Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Пролиферативная активность и задержка клеточного цикла лимфоцитов крови человека в отдаленные сроки хронического облучения

Диссертация: Пролиферативная активность и задержка клеточного цикла лимфоцитов крови человека в отдаленные сроки хронического облучения
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Не установлено зависимости пролиферативной активности лимфоцитов, доли лимфоцитов с блоком клеточного цикла и количества СБЗ-СВ4+ лимфоцитов от дозы облучения красного костного мозга у людей в отдаленный период после начала хронического радиационного воздействия. Выявлена слабая положительная зависимость частоты лимфоцитов периферической крови с блоком клеточного цикла после дополнительного… Читать ещё >

Содержание

  • ГЛАВА I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Регуляция клеточного цикла
    • 1. 2. Влияние возраста и пола клеточный цикл и частоту мутаций в генах Т-клеточного рецептора (ТСЯ)
    • 1. 3. Влияние ионизирующего излучения на клеточный цикл
      • 1. 3. 1. Радиочувствительность клеток системы кроветворения
      • 1. 3. 2. Радиационно-индуцированная остановка клеточного цикла
      • 1. 3. 3. Влияние острого облучения на клеточный цикл
        • 1. 3. 3. 1. Влияние низких доз ионизирующего излучения на клеточный цикл
        • 1. 3. 3. 2. Влияние высоких доз ионизирующего излучения на клеточный цикл
      • 1. 3. 4. Клеточный цикл и пролиферация клеток системы кроветворения при хроническом радиационном воздействии
        • 1. 3. 4. 1. Влияние хронического радиационного воздействия на пролиферативную активность и количественный состав лейкоцитов периферической крови у людей в отдаленные сроки
    • 1. 4. Частота мутаций в генах Т-клеточного рецептора
  • ГЛАВА II. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • 2. 1. Условия облучения лиц, проживающих в прибрежных селах р. Теча
    • 2. 2. Характеристика обследованного контингента
    • 2. 3. Методы исследования
      • 2. 3. 1. Определение общего количества лейкоцитов периферической крови
    • 2. 4. Молекулярно-биологические методы исследования
      • 2. 4. 1. Оценка доли (%) лимфоцитов периферической крови с блоком клеточного цикла
      • 2. 4. 2. Оценка доли (%) пролиферирующих лимфоцитов периферической 61 крови человека
      • 2. 4. 3. Оценка частоты мутаций в гене СЬк2 методом ГЩР
      • 2. 4. 4. Оценка уровня СБЗ-СБ4+ лимфоцитов (ТСИ-мутаитных) периферической крови человека
    • 2. 5. Методы статистической обработки
  • ГЛАВА III. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

3.1. Анализ влияния факторов нерадиационной природы на блок клеточного цикла, пролиферативную активность лимфоцитов и частоту СБЗ-С04+ лимфоцитов периферической крови у лиц, не подвергшихся хроническому радиационному воздействию.

3.2. Блок клеточного цикла и пролиферативная активность лимфоцитов периферической крови, частота СБЗ-СБ4+ лимфоцитов у лиц, подвергшихся хроническому радиационному воздействию.

3.3 Зависимость пролиферативной активности лимфоцитов, частоты лимфоцитов с блоком клеточного цикла, и частоты СОЗ-СБ4+ лимфоцитов у облученных лиц от накопленной дозы облучения ККМ.

3.3.1. Зависимость доли (%) лимфоцитов с блоком клеточного цикла от дозы облучения ККМ.

3.3.2. Зависимость пролиферативной активности лимфоцитов периферической крови (ЛПК) от дозы облучения ККМ.

3.3.3. Зависимость частоты СВЗ-СБ4+ лимфоцитов от дозы облучения

3.4. Зависимость пролиферативной активности, частоты лимфоцитов с блоком клеточного цикла, и частоты СБЗ-СБ4+ лимфоцитов от мощности дозы облучения ККМ.

3.4.1. Зависимость доли лимфоцитов с блоком клеточного цикла от мощности дозы облучения ККМ.

3.4.2 Зависимость пролиферативной активности лимфоцитов от мощности дозы облучения ККМ.

3.4.3. Зависимость частоты мутаций СБЗ-СБ4+ лимфоцитов от мощности дозы облучения ККМ.

3.5. Анализ зависимости частоты СБЗ-СВ4+ лимфоцитов от доли лимфоцитов с блоком клеточного цикла и от пролиферативной активности лимфоцитов. 3.6. Блок клеточного цикла и пролиферативная активность лимфоцитов периферической крови, частота СБЗ-СВ4+ лимфоцитов у облученных лиц, имеющих лейкопению.

3.7. Блок клеточного цикла и пролиферативная активность лимфоцитов периферической крови, частота СБЗ-СВ4+ лимфоцитов у облученных лиц, перенесших ХЛБ.

3.8. Сравнительный анализ частоты лимфоцитов с блоком клеточного цикла пролиферативной активности лимфоцитов и частоты СБЗ-СБ4+ лимфоцитов у лиц, имеющих лейкопению в ранний и отдаленный периоды 104 облучения.

3.9. Анализ зависимости абсолютного количества лимфоцитов и лейкоцитов от абсолютного количества клеток с блоком клеточного цикла и абсолютного количества пролиферирующих лимфоцитов периферической крови.

3.9.1 Анализ зависимости абсолютного количества лимфоцитов и лейкоцитов от абсолютного количества лимфоцитов с блоком клеточного цикла у облученных и необлученных людей.

Анализ зависимости абсолютного количества лимфоцитов и лейкоцитов от абсолютного количества пролиферирующих ЛПК у облученных людей и людей, не подвергшихся радиационному 111 воздействию.

3.9.3 Анализ зависимости абсолютного количества лимфоцитов и лейкоцитов периферической крови людей, перенесших ХЛБ, и облученных людей, имеющих лейкопению, от абсолютного 114 количества лимфоцитов с блоком клеточного цикла.

3.9.4 Анализ зависимости абсолютного количества лейкоцитов и лимфоцитов от пролиферативной активности лимфоцитов у людей, перенесших ХЛБ, и облученных лиц с лейкопенией.

ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ.

ВЫВОДЫ.

Пролиферативная активность и задержка клеточного цикла лимфоцитов крови человека в отдаленные сроки хронического облучения (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы Возрастающий риск облучения человека, связанный с бурно развивающейся атомной энергетикой и широким применением в медицине радиоизотопных методов диагностики и лечения приводит к необходимости исследования эффектов радиационного воздействия. После крупных радиационных инцидентов прошлых лет: атомной бомбардировки городов Хиросимы и Нагасаки, аварии на ЧАЭС, радиоактивного загрязнения вод р. Теча, ставшего результатом деятельности ПО «МАЯК», а также в связи с произошедшей в 2011 году радиационной аварией на Фукусиме-1, — особое место занимает проблема отдаленных эффектов радиационного воздействия на человека.

Известно, что ионизирующие излучение индуцируют комплекс цитогенетических, биохимических и биофизических изменений в клетках организма животных и человека [9, 48] в том числе изменяет состояние клеточных защитных механизмов: систем антиоксидатной защиты, систем репарации, клеточного цикла [48, 58]. Один из основных механизмов «радиационной защиты» клетки направленных на предотвращение деления клеток с повреждениями ДНК — блок клеточного цикла [38]. В случае нарушения этого защитного механизма, повреждения ДНК, возникающие при длительном облучении, могут быть реализованы в виде соматических мутаций, что, в конечном счете, может привести к продукции пула дефектных, структурно и функционально неполноценных клеток [11]. Особенно актуально это в отношении радиочувствительных гемопоэтических клеток красного костного мозга (ККМ).

В ряде экспериментальных работ показано, что у хронически облученных животных выявлено изменение митотического цикла клеток ККМ (красного костного мозга) и их пролиферативной активности. Однако вопрос об экспрессии белка СЬк2 (как маркера блока клеточного цикла) у хронически облученных людей ранее не рассматривался.

У пострадавших при атомных бомбардировках в Японии [147], ликвидаторов ЧАЭС [30], у работников атомной промышленности [37, 59] выявлено увеличение частоты мутаций в генах Т-клеточного рецептора (ТСЯ). Но пока остаётся неясным какова частота мутаций в генах ТСII у хронически облученных людей в отдаленные сроки от начала радиационного воздействия (более 60 лет). В связи с этим особый интерес может представлять изучение частоты лимфоцитов с блоком клеточного цикла (БКЦ), пролиферативной активности лимфоцитов периферической крови (ПК) и частоты СВЗ-СБ4+ лимфоцитов у облученных жителей прибрежных сел р. Теча, в отдаленные сроки. Район реки Теча является единственным регионом в мире, где, начиная с 1949 г., в результате производственной деятельности комбината «Маяк» сложились аварийные условия многолетнего облучения значительного по численности контингента населения в широком диапазоне доз [43].

Исследование позволило оценить пролиферативную активность, клеточный цикл лимфоцитов периферической крови как модели ГСКМ (гемопоэтическая клетка красного костного мозга), а также частоту СБЗ-СБ4+ лимфоцитов в отдаленный период после начала радиационного воздействия. Особенно актуально, было оценить данные параметры в период, когда большая часть облученных людей достигла пожилого возраста, характеризующегося снижением адаптационных резервов, ослаблением систем контроля клеточного цикла и репарации, спонтанным увеличением частоты соматических мутаций.

Цель исследования: оценить пролиферативную активность лимфоцитов периферической крови (ЛПК), частоту лимфоцитов с блоком клеточного цикла (БКЦ) и частоту СВЗ-С04+ лимфоцитов у людей, проживавших в прибрежных селах р. Теча и подвергшихся хроническому радиационному воздействию.

Задачи исследования:

1) Исследовать пролиферативную активность и частоту лимфоцитов с БКЦ методом проточной цитометрии (по экспрессии белков СЪк2 и Кь67), а также частоту СГ)3-СБ4+ лимфоцитов у хронически облученных людей в отдаленные сроки после начала радиационного воздействия.

2) Оценить пролиферативную активность, долю лимфоцитов с БКЦ, и частоту СОЗ-СБ4+ лимфоцитов у лиц, перенесших хроническую лучевую болезнь (ХЛБ).

3) Проанализировать пролиферативную активность и долю лимфоцитов с БКЦ, частоту СОЗ-СБ4+ лимфоцитов у облученных людей, имеющих лейкопению в отдаленные сроки радиационного воздействия.

4) Оценить зависимость пролиферативной активности и доли лимфоцитов с БКЦ, частоты СБЗ-СБ4+ лимфоцитов от дозы облучения ККМ и мощности дозы в период максимального радиационного воздействия.

Научная новизна исследования Впервые у жителей прибрежных сел р. Теча, подвергшихся хроническому комбинированному облучению, в том числе у лиц, перенесших ХЛБ и имеющих лейкопению в отдаленный период радиационного воздействия, исследована пролиферативная активность ЛПК и частота клеток с блоком клеточного цикла, методом проточной цитометрии на основе анализа экспрессии белков кь67 и СЫс2.

Проведен анализ влияния дозы и мощности дозы облучения ККМ на пролиферативную активность и частоту лимфоцитов с БКЦ, а также частоту СБЗ-CD4+ лимфоцитов у хронически облученных людей в отдаленный период после начала радиационного воздействия.

Впервые изучена зависимость между содержанием лейкоцитов, лимфоцитов в периферической крови и пролиферативной активностью, а также блоком клеточного цикла ЛПК у облученных людей в отдаленные сроки после радиационного воздействия.

Практическая значимость работы Оценка пролиферативной активности и частоты клеток с блоком клеточного цикла позволит обосновать и разработать критерии формирования групп риска в отношении отдаленных гемопоэтических эффектов.

Разработанная методика оценки доли (%) ЛПК с блоком клеточного цикла, методом проточной цитометрии на основе анализа экспрессии белка СЫс2, совместно с исследованием пролиферативной активности ЛПК (белок Ю-67) рекомендуется для прогнозирования ответа системы гемопоэза на стимулирующее воздействие при лечении цитопенического синдрома, с применением регенеративной терапии.

Положения, выносимые на защиту.

1. В отдаленные сроки после хронического радиационного воздействия (дозы облучения ККМ составили 0,06−4,46 Грсреднее значение — 1,11±0,06 Гр) у лиц пожилого и старческого возраста в периферической крови отмечено увеличение уровня СОЗ-СБ4+ лимфоцитов на фоне повышения пролиферативной активности лимфоцитов и клеток с блоком клеточного цикла. Частота лимфоцитов с блоком клеточного цикла в периферической крови и пролиферативная активность лимфоцитов зависят от мощности дозы облучения ККМ в период максимального облучения. Частота клеток с блоком клеточного цикла после инкубации и у-облучения зависит от дозы облучения ККМ.

2. У лиц, перенесших хроническую лучевую болезнь, не выявлено изменений пролиферативной активности лимфоцитов периферической крови, уровня клеток с блоком клеточного цикла, а также изменения частоты СТ)3-С04+ лимфоцитов.

3. Наибольшее увеличение пролиферативной активности лимфоцитов и частоты лимфоцитов с блоком клеточного цикла выявлено у людей имеющих признаки лейкопении в отдаленные сроки хронического радиационного воздействия.

выводы.

1. У жителей прибрежных сел р. Теча, в отдаленный период.(59−61 год), после начала хронического радиационного воздействия (дозы облучения красного костного мозга составили 0,06−4,46 Грсреднее значение 1,11±0,06 Гр) выявлено статистически значимое увеличение в периферической крови числа пролиферирующих лимфоцитов, лимфоцитов с блоком клеточного цикла и СБЗ-СВ4+ лимфоцитов по сравнению с показателями у необлученных людей.

2. Не установлено зависимости пролиферативной активности лимфоцитов, доли лимфоцитов с блоком клеточного цикла и количества СБЗ-СВ4+ лимфоцитов от дозы облучения красного костного мозга у людей в отдаленный период после начала хронического радиационного воздействия. Выявлена слабая положительная зависимость частоты лимфоцитов периферической крови с блоком клеточного цикла после дополнительного острого у-облучения в дозе 1 Гр от дозы облучения ККМ, а также исходной частоты лимфоцитов с блоком клеточного цикла и спонтанной пролиферативной активности лимфоцитов от мощности дозы облучения ККМ в период максимального радиационного воздействия (0,03−1,25.

Грсреднее значение 0,28±-0,02Гр).

3. У людей, проживающих в прибрежных селах р. Теча и перенесших хроническую лучевую болезнь (дозы облучения красного костного мозга 0,23−2,70 Грсреднее значение 0,87±-0,10Гр), в отдаленные сроки от начала облучения не отмечено изменений пролиферативной активности и числа лимфоцитов с блоком клеточного цикла, а также количества СОЗ-СВ4+ лимфоцитов по сравнению с показателями необлученных людей.

4. У облученных людей, имеющих в отдаленные сроки лейкопению (дозы облучения красного костного мозга 0,06−4,46 Грсреднее значение 1,07±0,19 Гр), наблюдается увеличение пролиферативной активности лимфоцитов периферической крови и доли лимфоцитов с блоком клеточного цикла по сравнению с контролем и с группой облученных людей, не имеющих лейкопению.

5. Пролиферативная активность и доля лимфоцитов с блоком клеточного цикла, а также частота СОЗ-СБ4+ лимфоцитов не имеют зависимости от накопленной дозы и мощности дозы облучения ККМ в период максимального радиационного воздействия (0,04−1,25 Гргод- 0,27±0,06 Гргод) у облученных людей, имеющих в отдаленный период лейкопению.

Автор искренне благодарит своего научного руководителя Александра Васильевича Аклеева за руководство этой диссертационной работой.

Автор искренне благодарит к.б.н., заведующую клинико-физиологической лаборатории ФГУН УНПЦРМ Галину Анатольевну Веремееву за огромную помощь и консультации.

Автор искренне благодарит к.б.н., доцента кафедры радиационной биологии ЧелГУ Ольгу Глебовну Площанскую за проведение исследования частоты мутаций в гене СЬк2.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Х.Аклеев A.B., Варфоломеева Т. А. Состояние гемопоэза в условиях многолетнего облучения костного мозга у жителей прибрежных сел р. Теча // Радиационная биология. Радиоэкология. 2007. — Т. 47. — № 3. — С. 307−321
  2. A.B., Голощапов П. В., Дегтева М. О., Косенко М.М, Костюченко, В.А. и др. Радиактивное загрязнение окружающей среды в регионе Южного Урала и его влияние на здоровье населения / Под ред. Л. А. Булдакова. Челябинск, -1991.- 64 с.
  3. В. Молекулярные и физиологические механизмы старения. СПб.: Наука. — 2003. — 468 с.
  4. М.М., Рябченко Н. И., Насонова В. А. Нестабильность генома в потомках клеток китайского хомячка, облученных в низкой дозе при разных интенсивностях у-излучения // Радиационная биология. Радиоэкология экология. 2005. — Т. 45. — № 3. — С. 291−293
  5. Е.В., Соколенко В. Л. Экспрессия Т-клеточных поверхностных маркеров лимфоцитами лиц, подвергшихся воздействию малых доз радиации // Иммунология. 1998. — № 3. — С. 56−59
  6. А.Е., Петросян Л. Н., Пяткин Е. К. Случай острой лучевой болезни, развившейся после общего равномерного у-облучения (бОСо) // Медицинская радиология. 1977. — Т. 22. — № 8. — С. 48−55.
  7. Н.В., Исламов P.P., Кузнецов С. Л., Улумбеков Э. Г., Челышев Ю. Гистология. Изд-во: ГЭОТАР-МЕД.- 2001.- 672 с.
  8. Радиационная биология. Радиоэкология. 2005. — Т. 45. — № 5. — С. 581−586
  9. И.Е. Цитологические и цитогенетические основы лучевого старения // Проблемы радиационной геронтологии. Современные проблемы радиационной биологии.- М.: Атомиздат.-1978.-Т.УП-С.98−112.
  10. В.Г. Иммунология. М., Изд-во МГУ. -1998. — 480 с.
  11. И.Р., Котов Н. В. Исследование механизмов управление фазой Gl и прохождение точки рестрикции // Структура и динамика молекулярных систем. 2003. — вып. 10. — Часть 2. — С. 250−253
  12. В.Я., Пелевина И. И., Конопля Е. Ф. и др. Биологическое действие малых доз ионизирующей радиации // Радиобиология. 1991. — Т. 31. — № 3.1. С.318−325
  13. В.Я., Тапонайнен Н. Я., Пелевина И. И. Длительно существующие повреждения ДНК и выживаемость клеток млекопитающих // Радиобиология. 1985. Т. 25. — № 4. — С. 43543
  14. , A.C. Кругляков П. В., Таминкина Ю. А. Зависимость пролиферации мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток от характеристик доноров // Клеточная Трансплантология и Тканевая Инженерия. 2009. Том 4. -№ 2. — С. 70−75
  15. JI.B. Распространенность иммунопатологических синдромов и характеристика иммунной системы у лиц, подвергшихся влиянию малых доз радиации: Дисс. канд. биол. наук. М, 2004. 112 с.
  16. Г. П. Острый радиационный костномозговой синдром / Г. П. Груздев. М.: Медицина, 1988. 144 с.
  17. Н.В. Закономерности компенсаторно-приспособительных реакций, реализуемых в популяции стволовых кроветворных клеток при хроническом радиационном воздействии. Автореферат дисс. док. биол. наук. Челябинск, 2007.- 52 с.
  18. Н.В., Шибкова Д.З.,. Толстых Е. И, Андреева О. Г. Состояние стволового пула кроветворных клеток (КОЕс) мышей линии СВА при однократном введении 90Sr // Российский физиологический журнал им. И. М. Сеченова. 2004. — Т. 90. — № 8. — С. 192
  19. Г. С., Различные уровни радиозащиты в популяции опухолевых клеток. // Радиационная биология. Радиоэкология. 2001. — Том.41. — № 5. — С. 519−527
  20. Д. Лимфоциты. Методы. М.: Мир, — 1990. — 377 с.
  21. Клеточный цикл. Проблемы регуляции / Под. ред. О. И. Епифановой. Изд-во «Наука». М., — 1973. — 104с.
  22. М.В., Баранов А. Е., Соловьев В. Ю. Дозовые кривые нейтрофилов и лимфоцитов при общем относительно равномерном у-облучении человека (по материалам аварии на Чернобыльской АЭС) // Медицинская радиология. 1991. — № 1. — С. 29−33
  23. .П. Мишени действия онкогенов и опухолевых супрессоров: ключ к пониманию базовых механизмов канцерогенеза // Биохимия. 2000. — № 65.1. С.5−33
  24. Ю. Б. Радиационная биофизика (ионизирующие излучения) / Под ред. В. К. Мазурика, М. Ф. Ломанова. М.: ФИЗМАТЛИТ, — 2004. — 448 с.
  25. Лабораторные методы исследования в клинике // Под ред. проф. В. В. Меньшикова. Медицина. — 1987. — 368 с.
  26. А.П., Сахно Л. В., Козлов В. А. Продукция цитокинов (интерлейкинов 1 и 2, фактора некроза опухоли) мононуклеарами крови у ликвидаторов аварии на Чернобыльской АЭС // Экологическая иммунология. 1998. — № 4. — С.56−57
  27. В.К., Михайлов В. Ф. Радиационно-индуцируемая нестабильность генома: феномен, молекулярные механизмы, патогенетическое значение // Радиационная биология. Радиоэкология. 2001. — Т. 41. — № 3. — С. 272−289
  28. Медико-биологические и экологические последствия радиоактивного загрязнения реки Теча. / Под ред. д.м.н. A.B. Аклеева и к.х.н. М. Ф. Киселева. Москва. -2001.-530 с.
  29. Медико-биологические эффекты хронического радиационного воздействия / Под ред. A.B. Аклеева. Том 2. Челябинск. Изд-во «Фрегат»., 2005. — 380с.
  30. Молекулярно-клеточные механизмы реализации отдалённых эффектов хронического облучения человека. Отчет НИР /УНПЦРМ- Инв. № 153. Челябинск 2008. — 113 с.
  31. К.Н., Мушкачева Г. С. Клеточные и молекулярные основы перестройки кроветворения при длительном радиационном воздействии / Под ред. А. К. Гуськовой. М.: Энергоатомиздат. — 1990. — 160 с.
  32. H.H., Кузнецов С. Л. Молекулярная биология. М.: Изд-во: ООО «Медицинское информационное агентство». 2003. — 544с.
  33. Ш. Радиационная биохимия клетки. М., — 1974- 408с.
  34. И.И., Готлиб В. Я., Кудряшова О. В. Нестабильность генома после воздействия радиации в малых дозах (в 10-километровой зоне аварии на ЧАЭС и в лабораторных условиях) // Радиационная биология. Радиоэкология. 1996. -Т. 36. — № 4. — С. 546−560
  35. Н.Д., Пестерникова B.C., Сумина М. В. и др. Хроническая лучевая болезнь человека, вызванная внешним гамма-облучением: отдаленный период наблюдения // Вестник академии медицинских наук. 1991. — № 2. — С. 22−26.
  36. Полякова В. О, Кветной И. М., Хавинсон В. Х., Марьянович А. Т., Коновалов С. С. Тимус и старение // Успехи геронтологии. 2001. — Т.8. — С. 50−57
  37. Радиация и патология. Учеб пособие / А. Ф. Цыб, P.C. Будагов, И. А. Замулаева и др. / Под ред. А.Ф. Цыба-М.: Высш. Шк., 2005. 341с.
  38. Ретроспективная оценка и мониторинг индивидуальных доз внутреннего облучения от долгоживущих радионуклидов у населения Уральского региона.1. ОП I
  39. Ретроспективная оценка поступления Sr и Cs в организм жителей прибрежных сел реки Теча. Отчет НИР /УНПЦРМ- Инв. № 293. Челябинск, -2009. 70 с.
  40. А.Ф., Третьяк H.H. Клименко В. И. Особенности гемопоэза у больных острой лучевой болезнью, возникшей у лиц, подвергшися воздействию ионизирующей радиации в результате аварии на ЧАЭС // Тез. Док. респ. науч,-прак. конф. Киев, 1991. — С. 193−195
  41. Руководство по применению «SNP-экспресс». М.- 2009. 35с.
  42. А. С.,. Замулаева И. А Изучение влияния малых доз радиации на устойчивость биологических систем // Медицинский радиологический научный центр РАМН. 2006. www.Sciencerf.ru
  43. A.M., Алещенко A.B., Готлиб В. Я., Кудряшова О. В., Семенова Л. П., Пелевина И. И. О новом механизме формирования адаптивного ответа // Радиационная биология. Радиоэкология. 2004. — Т. 44. — № 6. — С.653−656
  44. В.Ю., Романова Т. Е., Рубцова И. Е. Функциональное состояние Т-лимфоцитов периферической крови у больных хроническим бронхитом ликвидаторов аварии на Чернобыльской АЭС // Иммунология. 1999. — № 2. С. 39−40
  45. Ф.Ф., Поровский Я. В., Бодрова Т. Н., Рыжов А. И., Ветлугина Т. П. Изменение гемомикроциркуляции и структурных компонентов иммунитета у ликвидаторов аварии на Чернобыльской АЭС // Бюллетень сибирской медицины. -2007. № 2. — С. 53−59
  46. А. Р., Шафранский И. Л., Клеева Н. А. Сопоставление показателей периферической крови и дозы внешнего облучения у мужчин-ликвидаторов последствий аварии на ЧАЭС // Медицинская радиология и радиационная безопасность.- 2002. Т. 4. № 6.- С. 27−32
  47. В.Ю. Математическая статистика для биологов и медиков. М., — 1963. -323с
  48. О.О. Сохранение ДНК в ряду поколений: репликация ДНК. Соровский образовательный журнал // Биология. 1996. — № 4. — С. 11−17
  49. Ф. Мотульски А. Генетика человека // Проблемы и походы / Под. ред. Алтухова Ю. П. Гиндилиса В.М. М.: Мир, — 1990. — Том 2. — С. 142−277
  50. Л.Б., Абалакин В. А. Разделение форменных элементов крови человека в градиенте плотности верографин-фиколл // Лабораторное дело. 1973. — № 10. — С. 579−581
  51. Д.З., Ефимова Н. В., Толстых Е. И., Андреева О. Г. Компенсаторно-приспособительные реакции стволового кроветворного пула мышей линии СВАпри однократном введении 90Sr // Радиационная биология. Радиоэкология. -2005. Т. 45. — № 2. — С. 180−190
  52. Д.З., Н.В. Ефимова, А. В. Аклеев. Механизмы компенсации в стволовом кроветворном пуле (КОЕс) в условиях экспериментального хронического у-облучения // Радиационная биология. Радиоэкология. 2006. -Т. 46.-№ 5.-С. 596−604
  53. С.П. Радиобиология человека и животных. М., «Высш.школа». -1977.- 368с
  54. Akiyama М., Kusunoki Y., Umeki S., Nakamura N., Kyoizumi S. Evaluayion of four somatic mutation assays as biological dosimeter in humans // Radiation Research. -1992. V. 11.- P.177−182
  55. Aktas H., Cai H., Cooper G.M. Ras Links Growth Factor Signaling to the Cell Cycle Machinery via Regulation of Cyclin D1 and the Cdk Inhibitor p27KIPl // Molecular and Cellular Biology. 1997. — V. 17. — P. 3850−3857
  56. Anisimov Y. N. Carcinogenesis and Aging. V. 1, 2. Boca RaVoru CRC Press, 1987. — 148 p.
  57. Bartek J., Lukas J. Chkl and Chk2 kinases in checkpoint control and cancer // Cancer cell. 2003. — №. 3. — P. 421−429
  58. Baserga R. L. Cell division and the cell cycle // Handbook of the Biology of Aging/ Eds. C.E. Finch, L. Hayflick, N. Y.: VanNostrand Reinholdd 1977. — P. 101−121.
  59. Bertoni F., Codegoni A.M., Furlan D., Tibiletti M.G., Capella C., Broggini, M. CHK1 frameshift mutations in genetically unstable colorectal and endometrial cancers // Genes Chromosomes Cancer. 1999. — V. 26. — P. 176−180
  60. Blagosklonny M.V., Pardee A.B. The Restriction Point of the Cell Cycle // Cell Cycle.-2002.-V. 1.-P. 103−110
  61. Bogdan I., Gerashchenko B. I, Howell R.W. Bystander Cell Proliferation Is Modulated by the Number of Adjacent Cells That Were Exposed to Ionizing Radiation. // Cytometry. Part A. 2005. — № 66. — P. 62−70
  62. Born T. L., Frost J. A., Schonthal A., Prendergast G. C., Feramisco J. R. c-Myc cooperates with activated Ras to induce the cdc2 promoter // Molecular and Cellular Biology. 1994. — V. 14. — P. 5710−5718
  63. Broil R. The proliferation marker pKi-67 becomes masked to MIB-1 staining expression of its tandem repeats // Histochem Cell Biology. 2002. — V. 118. — № 5. -P. 415−422.
  64. Burdon R.H. Superoxide and hydrogen peroxide in relation to mammalian cell proliferation // Free Radical Biology and Medicine. 1995. — Vol. 18. — P. 775−794
  65. Burke D.J. Complexity of the spindle checkpoint // Current Opinion in Genetics and Development. 2000. — V. 10. — P. 26−31
  66. Campana D., Coustant-Smith E., Janossy G. Double and triple staining methods for studying the proliferation activity of human B and T lymphoid cells // Immunology Methods. 1988. — № 107. — P. 79−88
  67. Campana D., Janossy G. Proliferation of normal and malignant human immature lymphoid cells//Blood. 1988.-V. 71.-P. 1201−1210
  68. Cha Soon K., Kim J.K., Nam S. Y., Yang K. H., Jeong M., Ki H. S. Low-dose radiation stimulates the proliferation of normal human lung fibroblasts via a transient activation of Raf and Akt // Cells. 2007. — Vol. 24. — № 3. — P. 424−430
  69. Chiang C.S., McBride W.H. Radiation enhanced TNF-a production by murine brain cells // Brain Research. 1991. — V. 566 — P. 265−269
  70. Chu-Xia D. Survey and summary BRCA1: cell cycle checkpoint, genetic instability, DNA damage response and cancer evolution // Nucleic Acids Research. 2006. — Vol. 34.-N5.- P. 51 416−1426
  71. Clevers H., Alarcon B., Wileman T., Terhost C. The T cell receptor/CD3 complex: A dynamic protein ensemble // Annual Review of Immunology. 1988. — V. 6.1. P. 629−662
  72. Constable P., Crowston J.G., Occleston N.L., Cordeiro M.F., Khaw P. T. Long term growth arrest of human Tenon’s fibroblasts following single applications of |3-radiation // British Journal of Ophthalmology. 1998. — № 82. — P. 44852
  73. Cordone I., Matutes E., Catovsky D. Characterization of normal peripheral blood cells in cycle identified by monoclonal antibody Ki-67 // Clinical Pathology. 1992. -№ 45.-P. 201−205.
  74. Cox L.S., Lane D.P. Tumour suppressors, kinases and clamps: How p53 regulates the cell cycle in response to DNA damage // BioEssays. 1995. — V. 17. — P. 501−508
  75. Crompton NEA. Programmed cellular response to ionizing radiation damage // Acta Oncology. 1998. — V. 37. — P. 129 -142
  76. David O Morgan. Cell cycle / Princile of control. New science press.- Ltd.- 2007. 172p.
  77. Di Leonardo A, Linke S.P., Clarkin K. DNA damage triggers a prolonged p53-dependent G1 arrest and long-term induction of Cipl in normal human fibroblasts // Genes and Development. 1994. — V. 8. — P. 2540−2551
  78. Edwards, E., Geng, L., Tan, J., Onishko, H., Donnelly, E. Phosphatidylinositol 3-kinase/Akt signaling in the response of vascular endothelium to ionizing radiation // Cancer Research. 2002. — № 62. — P. 4671−4677
  79. Elledge S. J. The DNA damage response: putting checkpoints in perspective // Genes and Development. 1996. — V. 408(6811). — P. 433−9
  80. Elledge S.J. Cell cycle checkpoints: preventing an identity crisis // Science. -1996.-V. 274.-P. 1664−1672
  81. Enoch T., Norbury C. Cellular responses to DNA damage: Cell-cycle checkpoints, apoptosis and the roles of p53 and ATM // Trends in Biochemical Sciences. 1995. -V.20.-P. 426−430
  82. Fabris N., Mocchegiani E., Muzzio U. M., Provincialli M. Zinc, Immunity and aging. // Goldstein A.L., ed. Biomedical Advances in Aging. N. Y.- London: Plenum Press, 1990.-P. 271−281
  83. Falck J., Lukas C., Protopopova M., Lukas J., Selivanova G., Bartek, J. Functional impact of concomitant versus alternative defects in the Chk2-p53 tumour suppressor pathway // Oncogene. 2001. — № 20. — P. 5503−5510
  84. Feinendegen L. E. Evidence for beneficial low level radiation effects and radiation hormesis // British Journal of Radiology.- 2005. V. 78, — P. 3−7
  85. Feng~X 7-H.7Liarig Y~ Y., Liang" Mr, Zhai W.,"Lin 'Xia (Jan.)."Direct interaction of c-Myc with Smad2 and Smad3 to inhibit TGF-beta-mediated induction of the CDK inhibitor pl5 (Ink4B) // Molecular Cell. 2002. — V. 9 (1).- P. 133−143
  86. Furnari B., Blasina A., Boddy M.N., McGowan C.H., and Russell P. Cdc25 inhibited in vivo and in vitro by checkpoint kinases Cdsl and Chkl // Molecular Biology Cell. 1999. — V. 10. P. 833−845
  87. Furuno N, den Elzen N, Pines J Human cyclin A is required for mitosis until mid prophase // Ceil Biolology. 1999. — V. 147(2). — P. 295−306
  88. Galdiero M., Cipollaro G.D., Folgore A., Cappello M., Gibbe A., Sasso F.S. Effects of irradiation doses on alteration in cytokine release by monocytes and lymphocytes //Medicinal Chemistry. 1994. — V. 25. — P. 23−40
  89. Gangulu B. B. Cell division, chromosomal damage and micronucleus formation in peripheral lymphocytes of healthy donors: related to donor’s age // Mutation Research. 1993. — Vol. 295. — P. 135−148
  90. Gatei M., Sloper K., Sorensen C.S., Syljuasen R., Falck J., Hobson J., Zhou B.B., Bartek, J., Khanna, K.K. ATM and DBS1 dependent phosphorylation of CHK1 on S317 in response to IR // Biological Chemistry. 2003. — V. 278. — P. 14 806−14 811
  91. Gerashchenko B.I., Howell R.W. Cell proximity is a prerequisite for the proliferative response of bystander cells co-cultured with cells irradiated with gamma-rays // Cytometry. 2003. — V. 56A. P. 71−80
  92. Gerashchenko B. I, Howell R.W. Flow cytometry as a strategy to study radiation-induced bystander effects in co-culture systems // Cytometry. 2003., — V. 54A. P. 1−7
  93. Gerashchenko B. I, Howell R.W. Proliferative response of bystander cells adjacent to cells with incorporated radioactivity // Cytometry. 2005. V.63(2).- P. 118 -124
  94. Guan-Jun W., Lu C. Induction of cell-proliferation hormesis and cell-survival adaptive response in mouse hematopoietic cells by whole-body low-dose radiation // Toxicological sciences. 2000. — V. 53. — P. 369−376
  95. Gudkov A.V., Komarova A. Prospective therapeutic applications of p53 inhibitors //Nature. 2005. — V. 447. — P. 1130−1134
  96. Guo Y., Sklar G.N., Borkowski A., Kyprianou N. Loss of the cyclin-dependent kinase inhibitor p27(Kipl) protein in human prostate cancer correlates with tumor grade //Clinical Cancer Research. 1997. — V. 3. — P. 2269−2274
  97. Harms-Ringdahl M. Some aspects on radiation induced transmissible genomic instability // Mutation Research. 1998. — V. 404. — P. 27- 33
  98. Harrison D.E., Astle C.M., Delaittre J. A, Lost of proliferative capacity in immunohemopoietic stem cells caused by serial transplantation rather than ageing // Experimental Medicine. 1978. -V. 147. — P. 1526−1531
  99. Hartwell L. Introduction to cell cycle controls / In: Cell Cycle Control. Ed. by Hutchison C., Glover D.M., Oxford University Press, 1995. — P. 1−15
  100. Hartwell L., Weinert T. Checkpoints: Controls that ensure the order of cell cycle events // Science. -1989. V. 246. — P. 629−634
  101. Hendrikse A.S., Hunter A.J., Keraan M. Effects of low dose irradiation on TK6 and U937 cells: Induction of p53 and its role in cell-cycle delay and the adaptive response//Radiation Biology. 2000. — V.76. — P. 167−178
  102. Hyun S.J., Yoon M.Y., Kim T. H., Kim J. H. Enhancement of mitogen-stimulated proliferation of low dose radiation-adapted mouse splenocytes // Anticancer Research. 1997.-V. 171.-P. 225−229
  103. IAEA. International Atomic Energy Agency Technical Reports Series No. 405. Cytogenetic Analysis for Radiation Dose Assessment: A Manual. 2001. — P. 3045
  104. Igietseme J.U., Smith K., Simmon A., Rayford P.L. Effect of y-irradiation on the effectors function of T-lymphocytes in microbial control // International Journal of Biology. 1995. — V. 67 (5). — P. 557−564
  105. Iliakis G., Wang Y., Guan J., Wang H. DNA damage checkpoint control in cells exposed to ionizing radiation // Oncogene. 2003. — V. 22. — P. 5834−5847
  106. Iyer R., Lehnert B.E. Factors underlying the cell growth-related bystander responses to alpha particles // Cancer Research. 2000. — V. 60. — P. 1290−1298.
  107. Jaffe D., Bowden T. G. Ionizing radiation as an initiator: effects of proliferation and promotion time on tumor incidence in micel // Cancer Research. 1987. — V. 47. — P. 6692−6696
  108. John R., Jackson S. P. Interfaces between the detection, signaling and repair of DNA damage // Science. 2002. — Vol. 297 -. №. 5581 — P. 547−551
  109. Jones S.M., Kazlauskas A. Growth-factor-dependent mitogenesis requires two distinct phases of signaling //National Cell Biology. 2001. — V. 3. — P. 165−172
  110. Jong-Sung P., Liang Q., Zao-Zong S. Ionizing radiation modulates vascular endothelial growth factor (VEGF) expression through multiple mitogen activated protein kinase dependent pathways // Oncogene. 2001. — № 20. — P. 3266 — 3280
  111. Kara A. Nyberg, Michelson R.J., Putnam Ch.W., Weinert T.A. Toward maintaining the genome: DNA damage and replication checkpoints // Annual Review of Genetics Annual Review of Genetics. 2002. — Vol. 36. — P. 617−656
  112. Kara Zeng Y., Forbes K.C., Wu Z., Moreno S., Piwnica-Worms H., Enoch T. Replication checkpoint requires phosphorylation of the phosphatase Cdc25 by Cdsl or Chkl //Nature. 1998. -V. 395. P. 507−510
  113. Kastan M.B. Lim D.S. The many substrates and functions of ATM // Molecular Cell Biology.-2001.- № 1.-P. 179−186
  114. Kastan M.B., Bartek J. Cell-cycle checkpoints and cancer // Nature. 2004. — V. 432.-P. 316−323
  115. Khaw P. T, Ward S., Porter A. The long-term effects of -fluorouracil and sodium butyrate on human Tenon’s fibroblasts // Investigative Ophthalmology and Visual Science. 1992. — V. 33. — P. 2043−2052
  116. Kops G.J., Weaver B.A., Cleveland D.W. On the road to cancer: aneuploidy and the mitotic checkpoint //Nature Reviews Cancer. 2005. — V. 5. — P. 773−785
  117. Kyoizumi S., Akiyama M., Hirai Y. Spontaneous loss and alteration of antigen receptor expression in mature CD4+ T cells // Experimental Medicine. 1990. — V. 171.-P. 1981−1999
  118. Lee S. W., Fang L., Igarashi M., Ouchi, T., Lu, K. P. Sustained. activation of Ras/Raf/mitogen-activated protein kinase cascade by the tumor suppressor p53 // Proceedings of the National Academy of Sciences. 2000. — V. 97. — P. 8302−8305
  119. Little J.B. Radiation-induced genomic instability // Radiation Biology. 1998. — V. 74.-№ 6.-P. 663−671
  120. Liu Q., Guntuku S., Cui X.S. Chkl is an essential kinase that is regulated by Atr and required for the G (2)/M DNA damage checkpoint // Genes and Development.2000.-V. 14.-P. 1448−1459
  121. Lodish. H., Baltimore D., Berk A., Zipursky S.L., Matsudaira P., Darnell Z. Molecular cell biology // Scientific American Books Ink. New York. — Fifth Edition. — 1995. — 973p.
  122. Lopez F., Belloc F., Lacombe F., Dumain P., Reiffers J., Bernard P. and Boisseau M.R. Modalities of synthesis of Ki67 antigen during the stimulation of lymphocytes // Cytometry. -1991. V. 12. — P. 42−49
  123. Maryam N., Hadjati J., Khabiri A, Vodjgani M., Khadem-Shariat H. Effects of Gamma Irradiation on Proliferation and IL-5 Production of Peripheral Blood Lymphocytes // Iranian Biomedical Journal. 2004. — V. 8 (4). — P. 211−214
  124. M.S., Strasfeld L., Allen C. 1994. Testing the role of p53 in the expression of genetic instability and apoptosis in ataxia telangiectasia // Radiation Biology. -1994.-V. 44.-P. 141−149
  125. Michael W. M., Newport J. Coupling of mitosis to the completion of S phase through Cdc34-mediated degradation of Weel // Science. 1998. -V. 282. — P. 18 861 889
  126. Moberg K. M., Starz A., Lees J. A. E2F-4 switches from pl30 to pl07 and pRB in response to cell cycle reentry // Molecular Cell Biology. 1996. — V. 16(4). P. 14 361 449
  127. Mochida S., Yanagida M. Distinct modes of DNA damage response in S. pombe GO and vegetative cells // Genes to Cells. 2006. — № 11. — P. 13−27
  128. Muller W-U., Streffer C. Biological indicators for radiation damage // Radiation Biology. 1991. — V. 59. — P. 863−873
  129. Nabil H. Ch., Malikzay A., Appel M., Halazonetis Th.D. Chk2/hCdsl functions as a DNA damage checkpoint in G? by stabilizing p53 // Genes and Development. -2000. V. 14(3). — P. 278−288
  130. Nalapareddy K., Choudhury A.R., Gompf A., Zhenyu J. CHK2-independent induction of telomere dysfunction checkpoints in stem and progenitor cells // EMBO. -2010.-Vol. 12.-P. 897−935
  131. Nevarez J. A, Parrish R. K, Heuer D. K. The effect of beta irradiation on monkey Tenon’s capsule fibroblasts in tissue culture // Current Eye Research. 1987. -V.6. -P. 719−23
  132. Nold J.D., Miller G.K., Benjamin S.A. Prenatal and neonatal irradiation in dogs: hematologic and hematopoietic responses // Radiation research. 1987. — № 112. — P. 490−499.
  133. Nyberg K.A., Michelson Rh. J., Putnam C.W., and Weinert T.A. Toward maintaining the genome: DNA Damage and Replication Checkpoints // Annual Review of Genetics. 2002. — V. 36. — P. 617−656
  134. O’Connor P.M., Jackman J., Jondle D., Bhatia K., Magrath I., Kohn K.W. Role of the p53 tumor suppressor gene in cell cycle arrest and radiosensitivity of Burkitt’s lymphoma cell lines // Cancer Research. 1993. — V. 53. — P. 4776^1780
  135. O’Connell M.J., Walworth N.C., Carr A.M. The G2-phase DNA-damage checkpoint // Trends Cell Biology. 2000. — V. 10(7). — P. 296−303
  136. Ohshima T., Suzuki H., Morimura T., Ogawa M., Mikoshiba K. Modulation of Reelin signaling by Cyclin-dependent kinase 5 //Brain Research. 2007. — V. 1140.-P. 84−95
  137. Okada S., Ouchi T. Cell cycle differences in DNA damageinduced BRCA1 phosphorylation affect its subcellular localization // Biology Chemically. 2003. — V. 278.-P. 2015−2020
  138. Pines J., Hunter T. Cyclin-dependent kinesis: an embarrassment of riches? / Cell Cycle Control/ ed. Hutchison C, Glover D. -New York- Oxford Univ. Press, 1995. -P. 144−176
  139. Pompei F., Poikanov M., Wilson R. Age distribution of cancer in mice: the incidence turnover at old age // Toxicology and Industrial Health. 2001. — Vol. 17. -P. 7−16
  140. Prussin C., D. Metcalfe. Detection of intracytoplasmic cytokine using flow cytometry and directry conjugated anti-cytokine antibodies // Immunology Methods. 1995.- Vr3" — № 188: -«P. 117−128
  141. Raaphorst, G. P., Boyden, S. Adaptive response and its variation in human normal and tumour cells // Radiation Biology. 1999. — V. 75. — P. 865−873
  142. Rozgaj R., KaSuba V., Sentija K. Prlid Radiation-induced chromosomal aberrations and haematological alterations in hospital workers // Occupational Medicine and Toxicology. -1999. V. 49. — N. 6. — P. 353−360
  143. Rubin I. The disparity between human cell senescence in vitro and lifelong replication in vivo // Nature Biotechnology. 2002. V. — 20. — P. 675−678
  144. Sachsenberg N., Perelson S., Yerly G.A., Schockmel D., Leduc B., Hirschel L. Turnover of CD4+ and CD8+ T lymphocytes in HIV-1 infection as measured by Ki-67 antigen //Experimental Medicine. 1998. — V. 187. — P. 1295−1303
  145. Satyanarayana A., Hilton M.B., Kaldis Ph. p21 Inhibits Cdkl in the Absence of Cdk2 to Maintain the Gl/S Phase DNA Damage Checkpoint // Molecular Biology Cell.- 2008. V. 19(1). — P.65- 67 —
  146. Schwarting R, Stein H. High proliferative activity of Reed Sternberg associated antigen Ki-1 positive cells in normal lymphoid tissue // Clinical Pathology. 1986. -V. 39.-P. 993−997
  147. Schwarzl J. K., Lovlyl C. M, Piwnica-Worms H. Regulation of the Chk2 Protein Kinase by Oligomerization-Mediated cis- and trans-Phosphorylation' // Nature. -2003.-Vol. l.-P. 598−609
  148. Serrano M., Hannon G. J., Beach D. A. New regulatory motif in cell-cycle control causing specific inhibition of cyclin D/CDK4 //Nature. 1993. — V. 366. — P. 704−707
  149. Shao C, Furusawa Y, Aoki M, Matsumoto H, Ando K. Nitric oxide mediated bystander effect induced by heavy-ions in human salivary gland tumor cells // Radiation Biology. 2002. — V. 78. — P. 837−844
  150. Sherr C.J. D-type cyclins. // Trends in Biochemical Sciences. 1995. — V. 2. — P. 187−190
  151. Sullivan A., Yuille M., Repellin C., Reddy A., Reelfs O., Bell A., Dunne B., Gusterson B.A., Osin P., Farrell P. J Concomitant inactivation of p53 and Chk2 in breast cancer // Oncogene. 2002. — № 21.- P. 1316−1324
  152. Suzuki K., Ojima M., Kodama S., Watanabe M. Delayed activation of DNA damage checkpoint and radiation-induced genomic instability // Mutation Research. -2006. V. 597. — № 1−2. — P. 73−77
  153. Suzuki K., Kodama S., and Watanabe M. Extremely low-dose ionizing radiation causes activation of mitogenactivated protein kinase pathway and enhances proliferation of normal human diploid cells // Cancer Research. 2001 — V. 61. — P. 5396−5401
  154. Takai H., Naka K., Okada Y., Watanabe M., Harada N., Saito S., Anderson C.W., Appella, E., Nakanishi M., Suzuki H. Chk2- deficient mice exhibit radioresistance and defective p53-mediated transcription // EMBO. 2002. — V.21. — P. 5195−5205
  155. Thotnpson J. S., Robbins J., Cooper J. K. Nutrition and immune function in the geriatric population // Clinics in Geriatric Medicine. 1987. — Vol. 3. — P. 309−317
  156. Umeki S., Kyoizumi S., Kusunoki Y., Nakamura N., Sasaki M., Mori., Ishikawa Y., Akiyama M. Flow cytometric measurements of somatic cell mutation in thorotrast patients // Cancer Research. 1991, — V. 82. — P. 1349−1353
  157. Veronique G., Roux P., Wynford-Thomas D., Brondello J.M., Dulic V. DNA damage checkpoint kinase Chk2 triggers replicative senescence // EMBO. 2004. -V. 23.-P. 2554−256
  158. Wang Q., Zhang H., Fishel R., Greene M.I. BRCA1 and cell signaling // Oncogene. 2000. — V. 19. — P. 6152−6158
  159. Wang Y., Jacobs C., Hook K. E, Duan H., Booher R.N., Sun Y. Binding of 14−3-3beta to the carboxyl terminus of Wee 1 increases Weel stability, kinase activity, and G2-M cell population // Cell Growth Differen. 2000. — V. 11(4). — P. 211−219
  160. Weinert T., Hartwell L. The RAD9 gene controls the cell cycle response to DNA damage in Saccharomyces cerevisiae // Science. 1988. — V. 241. — P. 317−322
  161. Weinert T. DNA damage and checkpoint pathways: Molecular anatomy and interactions with repair // Cell. 1998. — № 94. — P. 555−558
  162. Wu X., Webster S.R., Chen J. Characterization of tumor-associated Chk2 mutations // Biology Chemistry. 2001. — V. 274. — P. 2971−2974
  163. Xu B., Kim S., Lim D., Kastan M.G. Two Molecularly Distinct G2/M Checkpoints Are Induced by Ionizing Irradiation // Molecular and cellular biology. -2002.-V. 22.-P. 1049−1059
  164. Xu Y., Baltimore D. Dual roles of ATM in the cellular response to radiation and in cell growth control // Genes Development. 1996. — V. 10(19). — P. 2401−2410
  165. Xu B., Kim S., Kastan M.B. Involvement of Brcal in S-phase and G2-phase checkpoints after ionizing irradiation // Molecular Cell Biology. 2001. — V.21. — P. 3445−3450
  166. Xuang L. Radiation-induced genomic instability and its implications for radiation carcinogenesis // Oncogene. 2003. — V. 22. — № 37. — P. 5848−5854
  167. Yang Guang, Liu Chang, Jia Ting-zhen. Effect of gamma-ray irradiation on cord blood lymphocyte proliferation and NK cell activity // Chinese Journal of Radiological medicine and Protection. 2006. — Vol. 26. — Is. 01. — P. 60−69
  168. Yoshida, N., Imada, H., Kunugita, N., Norimura, T. Low doseradiation-induced adaptive survival response in mouse spleen T-lymphocytesin vivo // Radiation Research. 1993. — V.34. — P. 269−276
  169. Zhao H., Watkins J.L., Piwnica-Worms H. Disruption of the checkpoint kinase 1/cell division cycle 25A pathway abrogates ionizing radiation- induced S and G2 checkpoints // Proceedings of the National Academy of Sciences. 2002. — P. 14 795— 14 800
  170. Zhiyun C., Kazuo S. Enhancement of radiation-induced apoptosis by preirradiation with low-dose X-rays in human leukemia MOLT-4 cells // Radiation Research. 2005. — V. 45. — P. 239−243
  171. Zhou X.Y., Wang X., Hu B., Guan J., Iliakis G., Wang, Y. An ATM-independent S-phase checkpoint response involves CHK1 pathway // Cancer Research. -2002. -V. 62. -P. 1598−1603
  172. Zhou B.B., Elledge S.J. The DNA damage response: putting checkpoints in perspective //Nature. 2000 — № 408, — P. 43339
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?