Синовиальная саркома: иммуногистохимические критерии, дифференциальная диагностика

ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

V ' экспрессии ЭМА и пан-цитокератина обнаруживается в МСС типичного строения, а наиболее низкаяв МСС мелкокруглоклеточного и мономорфно-веретеноклеточного строения. В связи с этим можно предположить, что в МСС количество опухолевых клеток с признаками эпителиального фенотипа определяет степень дифференцировки этих новообразований и, следовательно, их гистологическое строение. Наиболее типичный… Читать ещё >

Содержание

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
ГЛАВА I. МОРФОЛОГИЧЕСКАЯ (ГИСТОЛОГИЧЕСКАЯ, УЛЬТРАСТРУКТУРНАЯ, ИММУНОМОРФОЛОГИЧЕСКАЯ) ДИАГНОСТИКА СИНОВИАЛЬНЫХ САРКОМ (ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ)
- 1. 1. ОБЩИЕ СВЕДЕНИЯ
- 1. 2. ГИСТОЛОГИЧЕСКАЯ КАРТИНА
- 1. 3. УЛЬТРАСТРУКТУРНАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА
- 1. 4. ИММУНОФЕНОТИПИРОВАНИЕ
ГЛАВА II. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
ГЛАВА III. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ
- 3. 1. БИФАЗНЫЕ СИНОВИАЛЬНЫЕ САРКОМЫ (ОБЩИЕ СВЕДЕНИЯ)
  - 3. 1. 1. Гистологическая картина
  - 3. 1. 2. Улътраструктурное исследование
  - 3. 1. 3. Ичмунофенотипирование
- 3. 2. НОВООБРАЗОВАНИЯ ДИАГНОСТИРОВАННЫЕ РАНЕЕ КАК МОНОФАЗНЫЕ СИНОВИАЛЬНЫЕ САРКОМЫ (ОБЩИЕ СВЕДЕНИЯ)
- 3. 3. ГИСТОЛОГИЧЕСКАЯ КАРТИНА
- 3. 4. Гистологическая характеристика веретеноклеточных сарком с псевдоэпителиальным компонентом
  - 3. 4. 1. Улътраструктурное исследование
  - 3. 4. 2. Илтунофенотипирование
- 3. 5. Гистологическая характеристика гемангиоперицитомоподобных сарком
  - 3. 5. 1. Улътраструктурное исследование
  - 3. 5. 2. Ичмунофенотипирование
- 3. 6. Гистологическая характеристика мелкокруглоклеточных сарком
  - 3. 6. 1. Улътраструктурное исследование
  - 3. 6. 2. Ичмунофенотипирование
- 3. 7. Гистологическая характеристика мономорфно-овально и/или веретеноклеточных сарком
  - 3. 7. 1. Улътраструктурное исследование
  - 3. 7. 2. Ичмунофенотипирование
ГЛАВА IV. ОБСУЖДЕНИЕ ПОЛУЧЕННЫХ РЕЗУЛЬТАТОВ
ВЫВОДЫ

Синовиальная саркома: иммуногистохимические критерии, дифференциальная диагностика (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность темы

Синовиальные саркомы (СС) — одни из сложных в диагностическом плане злокачественных опухолей мягких тканей и характеризуются крайне агрессивным клиническим течением. Гистогенез СС до последнего времени вызывает дискуссию. Эти опухоли тяготеют к определенной локализации, часто располагаясь в области суставов, как правило, у лиц мужского пола. Однако, по данным научной литературы, СС в большинстве случаев не возникают, из клеток собственно синовиальной мембраны или сухожильного влагалища, а развиваются из околосуставной или околосухожильной мезенхимы. Более того, в литературе описаны СС глотки, гортани, сердца, легких, диафрагмы, почек и т. д. [78]. Поэтому термин «синовиальная саркома» фактически не обладает гистогенетическим характером, а только указывает на способность саркоматозной ткани дифференцироваться в структуру синовиального типа. Согласно последней классификации ВОЗ выделяют 2 формы СС: бифазную и монофазную, которые рассматриваются в разделе смешанной группы опухолей, аналогичной группе опухолей спорного и неясного гистогенеза.

Наиболее типичный представитель ССбифазная синовиальная саркома (БСС), для которой характерны структуры, свойственные синовиальной оболочке, и поэтому, в отличие от монофазной формы, в диагностике этих опухолей на светооптическом уровне не возникает трудностей. В связи с этим в литературе имеется мало данных, посвященных детальной иммуногистохимической характеристике БСС.

Монофазные синовиальные саркомы (МСС) характеризуются весьма вариабельной гистоструктурой, что часто создает существенные трудности в верификации диагйоза этих опухолей. Иммуногистохимический метод, безусловно, расширил возможности морфологического анализа МСС в диагностической практике [21].

Для СС специфическими маркерами являются виментин, эпителиальный мембранный антиген (ЭМА) и пан-цитокератин. В настоящее время к этому ряду добавился еще один маркерMAGE-1, характеристика которого изучена недостаточно. Кроме того, в литературе нет достаточных сведений об иммуногистохимических критериях СС, имеющих большое значение в дифференциальной диагностике. В то же время мало изучены вопросы, касающиеся связи ультраструктурной и иммунофеыотипической дифферен-цировки клеток при различных вариантах МСС.

Прояснение вышеизложенных аспектов позволит разработать наиболее стабильные и информативные иммунофенотипические критерии в диагностике СС, что делает подобное исследование вполне актуальным и необходимым как для морфологической практики, так и для клинической онкологии.

Цель работы.

Целью данного исследования является разработка иммуно-фенотипических критериев диагностики СС и определение диагностической значимости иммуногистохимического исследования в этих новообразованиях.

Задачи исследования.

1. Иммуногистохимическим методом исследовать набор опухолей, диагностированных ранее как СС от больных, проходивших лечение в ГУ РОНЦ им. Н. Н. Блохина РАМН с 1992 по 2004 гг.

2. Дать иммуногистохимическую характеристику БСС, проанализировать характер экспрессии классических и неспецифических маркеров в эпителиоидном и мезенхимальном компонентах опухоли.

3. На основании комплексного патоморфологического исследования идентифицировать МСС, выделить группу ошибочно верифицированных опухолей и определить их нозологическую принадлежность.

4. Дать иммуногистохимическую характеристику МСС и проанализировать характер экспрессии классических и неспецифических маркеров в каждом гистологическом варианте, оценить их дифференциально-диагностическое значение.

5. Сравнить результаты иммуногистохимического исследования с результатами ультраструктурной интерпретации субстрата заболевания.

6. Исследовать и определить возможности нового маркера MAGE-1 в диагностике СС.

7. Разработать и выделить наиболее информативные иммуногисто-химические критерии СС, имеющие диагностические значение.

Научная новизна.

Определены наиболее стабильные и информативные иммунофено-типические критерии, позволяющие дифференцировать гистологические варианты МСС. На этой основе выявлены иммуноморфологические особенности каждого гистологического варианта МСС.

Научно-практическая значимость.

Разработан комплекс диагностических критериев СС на основе выявленных иммуногистохимических особенностей опухолевых клеток. Установлены наиболее информативные иммуногистохимические признаки, позволяющие дифференцировать СС с близкими по морфологической характеристике новообразованиями.

выводы Г. 1 Проведенное комплексное пагоморфологическое исследование 100 -" новообразований. диагностированных ранее на светооптическом уровне как.

• СС/иСф.г/^рдшло диагноз только е 85 (85%) случаях: из них БСС-12 случаев, — МСС-73 случая. В 5 случаях опухолевые клетки имели фенотип ППНЭО, в 4.

• случаях—ЗООПН и в 2- ФС. В 4 новообразованиях отсутствовала какая-либо дифференцировка опухолевых клеток, что позволило говорить только о недифференцированной опухоли.

2. Во всех 12 БСС отмечалась экспрессия классических маркеров в обоих компонентах опухоли, при этом для мезенхимального компонента наиболее характерна экспрессия виментина и MAGE-1, а для эпителиоидного-ЭМА и пан-цитокератина.

3. В БСС СД 99 и S-100 протеин показали высокую частоту экспрессии. • Экспрессия СД 99 была выявлена во всех 12 БСС, a S-100 протеинав 8 случаях. Кроме того, эти маркеры экспрессируются в обоих компонентах опухоли, но с различной интенсивностью. Для мезенхимального компонента наиболее типична экспрессия СД 99, а для эпителиоидногоS-100 протеина.

4. Большинство МСС имеют характерный иммунофенотип. В нашем исследовании в 57 (78%) случаях из 73 (100%) ретроспективно верифицированных МСС экспрессировались все классические маркеры. Однако в ряде случаев эти опухоли имеют иммунофенотипические отклонения по основным иммуногистохимическим маркерам. В таких случаях основной задачей иммуногистохимического исследования является максимально возможное исключение других нозологических форм, с которыми приходится проводить дифференциальную диагностику.

5. В большинстве случаев иммунофенотип СС подтверждается электронно-микроскопическим исследованием. Однако в 3 (3,5%) случаях при отсутствии иммунофенотипа СС были обнаружены характерные ультраструктурные признаки и, наоборот, в 7 (8%) случаях иммуногисто-химическое исследование позволило верифицировать СС, но при электронно-микроскопическом исследовании отсутствовали дифференциально-диагностические признаки этих сарком, что подчеркивает необходимость использования комплексного патоморфологического исследования в диагностике этих новообразований. s.

6. Полученные данные позволяют утверждать, что MAGE-1 в СС имеет высокую частоту экспрессии. В 81 случае (95%) из 85 (100%) ретроспективно верифицированных СС выявлена положительная экспрессия MAGE-1, что, в свою очередь, доказывает важную диагностическую роль этого маркера в дифференциальной диагностике СС.

7. В МСС среди классических маркеров СС высокую интенсивность экспрессии показали виментин и MAGE-1. Результаты нашего исследования показали, что из 73 (100%) МСС в 55 (75%) и 53 (72%) случаях более 25% клеток опухолевой популяции экспрессировали виментин и MAGE-1 соответственно, в то же время количество ЭМА и пан-цитокератин-позитивных клеток только в 40 (55%) и 16 (22%) наблюдениях соответственно преодолело 25%- ный барьер.

8. В МСС положительная экспрессия СД 99 обнаружена в 47 (64%) наблюдениях, a S-100 протеинав 28 (38%) случаях. Вместе с тем в подавляющем большинстве случаев эти маркеры имели низкую интенсивность экспрессии, что, на наш взгляд, явилось важным иммуногистохимическим критерием в дифференциальной диагностике этих сарком с ППНЭО и ЗООПН.

9. В МСС интенсивность экспрессии ЭМА и пан-цитокератина, в отличие от виментина и MAGE-1, зависит от гистологического строения этих опухолей. В нашем исследовании было выявлено, что наиболее высокая интенсивность.

Заключение

Таким образом, проведенное комплексное патоморфологическое исследование показало, что 24 из 34 сарком, имевших мономорфно-веретено и/илиовальноклеточное строение и диагностированных ранее на светооптическом уровне как МСС, обладали фенотипом СС, а из оставшихся 10 случаев 4 были верифицированы как ЗООПН, 2- ФС и 4- НС.

Показать весь текст

Список литературы

Катенкалт Д., Перевощиков А. Г., Райхлин Н. Т. Электронно-микроскопическое исследование монофазных веретеноклеточных синовиальных сарком. Арх. пат.-1984 г- 4- 44−50.
Краевский Н.А., Смольянников А. В., Саркисов Д. С. Патолого-анатомическая диагностика опухолей человека. Руководство для врачей. Москва-1993г- том 1- 315−327.
Петров С.В., Райхлин Н. Т. Руководство по иммуногистохимической диагностике опухолей человека. Казань-2004 г.
Райхлин Н.Т., Давид Г., Лапиш К. Ультраструктура опухолей человека. Руководство. Москва- 1981 г- 13−20.
Ягубов А.С., Кац В.А. Электронная микроскопия опухолей мягких тканей. Руководство. Новосибирск-1984 г- 112−127.
Aziza J, Mazerolles C, Selves J et al. Comparison of the reactivities of monoclonal antibodies QBEND 10 (CD34) and BNH9 in vascular tumors. Appl. Immunohistochem. 1993- 1- 51−57.
Antonescu CR, Tschernyavsky SJ, Woodruff JM et al. An immunohistochemical analysis of clear cell sarcoma. J. Mol. Diagn. 2002- 4- 44−52.
Antonescu CR, Argani P, Erlandson RA et al. Skeletal and extraskletal myxoid chondrosarcoma: a comparative clinicopathologic, immunologic and ultrastructural study. Cancer. 1998- 83- 1504−1521.
Antonescu CR, Busam KJ, Iversen К I et al. MAGE antigen expression in monophasic and biphasic synovial sarcoma. Hum Pathol. 2002- 33- 225−9.
Achim A, Jungbluth, Biisam et al. Expression of MAGE-antigens in normal tissue and cancer, lnt J Cancer. 2000- 85- 460−465.
Brooks JS. Immunohistochemistry in the differential diagnosis of soft tissue tumors. Monogr. Pathol. 1996- 38- 65−128.
BarnoudR, Delattre O, Peoc’h M et al. Desmoplastic small round cell tumor: RT-PCR analysis and immunohistochemical detection of the Wilm’s tumor gene WT1. Pathol Res. Pract. 1998- 194- 693−700.
Bacchi CE, Bonetti F, Pea M et al. Myogenin is required for late but not early aspects of myogenesis during mouse development. J. Cell Biol. 1995- 128- 563 576.
Cappello F, Bellafiore M, Bucchieri F et al Poorly differentiated synovialsarcoma. Pathol Oncol Res. 2001- 7- 63−6.
Chan JK. Advances in immunohistochemistry: impact on surgical patology practice. Semin.Diagn.Pathol. 2000- 17- 170−177.
Coindre JM, de Mascarel A, De Trojani MM. Immunohistochemistry in the diadnosis of soft tissue tumors. J. Histopathol. 2003- 43- 1−16.
Cui S, Hano H, Harada T et al. Evalution of new monoclonal anti-MyoDl and anti-myogenin antibodies for the diagnosis of rhabdomyosarcoma. Pathol. Int. 1999- 49- 62−68.
Chase DR, Enzinger FM, Weiss SW et al. Keratin in epithelioid sarcoma. An immunohistochemical study. Am. J. Surg. Pathol. 1984- 8- 435−441.
Dardick I, Ramjohn S, Thomas MJ et al. Synovial sarcoma. Inter-relationship of the biphasic and monophasic subtypes. Pathol Res Pract. 1991- 187(7) — 871−85.
De Silva M V C, McMahon A D, Pater son L et al. Identification of poorly differentiated synovial sarcoma. Histopathology. 2003- 43- 220−230.
Dalerba P, Frascella E, Macino В et al. MAGE, BAGE an GAGE gene expression in human tumors. Cancer Res. 2000- 60(14) — 3848−55.
Dei Tos АР, Wadden С, Fletcher CD. S-100 protein staining in synovial sarcoma. Appl. Immunohistochem. 1997- 5- 73−77
Dei Tos AP, Wadden C, Calonje E. Immunohistoehemieal demonstration of glycoprotein p30/32 (MIC2) (CD99) in synovial sarcoma: a potential cause of diagnostic confusion. Appl. Immunohistochem. 1995- 3- 168−173.
Dias P, Parham DM, Shapiro DN et al. Myogenic regulatory protein (MyoDl) expression in childhood solid tumors: diagnostic utility in rhabdomyosarcoma. Am. J. Pathol. 1990- 137- 1283−1291.
Dias P, Chen B, Dilday В et al. Strong immunostaining for MyoDl in rhabdomyosarcoma is significantly associated with tumors of the alveolar subclass. Am. J. Pathol. 2000- 156- 399−408.
De Yong BR, Wick MR, Fitzgibbon J et al. CD 31: an immunospecific marker for endothelial differentiation in human neoplasms. Appl. Immunohistochem. 1993- 1- 97−100.
Flieder DB., Moran CA. Primary cutaneous synovial sarcoma. Am. J. Dermatopathol. 1998.-Vol 20(5). P. 509−12.
Fletcher CD. The use of immunohistochemistry in the diagnosis of soft tissue tumors. Histopatology. 1986- 10- 771−773.
Fisher C. Synovial sarcoma: ultrastructural and immunohistoehemieal features of epithelial differentiation in monophasic and biphasic tumors. Hum. Pathol. 1986- 17- 996−1008.
FolpeAL, Hill CE, Weiss SW. Immunohistoehemieal detection of FLI-1 protein expression: a study of 132 round cell tumors with emphasis on CD99-positive mimics of Ewing’s sarcoma/primitive neuroectodermal tumor. Am. J. Surg.Pathol. 2000- 24- 1657−1662.
Folpe AL., Schmidt RA. Poorly differentiated synovial sarcoma: immunohistoehemieal distinction from primitive neuroectodermal tumors andhigh-grade malignant peripheral nerve sheath tumors. Am. Surg.Pathol. 1998- 22- 673−682.
Folpe AL, Weiss SIV, Fletcher CD et al. Tenosinovial giant cell tumors: evidence for a desmin-positive dendritic cell subpopulation. Mod. Pathol. 1998- 11- 939−944.
Fellinger EJ, Garin-Chesa P, Triche TJ et al. Immunohistochemical analysis of Ewing’s sarcoma cell surface antigen p30/32 MIC 2. Am.J. Pathol. 1991- 139- 317−325.
Fechner R.E. Neoplasms and Neoplasia-like lesions of the Synovium. Monograph. 1976- 17- 173−176.
Goos N. P, Van Muijen, Dirk J. Ruite. et al. Cancer/ testis antigen CSAGE is concurrently expressed with MAGE in chondrosarcoma. Am J Pathol. 1994- 114- 9−17.
Gu M, Antonescn CR, Guiter G. Cytokeratin immunoreactivity in Ewing’s sarcoma: prevalence in 50 cases confirmed by molecular diagnostic studies. Am. J. Surg.Pathol. 2000- 24- 410−416.
Guarino M, Tricomi P, Giordano F, Cristofori E. Sarcomatoid carcinomas: pathological and histopathogenetic considerations. Pathology 1996- 28- 298−305.
Gidlloii L, Wadden C, Kraus M et al. S-100 protein reactivity in synovial sarcomas. A potentially frequent diagnosis pitfall. Immunohistochemical analysis of 100 cases. Appl. Immunohistochem. 1996- 4- 167−175.
Gray MH, Rosenberg AE, Dickersin GR et al. Cytokeratin expression in epithelioid vascular neoplasms. Hum. Pathol. 1990- 21- 212−217.
Hiraga H, Nojima T, Abe S et al. Diagnosis of synovial sarcoma with the reverse transcriptase-polymerase chain reaction: analyses of 84 soft tissue and bone tumors. Diagn. Mol. Pathol. 1998- 7- 102−110.
Напаи С A, Miettinen M. Solitary fibrous tumor: histological and immunohistochemical spectrum of benign and malignant variants presenting at different sites. Hum. Pathol. 1995- 26- 440−449.
Hasegawa T, Matsuno Y, Shimoda et al. Extrathoracic solitary fibrous tumors: their histological variability and potentially aggressive behavior. Hum. Pathol. 1999- 30- 1464−1473.
Ishida Д Matsumura T, Salgaller ML et al MAGE-1 and MAGE-3 or MAGE-6 expression in neuroblastoma-related pediatric solid tumors. J Cancer. 1996- 69(5) — 375−80.
Ichinose П., Powell I., Hoerner H.E. et al Cancer Res. 1989- 39- 4270−4273.
Jones H, Sterart PV, Du Boulay CE et al. Alpha-smooth muscle actin as a marker for soft tissue tumors: a comparison with desmin. J. Pathol. 1990- 162- 2933.
J M Coindre. Immunohistochemistry in the diagnosis of soft tissue tumors. J Histopatology. 2003- 43- 1−16.
Jungbluth AA, Antonescu CR, Busam KJ et al Monophasic and biphasic synovial sarcomas abundantly express cancer/ testis antigen NY-ESO-1 but not MAGE-A1 or CT7. Am J Pathol. 2000- 21 (2) — 164−73.
Jorgensen LJ, Lyon H, Myhre-Jensen О et al Synovial sarcoma. An immunohistochemical study of the epithelial component. APMIS. 1994−102(3) — 191−6.
Krane JF, Bertoni Fr Fletcher CD et al. Myxoid synovial sarcoma. J Mod Pathol. 1999- 12(5) — 456−62.
Kilpatrick SE, Hitchock MG, Kraus MD. Mixed tumors and myoepitheliomas of the skin and soft tissue: a clinicopathologic study of 19 cases with a unifying concept. Am.J.Surg.PathoI. 1997- 21- 13−22.
Kahn HJ, Marks A, Thorn H. Role of antibody to S-100 protein in diagnostic pathology. Am.J.Clin.Pathol. 1993- 79- 341−347.
Kumar S, Perlman E, Harris CA et al. Myogenin is a specific marker for rhabdomyosarcoma: an immunohistoehemieal study in paraffin-embedded tissues. Mod. Pathol. 2000- 13- 988−993.
Kindblom LG, Lodding P, Angervall L. Clear-cell sarcoma of tendons and aponeuroses. An immunohistoehemieal and electron microscopic analysis indicating neural crest origin. Virchows Arch. A Pathol. Anat. Histopathol. 1993- 401- 109−128.
Ladanyi M, Bridge JA. Contribution of molecular genetic data to the classification of sarcomas. Hum.Pathol. 2000- 31- 532−538.
Lewis JE, Olsen KD, Sebo TJ. Spindle cell carcinoma of the larynx: review of 26 cases including DNA content and immunohistochemistiy. Hum. Pathol. 1997- 28- 664−673.
Lopes JM, Bjerkehagen B, Holm R. Immunohistoehemieal profile of synovial sarcoma with emphasis on the epithelial-type differentiation. A study of 49 primary tumors, reccurences and metastases. Pathol. Res. Pract. 1994- 190- 168 177.
Lae ME, Roche PC, Jin L et al. Desmoplastic small round cell tumor: a clinicopathologic, immunohistoehemieal study of 32 tumors. Am. J. Surg. Pathol. 1998- 22- 1314−1327.
Laskin WB, Weiss SW, Bratthauer GL et al. Epithelioid variant malignant peripheral nerve sheath tumor. Am. J. Surg. Pathol. 1991- 15- 1136−1145.
Martelange V, De Smet C, De Plaen E et al. Identification on a human sarcoma of two new genes with tumor-specific expression. Diagn Mol Pathol. 1998- 7(1) — 16−23.
Miettinen M, Virtanen I. Synovial sarcoma—a misnomer. Am J Pathol. 1984- 17(1) — 18−25.
Miettinen M. Immunohistochemistry of soft-tissue tumors. Possibilities and limitations in surgical pathology. Pathol.Annu. 1990- 25- 1−36
Miettinen M, Limon J, Niezabitowski A et al. Patterns of keratin polypeptides in 110 biphasic, monophasic, and poorly differentiated synovial sarcomas. Virchows Arch. 2000- 437- 275−283.
Miettinen M, Fanburg-Smith JC, Virolainen M. Epithelioid sarcoma: an immunohistochemical analysis of 112 classical and variant cases and a discussion ofthedifferential diagnosis. Hum. Pathol. 1999- 30- 934−942.
Michal M, Miettinen M. Myoepitheliomas of the soft tissues. Virchows Arch. 1999- 434- 393−400.
Miettinen M. Immunoreactivity for cytokeratin and epithelial membrane antigen in leiomyosarcoma. Arch. Pathol. Lab. Med. 1988- 112- 637−640.
Miettinen M, Rapola J. Immunohistochemical spectrum of rhabdomyosarcoma and rhabdomiosarcoma-like tumors. Expression of cytokeratin and the 68-kd neurofilament protein. Am. J. Surg.Pathol. 2000- 24- 410−416.
Miettinen M, Fetsch JF. Distribution of keratins in normal endothelial cells and a spectrum of vascular tumors: implications in tumor diagnosis. Hum. Pathol. 2000- 31- 1062−1067.
Montgomery E, Meis JM, Ramos et al. Clear cell sarcoma of tendons and aponeuroses. A clinicopathologic study of 58 cases with analysis of prognostic factors. Int. J.Surg. Pathol. 1993- 1- 89−100.
Matsunou H, Shimoda T, Kakimoto S. Histopatohologic and immunohistochemical study malignant tumors of peripheral nerve sheath. Cancer. 1995- 56- 2269−2279.
Meis-Kindblom JM, Bergh P, Gunterberg В et al. Extraskeletal myxoid chondrosarcoma: a reappraisal of its morphologic spectrum and prognostic factors based on 117 cases. Am. J.Surg.Pathol. 1999- 23- 636−650.
Miettinen M, Lindenmayer AE, Chaubal A. Endothelial cell markers CD 31 and CD 34. Mod. Pathol. 1994- 7- 82−90.
Meis-Kindblom JM, Kindblom LG. Angiosarcoma of soft tissue: a study of 80 cases. Am. J. Surg. Pathol. 1998- 22- 683−697.
Noguera R, Navarro S, Cremades A et al. Translocation (x-18) in biphasic synovial sarcoma with morphologic features of neural differentiation. Diagn Mol Pathol. 1998−7(4) — 232−3.
Nielsen GP, О 'Connel JX, Dickersin et al. Solitary fibrous tumor of soft tissue: a 15 report of cases, including 5 malignant examples with light microscopic, immunohistochemical, and ultrastructural data. Mod. Pathol. 1997- 10- 1028−1037.
Ordonez NG, Mahfouz SM, Mackay B. Synovial sarcoma: an immunohistochemical and ultrastructural study. Hum Pathol. 1990- 21(7) — 733−49.
Ordonez NG. Application of immunocytochemistry in the diagnosis of soft tissue sarcomas sarcomas- a review and update. Adv. Anat. Pathol. 1998- 5- 67−85.
Okamoto S, Hisaoka M, Ishida T et al. Extraskeletal myxoid chondrosarcoma: a clinicopathologic, immunohistochemical, and molecular analysis of 18 cases. Hum. Pathol. 2001- 32- 1116−1124.
Ordonez NG. Desmoplastic small round cell tumor: An ultrastructural and immunohistochemical study with emphasis on new immunohistochemical markers. Am. J. Surg. Pathol. 1998- 22- 1314−1327.
Pelmus M, Guillou L, Hostein I. Monophasic fibrous and poorly differentiated synovial sarcoma: immunohistochemical reassessment of 60 t (X-18)(SYT-SSX)-positive cases. Am J Surg Pathol. 2002- 26(11) — 1434−40.
Porter PL, Bigler SA, McNutt M et al. The immunophenotype of hemangiopericytomas, with special reference to muscle protein expression: an immunohistochemical study and review of the literature. Mod. Pathol. 1991- 4- 4652.
Pritchard PJ, Soule EH, Taylor WF et al. Fibrosarcoma- A clinicopathologic and statistical study of 199 tumors of the soft tissue of the extremities and trunk. Cancer. 1994- 33- 888−99.
Perlman EJ, Dickman PS, Askin et al. Ewing’s sarcoma-routine diagnostic utilization of MIC2 analysis: a Pediatric Oncology Group/Children's Cancer Group Intergroup Study. Hum. Pathol. 1994- 25- 304−307.
Roholl PJ, De Jong AS, Ramaekers FG. Application of markers in the diagnosis of soft tissues tumors. Histopatology. 1985- 9- 1019−1035.
Rangdaeng S, Truong LD. Comparative immunohistochemical staining for desmin and muscle-specific actin. A study of 576 cases. Am. J. Clin.Pathol. 1991- 96- 32−45.
Ramani P, Rampling D, LinkM. Immunohistochemical study of 12 E7 in small round-cell tumors of childhood: an assessment of its sensitivity and specificity. Histopathology. 1993- 23- 557−561.
Renshaw AA. 013 (CD99) in spindle cell tumors. Reactivity with hemangiopericytoma, solitary fibrous tumor, synovial sarcoma, and meningioma but rarely with sarcomatoid mesothelioma. AppLImmunohistochem. 1995- 3- 250 256.
Riopel M, Dickman PS, Link MP et al. MIC2 analysis in pediatric lymphomas and leukemias. Hum. Pathol. 1994- 25- 396−399. 3
Sudo T, Kuramoto T, Komiya S et al. Expression of MAGE genes in osteosarcoma. J Orthop Res. 1997- 15(1) — 28−32.
Suster S. Recent advances in the application of immunohistochemical markers for the diagnosis of soft tissue tumors. Semin. Diagn. Pathol. 2000- 17- 225−235.
Smith ТА, Machen SK, Fisher С et al. Usefulness of cytokeratin subsets for distinguishing monophasic synovial sarcoma from malignant peripheral nerve sheath tumor. Am.J. Clin. Pathol. 1999- 112- 641−648.
Schitt FC, Bacchi CE. S-100 protein: is it useful as a tumor markers in diagnostic immunohistochmemisry? Histopathology. 1989- 15- 281−288.
Somerhausen NS, Fletcher CD. Diffuse-type giant cell tumor: clinipathologic and immunohistochemical analysis of 50 cases with extraarticular disease. Am. J. Surg. Pathol. 2000- 24- 479−492.
Suster S, Rosai J. Intranodal hemorrhagic spindle-cell tumor. Report of six cases of a distinctive mesenchymal neoplasm of the inguinal region that simulates Kaposi’s sarcoma. Am. J. Surg. Pathol. 1989- 13- 347−357.
Shanfeld RL, Edelman J, Willis JE et al. Immunohistochemical analysis of neural markers in peripheral primitive neuroectodermal tumors (pPNET) without light microscopic evidence of neural differentiation. Appl. Immunohistochem. 1997- 5- 78−86.
Trassard M., Le Doussal V., Hacene K. et al. Prognostic factors in localized primary synovial sarcoma. J Clin Oncol. 2001- 19(2) — 525−34.
TaxyJ, BattiforaH. In: Diagnostic Electron Microscopy. Ed. B. F. Trump, R.T. Jones. 1980- 3- 97−174.
Wright P. H, Sim F, Soule. Ultrastructural study of synovial sarcomas. J. Bone JT. Surg. 1982- 64-A- 112−122.
Weintraub H, Davis R, Tapscott S et al. The myoD gene family: nodal point during specification of the muscle cell lineage. Science. 1991- 251- 761−766.
Wrba F, Fertl H, Amann G. Epithelial markers in synovial sarcoma. An immunohistochemical study on paraffin embedded tissues. Virchows Arch. A Pathol. Anat. Histopathol. 1989- 415- 253−258.
Wijnaendts LC, van der Linden JC, van Unnik et al. The expression pattern of contractile and intermediate filament proteins in developing skeletal muscle and rhabdomyosarcomas: diagnostic and prognostic utility. J. Pathol. 1994- 174- 283
Wang NP, Marx J, McNutt MA et al. Expression of myogenic regulatory proteins (myogenin and MyoDl) in small round cell tumors. Am. L Pathol. 1995- 147- 1799−1810.
Wesche WA, Fletcher CD, Dias P et al. Immunohistochemistry of MyoDl in adult pleomorphic soft tissue sarcomas. Am. J. Surg. Pathol. 1995. 19- 261−269.
Westra WH, Gerald WL, Rosai J. Solitary fibrous tumor. Consistent CD34 immunoreactivity and occurrence in the orbit. Am. J. Surg. Pathol. 1994. 18. 992 292.

Заполнить форму текущей работой