Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Морфофункциональная характеристика парасимпатических и сенсорных нейронов, иннервирующих толстую кишку

Диссертация: Морфофункциональная характеристика парасимпатических и сенсорных нейронов, иннервирующих толстую кишку
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Что касается парасимпатической иннервации дистальных отделов желудочно-кишечного тракта, включая прямую кишку, то литературных сведений по этому вопросу мало. Имеются данные о существовании в дорсальном моторном ядре блуждающего нерва небольшого количества клеток, посылающих аксоны к области илеоцекального сфинктера, слепой кишке и к верхней части толстой кишки (Satomi et al., 1978; Miselis… Читать ещё >

Содержание

  • Глава 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Анатомия и функции толстой кишки
    • 1. 2. Общие принципы иннервации толстой кишки
      • 1. 2. 1. Парасимпатическая иннервация толстой кишки
      • 1. 2. 2. Чувствительная иннервация толстой кишки
    • 1. 3. Анатомические особенности строения сакрального отдела спинного мозга
      • 1. 3. 1. Сакральное парасимпатическое ядро
      • 1. 3. 2. Ультраструктурная и нейрохимическая организация ядра
  • Глава 2. Методика и материалы
    • 2. 1. Методика морфологических исследований
      • 2. 1. 1. Обоснование выбора ретроградного маркера.402.1.2. Подготовка животного к операции и введение маркера.42,
      • 2. 1. 3. Методика гистологической обработки срезов мозга
    • 2. 2. Методика электрофизиологических экспериментов
      • 2. 2. 1. Подготовка животного к операции
      • 2. 2. 2. Методика проведения регистрации внутрикишечного давления и микростимуляция нейронов сакрального парасимпатического ядра
  • Глава 3. Результаты исследования
    • 3. 1. Изучение парасимпатической иннервации толстой кишки
      • 3. 1. 1. Локализация меченых клеток при инъекции раствора пероксидазы хрена в стенку илеоцекальной области
      • 3. 1. 2. Локализация меченых клеток при инъекции раствора маркера в стенку восходящей ободочной кишки
      • 3. 1. 3. Локализация меченых клеток при инъекциях маркера в стенку поперечной ободочной кишки
    • 3. 1.4. Локализация парасимпатических нейронов при инъекции раствора пероксидазы хрены в стенку нисходящей ободочной кишки
  • 3- 1.5. Локализация парасимпатических нейронов при инъекции раствора пероксидазы хрены в стенку прямой кишки
    • 3. 1.6- Сравнительная характеристика парасимпатической иннервации толстой кишки нейронами Сакрального отдела спинного мозгаг
      • 3. 2. Изучение.афферентнойшннервации толстой кишки нейронами сакральных спинномозговых ганглиев
        • 3. 2. 1. Локализация меченых клеток в сакральных спинальных ганглиях при инъекциях пероксидазы хрена в область восходящей ободочной кишки
    • 3. Локализация меченых клеток в сакральных спинальных ганглиях при инъекциях пероксидазы хрена в стенку поперечной ободочной кишки
    • 3. -2.3- Локализация меченых клеток- в сакральных, спинальных ганглиях при инъекциях пероксидазы хрена в стенку нисходящей ободочнои-кишки
    • 3. 2.4: Локализация^меченых клеток-в сакральныххпинальных ганглиях при инъекциях пероксидазы хрена^в стенку прямой кишки
      • 3. 2. 5. Морфометрический анализ чувствительных нейронов сакральных спинальных ганглиев- иннервирующих толстую кишку
      • 3. 3. ¿Изучение моторных реакций разных отделов толстой кишки на микростимуляцию нейронов сакрального парасимпатического ядра
      • 3. 3. 1. Фоновая моторная активность разных. отделов толстой кишки кошки 95 3'.3:.2″. Моторные реакции толстой кишки на микростимуляцию нейронов сакрального парасимпатического ядра
  • ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
  • ВЫВОДЫ

Морфофункциональная характеристика парасимпатических и сенсорных нейронов, иннервирующих толстую кишку (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы.

Парасимпатическая регуляция функций толстой кишки является одной из наименее исследованных проблем физиологии желудочно-кишечного тракта. Прежде всего, это касается регуляции моторной функции толстой кишки. До последнего времени основное внимание уделялось изучению бульбарных механизмов регуляции моторной деятельности верхних отделов желудочно-кишечного тракта, которые реализуются с участием блуждающих нервов (Gillis et al., 1989; Багаев и др., 1997; Пантелеев и др., 2004). Установлено, что основная часть клеток, иннервирующих разные отделы желудка и тонкой кишки, располагается в дорсальном моторном ядре-блуждающего нерва (Miselis et al., 1990; Багаев и др., 1989, 1991', 1992, 1996, 1997). Эти нейроны организованы в виде узких полос (иликолонок), ориентированных вдоль ядра в каудо-ростральном направлении (Dennison' et al, 1981; Fox, Powley, 1985) и для каждого отдела желудка и тонкой кишки-в этом ядре существуют области максимального скопления инициальных нейронов. Установлено также, что области дорсального моторного ядра, нейроны которых посылают аксоны к разным частям желудочно-кишечного тракта, не перекрываются (Багаев, Макаров, 1997). Таким образом, предполагается существование топической организации парасимпатической^ иннервации верхних отделов желудочно-кишечного тракта нейронами дорсального моторного ядра блуждающего нерва, начиная от желудка и кончая тощей кишкой (Багаев и др., 1997).

Что касается парасимпатической иннервации дистальных отделов желудочно-кишечного тракта, включая прямую кишку, то литературных сведений по этому вопросу мало. Имеются данные о существовании в дорсальном моторном ядре блуждающего нерва небольшого количества клеток, посылающих аксоны к области илеоцекального сфинктера, слепой кишке и к верхней части толстой кишки (Satomi et al., 1978; Miselis et al., 1990; Altschuler et al., 1991, 1993). Значительно меньше известно об организации парасимпатической иннервации толстой кишки нейронами сакрального отдела спинного мозга (Christensen, Wingate, 1983; Hudson, 1990). Основная масса исследований, выполненных к настоящему времени посвящена изучению особенностей иннервации мочеполовых органов (Morgan et al., 1979; Kruse, de Groat, 1990; Papka et al., 1995; Nadelhaft, Vera, 1996; Banrezes et al., 2002; Shefchyk, 2002, Tai et al., 2004). Вместе с тем, точная пространственная локализация и морфологические особенности сакральных парасимпатических нейронов, иннервирующих разные участки толстой кишки, остаются неясными.

Несомненно, что в регуляции функций толстой кишки существенную роль играют нейроны внутриорганных ганглиев метасимпатической нервной системы (Лаврентьев, 1921; Колосов, 1968; Тихонова, 1968; Лукашин, 1969; Ноздрачев, 1983, 1991; Ноздрачев, Чумасов, 1999; Neunlist, Schemann, 1997) и симпатические механизмы, локализованные в вегетативных ядрах люмбальных сегментов спинного мозга (Janig, McLachlan, 1987; Baron, Janig, 1988; Аккуратов, 1991). Вместе с тем большое количество клинических наблюдений свидетельствует о важной роли парасимпатических механизмов в регуляции моторной функции толстой кишки для обеспечения нормальной жизнедеятельности человека (Gore et al., 1981). Известно, что многие заболевания желудочно-кишечного тракта сопровождаются нарушениями моторной деятельности и координации в работе разных отделов толстой кишки (Окороков, 2002). Клинические наблюдения показывают, что нарушение функций толстой кишки человека может возникать после стволовой ваготомии в виде постваготомической диареи (Condon et al., 1975; Курыгин и др., 1997), а также после травматических повреждений или оперативных вмешательств на сакральном отделе спинного мозга в виде существенного замедления транспорта ее содержимого во время акта дефекации (Кго§ Ь et а1., 2003). Механизмы подобных нарушений неясны. Отсутствие четких представлений о парасимпатических механизмах, обеспечивающих моторную деятельность толстой кишки в норме, существенно затрудняет диагностику и лечение указанных нарушений моторной функции толстой кишки. Таким образом, изучение структурной и функциональной организации парасимпатических нейронов, иннервирующих толстую кишку, имеет существенное значение не только для понимания принципов рефлекторной регуляции ее функций, и в частности ее моторной деятельности, но и для клинической практики.

Цель и задачи исследования

.

Целью настоящей работы являлось изучение морфо-функциональных характеристик нейронов сакрального парасимпатического ядра спинного мозга инейронов сакральных спинальных ганглиев, осуществляющих эфферентную и афферентную иннервацию разных отделов толстой* кишки-кошки, а также нейронов дорсального моторного ядра блуждающего нерва, участвующих в парасимпатической иннервации, толстой кишки. Для достижения данной цели были поставлены следующие задачи:

1. Изучить особенности локализации и морфологические характеристики нейронов дорсального моторного ядра блуждающего нерва и сакрального парасимпатического ядра спинного мозга, иннервирующих область илеоцекального сфинктера, восходящую, поперечную и нисходящую части ободочной кишки, а также прямую кишку.

2. Изучить распределение и морфологические характеристики нейронов сакральных спинальных ганглиев, осуществляющих афферентную иннервацию указанных участков толстой кишки.

3. Изучить моторные реакции разных отделов толстой кишки в ответ на микростимуляцию нейронов сакрального парасимпатического ядра.

Научная новизна:

Впервые выполнено комплексное изучение морфо-функциональных характеристик парасимпатической иннервации толстой кишки у кошки. Установлено, что в поперечной ободочной кишке существует перекрытие областей парасимпатической иннервации нейронами дорсального моторного1 ядра’блуждающего нерва и нейронами сакрального парасимпатического ядра спинного мозга. Впервые показано, чтостепень выраженности парасимпатической иннервации толстойкишки нейронами сакрального парасимпатического ядра возрастает в каудальном направлении по длине кишки. Доказано, что наибольшее количество нейронов этого ядра, иннервирующих толстую кишку, расположено в области, соответствующей второму сакральному сегменту спинного мозга. Впервые установлено, что степень выраженности афферентной иннервации толстой кишки чувствительными нейронами сакральных спинномозговых ганглиев* возрастает в каудальном направлении и наибольшее количество этих нейронов, располагается вспинальных ганглиях 81 Г. В* электрофизиологических экспериментах с микростимуляцией клеток сакрального парасимпатического ядра впервые показано, что стимуляция нейронов сакрального парасимпатического ядра на участке, соответствующем сегменту БН, сопровождается наиболее выраженными моторными реакциями толстой кишки, возникающими с наименьшим-латентным периодом по сравнению с аналогичной стимуляцией других сегментов.

Теоретическая и практическая значимость работы.

Полученные в работе новые данные об организации парасимпатической иннервации толстой кишки нейронами сакрального парасимпатического ядра представляют существенное теоретическое значение для понимания основных принципов центральной регуляции функций толстой кишки. Результаты работы могут быть использованы в создании физиологической основы для разработки клинических методов стимуляции сакральных парасимпатических нейронов для лечения моторных дисфункций толстой кишки, которые возникают у больных с повреждениями спинного мозга. Основные положения и выводы работы могут быть использованы в лекционных курсах по физиологии висцеральных систем.

Апробация материалов диссертации.

Результаты работы представлены на Всероссийской конференции молодых исследователей «Физиология и медицина» (Санкт-Петербург, 2005), International C.I.A.N.S. conference (Bratislava, Slovakia, 2005), на IX и X Всероссийской медико-биологической конференции молодых исследователей «Человек и его здоровье (Санкт-Петербург, 2006, 2007), на V Международной конференции по функциональной нейроморфологии «Колосовские чтения — 2006» (Санкт-Петербург, 2006), на Всероссийской конференции «Актуальные проблемы физиологии пищеварения и питания» с международным участием, посвященной 80-летию A.M. Уголева, (Санкт-Петербург, 2006), на V и VI Молодежной научной* конференции Института физиологии Коми НЦ УрО РАН «Физиология человека и животных: от эксперимента к клинической практике» (Сыктывкар, 2006, 2007), на XIII и XIV Международной конференции студентов, аспирантов и молодых ученых (Москва, 2006, 2007), на Межинститутской конференции молодых ученых «Механизмы регуляции и взаимодействия физиологических систем организма человека и животных в процессах приспособления к условиям среды», посвященной 100-летию со дня рождения академика В. Н. Черниговского (Санкт-Петербург, 2007) и на V Всероссийской конференции с международным участием, посвященной 100-летию со дня рождения В. Н. Черниговского «Механизмы функционирования висцеральных систем» (Санкт-Петербург, 2007).

Публикации.

По теме диссертации опубликовано 21 научная работа в отечественной и зарубежной печати (4 статьи и 17 тезисов).

Структура и объем работы.

Диссертация состоит из введения, обзора литературы, главы, в которой представлены основные методические приемы, использованные в работе, главы с изложением экспериментальных результатов, обсуждения, выводов и списка литературы. Работа изложена на 138 страницах, из них 49 рисунков и 3 таблицы.

Список литературы

включает 203 источника: 36 отечественных и 167 зарубежных.

ВЫВОДЫ.

1. Проксимальная часть толстой кишки (илеоцекальная область и восходящая ободочная кишка) получает парасимпатическую иннервацию только от нейронов дорсального моторного ядра блуждающего нерва. Поперечная ободочная кишка имеет двойную парасимпатическую иннервацию, как от нейронов дорсального моторного ядра, так и от нейронов сакрального парасимпатического ядра спинного мозга. Дистальная часть толстой кишки (нисходящая ободочная и прямая кишка) получает парасимпатическую иннервацию только от нейронов сакрального парасимпатического ядра.

2. Выраженность эфферентной иннервации толстой кишки клетками сакрального парасимпатического ядра возрастает в каудальном направлении вдоль кишки. При этом наибольшее число нейронов, иннервирующих толстую кишку, располагается в области сакрального парасимпатического ядра, соответствующей сегменту Sil спинного мозга.

3. Выраженность чувствительной иннервации толстой кишки нейронами сакральных спинномозговых ганглиев, соответствующих сегментам SI, Sil и SIII спинного мозга, возрастает в каудальном направлении вдоль кишки. Наибольшее количество клеток сакральных спинномозговых ганглиев, осуществляющих чувствительную иннервацию толстой кишки, располагается в спинальных ганглиях SII.

4. Микростимуляция нейронов сакрального парасимпатического ядра вызывает возбудительные моторные реакции во всех исследованных отделах толстой кишки. При этом моторные реакции прямой кишки более выражены и возникают с меньшим латентным периодом по сравнению с реакциями, регистрируемыми в других участках толстой кишки.

5. Микростимуляция нейронов сакрального парасимпатического ядра, расположенных в сегменте Sil, сопровождается наиболее выраженными моторными реакциями толстой кишки, возникающими с наименьшим латентным периодом, по сравнению с реакциями на стимуляцию нейронов, локализованных в сегментах SI и SIII.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Е.Г. Экстраорганные источники иннервации сигмовидной кишки. Арх. анат., гист. и эмбриол., 1991, т. 100, № 4, с. 39−41.
  2. А.П. О природе и связях клеток II типа Догеля толстой кишки. Сб. Вопросы морфологии периферической нервной системы, Минск, Изд-во Акад. наук БССР, 1963, вып. 6, с. 110−115.
  3. В.А. и Макаров Ф.Н. Дорсальное моторное ядро блуждающего нерва и его роль в иннервации пищеварительного тракта. Морфология, 1997, т. 111, № 1, с. 7−14.
  4. В.А., Ноздрачев А. Д. и Пантелеев С.С. Ваго-вагальная рефлекторная дуга. Элементы структурно-функциональной организации. СПб., Изд-во СПб ун-та, 1997, 204 с.
  5. В.А. и Пантелеев С.С. Афферентное звено в системе бульбарной регуляции моторной функции желудка. Физиол. журн. им. И. М. Сеченова, 1996, т. 82, № 5−6, с. 121−131.
  6. В.А., Филиппова Л. В., Акоев Г. Н. и Макаров Ф.Н. Экстраорганные источники парасимпатической иннервации тонкой кишки в области связки Трейтца. Нейрофизиология, 1992, т. 24, № 4, с. 423−430.
  7. В.А., Макаров Ф. Н., Рыбаков В. Л., Гранстрем Э. Э., Плужниченко Е. Б. и Смирнов С.И. Локализация нейронов в дорсальном двигательном ядре блуждающего нерва, иннервирующих пилорическую область желудка. Докл. АН СССР, 1989, т. 304, № 4, с. 985−987.
  8. Я., Бурешова О. и Хьюстон Дж.П. Методики и основные эксперименты по изучению мозга и поведения. М., Высшая школа, 1991, 400 с.
  9. Ю.Догель A.C. Zwei Arten sympatischer Nervenzellen. Anat. Anz. Bd 11, 1896, p. 679−687.
  10. П.Догель A.C. Uber den Bau der Ganglien in den Geflechten des Darmes und der Gallenblase des Menschen und des Saugetiere. Arch. Anat. u. Physiol. Anat., Abt. Bd. 11, 1899.
  11. P.A. Центральная структура афферентных систем. JI., Медицина, 1965, 187 с.
  12. А.Г. Парасимпатическая иннервация кишечника. Архив анат., гист. и эмбриол., 1969, т. 56, № 6, с. 92−109.
  13. Н.Г. Нервная система пищеварительного тракта позвоночных и человека. JT., Наука, 1968, 171 с.
  14. Кретович B. JL Введение в энзимологию. М., Наука, 1986, 352 с.
  15. A.A., Курыгин Ал.А., Серова JI.C. и Смирнов А.Д. Ваготомия в нестандартных ситуациях абдоминальной хирургии. СПб., Гиппократ, 1997, 160 с.
  16. .И. О нервных клетках Auerbach’oBa и Meissner’oBa сплетения толстых кишок. Казанский мед. журнал, 1921, т. 17, № 3, с. 291 309.
  17. H.H. Биоритмы пищеварительной системы. М., Медицина, 1987, 256 с.
  18. В.Г. Рецепторные окончания дендритов клеток II типа Догеля в толстой кишке кошки. Арх. анат., гист. и эмбриол., 1969, т. 56, № 6, с. 6366.
  19. Ф.Н. Исследование связей нервной системы с помощью аксонального транспорта пероксидазы хрена. Архив анат., гист. и эмбриол., 1979, т. 77, № 9, с. 108 115.
  20. А.JI. Структурная организация вегетативных ядер центральной нервной системы. Тбилиси, Мецниереба, 1968, 185 с.
  21. A.A. Афферентная иннервация нервных клеток вегетативных ганглиев, анат., гист. и эмбриол., 1964, т. XLVII, № 12, с. 27−34.
  22. А. Д. Физиология вегетативной нервной системы. JL, Медицина, 1983, 296 с.
  23. А.Д. Два взгляда на метасимпатическую нервную систему. Физиол. журн. СССР, 1991, т. 77, № 1, с. 21−38.
  24. А.Д. и Чумасов Е.И. Периферическая нервная система: структура, развитие, трансплантация и регенерация. СПб., Наука, 1999, 281 с.
  25. А.Д. Анатомия кошки. JL, Наука, 1973, 248 с. 27.0короков А. Н. Диагностика болезней органов пищеварения. Том 1. М., Мед. лит., 2002, 560 с. 28.0ленев С. Н. Конструкция мозга. Д., Медицина, 1987, 208 с.
  26. С.С., Багаев В. А., Ноздрачев А. Д. Кортикальная модуляция висцеральных рефлексов. СПб., Изд-во СПб ун-та, 2004, 208 с.
  27. А. Морфология тазового сплетения. Алма-Ата, Казахстан, 1971, 136 с. 31 .Руководство по физиологии. Физиология пищеварения. Д., Наука, 1974, 761 с.
  28. О.С. Динамика структуры живого нейрона. Д., Наука, 1985, 159 с.
  29. Г. В. Некоторые вопросы морфологии нейронов 2-го типа Догеля. Арх. анат., гист. и эмбриол., 1968, т. 54, № 2, с. 90−92.
  30. Л.П. О рецепторных нейронах в узлах интрамуральных нервных сплетений толстой кишки кошки. Арх. анат., гист. и эмбриол., 1968, т. 54, № 2, с. 98−102.
  31. Л.П. О морфологии и гистохимической активности нервных сплетений прямой кишки млекопитающих. Смоленск, Труды Смоленского гос. мединститута, 1958, т. 8, с. 28−37.
  32. З.Я. Местная рефлекторная дуга в ауэрбаховском сплетении червеобразного отростка кролика. Физиол. журнал, Киев, 1961, т. 7, № 1, с. 121−124.
  33. Abrahamsson Н., Jansson G. Vago-vagal gastro-gastric relaxation in the cat. Acta Physiol. Scand., 1973, v. 88, p. 289−295.
  34. Altschuler S.M., Escardo J., Lynn R.B., Miselis R.R. The central organization of the vagus nerve innervating the colon of the rat. J. Gastroenterology, 1993, v. 104, p. 502−509.
  35. Andersen I.S., Rijkhoff N.J., Vukovic A., Buntzen S., Djurhuus J.C., Laurberg S. Anorectal motility responses to selective stimulation of the ventral sacral nerve roots in an experimental model. Br. J. Surg., 2005, v. 92, № 12, p. 15 131 519.
  36. Anderson C.R. NADPH diaphorase-positive neurons in the rat spinal cord include a subpopulation of autonomic preganglionic neurons. Neurosci. Lett., 1992, v. 139, p. 280−284.
  37. Anderson P.N., Mitchell J., Mayor D. The uptake of horseradish peroxidase by damaged autonomic nerves in vitro. J. Anat., 1979, v. 128, p. 401−406.
  38. Araki I., de Groat W.C. Unitary excitatory synaptic currents in preganglionic neurons mediated by two distinct groups of interneurons in neonatal rat sacral parasympathetic nucleus. J. Neurophysiol., 1996, v. 76, № 1, p. 215−226.
  39. Bancila M., Verge D., Rampin O., Backstrom J.R., Sanders-Bush E., McKenna K.E., Marson L., Calas A., Giuliano F. 5-Hydroxytryptamine2C receptors on spinal neurons controlling penile erection in the rat. Neuroscience, 1999, v. 92, p. 1523−1537.
  40. Baron R., Janig W. Afferent and sympathetic neurons projecting into lumbar visceral nerves of the male rat. J. Comp. Neurol., 1991, v. 314, № 3, p. 429 436.
  41. Baron R.- Janig W. Neurons projecting rostrally in the hypogastric nerve of the cat. J. Auton. Nerv. Syst., 1988, v. 24, № 1−2, p. 81−86.
  42. Basbaum A.I., Glazer E.J. Immunoreactive vasoactive intestinal polypeptide is concentrated in the sacral spinal cord: a possible marker for pelvic visceral afferent fibers. Somatosens. Res., 1983, v. 1, № 1, p. 69−82.
  43. Bayliss W.M., Starling E.H. The movements and the innervation of the large intestine. J. Physiol., 1900, v. 26, № 1−2, p. 107−118.
  44. Berthoud H.R., Carlson N.R., Powley T.L. Topography of efferent vagal innervation of the rat gastrointestinal tract. Am. J. Physiol., 1991, v. 260, p. 200−207.
  45. Bessant A.R.D. and Robertson-Rintoul J. Origin of the parasympathetic preganglionic fibers to the distal colon of the rabbit as demonstrated by the horseradish peroxidase method. Neurosci. Lett., 1986, v. 63, p. 17−22.
  46. Birder L.A., Roppolo J.R., Iadarola M.J., de Groat W.C. Electrical stimulation of visceral afferent pathways in the pelvic nerve increases c-fos in the rat lumbosacral spinal cord. Neurosci. Lett., 1991, v. 129, № 2, p. 193−196.
  47. Blomqvist A., Ma W. and Berkley K.J. Spinal input to the parabrachial nucleus in the cat. Brain Res., 1989, v. 480, p. 29−36.
  48. Boeckxstaens G.E. Understanding and controlling the enteric nervous system. Best Pract. Res. Clin. Gastroenterol., 2002, v. 16, № 6, p. 1013−1023.
  49. Bolton T.B., Prestwich S.A., Zholos A.V., Gordienko D.V. Excitation — contraction coupling in gastrointestinal and other smooth muscles. Annu Rev. Physiol., 1999, v. 61, p. 85−115.
  50. Brown H.K. and Nolan M.F. Ultrastructure and quantitative synaptology of the sacral parasympathetic nucleus. J. Neurocytol., 1979, v. 8, p. 167−179.
  51. Bruninga K., Riedy L., Keshavarzian A., Walter J. The effect of electrical stimulation on colonic transit following spinal cord injury in cats. Spinal Cord, 1998, v. 36, № 12, p. 847−853.
  52. Bunt A.H., Haschke R.H., Lund R.D., Calkins D.F. Factors affecting retrograde axonal transport of horseradish peroxidase in the visual cortex. Brain Res., 1976, v. 102, № l, p. 152−155.
  53. Carlstedt A., Nordgren S., Fasth S., Hulten L. The influence of the pelvic nerves on anorectal motility in the cat. Acta Physiol Scand., 1989, v. 135, № 1, p. 57−64.
  54. Carlstedt A., Fasth S., Hulten L., Nordgren S. The sympathetic innervation of the internal anal sphincter and rectum in the cat. Acta Physiol. Scand., 1988, v. 133, № 3, p. 423−431.
  55. Chang S.M., Yu G.R., Diao Y.M., Zhang M.J., Wang S.B., Hou C.L. Sacral anterior root stimulated defecation in spinal cord injuries: an experimental study in canine model. World J. Gastroenterol., 2005, v. 11, № 11, p. 1715−1718.
  56. Christianson J.A., Traub R.J. and Davis B.M. Differences in spinal distribution and neurochemical phenotype of colonic afferents in mouse and rat. J. Comp. Neurol., 2006, v. 494, p. 246−259.
  57. J., Wingate D.L. (eds.). A Guide to Gastrointestinal Motility. Bristol, 1983, p. 1−47.
  58. Christensen J., Anuras S. and Hauser R.L. Migrating spike bursts and electrical slow waves in the cat colon: effect of sectioning. Gastroenterology, 1974, v. 66, p. 240−247.
  59. Chung K., Coggeshall R.E. The ratio of dorsal root ganglion cells to dorsal root axons in sacral segments of the cat. J. Comp. Neurol., 1984, v. 225, № 1, p. 2430.
  60. Coggeshall R.E., Maynard C.W. and Langford L.A. Unmyelinated sensory and preganglionic fibers in rat L6 and SI ventral spinal roots. J. Comp. Neurol., 1980, v. 193, p. 41−47.
  61. Collman P.I., Grundy D., Scratcherd T. Vagal control of colonic motility in the anaesthetized ferret: evidence for a non-cholinergic excitatory innervation. J. Physiol., 1984, v. 348, p. 35−42.
  62. Condon J.R., Robinson V., Suleman M.I., Fan V.S., McKeown M.D. The cause and treatment of postvagotomy diarrhoea. Br. J. Surg., 1975, Apr- v. 62, № 4, p. 309−312.
  63. Dahlstrom A., Fuxe K. Evidence for the existence of monoamine neurons in the central nervous system. I. Demonstration of monoamines in the cell bodies of brainstem neurons. Acta Physiol. Scand., 1964, v. 62, p. 1−55 (Suppl. 232).
  64. Dalsgaard C.J., Hokfelt T., Johansson O., Elde R. Somatostatin immunoreactive cell bodies in the dorsal horn and the parasympathetic intermediolateral nucleus of the rat spinal cord. Neurosci Lett., 1981, v. 27, № 3, p. 335−339.
  65. Dekker J.J., Lawrence D.G., Kuypers H.G. The location of longitudinally running dendrites in the ventral horn of the cat spinal cord. Brain Res., 1973, v. 51, p. 319−325.
  66. Denny-Brown D., Robertson E.G. An investigation of the nervous control of defecation. Brain, 1935, v. 58, p. 256−310.
  67. Doone G.V., Pelissier N., Manchester T., Vizzard M.A. Distribution of NADPH-d and nNOS-IR in the thoracolumbar and sacrococcygeal spinal cord of the guinea pig. J. Auton. Nerv. Syst., 1999, v. 77, № 2−3, p. 98−113.
  68. Feder N. Microperoxidase. An ultrastructural tracer of low molecular weight. J. Cell Biol., 1971, v. 51, № l, p. 339−343.
  69. Fercakova A. Morfologia senzitivnych ganglii. Bratislava, Veda, 1997, 94 p.
  70. Fox E.A., Powley T.L. Longitudinal columnar organization within the dorsal motor nucleus represents separate branches of the abdominal vagus. Brain Res., 1985, v. 341, p. 269−282.
  71. Garry M.G., Miller K.E., Seybold V.S. Lumbar dorsal root ganglia of the cat: a quantitative study of peptide immunoreactivity and cell size. J. Comp. Neurol., 1989, v. 288, № 4, p. 698.
  72. Garry R.C. The responses to stimulation of the caudal end of the large bowel in the cat. J. Physiol., 1933, v. 78, p. 208−224.
  73. Gaskell W.H. On the distribution and function of the nerves which innervate the visceral and vascular systems. J. Physiol., 1886, v. 7, p. 1−80.
  74. Gillis R.A., Quest J.A., Pagani F.D., Norman W.P. Control centers in the central nervous system for regulating gastrointestinal motility. Handbook ofphysiology ~ the gastrointestinal system I. Chapter 17: neural control of motility, 1986, p. 621−683.
  75. Glazer E.J., Basbaum A.I. Leucine enkephalin: Localization in and axoplasmic transport by sacral parasympathetic preganglionic neurons. Science, 1980, v. 208, № 4451, p. 1479−1481.
  76. Gore R.M., Mintzer R.A., Calenoff L. Gastrointestinal complications of spinal cord injury. Spine, 1981, v. 6, № 6, p. 538−544.
  77. Gougis S., Prud’homme M.J., Rampin O. Presence of the N-methyl-D-aspartic acid R1 glutamatergic receptor subunit in the lumbosacral spinal cord of male rats. Neurosci. Lett., 2002, v. 323, № 3, p. 224−228.
  78. Grill W.M., Bhadra N., Wang B. Bladder and urethral pressures evoked by microstimulation of the sacral spinal cord in cats. Brain Res., 1999, v. 836, p. 19−30.
  79. Habler HJ., Hilbers K., Janig W., Koltzenburg M., Kummel H., Lobenberg-Khosravi N. and Michaelis M. Viscero-sympathetic reflex responses to mechanical stimulation of pelvic viscera in the cat. J. Auton. Nerv. Syst., 1992, v. 38, p. 147−158.
  80. Hancock M.B. and Peveto C.A. Preganglionic neurons in the sacral spinal cord of the rat: an HRP study. Neurosci. Lett., 1979, v. 11, p. 1−5.
  81. Herbert H., Moga M.M. and Saper C.B. Connections of the parabrachial nucleus with the nucleus of the solitary tract and medullary reticular formation in the rat. J. Comp. Neurol., 1990, v. 293, p. 540−580.
  82. Horowitz B., Ward S.M., Sanders K.M. Cellular and molecular basis for electrical rhythmicity in gastrointestinal muscles. Annu Rev. Physiol., 1999, v. 61, p. 19−43.
  83. Hubscher C.H., Berkley K.J. Responses of neurons in caudal solitary nucleus of female rats to stimulation of vagina, cervix, uterine horn and colon. Brain Res., 1994, v. 664, № 1−2, p. 1−8.
  84. Hudson L.C. Horseradish peroxidase study of the location of extrinsic efferent and afferent neurons innervating the colon of dogs. Am. J. Vet. Res., 1990, v.51, № 11, p.1875−1881.
  85. Hulten L. Extrinsic nervous control of colonic motility and blood flow. An experimental study in the cat. Acta Physiol. Scand. Suppl., 1969, v. 335, p. 1116.
  86. Hwang S.J., Oh J.M., Valtschanoff J.G. The majority of bladder sensory afferents to the rat lumbosacral spinal cord are both IB4- and CGRP-positive. Brain Res., 2005, v. 1062, № 1−2, p. 86−91.
  87. Jacobsohn L. Uber die Kerne des menschlichen Ruckenmarks. Berlin, Konig. Press. Akad. Wiss., 1908, p. 31−48.
  88. Janig W., McLachlan E.M. Organization of lumbar spinal outflow to distal colon and pelvic organs. Physiol. Rev., 1987, v. 67, № 4, p. 1332−1404.
  89. Karaus M., Sarna S.K. Giant migrating contractions during defecation in the dog colon. Gastroenterology, 1987, v. 92, № 4, p. 925−933.
  90. Kawatani M., Nagel J. and de Groat W.C. Identification of neuropeptides in pelvic and pudental nerve afferent pathways to the sacral spinal cord of the cat. J. Comp. Neurol., 1986, v. 249, p. 117−132.
  91. Kawatani M., de Groat W.C. A large proportion of afferent neurons innervating the uterine cervix of the cat contain VIP and other neuropeptides. Cell Tissue Res, 1991, v. 266, № 1, p. 191−196.
  92. Keast J. R, de Groat W.C. Segmental distribution and peptide content of primary afferent neurons innervating the urogenital organs and colon of male rats. J. Comp. Neurol., 1992, v. 319, № 4, p. 615−623.
  93. Keefer D.A. Horseradish peroxidase as a retrogradely-transported detailed dendritic marker. Brain Res., 1978, v. 140, № 1, p. 15−32.
  94. Keefer D.A. and Christ J.F. Distribution of endogenous diaminobenzidine-staining cells in the normal rat brain. Brain Res., 1976, v. 116, № 2, p. 312−316.
  95. Kitamura T. Axon collaterals of spinocerebellar fibers terminate in the parabrachial nucleus of the rat. Neurosci. Lett., 1989, v. 99, p. 24−29.
  96. Kohno J., Shinoda K., Kawai Y., Peng Y., Ono K., Shiotani Y. Direct adrenergic inputs to sacral autonomic neurons: using a double-immunostaining method at the light and electron microscopic levels. Brain Res., 1988, v. 461, № l, p. 158−162.
  97. Kojima M., Takenchi Y., Goto M., Sano Y. Immunohistochemical study on the distribution of serotonin fibers in the spinal cord of the dog. Cell Tiss. Res., 1982, v. 226, p. 477−491.
  98. Kojima M., Takenchi Y., Goto M., Sano Y. Immunohistochemical study on the localization of serotonin fibers and terminals in the spinal cord of the monkey. Cell Tiss. Res., 1983, v. 229, p. 23−26.
  99. Krogh K., Olsen N., Christensen P., Madsen J.L., Laurberg S. Colorectal transport during defecation in patients with lesions of the sacral spinal cord. Neurogastroenterol. Motil., 2003, v. 15, № 1, p. 25−31.
  100. Kruse M.N., de Groat W.C. Micturition reflexes in decerebrate and spinalized neonatal rats. Am. J. Physiol., 1990, v. 258, p. 1508−1511.
  101. Kunze W.A., Furness J.B. The enteric nervous system and regulation of intestinal motility. Annu Rev. Physiol., 1999, v. 61, p. 117−142.
  102. Kuru M. Nervous control of micturition. Physiol. Rev., 1965, v. 45, p. 425 494.
  103. Kuru M. The spino-bulbar tracts and the pelvic sensory vagus- further contributions to the theory of the sensory dual innervation of the viscera. J. Comp. Neurol., 1956, v. 104, № 2, p. 207−231.
  104. LaMotte C.C., de Lanerolle N.C. VIP terminals, axons, and neurons: distribution throughout the length of monkey and cat spinal cord. J. Comp. Neurol., 1986, v. 249, № l, p. 133−145.
  105. Langford L.A. and Coggeshall R.E. Branching of sensory axons in the peripheral nerve of the rat. J. Comp. Neurol., 1981, v. 203, p. 745−750.
  106. Langley J.N. and Anderson H.K. On the innervation of the pelvic and adjoining viscera. J. Physiol. (Lond.), 1895, v. 18, p. 67−105.
  107. Lee K.H., Chung K., Chung J.M., Coggeshall R.E. Correlation of cell body size, axon size, and signal conduction velocity for individually labelled dorsal root ganglion cells in the cat. J. Comp. Neurol., 1986, v. 243, № 3, p. 335−346.
  108. Leedy M.G., Bresnahan J.C., Mawe G.M., Beattie M.S. Differences in synaptic inputs to preganglionic neurons in the dorsal and lateral band subdivisions of the cat sacral parasympathetic nucleus. J. Comp. Neurol., 1988, v. 268, № l, p. 84−90.
  109. Light A. and Metz C. The morphology of the spinal cord efferent and afferent neurons contributing to the ventral roots of the cat. J. Comp. Neurol., 1978, v. 179, p. 501−516.
  110. Lu Y., Du Y.-J., Qin B.-Z., Li J.-S. The subdivisions of the intermediolateral nucleus in the sacral spinal cord of the cat. Brain Res., 1993, v. 632, p. 351−355.
  111. MacDonagh R.P., Sun W.M., Smallwood R., Forster D., Read N.W. Control of defecation in patients with spinal injuries by stimulation of sacral anterior nerve roots. BMJ, 1990, v. 300, № 6738, p. 1494−1497.
  112. Martinez V., Wang L., Mayer E. and Tache Y. Proximal colon distention increases Fos expression in the lumbosacral spinal cord and activates sacral parasympathetic NADPHd-positive neurons in rats. J. Comp. Neurol., 1998, v. 390, p. 311−321.
  113. Mackel R. Segmental and descending control of the external urethral and anal sphincters in the cat. J. Physiol., 1979, v. 294, p. 105−122.
  114. Matsufuji H., Yokoyama J. Neural control of the internal anal sphincter motility. J Smooth Muscle Res., 2003, v. 39, № 1−2, p. 11−20
  115. Mawe G.M., Bresnahan J.C. and Beattie M.S. Primary afferent projections from dorsal and ventral roots to autonomic preganglionic neurons. Brain Res., 1984, v. 290, p. 152−156.
  116. Milne R.J., Booth A.M., de Groat W.C. Firing patterns of preganglionic neurons and interneurons in the sacral autonomic nucleus of the cat. Neurosci. Abstr., 1978, v. 4, p. 47.
  117. Miselis RR., Rinaman L., Altshuler S.M., Bao X., Lynn R.B. Medullary viscerotopic represententation of the alimentary canal innervation in rat. In: Brain-Gut Interaction, Boston, 1990, p. 3−22.
  118. Mizutani M., Neya T., Ono K., Yamasato T., Tokunaga A. Histochemical study of the lumbar colonic nerve supply to the internal anal sphincter and its physiological role in dogs. Brain Res., 1992, v. 598, № 1−2, p. 45−50
  119. Morgan C.W., Ohara P.T. Quantitative analysis of the dendrites of sacral preganglionic neurons in the cat. J. Comp. Neurol., 2001, v. 437, p. 56−69.
  120. Morgan C., Nadelhaft I., de Groat W.C. Location of bladder preganglionic neurons within the sacral parasympathetic nucleus of the cat. Neurosci. Lett., 1979, v. 14, № 2−3, p. 189−194.
  121. Nadelhaft I., Vera P.L. Neurons in the rat brain and spinal cord labeled after pseudorabies virus injected into the external urethral sphincter. J. Comp. Neurol., 1996, v. 375, № 3, p. 502−517.
  122. Nadelhaft I. and Booth A.M. The location and morphology of preganglionic neurons and the distribution of visceral afferents from the rat pelvic nerve: a horseradish peroxidase study. J. Comp. Neurol., 1984, v. 226, № 2, p. 238−245.
  123. Neunlist M., Schemann M. Projection and neurochemical coding of myenteric neurons innervating the mucosa of the guinea pig proximal colon. Cell. Tissue Res., 1997, v. 287, p. 119−125.
  124. Niechaj A., Lupa K. and Ozog M. Dorsal root potential evoked by stimulation of ventral roots in the lower sacral cord of the cat. Brain Res., 1977, v. 137, p. 356−360.
  125. Ohmachi T., Nakamura T., Zhang F.Z., Tani I., Takagi H. Morpholological analyses of galaninergic inputs to the rat spinal parasympathetic nucleus. Exp. Brain Res., 1996, v. 109, № 3, p. 399−406.
  126. Ohta M., Offord K. and Dyck P.J. Morphometric evaluation of first sacral ganglia of man. J. Neurol. Sci., 1974, v. 2, p. 73−82.
  127. Onuf B. On the arrangement and function of the cell groups of the sacral region of the spinal cord in man. Arch. Neurol. Psychopathol., 1900, v. 3, p. 387−412.
  128. Pahlin P.E., Kewenter J. The vagal control of the ileo-cecal sphincter in the cat. Acta Physiol. Scand., 1976, v. 96, p. 433−442.
  129. Park M.J., Chung K. Endogenous lectin (RL-29) expression of the autonomic preganglionic neurons in the rat spinal cord. Anat Rec., 1999, v. 254, № 1, p. 53−60.
  130. Papka R.E., McCurdy J.R., Williams S.J., Mayer B., Marson L., Piatt K.B. Parasympathetic preganglionic neurons in the spinal cord involved in uterine innervation are cholinergic and nitric oxide-containing. Anat. Rec., 1995, v. 241, № 4, p. 554−562.
  131. Petras J.M., Cummings J.F. Sympathetic and parasympathetic innervation of the urinary bladder and urethra. Brain Res., 1978, v. 153, № 2, p. 363−369.
  132. Petras J.M., Cummings J.F. Autonomic neurons in the spinal cord of the Rhesus monkey: A correlation of the findings of cytoarchitectonics andsympathectomy with fiber degeneration following dorsal rhizotomy. J. Comp. Neurol., 1972, v. 146, p. 189−218.
  133. Puder B.A., Papka R.E. Distribution and origin of corticotropin-releasing factor-immunoreactive axons in the female rat lumbosacral spinal cord. J. Neurosci. Res., 2001, v. 66, № 6, p. 1217−1225.
  134. Reighard J. and Jennings H.S. Anatomy of the cat. New York, 1938, 486 p.
  135. Reighard J. and Jennings H.S. Dissection of the cat. New York, 1938, 100 p.
  136. Rentz E. Uber den Einfluss der Vagusreizung auf die Bewegungen des Dickdarms. Naunyn-Schmiedebergs Arch. Exp. Path. Pharmak., 1939, v. 191, p. 172−191.
  137. Rexed B. The cytoarchitectonic organization of the spinal cord in the cat. J. Comp. Neurol., 1952, v. 96, p. 415−466.
  138. Rexed B. A cytoarchitectonic atlas of the spinal cord in the cat. J. Comp. Neurol., 1954, v. 96, p. 297−379.
  139. Ritchie J.A. Colonic motor activity and bowel function. I. Normal movement of contents. Gut, 1968, v. 9, № 4, p. 442−456.
  140. Robinson D.R., McNaughton P.A., Evans M.L., Hicks G.A. Characterization of the primary spinal afferent innervation of the mouse colon using retrograde labelling. Neurogastroenterol Motil., 2004, v. 16, № 1, p. 113−124.
  141. Roessmann U., Friede R.L. The segmental distribution of acetyl Cholinesterase in the cat spinal cord. J. Anatomy, 1967, v. 101, p. 27−32.
  142. Roppolo J.R., Nadelhaft I., de Groat W.C. The organization of pudendal motoneurons and primary afferent projections in the spinal cord of the rhesus monkey revealed by horseradish peroxidase. J. Comp. Neurol., 1985, v. 234, № 4, p. 475−488.
  143. Rostad H. Colonic motility in the cat. II. Extrinsic nervous control. Acta Physiol. Scand., 1973, v. 89, № 1, p. 91−103.
  144. Rouzade-Dominguez M.L., Pernar L., Beck S., Valentino RJ. Convergent responses of Barrington’s nucleus neurons to pelvic visceral stimuli in the rat: ajuxtacellular labelling study. Eur. J. Neurosci., 2003, v. 18, № 12, p. 33 253 334.
  145. Sarna S.K. Myoelectric correlates of colonic motor complexes and contractile activity. Am. J. Physiol., 1986, v. 250, № 2, p. 213−220.
  146. Sarna S.K., Condon R., Cowles V. Colonic migrating and nonmigrating motor complexes in dogs. Am. J. Physiol., 1984- v. 246, № 4, p. 355−360.
  147. Sasek C.A., Seybold V.S., Elde R.P. The immunohistochemical localization of nine peptides in the sacral parasympathetic nucleus and the dorsal gray commissure in rat spinal cord. Neuroscience, 1984, v. 12, № 3, p. 855−873.
  148. Sato M., Mizuno N. Konishi A. Localization of motoneurons innervating perineal muscles: a HRP study in cat. Brain Res., 1978, v. 140, № 1, p. 149 154.
  149. Satomi H., Yamamoto T., Ise H. and Takatama H. Origins of the parasympathetic fibers to the cat intestine as demonstrated by the horseradish peroxidase method. Brain Res., 1978, v. 151, № 3, p. 571−578.
  150. Schmidt C.A. Distribution of vagus and sacral nerves to the large intestine. Proc. Soc. Exp. Biol. (N.Y.), 1933, v. 30, p. 739−740.
  151. Schnitzlein H.N., Hoffman H.H., Hamlet D.M., Howell E.M. A study of the sacral parasympathetic nucleus. J. Comp. Neurol., 1963, v. 120, p. 477−494.
  152. Scratcherd T., Grundy D., Collman P.I. Evidence for a non-cholinergic excitatory innervation in the control of colonic motility. Arch. Int. Pharmacodyn. Ther., 1986, v. 280, p. 164−175.
  153. Senba E., Daddona P.E., Nagy J.I. A subpopulation of preganglionic parasympathetic neurons in the rat contain adenosine deaminase. Neuroscience, 1987, v. 20, № 2, p. 487−502.
  154. Sengupta J.N. and Gebhart G.F. Gastrointestinal afferent fibers and sensation. Physiology of the gastrointestinal tract. Third edition, edited by Leonard R.Johnson. New York: Raven Press, 1994, chapter 11, p. 483−519.
  155. Shefchyk S.J. Spinal cord neural organization controlling the urinary bladder and striated sphincter. Progr. Brain Res., 2002, v. 137, p. 71−82.
  156. Silver A., Wolstenkroft J.H. The distribution cholinesterases in relation to the structure of the spinal cord in the cat. Brain Res., 1971, v. 34, p. 205−227.
  157. Skagerberg G., Bjoerklund A., Lindvall O., Schmidt R.H. Origin and termination of the diencephalo-spinal dopamine system in the rat. Brain Res. Bull., 1982, v. 9, p. 237−244.
  158. Stavney L.S., Kato T., Griffith C.A., Nynus L.M., Harkins H.N. A Physiologic study of motility changes following selective gastric vagotomy. J. Surg. Res., 1963, v. 3, p. 390−394.
  159. Stone J.M., Nino-Murcia M., Wolfe V.A., Perkash I. Chronic gastrointestinal problems in spinal cord injury patients: a prospective analysis. Am. J. Gastroenterol., 1990, v. 85, № 9, p. 1114−1119.
  160. Szarijanni N. and Rethelyi M. Differential distribution of small and large neurons in the sacrococcygeal dorsal root ganglia of the cat. Acta Morphol. Acad. Sci. Hung., 1979, v. 27, p. 25−35.
  161. Szurszewski J.H., Ermilov L.G., Miller S.M. Prevertebral ganglia and intestinofugal afferent neurones. Gut, 2002, v. 51, p. 6−10.
  162. Tai C., Booth A.M., de Groat W.C. and Roppolo J.R. Bladder and urethral sphincter responses evoked by microstimulation of S2 sacral spinal cord in spinal cord intact and chronic spinal cord injured cats. Exp. Neurol., 2004, v. 190, № l5 p. 171−183.
  163. Tai C., Booth A.M., de Groat W.C. and Roppolo J.R. Colon and anal sphincter contractions evoked by microstimulation of the sacral spinal cord in cats. Brain Res., 2001, v. 889, № 1−2, p. 38−48.
  164. Traub R.J., Hutchcroft K., Gebhart G.F. The peptide content of colonic afferents decreases following colonic inflammation. Peptides, 1999, v. 20, № 2, p. 267−273.
  165. Valentino R.J., Pavcovich L.A., Hirata H. Evidence for corticotropin-releasing hormone projections from Barrington’s nucleus to the periaqueductal gray and dorsal motor nucleus of the vagus in the rat. J. Comp. Neurol., 1995, v. 363, № 3, p. 402−422.
  166. Varma J.S., Binnie N., Smith A.N., Creasey G.H., Edmond P. Differential effects of sacral anterior root stimulation on anal sphincter and colorectal motility in spinally injured man. Br. J. Surg., 1986, v. 73, p. 478−482.
  167. Vizzard M.A., Brisson M., De Groat W.C. Transneuronal labeling of neurons in the adult rat central nervous system following inoculation of pseudorabies virus into the colon. Cell Tissue Res., 2000, v. 299, p. 9−26.
  168. Vizzard M.A., Erdman S.L., Erickson V.L., Stewart R.J., Roppolo J.R., De Groat W.C. Localization of NADPH diaphorase in the lumbosacral spinal cord and dorsal root ganglia of the cat. J. Comp. Neurol., 1994, v. 339, № 1, p. 6275.
  169. Westlund K.N., Bowker R.M., Ziegler M.G., Coulter J.D. Origins and terminations of descending noradrenergic projections to the spinal cord of monkey. Brain Res., 1984, v. 292, p. 1−16.
  170. Wienbeck M. The electrical activity of the cat colon in vivo. I. The normal electrical activity and its relationship to contractile activity. Res. Exp. Med., 1972, v. 158, p. 268−279.
  171. Wienbeck M., Christensen J. and Weisbrodt N.W. Electromyography of the colon in the unanesthetized cat. Am. J. Dig. Dis., 1972, v. 17, p. 356−362.
  172. Wood J.D., Alpers D.H. and Andrens L.R. Fundamentals of neurogastroenterology. Gut, 1999, v. 45, p. 6−16.
  173. Woodford B.J., Carter R.R., McCreery D., Bullara L.A., Agnew W.F. Histopathologic and physiologic effects of chronic implantation ofmicroelectrodes in sacral spinal cord of the cat. J. Neuropathol. Exp. Neurol., 1996, v. 55, № 9, p. 982−991.
  174. Yamada J. and Otani K. Subunits of the nucleus parabrachialis and their fiber connections in the rat. Soc. Neurosci. Lett., 1979, v. 2, S 23.
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?