Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Морфофункциональная характеристика слизистой оболочки пищевода при введении цитостатиков

Диссертация: Морфофункциональная характеристика слизистой оболочки пищевода при введении цитостатиков
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

При длительном введении умеренных доз циклофосфана в соединительнотканном компоненте (собственной пластинке и подслизистой основе) пищевода наиболее значительные изменения величин морфофункциональных показателей наблюдаются в начальные сроки опыта: уменьшается его толщина, а также плотность расположения тучных клеток и агранулоцитов, увеличивается относительный объём сосудов и плотность… Читать ещё >

Содержание

  • ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. МОРФОФУНКЦИОНАЛЬНАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА СЛИЗИСТОЙ ОБОЛОЧКИ ПИЩЕВОДА В ФИЗИОЛОГИЧЕСКИХ УСЛОВИЯХ
      • 1. 1. 1. Общие сведения
      • 1. 1. 2. Эмбриональное развитие пищевода
      • 1. 1. 3. Структурная организация и гистофизиология различных слоев слизистой оболочки пищевода
  • Покровный эпителий
  • Собственная пластинка
  • Мышечная пластинка
  • Подслизистая основа
    • 1. 2. МОРФОФУНКЦИОНАЛЬНАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА СЛИЗИСТОЙ ОБОЛОЧКИ ПИЩЕВОДА ПРИ ДЕЙСТВИИ ПОВРЕЖДАЮЩИХ ФАКТОРОВ
      • 1. 2. 1. Структурно-функциональные изменения при воздействии соляной кислоты
      • 1. 2. 2. Структурно-функциональные изменения при воздействии алкоголя
      • 1. 2. 3. Структурно-функциональные изменения при воздействии высокой температуры
      • 1. 2. 4. Структурно-функциональные изменения при воздействии микроорганизмов
      • 1. 2. 5. Структурно-функциональные изменения при воздействии ионизирующей радиации и лазерного облучения
    • 1. 3. МОРФОФУНКЦИОНАЛЬНАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА СЛИЗИСТОЙ ОБОЛОЧКИ ПИЩЕВОДА ПРИ ДЕЙСТВИИ ЦИТОСТАТИКОВ

Морфофункциональная характеристика слизистой оболочки пищевода при введении цитостатиков (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ.

АКТУАЛЬНОСТЬ ПРОБЛЕМЫ. Цитостатическая терапия, широко применяемая для лечения злокачественных новообразований, аутоиммунных заболеваний и в трансплантологии [48, 128, 141], сопряжена с развитием осложнений, связанных с повреждающим действием цитостатиков на различные ткани и органы, в частности, на слизистые оболочки [25,26, 99, 112, 125, 198, 288, 294]. Из органов пищеварительного тракта наибольшее внимание в литературе уделено изменениям, вызванным цитостатиками в слизистой оболочке тонкой кишки [129, 174, 252, 291, 327], а также ротовой полости [103, 162, 271, 297]. Между тем, клинические наблюдения свидетельствуют о закономерном возникновении у больных, получавших цитостатическую терапию, ряда заболеваний пищевода: описано частое развитие эзофагитов, как микробных, так и неинфекционных, в отдельных случаях отмечена метаплазия эпителия пищевода [85, 96, 132, 236, 245, 263, 295]. Тканевые и клеточные механизмы этих осложнений остаются мало изученными, а проведенные морфологические исследования влияния цитостатической терапии на состояние слизистой оболочки пищевода единичны и фрагментарны и имеют, главным образом, диагностическую направленность [85, 86, 92, 301, 318, 323]. Как правило, в этих исследованиях не учитываются взаимодействия различных тканей в ответной реакции на введение цитостатических препаратов. Данные о степени обратимости наблюдаемых изменений после отмены цитостатиков отсутствуют.

ЦЕЛЬ ИССЛЕДОВАНИЯ. Комплексное экспериментальное изучение влияния цитостатика на морфофункциональные характеристики слизистой оболочки пищевода, а также оценка обратимости вызываемых цитостатиком изменений.

ЗАДАЧИ ИССЛЕДОВАНИЯ:

1. Морфофункциональная оценка состояния эпителия и собственной пластинки слизистой оболочки пищевода при кратковременном введении высоких доз цитостатика алкилирующего ряда циклофосфана (ЦФ) с использованием гистологических, морфометрических, гистохимических и иммуно-гистохимических методов;

2. Морфофункциональная оценка состояния эпителия и собственной пластинки слизистой оболочки пищевода в различные сроки после отмены цитостатика, кратковременно вводимого в высоких дозах.

3. Морфофункциональная оценка состояния эпителия и собственной пластинки слизистой оболочки пищевода при длительном введении умеренных доз цитостатика.

НАУЧНАЯ НОВИЗНА ИССЛЕДОВАНИЯ. Впервые проведено комплексное гистологическое, морфометрическое, гистохимическое и иммуногисто-химическое экспериментальное исследование состояния слизистой оболочки пищевода при введении цитостатика алкилирующего ряда ЦФ. Получены новые данные о тканевых и клеточных механизмах воздействия цитостатика, вводимого в различных дозах и с разной длительностью. Впервые установлено, что при длительном введении умеренных доз ЦФ изменения морфо-функциональных показателей слизистой оболочки пищевода выражены значительно слабее, чем при кратковременном введении высоких доз, что обусловлено проявлением реакций компенсаторно-приспособительного характера. Получены новые сведения о том, что наиболее значительные нарушения морфофункциональной организации слизистой оболочки пищевода при длительном введении умеренных доз ЦФ проявляются, в основном, в ранние сроки эксперимента.

Впервые прослежена динамика нарушения цитоархитектоники эпителиального пласта, изменений пролиферативной и метаболической активности эпителиоцитов, выявлено ранее не описанное резкое снижение количества клеток Лангерганса при введении цитостатика. Получены новые данные о динамике относительного объёма сосудов и содержания клеток различных гистогенетических линий в собственной пластинке и подслизистой основе пищевода, а также об изменении популяции тучных клеток в собственной пластинке и подслизистой основе пищевода с учётом особенностей их топографии и функциональной активности.

Впервые прослежена динамика нормализации различных показателей морфофункционального состояния слизистой оболочки пищевода в различные сроки после отмены ЦФ. Получены новые данные о том, что введение цитостатика в высоких дозах вызывает глубокие долгосрочные изменения, вследствие которых часть исследованных показателей не возвращаются к норме в течение продолжительного восстановительного периода.

ТЕОРЕТИЧЕСКАЯ И ПРАКТИЧЕСКАЯ ЗНАЧИМОСТЬ РАБОТЫ. Научное значение проведённого исследования состоит в расширении и дополнении имеющихся теоретических представлений о влиянии цитостатиков на морфофункциональное состояние слизистой оболочки пищевода. Полученные данные раскрывают ряд ведущих клеточных и тканевых механизмов развития осложнений цитостатической терапии, связанных с нарушением целостности эпителиального тканевого барьера, его регенерации, метаболизма и архитектоники, подавлением специфических и неспецифических защитных реакций, нарушением васкуляризации, расстройствами координированных взаимодействий различных тканей слизистой оболочки.

Практическое значение исследования состоит в обосновании необходимости постоянного контроля состояния слизистой оболочки пищевода при проведении цитостатической терапии с целью предотвращения развития её повреждения и своевременного назначения соответствующей корригирующей терапии. Данные о структурно-функциональных изменениях слизистой оболочки пищевода при введении цитостатиков необходимы для правильной оценки клинических данных, повышения эффективности морфологической диагностики, оптимизации способов лечения заболеваний пищевода.

ОСНОВНЫЕ ПОЛОЖЕНИЯ, ВЫНОСИМЫЕ НА ЗАЩИТУ:

1.

Введение

цитостатика алкилирующего ряда циклофосфана вызывает выраженные изменения в эпителии, соединительнотканном и сосудистом компонентах слизистой оболочки пищевода, обусловленные преимущественно цитотоксическим действием препарата. Глубина и динамика этих изменений зависят от дозы и режима введения препарата.

2. При кратковременном введении высоких доз циклофосфана в эпителии слизистой оболочки пищевода наблюдаются нарушения процессов пролиферации, дифференцировки и кератинизации, синтеза белков и хода окислительно-восстановительных процессов. В собственной пластинке отмечается отёк межклеточного вещества, который сопровождается нарушением вас-куляризации, снижением содержания клеток различных типов, изменениями их топографии и функциональной активности.

3. После отмены циклофосфана в течение 20 сут изученные морфо-функциональные показатели состояния слизистой оболочки пищевода лишь частично возвращаются к контрольным значениям, причём в эпителии процессы нормализации выражены в большей степени, чем в соединительной ткани.

4. При длительном введении умеренных доз циклофосфана в эпителии слизистой оболочки пищевода и в её собственной пластинке наиболее выраженные изменения некоторых морфофункциональных показателей отмечаются в начальные сроки эксперимента. В дальнейшем проявляются реакции компенсаторно-приспособительного характера, которые сильнее выражены в эпителии.

АПРОБАЦИЯ РАБОТЫ. Основные положения диссертации доложены и обсуждены на:

— V конгрессе международной ассоциации морфологов (г. Уфа, 2000);

— XXVII межвузовской научно-практической конференции по проблемам биологии и медицинской паразитологии, посвященной памяти акад. Е. Н. Павловского (Санкт-Петербург, 2000);

— научной конференции «Актуальные вопросы клинической патоморфоло-гии» (Санкт-Петербург, 2000);

— международной научной конференции, посвященной 100-летию со дня рожд. акад. П. Я. Герке (г. Минск, 2004);

— VII конгрессе Международной ассоциации морфологов (г. Казань, 2004);

— 7-м и 8-м международных научных симпозиумах «Применение современных методов анализа в изучении структуры и функции клетки» (г. Архангельск, 2005,2006);

— 4-й и 5-й Всероссийских конференциях «Бабухинские чтения в Орле» (г. Орёл, 2005,2006);

— научной конференции ученых-морфологов Санкт-Петербурга (Санкт-Петербург, 2006);

— VIII конгрессе Международной ассоциации морфологов (г. Орёл, 2006);

— конференции, посвящённой 70-летию Тверской государственной медицинской академии и 100-летию со дня рожд. проф. И. С. Кудрина (г. Тверь, 2006);

— II Международном эмбриологическом симпозиуме «Югра — эмбрио — 2006» (г. Ханты-Мансийск, 2006);

— Всероссийской научной конференции, посвящённой 10-летию медицинского факультета и кафедры анатомии и гистологии человека БелГУ (г. Белгород, 2006);

— Международной научно-практической конференции, посвящённой 85-летию БГМУ (г. Минск, 2006);

— научно-практической конференции «Современные аспекты гистогенеза и вопросы преподавания гистологии в вузе», посвящённой 100-летию проф. Л. И. Фалина (Москва, 2007).

ПУБЛИКАЦИИ. По теме диссертации опубликовано 20 научных работ, включая 8 — в центральном журнале «Морфология». и.

выводы.

1. По данным гистологического, морфометрического, гистохимического и иммуногистохимического анализа, в слизистой оболочке пищевода при введении циклофосфана происходят выраженные морфофункциональные изменения эпителия и соединительнотканного компонента (собственной пластинки и подслизистой основы), приводящие к нарушению целостности барьерных систем и угнетению специфических и неспецифических защитных механизмов. Степень выраженности этих изменений зависит от дозы и режима введения цитостатика.

2. При кратковременном (1−8 сут) введении высоких доз препарата (400 мг/кг массы тела) в эпителии слизистой оболочки пищевода наблюдаются нарушения процессов дифференцировки и кератинизации: утолщение эпителиального пласта, гиперкератоз, нарушение вертикальной анизомор-фии, уменьшение содержания клеток Лангерганса. Снижение митотической активности сопровождается повреждением ДНК эпителиоцитов и активизацией процессов её репарации.

3. Кратковременное введение высоких доз циклофосфана приводит к метаболическим нарушениям в эпителии слизистой оболочки пищевода, которые проявляются в угнетении активности фермента НАДН-диафоразы, характеризующего течение окислительно-восстановительных процессов, и к изменению нормального распределения белков по слоям эпителия.

4. При кратковременном введении высоких доз циклофосфана в собственной пластинке и подслизистой основе пищевода отмечается выраженный отёк межклеточного вещества с увеличением общей толщины соединительнотканного компонента, уменьшением относительного объёма сосудов и плотности расположения фибробластов, агранулоцитов, гранулоцитов, тучных клеток. Возрастает относительное содержание тучных клеток в собственной пластинке и доля этих клеток с сильной степенью дегрануляции.

5. После отмены циклофосфана в течение 10−25 сут часть морфо-функциональных показателей состояния эпителия слизистой оболочки пищевода (толщина пласта, митотическая активность эпителиоцитов, концентрация белков в различных слоях) возвращаются к контрольным значениям. Остаются увеличенными толщина рогового слоя и количество эпителиоцитов с повреждённой ДНК в состоянии репарации, резко уменьшено содержание клеток Лангерганса. Снижены показатели активности НАДН-диафоразы и концентрация белков в глубоких отделах рогового слоя эпителия.

6. После отмены циклофосфана большинство морфофункциональных показателей состояния соединительнотканного компонента не возвращаются к контрольным значениям: остаются увеличенными его толщина, относительный объём сосудов, плотность расположения гранулоцитов. Плотность расположения тучных клеток уменьшена, преобладают клетки с отсутствующей и слабо выраженной степенью дегрануляции, которые располагаются преимущественно в подслизистой основе. Нормализуются показатели плотности расположения фибробластов и агранулоцитов.

7. При длительном (1−70 сут) введении умеренных доз циклофосфана (40 мг/кг массы тела) в эпителии слизистой оболочки пищевода наиболее выраженные сдвиги морфофункциональных показателей отмечаются в начальные сроки эксперимента: возрастает толщина эпителиального пласта и его рогового слоя, увеличивается показатель митотической активности. В дальнейшем в динамике опыта величина этих показателей частично нормализуется. Активность НАДН-диафоразы в шиповатом слое эпителия снижена только на 48-е сут опыта, в этом же сроке возрастает концентрация белков в поверхностных отделах рогового слоя.

8. При длительном введении умеренных доз циклофосфана в соединительнотканном компоненте (собственной пластинке и подслизистой основе) пищевода наиболее значительные изменения величин морфофункциональных показателей наблюдаются в начальные сроки опыта: уменьшается его толщина, а также плотность расположения тучных клеток и агранулоцитов, увеличивается относительный объём сосудов и плотность расположения гранулоцитов. В дальнейшем толщина соединительнотканного компонента нормализуется, однако остаются сниженными относительный объём сосудов и плотность расположения агранулоцитов, гранулоцитов и тучных клеток. Преобладают тучные клетки с высокой степенью дегрануляции, которые располагаются преимущественно в собственной пластинке.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ.

1. В проведённом исследовании раскрыты важнейшие тканевые и клеточные механизмы повреждающего действия цитостатиков на слизистую оболочку пищевода, знание которых необходимо для понимания природы развития осложнений цитостатической терапии у больных.

2. Выявленные нарушения являются обоснованием необходимости постоянного контроля состояния слизистой оболочки пищевода при проведении цитостатической терапии с целью предотвращения развития её повреждения и своевременного назначения соответствующей корригирующей терапии.

3. Полученные сведения о влиянии различных режимов введения цитостатиков на морфофункциональное состояние слизистой оболочки пищевода, в частности, о выраженности цитотоксического действия при кратковременном введении высоких доз и о компенсаторно-приспособительном характере наблюдаемых изменений при длительном введении умеренных доз, являются обоснованием для выбора правильного режима введения цитостатиков в зависимости от конкретных условий и целей химиотерапии.

4. Данные о морфофункциональных изменениях слизистой оболочки пищевода при введении цитостатиков необходимы для правильной оценки клинических данных, повышения эффективности морфологической диагностики, оптимизации способов лечения заболеваний пищевода.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Г. Г. Медицинская морфометрия. — М.: Медицина, 1990.
  2. А.И., Гордиенко С. П., Саканделидзе О. Г. Иммунитет и терапия экспериментальных опухолей. Кишинёв, 1982.
  3. Л.С., Папаян Г. В. Цитофотометрия. Л.: Наука, 1977.
  4. С.В. Патологическая анатомия пищевода Барретта: Ав-тореф. дис. .канд. мед. наук. СПб, 1996.
  5. В.А. Тератогенный эффект противоопухолевых алки-лирующих агентов // Арх. анат. -1968. Т. 54, вып. 6. — С. 69−82.
  6. А.Н. Свойства и особенности пищеводного эпителия. М.: Наука, 1978.
  7. А.Н., Вдовцева В. А., Кикимбаева А. А. Специфика гистологических взаимоотношений кардиальных желез пищевода с его многослойной выстилкой // Морфология. -1990. -Т.98, вып. 5. С. 61−66.
  8. Д.В. Пищевод. В кн.: Руководство по гистологии.-СПб.: Спец-Лит, 2001. -Т. 2. С. 97−104.
  9. Д.В., Банин В. В., Петрова М. Б. Филогенез мышечной оболочки пищевода позвоночных. -Тверь: «Альфа Пресс», 2005.
  10. Д.В., Никитюк Д. Б. Пищевод человека. Структура и функция. Тверь, 1997.
  11. М. Гистохимия ферментов: Пер с англ. М.: Мир, 1965.
  12. А.В., Шипулин А. Н. Развитие лимфатического русла в стенке пищевода человека // Арх. анат. -1979. Т.77, вып. 9. — С. 33 — 40.
  13. В.Л. Экспериментальный кандидоз органов пищеварительного тракта новорожденных // Арх. патол. 1987. — № 4. — С. 45−49.
  14. В.Л. Клетки Лангерганса слизистых оболочек пищеварительного и репродуктивного трактов у лабораторных мышей и крыс // Морфология. -1997. Т. 112, вып. 5. — С. 73−77.
  15. Быков В. Л Секреторные механизмы и секреторные продукты тучных клеток // Морфология. -1999. № 2. — С. 64 — 72.
  16. В.Л., Караев 3.0. Экспериментальная модель сочетанных кандидозных поражений // Вестн. дерматол. -1986. № 2. — С. 21 — 24.
  17. В.Л., Пахомова Е. Н. Морфогенез кандидоза слизистых оболочек при введении иммунодепрессантов // Архив патол. 1990. — Т. 52, № 1. -С. 28−31.
  18. В.Л., Пахомова Е. Н., Караев 3.0. Кандидоносительство и развитие инвазивного кандидоза органов пищеварительного тракта при экспериментальной иммунодепрессии // Журн. микробиол. 1990. -№ 6. -С.7−10.
  19. В.И., Мамонтов С. Г., Бляхер М. С. Влияние циклофосфа-на на митотическую активность в эпителии пищевода и роговицы лейкозных мышей // Бюлл. эксп. биол. и мед. -1970. Т. 70, № 7. — С. 82 — 85.
  20. Введение в количественную гистохимию ферментов. Под ред. Т. Б. Журавлёвой. Л.: Медицина, 1978.
  21. В.А., Бажанов А. Н., Хлыстова З. С. Эндокринные клетки кардиальных желез пищевода человека // Арх. анат. -1988. -Т.94, вып. 6. С. 63−66.
  22. В.А., Хлыстова З. С. Собственные железы пищевода человека // Арх. анат. 1984. -Т. 87, вып. 9. — С. 52 — 58.
  23. В.А., Хлыстова З. С., Бажанов А. Н. и др. Строение кардиальных желез пищевода человека // Арх. анат. 1985. — Т. 89, вып. 9. — С. 67−69.
  24. В.В., Воробьёва Н. Ф. Тучные клетки (генез, структура, функции). Новосибирск: Наука, 1973.
  25. Н.А. Морфологические и гистохимические изменения органов пищеварительной системы под влиянием некоторых противоопухолевых препаратов: Автореф. канд. дисс. Киев, 1980.
  26. Гастроэнтерология. Под ред. Дж. X. Барона, Ф. Г. Муди: Пер. с англ. Т. 1. — М.: Медицина. — 1988.
  27. В.В., Череп О. Е. Органная специфика развития эпителиальной выстилки полости рта и пищевода // Морфология. 1997. — Т. 112, вып. 5.-С. 69−73.
  28. Е.Ш. Развитие и строение слизистой оболочки пищевода человека в свете сравнительно эмбриологического и антропологического анализа. — М.: Наука, 1964.
  29. М.Т. Длительность периодов митотического цикла эпителия пищевода мышей при введении гидрокортизона// Бюлл. эксп. биол. и мед. 1970. — Т. 69, № 4. — С. 97 -100.
  30. В.И. Исследование цитостатического действия циклофосфана в опухолях и эпителии пищевода у мышей// Бюлл. эксп. биол. и мед. -1977. Т.84, № 11. — С. 593 — 595.
  31. А.А., Ростовщиков А. С. и Сахипов Н. Характеристика ультраструктуры эпителия слизистой оболочки пищевода практически здорового человека // Арх. анат. 1985. — Т. 89, вып. 9. — С. 92−97.
  32. М.К., Богач В. В. К оценке количества тучных клеток в органах пищеварительного тракта у крыс и лягушек // Бюлл. эксп. биол. и мед. -1976. Т. 81, вып. 1. — С. 94−95.
  33. Иммунология. Под ред. У. Пола: Пер с англ. М.: Мир, 1988.
  34. А.Б., Быков B.JI. Методические аспекты гистохимического выявления клеток Лангерганса в коже и слизистых оболочках лабораторных животных АТФазной реакцией // Морфология. -1992. Т. 102, вып. 5. — С. 107−110.
  35. . Основы эмбриологии по Пэттену: Пер. с англ. -М.: Мир, 1983.
  36. .Г. Базисная и клиническая фармакология: Пер. с англ. -М.: Бином, СПб.: Невский диалект, 1998.
  37. Кемилева 3. Вилочковая железа. М.: Медицина, 1984.
  38. А.Г. Краткий очерк эмбриологии человека. JL: Медицина, 1967.
  39. С.А. Значение режима введения циклофосфана для его иммуномодулирующего и противоопухолевого эффекта при экспериментальной химиотерапии // Вопросы онкологии. 1985. — Т. 31, вып. 7. — С. 91 -97.
  40. Н.И., Федотовских Г. В., Александрова Н. М., Зумеров E.JI. Ультраструктура эпителия пищевода в норме и в очагах дисплазии // Арх. патол. 1982. — Т. 44, вып. 2. — С. 34 — 41.
  41. Е.П. Морфофункциональное состояние тканевых ба-зофилов при цитостатической болезни // Патол. физиол. и экспер. терапия. -1994. -№ 1. С. 12−13.
  42. Е.П. Влияние доксорубицина на морфофункциональное состояние тканевых базофилов // Антибиот. и химиотер. 1994. — Т. 39, № 8.-С. 34—36.
  43. С.М., Романов Ю. А. Исследование параметров кинетики клеток эпителия пищевода мышей в зависимости от времени суток // Бюлл. эксп. биол. и мед. 1979. — Т. 88, № 9. — С. 341 — 343.
  44. Г. К., Колычева Н. И., Адильгиреева С. Х. К морфологии резервных клеток выводных протоков слизистых желез пищевода при хроническом эзофагите//Арх. патол. 1978. — Т. 40, вып. 10. — С. 40−44.
  45. Г. К., Колычева Н. И., Кадяйкина А. Н., Самратова С. С. Морфологические изменения в железистом аппарате пищевода при хроническом эзофагите// Арх. патол. -1974. Т.36, вып. 4. — С. 28 — 31.
  46. Г. К., Федотовских Г. Ф., Колычева Н. И., Зумеров E.JI. Ультраструктура слизистых желез пищевода в норме и при раке пищевода // Арх. патол. -1983. Т. 45, вып. 7. — С. 54 — 59.
  47. Т.И. Изучение иммунодепрессивных свойств циклофосфана, колхицина и винбластина: Автореф. дисс. .канд. мед. наук. СПб, 1979.
  48. Л.Д., Маркелова И. В. О суточных вариациях длительности митоза в эпителии пищевода мышей // Бюлл. эксп. биол. и мед. 1975. -Т.79, № 6. — С. 89−92.
  49. А.С., Васильев Ю. В., Фирсова Л. Д. и др. Методика объективной оценки состояния слизистой оболочки пищевода при рефлюкс эзофагите // Арх. патол. — 1981. — № 12. — С. 65 — 68.
  50. Лойда 3., Госсрау Р., Шиблер Т. Гистохимия ферментов: Пер. с англ. -М.: Мир, 1982.
  51. X. Основы гистохимии: Пер. с нем. М.: Мир, 1980.
  52. С.Г., Суворова Н. М. Индуцирующее действие гидрокортизона на ритм митозов в эпителии роговицы и пищевода крыс // Бюлл. эксп. биол. и мед. 1982.-Т.94, № 8. — С. 100 — 102.
  53. Г. М. Гистохимическая характеристика эпителиальной выстилки пищевода человека и некоторых млекопитающих // Арх. анат. -1973. Т. 65, вып. 9. — С. 68 — 75.
  54. Ю.К., Борисов К. Б. Иммунодепрессанты, применяемые при патологии иммунной системы I Циклоспорин, циклофосфан, азатиоприн, меркаптопурин // Фармакол. токсикол. 1991. — Т. 54, № 4.-С. 80−87.
  55. Д.Б. Собственные железы пищевода взрослого человека // Арх. анат. 1986. — Т. 93, вып. 9. — С. 74 — 77.
  56. Д.Б. Количественные микроскопические характеристики кардиальных желез пищевода человека в постнатальном онтогенезе // Арх. анат. 1990.-Т.99, вып. 11.- С. 66 — 71.
  57. А.А., Хомерики С. Г. Эндокринные клетки желез пищевода // Арх. анат. -1977. Т. 73, вып. 12. — С. 79 — 82.
  58. М.М. Микроциркуляторное русло эпителиального слоя слизистой оболочки пищевода человека в постнатальном онтогенезе // Бюлл. эксп. биол. мед. -1990. № 6. — С. 607- 609.
  59. М.М. Функциональная анатомия слизистой оболочки пищевода человека в постнатальном онтогенезе // Бюлл. эксп. биол. мед. 1990. -№ 4.-0.412−414.
  60. Е.Н., Быков В. Л., Караев Э. О. Кандидоносительство и развитие инвазивного кандидоза органов пищеварительного тракта при экспериментальной иммунодепрессии // Журн. микробиол., эпидемиол. и им-мунобиол. 1990. — № 6. — С. 7−10.
  61. Е.Н., Полякова М. Н., Быков В. Л., Караев З. О. Влияние цитостатиков и кортикостероидов на фагоцитарную и фунгицидную активность нейтрофильных гранулоцитов // Журн. микробиол., эпидемиол. и им-мунобиол. 1991. — № 2. — С. 66−68.
  62. Э. Гистохимия теоретическая и прикладная: Пер. с англ. М.: Изд-во Иностр. Лит., 1962.
  63. Ю.П. Изменения ультраструктуры клеток печени под действием циклофосфана и особенности его внутриклеточного распределения: Авто-реф. дис. канд. мед. наук. М., 1985.
  64. Ю.А., Ириков О. А., Филиппович С. С., Евстафьев В. В. Влияние инверсии фоторежима на разнопериодические биологические ритмы митотического индекса в эпителии пищевода мышей // Бюлл. эксп. биол. мед.- 1996.-№ 1.-С. 94−97.
  65. Руководство по использованию лабораторных животных для научных и учебных целей в СПбГМУ им. акад. И. П. Павлова: Под ред. Э. Э. Звартау. СПб.: Изд-во СПбГМУ, 2003.
  66. В.П., Тимофеев А. В., Романов Ю. А. Влияние однократного вве-дения оксимочевины на клеточное деление в эпителии пищевода и языка мышей // Бюлл. эксп. биол. мед.-1981.-Т. 91, № 10.-С. 492 493.
  67. Ф.Ф., Медведев М. А., Байтингер В. Ф., Рыжов А. И. Функциональная морфология пищевода. М.: Медицина, 1987.
  68. М.Р., Никитюк Д. Б. Локальные характеристики и взаимоотношения желез с лимфоидными скоплениями в стенке пищевода // Морфология. 1990. -Т.99, вып. 8. — С. 58 — 64.
  69. Сапин М. Р, Плявинь Л. А. Лимфоидные образования в стенке пищевода человека в постнатальном онтогенезе // Арх. анат. 1986. — Т.90, вып. 6.-С. 21 — 27.
  70. П.В., Карпов Н. А. Развитие и строение пищевода. В кн.: Ру-ководство по патологической анатомии. — М.: Медгиз. — 1956. — Т. 4.- Кн. 1, — С. 236−280.
  71. Л.Ю. Роль генетических факторов в иммунодепрессивном действии циклофосфамида: Автореф. канд. дис. Москва, 1982.
  72. Т.Б., Харлова Г. В., Юдина Н. В. Лимфоидная регуляция пролиферативной стадии регенерации кишечника и пищевода у крыс // Онтогенез.- 1984.-Т. 15, вып.1.-С. 101−103.
  73. Г. В. Морфология эпителия пищевода при воспалительно-регенераторном процессе, дисплазии и раке: Автореф. докт. дисс. -М., 1989.
  74. Г. В., Колычева Н. И. Прогностическое значение ультраструктурных особенностей диспластических изменений в пищеводе // Вопр. онкол. -1987. Т. 33, № 10. — С. 38 — 43.
  75. Г. В., Колычева Н. И., Кусакина Г. К., Потапов В. А. Об электронно-микроскопической верификации аденокарциномы кардио-эзофагеальной зоны // Арх. патол. 1988. — Т. 50, вып. 3. — С. 43 — 50.
  76. Г. В., Кусакина Г. К., Колычева Н. И. Электронно-микро-скопическое исследование гистогенеза диморфного железисто-плоскоклеточно-го рака пищевода // Вопр. онкол. 1988. — Т.34, № 4. — С. 454−458.
  77. Н.Г. Общебиологические и экспериментальные основы гистологии. М.: АН СССР, 1946.
  78. С.Е., Пахомова Е. Н., Быков B.JI. Взаимодействие нейтро-фильных гранулоцитов с грибами Candida albicans при формировании микотических очагов в условиях иммунодепрессии // Журн. микробиол., эпидемиол. и имму-нобиол. 1990. — № 10. — С. 35−38.
  79. В.А., Колычева Н. И., Нугманов Д. С., Бекбосунов В. К. Эзофагиты у лиц, страдающих алкоголизмом // Арх. патол. 1981- Т. 43, № 1-С. 41 -45.
  80. Г. Ю. Морфофункциональные изменения щитовидной железы при иммунодепрессии: Автореф. дис. .канд. биол. наук. СПб, 2004.
  81. Г. Ю., Неворотин А. И., Быков B.JI. Ультраструктурные и метаболические характеристики тироцитов при действии циклофосфана // Морфология. -2004. -Т. 125, № 1. С. 66−71.
  82. Aharinejad S., Franz P., Fakhari M. Experimental reflux esophagitis in rats. A scanning electron-microscopic investigation // Acta Anat. (Basel).-1990.-Vol.137, № 2.-P.180 -183.
  83. Albertsson M., Hakansson C.H., Mercke C., Morner H. Effects of fractionated irradiation on the esophageal mucosa: a scanning and transmission electron microscopic study // Scanning Microsc 1987-Vol. 1, № 4. — P. 1851— 1860.
  84. Albertsson M., Hakansson C.H., Palmegren M. Changes in the esophageal epithelium in rabbits treated by Cis-dichlorodiammineplatinum as studied by electron microscopy // Scanning Microsc. 1990. — Vol. 4, № 1. — P. 143−149.
  85. Al-Mofarreh M.A., A1 Mofleh I.A. Esophageal ulceration complicating doxycycline therapy // World J. Gastroenterol.-2003.-Vol. 9, № 3 P. 609 — 611.
  86. A1 Yassin T.M., Toner P.G. Langerhans cells in the human oesophagus // J. Anat.-1976.-Vol. 122.-Pt 2 P. 435−445.
  87. A1 Yassin T.M., Toner P.G. Fine structure of squamous epitheilum and submucosal glands of human oesophagus // J. Anat.-1977.-Vol. 123, Pt 3 P. 705 721.
  88. Anderson C., Groth O. The effect of cyclophosphamide on the allergic contact reaction in guinea pig: dose effects and influence on peripheral blood // Acta Derm. Venereol. 1985. -Vol. 65, № 5. — P. 403-^08.
  89. Azuma Т., Ozaki E., Yakushijin Y. et al. Esophageal stricture following complete remission after chemotherapy for malignant lymphoma in an elderly patient // Nippon. Ronen. Igakkai. Zasshi. 2006. — Vol. 43, № 4. — P.531−535.
  90. Baak J.P., ten Kate F.J., Offerhaus G. J et al. Routine morphometrical analysis can improve reproducibility of dysplasia grade in Barrett’s oesophagus surveillance biopsies // J. Clin. Pathol. 2002. — Vol. 55, № 12. -P. 910−916.
  91. Bacha W.J., Bacha L.M. Color Atlas of Veterinary Histology. 2nd ed., Baltimore, Philadelphia, Lippincott Williams & Wilkins, 2000.
  92. Barclay R.L., Dinda P.K., Morris G.P., Paterson W.G. Morphological evidence of mast cell degranulation in an animal model of acid-induced esophageal mucosal injury // Dig. Dis. Sci. 1995. — Vol. 40, № 8. — P. 1651−1658.
  93. Bardosi A. Secondary fungal esophagitis // Morphol. Igazsagugyi Orv. Sz. -1980. Vol. 20, № 3. — P. 215−218.
  94. Barrett A.W., Cruchley A.T., Williams D.M. Oral mucosal Langerhans' cells// Crit. Rev. Oral. Biol. Med. 1996. — Vol. 7, № 1. — P. 36−58.
  95. Bednar B. Dendritic resident cells and their immunohistologic determination // Cesk. Patol. -1995. Vol. 31, № 1. — P. 9−16.
  96. Bensadoun R.J., Schubert M.M., Lalla R.V., Keefe D. Amifostine in the management of radiation-induced and chemo-induced mucositis // Support. Care Cancer. 2006. — Vol. 14, № 6. — P. 566−572.
  97. Berthet В., Di Costanzo J., Arnaud C. et al. Influence of epidermal growth factor and interferon on healing of oesophageal corrosive burns in the rat // Br. J. Surg. -1994. Vol. 81. — P. 395−398.
  98. Bessler H., Straussberg R., Alexandrova S. et al. Effect of oral chemotherapy on the mitochondrial size of mouse intestinal cells // Cancer Chemother. Pharmacol. -1996. Vol. 38, № 1. — P. 35−38.
  99. Black D.D., Haggitt R.C., Orenstein S.R., Whitington P.F. Esophagitis in infants. Morphometric histological diagnosis and correlation with measures of gastroesophageal reflux // Gastroenterology. 1990. — Vol. 98. — P. 1408−1414.
  100. Blijlevens N.M., van’t Land В., Donnelly J.P. et al. Measuring mucosal damage induced by cytotoxic therapy // Support. Care Cancer. 2004. — Vol.12, № 4.-P. 227−233.
  101. Bonavina L., Incarbone R., Reitano M. et al. Candida colonization in patients with esophageal disease: a prospective clinical study // Dis. Esophagus. -2003. Vol. 16, № 2. — P. 70−72.
  102. Bor S., Bor-Caymaz C., Tobey N.A. et al. Esophageal exposure to ethanol increases risk of acid damage in rabbit esophagus // Dig. Dis. Sci. -1999. -Vol. 44,№ 2.-P. 290−300.
  103. Bor S., Caymaz-Bor C., Tobey N.A. et al. Effect of ethanol on the structure and function of rabbit esophageal epithelium // Am. J. Physiol. 1998. -Vol. 274 (Gastrointest. Liver Physiol. 37): G819-G826.
  104. Bor S., Tobey N.A., Abdulnour-Nakhoul S et al. Ethanol predisposes to acid damage in rabbit esophagus (Abstract) // Gastroenterology. 1997. -Vol. 112. -P. A77.
  105. Bove M., Vieth M., Dombrowski F. et al. Acid challenge to the human esophageal mucosa: effects on epithelial architecture in health and disease // Dig. Dis. Sci. 2005 — Vol. 50, № 8. — P. 1488−1496.
  106. Brown L.M. Epidemiology of alcohol-associated cancers //Alcohol. -2005.-Vol. 35,№ 3.-P. 161−168.
  107. Brown R.M., Darnton S.J., Papadaki L. et al. A primary tumour of the oesophagus with both melanocytic and schwannian differentiation. Melanocytic schwannoma or malignant melanoma? // J. Clin. Pathol. 2002. — Vol. 55, № 4. -P. 318−320.
  108. Bultzingslowen I., Jontell M. Macrophages, dendritic cells and T lymphocytes in rat buccal mucosa and dental pulp following 5-fluorouracil treatment // Eur. J. Oral. Sci. 1999. -Vol. 107, № 3. — P. 194−201.
  109. Bulut S., Alaaddinoglu E.E., Bilezikci B. et al. Immunohistochemical analysis of lymphocyte subpopulations in cyclosporin A-induced gingival overgrowth // J. Periodontal. 2002. — Vol. 73, № 8. — P. 892−899.
  110. Burholt D.R., Etzel S.L., Schenken L.L., Kovacs C.J. Digestive tract cell proliferation and food consumption patterns of На/ICR mice // Cell Tiss. Kinet. 1985. — Vol. 18, № 4. — P.369−386.
  111. Burkle V., Burkle G., Zielke R. Unterschiedliche Bleomycin-Wirkung auf Plattenepithel verschiedener Lokalisation // HNO. 1982. — Bd.30, № 12. — S. 462−456.
  112. Burns E.R., Scheving L.E., Fawcett D.F. et al. Circadian influence on the frequency of labeled mitoses method in the stratified squamous epithelium of the mouse esophagus and tongue // Anat. Rec. 1976. — Vol. 184, № 3. — P. 265— 273.
  113. Calabrese C., Fabbri A., Bortolotti M. et al. Dilated intercellular spaces as a marker of esophageal damage: Comparative results in gastroesophageal reflux disease with or without bile reflux // Aliment. Pharmacol. Ther 2003. — Vol. 18. -P. 525−532.
  114. Calabro A., Orsini В., Renzi D. et al. Expression of epidermal growth factor, transforming growth factor-alpha and their receptor in the human oesophagus // Histochem. J. 1997. — Vol. 29, № 10. — P.745−758.
  115. Castano E., Rodriguez-Peralto J.L., Lopez-Rios F. et al. Keratinocyte dysplasia: an usual finding after transplantation or chemotherapy // J. Cutan. Pathol. -2002. Vol. 29, № 10. — P. 579−584.
  116. Chang F., Deere H. Esophageal melanocytosis morphologic features and review of the literature // Arch. Pathol. Lab. Med. 2006. — Vol. 130, № 4. — P. 552−557.
  117. Chang S.Y., Yu D.S., Wang J. et al. Histopathological effects and recovery rate of rat bladders following intravesical instillation of thiotepa, doxorubicin and mitomycin // Br. J. Urol. 1990. — Vol. 66, № 6. — P. 623−627.
  118. Charton-Bain M.C., Terris В., Dauge M.C. et al. Reduced number of Langerhans cells in oesophageal mucosa from AIDS patients // Histopathology. -1999. Vol. 34, № 5. — P. 399−404.
  119. Chen T. Kunnavatana S.S. Kosh R.J. Effects of mitomycin-C on normal dermal fibroblasts // Laryngoscope. 2006. — Vol. 116, № 4. — P. 514−517.
  120. Chen Y., Perng R.P., Yang K.Y. et al. Phase II study of tamoxifen, ifosfamide, epirubicin and cisplatin combination chemotherapy in patients with non-small cell lung cancer failing previous chemotherapy // Lung Cancer. 2000. -Vol. 29, № 2.-P. 139−146.
  121. Christie K.N., Thomson C., Hopwood D. A comparison of membrane enzymes of human and pig oesophagus- the pig oesophagus is a good model for studies of the gullet in man // Histochem. J. 1995. — Vol. 27, № 3. — P. 231−239.
  122. Chung R.S.K., Johnson G.M., DenBesten L. Effect of sodium taurocholate and ethanol on hydrogen ion absorption in rabbit esophagus // Dig. Dis. 1977. — Vol. 22. — P. 582−588.
  123. Colvin O.M. Alkylating agents. Encyclopedia of Cancer, 2nd Edition, Ed. J. Bertino, Acad. Press, 2003, p. 35 42.
  124. Cunningham D., Morgan R.J., Mills P.R. et al. Functional and structural changes of the human proximal small intestine after cytotoxic therapy // J. Clin. Pathol. 1985. — Vol. 38, № 3. — P. 265−270.
  125. Cury E.K., Schraibman V., Faintuch S. .Eosinophilic infiltration of the esophagus: gastroesophageal reflux versus eosinophilic esophagitis in children-discussion on daily practice // J. Pediatr. Surg. 2004. — Vol. 39, № 2. — P. 4−7.
  126. Dabrowski A., Szumilo J., Brajerski G., Wallner G. Proliferating nuclear antigen (PCNA) as a prognostic factor of squamous cell carcinoma of the oesophagus // Ann. Univ. Mariae Curie Sklodowska Med. 2001. — Vol. 56. — P. 59−67.
  127. Dahms B.B., Greco M.A., Strandjord S. E., Rothstein F. C. Barrett’s esophagus in three children after antileukemia chemotherapy // Cancer. 1987. -Vol. 60, № 12. — P. 2896−2900.
  128. Daniely Y., Liao G., Dixon D. et al. Critical role of p63 in the development of a normal esophageal and tracheobronchial epithelium // Am. J. Physiol. Cell Physiol. 2004. — Vol. 287, № 1.-P.171−181.
  129. Dellmann H.D., Eurell J. Textbook of Veterinary Histology. 5. Ed., Baltimore, Philadelphia, Williams & Wilkins, 1998.
  130. DeNardi F.G., Riddell R.H. Esophagus. In: Sternberg SS, ed. Histology for pathologists. New York: Raven Press, 1992: P. 515−532.
  131. DeNardi F.G., Riddell R.H. Esophagus. In: Histology for Pathologists, ed. Sternberg SS, pp. 475−477. Pennsylvania. Lippincott-Raven Publishers, Philadelphia, 1997.
  132. Dunkin B.J., Hamdy A., Bhora F. et al. Epidermal growth factor is a potent stimulus to esophageal mucosal growth // Surg. Forum. 1994. — Vol. 45. -P. 120.
  133. Egashira Т., Waddell W.J. Histochemical localization of primary and secondary alcohol dehydrogenases in whole-body, freeze-dried sections of mice // Histochem J. 1984. — Vol. 16, № 9. — P. 931−940.
  134. Eisen H.J., Kobashigawa J., Keogh A. et al. Three-year results of a randomized, double-blind, controlled trial of mycophenolate mofetil versus azathioprine in cardiac transplant recipients // J. Heart Lung Transplant. 2005. -Vol. 24,№ 5.-P. 517−525.
  135. Enache E., Eskandari Т., Boija L. et al. Candida albicans adherence to a human oesophageal cell line // Microbiology. 1996. — Vol. 142 (Pt 10). — P. 2741−2746.
  136. Ferey L., Herlin P., Marnay J. et al. Histology and ultrastructure of the human esophageal epithelium. I. Normal and parakeratotic epithelium // J. Submicrosc. Cytol. 1985. — Vol. 17, № 4. — P.651−665.
  137. Fiertak A., Semik D., Kilarski W.M. Immunohistochemical analysis of connexin26 and 43 expression in the mouse alimentary tract // Folia Biol. Krakow. 1999. — Vol. 47, № 1−2. — P.5−11.
  138. Figdor. B. Tonofibrillen und Verhornung des Oesophagusepithels einiger Placentalier // Z. Mikrosk. Anat. Forsch. 1958. — Bd. 63, № 4. — P.589−598.
  139. Furihata M., Ishikawa Т., Inoue A. et al. Determination of the prognostic significance of unscheduled cyclin A overexpression in patients with esophageal squamous cell carcinoma// Clin. Cancer. Res. 1996. — Vol. 2. -P.l 781—1785.
  140. Geboes K., Desmet V. Histology of the esophagus // Front. Gastrointest. Res.:1978. -Vol. 3. P. 1−17.
  141. Geboes К., De Wolf-Peeters С., Rutgeerts P. et al. Lymphocytes and Langerhans cells in the human oesophageal epithelium // Virchows Arch. A. Pathol. Anat. Histopathol. -1983. Vol. 401, № 1. — P. 45−55.
  142. Giri N., Davis E.A., Vowels M.R. Long-term complications following bone marrow transplantation in children // J. Paediatr. Child. Health. 1993. — Vol. 29, № 3.-P. 201 -205.
  143. Greco F.A., Brereton H.D., Kent H. et al. Adriamycin and enhanced radiation reaction in normal esophagus and skin // Ann. Intern. Med. 1976. — Vol. 85, № 3.-P. 294−298.
  144. Gunin A.G., Nikolaev D.V. Effect of acute and chronic glucocorticoid treatments on epithelial cell proliferation in the esophagus and small intestine of rats // J. Gastroenterol. -1999. Vol. 34, № 6. — P.661−667.
  145. Gvozdjakova A., Bada V., Kruty F., Gvozdjak J. The effect of cyclophosphamide on the myocardial oxidase system of mitochondria // Cor Vasa. -1982. -Vol. 24, № 5. P. 389−394.
  146. Hadravska S., Chlumska A., Boudova L. et al. The histological findings in the gastroesophageal junction of fetuses // Cesk. Patol. 2004. -Vol.40, № 1.-P.7−10.
  147. Haentjens P., De Backer A., Willems G. Effect of an apple brandy from Normandy and of ethanol on epithelial cell proliferation in the esophagus of rats // Digestion. 1987. — Vol. 37, № 3. — P. 184−192.
  148. Hakansson C.H., Albertsson M., Palmegren M. The effect of 10 and 20 Gy single dose irradiation on the esophageal mucosa of the rabbit: An electron microscopic study // Scanning Microsc. -1989. Vol. 3, № 4. — P. 1169−1176.
  149. Harmse J.L., Carey F.A., Baird A.R. et al. Merkel cells in the human oesophagus // J. Pathol. 1999. — Vol. 189, № 2. — P. 176−179.
  150. Hashimoto Т., Noguchi Т., Nagai K. et al. The organization of the communication routes between the epithelium and lamina propria mucosae in the human esophagus // Arch. Histol. Cytol. 2002. — Vol. 65, № 4. — P. 323−335.
  151. Hecker D., Klug H., Tanneberger S., Rose H. Application of morphological and histochemical methods for evaluation of cytostatic effect on organ cultures of malignant tumors //Arch Geschwulstforsch. 1974. — Vol. 44, № 3.-P. 195−211.
  152. Herlofson B.B., Norman-Pedersen K., Redfors M., Fossa S.D. Oral mucosal side effects of cytotoxic chemotherapy of testicular cancer. A retrospective study // Eur. J. Oral. Sci. -1997. Vol. 105. — (5 Pt 2). — P. 523−526.
  153. Higuchi D., Sugawa C., Shah S.H. et al. Etiology, treatment, and outcome of esophageal ulcers, a 10-year experience in an urban emergency hospital // J. Gastrointest. Surg. 2003. — Vol. 7, № 7. — P .836−842.
  154. Histophysiology of the Immune System/ The Life History, Organization and Interactions of its Cell Populations: eds. Fossum E., Rolstadt B. N. Y.: Plenum Press, 1989.
  155. Hitchcock R.J., Pemble M.J., Bishop A.E. et al. The ontogeny and distribution of neuropeptides in the human fetal and infant esophagus // Gastroenterology. 1992. — Vol. 102, № 3. — P. 840−848.
  156. Hopwood D., Coghill G., Sanders D.S. Human oesophageal submucosal glands. Their detection mucin, enzyme and secretory protein content // Histochemistry. 1986. — Vol. 86, № 1. — P. 107−112.
  157. Hopwood D., Logan K.R., Bouchier I.A. The electron microscopy of normal human oesophageal epithelium // Virchows Arch. B. Cell Pathol. 1978. -Vol. 26, № 4. — P.345−358.
  158. Hopwood D., Milne G., Logan K.R. Electron microscopic changes in human oesophageal epithelium in oesophagitis // J. Pathol. 1979. — Vol. 129, № 4.-P. 61−67.
  159. Hopwood D., Moitra S., Vojtesek B. et al. Biochemical analysis of the stress protein response in human oesophageal epithelium // Gut. -1997. Vol. 41. -P. 156−163.
  160. Hopwood D., Ross P.E., Logan K.R., et al. Changes in enzyme activity in normal and histologically inflamed oesophageal epithelium // Gut. 19 796. -Vol. 20, № 9.-P. 769−774.
  161. Huang J.X., Yan W., Song Z.X. et al. Relationship between proliferative activity of cancer cells and clinicopathological factors in patients with esophageal squamous cell carcinoma // World. J. Gastroenterol. -2005. Vol. 11, № 19. — P. 2956−2959.
  162. Hume D.A., Perry V.H., Gordon S. The mononuclear phagocyte system of the mouse defined by immunohistochemical localisation of antigen F4/80: macrophages associated with epithelia // Anat. Rec. 1984. — Vol. 210, № 3. — P. 503−512.
  163. Ijiri K., Potten C.S. Further studies on the response of intestinal crypt cells of different hierarchical status to eighteen different cytotoxic agents // Br. J.Cancer. 1987. — Vol. 55, № 2. — P. 113−123.
  164. Islam A., Banerjee S., Kambhampati S. et al. Angiogenic switch in Barrett’s adenocarcinoma: the role of vascular endothelial growth factor // Front. Biosci. 2006. — Vol. 1, № 11. — P. 2336−2348.
  165. Ismail-Beigi F., Horton P.F., Popr C.E. Histological consequences of gastroesophageal reflux in man // Gastroenterology. -1970-Vol. 58, № 2. -P. 163−174.
  166. Isomoto H., Wang A., Mizuta Y. et al. Elevated levels of chemokines in esophageal mucosa of patients with reflux esophagitis // Am. J. Gastroenterol. -2003. Vol. 98, № 3. — P. 551−556.
  167. Jamdar M.N., Ema A.N. The submucosal glands and the orientation of the musculature in the oesophagus of the camel // J. Anat. 1982. — Vol. 135, Pt 1.-P.165−171.
  168. Jankowski J. Gene expression in Barrett’s mucosa: modulation of acute and chronic adaptive responses // Gut.-1993.-Vol.34.-P. 1012−1014.
  169. Jankowski J., Coghill G., Tregaskis B. et al. Epidermal growth factor in the oesophagus//Gut.- 1992.-Vol. 33.-P. 1448−1453.
  170. Jankowski J.A., Harrison R.F., Perry I. et al. Barrett’s metaplasia // Lancet. 2000a. — Vol. 356. — P. 2079−2085.
  171. Jankowski J., Hopwood D., Dover R., Wormsley K.G. Development and growth of normal, metaplastic and dysplastic oesophageal mucosa, biological markers of neoplasia // Eur. J. Gastroenterol. Hepatol. 1993. — Vol. 5. — P. 235— 246.
  172. Jankowski J.A., Perry I., Harrison R.F. Gastro-oesophageal cancer: death at the junction // Brit.Med. J. 2000. — Vol. 321. — P. 463−464.
  173. Jankowski J., Wright N.A. Epithelial stem cells in the gastrointestinal tract: structure, function and adaptation // Sem. Cell Biol. 1992. — Vol. 3. — P. 445—456.
  174. Johnson F.R., McMinn R.M. Mast cells in the epithelium of the oesophagus // Nature. -1957. Vol. 21. — № 180(4586). — P.615.
  175. Jovanovic I., Tzardi M., Mouzas I.A. et al. Changing pattern of cytokeratin 7 and 20 expression from normal pithelium to intestinal metaplasia of the gastric mucosa and gastroesophageal junction // Histol. Histopathol. 2002. -Vol.17, № 2.-P.445−454.
  176. Kaduk В., Barth H. The localisation of endocrine cells in the distal esophagus // Virchows Arch. A. Pathol. Anat. Histol 1978. — Vol. 377, № 4. — P. 311−328.
  177. Kaina В., Christmann M. DNA repair in resistance to alkylating anticancer drugs // Int. J. Clin. Pharmacol. Ther. 2002. — Vol. 40, № 8. — P. 354 367.
  178. Karam S.M. Lineage commitment and maturation of epithelial cells of the gut // Front. Biosci. 1999. — Vol. 4. — P. 286−298.
  179. Katayama M., Kan M. Heparin-binding fibroblast growth factors are potential autocrine regulators of esophageal epithelial cell proliferation // Tohoku J. Exp. Med. 1992. -Vol. 168, № 2. — P.287−290.
  180. Khalbuss W.E., Alkiek R., Marousis C.G., Orlando R.C. Potassium conductance in rabbit esophageal epithelium // Am. J. Physiol. 1993. — Vol. 265. — P. G28-G34.
  181. Khalbuss W.E., Marousis C.G., Subramanyam M. et al. Effect of HC1 on transmembrane potentials and intracellular pH in rabbit esophageal epithelium // Gastroenterology. 1995. — Vol. 108. — P. 662−672.
  182. Kim R., Clarke M.R., Melhem M.F. et. al. Expression of p53, PCNA, and C-erbB-2 in Barrett’s metaplasia and adenocarcinoma // Dig. Dis. Sci. 1997. — Vol. 42, № 12. — P. 2453−2462.
  183. Kimos M.C., Wang S., Borkowski A. et. al. Esophagin and proliferating cell nuclear antigen (PCNA) are biomarkers of human esophageal neoplastic progression // Int. J. Cancer. 2004. — Vol. 111,№ 3.-P. 415−417.
  184. Kober H.J. The ultrastructure of the rat esophageal epithelium during ontogenesis // Z. Mikrosk. Anat. Forsch. 1975. — Vol. 89, № 3. — P.563−586.
  185. Kober H.J., Herbst R. The inside surface of the rat esophagus during ontogenesis // Z. Mikrosk. Anat. Forsch. 1975. — Vol. 89, № 4. — P. 702−717.
  186. Krause W.J., Ivey K.J., Baskin W.N., MacKercher P.A. Morphological observations on the normal human cardiac glands // Anat. Rec. 1978. — Vol. 192, № 1. — P. 59−71.
  187. Krischel V., Bruch-Gerharz D., Suschek C. et. al. Biphasic effect of exogenous nitric oxide on proliferation and differentiation in skin derived keratinocytes but not fibroblasts // J. Invest. Dermatol. 1998. — Vol. Ill, № 2. -P. 286−291.
  188. Leblond C.P., Greulich R.C., Pereira J.P.M. Relationship of cell formation and cell migration in the renewal of stratified squamous epithelia // Adv. Biol. Skin. 1964. — Vol. 5. — P. 39−67.
  189. Leigh B.R., Lau D.H. Severe esophageal toxicity after thoracic radiation therapy for lung cancer associated with the human immunodeficiency virus: a case report and review of the literature // Am. J. Clin. Oncol. 1998. -Vol. 21, № 5.-P. 479−481.
  190. Li J., Zhang Y., Gao D. Study on the interrelationship between human papilloma virus infection and Langerhans cell in carcinogenesis of esophagus // Zhonghua. Bing. Li. Xue. Za. Zhi. 1996. — Vol. 25, № 2. — P. 83−85.
  191. Liacouras C.A., Ruchelli E. Eosinophilic esophagitis // Curr. Opin. Pediatr. 2004. — Vol. 16, № 5. — P. 560−566.
  192. Liu J.F., Jamieson G., Wu T.C. et al. Cyclooxygenase-2 expression in squamous cell carcinoma of the esophagus // Dis. Esophagus. 2006. — Vol. 19, № 5.-P. 350−354.
  193. Logan K.R., Hopwood D., Milne G. Cellular junctions in human oesophageal epithelium // J. Pathol. 1978. — Vol. 126, № 3. — P. 157−163.
  194. Lombardi Т., Hauser C., Budtz-Jorgensen E. Langerhans cells: structure, function and role in oral pathological conditions // J. Oral. Pathol. Med.1993.-Vol. 22, № 5.-P. 193−202.
  195. Lundqvist С., V. Baranov, S. Teglund, S. et al. Cytokine profile and ultrastructure of intraepithelial gamma delta T cells in chronically inflamed human gingiva suggest a cytotoxic effector function // J. Immunol. 1994. — Vol. 153. -P. 2302−2312.
  196. Mackie E.J. Immunosupressive effects of cyclophosphamide in pigs // Am. J. Vet. Res. 1981. — Vol. 42, № 2. — P. 189−194.
  197. Macpherson A.J., Mayall T.P., Chester R.A. et al. Mitochondrial gene expression in the human gastrointestinal tract // J. Cell Sci. -1992. Vol. 102, № 2. -P. 307−314.
  198. Mader A.M.A.A., Alves M.T.S., Kawakami E., Patricio F.R.S. Esofagite de refluxo em criancas, estudo histologico e morfometrico // Arq. Gastroenterol.-2002.-Vol. 39, № 2.-P. 126−131.
  199. Majeed S.K. Mast cell distribution in mice // Arzneimittelforschung.1994. Vol. 44, № 10. — P. 1170 — 1173.
  200. Malfertheiner P., Hallerback B. Clinical manifestations and complications of gastroesophageal reflux disease (GERD) // Int. J. Clin. Pract. -2005. Vol. 59, № 3. — P. 346−355.
  201. Mandys V., Lukas K., Revoltella R. Different patterns of cytokeratin expression in Barrett’s esophagus-what is beyond? // Pathol. Res. Pract. 2003. -Vol.199, № 9.-P.581−587.
  202. Mariani G., Calastrini C. Aleotti A. et al. Ultrastructural changes in Langergans cells in gingival overgrowth in cyclosporin A-treated renal transplant patients // Pathology. 2004. — Vol. 36, № 3. — P. 242−246.
  203. Marques-Pereira J.P., Leblond C.P. Mitosis and differentiation in the stratified squamous epithelium of the rat esophagus // Am. J. Anat. 1965. — Vol. 117. -P.73−90.
  204. Mascarenhas F., Silvestre M.E., Sada Costa M. et al: Acute secondary effects in the esophagus in patients undergoing radiotherapy for carcinoma of the lung // Am. J. Clin. Oncol. 1989. — Vol. 12, № 1. — P. 3
  205. Matsuda H., Mori M., Tsujitani S. et al. Immunohistochemical evaluation of squamous cell carcinoma antigen and S-100 protein-positive cells in human malignant esophageal tissues // Cancer. 1990. — Vol. 65, № 10. — P. 2261−2265.
  206. Menard D. Morphological studies of the developing human esophageal epithelium // Microsc. Res. Tech. 1995. — Vol. 31, № 3. — P. 215−225.
  207. Meyers R.L., Orlando R.C. In vivo bicarbonate secretion by human esophagus // Gastroenterol. 1992. — Vol. 103. — P. 1174−1178.
  208. Miyashita M., Makino H., Katsuta M. et al. Cyclo-oxygenase-2 over-expression is associated with human esophageal squamous cell carcinoma // J. Nippon. Med. Sch. 2006. — Vol.73, № 6. — P. 308−313.
  209. Morris H., Price S. Langerhans' cells, papillomaviruses and oesophageal carcinoma. A hypothesis // S. Afr. Med. J. 1986. — Vol. 69, № 7. -P. 413−417.
  210. Murray G.I., Shaw D., Weaver R.J. et al. Cytochrome P450 expression in oesophageal cancer // Gut. 1994. — Vol. 35, № 5. — P. 599- 603.
  211. Nagai К., Noguchi Т., Hashimoto Т. et al. The organization of the lamina muscularis mucosae in the human esophagus // Arch. Histol. Cytol.2003. Vol. 66, № 3. — P. 281−288.
  212. Nagayoshi H., Fukatsu K., Ueno C, et al. 5-Fluorouracil infusion reduces gut-associated lymphoid tissue cell number and mucosal immunoglobulin A levels // J. Parenter. Enteral. Nutr. 2005. — Vol. 29, № 6. — P. 395100.
  213. Namiot Z., Sarosiek J., Rourk R.M. et al. Human esophageal secretion, mucosal response to luminal acid and pepsin // Gastroenterology. 1994. — Vol. 106. -P.973−981.
  214. Narayani R.I., Burton M. P., Young G. S. Utility of esophageal biopsy in the diagnosis of nonerosive reflux disease // Dis. Esoph. 2003. — Vol. 16. -P. 187−192.
  215. Naya M.J., Pereboom D., Ortego J. et al. Superoxide anions produced by inflammatory cells play an important part in the pathogenesis of acid and pepsin induced oesophagitis in rabbits // Gut. 1997. — Vol. 40. — P. 175−181.
  216. Nishiyama Y., Ishizuka I., Andon A. et al. Histopathological examination in gastroesophageal reflux disease (GERD) // Nippon Rinsho.2004. Vol. 62, № 8. -P. 1483 — 1491.
  217. Nozoe Т., Korenaga D., Futatsugi M. et al. Cyclin A expression in superficial squamous cell carcinoma of the esophagus and coexisting infiltrated lymphocyte follicle // Cancer Lett. 2002. — Vol. 188. — P.221−229.
  218. Nurmenniemi P.K., Pernu H.E., Knuuttila M.L.Density of CDla-labeled Langerhans1 cells in normal human gingiva and in nifedipine- and immunosuppressive medication-induced gingival overgrowth // J. Periodontol. -1999. Vol.70, № 7. — P. 752−756.
  219. Nurmenniemi P.K. Pernu H.E., Knuuttila M.L. Mast cell subpopulations in gingival overgrowth induced by immunosuppressive and nifedipine medication // J. Periodontol. 2004. — Vol. 75, № 7. — P. 933−938.
  220. O’Morchoe P.J., Lee D.C., Kozak C.A. Esophageal cytology in patients receiving cytotoxic drug therapy // Acta Cytol. 1983. — Vol. 27, № 6. — P. 630 634.
  221. Orlando R.C. Why is high grade inhibition of gastric acid secretion afforded by proton pump inhibitors often required for healing of reflux esophagitis? // An epithelial perspective. Am. J. Gastroenterol. 1996. — Vol. 91. -P. 1692−1696.
  222. Orlando R.C. Reflux esophagitis. In: Textbook of Gastroenterology. Yamada Т., Alpers D.H., Owyang C. et al. eds. Philadelphia: J.B. Lippincott Williams & Wilkins, 1999: P. 1235−1263.
  223. Orlando R.C., Bryson J.C., Powell D.W. Mechanisms of H+ injury in rabbit esophageal epithelium // Am. J. Physiol. 1984. — Vol. 246. — P. G718-G724.
  224. Orlando R.C., Lacy E.R., Tobey N.A., Cowart K. Barriers to paracellular permeability in rabbit esophageal epithelium // Gastroenterology.1992.-Vol. 102.-P. 910−923.
  225. Orlando R.C., Powell D.W., Carney C.N. Pathophysiology of acute acid injury in rabbit esophageal epithelium // J. Clin. Invest. 1981. — Vol. 68. -P. 286−293.
  226. Ouatu-Lascar R., Fitzgerald RC., Triadafilopoulos G Differentiation and proliferation in Barrett’s esophagus and the effects of acid suppression // Gastroenterology. 1999. — Vol. 117, № 2. — P.327−335.
  227. F.T., Sleijfer D. Т., Van Imhoff G. W, Kleibeuker J.H. Is chemotherapy associated with development of Barrett’s esophagus? // Dig. Dis. Sci. -1993. Vol. 38, № 5 — P. 923−926.
  228. Peterson D.E., Cariello A. Mucosal damage: a major risk factor for severe complications after cytotoxic therapy // Semin. Oncol. 2004. — Vol. 31(3 Suppl 8). P. 35−44.
  229. Pettit M. Gastroesophageal reflux disease: clinical features // Pharm. World. Sci. -2005. Vol. 27, № 6. -P. 417−420.
  230. Post J.G., te Poele J.A., Oussoren Y., Stewart F.A. Bladder damage in mice after single and repeated intravesical instillations of mitomycin С or doxorubicin // J. Urol. 1993. — Vol. 150, № 6. — P. 1965−1969.
  231. Preston-Martin S., Pike M.C., Ross R.K. et al. Increased cell division as a cause of human cancer // Cancer Res. 1990. — Vol. 50, № 23. — P. 7415−7421.
  232. Rafiee P., Ogawa H., Heidemann J. et al. Isolation and characterization of human esophageal microvascular endothelial cells: mechanisms of inflammatory activation // Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. 2003. -Vol. 285, № 6. -P. G1277-G1292.
  233. Ramadan A.A., Yousif W.B., Ali A.M. The effect of methotrexate (MTX) on the small intestine of the mouse. III. Mitochondria and succinic dehydrogenase (SDH) // Funct. Dev. Morphol. 1992. — Vol. 2, № 1. — P.3−9.
  234. Ramirez-Bosca A., Kanitakis J., Thivolet J. Cyclosporin A exerts a cytostatic effect in vivo on human and murine epithelial cells // Cancer. 1990. -Vol. 66,№ 5.-P. 936−940.
  235. Raymond C., Anne V., Millane G. Development of esophageal epithelium in the fetal and neonatal mouse // Anat. Rec. 1991. — Vol. 230, № 2. -P. 225−234.
  236. Robinson K.M., Maistry L., Evers P. Surface features of normal and neoplastic human esophageal cells in vivo and in vitro // Scan. Electron Microsc. -1981.- Pt 2.-P. 213−222.
  237. Ruffy M.B., Kunnavatana S.S., Koch R.J. Effects of tamoxifen on normal human dermal fibroblasts // Arch. Facial. Plast. Surg. 2006. — Vol. 8, № 5. -P. 329−332.
  238. Rydzynski K., Zabel M. Surdik J. Immunohistochemical studies on human myocardial mast cells // Cell Mol. Biol. 1990. — Vol 36, № 5. — P. 573 -580.
  239. Sabo E., Beck A.H., Montgomery E.A. et al Computerized morphometry as an aid in determining the grade of dysplasia and progression to adenocarcinoma in Barrett’s esophagus // Lab Invest. 2006. — Vol. 86, № 12. — P. 1261— 1271.
  240. Sakai N., Suenaga Т., Tanaka K. Electron microscopic study on the esophageal mucosa in human fetuses // Auris. Nasus. Larynx. 1989. — Vol. 16, № 3.-P. 177−183.
  241. Salo J.A. Ethanol-induced mucosal injury in rabbit esophagus // Scand. J. Gastroenterol. 1983. — Vol. 18. -P. 713−721.
  242. Sarosiek J., McCallum R.W. Mechanisms of oesophageal mucosal defence // Bailliere’s Clin. Gastroenterol. 2000. — Vol. 14, № 5. — P.701−717.
  243. Sarosiek J., Yu Z., Namiot Z. et al. Impact of acid and pepsin on human esophageal prostaglandins // Am. J. Gastroenterol. 1994. — Vol. 89. — P. 588— 594.
  244. Sartori S., Nielsen M., Indelli M. et al. Barrett esophagus after chemotherapy with cyclophosphamide, methotrexate, and 5-fluorouracil (CMF): an iatrogenic injury? // Ann. intern. Med. —1991. Vol. 114, № 3 — P. 210−211.
  245. Sasano H., Miuazaki S., Shiga K. et al. Glutathione S-transferase in human esophageal carcinoma // Anticancer. Res. 1993. — Vol. 13, № 2. — P. 363 368.
  246. Sato K., Hirano M. Langerhans cells in the larynx and the hypopharynx // Kurume Med J. 1997. — Vol. 44, № 4. — P. 297−303.
  247. Sato N., Hitomi J. SI OOP expression in human esophageal epithelial cells: Human esophageal epithelial cells sequentially produce different SI00 proteins in the process of differentiation // Anat. Rec. 2002. — Vol. 267, № 1. — P. 60−69.
  248. Sauget P., Soubiran P., Monteil R.A. Physiology of Langerhans cells and their potential role in oral pathology // J. Biol. Buccale. 1986. — Vol. 14, № l.-P. 3−14.
  249. Schaarschmidt K., Stratmann U., Lehmann R.R. et al. The rat esophagus: ultrastructure and radiological aspects of tissue response after 1320 nm Nd: YAG laser irradiation // Exp. Toxicol. Pathol. 1992. — Vol. 44, № 5. — P. 239−244.
  250. Schmidberger H., Rave-Frank M., Kim S. et al. Radiation-induced mucositis and neutrophil granulocytes in oral mucosa // Strahlenther. Onkol. -2003. Vol. 179, № 10. — P. 667−672.
  251. Schonnagel B. Vergleichende Untersuchungen zur Struktur und Funktion des Oesophagus-Epithels bei Vertebraten in Bezug zur Ernahrungsweise, unter besonderer Beriicksichtigung der Haussaugetiere. Dissertation, Hannover, Tierarztliche Hochschule, 2005.
  252. Schubert M.M., Williams B.E., Lloid M.E. et al. Clinical assessment scale for the rating of oral mucosal changes associated with bone marrow transplantation. Development of an oral mucositis index // Cancer. -1992. V. 69, № 10.-P. 2469−2477.
  253. Seefeld U., Krejs G.J., Siebenmann R.E., Blum A.L. Esophageal histology in gastroesophageal reflux. Morphometric findings in suction biopsies // Am. J. Dig. Dis. 1977. — Vol. 22, № 11. — P. 956−964.
  254. Seery J. Stem cells of the oesophageal epithelium // J. Cell Sci. 2002. — Vol. 115.-P. 1783−1789.
  255. Seery J.P., Watt F. M. Asymmetric stem-cell divisions define the architecture of the human oesophageal epithelium // Curr. Biol. 2000. — Vol. 10. -P. 1447−1450.
  256. Sellier S. Levesque H. Courville P. Joly P. Cyclophosphamide-induced neutrophilic disease in a patient with angioimmunoblastic lymphadenopathy and myelodysplastic syndrome // Ann. Dermatol. Venereol. 2006. — Vol. 133, № 5. -P. 459−462.
  257. Shaked Y., Emmenegger U., Francia G. et al. Low-dose metronomic combined with intermittent bolus-dose cyclophosphamide is an effective long-term chemotherapy treatment strategy // Cancer Res. 2005. — Vol. 65, № 16. -P. 7045−7051.
  258. Sharma P. Prevalence of Barrett’s oesophagus and metaplasia at the gastro-oesophageal junction // Aliment. Pharmacol. Ther. 2004. — Vol. 20. -Suppl. 5. — P. 48−54.
  259. Sharma P. Gastro-oesophageal reflux disease: symptoms, erosions, and Barrett’s-what is the interplay? // Gut. 2005. — Vol. 54, № 6. — P. 739−740.
  260. Shasha’a S., Dickson G.R., Gilmore R.S. et al. Rabbit and human non-keratinising stratified squamous oesophageal epithelium displays similar microridge structure by scanning electron microscopy // Scanning Microsc. 1993. -Vol. 7,№ 3.- P. 953−958.
  261. Shibata M.A., Hasegawa R., Kurata Y., et al. Bladder epithelial hyperplasia in F344 rats after intravesical instillation of the antitumor chemotherapeutic agents Adriamycin and mitomycin С // Cancer. Lett. 1990. — Vol. 49, № 1. — P. 41−49.
  262. Shirazi S.S., Platz C.E. Effect of alcohol on canine esophageal mucosa// J. Surg. Res. -1978. Vol. 25. — P. 373−379.2
  263. Siegmund S.V., Singer M.V. Wirkungen von Alkohol auf den oberen Gastrointestinaltrakt und das Pankreas-Eine aktuelle Ubersicht // Z. Gastroenterol. 2005. — Vol. 43, № 8. — P. 723−736.
  264. Siew S., Goldstein M.L. Scanning electron microscopy of mucosal biopsies of the human upper gastrointestinal tract // Scan. Electron Microsc. -1981.-Vol. 4. -P.173−181.
  265. Singaram C., Sengupta A., Stevens C. et al. Localization of calcitonin gene-related peptide in human esophageal Langerhans cells // Gastroenterology. -1991. Vol. 100, № 2. -P. 560−563.
  266. Skoog M.L., Groth O. The cellular infiltrate in experimental allergic and toxic contact dermatitis. Effect of systemically administered corticosteroids // Int. Arch. Allergy Appl. Immunol. 1981. — Vol. 65, № 2. — P. 168−178.
  267. Slavin R.E., Dias M.A., Sarai R. Cytosine arabinoside induced gastrointestinal toxic alterations in sequential chemotherapeutic protocols. A clinico-pathologic study of 33 patients // Cancer. 1978. — Vol. 42. — P. 17 471 759.
  268. Slavin R.E., Millan J.C., Mullins G.M. Pathology of high dose intermittent cyclophosphamide therapy // Hum. Pathol. 1975. — Vol. 6, № 6. — P. 693−709.
  269. Snow C.J., Goldstein J.L., Schmidt L.N. et al. Rabbit esophageal cells show regulatory volume decrease: ionic basis and effect of pH // Gastroenterology. -1993.-Vol. 105.-P. 102−110.
  270. Sobhon P., Wanichanon C., Sretarugsa P. Morphological changes induced by cyclophosphamide in crypt epithelium of the small intestine in mice: light and electron microscopic studies // Am. J. Anat. 1977. — Vol. 149, № 4. — P. 563−583.
  271. Solcia E., Villani L., Luinetti O. et al. Altered intercellular glycoconjugates and dilated intercellular spaces of esophageal epithelium in reflux disease // Virchows Arch. 2000. — Vol. 436, № 3. — P. 207−216.
  272. H.U., Borchard F., Каир F.G. Effect of N-ethyl-N-butyl-nitrosamine on the esophageal mucosa of the rat. Histometric investigation of early tumor stages // Histol. Histopathol. 1987. — Vol. 2, № 3. — P. 317−328.
  273. Sonis S.T., Fey E.G. Oral complications of cancer therapy // Oncology (Williston Park). 2002. — Vol. 16, № 5. — P. 680 — 685.
  274. Spechler S. J. Barrett esophagus: a sequela of chemotherapy // Ann. Intern. Med.-l 991.-Vol.114, № 3.-P.243−244.
  275. Spechler S.J. GERD and its complications // Mt. Sinai J. Med. 2000. -Vol. 67, № 2. — P. 106−111.
  276. Squier C.A. Oral complications of cancer therapies. Mucosal alterations // NCI Monogr. 1990. — № 9. — P. 169−172.
  277. Straumann A., Bauer M., Fischer В., Blaser K., Simon H.U. Idiopathic eosinophilic esophagitis is associated with a T (H)2-type allergic inflammatory response // J. Allergy Clin. Immunol. 2001. — Vol. 108, № 6. — P. 954−961.
  278. Straumann A., Kristl J., Conus S. et al. Cytokine expression in healthy and inflamed mucosa: probing the role of eosinophils in the digestive tract // Inflamm. Bowel.Dis.-2005.-Vol.l 1, № 8.-P. 720−726.
  279. Sutton F.M., Graham D.Y., Goodgame R.W. Infectious esophagitis // Gastrointest. Endosc. Clin. N. Am. 1994. — Vol. 4, № 4. — P. 713−729.
  280. Svobodovda D., Slany J., Klvana P., Blazek В., Curik R. A rare complication of acute lymphoblastic leukaemia in young patients // Cas. Lek. Cesk. -2007. -Vol. 146, № 1. -P. 77−80.
  281. Takubo К., Honma N., Aryal G. et al. Is there a set of histologic changes that are invariably reflux associated? // Arch. Pathol. Lab. Med. 2005. -Vol. 129, № 2.-P. 159−163.
  282. Tardieu C, Cowen D, Thirion X, Franquin JC. Quantitative scale of oral mucositis associated with autologous bone marrow transplantation // Eur. J. Cancer B. Oral. Oncol. 1996. — Vol. 32B, № 6. — P. 381−387.
  283. Tchorzewski M.T., Qureshi F.G., Duncan M. D et al. Role of insulinlike growth factor-I in esophageal mucosal healing processes // J. Lab. Clin. Med. 1998.-Vol. 132.-P.134−141.
  284. Teot L.A., Ducatman B.S., Geisinger K.R.Cytologic diagnosis of cytomegaloviral esophagitis. A report of three acquired immunodeficiency syndrome-related cases // Acta Cytol. 1993. — Vol. 37, № 1. — P. 93−96.
  285. Terris В., Potet F. Structure and role of Langerhans' cells in the human oesophageal epithelium // Digestion. 1995. — Vol. 56. — Suppl 1. — P. 9−14.
  286. Tobey N.A., Carson J.L., Alkiek R.A., Orlando R.C. Dilated intercellular spaces: a morphological feature of acid reflux-damaged human esophageal epithelium // Gastroenterology. 1996. — Vol. 111. — P. 1200−1205.
  287. Tobey N.A., Koves G., Orlando R.C. HCl-induced cell edema in primary cultured rabbit esophageal epithelium // Gastroenterology. 1997. — Vol. 112.-P. 847−854.
  288. Tobey N.A., Powell D.W., Schreiner V.J. et al. Serosal bicarbonate protects against acid injury to rabbit esophagus // Gastroenterology. 1989. — Vol. 96.-P. 1466−1477.
  289. Tobey N.A., Sikka D., Marten E. et al. Effect of heat stress on rabbit esophageal epithelium // Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. 1999. -Vol. 276. — P. G1322-G1330.
  290. Tonotsuka N., Hosoi Y., Miyazaki S. et al. Heterogeneous expression of DNA-dependent protein kinase in esophageal cancer and normal epithelium // Int. J. Mol. Med. 2006. — Vol. 18, № 3. — P.441 -447.
  291. Tozzi A., Staiano A., Paparo F. et al. Characterization of the inflammatory infiltrate in peptic oesophagitis // Dig. Liver Dis. 2001. — Vol. 33, № 6.-P. 452−458.
  292. Wagner, D. K., and P. G. Sohnle. 1995. Cutaneous defenses against dermatophytes and yeasts // Clin. Microbiol. Rev. 1995. — Vol. 8, № 3. — P. 317 335.
  293. Wang L.D., Zhou Q., Yang C.S. Esophageal and gastric cardia epithelial cell proliferation in northern Chinese subjects living in a high-incidence area // J. Cell Biochem., Suppl. -1997. Vol. 28−29. — P. 159−165.
  294. Wang Т., Liu В., Wang L. et al. The expression and implication of proliferating cell nuclear antigen and p53 protein in reflux esophagitis lesions // ZhonghuaNei. Ke. Za. Zhi. -2002. Vol. 41, № 1. -P. 392.
  295. Werner-Wasik M. Treatment-related esophagitis // Semin. Oncol. -2005. Vol. 32, № 2, Suppl 3. — P. 60−66.
  296. Wetscher G. J., Hinder P. R., Bagghi D. et al. Free radical scavengers prevent reflux esophagitis in rats // Dig. Dis. Sci. 1995. — Vol. 40. — P. 1292 -1296.
  297. Wilcox C.M., Karowe M.W. Esophageal infections: etiology, diagnosis, and management // Gastroenterologist. 1994. — Vol. 2, № 3. — P. 188— 206.
  298. Winter H.S., Madara J.L., Stafford R.J. et al. Intraepithelial eosinophils, a new diagnostic criterion for reflux esophagitis // Gastroenterology. 1982. — Vol. 83.-P. 818−823.
  299. Yagui-Beltran A., Craig A. L., Lawrie L. et al. The human oesophageal squamous epithelium exhibits a novel type of heat shock protein response // Eur. J. Biochem. 2001. — Vol. 268. — P. 5343−5355.
  300. Yakoub-Agha I., Damaj G., Garderet L. et al. Severe oesophagitis after allogeneic bone marrow transplantation for Fanconi’s anemia // Bone Marrow Transplant. 2000. — Vol. 26, № 2. — P. 215−218.
  301. Yamaguchi Т., Yoshida N., Tomatsuri N. et al. Cytokine-induced neutrophil accumulation in the pathogenesis of acute reflux esophagitis in rats // Int. J. Mol. Med. 2005. — Vol. 16, № 1. — P. 71−77.
  302. Yamazaki K., Ohmori Т., Kumagai Y. et al. Ultrastructure of oesophageal melanocytosis // Virchows Arch. A. Patho. l Anat. Histopathol. -1991. Vol. 418, № 6. — P. 515−522.
  303. Yasunaga M., Tabira Y., Kondo K. et al. The prognostic significance of cell cycle markers in esophageal cancer after neoadjuvant chemotherapy // Dis. Esophagus. 1999. — Vol. 12, № 2. — P.120−127.
  304. Ypsilantis P., Tentes L., Assimakopoulos S.F. et al. Dose related effects of ifosfamide on enterocyte apoptosis in different sites of the rabbit intestine // Toxicology. 2004. — Vol. 200, № 2−3. — P. 135−143.
  305. Yu W.Y., Slack J.M., Tosh D. Conversion of columnar to stratified squamous epithelium in the developing mouse oesophagus // Dev Biol. 2005. -Vol.284,№ l.-P. 157−170.
  306. Zavala W.D., De Simone D.S., Sacerdote F.L., Cavicchia J.C. Variation in Langerhans cell number and morphology between the upper and lower regions of the human esophageal epithelium // Anat. Rec. 2002. — Vol. 268, № 4. — P. 360−364.
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?