. Rev.1994. V.58. N.3. P.352−386.
- Fortin M.G., Morrison N.A., Verma D.P.S. Nodulin-26, a peribacteroid membrane nodulin is expressed independently of the development of the peribacteroid compartment // Nucl. Acids Res. 1987. V.15. P.813−824.
- Ehrhardt D.W., Atkinson E.M., Long S.R. Depolarisation of alfalfa root hair membrane potential by Rhizobium meliloti Nod factors // Science. 1992. V.256. P.998−1000.
- Engvild K.J. Nodulation and nitrogen fixation mutants of pea {Pisum sativum) II Theor. Appl. Genet. 1987. V.74. P.711−713.
- Fedorova M., van de Mortel J., Matsumoto P.A., Cho J., Town C.D., VandenBosch K.A., Gantt J.S., Vance C.P. Genome-wide identification of nodule-specific transcripts in the model legume Medicago truncatula II Plant Physiol. 2002. V.130. P. 519−537.
- Feenstra W.J., Jacobsen E. Isolation of a nitrate reductase deficient mutant of Pisum sativum by means of selection for chlorate resistance // Theor. Appl. Genet. 1980. V.58. P.39−45.
- Fortin M.G., Zechelowska M., Verma D.P.S. Specific targeting of membrane nodulins to the bacteroid-enclosing compartment in soybean nodules // EMBO J. 1985. V.4. P.3041−3046.
- Gelin O., Blixt S. 1964. Root nodulation in peas // Agri. Hort. Genet. 1964. V.22.1. P.149−159.
- Gibson A.H., Harper J.E. Nitrate effect on nodulation of soybean by Rhizobium japonicum И Crop Sci. 1985. V.25. P. 497−507.
- Gloudemans Т., Bisseling T. Plant gene expression in early stages of Rhizobiumlegume symbiosis // Plant Sci. 1989. V.65. P. 1−14.
- Gordienko N.J., Novicova T.I., Sidorova K.K. Ultrastructural analysis of root nodules of pea mutants grown in the presence of nitrate // Abstract volume 10th International Congress of Nitrogen Fixation. Saint-Petersburg, 1995. P.288.
- Gresshoff P.M., Day D.A., Delves A.C., Delves A.C., Mathews A.P., Olsson J.E.,
- Price G.D., Shuller K.A., Carroll B.J. Plant host genetics of nodulation and symbiotic nitrogen fixation in pea and soybean // Nitrogen fixation research progress. Dordrecht, 1985. P.19−25.
- Gresshoff P.M., Krotzky A. Mathews A., Day D.A., Schuller K.A., Olsson J.,
- Delves A.C., Carrol В.J. Suppression of the symbiotic supernodulation symptons of soybean // Plant Physiol. 1988. V.132. P.417−425.
- Gresshoff P.M., Caetano-Anolles G. Systemic regulation of nodulation in legumes
- Plant Biotechnology Development. Boca Raton, 1992. P.87−100.
- Guinell F.C., LaRue T.A. Light microscopy study of nodule initiation in Pisum sativum L., cv. Sparkle and in its low-nodulating mutant E2 (sym-5) II Plant Physiol. 1991. V.97. P. 1206−1211.
- Hardarson G., Zapata F., Danso S.K.A. Effect of plant genotype and nitrogen fertilizer on symbiotic nitrogen fixation by soybean cultivars // Plant and Soil. 1984. V.82. P.397−405.
- Heidstra R., Geurts R., Franssen H., Spaink H.P., van Kammen A., Bisseling T. Root hair deformation activity of nodulation factors and their fate on Vicia sativa II Plant Physiol. 1994. V.105. P.787−797.
- Hinson K. Nodulation responces from nitrogen applied to soybean half-root systems // Agron. J. 1975. V.67. P.799−804.
- Hirsch A.M., Lum M.R., Downie J.A. What makes the Rhizobia-legume symbiosis so special? // Plant Physiol. 2001. V. 127. P. 1484−1492.
- Holl F.B. Host plant control of the inheritence of dinitrogen fixation in the Pisum-Rhizobium symbiosis // Euphytica. 1975. P.24. P.767−770.
- Houwaard F. Influence of ammonium and nitrate nitrogen on nitrogenase activity of pea plants as affected by light intrnsity and sugar addition // Plant and Soil. 1980. V.50. P.271−282.
- Jacobsen E., Nijdan H.A. A mutant showing efficient nodulation in the presence of nitrate // Pisum Newsletter. 1983. V.15. P.31−32.
- Jacobsen E. Futher characterisation of mutant nod3, highly nodulating in the presence of nitrate // Pisum Newsletter. 1984. V.16. P.23−24.
- Jensen F. H. Variation in nodulation capacity of pea varieties // Pisum Newsletter.1986.V.18. P.30−31.
- Kawashima K., Suganuma N., Tamaoki M., Kouchi H. Two types of pea leghemoglobin genes showing different 02- binding affinities and distinct patterns of spatial expression in nodules 1 // Plant Physiol. 2001. V.125. P. 641 651.
- Kijne J.W. The fine structure of pea root nodules. 1. Vacuolar changes after endocytotic host cell infection by Rhizobium leguminosarum II Physiol. Plant Pathol. 1975a. V.5. P.75−79.
- Kijne J.W. The fine structure of pea root nodules. 2. Senescens and disintegration of the bacteroid tissue // Physiol. Plant Pathol. 19 756. V.7, P.17−21.
- Kijne J.W. The Rhizobium infection process // Biological Nitrogen Fixation. New York, 1992. P.349−398.
- Kneen B.E., LaRue T.A. Additional mutants defective in nodulation // Pisum Newsletter. 1986. V.18. P.33.
- Kneen B.E., LaRue T.A., Hirsch A.M., Smith C.A., Weeden N.F. Sym 13-a gene conditioning ineffective nodulation in Pisum sativum II Plant Physiol. 1990. V.94. P.899−905.
- Komina O., Zhou Y., Sarath G., Chollet R. In vivo and in vitro phosphorylation of membrane and soluble forms of soybean nodule sucrose synthase // Plant Physiol. 2002. V.129. P.1664−1673.
- Lie T.A. Temperature-dependent root-nodule formation in pea cv. Iran // Plant and
- Soil. 1971. V.82. P.751−752.
- Lie T.A., Timmermans P.C.J.M. Host-genetic control of nitrogen fixation in thelegame-Rhizobium symbiosis: complication in the genetic analyses due to maternal effects // Plant and Soil. 1983. V.75. P.449−453.
- Lin J., Walsh K.B., Canvin D.T., Layzell D.B. Structural and physiological basesfor effectivity of soybean nodules formed by fast-growing and slow-growing bacteria // Can. J. Bot. 1988. V.66. P.526−534.
- Long S.R. Genes and signals in the Rhizobium-legamQ symbiosis // Plant Physiol.2001. V. 125. P. 69−72
- Lugtenberg B.J.J., Bloemberg G.V., van Brussel A.A.N., Kijne J.E., Thomas-Oates H.P., Spaink H.P. Signals involved in nodulation and nitrogen fixation // Nitrogen fixation: fundamentals and application. Netherland, 1995. P.37−49.
- McNeil D.L., Carroll B.J., Gresshoff P.M. The nitrogen fixation capacity ofbacteroids extracted from soybean nodules inhibited by nitrate, ammonia or dark treatment// Symbiotic nitrogen fixation. 1984. V.l. P.79−85.
- Mellor R.B., Christensen T.M.I.E., Werner D. Choline kinase II is present only in nodules that synthesize stable peribacteroid membranes // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1986. V.83. P.659−663.
- Minchin F.R., Becana M., Sprent J.I. Short-term ingibition of legume N2 fixation by nitrate. II. Nitrate effects on nodule oxygen diffusion // Planta. 1989. V. l80. P.46−52.
- Morey K.J., Ortega J.L., Sengupta-Gopalan C. Cytosolic glutamine synthetase in soybean is encoded by a multigene family, and the members are regulated in an organ-specific and developmental mannerl // Plant Physiol. 2002. V.128. P. 182 193.
- Morzhina E.V., Tsyganov V.E. Borisov A.Y., Lebsky V.K., Tikhonovich I.A.
- Four developmental stages identified by genetic dissection of pea (Pisum sativum L.) root nodule morphogesis // Plant Sci. 2000. V. l55. P.75−83.
- Mylona P., Pawlowski K., Bisseling T. Symbiotic nitrogen fixation // Plant Cell. 1995. V.7. P.869−885.
- Nap J.P., Bisseling T. Developmental biology of a plant-prokaryote symbiosis: The legume root nodule // Science. 1990. V.250. P.948−954.
- Nelson R.S., Ryan S.A., Harper J.E. Soybean mutants lacking constitutive nitratereductase activity. I. Selection and initial plant characterization // Plant Physiol. 1983. V.72.P.503−511.
- Newcomb W. Nodule morphogenesis and differentiation // International Review of Cytology. New York London, 1981. Supplement 13. P.247−297.
- Newton W.E. Nitrogen fixation: some perspectives and prospects // Proc. 1st European Nitrogen Fixation Conference. Szeged, 1994. P. 1−6.
- Novak K., Pesina K., Nebesarova J., Skrdleta V., Lisa L., Nasinec V. Symbiotic tissue degradation pattern in the ineffective nodules of three nodulation mutants of pea СPisum sativum L.) // Ann. of Bot. 1995. V.76. P.303−313.
- Pate J.S. Nodulation studies in legumes. I. The synchronization of host and symbiotic development in the field pea, Pisum arvense L. // Austral. J. Biol. Sci. 1958. V.ll.P.366−381.
- Pate J.S., Atkins C.A. Nitrogen uptake, transport and utilization // Nitrogen fixation. New York, 1983. V.3. P.245−298.
- Park S.J., Buttery B.R. Inheritance of nitrate-tolerant supernodulation in EMS induced mutants of common bean (Phaseolus vulgaris L.) // J. Hered. 1989. V.80. P.486−488.
- Penmetsa R.V., Cook D.R. A legume ethylene-intensitive mutant hyper-infected by its Rhizobial symbiont // Science. 1997. V.275. P.527−530.
- Perret X., Freiberg C., Rosenthal A., Broughton W.J., Fellay R. High-resolution transcriptional analysis of the symbiotic plasmid of Rhizobium sp. NGR234 // Mol. Microbiol. 1999. V.32. P.415−425.
- Perret X., Staehelin С., Broughton W.J. Molecular basis of symbiotic promiscuity // Microbiol, and Mol. Biol. Rev. 2000. V. 64. P. 180−201.
- Planque K., Kennedy I.R., de Vries G.E., Quispel A., van Brussel A.A.N. Location of nitrogenase and ammonia-assimilatory ensymes in bacteroids of Rhizobium leguminosarum and Rhizobium lupini II J. Gen. Microbiol. 1977. V.102. P.95−104.
- Postma J.G., Jacobsen E., Feenstra W.J. Three pea mutants with an altered nodulation studied by genetic analysis and grafting // Plant Physiol. 1988. V.132. P.424−430.
- Postma J.G., Jager D., Jacobsen E., Feenstra W.J. 1990. Studies on a non-fixing mutant of pea (Pisum sativum L.) I. Phenotypical description and bacteroid activity//Plant Sci. 1990. V.68. P.151−161.
- Ratajczak L., Ratajczak W., Koronarik D. Detection of nodule-specific forms of malatr dehydrogenase from root nodules of Lupinus luteus II Biochem. and Biophys. Pflanz. 1989. V.184. P.243−248.
- Reynolds E.S. The use of lead cytrate at a high pH as an electron-opaque stain in electron microscopy // J. Cell Biology. 1963. V.17. P.208−212.
- Robertson J.G., Farden K.J.F. Ultrastructure and metabolism of the developing legume root nodule // Biochem. of Plants. 1980. V.5. P.85−113.
- Rosendahl L., Vance C.P., Miller C.P., Jacobsen E. Nodule physiology of a supernodulating pea mutant // Physiol. Plant. 1989. V.77. P.606−612.
- Roth L.T., Stacey G. Bacterium release into host cells of nitrogen-fixing soybean nodules: the symbiosom membrane comes from three sources // Eur. J. Cell Biol. 1989. V.49. P. 13−23.
- Sagan M., Huguet Т., Barker D., Due G. Characterization of two classes of non-fixing mutants of pea {Pisum sativum L.) I I Plant Sci. 1993. V.95. P.55−56.
- Sagan M., Huguet Т., Due G. Phenotipic characterization and classification of nodulation mutants of pea {Pisum sativum L.) // Plant Sci. 1994. V.100. P. 59−70.
- Sagan M., Due G. Sym-28 and Sym-29, two new genes involved in regulation of nodulation in pea {Pisum sativum L.) // Symbiosis. 1996. V.20. P.229−245.
- Scheres В., van Engelen F., van den Knaap E., van de Weil C., van Kammen A., Bisseling T. Sequential induction of nodulin gene expression in the developing pea nodule // Plant Cell. 1990. V.2. P.687−700.
- Sengupta-Gopalan C., Pitas J.W., Thompson D.V., Hoffmann L.M. Expression of host genes during root nodule development in soybeans // Mol. Gen. Genet. 1986. V.203. P.410−420.
- Shaw V.K., Brill W.J. Isolation of an iron-molybdenum cofactor from nitrogenase // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1977. V74. P3249−3253.
- Schneider A., Walker S.A., Sagan M., Due G., Ellis T.H.N., Downie J.A. Mapping of the nodulation loci sym9 and symlO of pea (Pisum sativum L.) // Theor. Appl. Genet. 2002. V.104. P. 1312−1316.
- Schultze M., Kondorosi A. Regulation of symbiotic root nodule development // Annu. Rev. Genet. 1998. V.32. P.33−57.
- Snapp S.S., Vance C.P. Asparagine biosynthesis in alfalfa {Medicago Sativa L.) root nodules // Plant Physiol. 1986. V.82. P.390−395.
- Stougaard J. Update on nodule development // Plant Physiol. 2000. V.124. P. 531−540.
- Suganuma N., Tamaoki M., Kouchi H. Expression of noduline genes in plant-determined ineffective nodules of pea // Plant Mol. Biol. 1995. V.28. P.1027−1038.
- Tingey S.V., Walker E.L., Coruzzi G.M. Glutamine syntase genes of pea encode distinct polypeptides which are differentially expressed in leaves, roots and nodules // EMBO J. 1987. V.6. P. 1−9.
- Tsyganov V.E., Borisov A.Y., Rosov S.M., Tikhonovich I.A. New symbiotic mutants of pea obtained after mutagenesis of laboratory line SCE // Pisum Genetics. 1994. V.26. P.36−37.
- Tsyganov V.E., Morzhina E.V., Stefanov S.Y., Borisov A. Y., Lebsky V.K., Tikhonovich I.A. The pea {Pisum sativum L.) genes sym33 and sym40 control infection thread formation and root nodule functioning // Mol. Gen. Genet. 1998. V.259. P.491−503.
- Van de Wiel C., Scheres В., Franssen H., van Lierop M.J., van Lammeren A., van Kammen A., Bisseling T. The early nodulin transcript ENOD2 is located in the nodule parenchyma (inner cortex) of pea and soybean root nodules // EMBO J. 1990. V.9. P.1−7.
- Van Kammen A. Suggested nomenclature for plant genes involved in nodulation and symbiosis // Plant Mol. Biol. Rep. 1984. V.2. P.43−45.
- Van Rhijn P., Fujishige N.A., Lim P.O., Hirsch A.M. Sugar-binding activity of pea lectin enhances heterologous infection of transgenic alfalfa plants by Rhizobium leguminosarum biovar viciael II Plant Physiol. 2001. V.126. P.133−144.
- Varkonyi-Gasic E., White D.W.R. The White clover enod40 gene family. Expression patterns of two types of genes indicate a role in vascular function // Plant Physiol. 2002. V.129. P. l 107−1118.
- Vasse J., de Billy F., Camut S., Truchet G. Correlation between ultrastructural differentiation of bacteroids and nitrogen fixation in alfalfa nodules // J. Bacteriol. 1990. V.172. P.4295−4306.
- Wais R.J., Keating D.H., Long S.R. Structure-function analysis of Nod factor-induced root hair calcium spiking in Rhizobium-legumQ symbiosis // Plant Physiol. 2002. V.129. P. 211−224.
- Warmke H.E., Sheu-Ling J.L. Improved staining procedures for semithin epoxy sections of plant tissues // Stain Technology. 1976. V.51. P. 179−187.
- WeedenN.F., Ellis T.H.N., Timmerman-Vaughan G.M., Swiecicki W.K., Rozov S.M., Berdnikov V.A. A consensus linkage map for Pisum sativum II Pisum Genetics. 1998. V.30. P. 1−4.
- Werner D. Physiology of nitrogen-fixing legume nodules: compartments and functions // Biological Nitrogen Fixation. New-York-London, 1992. P.399−431.
- Werner D. Ecology and agricultural applications of nitrogen-fixing systems: crop and sciences involved // Nitrogen Fixation: Fundamentals and Applications. Proc. of the 10th Intern. Congr. on Nitrogen Fixation. Dordrecht, 1995. P.621−623.
- Witty J.F., Minchin F.R., Skot L., Sheely J.E. Nitrogen fixation and oxygen in legume root nodules // Oxford Surv. Plant Cell Biol. 1986. V.3. P.275−315.
- Young J.P.W. Linkage of sym-2, the symbiotic specificity locus of Pisum sativum И J. Hered. 1985. V.76. P.207−208.
- Работа выполнена в лаборатории морфологии и функции клеточных структур Института цитологии и генетики СО РАН.
- Автор выражает признательность сотрудникам лаборатории и института за помощь и поддержку на всех этапах выполения работы.