Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Характеристика постоянной линии клеток SSO-3 пула паренхиматозных органов сибирского осетра Acipenser baerii

Диссертация: Характеристика постоянной линии клеток SSO-3 пула паренхиматозных органов сибирского осетра Acipenser baerii
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Промышленному выращиванию осетровых рыб в последние годы уделяется повышенное внимание, что обусловлено угрозой исчезновения некоторых ценных видов осетровых и увеличением спроса на икру и мясо этих рыб. Одновременно с интенсификацией осетроводства появляются новые вирусные болезни, которые представляют серьезную угрозу и наносят ощутимый ущерб аквакультуре осетровых в мире. Для своевременного… Читать ещё >

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • ВВЕДЕНИЕ
    • 1. 1. Актуальность темы
    • 1. 2. Цель и задачи исследования
    • 1. 3. Научная новизна
    • 1. 4. Практическая значимость результатов
    • 1. 5. Основные положения, выносимые на защиту
    • 1. 6. Апробация результатов работы
    • 1. 7. Публикация результатов
    • 1. 8. Личный вклад
  • 2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 2. 1. История изучения вопроса
    • 2. 2. Культуры клеток рыб, депонированные в национальных коллекциях разных стран
    • 2. 3. Получение перевиваемых линий клеток осетровых рыб
    • 2. 4. Способы культивирования клеточных линий
    • 2. 5. Характеристика клеточных линий
      • 2. 5. 1. Цитоморфологическая характеристика
      • 2. 5. 2. Параметры культивирования
      • 2. 5. 3. Клонообразование
      • 2. 5. 4. Кариологический анализ и его особенности у осетровых рыб
      • 2. 5. 5. Подтверждение видовой специфичности
      • 2. 5. 6. Чувствительность к вирусам
      • 2. 5. 7. Оценка микробной контаминации культур клеток
    • 2. 6. Криоконсервация
    • 2. 7. Применение постоянных линий клеток

Характеристика постоянной линии клеток SSO-3 пула паренхиматозных органов сибирского осетра Acipenser baerii (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

В настоящее время культуры клеток стали одним из основных инструментов биотехнологии, вирусологии, цитологии, генетики, иммунологии и других бурно развивающихся сегодня биологических наук. Клеточные культуры являются важным объектом в изучении механизмов канцерогенеза и дифференцировки клеток. Именно метод культуры клеток привел в свое время к бурному развитию вирусологии и до сих пор остается одним из ее «золотых стандартов» .

Первые попытки выращивания вирусов в культивируемых клетках были предприняты в 1913 г. Е. Steinhardt с соавторами, которые показали, что вирус вакцины может переживать в течение ряда недель в тканевом эксплантате роговицы [226]. После открытия J.F. Enders способности вируса полиомиелита размножаться и вызывать цитопатический эффект в культивируемых соматических клетках животного, теоретические изыскания в комплексе с практическими разработками привели к революционным изменениям в диагностике вирусных инфекций, выделении и идентификации вирусов [126].

Первый вирус рыб — возбудитель инфекционного некроза поджелудочной железы — был выделен также благодаря разработке метода получения первичной культуры клеток из плавников радужной форели [254]. Вскоре после этого была получена первая постоянная клеточная линия из гонад радужной форели RTG-2 [247]. С тех пор количество получаемых постоянных клеточных линий стало быстро увеличиваться и на сегодняшний день известно уже более 450 линий клеток морских, проходных и пресноводных видов рыб, из которых от осетровых получено немногим более 20. Такую немногочисленность осетровых постоянных культур можно объяснить тем, что интерес к разведению этих рыб в мировой аквакультуре возник сравнительно недавно — примерно 30 лет назад.

Промышленному выращиванию осетровых рыб в последние годы уделяется повышенное внимание, что обусловлено угрозой исчезновения некоторых ценных видов осетровых и увеличением спроса на икру и мясо этих рыб. Одновременно с интенсификацией осетроводства появляются новые вирусные болезни, которые представляют серьезную угрозу и наносят ощутимый ущерб аквакультуре осетровых в мире [61]. Для своевременного выявления возбудителей необходимо иметь набор клеточных линий, чувствительных к широкому спектру вирусов.

Большинство известных в настоящее время культур клеток осетровых рыб, получены в США. Среди них наиболее распространены культуры клеток белого осетра, чувствительные к таким опасным вирусным агентам, как иридовирус белого осетра (¥-81У) [98], герпесвирусы белого осетра первого и второго типов (¥-8НУ-1, ¥-8НУ-2) [97, 98] и др. В нашей стране постоянные клеточные линии осетровых рыб были впервые получены в 1995 г. во ВНИИ пресноводного рыбного ¦ хозяйства [23], однако* не все из этих линий клеток на сегодня охарактеризованы. Это касается и постоянной линии клеток Б80−3 пула почки, печени и селезенки сеголетков сибирского осетра. В то же время, лишь всесторонняя характеристика культуры предоставляет возможность сравнить ее с другими клеточными линиями, позволяя сделать обоснованный выбор в пользу той или иной линии, наиболее полно отвечающий целям и задачам планируемых работ. В" конечном итоге только исчерпывающая характеристика линии клеток дает ей шанс на депонирование в специализированных национальных и международных депозитариях — коллекциях клеточных культур. Поэтому изучение и описание свойств полученных клеточных линий являются высоко актуальными.

5 ВЫВОДЫ.

1. Изучены морфологические особенности постоянной линии клеток SSO-3 пула паренхиматозных органов сибирского осетра. Установлено, что клетки линии — эпителиоподобные, имеют однородную полигональную форму, отросчатые в молодой культуре и кубические в плотном монослое. Ядра крупные, округлой или овальной формы с 1−3 ядрышками. Размер клеток — 21−26 мкм, ядер — 16−19 мкм, ядрышек 1,3−1,9 мкм.

2. Количество хромосом в клетках линии SSO-3 варьирует в широком диапазоне значений (168−392) — не менее половины из них являются микрохромосомами, модальное число не выражено. Хромосомные наборы клеток представлены двумя кластерами, в один из которых входят клетки с меньшим, а в другой с большим числом хромосом, чем у клеток донорского вида (248±5). Значение модальной классовой варианты — 196 хромосом, величина модального класса составляет 59%.

3. Оптимальными параметрами культивирования клеточной линии SSO-3 являются: диспергирующая смесь из растворов трипсина (0,25%) и версена (0,02%) в соотношении 1:2, посевная концентрация клеток 160−270 тыс.кл./см3 (коэффициент субкультивирования 1:5−1:8), среда роста из 95% питательной среды Игла MEM с двойным набором аминокислот и витаминов и 5−10% СПК, температура инкубации 15−20°С, способ культивированиястационарный.

4. Установлено, что клеточная линия SSO-3 происходит от сибирского осетра, что подтверждено ПЦР-амплификацией видоспецифических участков D-петли митохондриальной ДНК размером 138 и 215 п.н. Способности к колониеобразованию у клеток данной линии не обнаружено.

5. Монослойная культура клеток SSO-3 хорошо сохраняется в диапазоне температур 4−25°С (до месяца и более). Жизнеспособность клеток после криоконсервирования составляет 70−80%.

6. Клеточная линия SSO-3 чувствительна к широкому спектру вирусов. Ее чувствительность к 8 из 10 испытанных вирусов рыб пяти разных семейств (осетровые, карповые, лососевые, щуковые, угревые) сопоставима с таковыми для референсных линий клеток. Клетки Б80−3 не снижают репродуцирующей активности в отношении вируса ЭУСУ на протяжении 4 недель с момента посева. Роллерное культивирование инокулированной культуры повышает титр вирусов в 1,8−10 раз.

7. Толерантность к большому диапазону температур, широкий спектр чувствительности к вирусам рыб и успешное использование клеточной линии Б 8 0−3 для выделения и серологической идентификации полевых изолятов вирусов карповых и осетровых рыб, а также для титрования вируснейтрализующих антител в карповых и кроличьих антисыворотках позволяет заключить, что данная линия клеток должна стать полезным инструментом в диагностических и экспериментальных работах с ихтиовиру сами.

6 ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

Разработаны и предложены «Методические указания по культивированию и использованию постоянной клеточной линии пула органов сибирского осетра 880−3», утвержденные директором ФГУП «ВНИИПРХ» 3 декабря 2009 г.

Постоянная линия клеток 880−3 используется в практической работе ФГУП «ВНИИПРХ» и ГНУ ВНИИВВиМ для диагностики вирусных болезней осетровых и других видов рыб и в экспериментальных вирусологических работах.

Показать весь текст

Список литературы

  1. , Д.С. Получение первичных культур клеток из гонад судака для вирусологических исследований/ Д. С. Архангельский, О.В. Полякова// Биол. основы рыбных хозяйств, водоемов Средней Азии, Казахстана. Фрунзе, 1978. — С. 244−245.
  2. , Д.С. Вирусные болезни рыб/ Д. С. Архангельский, О.В. Полякова//Тр. ин-та микробиологии и вирусологии АН КазССР. 1982. -Т. 28.-С. 111−134.
  3. Биотехнология / И. В. Тихонов и др.: под ред. акад. РАСХН Е. С. Воронина. СПб.: ГИОРД, 2005. — 792с.
  4. , Л.П. Лимфосаркома щук Киевского водохранилища/ Л.П. Бучацкий// Ветеринарная медицина Украины. 2000. — № 11. — С. 14−15.
  5. , Л.П. Лимфосаркома судака (Stizostedion lucioperca) Киевского водохранилища/ Л. П. Бучацкий, К. Галахин, О. Ногарев// Ветеринарная медицина Украины. 2004. — № 8. — С. 13−14.
  6. , В.П. Эволюционная кариология рыб / В. П. Васильев. М.: Наука, 1985. -300 с.
  7. , Ю.Б. Генетика соматических клеток/Ю.Б. Бахтин. Л., 1974. -256 с.
  8. Вирусовыделение возбудителя инфекционного некроза гемопоэтической ткани лососевых/ Л. Ю. Апасова и др.// Вет. Медицина. -2008.-Вып. 90. -С. 38−46.
  9. Выделение вируса инфекционного некроза поджелудочной железы/ Т. Д. Пичугина и др. // Ветеринария. 2005. — № 1. — С. 31−32.
  10. Выделение вируса от белого толстолобика с синдромом краснухи/ И. С. Щелкунов и др.//Экспресс-информация ЦНИИТЭИРХ. 1984. — № 4. -С. 3−7.
  11. , П.П. Проблемы охраны здоровья рыб/ П. П. Головин, H.A. Головина// Тезисы научн.-практ. конф. М.: Россельхозакадемия, 2000. — С. 50−51.
  12. , Д.Б. Руководство по применению клеточных культур в вирусологии/ Д. Б. Голубев, A.A. Соминина, М. Н. Медведева. JL: Медицина, 1976. — 224 с.
  13. , Г. Д. Однослойная клеточная культура почечной ткани леща/ Г. Д. Гончаров, JI.A. Зубкова, М.И. Степанова// Биология внутренних водоемов: Информ. бюл. 1970. — Т. 6. — С. 60−64.
  14. , В.В. К эпизоотологии оспы карпа/ В.В. Горчаков// Тезисы докладов V Всесоюзного симпозиума по инфекционным болезням рыб. М., 1986.-С. 24−25.
  15. Животная клетка в культуре (Методы и применение в биотехнологии)/ под общ. ред. Л. П. Дьяконова. М.: Изд-во «Спутник+», 2009. — 656 с.
  16. , Е.А. Получение и цитоморфологическая характеристика трех линий клеток из плавниковой ткани сибирского осетра/Е.А. Завьялова // Сб. науч. тр. ВИЭВ. М., 2009. — Т. 75. — С. 249−252.
  17. , Л.А. Однослойная клеточная культура из гонад самок сома/ Л.А. Зубкова// Биол. внутренних водоемов: Информ. бюл. 1971. — Т. 11.-С. 63−65.
  18. , Л.А. Выявление цитопатогенного агента от сомов с «кожной неоплазией» на однолеточных гонадных культурах// Докл. АНСССР. 1974. — Т. 218, № 4. — С. 960.
  19. , Л.А. К вопросу о папилломе кожи сома/ Л.А. Зубкова// Рыбное хозяйство. 1976. — № 1. — С. 26.
  20. , Т.А. Болезни искусственно выращенной горбуши Oncorhynchus gorbuscha (Wald)/ Т. А. Карасева, A.B. Альтов, В.В. Донецков//
  21. Паразиты и болезни морских и пресноводных рыб Северного бассейна: сб.научн.тр. ПИНРО. Мурманск, 1998. — С. 103−104.
  22. Каталог российской коллекции клеточных культур. — Санкт-Петербург, Омск: Изд-во ОмГПУ, 1999. 226 с.
  23. Клеточные линии из тканей сибирского осетра/ Т. И. Щелкунова и др. //Первый конгресс ихтиологов России: тез. докл. Астрахань, 1997. — С. 302−303.
  24. , К.В. Видовая идентификация клеточных культур: разработка новых подходов основанных на полимеразной цепной реакции с детекцией продукта в реальном времени (ПЦР-РВ)/ К.В. Кулешов// Ветеринарная патология. — 2008. Том. 26, № 3. — С 40−45.
  25. , К.В. Разработка молекулярно-генетических методов идентификации клеточных культур/ К.В. Кулешов// Цитология. 2008 а. -Том. 50, № 9.-С. 812−813.
  26. , К.В. Определение видовой принадлежности клеточных культур методами молекулярно-генетического анализа: автореф. дис. канд. биол. наук/ К. В. Кулешов. Щелково, 2009. — 24 с.
  27. Культура животных клеток. Методы/ Д. Конки и др.: под ред. Р. И. Фрешни, перевод с англ.- под ред. М. А. Панова. М.: Мир, 1989. — 333с.
  28. Лабораторный практикум по болезням рыб/ под ред. В. А. Мусселиус. М.: Легкая и пищевая промышленность, 1983. — 296с.
  29. , Г. Ф. Биометрия / Г. Ф. Лакин М.: Высшая школа. — 1990.352 с.
  30. , Л.В. Дерматофибросаркома судака рек Волги и Урала/Л.В. Ларцева// Экологические проблемы р. Урал и пути их решения: сб. докл. Всес. межведомствен, научно-практич. конфер. Гурьев, 1989. — Ч. 2. — С. 15−17.
  31. Лярски, 3. Диагностика вирусных болезней животных/ 3. Лярски. -М.: Колос, 1980.-400с.
  32. , Т.И. Жаберная болезнь рыб в Белоруссии (Распространение, этиология, диагностика): автореф. дис. канд. биол. наук/ Т. И. Мамыш. -Минск, 1975. 19 с.
  33. , Т. Молекулярное клонирование /Т. Мантатис, Фрич Э., Сэмбрук Дж. М.: Мир, 1984. — 480 с.
  34. , A.M. Обнаружение вирусоподобного агента в поражениях роговицы каспийской кумжи / A.M. Марченко, И. С. Щелкунов, Ю. П. Кадошников // Научно-тех. проблемы марикультуры в стране: тез. докл. конф. Владивосток, 1989. — С. 177−178.
  35. Методические указания по идентификации и лабораторной диагностике вирусных болезней рыб. Вирусные болезни/ Сб. инструкций по борьбе с болезнями рыб. М.: Отдел маркетинга АМБ-агро, 1998. — 4.1. — С. 60−113.
  36. Методические рекомендации по диагностике герпесвирусной болезни сибирского осетра/ И. С. Щелкунов и др.: утвежд. Россельхозакадемией 21.09.2009. 12 с.
  37. Методы культивирования клеток: сб. науч. трудов/ под ред. Т. П. Пинаева Л.: Наука, 1988. — 320с.
  38. Методы культивирования клеток: сб. науч. трудов/ под ред. Г. П. Пинаева, М. С. Богдановой. СПб.: Политех, ун-т, 2008. -278с.
  39. , Г. Р. Методические рекомендации по способу выявления микоплазм в культурах перевиваемых клеток/ Г. Р. Михайлова, A.C. Новохатский, М. А. Родова. М., 1983. — 8 с.
  40. Наставление по применению тест-системы «МИК-КОМ» для диагностики микоплазмоза методом полимеразной цепной реакции: утверждена Деп. ветеринарии Минсельхозпрод России 17 августа 1998 г. -11с.
  41. , H.H. Биология клетки в культуре / H.H. Никольский, Ю. Б. Бахтин, Т. Н. Игнатова: под ред. A.C. Трошина. JL: Наука, 1984. -280с.
  42. Общая вирусология: Руководство/ под ред. В. М. Жданова, С .Я. Гайдамович- АМН СССР. М.: Медицина, 1982. — Том 1. — 496с.
  43. , Е.Ф. Выделение цитопатогепных агентов от карпов при острой форме краснухи/ Е. Ф. Осадчая // Ветеринария. 1964. — № 9. — С. 29.
  44. , Е.Ф. О применении полусинтетической питательной среды для культивирования почечных клеток рыб in vitro / Е. Ф. Осадчая // Рыбное хозяйство. 1969. — Вып. 7. — С. 22−26.
  45. , Е.Ф. Методика культивирования однослойных клеточных культур из недозрелых гонад самок карпа/ Е. Ф. Осадчая // Рыбное хозяйство. 1969а. — Вып. 9. — С. 88−92.
  46. , Е.Ф. Рабдовирусы, выделенные от больных краснухой карпов, и некоторые их свойства/ Е. Ф. Осадчая // Рыбное хозяйство. 1977. -№ 5. — С. 36−39.
  47. Осадчая, Е.Ф. Rhabdovirus salmonis возбудителя новой болезни форели Salmo gairneri Richardson и его основные свойства/ Е. Ф. Осадчая, М.Г. Наконечная// Вопросы ихтиологии. — 1981. — Т. 21, Вып. 3. — С. 547−555.
  48. , Т.Д. Сравнительное изучение в реакции нейтрализации изолятов возбудителя весенней вирусной болезни рыб/ Т.Д. Пичугина// Труды Всесоюзного института экспериментальной ветеринарии. 1983. — Т. 57.-С. 141−143.
  49. , Т.И. Выделение вируса от карпов, больных жаберным некрозом/ Т. И. Попкова, И.С. Щелкунов// Рыбное хозяйство. 1978. — № 4. -С.4−38.
  50. Пат. RU 2 332 463. Набор олигонуклеотидных праймеров для определения видовой принадлежности осетровых рыб и продукции из них/
  51. Н.С.Мюге, А. Е. Барминцева (Россия). № 2 332 463- заявлено 25.01.2007- опубл. 27.08.2008, Бюл. № 24. — 11с.
  52. Rhabdovirus anguilla у угря в СССР и его патогенность для рыб/ И. С. Щелкунов и др. //Вопросы вирусологии. 1989. — № 1. — С. 81−84.
  53. , Н.И. Выделение вируса от карпов/Н.И. Рудиков// Сборник тезисов Первого всесоюз. симпозиума по инфекц. болезням рыб. М., 1972. -С. 62−65.
  54. , Ю.Д. Некоторые данные о заболевании большеротого буффало, вызванного рабдовирусом/ Ю.Д. Темниханов// Внедрение интенсивных форм ведения рыбного хозяйства внутренних водоемов УССР -Киев, 1982.-С. 69−70.
  55. , Ю.Д. Опыт лечения смешанной инфекции у молоди канального сомика, выращенного на теплых водах/ Ю. Д. Темниханов, JI.A. Горчаренко, JI.O. Лаврентьева// Рыбное хозяйство: межведомственный сборниик. 1983. -Вып. 37.-С. 59−61.
  56. Тец, В. И. Получение культуры тканей карпа и ее применение при изучении этиологии краснухи рыб/ В. И. Тец, Г. С. Яковлева// Научно-технический бюллютень ГОСНИОРХ. 1962. — Т. 15. — С. 73−77.
  57. , Н.Г. О культивировании in vitro соединительнотканных элементов у рыб/ Н. Г. Хлопин // Известия Биол. НИИ Биол. Станции Пермском Гос. Университете. 1925. — Т. IV, Вып. 2. — С. 20−23.
  58. , А.И. Биологические, физико-химические и молекулярно-генетические свойства герпесвируса сибирского осетра: автореф. на соискание уч. степ, кандидата биол. наук: 03.02.02 / Щелкунов Артем Игоревич.- Покров, 2010. 25с.
  59. , И.С. Вирусные инфекции у осетровых рыб/ И. С. Щелкунов // Рыбное хозяйство. Аналитическая реферативная информация. Серия: Болезни гидробионтов в аквакультуре. М.: ВНИИЭРХ, 2000. — Вып. 1.-С. 3−16.
  60. , И.С. Эпизоотическая ситуация по вирусным болезням культивируемых рыб/ И. С. Щелкунов // Ветеринария. 2006. — № 4. — С. 22−25
  61. Щелкунов, И.С. Rhabdovirus carpio у растительноядных рыб (выделение, идентификация, патогенность)/ И. С. Щелкунов, Т.И. Щелкунова// Сб. науч. тр. ВНИИПРХ. 1987. — Т. 50. — С. 3−11.
  62. , И.С. Необычный случай осеннего выделения Rhabdovirus carpio от карпа/ И. С. Щелкунов, Т.И. Щелкунова// Тез. IX Всесоюз. сов. по паразитам и болезням рыб. Ленинград, 1990. — С. 149−150.
  63. , И.С. Карповые гипериммунные антисыворотки для идентификации возбудителя весенней виремии карпа/ И. С. Щелкунов, Т. И. Щелкунова // Экспресс-информ. ВНИИЭРХ. 1991а. — Вып. 1. — С. 1−6.
  64. , И.С. Зависимость чувствительности метода детектирования SVCV- нейтрализующих антител в сыворотках рыб от вида используемой культуры клеток/ И. С. Щелкунов, Т. И. Щелкунова // Экспресс-информ. ВНИИЭРХ. 19 916. — Вып. 63. — С. 23−26.
  65. , И.С. Получение постоянных клеточных линий рыб: практические советы/ И. С. Щелкунов, Т. И. Щелкунова // Актуальные вопросы пресноводной аквакультуры. М.: ВНИИПРХ, 2002. — Вып. 78. — С. 179−187.
  66. , И.С. История, теория и практика получения постоянных линий клеток рыб/ И. С. Щелкунов, Т.И. Щелкунова// Методы культивирования клеток/ под ред. Г. П. Пинаева, М. С. Богдановой. СПб.: Политех, ун-т, 2008. — С. 135−156.
  67. , Т.И. Получение, характеристика и применение постоянной клеточной линии ICO яичников неполовозрелого карпа, Cyprinus carpio/ Т. И. Щелкунова, И. С. Щелкунов //Клеточные культуры. Информационный бюллетень. 2010. — Вып. 25. — С.24−36.
  68. , М.А. Кормление рыб в пресноводной аквакультуре / М. А. Щербина, Е. А. Гамыгин М.: ВНИРО, 2006. — 360 с.
  69. , С.Г. О перекрестной контаминации перевиваемых культур клеток / С. Г. Юрков // Вопросы вирусологии. 1995.- № 5. — С. 255−227.
  70. A cell line derived from the fin of Japanase flounder, Paralichthys olivaceusiY. Meguro et al.// Fish Pathol. 1991. — Vol. 26. — P. 69−75.
  71. A herpesvirus associated with mass mortality of juvenile and adult koi, a strain of a common carp/ R.P. Hedrick et al. // J. Aquat. Anim. Health. 2000. -Vol. 12.-P. 44−57.
  72. A herpesvirus isolated from carp papilloma in Japan/ T. Sano et al.// Fish and Shellfish pathology- Ed.: Ellis. London: Academic Press, 1985 6. — P. 307−311.
  73. Ahne, W. A rhabdovirus isolated from grass carp (Ctenopharyngodon idella Val. y W. Ahne // Arch. Virology. 1975.-Vol. 48. — P. 181−185.
  74. Ahne, W. Persistent infection in CHSE-214 cells with IPN virus isolated from pike (Esox lucius)/ W. Ahne //Bull. Off. Int. Epizoot. 1977. — Vol. 87. — P. 415−416.
  75. Ahne, W. Fish cell culture: a fibroblast line (PG) from ovaries of juvenile pike {Esox lucius)/ W. Ahne // In Vitro. 1979. — Vol. 15. — P. 839−840.
  76. Ahne, W. Serological techniques currently used in fish virology/ W. Ahne // Serodiagnostics and vaccines: proceedings of internat, sympos. on fish biolog. West Virginia, 26−30 April 1981. — P. 3−27.
  77. Ahne, W. Comparative studies on the stability of four fish-pathogenic viruses (VHSV, PFR, SVCV, IPNV)/ W. Ahne// Zentralbl. Veterinarmed. B. -1982.-Vol. 29. P. 457−476.
  78. Ahne, W. Studies on the use of fish tissue cultures for toxicity tests in order to reduce and replace the fish tests/ W. Ahne// Zbl. Bakt. Hyg., Abt. Orig. B. 1985.-Vol. 180.-P. 480−504.
  79. Ahne, W. Egtved virus: occurrence of strains not clearly identifiable by means of virus neutralization tests/ W. Ahne, P.E.V. Jorgensen, N.J. Olesen // J. Appl. Ichthyol.- 1986.-V. 2.-P. 187−189.
  80. Ahne, W. A new virus isolated from cultured grass carp Ctenopharyngodon idella / W. Ahne, Y. Jiang, J. Thomson// Dis. Aquat. Org. -1987.-Vol.3. P. 181−185.
  81. An Mxl promoter-reporter system to study interferon pathway sin rainbow trout/ B. Collet et al.// Dev. Comp. Immunol. 2004. — Vol. 28. — P. 793−801.
  82. A rhabdovirus isolated from brown trout {Salmo trutta m. lacustris L.) with lesions in parenchymatous organs/ P. Koski et al. // Bull. EAFP. 1992. -Vol. 12, N. 5. — P. 177−180.
  83. Arnold, J. Ueber Theilungsvorgange an den Wanderzellen ihre progressiven und retrogressiven Metamorphosen / J. Arnold // Arch. mikr. Anat. -1887.-B. 30. -S. 205.
  84. Babini, A. Coltivazione in vitro in monostratodi tessuti di pesci (Monolayer fish cell cultures in vitro)/ A. Babini, P. Ghittino // Atti. Soc. Ital. Sci. Vet. 1961. — Vol. 15. — P. 456−462.
  85. Bejar, J. A continuous cell line from the cultured marine fish gilt-head seabream (
  86. Bejar, J. The piscine SAF-1 cell line: genetic stability and labeling/ J. Bejar, J. Porta, J. Borrego// Marine Biotechnology. 2005. — Vol. 7. — P. 389−395.
  87. Bergmann, S.M. First detection, confirmation and isolation of koi herpesvirus (KHV) in cultured common carp (Cyprinus carpio L.) in Poland/ S.M. Bergmann, J. Kempter, J. Sadowski // Bull. Eur. Assoc. Fish Pathol. 2006. — Vol. 26.-P. 97−104.
  88. Blohm, U. Rainbow trout (Oncorhyncus my kiss) slgM-leukocytes secrete an interleukin-2 like growth factor after mitogenic stimulation in vitro/ U. Blohm, E. Siegl, B. Kollner// Fish Shellfish Immunol. 2003. — Vol. 14, Iss. 5. — P. 449 465.
  89. Bowser, P.R. Fish cell lines: establishment of a line from ovaries of channel catfish/ P.R. Bowser, J.A. Plumb// In Vitro 1980. — Vol. 16. — P. 365 368.
  90. Calle, P.P. Herpesvirus associated cutaneous papillomas in koi carp {Cyprinus carpio)/ P.P. Calle, T.S. McNamara, Y. Kress// Intern. Ass. Aquat. Animal Med. Proceedings. 1995. — Vol. 26. — P. 81−82.
  91. Castric, J. A viral disease of hatchery- reared turbot Scophthalmus maximus L/J. Castric, F. Baudin-Laurencin, M.F. Coustans //2nd Intern. Colloq. Pathol. Marine Aquae. 7−11 Sept. 1986 Porto (Portugal), 1986. — P. 27.
  92. Characteristics and pathogenicity of a novel herpesvirus isolated from adult and sub adult white sturgeon Acipenser transmontanus! L.R. Watson et al. //Dis. Aquat. Org. 1995. — Vol. 22. — P. 199−210.
  93. Characteristics of two viruses isolated from white sturgeon, Acipenser transmontanus/ R.P. Hedrick et al. // Proceedings Second Intern. Symp. Virus. Lower Verteb. Ed.: J.L. Fryer -Corvallis, OR: Oregon State Univer. Press, 1991. -P. 165−174.
  94. Characterization of cell cultures derived from Fugu, the Japanese pufferfish/ C.S. Bradford et al.// Mol. Mar. Biol. Biotechnol. 1997. — Vol. 6. -P. 279−288.
  95. Characterization of the cell culture replicated Japanese flounder Lymphocystis disease virus/ H. Kasai et al. // Program and Abst. 5th Intern. Symp. Virus. Lower Vertebr., Seattle, Washington, 2002, P.46.
  96. Chen, S.L. Establishment of a pluripotent embryonic cell line from sea perch {Lateolabrax japonicus) embryo/ S.L. Chen, Z.X. Sha, H.Q. Ye // Aquaculture. 2003. — Vol. 218. — P. 141 -151.
  97. Chen, S.N. A cell line derived from Japanese eel (Anguilla japonica) kidney/ S.N. Chen, Y. Ueno, G.H. Kou // Proc. Nutl. Sci. Counc. R.O.C. 1982. -N. 6.-P. 93−100.
  98. Cheng, L. Development of cell cultures derived from lake trout liver and kidney in a hormone-supplemented, serum-reduced medium/ L. Cheng, P.R. Bowser, J.M. Spitsbergen // J. Aquat. Anim. Health. 1993. — N. 5. — P. 119−126.
  99. Chlopin, N.G. Studien uber Gewebeskuturen im artfremden Blutplasma. I. Allgemeints. II. Das Bindegewebe der Wirbeltiere/ N.G. Chlopin // Z. Mikroskop. Anat. Forsch. 1925. — N. 2. — S. 324−365.
  100. Chlopin, N.G. Gewebskultur niederer Vertebraten/ N.G. Chlopin // Arch. Exptl. Zellforsch. Gewebezucht. 1928. — B. 6. — S. 97−102.
  101. Clem, L.W. Studies with cells from marine fish in tissue culture/ L.W. Clem, L. Moewus, M.M. Sigel // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1961. — Vol.108. -P. 762−766.
  102. Clem, L.W. An orphan virus isolated in marine fish cell tissue culture/ L.W. Clem, M.M. Sigel, R.R. Friis // Ann. N.Y. Acad. Sei. 1965. — Vol. 126. -P. 343−361.
  103. Cloning of the fish cell line SSN-1 for piscine nodaviruses/ T. Iwamoto et al. // Dis. Aquat. Org. 2000. — Vol. 43. — P. 81−89.
  104. Coll, J.M. The glycoprotein G of rhabdoviruses/ J.M. Coll// Arch. Virology. 1995. — Vol. 140. -P. 827−851.
  105. Culture of cells from zebrafish {Brachydanio rerio) embryo and adult tissues/P. Collodi et al. // Cell Biol. Tox. 1992. — Vol. 8. — P. 43−61.
  106. Dale, O.B. Outbreak of viral haemorrhagic septicaemia (VHS) in seawater-farmed rainbow trout in Norway caused by VHS virus Genotype III/ O.B. Dale, I. Orpetveit, T.M. Lyngstad // Dis. Aquat. Org. 2009. — Vol. 85. — P. 93 103.
  107. Dannevig, B.H. Isolation of the causal virus of infectious salmon anaemia (ISA) in a long-term cell line from Atlantic salmon head kidney/ B.H. Dannevig, K. Falk, E. Namork // J. Gen. Virol. 1995. — Vol. 76. — P. 1353−1359.
  108. Davidse, A. The elimination of Acholeplasma laidlawii from a chinook salmo embryo (CHSE-214) cell line/ A. Davidse, E.A. Ter Laak, J.M.A. Brinkhof// Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 1996. — Vol. 16, N. 6. — P. 211−213.
  109. Dederer, P.H. The behavior of cells in tissue of Fundulus heteroclitus with special reference to the ectoderm/ P.H. Dederer// Biol. Bull. 1921. — Vol. 41. -P. 221−240.
  110. Deng, C.X. Studies of cloning techniques in fish cells/ C.X. Deng, X.Q. Yang, H.Z. Chen // Acta Hydrobiolog. Sinica. 1985. — Vol. 9. — P. 194.
  111. Deng, C.X. Susceptibility to grass carp reovirus (GCRV) of several fish cell lines/ C.X. Deng, X.Q. Yang, H.Z. Chen // Acta Hydrobiolog. Sinica. -1985b.-Vol. 9(4).-P. 351−358.
  112. Development and characterization of a continuous embryonic cell line from turbot (Scophthalmus maximus)/ S.L. Chen et al. // Aquaculture 2005. -Vol. 249, Iss. 1−4.-P. 63−68.
  113. Development and characterization of cell lines from heart, liver, spleen and head kidney of sea perch Lateolabrax japonicus/ H.Q. Ye et al. // J. Fish Biology. 2006. — Vol. 69. — P. 115−126.
  114. Development and characterization of channel catfish long term B cell lines/ N.W. Miller et al. // J. Immunol. 1994. — Vol. 152. — P. 2180−2189.
  115. Development of a cell line from primary cultures of rainbow trout, Onkorhynchus mykiss, gills/ N.C. Bols et al. // J. Fish Dis. 1994. — Vol. 17. — P. 601−611.
  116. Development of a tropical marine fish cell line from Asian sea bass {Lates calcarifer) for virus isolation/ S.F. Chang et al. // Aquaculture. 2001. -Vol. 192.-P. 133−145.
  117. Emmenegger, E.J. Genetic diversity and epidemiology of infectious hematopoietic necrosis virus in Alaska/ E.J. Emmenegger, T.R. Meyers, T.O. Burton // Dis. Aquat. Org. 2000. — Vol. 40. — P. 163−176.
  118. Enders, J.F. Cultivation of the Lansing strain of poliomyelitis virus in cultures of varioushuman embryonic tissues / J.F. Enders, T.H. Weller, F.C. Robbins // Science. 1949. — Vol. 109. — P. 85 — 87.
  119. Establishment and characterization of a pronephric stromal cell line (TPS) from rainbow trout, Oncorhynchus mykiss W/ M.L. Diago et al. // Fish Shellfish Immun. 1995. — Vol. 5. — P. 441−457.
  120. Establishment and characterization of two new cell lines derived from flounder, Paralichthys olivaceus (Temminck & Schlegel)/ M.S. Kang et al. // J. Fish Dis. 2003. — Vol. 26, Iss. 11−12. — P. 657−665.
  121. Establishment of a continuous embryonic cell line from Japanese flounder Paralichthys olivaceus for virus isolation/ S.L. Chen et al. // Dis. Aquat. Org. 2004. — Vol. 60. — P. 241−246.
  122. Establishment of cell lines from a tropical grouper, Epinephelus awoara (Temminck& Schlegel), and their susceptibility to grouper irido- and nodaviruses/ Y.S. Lai et al. // J. Fish Dis. 2003. — Vol. 26. — P. 31−42.
  123. European Collection of Cell Cultures/ Catalogue of Cell Lines, Products & Servises. 2005/06. — 330 p.
  124. Faisal, M. Spring viraemia of carp (SVCV): comparision of immunoperoxidase, fluorescent antibody and cell culture isolation techniques for detection of antigen/ M. Faisal, W. Ahne // J. Fish Dis. 1984. -Vol. 7. — P. 57−64.
  125. Fernandez, R.D. Characterization of three continuous cell lines from marine fish/ R.D. Fernandez et al. // J. Aquat. Animal Health. 1993. — N. 5. — P. 127−136.
  126. Fijan, N. Vaccination of carp against spring viraemia: comparison of intraperitoneal and peroral application of live virus to fish kept in ponds/ N. Fijan, Z. Petrinec, Z. Stand //Bull. Off. Int. Epizoot. 1977. — Vol. 87. — P. 439−440.
  127. Fish cell culture: characteristics of a continuous fibroblastic cell line from walleye (Stizostedion vitreum vitreum)/ R.K. Kelly et al. // Can. J. Fish. Aquat. Sci.- 1980.-Vol. 37. P. 1070−1075.
  128. Fish cell culture: two newly developed cell lines from atlantic sturgeon, (Acipenser oxyrhynchus) and guppy (Poecilia reticulata)/ M.F. Li et al. // Canad. J. Zool. 1985. — Vol. 63. — P. 2867−2874.
  129. Fontana, F. Cytogenetic characterization of cell lines from three sturgeon species / F. Fontana, R. Rossi, M. Lanfredi// Caryologia. 1997. — Vol. 50, N. 1.-P. 91−95.
  130. Frerichs, G.N. Ulcerative disease rhabdovirus: cell-line susceptibility and serological comparison with other fish rhabdoviruses/ G.N. Frerichs, B.J. Hill, K. Way //J. Fish Dis. 1989. — Vol. 12, N. 1. — P. 51−56.
  131. Fryer, J.L. Methods for the in vitro cultivation of cells from the tissues of salmonid fishes/ J.L. Fryer // Doctoral dissertation, Oregon State University.1964.- 195p.
  132. Fryer, J.L. The in vitro cultivation of tissue and cells of Pacific salmon and steelhead trout/ J.L. Fryer, A. Yusha, K.S. Pilcher // Ann. N.Y. Acad. Sci.1965. Vol. 126 (Art. 1).-P. 566−586.
  133. Fryer, J.L. Three decades of fish cell culture: a current listing of cell lines derived from fishes/ J.L. Fryer, C.N. Lannan // J. Tissue Cult. Method. -1994.-Vol.16.-P. 87−94.
  134. Ganassin, R.C. Effect of purine supplementation on the growth of salmonid cell lines in different mammalian sera/ R.C. Ganassin, N.C. Bols// Cytotechnol. 1992. — Vol. 8. — P. 21−29.
  135. Ganassin, R.C. Development of a monocyte/macrophage-like cell line, RTS11, from rainbow trout spleen/ R.C. Ganassin, N.C. Bols // Fish Shellfish Immunol. 1998. — Vol. 8. — P. 457−476.
  136. Gey, G.O. Tissue culture studies of the proliferative capacity of cervical carcinoma and normal epithelium / G.O. Gey, W.D. Coffman, M.T. Kubicek // Cancer Res. 1952. — Vol.12. — P. 264−265.
  137. Gold, J.R. Cytogenetics/ J.R. Gold // Fish Physiology. 1979. — Vol. VIII.-P. 353−405.
  138. Gravell, M. A permanent cell line from the fathead minnow {Pimephales prometas)/ M. Gravell, R.C. Malsberger // Ann. N.Y. Acad. Sei. -1965, — Vol. 126.-P. 555−565.
  139. Grutzner, L. Versuche zur Zuchtung des gewebes von Macropodus opercularis (Linne) und Lebistes reticulates (Peters) in vitro! L. Grutzner // Zentr. Bakteriol., Parasitenk., Abt. I. Orig. 1956. — B. 165. — S. 8−24.
  140. Grutzner, L. In vitro — Zuchtung des Leber und Nierengewebes von Tinea vulgaris Cuv. (Schleic) in trypsinierten Einschichtgewebekulturen/ L. Grutzner // Zentr. Bacteriol., Parasitenk. Abt. I. Orig. 1958. — B. 173. — S. 195 202.
  141. Hansen, L.A. Ciprofloxacin treatment eliminates mycoplasma in contaminated channel catfish ovary cells/ L.A. Hansen, R.L. Thune // J. Aquat. Animal Health. 1994. — N.6. — P. 82−84.
  142. Hayasaka, K. Transfection of cultured fish cells RBCF-1 with exogenous oncogene and their resistanse to malignant transformation/ K. Hayasaka, M. Sato, H. Mitani // Comp. Biochem. Physiol. 1990. — Vol. 96B. — P. 349−354.
  143. Heartwell, C.M. Immune response and antibody characterization of the channel catfish (Ictalurus punctatus) to a naturally pathogenic bacterium and virus/ C.M. Heartwell// U.S. Fish Wildl. Serv., Tech. Paper 85. 1975. 56p.
  144. Hedrick, R.P. Serological relationships of five herpesviruses isolated from salmonid fishes/ R.P. Hedrick, T. McDowell, W.D. Eaton // J. Appl. Ichthyol. 1987.-Vol. 3.-P. 87−92.
  145. Hightower, L.H. Recent applications of fish cell culture to biomedical research/ L.H. Hightower, J.L. Renfro // J. Exp. Zool. 1988. — Vol. 248. — P. 290−302.
  146. Hochachka, P.W. Biochemistry and molecular biology of fishes/ P.W. Hochachka, T.P. Mommsen// Elsevier Science B.V., 1994. Vol. 3. — 260p.
  147. Huang, X. Characterization of two grouper Epinephelus akaara cell lines: application to studies of Singapore grouper iridovirus (SGIV) propagationand virus-host interaction/ X. Huang, Y. Huang, J. Han// Aquaculture. 2009. -Vol. 292.-P. 172−179.
  148. Immortalization of cells with oncogene transfection/ T. Tamai et al. // Techniques in Fish Immunology- Eds: J.S. Stolen, T.C. Fletcher, A.F. Rowley, D.P. Anderson, S.L. Kaattari, J.T. Zelikoff, S.A. Smith, 1994. Vol. 3. — P. 5360.
  149. Interference of the life cycle of fish nodavirus with fish retrovirus/ S.C. Chi et al. // 4th Intern. Sym. Aquat. Animal Health., 1−5 Sept. 2002, New Orleans- Louisiana USA. — 2002. — P. 200.
  150. Isa, K. Transfection and stable expression of a dominant selective marker Ecogpt in a cultured cell line of the fish, Carassius auratus! K. Isa, A. Shima // J. Cell Science. 1987. — Vol. 88. — P. 219−224.
  151. Isolation and characterization of the Japanese flounder (Paralichthys olivaceus) lymphocystis disease virus/ R. Iwamoto et al. // J. Aqut. Anim. Health. 2002. — Vol. 14. — P. 114−123.
  152. Isolation of a aquareovirus from common carp (Cyprinus carpio) in the P.R. China/ Y. Jiang et al. // Second Intern. Symp. Virus. Low. Verteb., Oregon State Univers. Corvallis, Oregon USA, 1991. P. 287−292.
  153. Isolation of spring viraemia of carp virus (SVCV) from cultured koi {Cyprinus carpio koi) and common carp (C. carpio carpio) in P.R. China/ H. Liu et al. // Bull. Eur. Ass. Fish Path. 2004. — Vol. 24, N. 4. — P. 194−202.
  154. Jensen, M.H. Preparation of fish tissue cultures for virus research/ M.H. Jensen// Bull. Off. Intern. Epizoot. 1963. — Vol. 59. — P. 131−134.
  155. Jiang, Y. Some properties of the etiological agent of the hemorrhagic disease of grass carp and black carp/ Y. Jiang, Ahne W. // Viruses Lower Verteb. Eds.: W. Ahne & Kurstak. Springer Verlag Berlin Heidelberg, 1989. — P. 227 240.
  156. Jung, S.J. Herpesviral haematopoietic necrosis of goldfish, Carassius auratus (L.)/ S.J. Jung, T. Miyazaki// Dis. Aqut. Org. 1995. — Vol.18. — P. 211 220.
  157. Kasai, H. Establishment of two Japanese flounder embryo cell lines/ H. Kasai, M. Yoshimizu // Bull. Fish. Sei. Hokkaido Univ. 2001. — Vol. 52. — P. 67−70.
  158. Kolbl, O. Die Schwimmblasenentzundung des Karpfens: Nachweis eines intrazytoplasmatisch wachsenden Einzellers mittels Gewebekultur/ O. Kolbl// Zsterreichs Fischerei. 1989. — B. 42. — S. 54−60.
  159. Kunst, L. Kultura bubreznih stanica sarana (Culture of carp kidney cells)/L. Kunst// Vet. Arhiv. 1962. — Vol. 32. — P.121−126.
  160. Kunst, L. Preparation of primary monolayer cell cultures of carp ovary/ L. Kunst, N. Fijan// Vet. Archiv. 1966. — Vol. 36. — P. 235−238.
  161. Lanfredi, M. Cytogenetic characterization of cell lines from six sturgeon species/ M. Lanfredi et al. // 3rd Intern. Symposium on Sturgeon-Piacenza, Italy, 1997, El -P.
  162. Lannan, C.N. Fish cell lines: establishment and characterization of nine cell lines from salmonids/ C.N. Lannan, J.R. Winton, J.L. Fryer // In Vitro. 1984. -Vol. 20.-P. 671−676.
  163. Law, W.M. Fish cell culture: properties of a cell line from the sheepshead, Archosargus probatocephalus! W.M. Law, R.D. Eilender, J.H. Wharton//J. Fish. Res. Board Can. 1978. — Vol. 35. — P. 470−473.
  164. Lee, L.E. Culture conditions for arresting and stimulating the proliferation of a rainbow trout fibroblast cell line, RTG-2/ L.E. Lee, J.A. Martinez, N.S. Bols //In vitro cell. Devel. Biol. 1998. — Vol. 24. — P. 795−802.
  165. Levan, A. Role of chromosomes in carcerogenesis as studied in serial tissue culture of mammalian cells/ A. Levan, J. Biesele// Ann. N. Y. Acad. Sei. -1985.-Vol. 71.-P. 1022−1055.
  166. Lewis, D.H. Micricultures of Sarotherodon mossambicus (Peters) cells: their use in detecting fish viruses/ D.H. Lewis, J.E. Marks // J. Fish Dis. 1985. -Vol. 8. — P. 477−478.
  167. Lidgerding, B.C. Fish cell lines: establishment of the first suspension culture/ B.C. Lidgerding, C.L. Schultz // In Vitro. 1979. — Vol. 15. — P. 216.
  168. Lidgerding, B.C. Fish cell lines: Characterization by isozyme analysis/ B.C. Lidgerding, S.R. Phelps, W.B. Schill // In Vitro, Tissue Culture Association, Inc. 1984. Vol. 20, N. 3 (Part 1) — P. — 167−171.
  169. Long-term primary culture epithelia cells from rainbow trout (iOncorhynchus mykiss) liver/ G.K. Ostrander et al.// In Vitro Cell. Dev. Biol. Anim. 1995. — Vol. 31. — P. 367−378.
  170. Lorenzen, N. Production and characterization of monoclonal antibodies to four Egtved virus structural proteins/ N. Lorenzen, N.J.Olesen, P.E.Vestergard Jorgensen // Dis. Aquat. Org. 1988. — Vol. 4. — P. 35−42.
  171. Lumsden, J.S. Mortality event in freshwater drum Aplodinotus grunniens from Lake Ontario, Canada, associated with viral haemorrhagic septicemia virus, Type IV/ J.S. Lumsden, B. Morrison, C. Yason // Dis. Aquat. Org. Vol. 2007. — Vol. 76. — P. 99−111.
  172. Matsuyama, H. Compatibilities of antibody and complement among different fish species/ H. Matsuyama, M. Nakao, T. Yano //Nippon Suisan Gakkaishi.-1988.-Vol. 54.-P. 1993−1996.
  173. McCain, B.B. Antigenic relationships in a group of three viruses of salmonid fish by cross neutralization/ B.B. McCain, J.L. Fryer, K.S. Pilcher // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1971. — Vol. 137. — P. 1042−1046.
  174. Merchant, D.J. Handbook of cell and organ culture/ DJ. Merchant, R.H. Kahn, W.H.Jr. Murphy// Burgess Publ. Co., Minneapolis, Minn. 1964. -273p.
  175. Miller, N.W. Development of leukocyte cell lines from the channel catfish (Ictalurus punctstus)/ N.W. Miller, V.G. Chinchar, L.W. Clem // J. Tissue Cult. Method. 1994 a. — Vol. 16. — P. 117−123.
  176. Molecular characterization of sea bream (Spams aurata) transforming growth factor p 1/ C. Tafalla et al. // Fish Shellfish Immunol. 2003. — Vol. 14, Iss. 5. — P. 405−421.
  177. Nelson-Rees, W.A. Cross-contamination of cells in culture / W.A. Nelson-Rees, D.W. Daniels, R.R. Flandermeyer // Science. 1981. — Vol. 212, N. 4493.-P. 446−452.
  178. Neukirch, M. Isolation of a virus from koi with altered gills/ M. Neukirch, K. Bottcher, S. Bunnajirakul. // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 1999. -Vol. 19, N. 5.-P. 221−224.
  179. Neukirch, M. Isolation and preliminary characterization of several viruses from koi (Cyprinus carpio) suffering gill necrosis and mortality/ M. Neukirch, U. Kunz // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 2001. — Vol. 21, N. 4. — P. 125 135.
  180. Nias, A.H. Clone size analysis: a parameter in the study of cell population kinetics/ A.H. Nias // Cell Tissue Kinet. 1968. — Vol. 1. — P. 153−165.
  181. Nicholson, B.L. An established cell line from the Atlantic salmon (Salmo salar)! B.L. Nicholson, C. Byrne // J. Fish Res. Board Can. 1973. — Vol. 30.-P. 913−916.
  182. Nicholson, B.L. Growth of fish cell lines on micro carriers / B.L. Nicholson // Appl. Environ. Microbiol. 1980. — Vol. 39, N. 2. — P. 394−397.
  183. Nims, L. Studies of replication of four selected viruses in two cell lines derived from salmonids fish/ L. Nims, J.L. Fryer, K.S. Pilcher // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1970. — Vol. 135. — P. 6−12.
  184. Nishizawa, T. Genetic relatedness among Japanese, American and European isolates of viral haemorrhagic septicaemia virus (VHSV) based on partial G and P genes/ T. Nishizawa, H. Iida, R. Takano //Dis. Aquat. Org. 2002. -Vol. 48.-P. 143−148.
  185. Noga, E J. Studies on channel catfish virus passaged in cell cultures of the walking catfish/ E.J. Noga// M.S. thesis. Florida Atlantic University, Boca Raton, 1977a. 53 pp.
  186. Noga, E.J. Establishment of cell lines from the walking catfish (Clarias batrachus L.) and their infection with channel catfish virus/ E.J. Noga, J.X. Hartmann // In Vitro. 1977. — Vol. 13. — P. 160.
  187. Okamoto, N. The mechanism of interference with fish viral infection in the RTG-2 cell line/ N. Okamoto, T. Shirakura, Y. Nagakura// Fish Pathology. -1983.- Vol. 18, N. l.-P. 7−12.
  188. Olesen N.J. Detection of neutralizing antybody to Egtved virus in rainbow trout (Salmo gairdneri) by plaque neutralization test with complement addition/ N.J. Olesen, P.E.V. Jorgensen // J. Appl, Ichthyol. 1986. — Vol. — P. 3341.
  189. Olesen, N.J. Serological differences among isolates of viral haemorrhagic septicaemia virus detected by neutralizing monoclonal and polyclonal antibodies/ N.J. Olesen, N. Lorenzen, P.E.V. Jorgensen // Dis. Aquat. Org. 1993. — V. 16. — P. 163−170.
  190. Osowski, H. Uber active Zellbewequnq im explantat von Wirbeitierembryonen/ H. Osowski //Arch. Entuicklunqsmech. Orqan. 1914. — B. 38.-S. 547−583.
  191. Parkinson, C. A cell line the tilapia Oreochromis spilurus Gunther/ C. Parkinson, C. Agius // J. Fish Biol. 1987. — Supplement A. — P. 239−240.
  192. Perry, G.M.L. Characterization of rainbow trout cell lines using microsatellite DNA profiling/ G.M.L. Perry, G.J. McDonald, M.M. Ferguson// Cytotechnology.-2001.-Vol. 37.-P. 143−151.
  193. Pfitzner, I. In vitro-Zuchtung des Gonaden- und Schwimmblasengewebes von Tinea vulgaris Cuv. (Schleie) in trypsinierten Einschichtgewenbekulturen/ I. Pfitzner, L. Grutzner // Zentr. Bakteriol., Parasitenk., Abt. I. Orig. 1964. — B. 191. — S. 474−485.
  194. Plumb, J.A. Quantitative comparison of RTG-2 cell grouwth at 5−25°C/ J.A. Plumb, K. Wolf// In Vitro. 1971. — Vol. 7, N. 1. — P. 42−45.
  195. Plumb, J. A. Neutralization of channel catfish virus by serum of channel catfish / J.A. Plumb// J. Wildl. Dis. 1973. — Vol. 9. — P. 324−330.
  196. Propagation of yellow grouper nervous virus (YGNNV) in a new nodavirus-susceptible cell line yellow grouper, Epinephelus awoara (Temminck& Schlegel), brain tissue/ Y.S. Lai et al. // J. Fish Dis. 2001. — Vol. 24. — P. 299 309.
  197. Puck, T.T. Clonal growth of mammalian cells in vitro. Growth characteristics of clones from single HeLa cells with and without a feeder layer/T.T. Puck, P.I. Marcus, S.J. Cieciura // J. Exp. Med. (USA). 1956. — Vol. 103.-P. 273−284.
  198. Purification and characterization of interferon-like antiviral protein derived from flatfish (Paralichthys olivaceus) lymphocytes immortalized by oncogenes/T. Tamai et al. //Cytotechnol. 1993. — Vol. 11. — P. 121−131.
  199. Ristow, S.S. Susceptibility of four new salmonids cell lines to infectious hematopoietic necrosis virus/ S.S. Ristow, J. de Avila// J. Aquat. Anim. Health. 1994. — Vol. 6. — P. 260−265.
  200. Roux, W. Beitrage zur Entwicklungsmechanik des Embryo / W. Roux //Z.Biol.- 1885.- Vol. 21.-P. 411.
  201. Sakai, D.K. Heat inactivation of complement and immune hemolysis reaction in rainbow trout, masu salmon, coho salmon, goldfish and tilapia / D.K. Sakai // Bull. Japan. Soc. Sci. Fish. 1981. — Vol. 47. — P. 565−571.
  202. Sano, T. Herpesvirus cyprini: biological and oncogenic properties/ T. Sano, H. Fukuda, M. Furukawa //Abstracts International Simposium of Fish Pathology. Tokyo, 1984. — P. 55−56.
  203. Sano, T. Herpesvirus cyprini: biological and oncogenic properties/ T. Sano, H. Fukuda, M. Furukawa // Fish Pathology. 1985. — Vol. 20(2/3). — P. 381 388.
  204. Sano, T. A herpesvirus isolated from carp papilloma in Japan/ T. Sano, H. Fukuda, M. Furukawa, M. Hosoya, Y. Moriya// Fish and Shellfish pathology- Ed.: Ellis. London: Academic Press, 1985a. — P. 307−311.
  205. Sano, T. A preliminary report on pathogenicity and oncogenicity of cyprinid herpesvirus/ T. Sano, N. Morita, N. Shima // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. -1990. Vol. 10, N 1. — P. 11−13.
  206. Sano, M. First detection of koi herpesvirus in cultured common carp Cyprinus carpio in Japan/ M. Sano, Ito T., Kurita J. // Fish Pathol. 2004. — Vol. 39.-P. 165−167.
  207. Schmale, M.C. A virus-like agent associated with neurofiromatosis in damselfish/ M.C. Schmale, P.D. Gibbs, C.E. Campbell // Dis. Aquat. Org. 2002. -Vol. 49.-P. 107−115.
  208. Shchelkunov, I.S. Atlantic salmon papillomatosis: visualization of herpesvirus-Iike particles in skin growths of affected fish/ I.S. Shchelkunov, T.A. Karaseva, Y.P. Kadoshnikov //Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 1992. — Vol. 12, N1. -P. 28−31.
  209. Shchelkunov, I.S. Two continuous cell lines from carp, Cyprinus carpio L. I I.S. Shchelkunov, T.I. Shchelkunova, O. A. Kupinskaya// Diseases Fish and Shellfish: abstract Vllth Intern. Conf. EAFP. Palma de Mallorca, 1995. — P. 49.
  210. Shchelkunova, T.I. Enhanced neutralization of spring viraemia of carp virus by fish antibodies in presence of complement/ T.I. Shchelkunova, I.S. Shchelkunov // Diseases Fish and Shellfish: abstract Vth Intern. Conf. EAFP. -Budapest, 1991.-P. 95.
  211. Some properties of the Epithelioma papillosum cyprini (EPC) cell line from carp Cyprinus carpio! N. Fijan et al. // Ann. Virol. (Inst. Pasteur). 1983. -Vol. 134 E.- P. 207−220.
  212. Sorimachi, M. Susceptibility of fish cell lines to eel viruses/ M. Sorimachi// Fish Pathol. 1982. — Vol. 9, N. 17(2). — P. 119−123.
  213. Sonstegard, R.A. Establishment of a cell line from lymphosarcoma of the muskellunge (Esox masquinongy)/ R.A. Sonstegard, K.S. Sonstegard // In Vitro. 1973.-8. — P. 410.
  214. Splenic cell line from sea bass, Lates calcarifer. establishment and characterization/ V. Parameswaran et al. // Aquaculture. 2006. — Vol. 261. — P. 43−53.
  215. Spontaneously productive C-tipe retrovirus infection of fish cell lines/ G.N. Frerichs et al. // J. Gen. Virol. 1991. — Vol. 72. — P. 2537−2539.
  216. Steinhardt, E. Studies on the cultivation of the virus of vaccinia / E. Steinhardt, C. Israeli and R. Lambert // J. infect. Dis. 1913. — Vol. 13. — P. 294.
  217. The costs of using unauthenticated, over-passaged cell lines: how much more data do we need?/ P. Hughes et al.// Bio Techniques. 2007. — Vol. 43, N. 5.-P. 575−583.
  218. The emergence of koi herpesvirus and its significance to European aquaculture / O.L.M. Haenen et al.// Bull. Eur. Ass. Fish Path. 2004. — Vol. 24, N. 6. — P. 293−307.
  219. Thiery, R. Phylogenetic analysis of viral haemorrhagic septicaemia virus (VHSV) isolates from France (1971−1999)/ R. Thiery, C. de Boisseson, J. Jeffroy// Dis. Aquat. Org. 2002. — Vol. 52. — P. 29−37.
  220. TNF induces the growth of thymocytes in rainbow trout/ K. Hino et al. // Develop. Comp. Immunol. 2006. -Vol. 30, Iss. 7. — P. 639−647.
  221. Two iridovirus-susceptible cells established from kidney and liver of grouper, Epinephelus awoara (Temminck& Schlegel), and partial characterization of grouper iridovirus/ Y.S. Lai et al. // J. Fish Dis. 2000. — Vol. 23. — P. 379 388.
  222. Townsley, P.M. Marine fish tissue culture/ P.M. Townsley, H.G. Wight, M.A. Scott// J. Fish. Res. Board Can. 1966. — Vol. 20. — P. 679−684.
  223. Tung, L.C. Three cell lines derived from spleen and kidney of black porgy (Acanthopagrus schlegeli)/ L.C. Tung, S.N. Chen, G.H. Kou // Fish. Pathol. 1991.-Vol. 26.-P. 109−117.
  224. Two cell lines from white sturgeon/ R.P. Hedrick et al. // Trans. Am. Fish Soc.- 1991 a.-Vol. 120. P. 528−534.
  225. Vestergaard Jorgensen, P.E. Serological identification of Egtved virus (virus of viral haemorrhagic septicaemia of rainbow trout). A preliminary report/ P.E. Vestergaard Jorgensen // Bull. Off. Int. Epizoot. 1968. — Vol. 69. — P. 985 989.
  226. Vestergaard Jorgensen, P.E. Egtved virus: demonstration of neutralizing antibodies in serum from artificially infected rainbow trout (Salmo gairdneri)! P.E. Vestergaard Jorgensen // J. Fish. Res. Board Can. 1971. — Vol. 28.-P. 875−877.
  227. Vestergaard Jorgensen, P.E. Experimental VHS-vaccine in Field trials/ P.E. Vestergaard Jorgensen // Bull. Eur. Assoc. Fish Patholog. 1981. — Vol. 1. -P. 13−14.
  228. Walker, D.P. Studies on the culture, assay of infectivity and some in vitro properties of Lymphocystis virus/ D.P. Walker, B.J. Hill // J. Gen. Virol. -1980.-Vol. 51.-P. 385−395.
  229. Wergeland, H.I. A salmonids cell line (TO) for production of infectious salmon anemia virus (ISAV) / H. I. Wergeland, R.A. Jakobsen // Dis. Aquat. Organ. 2001 — Vol. 44. — P. 183−190.
  230. Wolf, K. Fish Viruses and Fish Viral Diseases/K. Wolf// Ithaca and London: Cornell University Press, 1988. — 476 p.
  231. Wolf, K. Fish cell culture/ K. Wolf, W. Ahne// Advances in Cell Culture. 1982. — Vol. 2. — P. 305−328.
  232. Wolf, K. Cultivation of adult teleost tissues in vitro! K. Wolf, C.E. Dunbar // Proc. Soc. Exptl. Biol. Med. 1957. — Vol. 95. — P. 455−458.
  233. Wolf, K. Poikilotherm vertebrate cell lines and viruses: a current listing for fishes/ K. Wolf, J.A. Mann // In Vitro. 1980. — Vol. 16, N 2. — P. 168−179.
  234. Wolf, K. Established eurythermic line of fish cells in vitro! K. Wolf, M.C. Quimby // Science. 1962. — Vol. 135. — P. 1065−1066.
  235. Wolf, K. Lymphocystis virus: isolation and propagation in centrarchid fish cell lines/ K. Wolf, M.C. Quimby // Science. 1966. — Vol. 151. — P. 10 041 005.
  236. Wolf, K. Fish cell and tissue culture/ K. Wolf, M.C. Quimby// Fish Physiology Eds.: W.S. Hoar and D.J. Randall. N.Y. Acad. Press, 1969. — Vol. 3. -P. 253−305.
  237. Wolf, K. Infectious pancreatic necrosis: clinical and immune response of adult trouts to inoculation with live virus/ K. Wolf, M.C. Quimby//J. Fish. Board Can. 1969 a. — Vol. 26. — P. 2511 -2516.
  238. Wolf, K. Primary monolayer culture of fish cells initiated from minced tissues/ K. Wolf, M.C. Quimby// TCA Manual. 1976. — Vol. 2. — P. 445−448.
  239. Wolf, K. Procedures for subculturing fish cells and propagating fish cell lines/ K. Wolf, M.C. Quimby// TCA Manual. 1976 6. — Vol. 2. — P. 471−474.
  240. Wolf, K. Systematic management of animal cell lines/ K. Wolf, M.C. Quimby// TCA Manual. 1978. — Vol. 4. — P. 741−744.
  241. Wolf, K. Infectious pancreatic necrosis in trout. A tissue culture study/ K. Wolf, M.C. Quimby, S.F. Snieszko // Prog. Fish. Cult. 1960. — Vol. 22. — P. 64−68.
  242. Yoshimizu, M. Viral diseases of freshwater fishes in Hokkaido/ M. Yoshimizu// Sci. Rep. Hokkaido Fish Hatchery. 1994. — Vol. 48. — P. 15−24.
  243. Zhao, Z. Establishment and characterization of two cell lines from bluefin trevally Caranx melampygus/ Z. Zhao, Lu Yu. // DAO. 2006. — Vol. 68, N. 2. — P. 91−100.
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?